universidad nacional de trujillo biologicas

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGÍA

Frecuencia de Erysipelothrix sp en cerdos

beneficiados en el camal del Distrito de

Florencia de Mora – Trujillo 2016

TESIS

PARA OBTENER EL TÍTULO PROFESIONAL DE

BIÓLOGO - MICROBÍOLOGO

AUTOR: Br. MIRELLY NAYARIT SILVA MUJICA ASESORA: Dra. MANUELA NATIVIDAD LUJÁN VELÁSQUEZ

TRUJILLO – PERU 2016

Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo

Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.

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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE

TRUJILLO

Dr. ORLANDO GONZÁLES NIEVES

RECTOR DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE

TRUJILLO

Dr. RUBÉN VERA VELEZ

VICE-RECTOR ACADÉMICO DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL

DE TRUJILLO

Dr. STEBAN ALEJANDRO ILICH ZERPA

SECRETARIO GENERAL DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE

TRUJILLO



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AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS

BIOLÓGICAS

Dr. FREDDY ROGGER MEJIA COICO

DECANO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Dr. WILLAN ZELADA ESTRAVER

SECRETARIO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Dra. BERTHA SORIANO BERNILLA

DIRECTORA DE ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL

DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA



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DEDICATORIA

A DIOS Por regalarme la vida, ser mi guía espiritual, cuidarme y darme la

fortaleza necesaria para seguir cumpliendo con mis metas y objetivos trazados.

A MIS QUERIDOS PADRES Melina Mujica Alfaro Y César Silva Quiroz,

quienes fueron participes en mi formación y mis valores quienes durante todos estos

años confiaron ciegamente en mí, hasta convertirme en lo que soy ahora; los amo a

ustedes y a mi hermana Medaly.

A MIS TIOS Edgar Mujica Alfaro, John Mujica Alfaro, Aldo Mujica Alfaro

y Dina Mujica Alfaro, por creer siempre en mí, por su apoyo incondicional y

desinteresado al haber contribuido con mi formación profesional.

A LA MEMORIA DE Mi siempre amado y recordado Mauricio

Jesús Mujica Huamán, quien a su corta edad me enseño a mostrar siempre

una sonrisa y luchar siempre hasta el final, hasta donde nuestras propias

fuerzas se agotan.



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AGRADECIMIENTO

A mi profesora asesor Dra. Manuela Natividad Lujan Velásquez, de la

Universidad Nacional de Trujillo por sus orientaciones y apoyo incondicional

para la realización del presente trabajo de investigación.

A los servicios brindados por el Departamento Técnico Microbiología y

Parasitología, en especial al Sr T.M. Carlos Alberto Guzmán Delgado por su gran

apoyo y asistencia técnica presentada durante este proceso de investigación .

A Mis amigos Mario Trelles Zegarra , Omar Rosas Alfaro, Reyna Simón

Gómez , Roxana Rodríguez Pérez , Marieta Orbegoso y Manuel Rodríguez Aguilar

por sus sabios consejos, constante motivación y desinteresada amistad, en especial

por su apoyo incondicional durante todo el tiempo que duró la presente

investigación.



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PRESENTACIÓN

Señores miembros del jurado:

En cumplimiento con las disposiciones establecidas en el reglamento de

grados y títulos de la Universidad Nacional de Trujillo, pongo a vuestra

consideración y criterio el presente trabajo de tesis titulada: Frecuencia de

Erysipelothrix sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de Florencia

de Mora - Trujillo 2016, con lo cual pretendo obtener el título de Biólogo-

Microbiólogo.

Esperando que el presente sea de vuestra aprobación.

Br. Mirelly Nayarit Silva Mujica.



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MIEMBROS DEL JURADO

Dr. RAÚL ANHUAMÀN AZABACHE

PRESIDENTE

MsC. EDUARDO MUÑOZ GANOZA

SECRETARIO

Dra. MANUELA LUJÁN VELÁSQUEZ

VOCAL



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APROBACION

Los profesores que suscriben, miembros del jurado dictaminador, declaran que el

presente informe de tesis ha cumplido con los requisitos formales y fundamentales,

siendo aprobado por unanimidad.

Dr. RAUL ANHUAMÁN AZABACHE

PRESIDENTE

MsC. EDUARDO MUÑOZ GANOZA

SECRETARIO

Dra.. MANUELA LUJÁN VELÁSQUEZ

VOCAL



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DEL ASESOR

La q u e suscribe, asesor de la presente tesis titulada: Frecuencia de

Erysipelothrix sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de

Florencia de Mora - Trujillo 2016

CERTIFICA:

Que la investigación ha sido desarrollada de conformidad con su correspondiente

proyecto de tesis y con las orientaciones pertinentes.

El informe ha sido redactado bajo mi asesoramiento, acogiendo las observaciones

y sugerencias alcanzadas. Por lo tanto autorizo al bachiller Mirelly Nayarit

Silva Mujica a continuar con los procedimientos según sus fines.

Dra. Manuela Luján Velásquez



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INDICE

AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO ii

AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIA BIOLOGICAS iii

DEDICATORIA iv

AGRADECIMIENTO v

PRESENTACION vi

MIENBROS DEL JURADO vii

APROBACION viii

DEL ASESOR ix

INDICE x

RESUMEN xi

ABSTRACT xii

I. INTRODUCCION 1

II. MATERIAL Y METODO 5

2.1. Material biológico 5

2.2 Procedimiento 5

2.2.8 Análisis de datos 8

III.RESULTADOS 9

IV.DISCUSION 11

V.CONCLUSIONES 15

VI.REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 16

ANEXOS 21



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RESUMEN

El objetivo de la presente investigación fue determinar la frecuencia de Erysipelothrix

sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de Florencia de Mora - Trujillo 2016,

para ello se realizó un muestreo sistemático al azar, recolectándose 196 muestras

obtenidas en hisopado de tonsilas de Sus scrofa domesticus “porcino”, las cuales

fueron colocadas en tubos de ensayo conteniendo Caldo Glucosa Azida de Sodio e

incubadas a 37ºC durante 48 horas . Posteriormente, se evaluó la capacidad hemolítica

en Agar Soya Tripticasa con azida de sodio suplementada con sangre. Para la

identificación de género y especie bacteriana se realizó coloración Gram, pruebas de

catalasa y bioquímica en Agar Tres Azúcares Hierro. Se determinó que la frecuencia

Erysipelothrix sp fue de 32.65% de los cuales el 13.26 % corresponde a E.

rhusiopathiae y el 19,39% a E. tonsillarum .

Palabras clave: Erisipela porcina, Erysipelothrix rhusiopatiae,

Erisipelothrix tonsillarum.



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ABSTRACT

The objective of this research was to determine the frequency of Erysipelothrix sp in

pigs benefited in the slaughterhouse district of Florencia de Mora - Trujillo 2016 , to

do a systematic random sampling 196 samples obtained from swabbing the tonsils of

Sus scrofa domesticus , was performed ,collecting " pig " domesticus , which were

placed in test tubes containing Sodium azide Glucose broth and taken to the lab to be

incubated at 37ºC during 48 hours. Subsequently, the hemolytic capacity assessment,

which was made in Trypticase Soy Agar with sodium azide and supplemented with

blood .For the identification of bacterial species and genus gram staining, catalase and

biochemical tests, was conducted in Triple Sugar Iron Agar t. It was determined that

Erysipelothrix sp frequency was 32.65 % of which corresponds to 13.26 % E.

rhusiopathiae and E. tonsillarum 19.39 %.

Key words: Swine erysipelas ,Erysipelothrix rhusiopatiae, Erisipelothrix

tonsillarum.



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I. INTRODUCCIÓN

El género Erysipelothrix incluye tres especies Erysipelothrix inopinata,

Erysipelothrix tonsillarum y Erysipelothrix rhusiopatiae (E.insidiosa). E. rhusiopatiae

es la única especie patógena para seres humanos y la de mayor importancia veterinaria

por ser el agente etiológico de la erisipela porcina la cual constituye una de las

enfermedades de mayor importancia en la industria ganadera1,2,3.

Erisipela porcina “Mal Rojo” o “enfermedad de la piel de Diamante” es una

enfermedad infectocontagiosa de distribución mundial que provoca grandes pérdidas

económicas en explotaciones porcinas. Se ha reportado en países de Europa, Asia,

Canadá Australia, Nueva Zelanda, Estados Unidos y también en Jamaica, Guyana,

Surinam, Brasil, Argentina, Chile y Perú4, 5,6. En el Perú, la erisipela porcina es

registrada por el Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA) 7 como una de las

principales enfermedades en ganado de este tipo.

Los animales de cualquier edad son susceptibles, aun antes del destete, sin

embargo la mayor frecuencia se produce en animales mayores de tres meses hasta el

peso del beneficio8,9,10.

El principal reservorio natural es el cerdo siendo las tonsilas y la válvula

ileocecal las fuentes más importantes de infección en los portadores (ciclo endógeno).

Las heces y la saliva son la principales vías de eliminación en los portadores, al igual

que los animales enfermos, aunque estos últimos con mayor profusión11 .



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Un reservorio telúrico constituye el principal reservorio extra -animal (ciclo

exógeno), debido a una continua contaminación del suelo por los residuos orgánicos

animales 12. El estado de portador permanente se da en animales con presencia de la

enfermedad crónica y la vacunación no elimina dicha condición debido a la variedad

de serotipos circulantes 13.

El contagio en los animales se produce por diferentes vías: secreción oral, nasal

y venérea e incluso por vía percutánea, aunque normalmente el mecanismo de

transmisión es indirecto, mediante la ingestión de agua y alimentos contaminados14.

E. rhusiopathiae produce una enfermedad ocupacional en el hombre

denominada Eripeloide o Erisipeloide15. Sobre todo en personas con empleos

estrechamente relacionados con animales, sus productos o residuos16. Las personas

con mayor riesgo de exposición son carniceros, matarifes, veterinarios, agricultores,

pescadores cocineros que manipulan carne de animales contaminados.

Es un microorganismo Grampositivo patógeno oportunista, compuesto por los

serotipos 1a,1b,2ª,2b,4-6,8,9,11,12,15-17,19,21 y tipo N que sobrevive

multiplicándose intracelularmente dentro de macrófagos y leucocitos

polimorfonucleares (PMN)debido a sus enzimas antioxidantes que le confieren

protección frente a las especies reactivas del oxígeno y fosfolipasas 17. Produce varios

factores que pueden aumentar la virulencia de estos microorganismos. La

neuraminidasa, enzima que libera residuos de ácido siálico terminal de glucolípidos y

glicoproteínas, al parecer funciona promoviendo la fijación de las bacterias y ulterior

invasión celular de E. rhusiopathiae 18.



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La mayor propagación en los tejidos puede deberse a la producción de

hialuronidasa por el microorganismo aunque el papel de esta enzima en la patogenia

de la enfermedad, no es muy claro. E. rhusiopsthiae también produce una capsula de

polisacárido la cual tiene un peso molecular de 14 a 22 KDa y funciona ayudando al

microorganismo a resistir la fagocitosis por los leucocitos polimorfonucleares19.

En presencia del suero normal, los macrófagos pueden fagocitar a este

microorganismo pero la cápsula les permite sobrevivir y reproducirse

intracelularmente por la inhibición de la explosión oxidativa dentro de los macrófagos

y una producción reducida de metabolitos oxidativos reactivos 20.

En la realidad del siglo XXI El Mal Rojo es frecuente en países de ganaderías

porcinas desarrolladas, manifestándose en Norteamérica, Australia y Europa,

particularmente en la cuenca mediterránea y los países Centro Europeos21, 22. En el

ámbito del sector español y la Unión europea esta enfermedad se presenta en un 40%

de cerdos que son portadores asintomáticos23, mientras en Inglaterra hasta el 50% de

cerdos pueden ser identificados como portadores asintomáticos24.

En Sudamérica se ha aislado el agente etiológico, de las amígdalas de hasta el

30% de cerdos aparentemente sanos25. Estudios realizados en Chile afirman que de

400 cerdos de un matadero se aisló la bacteria de 53,5% de muestras de amígdalas y

el 25,6% de las muestras de suelo y las deposiciones26. En el Perú, esta enfermedad

fue reportada por SENASA en las provincias de Chepén y Pacasmayo del



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departamento de La Libertad la cual causó grandes pérdidas económicas en la industria

ganadera en Marzo del 2010 27.

Considerando que las bacterias pertenecientes al género Erysipelothrix son

causantes de enfermedades que generan pérdidas económicas en la industria porcina,

problemas de salud pública y que afectan no solo a los animales sino también a los

humanos, el estudio de este microorganismo es importante por lo que en la presente

investigación se planteó como objetivo determinar la frecuencia de Erysipelothrix

sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de Florencia de Mora - Trujillo

2016.



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II. MATERIAL Y MÉTODOS

2.1 Material Biológico

Se trabajó con 196 ejemplares de Sus scrofa domesticus “porcino” sacrificados en

el camal del distrito de Florencia de Mora, a los cuales se les realizó un hisopado de

las tonsilas, tomando una muestra por cada ejemplar.

2.2 Procedimiento

2.2.1 Determinación del tamaño de muestra para estimar la cantidad de

ejemplares a muestrear28.

Se determinó el tamaño de muestra mediante la siguiente fórmula:

𝑛 =𝑧2 𝑝. 𝑞. 𝑁

Ne + 𝑧2 𝑝. 𝑞

Donde

Z= Nivel de confianza 1,96

p= Probabilidad a favor 0,50

q= Probabilidad en contra 0,50

N= Universo

e= Error de estimación 0,05

n= Tamaño de muestra.

𝑛 =(196)2 (0.5)(0.5). (400)

(400)(0.05) + (1.96)2 (0.50)(0.5)

𝑛 = 196



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2.2.2 Recolección de las muestras de hisopado de tonsila

Las muestras se obtuvieron mediante hisopado de las tonsilas de los cerdos

beneficiados en el camal del distrito de Florencia de Mora – Trujillo (Anexo

3).

2.2.3 Transporte de las muestras e Incubación en medio Líquido.

Las muestras fueron colocadas en tubos de ensayo de 16 x 150 mm

conteniendo 10 ml de Caldo Glucosa Azida de Sodio al 0,1%, las cuales

fueron llevadas al laboratorio para ser incubadas a 37ºC con una atmosfera

de CO2 al 5% por un tiempo de 48 horas. En caldo se observó una ligera

turbidez a las 24 horas, así como un incipiente precipitado a las 48 horas

(Anexo 4 y 5).

2.2.4 Aislamiento en medio sólido

Después de haber transcurrido el tiempo de incubación, las muestras se

repicaron en Agar Soya Tripticasa con Azida de Sodio al 0.1% suplementado

con sangre al 5% mediante la técnica de estriado y se incubaron a 37 °C con

una atmosfera de CO2 al 5% por 24 h 29,30,31 . Luego de transcurrido este

tiempo se observó un halo de color verdoso alrededor de algunas colonias,

correspondientes a una alfa hemolisis, característica del género Erysipelothrix

sp 32 (Anexo 6 y 7).



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2.2.5 Examen Microscópico

Se seleccionaron las colonias con morfología circular, convexa, lisa y rugosa

de aproximadamente (0.1 a 0.5 mm) traslucidas compatibles con el género

Erysipelothrix sp33 y se procedió a realizar la coloración de Gram con el fin

de identificar la morfología microscópica y grupo al que pertenecen dichas

bacterias (Anexo 8).

2.2.6 Preparación de cultivo puro

Una vez identificada la morfología microscópica de la colonia se repicó en

Agar Soya Tripticasa con azida de sodio al 0.1% suplementado con sangre al

5% e incubó en microaerofilia a 37 °C, así mismo en Agar Nutritivo a 37 °C

por 24 horas 34, para obtener un cultivo puro y continuar con las siguiente

parte de los procedimientos .

2.2.7 Identificación de las colonias aisladas:

Posteriormente se realizó la identificación de las colonias aisladas mediante:

Prueba de la Catalasa

Se colocó una gota de peróxido de hidrógeno al 3% en una lámina portaobjetos

conteniendo una colonia bacteriana y se mezcló con H2O2 35. Para la

interpretación la producción de burbujas es una reacción positiva, mientras la

ausencia de estas es una reacción negativa (Anexo 9)



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Bioquímica

La siembra se realizó en Agar Triple Sugar Iron (TSI) 36,37,38 é incubó de 18-

24 horas. Transcurrido el tiempo se procedió a dar lectura a los tubos, primero

la parte del pico de flauta y en segundo lugar la reacción del fondo39.

Para el caso de Erysipelothrix rhusiopatie se observó producción de H2S, y

producción de ácido a partir de glucosa. Mientras en el caso de, Erisipelothrix

tonsillarum producción de ácido a partir de glucosa y sacarosa. (Anexo 10 y 11)

2.2.8 Análisis de Datos

El diseño estadístico considero un muestreo sistemático al azar con una muestra total

de 196 ejemplares de Sus scrofa domesticus “porcino” 40y se utilizó estadística

descriptiva para determinar la frecuencia en base a los porcentajes41.



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III. RESULTADOS

De un total de 196 muestras extraídas de las tonsilas de ejemplares de Sus scrofa

domesticus “porcino” sacrificados en el camal del distrito de Florencia de Mora

se determinó que el 32.65% (64) corresponden a bacterias del género

Erysipelothrix sp(Tabla 1), de las cuales 13.26 % (26) pertenecen a la especie

E.rhusiopathiae y 19,39% (38) a la especie E. tonsillarum (Tabla 2).

Tabla 1. Porcentajes de muestras positivas y negativas procedentes de cerdos

sacrificados en el camal de Florencia de Mora compatibles con el

género Erysipelothrix sp

Muestras

Compatibles a género

Erysipelothrix sp

Nº %

positivas

64

32.65

negativas

132

67.35

Total

196

100



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Tabla 2. Porcentajes de muestras de tonsilas procedentes de cerdos

sacrificados en el camal de Florencia de Mora positivas

compatibles a E.rhusiopathiae y E. tonsillarum

Bacteria

Porcentaje de muestras positivas

Nº

%

E.rhusiopathiae

26

13.26

E. tonsillarum

38

19.39

Total

64

32.65



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IV. DISCUSÓN

En este estudio se utilizaron ejemplares de Sus scrofa domesticus “porcino”

para extraer las muestras de tonsilas debido a que el cerdo actúa como portador y

es la especie más sensible a Erysipelothrix sp, presentando notables variaciones

en su sensibilidad (pueden enfermar a cualquier edad) aunque los lechones con

inmunidad calostral o los adultos que hayan soportados reiteradas infecciones

subclínicas desarrollan altos niveles de resistencia a las formas agudas 42,43.

La especie porcina es reservorio natural de E. rhusiopathiae, los cerdos

aparentemente sanos portan con frecuencia el germen en las amígdalas, válvula

íleocecal, e incluso en otros órganos (piel, ganglios ilíacos, riñones, bazo),

eliminándolo en las heces y descargas oronasales 44.

En lugares donde el microorganismo es endémico los cerdos son expuestos a

E. rhusiopathiae cuando son pequeños y tienen anticuerpos maternos, por tanto,

desarrollan inmunidad activa sin enfermedad visible, esto puede explicar el hecho

de que los cerdos se encontraban aparentemente normales convirtiéndose en

portador es asintomáticos 45.

En la especie porcina la tonsila palatina o amígdala se ubica en la zona caudal

del paladar blando; esta estructura actúa como primera línea de defensa

inmunológica para el organismo y es el órgano más indicado para el muestreo, por

ser el lugar de colonización de Erysipelothrix 46.



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E.rhusiopathiae posee factores de virulencia tales como hialuronidasa y

neuraminidasa, las que permiten la invasión dentro del huésped. La primera

facilita la diseminación dentro de los tejidos y la segunda produce la escisión del

ácido siálico, molécula que se distribuye ampliamente en la superficie de células

eucariotas y podría servir como un requerimiento nutricional para Erysipelothrix

47.

El caldo glucosa - azida de sodio se usó como medio de enriquecimiento

selectivo. Se fundamenta en que la glucosa va a ser el carbohidrato que va a ser

fermentado por la bacteria y la azida de sodio disminuye la carga microbiana

acompañante 48.

El aislamiento de Erysipelothrix se hizo en agar soya tripticasa- azida de

sodio más sangre 5%, este medio se fundamenta porque en su composición

contiene peptona de caseína, peptona de harina de soya, cloruro de sodio y agar;

los dos primeros componentes proporcionan a la bacteria fuente de nitrógeno,

mientras tanto el cloruro de sodio tiende a mantener el

equilibrio osmótico y la sangre es el componente de enriquecimiento para

determinar la hemólisis y hacer un diagnóstico diferencial con otros

microorganismos 49,50.

Para las pruebas bioquímicas se utilizó El Agar Triple sugar iron, (TSI). La

composición de este medio se fundamenta en que el extracto de carne y la

pluripeptona, aportan los nutrientes adecuados para el desarrollo bacteriano. La

lactosa, sacarosa y glucosa son los hidratos de carbono fermentables. El tiosulfato



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de sodio constituye es el sustrato necesario para la producción de ácido

sulfhídrico, el sulfato de hierro y amonio, es la fuente de iones Fe3+ , los cuales se

combinan con el ácido sulfhídrico y producen sulfuro de hierro, de color negro.

El rojo de fenol es el indicador de pH, y el cloruro de sodio mantiene el balance

osmótico.

Por fermentación de azúcares, se producen ácidos, que se detectan por medio

del indicador rojo de fenol, el cual vira al color amarillo en medio ácido. El

tiosulfato de sodio se reduce a sulfuro de hidrógeno el que reacciona luego con

una sal de hierro proporcionando el típico sulfuro de hierro de color negro51,52.

La producción de H2S en este medio constituye la prueba bioquímica más

significativa, E. rhusiopathiae se distingue de otros bacilos Gram positivos, por

el tipo de hemólisis, ausencia de movilidad,esporas y catalasa, siendo el único

bacilo Gram positivo, microaerófilo que produce H2S cuando se inocula en

(TSI/KIA)53.

Una segunda especie, E tonsillarum, proveniente de porcinos, descrita por

Takahashi y col 54, se diferencia sobre todo por la homología DNA-DNA y

también por la capacidad de fermentar la sacarosa.

Los resultados obtenidos en el estudio corresponden a cerdos portadores

clínicamente sanos, es decir mantienen el germen en su cuerpo y pueden

transmitirlo a otros sin padecer la enfermedad, representando la fuente más

importante de infección. Pero cuando éstos sufren inmunodepresión por efectos



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estresantes como cambio brusco de alimentación, cambios de temperatura, ser

transportados a largas distancias o cualquier otra circunstancia se convierten en

animales enfermos, la fuente más importante de infección55, 56. Por lo cual El

Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA) por Resolución 422/2003

incluye a Erisipela Porcina dentro de la “Lista de las enfermedades animales” que

deben ser notificadas. Debido a ello la importancia del estudio de este

microorganismo57.

En estudios realizados por Carrada58 se reportan que de 100 cerdos

beneficiados en el 30% de ellos se aisló la bacteria, similar a los resultados

obtenidos en la presente investigación reportan que el 32.65% de cerdos

beneficiados presentó la bacteria en estudio Erysipelothrix.

Los datos de frecuencia obtenidos en la presente investigación tienen

similitud en el porcentaje hallado, en otras investigaciones en las cuales se

determinó la frecuencia de esta bacteria, se reportó en Inglaterra con un 50%,

España 40% y en el caso de Chile Sudamérica, con un 30% de ejemplares

porcinos asintomáticos, portadores de este microorganismo , por ende un alto

porcentaje de los cerdos constituyen importantes reservorios de la enfermedad

,debido a que las bacterias son eliminadas con las heces de los animales

portadores o enfermos , contaminándose así el medio ambiente , lo cual viene a

constituir una fuente importante de infección .la persistencia en el suelo es

variable como se indicó , siendo influida por una serie de factores como el PH y

la temperatura 23,24,25..



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V. CONCLUSIÓN

La frecuencia del genero Erysipelothrix sp es de 32.62%, siendo de frecuencia

alta, encontrándose que E. rhusiopathiae representa el 13.26 % y E. tonsillarum

el 19,39%.

Recomendaciones

Debido a la exposición que surge de la actividad laboral de las personas , por la

manipulación o el uso deliberado del agente biológico, éste puede llegar al

trabajador a través del contacto con animales infectados o sus productos, así como

el contacto con elementos o medios donde dicho agente vive o puede sobrevivir

(materiales, agua, suelo, alimentos, residuos,etc )por lo que se recomienda

mantener siempre la higiene en los espacios donde se ubican los animales , y usar

protección para las manos al momento de manipular el animal , su carne u otros

medios que tengan contacto directo con el animal..



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VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

1. Carrada T. Erisipeloide de Rosenbach ocupacional. Estudio clínico-bacteriológico.

Dermatología Rev Mex 2005;49:78-83

2. MD,De la Luca M,Schell M,Farjat J.Primer informe de celulitis cutánea por

Erysipelothrix rhusiopathiae en dos trabajadores rulales.Bioquim Clin .2011

3. Rosenbach FJ. Experimentelle, morphologische und klinische Studie übre die

krankheitserregenden Mikroorganismen der Schweinerotlaufs, der Erysipeloids

undder Mausesepsis. Z Hyg Infektionskr 1909; 63: 343-71.

4. Anthony D,Lewis E.Enfermedades del cerdo .1ª ed.Mexico D.F.Continental;1974

5. Berger S.Infectious deseases of Perú .Los Angeles, california, USA. 2015 ed.

,Guideon;2015

6. Skoknic A, Diaz I,Urcelay S,Duarte R, Gonzales O.Estudio de la Erisipela en

Chile.Arch Med Vet .1981 ;13:13-16

7. Senasa.gob.pe.peru,2010 (actualizado 7 de abril 2010)

Disponible en :

:http://www.senasa.gob.pe/senasa/wpcontent/uploads/jer/NOR_GEN_ENF_POR/

RSSPORCINO%20%20publicado%20en%20Peruano.pdf

8. Brooke CJ, Riley TV. Erysipelothrix rhusiopathiae :bacteriology,epidemiology and

clinical manifestation of an occupational pathogen Med Microbiol1999;48:789-

799

9. Barron, N.The pig farmer´s veterinary book. 7ªed. London .Farming press;1972

10. Blood d.c y hederson, j.a. Medicina veterinaria. 2ªed.México D.F. interamericana

;1995



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ANEXOS



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Anexo 1. Características fenotípicas para la identificación de especies de

Erysipelothrix

Anexo 2 .Composición del medio caldo glucosa azida de sodio

Característica

E.rusiopathiae

E. tonsillarum

Hemolisis

Ninguna,α

Ninguna,α

catalasa - -

H2S en agar + +

Producción de ácido a partir de

glucosa

+ +

Producción de ácido a partir de

sacarosa

- +

Formula

g/L

Tripteina

Extracto de carne

Glucosa

Cloruro de sodio

Azida sódica

PH final 7-7.4

15

4.8

7.5

7.5

0.1



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23

Anexo 03. Toma de muestra de hisopado de tonsila de Sus scrofa domesticus.

Anexo 04. Sistema de anaerobiosis para incubación de las muestras .



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24

Anexo 05. Precipitado y turbidez en medio de cultivo caldo glucosa azida.

Anexo 06. Cultivo en Agar soya tripticasa suplementado con sangre.



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25

Anexo 07. Colonias alfa hemolíticas compatibles a Erysipelothrix en agar sangre.



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26

Anexo 08 .Observación microscópica de bacilos Gram ( + )largos y

curvados, compatibles a Erysipelothrix.

Coloración: Gram

Aumento: 1000A



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27

Anexo 09. Prueba de la catalasa .Erysipelothrix es catalasa negativo.

Anexo 10 E. rhusiopathiae E. en agar TSI.(K/A) con producción de H2S.



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28

Anexo 11 E. tonsillarum E. en agar TSI.(A/A) con producción de H2S.



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