manual necropsia del cerdo

La necropsia enel ganado porcinodiagnóstico anatomopatológicoy toma de muestras

Joaquim SegalésMariano Domingo

La necropsia en el ganado porcinodiagnóstico anatomopatológicoy toma de muestras

Dr. Joaquim Segalés

Profesor Titular de Universidad en la Unidad Docente de Histología

y Anatomía Patológica.

Diplomado por el Colegio Europeo en Patología Veterinaria (ECVP)

[email protected]

Dr. Mariano Domingo

Catedrático de Universidad en la Unidad Docente de Histología

y Anatomía Patológica.

Diplomado por el Colegio Europeo en Patología Veterinaria (ECVP)

[email protected]

Centre de Recerca en Sanitat Animal (CReSA) Departament de Sanitat i d’Anatomia Animals,Facultat de Veterinària, Universitat Autònoma de Barcelona,08193 Bellaterra - Barcelona.

Reservados todos los derechos.No puede reproducirse, almacenarse en unsistema de recuperación o transmitirse enforma alguna por medio de cualquier pro-cedimiento, sea éste mecánico, electrónico,de fotocopia, grabación o cualquier otro sinel previo permiso escrito del editor.

© 2003 Boehringer Ingelheim España, S.A.www.boehringer-ingelheim.es/veterinaria

Depósito legal: B-3696-04ISBN: 84-688-5260-0

Diseño: Servet, Diseño y Comunicación S.L.

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La necropsia en el ganado porcino, diagnóstico anatomopatológico y toma de muestras

Índice

Introducción

Agradecimientos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .7

Prólogo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .8

Prefacio . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .9

Técnica de necropsia en el cerdoPreparación y examen externo del cadáver . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .14

Apertura del cadáver . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .20

Estudio de los órganos de la cavidad abdominal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .24

Estudio de los órganos de la cavidad torácica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .30

Estudio de la cabeza . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .36

Estudio de los nódulos linfáticos y médula ósea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .40

Estudio del aparato locomotor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .42

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Indice

Evaluación macroscópicade las víscerasPiel . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .46

Tejido subcutáneo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .52

Aparato respiratorio . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .54

Aparato digestivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .64

Hígado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .80

Sistema cardiovascular . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .84

Sistema linfático (nódulos linfáticos, tonsilas, timo y bazo) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .90

Sistema nervioso . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .96

Aparato génito-urinario . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .100

Aparato locomotor . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .112

Fijación de las muestras . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .118

Características de las muestras a tomar . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .120

Envío de las muestras al laboratorio . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .122

Diagnóstico histopatológico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .123

Toma de muestras para el estudio histopatológico y consideraciones prácticas

Bibliografía recomendada . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .124

Índice alfabético . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .125

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Agradecimientos

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AgradecimientosLa mayoría de las imágenes utilizadas en el presente libro corresponden a la colección de dia-

positivas e imágenes digitales de la Unidad Docente de Histología y Anatomía Patológica de la

Facultad de Veterinaria de la Universidad Autónoma de Barcelona. Nuestro agradecimiento a

una difícil labor de colección realizada en los últimos 20 años.

Nuestro más sincero agradecimiento a otras instituciones y otros profesionales que, desinte-

resadamente, han prestado algunas imágenes para poder ilustrar lesiones cuya inclusión creí-

mos importante:

• Departamento de Patología Veterinaria de la Justus-Liebig Universität de Giessen (Alemania)

• Dr. Edward G. Clark, Prairie Diagnostic Service, Saskatoon (Canadá)

• Dr. José A. Ramos-Vara,Animal Disease Diagnostic Laboratory, Purdue UniversityIndiana (Estados Unidos)

• Dr. Humberto Ramírez, Departamento de Virología de la Escuela Veterinaria de la Universidad Nacional Autónoma de México, México D.F. (México)

• Dr. Juan Gutiérrez, Unidad Docente de Parasitología y Enfermedades Parasitarias de la Facultad de Veterinaria de la Universidad Autónoma de Barcelona

Finalmente, nuestro profundo agradecimiento al licenciado en Veterinaria Sergio López (Cen-

tre de Recerca en Sanitat Animal, Facultat de Veterinaria, Universitat Autònoma de Barcelona)

por su inestimable ayuda en la selección y digitalización de diapositivas.

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Prólogo

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PrefacioEl objetivo de la presente obra es acercar, tanto al estudiante como al veterinario especialista

en cerdos una metodología básica en el marco de los estudios diagnósticos, como es la necrop-

sia. Hemos intentado ilustrar detalladamente las distintas acciones que se deben realizar duran-

te la necropsia en combinación con una explicación teórica de la misma.

Asimismo, creemos que, conjuntamente con la necropsia, un punto de vital importancia es la

interpretación y categorización de las lesiones que se observan en los distintos órganos y sis-

temas. La correcta interpretación de aquello que vemos nos permite orientar, confirmar o des-

cartar el diagnóstico clínico previamente establecido.Definitivamente, las imágenes han sido, son

y serán un componente básico en la formación en anatomía patológica y, por tanto, del veteri-

nario entre cuyas tareas se encuentre la realización de necropsias.

Finalmente, y para cerrar el protocolo diagnóstico en relación a la necropsia, se aportan unas

breves reseñas prácticas en cuanto a la toma de muestras para posteriores estudios histo-

patológicos.

Definitivamente ¡una imagen vale más que mil palabras! Esperamos que la presente obra os sea

de utilidad para vuestro trabajo.

Los autoresBellaterra (Barcelona), Octubre de 2003

PrólogoLa necropsia es una herramienta diagnóstica de gran valor para el control de muchas enfer-

medades por parte de los profesionales veterinarios.

Sin embargo, apenas existen en veterinaria especialistas en necropsias tal y como ocurre en

medicina humana, lo que hace que en muchas ocasiones esta técnica se realice de forma pre-

cipitada y sin método, desaprovechando el valor diagnóstico de este procedimiento.

Desde Boehringer Ingelheim, cumpliendo con nuestro compromiso de ofrecer soluciones con-

cretas a problemas específicos, esperamos que este Manual le resulte útil para la realización de

necropsias sistemáticas, completas y rápidas en su trabajo diario.

Nuestro más sincero agradecimiento a los Autores de esta obra.

María LasagabasterDepartamento de Marketing

Boehringer Ingelheim España S.A.

Introducción

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El objetivo de esta obra es presentar losprocedimientos básicos para proceder a larealización de la necropsia y su interpreta-ción en el cerdo.

En todos los casos, cuando se realiza unanecropsia se intentará responder a la pre-gunta de cuál ha sido la causa de muerte enel animal. Obviamente, eso supone plantearuna serie de objetivos:

• Sistema de autocontrol del clínico; lanecropsia permite conocer, en algunoscasos, si el diagnóstico clínico es el correcto.

• En la práctica diaria, conocer la causa demuerte de un animal permite establecermedidas terapéuticas o preventivas para elcolectivo del cual procede. Igualmente, lanecropsia puede ser una medida útil de con-

trol para evaluar los diferentes tratamientosestablecidos en el colectivo.

• La necropsia permite avanzar en elconocimiento de la enfermedad, en rela-ción a la patogenia de las lesiones produci-das, y su asociación con agentes etiológicosconcretos.

• En estudios jurídicos y peritajes, la necrop-sia es un elemento importante en la realiza-ción de un dictamen final por parte de losestamentos jurídicos.

En el caso de la medicina humana, la reali-zación de necropsias está restringida a losmédicos especializados (médicos anato-mopatólogos forenses), mientras que enmedicina veterinaria es habitual que losprofesionales, especialmente los dedicados

Introduccióna especies de producción, realicen lasnecropsias de modo frecuente. De aquí elinterés en unificar criterios de valor en eldiagnóstico anatomopatológico y de pro-gresar en el conocimiento de enfermeda-des a través de las lesiones macroscópicasque se puedan observar.

Ha de tenerse en cuenta que la realizaciónde una necropsia aporta una serie de datosmacroscópicos que nos orientan sobre laenfermedad que padecía el animal, y nospermite establecer un diagnóstico diferencialcon las enfermedades que cursan con lesio-nes concretas. En la mayoría de los casosestos datos no permiten establecer un diag-nóstico etiológico y aún menos asegurar laeficacia de la instauración de un determina-do tratamiento en el resto del rebaño.

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Técnica de necropsia en el cerdoLa necropsia en el ganado porcino, diagnóstico anatomopatológico y toma de muestras

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La realización de una necropsia no suponegrandes complicaciones en general; detodas las maneras, si se quieren establecerconclusiones válidas, se necesita procederen un determinado orden y de acuerdocon un método.

De hecho, existen diferentes procedimien-tos para hacer una necropsia, aunque todoscompartan factores comunes;

• Necropsia sistemática; hace falta utilizar unsistema, y aplicarlo de la misma manera entodos los casos.

• Necropsia ordenada; es necesario seguirun orden en su realización.

• Necropsia completa; hay que evitar dejarpartes u órganos del animal sin examinar.Probablemente esta es la parte que, concierta frecuencia, no se realiza adecuada-mente, existiendo una gran tendencia a larealización de “necropsias parciales”.

En términos generales, la búsqueda de lesio-nes de manera preconcebida es perjudicialcuando se trata de valorar los resultados deuna necropsia; habitualmente el prosector seprecipita en la realización de la necropsia,extrayendo inicialmente los órganos quecree que han de estar afectados, prescin-diendo del resto.

Técnica de necropsiaen el cerdo

El esquema general de una necropsia tieneque incluir los siguientes pasos:

1. Preparación y examen externo del cadáver.

2. Apertura del cadáver.

3. Estudio de los órganos de la cavidad abdominal.

4. Estudio de los órganos de la cavidad torácica.

5. Estudio de la cabeza.

6. Estudio de los nódulos linfáticos y de la médula ósea.

7. Estudio del aparato locomotor (huesos, articulaciones y músculos).

A continuación se describe con detalle latécnica de necropsia en el cerdo.

Fig. 3

Sangrado del animal con el objeto de que la sangre no interfiera en la interpretación lesional.

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La necropsia en el ganado porcino, diagnóstico anatomopatológico y toma de muestras Técnica de necropsia en el cerdo

Preparación y examenexterno del cadáver

Fig. 1

Fig. 2

Inicialmente es necesario constatar el gradoy extensión de los cambios cadavéricos, loscuales nos darán una información aproxima-da del tiempo transcurrido desde la muertedel animal y, sobre todo, del estado de des-composición del cadáver. Los cadáveres enestado avanzado de autoslisis –Fig. 1– nosuelen ofrecer mucha información y puedeninducir a confusión cuando se tenga queestablecer el diagnóstico macroscópico(resulta difícil determinar si se trata de cam-bios debidos a la enfermedad o bien al pro-ceso de autolisis). La muestra consideradaideal es el cerdo vivo, en el cual podemosobservar la sintomatología clínica que pre-senta (da una idea de si se trata de un ani-mal representativo del problema de la gran-ja o no). Además, es posible extraer sangrepara determinar algún parámetro sérico osanguíneo –Fig. 2–. Para la necropsia, se pro-cedería a la eutanasia y al sangrado inmedia-to del animal –Fig. 3–.

Según las directivas 93/119/CEE y86/609/CEE, tanto los animales de abastocomo los utilizados para experimentación uotros fines científicos deben ser sacrificadosutilizando un método que no cause dolor nisufrimiento. El método de eutanasia reco-mendado para cerdos es la administraciónde una sobredosis de pentobarbital sódico(80 mg/kg) por vía parenteral (intravenosa ointraperitoneal). Los cerdos sacrificados poreste sistema no se deben destinar al consu-mo bajo ningún concepto.

Estado avanzado de autolisis (manchas de color verde oscuro en abdomen) en un lechón recién nacido.

Extracción de sangre de la Vena Cava Anterior en un cerdo de transición.

Fig. 6

El examen externo del cadáver permite valorar el estado de carnes del animal y la existencia de lesiones cutáneas.

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Teniendo lo anterior en cuenta, están espe-cialmente desaconsejados los siguientesmétodos de sacrificio:

• Administración de succinilcolina (Anecti-ne®) o bloqueantes musculares.

• Desangrado en vivo (el desangradopuede resultar aceptable si el animal ha sidopreviamente aturdido).

• Traumatismo craneal.

Los cambios post-mortem nos pueden daruna idea de cuánto tiempo lleva muerto unanimal. De entre los cambios post-mortemque es preciso observar destacan:

• Rigidez cadavérica (rigor mortis).

• Temperatura del cadáver.

• Opacidad corneal y pérdida de la turgen-cia ocular –Fig. 4–.

• Presencia y magnitud de los signos dedescomposición (manchas abdominales ver-des) –Fig. 5–.

A continuación se realiza un examen exter-no completo (piel, pelo, nódulos linfáticossuperficiales) desde el cráneo hasta la regióncaudal –Fig. 6–.

Fig. 4

Fig. 5

Córnea lisa y transparente característica de un animal que ha muerto recientemente.

Coloración verdosa abdominal característica de un animal autolítico.

Para cerdos de engorde y adultos, es prefe-rible la posición en decúbito lateral; en estecaso, se apoya el animal sobre el lado dere-cho y se eliminan las extremidades posteriory anterior del lado izquierdo –Figs. 9 y 10–.

Fig. 9

Fig. 10

Eliminación de las extremidades anterior y posterior izquierdas del animal.

Extremidades anterior y posterior izquierdas cortadas durante una necropsia con el animal en decúbito lateral.

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La colocación del animal puede variar. Gene-ralmente se utiliza la posición en decúbitosupino para animales jóvenes (lactantes o detransición). En esta posición, al realizar cortesen la región axilar y en la articulación coxo-femoral las extremidades reposarán directa-mente sobre la mesa o el suelo –Figs. 7A y7B–, mantieniéndose el cadáver estable enesta posición –Fig. 8–.

Fig. 7

A

B

Fig. 8

Zonas de corte de las extremidades anteriores (A) y posteriores (B) para iniciar la necropsia con el animal en decúbito supino.

Extremidades ya cortadas y abiertas para estabilizar el apoyo del animal sobre una superficie plana.

Fig. 12 Fig. 13

Corte de la zona cartilaginosa de las costillas dejando al descubierto toda la caja torácica y parte de la cavidad abdominal. Finalización del mismo corte, llegando hasta la región delpubis y dejando al descubierto toda lacavidad abdominal.

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La apertura de las cavidades dependerádirectamente de la posición en la cual serealice la necropsia.

En animales en decúbito supino, inicialmentese realizan dos cortes sobre la piel y el teji-do subcutáneo en forma de triángulosiguiendo la proyección de la mandíbula–Figs. 11A y 11B–. Posteriormente, se reali-za una incisión hasta la entrada del tórax,donde con el mismo instrumento de corte,se secciona la zona cartilaginosa de las cos-tillas dejando al descubierto toda la cajatorácica –Fig. 12–. Siguiendo el corte, tam-bién se procede a la apertura de la cavidadabdominal hasta el pubis –Fig. 13–.

Apertura del cadáver

Fig. 11

Marca (A) y corte (B) de la piel que cubre la mandíbula en caso de una necropsia del animal en decúbito supino.

A

B

Fig. 17 Fig. 18

Fig. 16

Apertura de la cavidad torácica en un cerdo al que se está realizando la necropsia en decúbitolateral. Corte por la unión costocondral.

Finalmente se corta desde el pubis en dirección a las vértebras lumbosacras.

Apertura total de la cavidad torácica doblando el costillar utilizando como punto de apoyo launión costovertebral.

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En animales en decúbito lateral, inicialmentese realiza un corte en la línea alba desde elcartílago xifoides del esternón hasta la sínfi-sis isquio-pubiana –Fig. 14–. Posteriormentese hace un corte desde la misma punta cau-dal del esternón siguiendo la curva dibujadapor la última costilla y en dirección a las vértebras torácicas –Fig. 15–. Finalmente,desde el pubis también se realiza un corteen dirección a las vértebras lumbosacras–Fig. 16–.

Para la apertura de la cavidad torácica se cor-tan las costillas en el punto de unión costo-esternal, que es cartilaginosa –Fig. 17–, y sehace una incisión a la altura de la articulaciónde las vértebras torácicas con las costillas.Deesta manera podemos doblar todo el costi-llar utilizando como punto de apoyo la unióncostovertebral –Fig.18–.En la mayoría de loscasos, la previa separación de la piel del cos-tado por el cual estamos accediendo facilitala apertura de la cavidad torácica.

Fig. 14

Fig. 15

Apertura de la cavidad abdominal durante la necropsia de un cerdo en posición de decúbito lateral. Corte de la línea alba.

A continuación se corta por la línea dibujada por la última costilla.

En la práctica, por el tiempo que requiere,no suelen realizarse estas ligaduras. Sinembargo, en caso de que interese efectuaraislamiento microbiológico del intestino esinteresante hacerlas (evitamos contamina-ción de los órganos con contenido intestinaly mantenemos las heces en un comparti-mento cerrado). La extracción de las asasintestinales se suele realizar cortando prime-ro el mesenterio y estirando de las asasmientras se continúa cortando el mesente-rio –Fig. 23–. De esta manera, vamos extra-yendo el intestino y separándolo asa por asa.Una vez hecha esta operación, se cortan laspuntas de las ligaduras antes mencionadas.Para apreciar cualquier tipo de alteraciónintestinal es imprescindible la apertura delintestino (no es suficiente con la observa-ción de la serosa sola), al menos de una por-ción representativa de cada tramo. Es nece-sario valorar el contenido de cada tramo:color, olor, consistencia, presencia de gas,espesor de la pared, etc. –Fig. 24–.

Fig. 23

Fig. 24

Separación de las asas intestinales cortando el mesenterio y estirando de las mismas.

Apertura de distintas asas intestinales para la valoración del color, consistencia y cantidad de contenido intestinal.

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Inicialmente se procede a la extracción delepiplón conjuntamente con el bazo –Fig.19–.Con la finalidad de extraer correctamente elintestino es conveniente hacer ligadurasdobles en tres puntos (se realiza el corteentre los dos nudos):

Estudio de los órganosde la cavidad abdominal

• A nivel del ligamento duodenocólico(punto de terminación de la cola del pán-creas) –Fig. 20–.

• A nivel del íleon en su desembocadura enel ciego –Fig. 21–.

• A nivel del recto –Fig. 22–.

Fig. 19 Fig. 20

Fig. 21 Fig. 22

Extracción del epiplón conjuntamente con el bazo.

Ligadura doble al final del íleon, justo antes de su desembocadura en el ciego. Ligadura doble en el recto, antes de su entrada en la cavidad pélvica.

Ligadura doble a la altura del ligamento duodenocólico (aproximadamente 10 cm desde el píloro).

La vesícula biliar se abre longitudinalmente ytambién se realiza una incisión en su pared(se valora la presencia de edema) –Fig. 29–.

Antes de extraer el aparato urogenital se hande extraer las glándulas adrenales (alargadas,de color marrón y adheridas a la parte medialdel polo craneal de los riñones) –Fig. 30–.

Fig. 29 Fig. 30

Apertura longitudinal de la vesícula biliar. Situación de las glándulas adrenales, con forma alargada y color marrón, en el polo medial de losriñones (flechas).

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A continuación, se realiza una ligadura a niveldel cardias –Fig. 25– y se extraen el hígado,el estómago y duodeno (después de seccio-nar el esófago, la vena cava y la arteria aortaa la altura del diafragma) –Fig. 26–. Se abreel duodeno y se comprueba que no existeobstrucción del conducto colédoco efec-

tuando presión sobre la vesícula biliar (la bilistiene que fluir y salir hacia el duodeno) –Fig.27–. Posteriormente se separan el estóma-go (que se abre desde el píloro por la cur-vatura mayor, valorando la presencia deúlceras y edema en la pared) –Fig. 28– y elduodeno, del hígado.

Fig. 25 Fig. 26

Fig. 27 Fig. 28

Ligadura simple a la altura del cardias.

Apertura del duodeno y presión sobre la vesícula biliar para comprobar la salida de bilis por la desembocadura del conducto colédoco (flecha).

Hígado, estómago y parte del duodeno una vez ya extraídos.

Apertura del estómago cortando por la curvatura mayor; en la zona central debe aparecer la pars esofágica (círculo).

Fig. 34 Fig. 35

Fig. 36 Fig. 37

Decapsulación del riñón.

Sección del testículo en dos mitades realizando un corte sagital. Apertura longitudinal de vagina, cuello uterino y cuernos uterinos.

Apertura longitudinal de la vejiga urinaria.

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Se separan los riñones lateralmente de lagrasa perirrenal, seccionando la vena y laarteria renal. Se retira el riñón hacia la pel-vis unido al uréter correspondiente –Fig.31–. Se extraen los riñones conjuntamen-te con la vejiga de la orina y el aparatogenital –Fig. 32– (en algunos casos puede

ser necesario retirar la parte ventral de lapelvis). Se debe proceder a la aperturalongitudinal de los riñones, por el bordemedial, hasta el hilio –Fig. 33–. Se separa lacápsula conjuntiva de los riñones (decap-sulación) –Fig. 34– y se abren los uréteresdesde la pelvis renal. Se abre la vejiga de la

orina longitudinalmente continuando elcorte a lo largo de la uretra –Fig. 35–.En el macho es necesario seccionar sagital-mente los testículos –Fig. 36– y valorar lapróstata y glándulas accesorias, y en la hem-bra se debe abrir la vagina, útero y realizar uncorte sagital en los ovarios –Fig. 37–.

Fig. 31

Fig. 32

Fig. 33

Conjunto formado por los riñones, vejiga urinaria y aparato genital extraídos conjuntamente.

Riñón abierto en dos mitades después de ser cortado sagitalmente.Separación de los riñones y uréteres en dirección caudal.

Fig. 40 Fig. 41

Fig. 42

Corte de la vena cava caudal y de la arteria aorta para la extracción del aparato respiratorio y del corazón. Apertura del pericardio parietal con el objeto de valorar el color, cantidad y viscosidad del líquido pericárdico.

Corazón abierto mostrando las paredes ventriculares derecha e izquierda y el tabique interventricular.

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Estudio de los órganosde la cavidad torácica

Inicialmente se separa la lengua de la mandí-bula y se corta en el punto más craneal delas tonsilas palatinas –Fig. 38–. Una vez cor-tado el hueso hioides de cada lado, se sepa-ran de la musculatura de la base de la lengua,la laringe, la tráquea y el esófago hasta laentrada del tórax –Fig. 39–. Entonces, ayuda-dos por una ligera tracción se extraen con-juntamente pulmones y corazón, con la por-ción torácica de la arteria aorta, la cual sesecciona –Fig. 40–.

El corazón no se debe de separar de lospulmones. Se abre el pericardio teniendoen cuenta la presencia de líquidos anorma-les o adherencias de las hojas pericárdicas–Fig. 41–. Si se pretende realizar un estudiomicrobiológico del líquido pericárdico esadecuado extraer éste con una jeringaantes de incidir en la hoja pericárdica exter-na. La apertura del corazón se realizasiguiendo la dirección del flujo de la sangre–Fig. 42–, es decir :

• CORAZÓN DERECHO. Entrada porla vena cava caudal aurícula derecha

válvula atrioventricular derecha (tricús-pide) ventrículo derecho salida porla arteria pulmonar.

• CORAZÓN IZQUIERDO. Entradapor la vena pulmonar aurícula derecha

válvula atrioventricular izquierda (mitral)ventrículo izquierdo salida por la ar-

teria aorta.

La apertura de los ventrículos cardiacos siem-pre se realiza haciendo el corte siguiendo lalínea marcada por el tabique interventricular.

Fig. 38

Fig. 39

Corte craneal del paladar blando (flecha) a la altura de las tonsilas (asterisco).

Separación de la musculatura de la base de la lengua, laringe, tráquea y el esófago hasta la entrada del tórax.

❋

Fig. 45

Fig. 46

Entrada de la glotis una vez cortado el anillo faríngeo que,a la vez, pone al descubierto las tonsilas (flechas).

Apertura de laringe y tráquea (A) y de los bronquios (B).

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El esófago se separa de la tráquea y de lospulmones dejándolo sujeto a la laringe úni-camente por su porción más craneal –Fig.43–. Se abre longitudinalmente –Fig. 44–.

Posteriormente se ponen al descubierto lastonsilas cortando el anillo faríngeo –Fig. 45–y se abre la laringe, tráquea y bronquiosprincipales a lo largo de su eje longitudinal–Figs. 46A y 46B–.

Fig. 43

Fig. 44

El esófago se separa de la tráquea dejándolo sujeto únicamente por su posición más craneal a la laringe.

Apertura longitudinal del esófago.

A

B

Fig. 48

Los nódulos linfáticos cervicales craneales, medios y caudales se observan como una cadena en el arco mandibular hacia la escápula.

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Es necesario examinar la glándula tiroides–Fig.47–, la glándula paratiroides y los nódu-los linfáticos cervicales craneales (submandi-bular), medios (retrofaríngeos) y caudales(preescapulares) –Fig. 48–.

En el pulmón se examina sobre todo el color(a pesar de que su valor diagnóstico puedeser muy bajo, especialmente en animales quehan sido encontrados muertos), textura, pre-sencia de edema, de zonas consolidadas, dis-tribución de estas zonas consolidadas, test deflotación –Fig. 49–, etc.

Fig. 47

Fig. 49

Glándula tiroides, situada en la zona craneal de la tráquea (flechas).

Test de flotación del pulmón en un líquido acuoso. El pulmón normal debe flotar.

Fig. 51 Fig. 52

Fig. 53

Líneas de corte en los huesos craneanos para la apertura de la cavidad craneal.

Misma foto anterior una vez se ha eliminado la duramadre.

Cortes marcados anteriormente ya realizados. Nótese la presencia de la duramadre cubriendo elencéfalo.

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Estudio de la cabeza

Es necesario separar la cabeza del cadávermediante una incisión ventral en la articula-ción atlantooccipital –Fig. 50–. Se aparta lamusculatura de los temporales y se procedea la apertura de la caja craneana: se hace uncorte coronal sobre el techo del cráneo, a laaltura del ángulo lateral del ojo, y dos corteslaterales por encima de los cóndilos deloccipital y dirigidos hacia los extremos delcorte coronal –Fig. 51–. Una vez realizadosestos cortes, ya se puede levantar la tapa delcráneo –Fig. 52– y se separa la duramadre(paquimeninge) –Fig. 53–.

Fig. 50

Apertura de la articulación atlantooccipital con el objeto de separar la cabeza del cuerpo.

Fig. 56

Fig. 57

Punto de corte para la valoración de los cornetes nasales. El nivel al que se encuentra el primer premolar suele coincidir con la comisura labial.

Corte ya realizado donde se observan los cornetes nasales.

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Se coloca la cabeza en posición invertida y secortan los pares craneales –Fig. 54–. El encé-falo se fija entero –Fig. 55–.

Una vez extraído el encéfalo, se procede ahacer un corte transversal de la región nasala la altura del primer premolar –Fig. 56–. Elobjetivo de este corte es hacer un estudiode los cornetes nasales –Fig. 57– para valo-rar la existencia de lesiones (en especial de

Fig. 54 Fig. 55

Observación de los pares craneales (flecha) que deben cortarse previamente a la extracción del encéfalo.

Encéfalo entero una vez extraído de la cavidad craneana.

atrofia de cornetes). El corte anterior o pos-terior a esta posición suele ocasionar gravesproblemas de interpretación de lesiones.

También es posible hacer primero el corte afin de apreciar los cornetes nasales y poste-riormente realizar un corte sagital del crá-neo, de manera que se obtiene el cerebrodividido en dos mitades.

Fig. 59

Fémur fracturado con el objeto de estudiar la médula ósea.

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Estudio de los nódulos linfáticos y la médula ósea

Se debe comprobar el estado de los nódu-los linfáticos de las diferentes localizaciones–Fig. 58–. Habitualmente se realiza un cortea lo largo del eje longitudinal con el objetode valorar el parénquima linfático.

Para el estudio de la médula ósea se extraeun hueso largo (normalmente el fémur) ycolocándolo contra el borde de una mesa ouna piedra, se golpea el hueso con el cantoromo del cuchillo, fracturando el hueso dia-gonalmente –Fig. 59–.

Fig. 58

Nódulos linfáticos inguinales superficiales. Es importante la valoración del tamaño, color y consistencia de los mismos.

Fig. 62 Fig. 63

Sección de la musculatura estriada, en este caso corresponde al músculo psoas mayor. Disección de la musculatura de la extremidad posterior con el objeto de poner al descubierto

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Estudio delaparato locomotor

Con tal de comprobar el estado de minera-lización de los huesos, se rompe una costilla,una vez seccionados los músculos intercosta-les a ambos lados de su inserción –Fig. 60–.

Se abren todas las articulaciones de lasextremidades –Fig. 61–, teniendo en cuentala presencia de contenidos anormales.Tam-bién es necesario seccionar longitudinal-mente diferentes músculos esqueléticos–Fig.62–. En casos de cojeras unilaterales deextremidades es importante valorar el esta-do del nervio ciático –Fig. 63–.

Fig. 60

Fig. 61

La rotura de una costilla permite valorar el grado de mineralización general del esqueleto.

Apertura de la articulación femorotibiorrotuliana con un solo corte.

manual necropsia del cerdo

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