práctica nro 5 diagnóstico de las micosis sistemicas

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  • 8/17/2019 Práctica Nro 5 Diagnóstico de Las Micosis Sistemicas

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       P   r    á   c   t   i   c   a   n    ú   m   e   r   o   5  :   D   i   a   g   n    ó

       s   t   i   c   o    d   e    l   a   s   M   i   c   o   s   i   s   S   i   s   t    é   m   i   c   a   s

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    PRÁCTICA NRO 5: DIAGNÓSTICO DE LAS MICOSIS SISTÉMICAS

    OBJETIVOS:

     Al finalizar la práctica el estudiante estará en la capacidad de:

     Establecer las diferencias macroscópicas y microscópicas de los

    diferentes agentes de micosis sistémicas.

      Interpretar las pruebas inmunológicas empleadas para el diagnóstico

    de las micosis sistémicas.

    HISTOPLASMOSIS:

    Producida por el hongo dimórfico Histoplasma capsulatum, con sus dosvariedades: H. capsulatum var. capsulatum  e H. capsulatum var. duboisii . La

    primera produce micosis sistémica en el hombre y animales, es endémica en

     Ámerica del Norte, Central y del Sur; mientras que la variedad duboisii   está

    limitada a África Central.

    H. capsulatum var capsulatum  habita en suelos con alto contenido de

    nitrógeno, asociado con excremento de pájaros y murciélagos, penetra al

    organismo por vía inhalatoria. La primoinfección es pulmonar pudiendo ser:

    asintomática o subclínica y la asintomática que se subdivide en: pulmonar aguda,

    pulmonar crónica y diseminada, en pacientes inmunocomprometidos.

    Diagnóstico:

    Muestra:   Dependerá de la forma clínica que presente el paciente. Esputo,

    lavado broncoalveolar, médula ósea, sangre, biopsias, exudados de lesiones

    mucosas y cutáneas, material de ganglios linfáticos, LCR y otros líquidoscorporales.

    Examen directo:

      Extendidos coloreados con Giemsa o Wright.

      Coloraciones histológicas (HE, PAS, plata-metnamina).

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       s   t   i   c   o    d   e    l   a   s   M   i   c   o   s   i   s   S   i   s   t    é   m   i   c   a   s

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      Calcofluor.

    Por ser las levaduras de H. capsulatum  muy pequeñas no pueden ser

    reconocidas en fresco o con KOH.

     Al examen directo se observan blastoconidias ovaladas de 2-3 m,

    intracelulares, generalmente con una sola gema (Figura 28); por efecto de algunas

    coloraciones ocurre una retracción de la membrana citoplasmática que le da

    apariencia de una cápsula. En los pacientes con SIDA, las blastoconidias pueden

    observarse extracelularmente debido a la multiplicación intracitoplasmática

    excesiva, causando la destrucción del fagocito.

    En los cortes histológicos, la pared del hongo se tiñe débilmente con HE

    pero se destaca con PAS y plata metenamina (Figura 29). Se observan

    blastoconidias intracelulares y otras libres por la ruptura del fagocito, rodeadas por

    una reacción granulomatosa, con predominio de células epitelioides y gigantes.

    Cult ivo:  

    Se realiza sobre agar sangre, Sabouraud o extracto de levadura. Para verificar

    el dimorfismo de H. capsulatum, el cultivo se incuba tanto a temperatura ambiente

    Figura 28: Blastoconidias (B) de Histoplasmacapsulatum  en el interior de una célulafagocitica (F). Observe el núcleo del fagocito(NF). Extendido coloreado con Giemsa.

    www.scielo.org.ar/.../abcl/v39n4/4a09f2.jpg

    Figura 29: Blastoconidias (B) de Histoplasmacapsulatum. Coloración histológica Plata-metenamina.pathmicro.med.sc.edu/mycology/mycology-

    6.htm

    http://pathmicro.med.sc.edu/mycology/mycology-6.htmhttp://pathmicro.med.sc.edu/mycology/mycology-6.htmhttp://pathmicro.med.sc.edu/mycology/mycology-6.htmhttp://pathmicro.med.sc.edu/mycology/mycology-6.htm

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       s   t   i   c   o    d   e    l   a   s   M   i   c   o   s   i   s   S   i   s   t    é   m   i   c   a   s

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    como a 37 ºC. La identificación del H. capsulatum  se hace en su fase micelial

    (temperatura ambiente), formando colonias blancas y algodonosas en los medios

    de cultivo. En el microcultivo se observan hifas tabicadas, microconidias y

    macroconidias tuberculadas, que identifican el agente etiológico. (Figura 30)

    El cultivo es el método más específico para establecer definitivamente el

    diagnóstico. Sin embargo tiene poca sensibilidad en la mayoría de las formas

    clínicas de histoplasmosis y tarda entre 1 y 5 semanas por lo que se hace

    necesario la implementación de otras pruebas diagnósticas como lo son las

    inmunológicas.

    Estudio Inmuno lógico

    Inmunidad celular: se estudia con la aplicación, por vía intradérmica, de 0,1

    c.c. de histoplasmina, en la cara anterior del antebrazo. La lectura se realiza a las

    48 horas, siendo positiva con la presencia de una induración igual ó mayor de 5

    mm de diámetro. La IDR con la histoplasmina es de poco valor diagnóstico, sólo

    indica contacto con el hongo.

    DIBUJO

    Figura 30: Macroconidias tuberculadas (M) ymicroconidias (m) de Histoplasma capsulatum.Observadas en cultivo en lámina, coloreadas con azulde lactofenol. http://alsubs.blogspot.com/ 

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    Inmunidad humoral:  Se pueden determinar tanto anticuerpos como

    antígenos circulantes. La técnica más usada es la IDD donde pueden ser

    observadas dos bandas de identidad, una banda “M” y una “H”. La banda M es la

    que se encuentra con mayor frecuencia y es evidencia presuntiva de infecciones

    iniciales o de infección pasada (esta banda persiste rara vez después de 3 a 6

    meses de la recuperación clínica del paciente). La banda “H” aparece con menor

    frecuencia que la “M”, usualmente indica la presencia de una enfermedad clínica

    activa, sin embargo su ausencia no excluye la histoplasmosis activa. Esta banda

    tiende a desaparecer con la curación del foco infeccioso.

    PARACOCCIDIOIDOMICOSIS:

    Es causada por el hongo dimórfico Paraccocidioides brasiliensis, constituye

    una de las micosis sistémicas más importante de la América Latina. Hasta la fecha

    se desconoce el hábitat del hongo, sólo ha sido aislado de tierras en contadas

    ocasiones y en forma ocasional ha sido asilado de alimentos para perros y deheces de pingüinos; sin embargo el consenso general señala el suelo de áreas

    endémicas como el nicho ecológico.

     Afecta principalmente a hombres adultos entre 30 y 60 años de edad,

    trabajadores de la tierra, que se infectan por vía inhalatoria, por lo que la

    BANDA “H” 

    BANDA

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       s   t   i   c   o    d   e    l   a   s   M   i   c   o   s   i   s   S   i   s   t    é   m   i   c   a   s

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    primoinfección ocurre en los pulmones, desde donde se disemina a otros órganos.

    La menor frecuencia de casos en mujeres parece estar relacionada con factores

    hormonales.

    Se describen las siguientes formas clínicas:

      Infección subclínica asintomática.

      Enfermedad, se subdivide en:

      Juvenil

      Crónica del adulto (Figura 31)

      Residual

    DIAGNÓSTICO

    Muestra:  dependerá de la forma clínica que presente.

      Esputo o lavado broncoalveolar

      Exudado de ulceras en mucosas y el piel

      Material purulento de nódulos linfáticos

      Biopsias

    Figura : Forma crónica del adulto. Lesiones (L) enpaladar ocasionadas por P. brasiliensis. Foto cortesíaProfa. Leyla Humbría. 

    Figura 31: Forma crónica del adulto. Lesiones (L) en paladarblando ocasionadas por P. brasiliensis. Foto cortesía Profa.Leyla Humbría.

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      Orina

      LCR y otros líquidos corporales.

    Examen directo:

      En fresco, entre lamina y laminilla

      KOH al 10% con o sin tinta

      Negro de clorazol

      Calcofluor

      Coloraciones histológicas (PAS, HE, plata-metenamina)

    Se observan blastoconidias de diferentes tamaños, entre 3-40 µm de diámetro,

    redondeadas, de pared gruesa y refringente, con inclusiones citoplasmáticas.

    Característicamente se observan células multigemantes, llamadas de timón de

    barco, unidas entre sí directamente o a través de un pequeño puente

    citoplasmático. Además de las formas multigemantes, es posible ver cadenas de

    blastoconidias o células con gemación única o solitarias (Figura 32).

    Figura : Levadura (L) multigemante de P. brasiliensis observada en examen directo con KOH al 10%. Fotocortesía Profa. Leyla Humbría. 

    L DIBUJO

    Figura 32: Levadura (L) multigemante de P.brasiliensis  observada en examen directocon KOH al 10%. Foto cortesia Profa. LeylaHumbría.

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    En las biopsias, la observación del hongo es más fácil con la coloración de

    plata-metenamina y PAS que con HE (tiñe mal la pared del hongo). Se observan

    una respuesta tisular mixta, característica de una micosis crónica, con formación

    de microabcesos y granulomas. El hongo suele encontrarse asociado con las

    células gigantes multinucleadas del granuloma, donde exhibe sus características

    descritas anteriormente, excepto las inclusiones intracitoplasmáticas y la

    refringencia de la pared.

    Cult ivo:  

    Se realiza en agar Sabouraud adicionado o no de antibióticos y

    cicloheximida. Se incuba a temperatura ambiente y a 37 ºC para demostrar su

    dimorfismo. P. brasiliensis es de crecimiento lento.

     A temperatura ambiente, en el anverso, crece como un moho de color

    blanco o crema y en el reverso de la colonia muestra un color marrón claro. Al

    microscopio, en un cultivo en lámina, se observan hifas delgadas con artroconidias

    y clamidosporas intercalares y terminales. Este tipo de crecimiento es de escaso

    valor diagnóstico.

     A 37 ºC se forman colonias blanquecinas, de aspecto cerebriforme, que al

    ser observadas al microscopio demuestran la presencia de levaduras

    multigemantes que permiten la identificación definitiva del hongo (Figura 33).

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    Estudio inm unológico

    Inmunidad celular: se estudia con la aplicación de 0,1 c.c. de

    paraccoccidioidina, vía intradérmica en la cara anterior del antebrazo. Se aplican

    simultáneamente un antígeno control (PPD) y la histoplasmina, para evaluar

    posibles reacciones cruzadas. La lectura se realiza a las 48 horas, considerándose

    positiva una induración igual ó mayor de 5 mm de diámetro (Figura 34).

    Figura : Cultivo levaduriforme deP. brasiliensis

    . Agar Sabouraud.Foto cortesía Profa. Leyla Humbría. 

    Figura 33: Cultivo levaduriforme de P. brasiliensis. Agar Sabouraud.Foto cortesía Profa. Leyla Humbría.

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    La IDR con paraccoccidioidina carece de valor diagnóstico, sólo indica

    contacto previo con el hongo. Esta prueba se hace negativa en estados anérgicos,

    de pronóstico reservado, por lo que su aplicación se recomienda cuando se desee

    evaluar las condiciones inmunológicas del paciente, para hacer seguimiento

    después del tratamiento y para estudios epidemiológicos.

    Inmunidad humoral:

    En los casos de paracoccidioidomicosis pulmonar crónica unifocal, en los

    cuales se hace difícil una toma de muestra clínica representativa que facilite la

    observación del hongo con un examen directo, la IDD es recomendada por su

    simplicidad y efectividad diagnóstica. Esta prueba detecta anticuerpos de tipo IgGen un 93% de los casos activos y puede utilizarse de forma cuantitativa para

    determinar aumento o disminución de anticuerpos circulantes durante el

    seguimiento de tratamiento del paciente.

    Figura : Resultados de la aplicación de la pruebaintradérmica con histoplamina (H) y paracoccidioidina(P). Foto cortesía Profa. Leyla Humbría. 

    H  P 

    Figura 34: Resultados de la aplicación de la prueba intradérmicacon histoplasmina (H) y paracoccidioidina (P). Foto cortesíaProfa. Leyla Humbría

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    dimórficos pertenecientes al género Coccidioides: Coccidioides immitis  conocido

    como la especie Californiana, y la recién nombrada especie no Californiana,

    Coccidioides posadasii. La fase saprofítica de estos microorganismos se

    desarrolla en la tierra de áreas endémicas; parte del suroeste de los Estados

    Unidos, México, Centro y Suramérica; y la infección en humanos, así como en

    varias especies de animales, se adquiere principalmente por vía inhalatoria. 

    En Venezuela, las áreas endémicas de esta micosis se localizan en la

    región noroccidental, en las zonas áridas y semiáridas de los estados Falcón, Lara

    y Zulia.

    Se considera como principal mecanismo de infección la inhalación de lasartroconidias presentes en el suelo, las cuales se desprenden al moverse la tierra

    seca, o bien, se desplazan con las corrientes de aire. La infección depende de la

    exposición al hongo en un área endémica; afecta a cualquier edad o sexo y es

    más frecuente en campesinos, soldados, arqueólogos, entre otros. Los casos se

    pueden incrementar después de temblores de tierra, épocas de sequías, así como

    cambios en el suelo (altas concentraciones de sales eliminan flora microbiana

    competitiva), migraciones de individuos susceptibles y la humedad relativa del

    suelo y aire.

    Coccidioides posadasii e immitis producen un espectro amplio de

    manifestaciones clínico-patológicas que van desde una infección asintomática a

    una enfermedad pulmonar primaria, enfermedad cutánea primaria, enfermedad

    pulmonar progresiva y la diseminación extrapulmonar que puede ser aguda,

    crónica, o progresiva (Figura 36). La severidad de la infección va a depender delos mecanismos de defensa del huésped, tamaño del inóculo y, posiblemente, de

    factores específicos de la virulencia o de resistencia del hongo.

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    DIAGNÓSTICO

    Muestra:

      Esputo  Lavado bronquioalveolar

      Exudados de lesiones en mucosas y piel

      Biopsias

      Material purulento

      Sangre

      Médula ósea

      LCR y otros líquidos corporales.

    Examen directo:

      En fresco entre lamina y laminilla

      KOH al 10-20%, con o sin tinta

      Coloraciones histológicas (PAS, HE, Plata-metenamina)

    Figura : Lesión en nariz de un paciente concoccidioidomicosis diseminada. Foto cortesía Profa.Dilia Martinez. 

    Figura 36: Lesión en nariz de un paciente concoccidioidomicosis diseminada. Foto cortesía Profa. DiliaMartinez.

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      Calcofluor.

    Se observan esférulas de 10 a 80 µm, con pared doble y refráctil y endosporas

    de 2 a 5 µm (Figura 37).

    Cult ivo:  

    El método definitivo para confirmar el diagnóstico de CDM es el aislamiento

    del hongo a partir del espécimen clínico. Coccidioides spp crece fácilmente en la

    mayoría de los medios de cultivo utilizados en los laboratorios clínicos. En medio

    Sabouraud con o sin antibiótico, a temperatura ambiente, al tercer día se observan

    colonias glabra, después vellosas y luego francamente algodonosas, de color

    blanco grisáceo o amarillento (Figura 38). Microscópicamente se observan hifas

    delgadas y septadas con artrosporas o artroconidias rectangulares de 2 por 4 ó 3

    por 6 µm (Figura 39). La forma micelial de Coccidioides spp  representa un alto

    riesgo de infección al personal del laboratorio debido a que es altamente

    Figura : Examen directo con KOH% de muestra clinica proveniente de lesión en nariz.Se observan esférulas (E) rotas y completas, con endosporas (e) en su interior y

    libres. Foto cortesía Profa. Leyla Humbría. 

    Figura 37: Examen directo con KOH al 20% de muestra clínica proveniente de lesión en nariz deun paciente con coccidiodomicosis diseminada. Se observan esférulas (E) rotas y completas,con endosporas (e) en su interior y libres. Foto cortesía Profa. Leyla Humbria.

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    contagiosa, por lo que los cultivos deben ser manipulados únicamente dentro de

    campanas de bioseguridad clase II.

    Estudio inmunológico:

    Inmunidad celular: Se realiza la IDR utilizando antígenos fúngicos, que en el

    caso de coccidioidomicosis, pueden ser de dos tipos: la coccidioidina, obtenida de

    la fase micelial o saprófita y la esferulina, constituida por la pared de las esférulas.

    Figura : Cultivo micelial (temperatura ambiente) en tubo de Coccidioides posadasii . Se observa una colonia de color blanco, algosonosas. Fotocortesía Profa. Leyla Humbría. 

    Figura 39.  Artroconidias de Coccidioides immitis de uncultivo en forma micelial (preparación con azul deLactofenol). Fragmentación del micelio (M) en esporas(artroconidias) rectangulares. Preparación con Azul deLactofenol, 1200 X. tomado de: Restrepo M., A. Rev. Acad.Colomb. Cienc. 2006; 30 (116):367-386.

    Figura 38: Cultivo micelial (temperatura ambiente) en tubo de Coccidioides immitis o  posadasii . Se observa una colonia de color blanco, algodonosa. Foto cortesia Profa.Leyla Humbría.

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    El antígeno se inyecta en volumen de 0,1 c.c., por vía intradérmica, en la cara

    anterior del antebrazo y la reacción se observa a las 48 horas. Se considera

    positiva si se obtiene una induración igual ó mayor de 5 mm. de diámetro. Debido

    a que los preparados antigénicos contienen antígenos específicos y antígenos

    comunes a otros hongos, se pueden observar reacciones positivas en pacientes

    con histoplasmosis y paracoccidioidomicosis.

    La IDR se utiliza básicamente en estudios epidemiológicos para investigar

    la existencia de infección subclínica en una población y rara vez como orientación

    diagnóstica, ya que una reacción positiva de 5 mm o más significa que la

    respuesta inmunitaria del paciente está intacta y sólo señala exposición al agente.

    Por el contrario, una reacción negativa no necesariamente excluye infección y sepuede observar en pacientes con CDM diseminada, lo que indica un estado de

    anergia de la respuesta inmunitaria celular. La IDR se considera una prueba

    auxiliar en el diagnóstico, pronóstico y valoración del estado inmunitario del

    paciente con CDM. Es positiva 2 a 3 semanas después del inicio de los síntomas y

    puede persistir durante años. En pacientes sintomáticos la positividad a la IDR se

    considera de buen pronóstico; mientras que su negatividad se traduce en una

    inadecuada respuesta celular, anergia y por lo tanto, mal pronóstico.

    Inmunidad humoral: Consiste en la detección de anticuerpos específicos

    contra Coccidioides immitis o posadasii en suero o LCR (en sospecha de

    meningitis). Su presencia confirma el diagnóstico, siempre y cuando los resultados

    obtenidos se correlacionen con los aspectos epidemiológicos, clínicos e

    histopatológicos del paciente.

    La técnica más usada es la IDD, en donde se detectan la formación de

    varias bandas, especialmente la “F” establece el diagnóstico en un 93% de los

    pacientes con formas activas. Una banda específica entre la muestra del paciente

    y el pozo de antígeno para Coccidioides spp.es evidencia presuntiva de

    coccidioidomicosis activa o reciente. Algunos individuos continúan la producción

  • 8/17/2019 Práctica Nro 5 Diagnóstico de Las Micosis Sistemicas

    16/16

     

       P   r    á   c   t   i   c   a   n    ú   m   e   r   o   5  :   D   i   a   g   n    ó

       s   t   i   c   o    d   e    l   a   s   M   i   c   o   s   i   s   S   i   s   t    é   m   i   c   a   s

    82 

    de anticuerpos detectables por periodos significativos (más de 1 año) después de

    la recuperación clínica de la enfermedad activa. Una prueba negativa no excluye

    la enfermedad. Existen reacciones cruzadas con H. capsulatum  y P. brasiliensis,

    pero a títulos menores que los exhibidos con los antígenos homólogos.