docencia practica maestria fisiologia

Dosificacion de Hemoglobina:Metodo: Cianometahemoglobina

Fundamento:

LA HEMOGLOBINA Y SUS DERIVADOS DE LA SULFOHEMOGLOBINA

, POR ACCION DEL FERRICIANURO POTASIO(K3F6(CN)6 ) SE OXIDAN Y CONVIERTEN

EN HEMIGLOBINA (Hi) METAHEMOGLOBINA, LA QUE EN

CONTACTO CON EL CIANURO DE POTASIO(KCN), SE TRANSFORMA EN CIANURO DE HEMIGLOBINA

Dosificacion de Hemoglogina

• Metodo: Cianometahemoglobina o Cianuro de Hemiglobina.

• Muestra: Sangre Venosa con EDTA O Sangre Capilar.

• Materiales:- Gradilla - Micropipetas de 20 labmda tipo Shali

Dosificacion de Hemoglobina

• Materiales:- Portapipeteadores- Pipeta de 5 mls.- Tubos de ensayos: 12x75 mm- Pipeta tipo Shali

• Reactivos:- Solucion de Drabkin o diluyente de

cianometahemoglobina- Patrones Comerciales


• Procedimiento:- Enceder el Espectrofometro - Marcar tres tubo: M , B , S- Servir en cada tubo 5ml de

cianometahemoglobina- Al tubo marcado M servir 20 microlitros de

sangre, mezclar y tapar con paper parafinado- Al marcado S, servir 20 microlitros del estandar,

mezclar y tapar- Dejar en reposo por tres minutos

Dosificacion de hemoglobina

• Procedimiento:- Transferir a una cuveta del Fotometro- Leer en absobancia (A) a 540 NM usando como

comparacion el blanco de reactivo(B).- Determinar los g/dl de Hb. de la muestra.- Hb.(g/dl) = Abs.M/ Abs.STDx conc. Del STD.

Intervalo de referencia: Hombre 16 + o’ – 2 g/dl 9,8 + o’ – 1,2mmol/l


• Mujer: 14 + o’ – 2 g/dl

SISTEMA INTERCIONAL(SI): 8,7 +o’ – 1,2mmol/l

Factor de Conversion: 0,62006

Aplicacion Clinica: Anemia y Policitemia

DETERMINACION DE HEMATOCRITO:METODO: MANUAL

• FUNDAMENTO:- CONSISTE EN CENTRIGUGAR UNA MUESTRA

DE SANGRE ANTICOAGULADA POR UN TIEMPO DETERMINADO Y REPORTAR EL RESULTADO EN % O’ L/L.

• Metodo Manual: Clay Adams o Wintrobe• Metodo: Automatizado( en analizador

automatizado).

Determinacion de Hematocrito

• Metodo: Clay Adams• Muestra: Capilar o venosa con EDTA.• Materiales: - Tubos Capilares con o’ sin anticoagulante- Platilina o Masilla- Lancetas esteril o’ Jeringuilla- Tubos de ensayo de 13x100 mm-Algodon o’ gasa

Determinacion de Hematocrito

• Procedimiento:- Extraer la muestra de sangre por la via

seleccionada- Llenar el tubo capilar hasta la marca de

calibracion- Sellar el tubo por el extremo opuesto a la

marca de calibracion, con la masilla.- Llevarlo a la microcentrifuga por 5min. a 8000

RPM

Determinacion del Hematocrito

• Efectuar la lectura directamente en la escala de la centrifuga.

• Intervalo de Referencia:- Hombre: 47 + o’ – 5% SI 0,47 + o’ – 0,05L/L- Mujer: 42 + o’ – 5% 0,42 + o’ – 0,05L/L- 1 ANO 35% 0,35%L/L- 10 ANOS 37.5% 0,375%L/L- Factor de Conversion: 10-2- Aplicacion Clinica: Anemia y Policitemia

RECUENTO DE ERITROCITOS:METODO: MANUAL

• FUNDAMENTO:- CONSISTE EN DETERMINAR EL NUMERO DE

ERITROCITOS POR MM3 DE SANGRE O’ 1012/l

• MUETRA: SANGRE CAPILAR O VENOSA CON EDTA• MATERIALES: - HEMATIMETRO- CONTADOR DE GLOBULOS

- REACTIVOS: Solucion Salina 0.9%

RECUENTO DE ERITROCITOS

- AGITADOR DE PIPETA- PIPETEADOR O BOQUILLA- TUBOS DE ENSAYO 12 X 75 MM- JERINGUILLAS DE 3ML CON AGUJA NO. 21 X ½- TORNIQUETE- ALGODON O GAZA ESTERIL


• PROCEDIMIENTO:-Extraer la muestra de sangre por la via indicada- Ajuste la boquilla al torniquete en la parte

superior- Introducir la pipeta en posicion vertical al fondo

del del tubo que contiene la muestra y aspirar hasta la marca 0.5

- Retire la pipeta en posicion horinzontal y limpie la parte externa y enrrasar en la marca 0.5


- Introducir en forma vertical la pipeta el frasco del reactivo y aspirar hasta la marca 101

- Colocarla en posicion horinzontal y retirar el torniquete

- Llevar la pipeta al agitador de 1 – 3 min.- Limpiar y secar el hematimetro con pano

suave- Retire la pipeta del agitador y elimine 4 gotas


- Llenar la camara depositando una gota de la dilucion por debajo del cubrehematimetro

- Dejar en reposo por 3 min. para una mejor distribucion celular

- Llevar a leer al microscopio y leer con lente de 40x hacer el recuento en cuatro cuadros de las esquina y del centro de la reticula newbauer

- Sumar el total y multiplicar por factor de dilucion 10,000.


- Este factor se obtiene del total de los cinco cuadro contado en total 80 cuadro pequeno, la altura que ocupa el cubrehematimetro y el hematimetro es de 0.1mm y del titulo de dilucion de la pipeta que de 1: 200

- Para obtener el total de Eritrocitos- Eritrocitos contados x 10,000= no. de

Eritrocitos/ mm3 de sg.


• Intervalos de Referncia:- Hombre: 5.4 + o’ – 0.8 mill/mm3 de sg. 5,4 x 10 a la 12/l- Mujer: 4.8 + o’ – 0.6 mill/mm3 de sg. 4,8 x 10 a la 12/l- Factor de conversion:- 10 a la 6/l- Aplicacion Clinica: Anemia y Policitemia

RECUENTO DE RETICULOCITOMETODO: MANUAL

Fundamento:• Los reticulocitos son eritrocitos jovenes que contienen restos de ARN y Ribosomas presentes en grandes cantidades en el citoplasma de sus predecesores nucleares. Los ribosomas tienen la propiedad de precipitar cuando reccionan con ciertos colorantes supravitales, como el azul cresil brillante o el nuevo azul de metileno, originando granulos o filamentos de color azul.

• En una tincion corriente con derivados de romanowsky, los reticulocitos no presentan reticulo, sino que aparecen como celulas con basofilia difusa o policromatofilia

RECUENTO DE RETICULOCITOS

• MUESTRA: Sangre Capilar o Venosa con EDTA• EQUIPO: Microscopio Bano Serologico MATERIALES:- Tubos de ensayo 12 x 75 mm de diametro- Aplicadores de madera- Porta objetos

- REACTIVOS: Nuevo Azul de Metileno o Azul Cresil Brillante


• Procedimiento:

- Extraer una muestra de sangre por la via indicada- Colocar en un tubo 2 gotas de sangre y 2 gotas

del del reactivo y mezclar- Colocar el tubo en bano de maria por 15 min.- Retirar el tubo y realizar frotis, dejar secar al aire- Llevar al microscopio y leer en lente de imersion


- Contar 1000 eritrocitos y los reticulocitos encontrados por separado

- Reportar el no. de reticulocitos en % y mm3 de sg.• Calculo:% de Reticulocitos= reticulocitos/1000 x 100Mm3 de Reticulocitos= % de Ret. X rec. de Eritr/100

INTERVALO DE REFERENCIA :Adultos: 0.5 – 2% = 25 – 90 x10 a la 9/L = 25,000 –

90,000/ULRecien Nacidos 4.0 – 6.0%

RECUENTO DE RETICULOCITO

- % corregido de Reticulocito:Hto. del pacte x % ret. / 45 (Hto. promedio normal H Y M)Se realiza en caso de Anemia(ver manual)

Indice de Produccion Reticulocitaria (RPI)=Recuento corregido / 2RPI > 2 indica una respuesta medular apropiadaRPI < 2 indica una respuesta medular compensatoria

Insuficiente o Ineficaz

INDICES ERITROCITARIOS O MEDIDAS HEMATIMETRICAS

UTILIDAD:DETERMINAN EL TAMANO Y EL CONTENIDO DE HEMOGLOBINA DE LOS

ERITROCITOS, PERMITIENDO SU CLASIFICACION.

PARA OBTENERLO SON UTILIZADOS LOS RESULTADOS DE: HB., HCTO. Y REC. ERITORCITOS.

LOS INDICES ERITROCITARIOS SON:• VOLUMEN CORPUSCULAR MEDIO O’ VCM.• HEMOGLOBINA CORPUSCULAR MEDIA O’ HCM• CONCENTRACION DE HEMOGLOBINA CORPUSCULAR MEDIA O’

CHCM

INDICES ERITROCITARIOS

• VCM: Evalua el volumen promedio de los Eritrocitos individuales en fentolitros.

• VCM= Hto. X 100 / 2 p.c. del rec. de Erit.

Intervalo de Referencia: 80 – 100 Fl

Clasifica el Eritrocitos: Macrocito: > 100 Fl Microcito: < 80 Fl Nomocito: 80- 100 Fl

Factor de Conversion: 1 Fl.

INDICES ERIROCITARIOS• HCM= Evalua el peso promedio de hemoglobina en cada eritrocito.

• HCM= Hb. Grs/dl x 100 / 2 p. c. del Rec. de Erit.

• Intervalo de Referencia: 27 – 31 Pg.

• Clasifica el Eritrocito: Nomocromico: 27 -31 Pg. Hipocromico: < 27 Pg.

• Factor de Conversion : 0,062606 fmol

Aumenta: Anemia Megaloblastica

INDICES ERITOCITARIOS• CHCM: Evalua la coc. de Hb. Grs. /100 de los Eritrocitos.

CHCM= Hb. Gr/dl x 100/ Hto.

Intervalo de Referencia: 32- 36%

Clasifica el Eritrocito: Nomocromico: 32 – 36% Hipocromico: < 32%

Factor de Conversion: 0,09184 SI mmol/l

Valores aumentados : Esferocitosis Hereditaria

RECUENTO DE LEUCOCITOS:METODO: MANUAL

• FUNDAMENTO :- CONSISTE EN DETERMINAR EL NUMERO DE

LEUCOCITOS POR MM3 DE SANGRE O’ 109/l

- METODO: Manual Optico

- MUESTRA: Sangre Capilar o Sangre Venosa con EDTA.

RECUENTO DE LEUCOCITOS• EQUIPO: Microscopio Contador de Globulos Agitador de Pipetas

MATERIALES: Hematimetro Cubrehematimetro Pipeta de dilucion de Leucocitos Pipeteador o boquilla Tubos 12 x 75mm Jeringuillas Torniquete Algondon o gasa esterilREACTIVOS: Solucion de Acido Acetico al 2 0’ 3%

Recuento de Leucocito

• Procedimeinto: - Realizar una toma de muestra por la via indicada- Homogenizar la sangre con el anticoagulante- Llenar la pipeta de recuento de Leucocito,

tomando 0.5 de sangre - Limpiar la parte externa de la pipeta- Introducir la pipeta al diluyente en posicion

vertical y aspirar el diluyente hasta la marcada de 11.

- Llevar la pipeta al agitador de 1- 3 min.

RECUENTO DE LEUCOCITOS

- Limpiar el hematimetro- Retirar la pipeta del agitador y elimnar tres gotas- Dejar deslizar una gota de la dilucion por debajo

del cubrehematimetro- Dejar sedimentar por 1 – 3 minutos.- Llevar al microscopio y leer con lente de 40x los

leucocitos encontrados en los 4 grande cuadro de la esquina del hematatimetro

- El total de luecocitos se multiplica por el factor de dilucion que es 50.

RECUENTO DE LEUCOCITOS- Cantidad de leucocitos= Leucocitos contados x 50 =

Leucocitos / mm3 de sangre no diluida

- Intervalo de referencia :- Adultos: 5,000 – 10,000/ mm3 de sg. 5,0 - 10,0 x 10 a la 9/l

Neonatos: 10,000 – 25000/mm3 de sg. 10,0 – 25,0x 10 9/lNino de un ano: 8,000 – 15,000 /mm3 de sg. 8,0 – 15,0x 10 9/l

FACTOR DE CONVERSION: 10-3/l-

VELOCIDAD DE SEDIMENTACION DE LOS ERITROCITOS O’ ERITROSEDIMENTACION

FUNDAMENTO:

CONSISTE EN MEDIR EL ESPACIO RECORRIDO POR UNA COLUMNA DE ERITROCITOS EN UNA MUESTRA DE SANGRE TOTAL ANTICOAGULADA EN UN TIEMPO DETERMINADO EL CUAL VARIA SEGUN EL METODO Y EXPRESAR LA LECTURA EN MILIMETRO POR SEGUNDO

ERITROSEDIMENTACIONMetodo: wintrobe

• MUESTRA: SANGRE VENOSA CON EDTA• EQUIPO:- CENTRIFUGA- RELOJ- GRADILLA DE WINTROBE- PIPETA DE WINTROBE

MATERIALES:- JERINGUILLA DE 5ML- TUBOS DE ENSAYOS 12 X 75 MM 0 13 X 75MM CON EDTA- ALGODON

ERITROSEDEDIMENTACIONMETODO: WINTROBE

• PROCEDIMENTO:- Extraer una muestra de sangre venosa con EDTA- Homogenizar durante 10 minutos- Aspirar con la aguja de wintrobe 2ml de sangre- Llenar el tubo de wintrobe hasta la marca 0- Colocar el tubo en la gradilla de wintrobe en

forma vertical por espacio de una hora.- Realizar la lectura a l cumplirse la hora,

obsrvando el nivel de separacion de la columna de eritrocitos con el plasma

ERITROSEDIMENTACION

- La lectura se realiza en la escala descendente- Anotar la lectura mm/h o mm/s

INTERVALO DE REFERENCIA:

Hombre: 0 – 7 mm/h 0 – 0,42mm/sMujer: 0 - 15mm/h 0 – 0,9 mm/sNinos: 1 – 15 mm/h 0,06 – 0,9 mm/s

Factor de Conversion: 0,06

ERITROSEDIMENTACION

• APLICACION CLINICA:

• AUMENTADA: Enfermedades cronicas e Inflamatoria localizadas, sugiere una enfermedad organica. Tuberculosis, Lepra , Mieloma , Endocarditis bacteriana, Agmidalitis, procesos neoplasicos entre otras.

• DISMINUIDA: Hipofibrinogenemia Hereditaria o Adquirida, Hipogammaglobulinemia, Policitemia , Drepanocitosis

MORFOLOGIA ANORMAL DE LOS ERITROCITOS

• SE TOMA EN CUENTA EN CASO DE ANEMIA:

• ANISOCITOSIS:• MACROCITOS• MICROCITOS• MEGALOCITOS

ANOMALIA DE LOS ERITROCITOS EN CUANTO A LA FORMA

• POIQUILOCITOSIS:• DREPANOCITOS• CELULA CRENADA O EQUINOCITOS• ACANTOCITOS• ELIPTOCITOS• OVALOCITOS• DACRIOCITOS• EQUISOCITOS• ACROMOCITOS• ROULEAUX

DISTRIBUCION ANORMAL DE LA HEMOGLONA:• ESTOMATOCITOS• LEPTOCITOS

ANOMALIA ERITROCITARIA (PERFIL)

• ESFEROCITOS

ERITROCITOS QUE VARIAN EN CUANTO AL CONTENIDO NORMAL DE HEMOGLOBINA:

• HIPOCROMIA• ANISOCROMIA• ANULOCITOS• POLICROMATOFILIA

INCLUSIONES ERITROCITARIAS

• ANILLO DE CABOT• CORPUSCULO DE HOWEL JOLLY• PUNTEADO BASOFILICO• CUERPOS DE HEINZ• SIDEROCITOS

PARASITOS ERITROCITARIOS:PLASMODUIM, BABESIA, TRIPANOZOMAS,

LEISHMANIA Y FILARIA

ANOMALIAS DE LOS LEUCOCITOS Granulocitos

• ADQUIRIDAS:

• Cuerpo de Dohle

• Granulaciones Toxicas

• Macropolicito O Neutrofilo Hiperlobulado

• Cuerpo de Auer

CONGENITAS:

Anomalia de Pelger – Huet

Anomalia de Alder – Reilly

Sindrome de Chediar – Higashi

Anomalia de May - Hegglin

INVESTIGACION DE CELULAS FACIFORMESMETODO: METABISULFITO SODICO

• Fundamento: • La hemoglobina S en estado de deoxigenacion

es insoluble en una solucion tampon de fosfatos de alta molaridad. En estas condiciones se forman tactoides que producen una solucion turbia.

Recuento Automatizado

Importancia:• Estos han contribuido a obtener mas rapido

resultados• Han contribuido a una mejor fiabilidad de los

recuentos de las celulas sanguineas• Se disponen de distintos tipos de instrumentos:

Semiautomatizados (requieren de diluciones previas de las muestra antes de ser procesada) y Automatizados( solo hay que suministrar la muestra en condiciones apropiada)

RECUENTO AUTOMATIZADO

Fundamento:

Se basan en la medida del tamano u otras propiedades fisicas de las celulas suspendidas en medio liquido de acuerdo con uno de los principios siguientes:

- Impedancia o resistencia electrica- Dispersion de luz o campo oscuro

Recuento automatizado

Impedancia o resistencia electrica:(Es el de mayor uso).Fundamento:Se basa en la propiedad de las celulas

sanguineas de no conducir la electricidad.La sangre total es diluida en una solucion de

conductividad estable, las celulas asi diluida se hacen pasar por un orificio de apertura con una area prefijada


• Por dentro y fuera del orificio se disponen electrodos que establecen una diferencia de potencial

• Cuando una celula pasa a traves del orificio, se genera una resistencia entre ambos electrodos que se registra como un impulso

• El numero de impulso se correspnde directamente con el recuento celular y como la amplitud del impulso es directamente proporcional al tamano de la celula, es posible determinar tambien el volumen celular

Recuento automatizado

METODO DE DISPERSION DE LUZ:

Fundamento:

Consisten en analizar la dispersion de luz producida por las celulas desde dos

dimensiones gracias a los sensores ubicados en angulos diferentes.

Las celulas se hacen pasar individualmente a lo largo de una camara de lectura sobre

la que incide perpendicularme un haz de luz se produce una sombra que, proyectada

sobre un campo oscuro, sera analizada por loa sensores.

Estos sensores permiten medir la concentracion y el volumen celulares.


• Causas de errores en el recuento:• Dilucion o hemoconcentracion• Coagulacion parcial de la muestra• Hemolisis• Mala homogenizacion por agitacion insuficiente

de la sangre• Presencia de particula extranas en el diluyente• Defecto en el sistema electronico en el recuento:

RECUENTO AUTOMATIZADO• Lisis incompleta de los eritrocitos en el orificio de leucocitos• Presencia de agregados celulares a nivel del orificio de recuento• Obstruccion de los capilares a nivel u orificio de recuento• Dilucion incorrecta de la muestra por el liquido diluyente• Presencia de microburbujas, que son contadas como celulas• Contaminacion por arrastre de un especimen con el siguiente• Presencia de interferencia

Determinacion de la Resistencia Capilar

• Fundamento:• Se fundamenta esta prueba en evaluar la

resistencia de los capilares cuando se incrementa la presion intracapilar mediante el obstruccion del flujo venoso, es decir cuando se somete a los vasos a una presion positiva.

• Si la fragilidad de los vasos esta aumentada, estos no resisten el incremento de la presion y dejan escapar la sangre, lo cual se manifiesta por la aparicion de petequias.

DETERMONACION DE LA RESISTENCIA

• METODO: RUMPELL – LEEDE

• MATERIAL: LAPIZ DERMOGRAFICO

• EQUIPO: ESFIGMOMANOMETRO Y ESTETOSCOPIO

• PROCEDIMIENTO:- Dibujar tres circulos de 5cm de diametro aprox. En la

cara anterior del antebrazo, en la cara posterior del antebrazo y en el dorso de la mano

PRUEBA DE RESISTENCIA CAPILAR

- Examinar el brazo del paciente antes para observar la presencia previa de petequias o equimosis. En caso de existir, marcar con el lapiz, a fin de no tomarla en cuenta para los fines de la prueba

- Colocar en el brazo del paciente el esfigmomanometro. Tomar la presion sanguinea y anotar los resultados y obtener un promedio de los mismos

- Aplicar ahora por inflacion aire en el manguito para obtener una presion intermedia sistolica y diastolica del paciente

PRUEBA DE RESISTENCIA CAPILAR

- Mantener esta presion promedio durante 5 minutos, pasados estos quitar el esfigmomanometro.

- Dejar en reposo el brazo del paciente, durante 5 minutos.

- Contar el numero de petequias dentro de los circulos trazados.

- INTERVALO DE REFERENCIA: Hasta 20 petequias- en el circulo de 5 cms.

Recuento de Plaquetas

• Fundamento:• Coniste en el recuento de plaquetas mediante camara

cuentaglobulos de forma similar a la descrita para las restantes celulas sanguineas.

• Debe siempre realizarse un frotis sanguineos para evaluar la morfologia y cuando existen disminucion o aumentos de la misma.

• METODOS:• Directos: utilizan luz corriente ( Rees – Ecker)• Indirectos: utilizan Microscopia de Contraste de Fase(Brecker –

Cronkite)• Automatizados: Analizadores automatizados.

Tiempo de sangria(Tiempo de Hemorragia, Tiempo de Sangrado)

• Fundamento:• Mide el Tiempo que tarda en detenerse el

sangramiento de una pequena incision realizada en la piel, bajo condiciones estandarizadas.

- Requisitos antes de realizarla:• No debe haber tomado drogas que afecten la

funcion plaquetaria siete dias antes.• Pacientes con trombicitopenias(alarga el tiempo)

TIEMPO DE SANGRIA

• METODO: yvy modificado

• Material: EQUIPO: Cronometro- Algodon Esfigmomanometro- Lancetas - papel de filtro

- PROCEDIMIENTO:- Colocar el esfgmomanometro en el brazo del paciente

a una presion de 40mm de Hg. Durante toda la prueba

TIEMPO DE SANGRIA

- Aproximadamente a 3 dedos por debajo del pliegue del codo y paralelo al mismo

- Desinfectar toda el area con algodon humedecido en alcohol y secar con un trozo de algodon seco

- Efectuar 2 punciones con la lanceta a una distancia de 1 mm , entre cada incision

- Poner en macha el cronometro inmediatamente- Tocar cada 30 segs. La gota de sangre con el

papel de filtro tratando de no llevarse el coagulo., continuar haciendo esto hasta que al tocar con el papel de filtro este no se manche de sangre

TIEMPO DE SANGRIA

- Detener el cronometro, anotar los resultados de cada de la dos punciones por separados, y sacar un promedio

- En caso de puncionar un vaso capilar o el tiempo de sangria ser mayor de 13 minutos repetir la tecnica en el otro brazo del paciente.

- INTERVALO DE REFERENCIA: 1- 7 MINUTOS 1 – 9 MINUTOS

Anormalidad en el tiempo de sangrado:

• Evidencia una defectuosa fase plaquetaria• Deficiencia en la fase vascular• Es la expresion minima de la hemostasia

primaria• Representa una valoracion global y simultanea

de los procesos de Adhesion, Agregacion y Liberacion plaquetarias.

• Evalua la vasoconstriccion, el tejido perivascular, y el endotelio

Determinacion del Tiempo de Coagulacion

• Fundamento:• Es la longitud de tiempo requerida para que la sangre forme un

coagulo “in vitro” bajo ciertas condiciones especificas.En la actualidad no se utiliza por dificil que ha sido estandarizacion y

las variables que influyen:• Medida del tiempo• Tipo de tubo utilizados• Numero de tubo• Modo de inclinar el tubo• Modo de reportarSe prefiere hacer un Tiempo de Tromboplastina ParciaActivada(PTTa)

TIEMPO DE COAGULACION• METODO: LEE WHITE• Material: - Tubos de esnsayos 10 x 75mm- Jeringuilla- Algodon

Muestra: Sangre total Equipo: Bano de Maria a 37oc CronometroProcedimiento:- Enumerar tres tubo de 10 x 75 mm- Coloque el torniquete en el brazo, desinfecte la region a puncionar- Haga una venipuntura limpia

TIEMPO DE COAGULACION

- Obtenga 5 ml de sangre- Retire la aguja de la jeringuilla y deposite 1 ml de

sangre exactamente en cada uno de los tubos numerados.

- Poner a funcionar el cronometro e inmediatamente- Llevar los tubos en el bano de maria a 37 Oc. Dejar en

reposo 5 min., al cabo de ese tiempo, - Comienze a inclinar en angulo de 45 grados el primer

tubo a intervalos de 30 seg., el punto final es aquel donde el tubo se pueda invertir sin derramarse el contenido

TIEMPO DE COAGULACION

- Luego hacer ahora lo mismo con el tubo # 2- Y por ultimo hacer lo mismo con el tubo # 3- El tiempo de coagulacion sera el tiempo del

tercer tubo, donde pueda invertirse y no se derrame.

- INTERVALO DE REFERENCIA: 5 – 15 MINUTOS

Determinacion de la Retraccion del Coagulo

• Fundamento:• Cuando una sangre se coagula espontaneamente en un tubo de

vidrio, se observa que al principio ocupa todo el volumen, pero luego reduce su masa y esprime un liquido, que es el Suero.

• La retracion del coagulo depende de la actividad trombodinamica palaquetaria, por lo cual se necesita un numero de plaquetas normales.

Se basa en la contraccion de las plaquetas, gracias a la proteinas contractil Trombosteina, ADP paquetario que es una proteina contractil plaquetaria, parece ser la responsible de esta funcion.

Depende ademas de la conc. De FI y del Hcto. O sea del volumen a retraer.

Importante en el diagnostico de la Tromboastenia de Glazmann.

Tiempo de Protrombina

• Fundamento:

Mide el tiempo de coagulacion del plasma Citratado al agregarle Tromboplastina ( factor Tisular y una mezcla de fosfolipidos) y Cloruro Calcio.

Evalua:

Factores: I – II – V – VII – X

Tiempo de Tromboplastina Parcial Activada

• Fundamento:

Se fundamenta en la medicion del tiempo de coagulacion del plasma citratado en presencia de una tromboplastina(cefalina) equivalente de los fosfolipidos plaquetarios, y un activador de la fase de contacto(caolin, silice, Acido Elagico).

Evalua:

Factores: Prekalicreina, F XII- XI- IX-V-II y el fibrinogeno.

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