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CUIDADOS RELACIONADOS CON
PUNCIÓN VENOSA PERIFÉRICA
OBJETIVOS:
1. Prevención de Infecciones Intrahospitalarias asociadas la
punción venosa (Precauciones estándar).
2. Objetivos de la Punción Venosa Periférica (PVP).
3. Educar y preparar adecuadamente al paciente.
4. Conocer distintos métodos de extracción o punción venosa.
5. Conocer los materiales necesarios para una correcta PVP.
6. Conocer los distintos tubos utilizados en la extracción de
sangre para exámenes de laboratorio.
7. Conocer los cuidados relacionados con una PVP exitosa.
1. Conceptos Básicos: Asepsia y antisepsia.
2. Precauciones estándar.
3. Vías de administración de medicamentos (generalidades).
4. Punción Venosa Periférica:
1.Catéter Venoso Periférico.
1. Sitios anatómicos donde se puede realizar una Punción Venosa Periférica (PVP).
2. Materiales necesarios para realizar una PVP.
3. Pasos para realizar una PVP.
2.Punción Venosa para Extracción de Sangre para Exámenes de Laboratorio.
5. Complicaciones Asociadas a PVP.
Conceptos Básicos: Asepsia Y Antisepsia
•ASEPSIA: Ausencia de toda clase de microorganismos patógenos y de materia séptica. Sin infección. La técnica aséptica consiste en la utilización de materiales estériles (libres de microorganismos patógenos, no patógenos y esporas).
•FINES DE LA ASEPSIA: Evitar la infección iatrógena producida básicamente por el personal sanitario.
•ANTISEPSIA: Conjunto de procedimientos destinados a impedir la colonización o destruir los gérmenes patógenos, en especial por medio de agentes químicos. Técnica antiséptica, utilizamos materiales libres de microorganismos patógenos y no patógenos, pero éstos no están libres de esporas. Se utilizan desinfectantes o antisépticos. Lo que se pretende es prevenir / atacar la infección.
• Infecciones que ocurren durante la permanencia o concurrencia de un paciente al hospital y que no estaban presentes ni se encontraban en su estado de incubación al ingreso.
•Las IIH pueden originarse de fuentes endógenas o exógenas:
• INFECCIONES ENDÓGENAS: Son aquellas causadas por microorganismos que forman parte de la flora del huésped.
• INFECCIONES EXÓGENAS: Son aquellas causadas por microorganismos de fuentes animadas o inanimadas del hospital.
FLUIDOS BIOLÓGICOS: Son todas las secreciones o líquidos biológicos, fisiológicos o patológicos, que se producen en el organismo. (Líquido cefalorraquídeo, líquido sinovial, líquido pleural, líquido peritoneal, líquido pericárdico, líquido amniótico, etc.).
Infecciones Intrahospitalarias (IIH):
LAS PRECAUCIONES ESTÁNDARES SE DEBEN APLICAR A TODOS LOS FLUIDOS DE ALTO RIESGO QUE SON:
•Sangre
•Secreciones genitales (semen, secreciones vaginales)
•Fluidos corporales provenientes de cavidades normalmente estériles
• Cualquier otro fluido secreción o excreción con sangre visible.
Éstas normas dadas por el Ministerio de Salud, deben ser aplicadas por todos los miembros del equipo de salud, en cualquier lugar donde se otorgue algún tipo de atención, es decir en cualquier hospital, clínica particular, consulta médica o dental, laboratorios, hogares de ancianos etc.
Implica a todos los pacientes, independiente de su diagnóstico o patología infecciosa. Como mencionamos en los objetivos, su finalidad es tanto la protección de los pacientes, como de todo el personal que los atiende, logrando una atención eficaz, protegida y de buena calidad.
Las Precauciones Estándares son:
•Lavado clínico de manos
•Uso de guantes
•Equipo de protección personal, lentes, máscaras, pecheras, gorros.
•Manejo de la ropa contaminada
•Manejo del material cortopunzante.
• Intrapleural
• Intraarticular
• Intracavitaria
• Epidural
• Intratecal
• Intracisternal
• Intracardiaca
• Intradérmica
• Subcutánea
• Intramuscular
• Endovenosa
• Intraósea
• Intraarterial
• Intracoronaria
• Intraperitoneal
Vías Parenterales de Administración de Medicamentos.
Vía Intradérmica
Prueba de Mantoux (Tuberculina).
Vía Intradérmica
•Esta vía llega al tejido dérmico; en él hay poco riego
sanguíneo, y la absorción de medicamentos es lenta.
•Es de elección para administración de anestésicos
locales, realización de pruebas diagnósticas (Mantoux),
realización pruebas alérgicas, vacunas, entre otros.
•Una vez inyectado el medicamento se formará una
pequeña “pápula”, que por lo general no sangra al retirar
la aguja.
Vía Subcutánea
•Las inyecciones subcutáneas se aplican en el tejido
conectivo laxo, bajo la dermis.
•La absorción por esta vía es más lenta que vía
intramuscular, debido a que en este tejido hay menor
riego sanguíneo.
Vía Intramuscular
Vía Intramuscular
• La absorción en la vía
intramuscular, se da más
lento que en la
administración endovenosa,
pero más rápido que vía
subcutánea, debido a que la
irrigación sanguínea es
mayor en el tejido
intramuscular.
• El tejido muscular se encuentra bajo el tejido subcutáneo.
Vía Intramuscular•Las zonas donde se pueden administrar los
medicamentos intramuscularmente son:
Zona deltoídea,
Caras anteriores de los muslos,
Zona ventroglútea y
Zona dorso glútea.
•A la hora de elegir el lugar de punción tendremos en
cuenta la edad del paciente y su masa muscular, la
cantidad de medicamento a inyectar, si es una
sustancia más o menos oleosa, etc.
• Zona deltoidea. Está ubicada en la cara externa del deltoides,
a tres traveses de dedo por debajo del acromion. Se debe de
tener en cuenta que el nervio radial pasa cerca de ahí. Admite
hasta 2 ml de volumen. El paciente puede estar prácticamente
en todas las posiciones: sedestación, decúbito supino,
decúbito lateral o bipedestación.
• Cara anterior del muslo. Admite hasta 5 ml de volumen. Con el
paciente en decúbito supino o en sedestación, delimitaremos
una banda imaginaria que vaya, por la cara externa del muslo
elegido, desde el trocánter mayor hasta la rótula. La zona
óptima de inyección está localizada en esta banda, 5 cm por
arriba y 5 cm por debajo de su punto medio. Es la zona de
elección para los niños menores de tres años.
• Zona ventroglútea. Es una de las más seguras, ya que no tiene
cerca ningún punto conflictivo. Con el enfermo en decúbito
lateral o en decúbito supino, colocaremos nuestra mano en la
base del trocánter mayor del fémur del lado elegido. A
continuación abriremos los dedos de la mano y pincharemos en el
espacio que quede entre los dedos índice y medio. Admite hasta 5
ml. de volumen. Junto con la dorsoglútea es la de elección para
los niños mayores de tres años.
• Zona dorsoglútea. Se localiza en el cuadrante superoexterno
de la nalga, pues así es como se evita lesionar el nervio
ciático. Es el lugar que más fármaco admite: hasta 5 ml. El
paciente puede estar en decúbito lateral, en decúbito prono
o en bipedestación (en este último caso, debe de tener
cerca una zona de apoyo por si surge cualquier
complicación). Debe de evitarse su uso en los menores de
tres años.
Vía Endovenosa
• Es una técnica invasiva que permite
disponer de una vía permanente de
acceso al árbol vascular del paciente.
• El objetivo principal es la
Administración de medicamentos,
fluidoterapia y hemoderivados,
extracción de muestras sanguíneas,
mantenimiento de una vía para casos
de emergencia.
Punción Venosa Periférica
•Catéter Venoso Periférico
•Extracción de Sangre para Exámenes de Laboratorio
Catéter Venoso Periférico
• La cateterización venosa periférica es la forma de aplicar tratamiento endovenoso cuando éste no tiene agresividad excesiva ni duración en el tiempo. Consiste en la canalización de una vena con una cánula corta o una “mariposa”.
• El objetivo es administrar terapia intravenosa y aplicar tratamiento con las menores consecuencias iatrogénicas, tanto a nivel nosocomial como hemodinámico.
Zonas Anatómicas de Implantación
•Debe intentarse el abordaje venoso en la zona más distal. En miembros superiores comenzamos por:
•DORSO DE LA MANO: Tiene la ventaja de que daña mínimamente el árbol vascular; pero permite diámetros menores de catéter, limita el movimiento y puede variar el flujo según la posición de la mano.
Las zonas anatómicas de
elección serán las de los
miembros superiores, aunque
se puede requerir el acceso a la
yugular externa, las venas de
la cabeza en neonatos, y las de
los miembros inferiores en los
casos de inaccesibilidad de
otros vasos.
•ANTEBRAZO: Muy cómoda para el
paciente y garantiza un flujo constante;
sin embargo causa un mayor daño al
mapa venoso del miembro superior.
•FLEXURA DEL CODO: Admite mayores
diámetros de catéter y su canalización es
fácil. Presenta el inconveniente de que el
daño que causa al árbol vascular es
importante y, además, puede variar el
flujo según la posición del brazo.
•La canalización de venas de los
miembros inferiores es muy inusual y
desaconsejado por su fragilidad y riesgo
de crear o acentuar problemas de
retorno venoso.
Catéter Venoso Periférico
• Grosor del Material del catéter: al insertar una vía venosa periférica, utilizaremos una mariposa o una cánula o catéter venoso periférico, siendo estos últimos los que más habitualmente se utilizan.
• Al decidir el grosor que vamos a emplear, tendremos en cuenta que a menor grosor, produciremos menos daño en la íntima venosa.
• El material del que están hechos estos catéteres suele ser poliuretano, TEFLÓN, y siliconados. El grosor o calibre estándar oscila entre el 14 G y el 26 G.
• Las agujas están fabricadas e acero inoxidable y su calibre se mide en Gauges (término inglés que significa “Calibre” y se expresa por su inicial, G), cuyo valor es inversamente proporcional al grosor de la aguja.
Catéteres Venosos Periféricos
Mariposas
VVP: Técnica de Punción
1.Preparar el material necesario.
•Antiséptico.
•Jeringa: Se emplean las de 3 ó 5 mL.
•Torniquete (Ligadura)
•Cánula o Mariposa.
•Gasas o algodón.
•Guantes.
•Telas para fijar catéter.
2.Elegir el lugar de inyección.
3.Realizar punción.
VVP: Procedimiento
1. En primer lugar, informaremos al paciente de la necesidad
de canalizarle una vía para aplicarle el tratamiento y le
ayudaremos para adoptar una posición cómoda. Si el
paciente es un niño, evaluaremos la posibilidad de que
esté presente la madre o algún familiar, así como contar
con personal auxiliar para ayudar a la inmovilización del
niño.
2. Lavado clínico de manos, colocación de guantes.
3. Exposición de la zona a puncionar. Administrar anestésico
tópico si es necesario.
4. Elección de la vena y tipo de catéter estará en función de
las características de las venas del paciente y el objetivo
de la cateterización intravenosa.
5. Aplicación de un torniquete. La compresión debe ser suficiente para impedir el retorno venoso pero sin interrumpir la perfusión arterial. Se aplicará unos 10 cm. por sobre el sitio de inserción del catéter.
6. La identificación de la vena se debe hacer por palpación y determinar el trayecto, la movilidad, el diámetro, la fragilidad y la resistencia a la punción.
7. Nunca se debe canalizar venas con signos de flebitis previas.
8. Aplicación de Antiséptico. Dejar actuar al antiséptico.
VVP: Procedimiento
1. Realizar la punción directamente atravesando la piel
por encima del vaso o hacerlo junto al trayecto venoso
y canalizar a éste después.
2. Introducir la aguja de punción a través de la luz
venosa, comprobando el flujo de sangre.
3. El catéter sobre aguja se introducirá deslizando el
catéter sobre la aguja, sin mover ésta, hasta
introducirlo completamente. Se retira el compresor y la
aguja, conectando la cánula del equipo de perfusión.
Punción y Canalización Venosa
4.En caso de notar resistencia a la progresión del catéter,
no debemos forzar su entrada, ya que podríamos provocar
la disección de la vena. Si es necesaria la extracción,
siempre retiraremos SIMULTÁNEAMENTE la aguja y el
catéter, para evitar la posible rotura de éste y su
consiguiente embolización.
5. Tras la conexión con el equipo, conectaremos la
perfusión según indicación, comprobando la
permeabilidad de la vía y la ausencia de tumefacción y
dolor, pues son signos de extravasación.
6.Desecharemos las agujas en contenedores especiales. Es
peligroso volver a encapsular las agujas.
• Fijaremos el catéter manteniendo las condiciones de
asepsia en el punto de entrada y evitando que posibles
tracciones conlleven a la salida del catéter.
• Evitaremos acodamientos en el catéter y en los
sistemas
• Informaremos al paciente de las precauciones que
debe tomar para evitar las desconexiones o salida del
catéter.
Fijación del Catéter
Extracción de Sangre para Exámenes de LaboratorioRECOMENDACIONES GENERALES•Aplicar las normas de bioseguridad
•Lavado de manos y uso de guantes en todos los casos de
manipulación de líquidos corporales.
•Uso de gafas o mascarillas con visera durante la recolección
de muestras con riesgo de salpicaduras.
•No re-enfundar agujas y desecharlas en el recipiente adecuado
o desechar la aguja y la jeringa en un galón destinado para tal
fin, evitando la manipulación.
•Preservar la técnica aséptica en la obtención de muestras
mediante procedimientos invasivos.
•Informar al paciente sobre el procedimiento. Los
procedimientos de recolección de muestras pueden ser
molestos y ocasionar dolor.
Extracción de Sangre para Exámenes de LaboratorioPunción Venosa: es el procedimiento que facilita la recogida de muestras para análisis.
•Para su realización el paciente debe encontrarse sentado confortablemente antes de comenzar la extracción.
•El paciente deberá extender su antebrazo y apoyarlo firmemente.
•En pacientes encamados o con problemas de mareo puede realizarse con el paciente acostado.
•La persona que realice al venopunción debe utilizar guantes
y si se conoce que el paciente tiene una enfermedad
infecciosa conviene tomar precauciones generales: uso
de mascarilla, delantal, gorro (cultivos), etc.
La vena cubital es la que se utiliza
con más frecuencia en la punción
venosa de adultos ya que es grande,
está cercana a la piel y es la menos
dolorosa.
En pacientes con venas difíciles,
maltratadas por haber sufrido
extracciones frecuentes o haber
recibidos tratamientos
intravenosos, obesos o en niños, se
utilizan otras venas de la parte
posterior del brazo, las muñecas, las
manos, el cuello, los tobillos o los
pies.
Toma de muestras para exámenes: tubos de recolección
NO OLVIDAR en Toma de muestras para exámenes•Verificar rigurosamente con la orden médica el nombre del
paciente y los exámenes a tomar.
• Verificar el tipo de tubos a utilizar antes de tomar la
muestra. Las técnicas de análisis varían en cada institución,
por lo tanto, es importante confirmar con el laboratorio el
tipo de tubo, cantidad de muestra y condiciones específicas
de manejo de las muestras.
• Rotular los frascos y tubos con los datos del paciente antes
de tomar la muestra.
• Enviar la muestra al laboratorio en el menor tiempo
posible.
•Llenar los tubos al vacío hasta el nivel marcado; es
imprescindible que estén llenos justo hasta la señal.
Toma de Muestras para Exámenes: Técnica de Punción1.Preparar el material necesario.
•Antiséptico.
•Jeringa: Se emplean las de 5 ó 10 mL.
•Torniquete (Ligadura).
•Aguja o Mariposa. De grosor adecuado (21 a 23 G).
•Sistema “Venojet”
•Tubos de exámenes (adecuados para cada examen).
•Gasas o algodón.
•Guantes.
2.Elegir el lugar de inyección.
3.Realizar punción.
PROCEDIMIENTO
Toma de Muestras para Exámenes: Técnica de Punción
•Seleccionar la vena y aplicar el torniquete a 4 cm por
encima del sitio que se va a puncionar.
•Limpiar la piel con algodón impregnado en solución
antiséptica, sobre el sitio de la punción, en forma circular
del centro a la periferia.
•Puncionar la vena teniendo cuidado en colocar el bisel hacia
arriba; una vez se encuentre seguro de estar en la
vena, introducir el tubo de recolección de muestra y
soltar el torniquete.
•Retirar la aguja y hacer presión sobre el sitio de punción
hasta que deje de salir sangre (aproximadamente cinco
minutos).
•Enviar las muestras al laboratorio.
El sistema de recolección de muestras
con tubos al vacío, consiste en un tubo
de vidrio al vacío con un tapón de
plástico blando, suficiente como para
permitir que lo atraviese una aguja con
un poco de fuerza. Existen varios tipos
de Vacutainer® que se diferencian por el
color de su tapón. Cada color de tapón
indica que ese tubo tiene determinado
aditivo o no.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
•Tubo ROJO sin anticoagulante: utilizado en los análisis de
bioquímica, pruebas de inmunidad y Serología.
•Tubo LILA con EDTA: utilizado para determinaciones de
Hematología.
•Tubo NEGRO con citrato: utilizado para medir la VHS.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
•Tubo CELESTE con Citrato trisódico: utilizado para pruebas
de caogulación.
•Tubo VERDE con heparina sódica: es utilizado para pruebas
de bioquímica de urgencia.
•Tubo GRIS con oxalato de potasio: utilizado para Glicemia
•Tubo AMARILLO con GEL ACTIVADOR: Es utilizado para
determinaciones de suero en la química.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
• Flebitis: inflamación de la vena utilizada, caracterizada por la presencia de la tétrada inflamatoria: rubor (eritema), tumor (edema), calor y dolor.
• Hematoma: extravasación de sanguínea en el sitio de punción que aparece durante o después de la colocación del catéter. Debida a la perforación de la vena.
• Infiltración: extravasación al tejido celular subcutáneo, de la sustancia instilada a través del catéter.
• Trombosis: es la oclusión total o parcial de un vaso sanguíneo por un coagulo de sangre.
• Celulitis: es la inflamación aguda del tejido conectivo de la piel que resulta de una infección generalmente por estafilococos, estreptococos u otras infecciones bacterianas.
Complicaciones asociadas a Punción Venosa
1. Artieda MC, Jiménez M. Técnicas de venopunción. En: Arribas JM, Caballero F. Manual de Cirugía Menor y otros Procedimientos en la Consulta del Médico de Familia. Madrid: Merck Sharp & Dohme; 1993.
2. Esteve J, Mitjans J. Enfermería. Técnicas clínicas. Madrid: McGraww-Hill Interamericana; 2002.
3. Perry A, Potter PA. Guía clínica de enfermería. Técnicas y procedimientos básicos. 4ª ed. Madrid: Harcourt Brace; 1998.
4. Botella M, Hernández OM, López ML. Rodríguez A. Cuidados auxiliares de enfermería. Técnicas básicas de enfermería. Administración de medicamentos. Santa Cruz de Tenerife:Gobierno de Canarias, Consejería de Educación, Cultura y Deportes; 2002; p.435-60.
BIBLIOGRAFÍA