taller- luis alvarado...
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AGRADECIMIENTOS
A mi familia que me ha dado todo su amor, comprensión y motivación para salir
adelante.
A mi pollita por su apoyo y cariño incondicional.
A mi nanita querida.
A doña Gabriela por guiarme y ayudarme durante el período del taller.
Al cuerpo docente que me entregó todas las herramientas necesarias para mi futura
vida profesional.
A los auxiliares, guardias, secretarias, tías del casino, el Pato... en fin gente que
siempre me mostró afecto y cariño, a todos ellos muchas gracias.
Y finalmente a todas aquellas personas que de una u otra forma me ayudaron y
apoyaron durante toda mi vida universitaria.
ÍNDICE
Página
1. INTRODUCCIÓN 1 2. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 3 2.1. Origen y distribución 3 2.2. Descripción de la especie 3 2.3. Morfología 4 2.4. Ciclo de crecimiento 6 2.5. Estado durmiente 6 2.6. Propagación 7 2.6.1. Propagación sexual 7 2.6.2. Propagación por división de coronas 8 2.6.3. Propagación por trozos de raíz 10 2.6.4. Propagación por injertos 10 2.6.5. Otros tipos de propagación 11 2.7. Reguladores de crecimiento 12 2.8. Cofactores de enraizamiento 12 3. MATERIALES Y MÉTODOS 13 3.1. Ensayo I 13 3.1.1. Ubicación del ensayo 13 3.1.2. Material 13 3.1.3. Condiciones experimentales 14 3.1.4. Primera recolección de estacas de Paeonia lactiflora Pall. variedad “Sarah Berndhart” 14 3.1.5. Segunda recolección de estacas de Paeonia lactiflora Pall. variedad “Sarah Bernhardt” 15 3.1.6. Tercera recolección de estacas de Paeonia lactiflora Pall. variedad “Festiva Máxima” 16 3.1.7. Evaluaciones 16 3.1.8. Análisis estadístico 17 3.2. Ensayo II 18 3.2.1. Ubicación del ensayo 18 3.2.2. Material y condiciones experimentales 18 3.2.3. Tratamientos 19 3.2.4. Evaluaciones 19 3.2.5. Análisis estadístico 20
4. PRESENTACIÓN Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS 22 4.1. Efecto de aplicaciones de auxinas en el enraizamiento de estacas de Paeonia lactiflora Pall. en tres épocas 22 4.2. Efecto de presencia de yemas y tipos de cortes de raíz en el enraizamiento y brotación de estacas radicales de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva Máxima 29 4.2.1. Número de raíces formadas y crecimiento de raíces totales en largo (cm) 29 4.2.2. Número de yemas vegetativas formadas y número de yemas en total formadas 31 4.2.3. Porcentaje de sobrevivencia y callo 33 5. CONCLUSIONES 36 6. RESUMEN 37
7. ABSTRACT 38
8. LITERATURA CITADA 39
ANEXOS 42
1. INTRODUCCIÓN
En los últimos años la exportación de flores en nuestro país ha ido en aumento.
Según AGROECONÓMICO (2005), éstas llegaron durante el período enero-junio de
2005 a US$ 2,2 millones, cifra que se incrementó en un 26 % con respecto a la
registrada en igual época del año anterior, cuando se vendieron al exterior US$ 1,8
millones. En este escenario la producción de peonías para flor de corte también ha ido
en progreso, pues durante los meses de enero-marzo de 2005 esta especie fue
considerada la tercera flor en exportación, con respecto al volumen, con un 4% de
participación, después del lilium y los tulipanes (ODEPA, 2005).
Es importante señalar que para realizar un cultivo de peonías para producción de
flores de corte, es necesario contar con la corona o rizoma, la que posee tres a cinco
yemas. Este material vegetal es comercializado principalmente por empresas
holandesas y neozelandesas, llegando a Chile en los meses de noviembre y diciembre
(SAEZ, 2003). El arribo de esta especie en esas fechas constituye un aspecto
negativo, ya que el tiempo de plantación adecuado es el otoño, cuando la planta está
durmiente. En consecuencia, las plantaciones a inicio de verano resultan en una
brotación tardía y además al entrar en receso durante el otoño no alcanzan a
acumular suficientes reservas. De modo que se puede considerar a ese año como nulo
en el incremento de yemas potenciales; razón por la cual el segundo año se destinará
a mejorar el enraizamiento y acumulación de reservas, siendo no recomendable
cosechar varas hasta la tercera brotación.
Asimismo en Chile prácticamente no existe un stock de variedades que pueda
ampliar la oferta nacional, pues gran parte de las plantaciones existentes (60-70%)
corresponden a la variedad Sara Bernhardt de color rosado (VERDUGO*, 2005).
Además, se suma a este panorama el elevado valor de la planta de peonía importada,
los que fluctúan entre los 1,8-5,4 €; este precio en algunas variedades puede llegar
hasta los 14 € (ZABOPLANTA, 2005). El alto costo se explica en que el proceso de
obtención de nuevas variedades es largo, pudiendo durar hasta quince años antes de
que se sepan los resultados de un cruce (LA PIVOINERIE D`AOUST, 2005).
Otro punto a destacar es la baja tasa de propagación vegetativa por división de
coronas, lo que ha limitado el rápido desarrollo comercial de este cultivo a pesar de
los buenos augurios comerciales.
En resumen, en el país no se han realizado estudios significativos con respecto a la
perpetuación asexual de las peonías. Por ello es que en esta investigación se
plantearán alternativas para mejorar las perspectivas comerciales del cultivo en Chile.
Considerando los antecedentes señalados anteriormente, se ha planteado la presente
investigación cuyos objetivos son:
-Evaluar el efecto de reguladores de crecimiento y época en la rizogénesis de estacas
aéreas de peonías.
-Evaluar el comportamiento de estacas de raíz con presencia de una o dos yemas,
estacas de raíz con ápices y ramificadas en rizogénesis y brotación.
* VERDUGO,G. Ing. Agrónomo, 2005. Pontificia Universidad Católica Valparaíso. Comunicación personal.
2. REVISION BIBLIOGRÁFICA
2.1. Origen y distribución:
La peonía o “Sho Yo” (la más bella), de acuerdo al vocabulario chino, es una especie
que ha sido cultivada hace muchos siglos y a pesar del tiempo transcurrido el interés
por su belleza sigue vigente (SAEZ, 2003 ,STEVENS, 2000).
Según KAMENETSKY (2003), la peonía es originaria de Mongolia, Asia Central y
China, en este último país esta especie ha sido adoptada como la flor nacional.
De acuerdo con SAEZ (2003) y CHAHIN (2002), las especies de peonías han sido
colectadas también en áreas que van desde el noroeste de Norteamérica, al norte de
África, oeste y centro de Europa y Rusia, especialmente en el medioeste, Pakistán y
norte de la India.
2.2. Descripción de la especie:
Según TEILLIER (2005), la peonía pertenece a la división Angiospermatophyta,
orden Saxifragales, familia Paeoniaceae, género Paeonia.
En la actualidad el género Paeonia cuenta con aproximadamente 35 especies que se
encuentran distribuidas en el hemisferio norte (FERGUSON y SANG, 2001).
Existen dos grupos de peonías según SAEZ (2003), CHAHIN (2002), WILKINS y
HALEVY (1985), por un lado plantas herbáceas perennes y por otros arbustos
caducifolios. De acuerdo a KAMENETSKY (2003), la peonía arbustiva denominada
Paeonia suffruticosa puede llegar a crecer en un rango de 1,5 a 2 metros de altura,
estas se originan a partir de yemas formadas en tallos leñosos que permanecen vivos durante el invierno floreciendo muy temprano en primavera. Las peonías leñosas no
son usadas como flores de corte, a diferencia de la peonía herbácea o Paeonia
lactiflora; en cuyo caso los brotes pueden llegar a medir de 0.5 a 1 metro de altura.
Dentro del género Paeonia existen muchos y variados cultivares, que poseen
características específicas (LA PIVOINERIE D`AOUST, 2005). Según STEVENS
(2000), en el siglo octavo los japoneses desarrollaron más de 300 variedades de esta
especie. La mayoría de los cultivares herbáceos de peonía son derivados de Paeonia
lactiflora Pall. (KAMENESTKY et al., 2002). Existen 400 cultivares de peonías
herbáceas sólo en China y alrededor de 1000 de peonías arbustivas (RAREFOUND,
2005). Lo anterior coincide con lo que señala ROGERS (1995), quien indica que el
número de cultivares comerciales disponibles en todo el mundo corresponden a más
de mil trescientos.
Según KAMENETSKY (2003) algunos de los cultivares comerciales disponibles en
el mercado para la producción de flor de corte de Paeonia lactiflora Pall. son:
“Kansas”, “Edulis Superba”, “Mother`s Choice”, “Karl Rosenfield”, “Mons. Jules
Elie”, “Dr.Alex Fleming”, “Felix Crouse” y “Sarah Bernhardt”.
2.3. Morfología:
Según SAEZ (2003), las peonías herbáceas crecen desde una corona enterrada que
posee grandes raíces carnosas. De acuerdo a BARZILAY et al. (2002) esta corona u
órgano subterráneo perenne corresponde a un brote metamorfoseado denominado
rizoma.
WILKINS y HALEVY (1985), señalan que las hojas de la peonía son largas,
alternadas y pinnadas compuestas. Cada cultivar tiene hojas de un color verde
particular y de formas que van desde muy anchas y partidas a otras muy delgadas.
(SAEZ, 2003).
Las flores son terminales con pétalos largos y conspicuos, los cuales son muy
numerosos, de cinco a diez dependiendo de la especie o tipo de cultivar (WILKINS y
HALEVY, 1985). De acuerdo con WATSON (1992), las flores se caracterizan por ser
hermafroditas y su polinización es entomófila. Según SAEZ (1999), las flores se
presentan en una amplia gama de colores que incluyen, blanco, amarillo, salmón,
crema rosados y rojos, las que están agrupadas en cinco tipos, de acuerdo a la forma,
cantidad y arreglo de pétalos y petaloides. Estos grupos son: simples, japonesas,
anémona, semidobles y dobles.
Las simples son aquellas que poseen cinco o más pétalos en una o dos hileras
alrededor del centro. Las japonesas cuentan con cinco o más pétalos y largos
estambres. La anémona con cinco o más pétalos en muchas hileras con estambres. La
semidoble con cinco o más pétalos externos, presenta una mezcla de pétalos y
estambres situados en el centro. Finalmente, la doble es igual que la anterior, con el
mismo número de pétalos, pero estos desarrollan estambres centrales y carpelos
transformados en pétalos los que conforman el cuerpo principal de la flor (NUSS,
1998 y WILKINS y HALEVY, 1985).
Las peonías poseen yemas que se forman en el rizoma aledaño a la base de los tallos
antiguos cada temporada después de la floración. Estas yemas son la fuente de nuevos
tallos florales, en la primavera siguiente (KAMENETSKY, 2003). De acuerdo con
BARZILAY et al. (2002) las yemas están protegidas por cuatro a ocho hojas
especializadas que recubren firmemente las partes internas. WILKINS y HALEVY
(1985), indican que bajo la flor terminal de la peonía pueden desarrollarse una a tres
yemas florales (en las axilas de las hojas superiores), éstas raras veces abren y son
frecuentemente removidas para incrementar el tamaño de la flor terminal.
2.4. Ciclo de crecimiento:
SAEZ (1999), describe el inicio del ciclo de vida de las plantas de peonías con la
plantación en otoño de las de raíces reservantes, llamadas rizomas por poseer yemas
adventicias.
Según ROGERS (1995), el rizoma de la peonía genera durante ese tiempo una
extensa masa de pelos radicales antes que el suelo se congele o se enfríe.
Una vez pasado el invierno, reinicia su crecimiento cuando el deshielo o la
temperatura del suelo comienzan a subir lentamente en primavera. Aún cuando la
actividad pasa desapercibida, las yemas y las raíces de las peonías siguen creciendo
bajo el suelo hasta que las primeras hojas aparecen en la superficie y el desarrollo se
hace evidente. La función del rizoma de peonía es muy similar a la de un bulbo, ya
que el crecimiento durante la primavera hasta la aparición de hojas funcionales es
consecuencia de los nutrientes almacenados durante la temporada pasada. Las
peonías, en general, florecen desde finales de primavera a mediados de verano. Una
vez finalizada la cosecha, la masa de follaje continúa el proceso vegetativo generando
las reservas que serán almacenadas en los rizomas hasta que en otoño las plantas
entren en receso y el follaje pase a colores rojos, se marchite y caiga (SAEZ, 1999),
esto coincide con lo señalado por ERICES (2003), quien identificó un ciclo
fenológico similar en Quillota, V región Chile.
2.5. Estado durmiente:
La duración del estado durmiente en la planta dura tres a cuatro meses, posterior a la
senescencia y abscisión del follaje en otoño. El estímulo para su ocurrencia es
independiente del ambiente (BARZILAY et al., 2002; KAMENETSKY et al., 2002;
WILKINS y HALEVY, 1985).
STYLER (1974), define el período de dormición o fase durmiente como un
fenómeno complejo de preparación de las plantas de peonías para una extensa etapa
de frío, la cual consiste en una suspensión temporal del crecimiento visible de
cualquier estructura de la planta que contenga meristema. Este autor compara dicho
proceso en relación a lo que sucede con los árboles frutales de hoja caduca como el
duraznero. Además indica que el término de este crecimiento y la formación de
yemas es producto de una o más auxinas, producidas en la noche por las hojas, las
que disminuyen su concentración durante el día, pero de noche se incrementan de
acuerdo al largo de ésta hasta inhibir la actividad del tallo y promover la función de
almacenaje de reservas para el próximo año.
Según ROGERS (1995), BYRNE y HALEVY (1986), el frío es un requerimiento
necesario, en una determinada cantidad, para generar brotes y desarrollar flores. Para
KAMENETSKY et al. (2002) las bajas temperaturas no tienen efecto alguno en la
iniciación floral.
Los niveles de temperatura y largos de dormición pueden ser diferentes entre
especies y cultivares, pero rangos específicos para cada una de ellas aún no han sido
determinados. Un mínimo de 480 horas con temperaturas bajo 7,7º C es suficiente
para quebrar la dormición en la mayoría de las especies herbáceas (ROGERS, 1995).
2.6. Propagación:
2.6.1. Propagación sexual
La producción comercial de especies botánicas de peonías se realiza por semillas
sin embargo la producción de cultivares no se hace a través de este método. Esto se
debe, en primer lugar, a que los cultivares cuentan con una elevada variación de
material genético. En segundo lugar, no todos los cultivares son capaces de producir
semillas (ROGERS, 1995).
De acuerdo a LA PIVOINERIE D`AOUST (2005), la propagación sexual es acertada
cuando se desea desarrollar nuevas variedades, ya que es la única manera de llegar a
este objetivo. Sin embargo, esta vía no es adecuada cuando se trata de una producción
comercial, puesto que la propagación resulta lenta en comparación al método asexual.
Con respecto a esto ROGERS (1995), señala que las semillas tardan cinco a seis años,
desde que se cosechan hasta que la planta se encuentra madura, es decir, estas poseen
la capacidad de florecer y producir comercialmente.
2.6.2. Propagación por división de coronas
Por más de 2000 años las peonías herbáceas han sido incrementadas por medio de la
división, ésta consiste en el corte de la corona de la planta en dos o más partes, cada
una con una o más yemas latentes y con un número apreciable de raíces. (ROGERS,
1995).
De acuerdo a SAEZ (1999) y ROGERS (1995), el método más efectivo de
propagación, es mediante la división de los rizomas o coronas, siendo la época más
adecuada el otoño. Es importante mencionar que únicamente deben seleccionarse
tejidos que se presenten robustos y sanos.
En este método asexual se involucran divisiones mitósicas de las células, que
duplican el genotipo de la planta; esta duplicación genética se denomina clonación
(HARTMANN y KESTER, 1995), es decir, las nuevas plantas son una réplica exacta
de la planta de la cual provienen (ROGERS, 1995).
SAEZ (1999), informa que el proceso de división consiste en levantar las plantas
después que han entrado en dormición y han sido podadas, luego hay que excavar
cuidadosamente alrededor y bajo las plantas, teniendo cuidado de no quebrar las
raíces. Una vez levantadas, las plantas deben ser lavadas a presión. Después, debe
cortarse con un cuchillo muy afilado y estéril en divisiones con tres a cinco yemas,
con una gran porción de raíces carnosas. Indicaciones de la UNIVERSITY OF
ALBERTA (2003), después de cada corte con el cuchillo este debiera lavarse con
una solución desinfectante (fungicida), para evitar ataques de patógenos.
Las raíces carnosas que se encuentran bajo la corona, según SAEZ (2003), deben
cortarse hasta obtener tocones de 10 a 15 cm, es decir, quedan sin presencia de
raíces anuales. Los cultivares muy caros o escasos, pueden ser cortados en pequeños
trozos de una o dos yemas cada uno. Trozos muy pequeños o divisiones muy
frecuentes causan una pérdida de vigor y atrasan la floración.
HOWARD (1968), expone que la profundidad de plantación es un aspecto importante
a considerar, ya que trozos de rizomas ubicados a 20 cm debajo de la superficie del
suelo, contando desde la yema, tienen efectos adversos en la sobrevivencia de la
planta de peonía. En cambio la ubicación a 5 cm bajo la superficie del suelo o a nivel
del suelo, tienen altas producciones de flores en comparación con las plantaciones
más profundas
De acuerdo a ROGERS (1995), las peonías herbáceas deben ser levantadas para ser
divididas luego de haber pasado en el suelo tres a cuatro años, en los cuales la corona
ha desarrollado numerosas yemas (de 10 a 20).
Para SAEZ (1999), no debiese esperarse que la totalidad de las plantas cumplan 10
años produciendo, ya que en el momento de dividir habrá que esperar nuevamente
dos a tres temporadas para contar con una determinada producción.
Al contrario de lo descrito para peonías herbáceas la propagación de peonías
arbustivas por división es muy limitada (ROGERS, 1995).
2.6.3. Propagación por trozos de raíz
De acuerdo a ROGERS (1995), existe un método de propagación asexual por trozos
de raíces. Otras herbáceas perennes tales como Anemonas, Bergenia, Papaver
orientale y Phlox, tienen la capacidad de regenerarse por medio de este método.
Un número limitado de peonías herbáceas posee la habilidad genética de regenerarse
exitosamente por trozos de raíces; éstas especies corresponden a Paeonia officinalis,
Paeonia peregrina y Paeonia tenuifolia. Sin embargo, ROGERS (1995) señala que
se ha informado de este manejo sólo en algunos cultivares de la especie Paeonia
lactiflora, que logran desarrollar yemas adventicias en trozos de raíces. La habilidad
del género Paeonia para regenerarse por medio de las raíces se encuentra asociada a
la particular habilidad para producir yemas adventicias, que son las precursoras de
yemas y por consiguiente de nuevos brotes (ROGERS, 1995).
Algunas estacas de raíz de cultivares de peonías herbáceas desarrollan una extensa
formación de callo en los cortes terminado el primer año y desarrollan yemas
adventicias durante el segundo año. Sin embargo, el callo no es un precursor de
nuevas yemas (ROGERS, 1995).
2.6.3. Propagación por injertos
De acuerdo a ROGERS (1995) en Japón la propagación por medio de injertos ha
sido el método más tradicional para incrementar el stock de material en las peonías
arbustivas por siglos. La manera más efectiva para proceder en este tipo de
propagación es, en primer lugar, tomar secciones o esquejes de la peonía arbustiva
deseada y luego injertarlas sobre el patrón de otra peonía arbustiva. No obstante, hay
otro método más efectivo como el injerto de esquejes del cultivar deseado (peonía
arbustiva) sobre un patrón de una peonía herbácea (TAVALLINI, 1997).
Un cincuenta por ciento de éxito en el injerto es considerado satisfactorio en la
propagación de peonías arbustivas (ROGERS, 1995).
En el caso de las peonías herbáceas sólo algunos cultivares pueden incrementar su
stock mediante los injertos (ROGERS, 1995).
La época más favorable para realizar injertos en Paeonia lactiflora es a finales de
verano (SAEZ, 1999).
2.6.4. Otros tipos de propagación asexual
Un grupo pequeño de peonías arbustivas son todavía propagados asexualmente por
acodos. Este método involucra el desarrollo de raíces mientras el brote todavía se
encuentra unido a la planta madre. Este tipo de propagación en la actualidad se
utiliza escasamente (ROGERS, 1995).
La micropropagación ha tenido éxito en algunos cultivares arbustivos, sin embargo
este proceso resulta lento y las plantas jóvenes son muy susceptibles a ataques de
patógenos. La propagación por estacas en algunos laboratorios ha resultado exitosa,
sin embargo estos logros no han sido reproducidos en una plataforma comercial
(ROGERS, 1995). Según TAVALLINI (1997), la propagación asexual por medio de
estacas de Paeonia suffruticosa es practicado principalmente por aficionados. Este
proceso consiste en la extracción de esquejes apicales de 10 a 15 cm con una pequeña
porción de madera. Luego se eliminan las hojas basales, para posteriormente ubicar
los esquejes en camas frías hasta la formación de raíces. Se debe mencionar que el
tiempo propicio para este procedimiento es la primavera y el verano. Este tipo de
propagación también puede llevarse a cabo en Paeonia lactiflora Pall, de acuerdo a lo
señalado por KAMENETSKY (2003).
2.7. Reguladores de crecimiento:
Según HARTMANN y KESTER (1995); ROJAS y RAMÍREZ (1993), el empleo de
reguladores de crecimiento como las auxinas estimulan el crecimiento y desarrollo de
las raíces adventicias en estacas de tallo y de hoja.
Para uso general en el enraizamiento de estacas de tallo de la mayoría de las especies
de plantas se recomienda el ácido indolbutírico (IBA) o el ácido naftalenacético
(ANA). No obstante, mezclas de estas sustancias estimuladoras son más efectivas
que cualquiera de sus componentes aislados (HARTMANN y KESTER, 1995).
2.8. Cofactores de enraizamiento:
De acuerdo con HARTMANN y KESTER, (1986), existen cofactores de ocurrencia
natural que al parecer actúan sinérgicamente con el ácido indolacético para promover
el enraizamiento. Según ROJAS y RAMÍREZ (1993), estos cofactores corresponden
a elementos tales como la biotina y los compuestos terpenlactónicos y fenólicos.
3. MATERIALES Y MÈTODOS
3.1. Ensayo I:
3.1.1. Ubicación del ensayo
El ensayo se realizó en la Estación Experimental “La Palma”, perteneciente a la
Facultad de Agronomía de la Universidad Católica de Valparaíso, ubicada en la
provincia de Quillota, V Región. El experimento se llevó a cabo desde el 30 de
octubre del 2004 hasta el mes de junio de 2005.
3.1.2. Material
El material utilizado para este ensayo correspondió a estacas de tallo de Paeonia
lactiflora Pall. de las variedades Sarah Bernhardt y Festiva Máxima. Los tejidos
fueron extraídos de plantas de aproximadamente tres años (desde su plantación),
ubicadas en el sector de Rautén, Quillota, V región.
El material correspondiente a la variedad Sarah Bernhardt se recolectó en dos
oportunidades, una el 30 de octubre de 2004 y otra el 25 de febrero de 2005. Las
estacas de la variedad Festiva Máxima se recolectaron el día 15 de abril de 2005.
Para cada una de las recolecciones se cortaron tallos basales con aproximadamente
tres a cuatro hojas. Posteriormente se seleccionaron estacas de entre 10 a 15 cm de
largo. Este proceso se llevó a cabo mediante una tijera podadora que se desinfectaba
en una solución fungicida cada vez que se efectuaba un corte.
En la selección del material vegetativo se utilizaron dos tipos de estacas: basales y
apicales. Para la variedad Festiva Máxima sólo se recolectaron estacas basales. A las
estacas basales se les dejaron dos hojas, en tanto que a las apicales sólo se mantuvo
una hoja. Luego de la selección del material, las estacas se sumergieron en una
solución de hipoclorito de sodio al 1% durante 30 minutos.
3.1.3. Condiciones experimentales
El ensayo se desarrolló en un invernadero techado de 18 m2. Esta estructura contaba
con un sistema de riego por neblina, controlado eléctricamente mediante la utilización
de un programador. La frecuencia de mojamiento se mantuvo constante en dos
minutos de riego por cada dos horas.
Como sustrato para el enraizamiento se utilizó una mezcla de perlita mas turba en
proporciones 1:1 (v/v). Previo a la mixtura se humedeció la turba que venía
compactada. El sustrato una vez mezclado fue depositado en bandejas de cepellones
de 135 casilleros, los cuales fueron lavados, desinfectados (hipoclorito de sodio al
1%) y situados en el invernadero bajo el sistema de nebulización.
3.1.4. Primera recolección de estacas de Paeonia lactiflora Pall. variedad “Sarah
Bernhardt”
Para la primera recolección de estacas (30 de octubre de 2004) se realizó un
tratamiento auxínico mediante el método de inmersión. En él se sumergieron los
extremos basales de los dos tipos de estacas por aproximadamente un minuto en
diversas concentraciones de ácido indolbutírico (IBA).
CUADRO 1. Caracterización de los tratamientos para la primera recolección de estacas.
T1 Estaca basal sin aplicación de auxina exógena; inmersión en agua por 1 minuto.
T2 Estaca basal con IBA 500 ppm; inmersión por 1 minuto.
T3 Estaca basal con IBA 1000 ppm; inmersión por 1 minuto.
T4 Estaca apical sin aplicación de auxina exógena; inmersión en agua por 1 minuto.
T5 Estaca apical con IBA 500 ppm; inmersión por 1 minuto.
T6 Estaca apical con IBA 1000 ppm; inmersión por 1 minuto.
3.1.5. Segunda recolección de estacas de Paeonia lactiflora Pall. variedad “Sarah
Bernhardt”
Durante la segunda recolección de estacas (25 de febrero del 2005) al igual que en el
ensayo anterior se efectuaron tratamientos auxínicos con los dos tipos de tejidos
utilizando seis tratamientos. A diferencia del anterior ensayo algunas concentraciones
de IBA fueron modificadas.
CUADRO 2. Caracterización de los tratamientos para la segunda recolección de estacas.
T1 Estaca basal sin aplicación de auxina exógena; inmersión de agua por 1 minuto.
T2 Estaca basal con IBA 250 ppm; inmersión por 1 minuto.
T3 Estaca basal con IBA 500 ppm; inmersión por 1 minuto.
T4 Estaca apical sin aplicación de auxina exógena; inmersión de agua por 1 minuto.
T5 Estaca apical con IBA 250 ppm; inmersión por 1 minuto.
T6 Estaca apical con IBA 500 ppm; inmersión por 1 minuto.
3.1.6. Tercera recolección de estacas de Paeonia lactiflora Pall. variedad “Festiva
Máxima”
Para la tercera recolección de estacas (15 de abril de 2005) se efectuaron
tratamientos con IBA (ácido indolbutírico), ANA (ácido naftalenacético), etileno y
mezclas de IBA más ANA. Se utilizaron sólo tejidos basales. Para este ensayo se
efectuaron 14 tratamientos.
CUADRO 3. Caracterización de los tratamientos para la tercera recolección de estacas.
T1 TESTIGO Inmersión en Agua T2 250 ppm T3 500 ppm T4 1000 ppm T5
IBA
2000 ppm T6 250 ppm T7 500 ppm T8 1000 ppm T9
ANA
2000 ppm T10 250 ppm + 250 ppm T11 500 ppm + 500 ppm T12 1000 ppm + 1000 ppm T13
IBA + ANA
2000 ppm + 2000 ppm T14 ETILENO 10 ppm
3.1.7. Evaluaciones
Se llevaron a cabo las siguientes mediciones para los tres ensayos:
1) Porcentaje de sobrevivencia (%).
2) Porcentaje de enraizamiento (%)
3) Porcentaje de estacas con formación de callo (%).
Tanto para el primer ensayo como el segundo, se hicieron dos evaluaciones: la
primera evaluación del primer ensayo se efectuó el 4 de enero de 2005 (65 días
después del tratamiento) y la segunda el 19 de marzo de 2005 (138 días
postratamiento). En tanto que para el segundo ensayo se evaluaron en primer lugar
el 19 de abril de 2005 (53 días después del tratamiento) y en segundo el día 19 de
mayo de 2005 (83 días postratamiento).
El tercer ensayo sólo se evaluó una vez el día 15 de junio de 2005, a 60 días después
del tratamiento.
3.1.8. Análisis estadístico
Los dos primeros ensayos se llevaron a cabo utilizando un diseño completamente al
azar, con seis tratamientos con 13 repeticiones por cada uno. La unidad experimental
correspondió a una estaca.
Para el tercer ensayo se utilizó un diseño completamente al azar, con 14 tratamientos
y 16 repeticiones por cada uno. La unidad experimental correspondió a una estaca.
No se efectuaron análisis estadísticos en los ensayos, ya que los resultados no lo
permitieron.
3.2. Ensayo II:
3.2.1. Ubicación del ensayo
El ensayo se realizó en la Estación Experimental “La Palma”, perteneciente a la
Facultad de Agronomía de la Pontificia Universidad Católica de Valparaíso, ubicada
en la provincia de Quillota, V Región. El experimento se llevó a cabo desde la última
semana de abril de 2005 hasta el 8 de agosto de 2005.
3.2.2. Material y condiciones experimentales
El material utilizado correspondió a diferentes tipos de tejidos de rizomas (de tres
años en producción) de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva Máxima. El material
fue recolectado el 23 de abril de 2005.
Luego de la extracción de los rizomas, éstos fueron depositados en cajas y lavados a
presión por medio de manguera, con el objetivo de sacar el suelo adherido para
posteriormente seleccionar los trozos según los tratamientos descritos.
Los cortes fueron realizados con un chuchillo afilado y desinfectado en hipoclorito
de sodio al 1%. Posteriormente estos trozos fueron desinfectados con Furadan 4F en
una concentración de 4cc en 15 l de agua mediante inmersión durante un minuto.
Los trozos seleccionados según los tratamientos, fueron ubicados en maceteros de 5
lt de capacidad, forrados en polietileno transparente. Sobre cada macetero se colocó
sustrato en base a una mezcla de turba más perlita en relación 1:1 (v/v). Previo a la
mezcla la turba debió humedecerse ya que venía compactada. Cada trozo fue ubicado
en el macetero a una profundidad de 2-3 cm.
Los maceteros fueron trasladados en un inicio el día 23 de abril de 2005 a un
umbráculo cubierto de malla semi-sombra al 50 %. Luego de 67 días en el lugar, los
ejemplares fueron trasladados el día 29 de junio de 2005, a un invernadero de 18
m2 acondicionado con Mist y puestos sobre camas calientes a 20º C. Los trozos
fueron ubicados sobre esta estructura con sus respectivas bolsas de polietileno
transparente, pero sin maceteros.
Para ambos sitios se empleó un sistema de riego manual por medio de una
manguera.
3.2.3. Tratamientos
Se determinaron cuatro tratamientos con diversos tipos de tejidos el día 23 de abril de
2005.
CUADRO 4. Tratamientos establecidos para el Ensayo II.
T1 Estaca de Rizoma con 2 yemas.
T2 Estaca de Rizoma con 1 yema.
T3 Estaca de Raíz con Ápice.
T4 Estaca de Raíz Ramificada.
3.2.4. Evaluaciones
De acuerdo a los objetivos propuestos se llevaron a cabo las siguientes mediciones:
1) Porcentaje de sobrevivencia (%).
2) Porcentaje de trozos con formación de callo (%).
3) Porcentaje de enraizamiento (%).
4) Número de raíces formadas.
5) Número de yemas formadas
6) Número de yemas vegetativas formadas.
7) Crecimiento total en largo (cm) de todas las raíces formadas.
Las evaluaciones se llevaron a cabo el 8 de agosto de 2005, a 108 días de efectuados
los tratamientos.
Previo a las evaluaciones se midieron algunas variables tales como:
• Peso: se registró el peso inicial de cada uno de los trozos pertenecientes a los
cuatro tratamientos establecidos.
• Nº Yemas: se contaron las yemas de cada tejido seleccionado.
En la Figura 1 se encuentran las caracterizaciones de los tratamientos establecidos.
3.2.5. Análisis Estadístico
La unidad experimental correspondió a un grupo de seis plantas. Se realizaron tres
repeticiones. El diseño experimental correspondió a un diseño completamente al azar,
para ello se utilizó el método de la tómbola.
Para determinar si existió diferencia entre los tratamientos se analizaron las variables
en estudio a través de una prueba ANDEVA. Cuando se determinó que existió
diferencia significativa, se llevó a cabo una separación de medias utilizando el test
de Tukey con un nivel de significancia de un 5 %.
Peso Promedio
(g)
Rango Máximo y Mínimo de los pesos (g)
Número Inicial de
Yemas Fotos
Rizoma de 1 yema 79,11 125,5 - 17,2 1
Rizoma de 2 yemas 166,30 347,8 - 66,6 2
Estaca de raíz con
ápice 9,67 15,6 - 6,0 0
Estaca de raíz
ramificada 42,39 111,8 - 8,6 0
FIGURA 1. Caracterización de los tratamientos establecidos en el Ensayo II.
4. PRESENTACIÓN Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS
4.1. Efecto de aplicaciones de auxinas en el enraizamiento de estacas aéreas de
Paeonia lactiflora Pall. en tres épocas:
Ninguno de los tratamientos establecidos en las 3 épocas de recolección, indujo a la
formación de raíces bajo las condiciones establecidas en el ensayo, por lo tanto se
llevaron a cabo sólo análisis descriptivos.
Los resultados obtenidos para el crecimiento radical, sobrevivencia y formación de
callo para las dos primeras recolecciones se detallan en los Cuadros 1 y 2.
CUADRO 5. Efecto de los tratamientos en estacas obtenidas en octubre (30/10/2004) en dos épocas de evaluación.
Primera evaluación (04/01/2005) Segunda evaluación (19/03/2005)
Tratamiento % Sobrevivencia*
% de Enraizamiento
% de Formación de
Callo % Sobrevivencia
T1 (Basal,sin IBA) 100,00 0 76,92 0
T2 (Basal,500 ppm) 61,54 0 61,54 0
T3 (Basal,1000 ppm) 53,85 0 46,15 0
T4 (Apical,sin IBA) 53,85 0 23,1 0
T5 (Apical, 500 ppm) 53,85 0 23,08 0
T6 (Apical,1000 ppm) 15,38 0 15,38 0 *Se consideró muertas aquellas estacas que presentaban necrosis tanto a nivel externo como interno de la totalidad del tejido. Se utilizaron 13 estacas por cada tratamiento.
CUADRO 6. Efecto de los tratamientos en estacas obtenidas en febrero (25/02/2005) en dos épocas de evaluación.
Primera evaluación (09/04/2005) Segunda evaluación (19/05/2005)
Tratamiento % Sobrevivencia*
% de Enraizamiento
% de Formación de Callo % Sobrevivencia
T1 (Basal,sin IBA) 7,7 0 0 0
T2 (Basal,250 ppm) 38,46 0 23,08 0
T3 (Basal,500 ppm) 92,31 0 38,46 0
T4 (Apical,sin IBA) 30,8 0 15,38 0
T5 (Apical, 250 ppm) 15,38 0 15,38 0
T6 (Apical,500 ppm) 23,08 0 23,08 0 *Se consideró muertas aquellas estacas que presentaban necrosis tanto a nivel externo como interno de la totalidad del tejido. Se utilizaron 13 estacas por cada tratamiento. La primera recolección de los tejidos de Paeonia lactiflora Pall. variedad Sarah
Bernhardt se efectuó en el período de pre-floración el día 30 de octubre de 2004. En
tanto que la segunda recolección se realizó el día 25 de febrero de 2005 en el período
de post-floración.
En la primera evaluación de las dos primeras recolecciones se observó formación de
callo en los extremos basales de las estacas tal como se aprecia en la Figura 2. Esta
formación de tejido desdiferenciado se mostró en su mayoría en estacas de tejidos
basales de la plantas. En las evaluaciones posteriores en el sector en donde se
desarrolló el callo, no hubo presencia de raíces. Esto confirma lo que señala
HARTMANN y KESTER (1995), quienes indican que la formación de este tipo de
tejido es independiente de la formación de raíces. Sin embargo, indica actividad de
división celular.
FIGURA 2. Estaca de tallo de Peonia lactiflora Pall. variedad Sarah Bernhardt
con formación de callo en el extremo basal.
En la primera recolección se pudo evidenciar durante la primera evaluación que el
efecto del ácido indolbutírico en la formación del tejido desdiferenciado en la estaca
no presentó efectos positivos. Esta respuesta puede presentarse en algunas especies
tal como lo afirma HENRÍQUEZ (2004), en estudios sobre Morus alba, en que las
estacas sin aplicaciones exógenas de auxinas presentaron mejores resultados en la
formación de callo que las estacas con aplicaciones de IBA. En la segunda
recolección no se aprecian los mismos resultados, probablemente por cambios en los
contenidos endógenos de reguladores. Una situación similar de respuestas diferentes
en las distintas épocas del año es descrito por SCHMIDT (2002), en claveles.
Por otra parte las diferencias entre las dos recolecciones pueden deberse a que la
recolección del material de febrero corresponde a plantas que iniciaban la entrada en
receso. Se observó que los extremos apicales de la hoja eran de color rojizo
posteriormente se necrosan.
En la primera época de recolección de estacas período pre-floral y después de la
máxima expresión vegetativa pareciera que existe una tendencia a una mayor
formación de tejido cicatricial en las estacas basales que en las apicales;
probablemente esto está relacionado con el porcentaje de sobrevivencia. Se observó
además necrosis de tejido (internos como externos) en el extremo basal de las estacas
tratadas con 500 y 1000 ppm de ácido indolbutírico. La muerte de tejidos pudo
haberse debido a un ataque de patógenos oportunistas o bien al efecto de las dosis de
la auxina (Figura 3). El ácido indolbutírico probablemente produjo un efecto tóxico
sobre el tejido basal de las estacas, ya que se trata de un ácido y pudo producir
deshidratación del tejido y toxicidad, llegando a dañar inclusive los haces vasculares
(ELÍAS, 1995). La necrosis fue más notoria en estacas apicales que en las estacas
basales; probablemente esto pudo deberse a que las estacas apicales son más
delgadas que las estacas basales, y por lo tanto, se deshidratarían con mayor facilidad
bajo el efecto del ácido indolburírico.
FIGURA 3. Coloración oscura en la base de la estaca basal de Paeonia lactiflora
Pall. variedad Sarah Bernhardt.
En la segunda evaluación los porcentajes de sobrevivencia y formación de callo
fueron nulos, ya que la totalidad de los tejidos tratados presentaron necrosis en la base
de la estaca tanto interna como externamente, acompañado de una gran
deshidratación.
El no haber tenido efecto de los tratamientos sobre la formación de raíces pudo haber
estado relacionado con la influencia de algunos cofactores de enraizamiento. Estas
sustancias son de ocurrencia natural y podrían actuar según HARTMANN y
KESTER (1995), de manera sinérgica con las auxinas para promover el
enraizamiento. Otra causa que podría explicar el efecto nulo ante las aplicaciones
exógenas de reguladores de crecimiento sería la presencia de algunos inhibidores
endógenos del enraizamiento. Esto se afirma en estudios de dos especies de vides, en
los cuales se identificó una cantidad mayor de inhibidores en Vitis berlandieri (difícil
de enraizar), en cambio en Vitis vinífera que enraiza con facilidad estos productos se
encuentran en menor cantidad (HARTMANN y KESTER, 1986). Esta presencia de
inhibidores pudiese explicar las diferencias de enraizamiento que se informan entre
Paeonia lactiflora y Paeonia suffruticosa.
No se midió el efecto de las hojas de Paeonia lactiflora sobre la formación de raíces,
pese a que según HARTMANN y KESTER (1995), las hojas son grandes productores
de auxina endógena, ya que tempranamente necrosaron y se abscisionaron.
En consideración a la respuesta obtenida al aplicar IBA se montó el tercer ensayo. En
este último el porcentaje de enraizamiento fue nulo al igual que los ensayos
anteriores, esto confirmaría de alguna manera que el problema podría ser de
cofactores y /o presencia de inhibidores.
ROGERS (1995), señala que la propagación por estacas en Paeonia lactiflora Pall.
es un método que no es comercialmente factible. TAVARELLI (1997), establece que
el enraizamiento por estacas sólo ha tenido éxito en Paeonia suffruticosa.
El problema del enraizamiento de Paeonia lactiflora Pall. probablemente no estaría
relacionado con el tipo y las dosis del regulador de crecimiento empleado (IBA,
ANA, etileno). La respuesta de estas estacas recalcitrantes al parecer sería específica.
Pese a que los resultados no fueron positivos KAMENESTKY (2003), señala que una
de las formas de propagación de Paeonia lactiflora es el enraizamiento de estacas.
La literatura consultada no entrega mayores antecedentes sobre esta respuesta.
4.2. Efecto de presencia de yemas y tipos de cortes de raíz en el enraizamiento y
brotación de estacas radicales de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva
Máxima.
4.2.1. Número de raíces formadas y crecimiento de raíces totales en largo (cm)
Para la variable número de raíces formadas, se determinó que hay efecto de los
tratamientos. El rizoma con dos yemas produce el mayor número de raíces formadas;
los otros tratamientos no presentaron diferencias entre sí. En cuanto al crecimiento de
largo de raíces totales (cm) los tratamientos con rizomas presentaron efectos y
diferencias entre sí. El rizoma con dos yemas produce un mayor crecimiento de largo
de raíces totales (cm) en relación a los restantes tejidos (Cuadro 3).
Se puede observar que los porcentajes de enraizamiento para tres de los cuatro
tratamientos fueron superiores al 60%. El tratamiento que produjo los más altos
porcentajes de enraizamiento fue el rizoma de dos yemas.
CUADRO 7. Porcentaje de enraizamiento de cada tratamiento y efecto de estos sobre el número de raíces formadas, y crecimiento de largo de raíces (cm) de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva Máxima.
% de Enraizamiento
Nº de Raíces Formadas
Crecimiento de largo raíces totales (cm)
T1 (Rizoma con 1 yema) 77,7 ab1 6,2 b1 6,49 b T2 (Rizoma con 2 yemas) 94,4 a 12,89 a 10,12 a T3 (Estaca de raíz con ápice) 44,4 c 1,22 b 0,49 c T4 (Estaca de raíz ramificada) 61,1 bc 1,33 b 1,35 c
1 Números seguidos de letras diferentes indican efecto de los tratamientos según test de Tukey al 95% de confiabilidad.
Todos los tratamientos establecidos produjeron alguna formación de raíz. Esto
confirma lo que señala ROGERS (1995), que divisiones de trozos de rizomas con
una y dos yemas, al igual que estacas de raíz pueden desarrollar raíces.
La producción de raíces por parte de los diferentes tejidos tratados se originó en
invierno. Esto coincide con lo señalado por SAEZ (2000), quien observó el mismo
fenómeno en la misma época en plantas de Paeonia lactiflora en producción.
La capacidad para producir raíces, probablemente estaría explicada por la presencia
de yemas en los tejidos, ya que los trozos que poseen yemas produjeron un mayor
número de raíces que los tratados sin yemas. Esto podría confirmar lo que señalan
HARTMANN y KESTER (1995), quienes indican que las yemas son grandes
productoras de auxinas endógenas. Según ROJAS y RAMÍREZ (1993), el
crecimiento de la raíz está estimulado por auxinas, principalmente por el ácido
indolacético.
Otra causa para explicar este fenómeno podría radicar en el peso del trozo
seleccionado. Los pesos promedios de los tejidos establecidos al inicio de la
experimentación podrían tener relación con el número de raíces formadas. El rizoma
de dos yemas en promedio fue el tejido más pesado y por lo tanto el que más raíces
produjo. La influencia del peso sobre la producción de raíces se explicaría que en
trozos más grandes habría una mayor cantidad de reservas o fotoasimilados. Esto son
producidos por la planta durante la temporada pasada (SAEZ, 2000).
Ante esto ROGERS (1995), señala que divisiones en trozos más pequeños demoran
más en producir flores comerciales que las divisiones con trozos mayores. También
esto coincide con lo señalado por ASKEW y HOLLAND (1984), quienes indican que
las peonías necesitan una división con tres a cuatro raíces carnosas de gran magnitud
para lograr una producción deseable en menos tiempo.
4.2.2. Número de yemas vegetativas formadas y número de yemas en total formadas.
Para la variable número de yemas vegetativas formadas, los tratamientos con rizomas
tuvieron mejores efectos que las estacas de raíz. En cuanto al número de yemas
totales formadas los tratamientos con rizomas presentaron efectos y diferencias entre
sí a diferencia de las estacas de raíz. El rizoma con dos yemas produce un mayor
número de yemas totales en relación a los restantes tejidos (Cuadro 4).
CUADRO 8. Efecto de los tratamientos sobre el número de yemas vegetativas
formadas y número de yemas totales formadas de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva Máxima.
Nº de yemas vegetativas formadas
Nº de yemas totales formadas
T1 (Rizoma con 1 yema) 1,49 a1 1,72 b T2 (Rizoma con 2 yemas) 1,61 a 2,9 a T3 (Estaca de raíz con ápice) 0 b 0 c T4 (Estaca de raíz ramificada) 0,33 b 0,33 c
1 Números seguidos de letras diferentes indican efecto de los tratamientos según test de Tukey al 95% de confiabilidad.
Sólo las estacas de raíz con ápice (T3) fueron incapaces de desarrollar yemas
vegetativas y reproductivas nuevas (Figura 4). Las estacas con yemas, independiente
de la cantidad inicial que poseían, formaron nuevas yemas, este resultado es
coincidente con la afirmación de ROGERS (1995), quien indica que las estacas de
raíz forman yemas al segundo año de ser separadas de la corona. En esta
investigación se analizó la formación de nuevas yemas el mismo año de la
subdivisión.
a)
b)
FIGURA 4. Rizoma de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva Máxima con yema
vegetativa (a) y rizoma con yemas reproductivas (b).
Por otro lado ROGERS (1995), indica que la capacidad de las estacas de raíz para
producir yemas radicaría en un traspaso hormonal proveniente de la corona de la
cual se separaron. De acuerdo con HARTMANN y KESTER (1995), los rizomas
tienen la capacidad de producir yemas adventicias.
La capacidad para producir yemas al igual que la producción de raíces probablemente
estaría relacionada con la cantidad de reservas presentes en los diversos tejidos, por
lo tanto los trozos más pesados producirían más yemas también. En este caso las
estacas de raíz con ápice no cumplen con esta condición, ya que probablemente la
baja cantidad de reservas impida la formación de yemas.
4.2.3. Porcentajes de sobrevivencia y callo. El porcentaje de sobrevivencia de todos los tejidos tratados fue alto. Los tratamientos
T1, T2 y T4 presentaron un 100% de sobrevivencia, a excepción del T3 que presentó
un 88,9 %. No hubo formación de callo en ninguno de los tratamientos.
Este resultado puede deberse a que tejidos de la peonía poseen compuestos fenólicos
que protegen a la planta ante ataques de bacterias y hongos (ROGERS, 1995) sin
embargo, en los pocos trozos que se encontraron muertos se encontraron ataques de
Rizoctonia sp. (Figura 5, Anexo 1).
Este patógeno ataca a las peonías cuando los tejidos sufren daños mecánicos al inicio
y durante la plantación, además de tener suelos pobremente drenados (STEVENS et
al. ,1993). Otra razón radicaría en la susceptibilidad mayor que poseen los tejidos con
baja cantidad de reservas, según lo que indica ROGERS (1995).
FIGURA 5. Trozo de rizoma de Paeonia lactiflora Pall. variedad Festiva Máxima
atacado por Rizoctonia sp.
Probablemente los trozos con yemas y estacas de raíz pueden producir una planta, ya
que son capaces de formar raíces y yemas adventicias. Esto confirma lo que señala
ROGERS (1995), para la división de este tipo de tejidos.
Es por ello que sería importante en investigaciones posteriores conocer el tiempo
específico que tardan los trozos seleccionados en formar una planta adulta y la
cantidad de material que se puede obtener de un rizoma de peonías para producir de
forma comercial.
5. CONCLUSIONES
Bajo las condiciones en las cuales se desarrolló este ensayo en la Estación
Experimental “La Palma”, Quillota se puede afirmar lo siguiente:
El enraizamiento de estacas aéreas de Paeonia lactiflora Pall. variedades Sarah
Bernhardt y Festiva Máxima presenta un alto grado de dificultad, la aplicación de
ácido indolbutírico, ácido naftalenacético, mezcla de ambos y etileno en diferentes
dosis y épocas no produjeron raíces.
La técnica de propagación por estacas radicales en otoño es efectiva. Estacas de dos
yemas, de una yema, estacas sin yemas con ápices y estacas radicales ramificadas
son capaces de enraizar, sin embargo los mejores porcentajes de enraizamiento,
sobrevivencia y largos de raíces se obtienen en forma proporcional a la cantidad de
yemas y / o al peso de los trozos.
Las estacas de raíces son capaces de generar nuevas yemas a excepción de los trozos
con ápices al menos en los primeros cinco meses a partir del implante en la cama de
propagación.
“Propagación de Paeonia lactiflora Pall. mediante estaca herbácea y estaca de raíz”
6. RESUMEN
El elevado precio del rizoma, su arribo en épocas inadecuadas, el escaso stock de variedades en Chile y la baja tasa de propagación asexual por medio de la división, impiden que la producción de peonías para flor de corte crezca acorde con la rentabilidad del cultivo.
Es por esto que se propuso esta investigación con los siguientes objetivos: evaluar el efecto de reguladores de crecimiento y épocas en la rizogénesis de estacas aéreas de Paeonia lactiflora Pall. de las variedades Sarah Berndhart y Festiva Máxima y evaluar el comportamiento de estacas de raíz con presencia de 1 o 2 yemas, estacas de raíz con ápices y ramificadas en rizogénesis y brotación. Ambas evaluaciones fueron realizadas en la Estación Experimental “La Palma”, Quillota V región, Chile.
Para el primer objetivo se llevaron a cabo 3 ensayos. En el primer ensayo se sometió a las estacas de la variedad Sarah Berndhart a un tratamiento con ácido indolbutírico (IBA) en dosis de 500 y 1000 ppm, mientras que en un segundo ensayo se utilizaron estacas de la misma variedad, pero éstas fueron tratadas en concentraciones de 250 y 500 ppm con ácido indolbutírico. El primer ensayo se realizó el día 30 de octubre del 2004 y el segundo el 25 de febrero del 2005. Debido a los resultados de las anteriores investigaciones se llevó a cabo un tercer ensayo el día 15 de abril del 2005. En el se sometieron estacas de la variedad Festiva Máxima a tratamientos con auxinas (acido indolturíco, ácido naftalenacético) y etileno a diversas concentraciones.
La sobrevivencia de las estacas del primer ensayo y segundo ensayo no sobrepasó los primeros 138 y 83 días respectivamente; para el tercer ensayo alcanzó los 60 días. Posteriormente todas las estacas se deshidrataron o murieron sin formar raíces.
Para el segundo objetivo se establecieron 4 tratamientos: rizoma con dos yemas, rizoma con una yema, estaca de raíz con ápice y estaca de raíz ramificada, en la variedad Festiva Máxima. El ensayo se realizó el 23 de abril del 2005 y la evaluaciones el 8 de agosto del 2005.
La totalidad de los trozos divididos lograron un porcentaje superior a 60% de enraizamiento. La división de trozos de peonías de 2 yemas produce los más altos porcentajes de enraizamiento, número raíces y yemas en relación a los otros tejidos.
“Propagation of Paeonia lactiflora Pall. through stem and root cuttings”
7. ABSTRACT
The high price of peony (Paeonia lactiflora Pall.) rhizomes, their arrival at inadequate times, the limited stock of varieties in Chile and the low rate of asexual propagation through division, impede the increase of peony production for cut flowers in accord with its profitability.
The aims of this study were to evaluate the effect of growth hormone treatments and stages of rhizogenesis on stem cuttings of ‘Sarah Berndhart’ and ‘Festiva Máxima’ peonies, and also to evaluate the behavior of root cuttings with 1 or 2 buds, root cuttings with apex and branchings in rhizogenesis and bud growth. Both experiments were done at the La Palma Experiment Station, Quillota V region, Chile.
Three trials were done for the first experiment. For the first trial, ‘Sarah Berndhart’ stem cuttings were treated with indolebutyric acid (IBA) at 500 and 1000 ppm, and for the second trial, stem cuttings of the same variety were treated with 250 and 500 ppm of IBA. The first trial was done on October 30th, 2004, and the second on February 25th, 2005. Due to the results of the preceding trials, a third trial was done on April 15th, 2005. In this experiment ‘Festiva Máxima’ stem cuttings were treated with auxins (indolebutyric acid, naphthaleneacetic acid) and ethylene at different concentrations.
The surviving stem cuttings from the first and second trials did not exceed the first 138 and 83 days respectively; the third trial reached 60 days. Subsequently all the stems cuttings suffered dehydration or died without forming roots.
For the second experiment four treatments were established with the variety ‘Festiva Máxima’: rhizome with two buds, rhizome with one bud, root cuttings with apex and root cuttings with branchings. This trial was done on April 23rd, 2005 and the evaluations on August 8th, 2005.
Of the total of the divided pieces more than 60% achieved rooting. In comparison with the other tissues, the divided peonies with 2 buds produced the greatest number of roots and buds, and highest percentage of rooting.
8. LITERATURA CITADA.
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ANEXOS
ANEXO 1. Análisis Fitopatológico de trozos de Paeonia lactiflora Pall.