la microencapsulación de pigmentos de antocianina de zanahoria negro
DESCRIPTION
Habla de la microencapsulacion de componentes fitosanitarios y sus ebeneficiosTRANSCRIPT
La microencapsulación de pigmentos de antocianina de zanahoria negro ( Daucus carota L.) por secador por aspersión
Seda Ersus , , , ,
Unal Yurdagel
Mostrar más
doi: 10.1016 / j.jfoodeng.2006.07.009
Obtener los derechos y contenidos
Abstracto
Los extractos con etanol acidificado de zanahorias negras que tiene un alto contenido de
antocianinas (125 ± 17,22 mg / 100 g) fueron secado por pulverización usando una gama de
maltodextrinas [Stardri 10 (10DE), Glucodry 210 (20-23DE) y MDX 29 (28- 31 DE)] como un
portador y agentes de recubrimiento, a 3 temperaturas diferentes de entrada / salida de aire con
contenido de sólidos de alimentación constante (20%). La temperatura del aire de salida de entrada
/ altos causaron una mayor pérdida de antocianina durante el secado por pulverización.
Los atributos de calidad de los polvos que se produjeron a temperaturas de secado óptimos (160 °
C) se caracterizaron por su contenido de antocianinas, capacidad antioxidante, L * , a * , b * , C * y H
° valores, contenido de materia seca y higroscopicidad. El pigmento que contiene polvo seco se
encontró mejor donde se utilizó el Glucodry 210 como material de la pared. Microscopio electrónico
de barrido se utilizó para el seguimiento de las estructuras y tamaño (3-20 micras) de los
polvos. Para la determinación de la estabilidad y el período de vida media de los pigmentos
microencapsulados, las muestras se almacenaron a diferentes temperaturas de almacenamiento (4
° C y 25 ° C) y de iluminación de luz (3000 lx).
Palabras clave
Zanahoria Negro ( Daucus carota L.) ;
Las antocianinas ;
La capacidad antioxidante ;
La microencapsulación ;
Rocíe más seco ;
Estabilidad del polvo
1. Introducción
No ha habido un creciente interés en el desarrollo de colorantes alimentarios a partir de fuentes
naturales como alternativa a los colorantes sintéticos, debido a la acción y la preocupación de los
consumidores legislativa ( Giusti y Wrolstad, 1996 ). Las antocianinas que son sustancias que se
encuentran en las plantas muy coloreadas son posibles para su uso en las preparaciones de
alimentos, nutracéuticos y farmacéuticos por tener la mayoría de los colores rojo, púrpura y azul
( Doughall, panadero, Gakh, Redus, y Whittemore, 1998 ) y tienen un alto potencial como
colorantes debido a su baja toxicidad ( Brouillard, 1982 ).Posibilidad de que el uso de las
antocianinas zanahoria negros como colorante natural en la producción de confitería, jaleas,
mermeladas, confituras y postres congelados fue discutido por Birks (1999) .
Se ha informado de que la zanahoria negro ( Daucus carota , L.) tiene seis antocianinas con sólo
cianidina como aglicona ( Glassgen, Wray, Dieter, Metzger, y Seitz, 1992 ). Canbaş,
1985 , Harborne, 1967 y Narayan y Venkataraman, 2000 fueron estudiados en la identificación de
las antocianinas en Daucus carota, L.
Los factores que afectan el color y la estabilidad de las antocianinas incluyen la estructura y
concentración, pH, temperatura, luz, presencia de copigmentos, asociación auto, iones metálicos,
enzimas, oxígeno, ácido ascórbico, azúcar y sus productos de degradación, proteínas y dióxido de
azufre ( Francis, 1989 , Mazza y Miniati, 1993 y Rodríguez-Saona et al., 1999 ). La
microencapsulación mediante el uso de secador por pulverización es un método económico para la
preservación de colorantes naturales atrapando el ingrediente en un material de recubrimiento ( Cai
y Corke, 2000 ). Main, Clydesdale, y Francis (1978) secados por pulverización antocianinas
procedentes de tres fuentes diferentes, uva Concord, arándano y calcyces Rosella, pero no hay
informes sobre secados por aspersión extractos de antocianina zanahoria negro. Las
maltodextrinas son materiales solubles en agua y protege ingrediente encapsulado de la oxidación
( Shahidi y Han, 1993 ), tienen una baja viscosidad a alta relación de sólidos y están disponibles en
diferentes pesos moleculares, que proporciona diferentes densidades de las paredes alrededor de
los materiales sensibles (Cai y Corke, 2000 , Desorby et al., 1997 y Wagner y Warthesen, 1995 ).
Los objetivos de este estudio fueron la producción de secados por aspersión antocianinas
extraídas de zanahoria negro y determinar los efectos de diferentes temperaturas de secado spray
en el contenido de antocianinas de los polvos, para evaluar los efectos de las maltodextrinas con
diferentes equivalente de dextrosa en las propiedades de los polvos secados por aspersión y su
estabilidad de almacenamiento.
2. Materiales y métodos
2.1. Materiales
Negro de zanahoria ( Daucus carota L.) para la extracción de muestras de pigmento se cultivaron
en Mersin-Turquía y se transfieren a la Universidad de Ege, planta piloto de Alimentos
Departamento de Ingeniería en aproximadamente 25 kg de bolsas de plástico que contiene
agujeros para la realización de la respiración y se mantuvieron a -25 ° C hasta nuevo extracción.
2.2. Agentes de operadores para el secado por pulverización
Maltodextrina MDX 29 (28-31 DE) se obtuvo de Sorini Corporación Tbk, Glucodry 210 (20-23 DE)
era de Tate Lyle Amyloum Group, Bélgica y Stardri 10 (10 DE) se obtuvo de AE Staley
Manufacturing Company, EE.UU..
2.3. Extracción de antocianinas de zanahoria negro
Extractos etanólicos de antocianinas se prepararon como sigue: material congelado se molió con
Crypto Peerles, Armfield tipo amoladora sin descongelar, el volumen de dos veces de etanol 96%:
HCl 1,5 N (85:15 v / v) mezcla se añadió a las zanahorias negras para extraer antocianinas y se
maceran durante 8 minutos en una licuadora y muestras se transfirieron a 500 ml con balón y la
licuadora se lavó con 50 ml de disolvente adicional de extracción para tomar el residuo. La
extracción se realizó en donde la temperatura se mantuvo extracto de 35 ° C con baño de agua y
agitar continuamente se aplicó mediante evaporador rotatorio durante 2 h. Parte sólida se separó
de la mezcla mediante el uso de papel de filtro a continuación, extracto filtrado se pasó a través de
papel de filtro Whatman # 1 mediante el uso de un embudo Buchner con un vacío.Disolvente de
extracción se evaporó a 50 ° C bajo vacío ( Kerkhof y Thijssen, 1974 ). El residuo sólido se disolvió
con agua pura hasta que se regula el contenido de sólidos a 6% mediante el uso de PR-100
refractómetro digital (Atago Co, Ltd. Japón).
2.4. Preparación de mezclas de alimentación
Agentes portadores (MDX 29, Glucodry 210 y SD 10) se combinaron con el concentrado de
pigmento (6% de contenido de sólidos) y se agitó hasta la homogeneidad con el mezclador
Silverson L4R durante 30 min. Las maltodextrinas se añadieron hasta llegar al contenido de sólidos
final de 20%. Para procesados 1 o 2 litros se prepararon mezclas de alimentación.
2.5. El secado por pulverización
Las mezclas de alimentación fueron secadas por pulverización en un laboratorio de la Planta SD4
secador por pulverización (Laboratorio Vegetal Ltd., Inglaterra) con la cámara principal (380 mm de
largo × 110 mm).El secador fue operado a tres temperaturas de entrada / salida de aire diferentes
que se dan en la Tabla 1 .
Tabla 1.
Las condiciones de operación para el secado por pulverización de antocianinas zanahoria negroTemperatura del aire de secado (° C)
Entrada Salida
160 107 ± 2
180 118 ± 2
200 131 ± 2
Opciones de la tabla
El poder pompa se mantuvo a 20% para mantener el caudal de alimentación 5 ml / min, y las
capacidades de soplado de aire del compresor fuera máxima. Durante los procesos de secado, la
temperatura de la mezcla de alimentación fue de 25 ° C.
2.6. Almacenamiento de polvo de pigmento
Polvos de pigmento se almacenaron en botellas de color marrón con tapones de rosca y se
colocaron a 4 ° C y 25 ° C para determinar los efectos de las temperaturas de almacenamiento en
antocianina contenido de polvos. Muestras en polvo se pusieron en 55 × 10 mm placas de Petri y
se expusieron a 3000 lx de la luz que se mide con el dispositivo de medición de luz digital (Lutron,
LX 105) a una temperatura constante de 25 ° C como para la determinación del efecto de luz. La
degradación de antocianinas fue seguido por 8 semanas de almacenamiento y el contenido de
antocianina se analizó semanalmente de acuerdo a Glassgen et al. (1992).
2.7. La humedad y la humedad higroscópica de polvos
La humedad de las muestras se determinó mediante el uso de vacío método del horno 934,06
( Anon, 1995 ).Ganancia de humedad de 2 muestras de polvo G se mide en solución de saturación
de Na 2 SO 4 . Después de 1 semana, humedad higroscópica se expresó como g de humedad por
100 g de sólidos secos (g / 100 g) para determinar higroscopicidad ( Cai y Corke, 2000 ).
2.8. El contenido total de antocianinas
Zanahorias moradas fueron extraídos por molienda en una licuadora con MeOH-HOAc-H 2 O (50:
8: 42, a MAW). El extracto filtrado se utilizó para la determinación del contenido de antocianinas
midiendo la absorbancia a 530 nm y calculando con el registro ε = 4,48 para la cianidina 3-
galactósido ( Glassgen et al., 1992 ).
2.9. Determinación de la capacidad antioxidante
2.9.1. Preparación de extractos de muestras
Cincuenta gramos muestras crudas o blanqueadas fueron homogeneizadas en una licuadora con
150 ml de metanol durante 5 min. Después de la recuperación de homogeneizado, 75 ml de
metanol se utiliza para lavar la mezcladora y se mezcla con primera homogeneizado. La mezcla se
centrifugó a 4500 g durante 15 min a temperatura ambiente. Los sobrenadantes fueron filtradas
utilizando Blue Ribbon no 589 papel de filtro. El volumen de extracto metanólico se completó hasta
250 ml con metanol.
Muestras de polvo seco (0,40 g) se disolvieron en metanol y el volumen se completó hasta 100
ml. Después de la centrifugación, extracto también se filtró a través de Blue Ribbon no 589 papel
de filtro.
2.9.2. Determinación del efecto de barrido en radical DPPH
El efecto de las muestras de zanahoria púrpura y Trolox como un compuesto antioxidante de
referencia sobre DPPH radical se estimó de acuerdo con el procedimiento descrito en la referencia
( Brand-Williams et al., 1995 y Parejo et al., 2000 ). Una serie de dilución adecuada (1-5 mg de
sólidos solubles ml al menos cinco concentraciones diferentes /) se prepararon para el extracto
metanólico y de 1,0 × 10 -3 , 7,5 × 10 -4 , 5,0 × 10 -4 , 2,5 × 10 -4 , 1,0 × 10 -4 M Trolox en metanol y 0,1
ml de cada dilución se añadió a 3,9 ml de un 6,0 × 10 -5 M solución metanólica de DPPH, seguido
por agitación. La reacción se dejó que tuviera lugar en la oscuridad a temperatura ambiente para
llegar a condiciones de estado estacionario, después de lo cual la disminución de la absorbancia se
determinó a 515 nm. El metanol se utiliza a cero el espectrofotómetro. La absorbancia de la DPPH
radical sin ninguna muestra (control) se midió diariamente. La concentración inicial exacta del
DPPH (C DPPH ) en el medio de reacción se calcula a partir de la curva de calibración con la ecuación
A (515nm) = 23,92748 × C DPPH (mg / ml) + 7,84459 × 10 -3 , r 2 = 0,99987, como se determina por
regresión lineal con diferente que contiene la concentración de DPPH radical ( Brand-Williams et
al., 1995 y El y Karakaya, 2003 ).
Para cada concentración de la muestra probada, el porcentaje de DPPH restante en el estado
estacionario se calculó como barbechos: DPPH rem % = (DPPH) T / (DPPH) T = 0 , donde T = 0 es la
concentración inicial de DPPH y T es la concentración de DPPH en estado estacionario. Estos
valores se representaron en otro gráfico que muestra el porcentaje de DPPH residual en el estado
estacionario como una función de la relación de miligramos de muestra a miligramo
DPPH. Antiradial actividad se define como la cantidad de la muestra y Trolox necesario disminuir la
concentración inicial de DPPH en un 50% (concentración eficiente CE = 50 ). La eficiencia antiradial
(AE) se calculó como 1 / CE 50 ( Brand-Williams et al., 1995 y El y Karakaya, 2003 ).
2.10. Color
L * , a * , b * valores de color de las muestras se midió usando un fotómetro espectral (Datacolour,
textflash, EE.UU.). Después de la normalización L * , a * , b * se midieron los valores en muestras
crudas, peladas y secas. C * para el croma métrico y H ° para el ángulo de tono se calcularon
mediante la transformación de laun * y b * las siguientes ecuaciones:
Gire MathJaxen
En el círculo cromático, H ° valores están escalonados de 0 a 360 ° (megenta rojo) a través de un
círculo tonalidad de desvanecimiento de forma continua, los otros valores de referencia de los
cuales son 90 ° (amarillo), 180 ° (verde azulado) y 270 ° (o -90 °) (azul) ( Mallén-Aubert, Dangles, y
Amiot, 2001 ).
2.11. Microscopía electrónica de barrido (SEM)
Estructuras de partícula de las microcápsulas en polvo fueron evaluados por JEOL JSM-5200
modelo (Tokio, Japón) microscopio electrónico de barrido. Los polvos se adjunta a los talones de
SEM utilizando una cinta adhesiva de 2 caras y dejaron en un desecador que contiene pentóxido
de fósforo durante 48 h.Las muestras fueron recubiertas con 200 Å oro al vacío antes del
examen. SEM se hizo funcionar a 20 kV × 3500.
2.12. Análisis físico y químico
pH ( Anon, 1974 ), la acidez ( Anon, 1972 ), contenido de sólidos que no se disuelve en alcohol
( Anon, 1991), contenido de cenizas ( Anon, 1995 ), total y el contenido de azúcar invertido ( Egan,
Kirk, y Sawyer, 1981se realizaron) análisis.
2.13. El análisis estadístico
One-way ANOVA se utilizó para la determinación de las diferencias entre los procesos con el
programa SPSS 9.5 paquete. A nivel de probabilidad de p ⩽ 0,05 fue considerado como
significativo para todos los procedimientos estadísticos. El análisis de regresión se hizo también
entre el contenido de antocianinas y la capacidad antioxidante de las muestras. Todas las medidas
y los ensayos se realizaron por duplicado.
3. Resultados y discusión
Negro de zanahoria se utilizó como materia prima para la preparación de extracto de
antocianina. Según los resultados de análisis de la zanahoria negro tiene 11,90 ± 0,14 ° valores
Brix donde su materia seca se determinó como 13,15 ± 0,08 g / 100 g de peso fresco. En otra
investigación se encontró contenido de materia seca de la zanahoria púrpura similares 18.85 g /
100 g de peso fresco ( Ersus, Baysal, Yurdagel, y El, 2004 ). Es posible tener diferentes contenidos
de materia seca debido a las diferentes condiciones climáticas y el tiempo de la cosecha. Alcohol-
insoluble materia seca de zanahorias negras se determinó como 6,50 ± 0,53 g / 100 g, donde el
valor pH como 6,02 ± 0,04, contenido de acidez como ácido cítrico 0,14 ± 0,01 g / 100 g, contenido
de azúcar invertido como 3,80 ± 1,42 g / 100 g, el contenido total de azúcar como 7,73 ± 0,14 g /
100 g, contenido de cenizas como 1,2 ± 0,12 g / 100 g encontró. Los valores de color de las
zanahorias negras se midió como L * , a * , b * y los valores encontrados 26,95 ± 3,82, 11,35 ± 8,39,
-0,73 ± 0,59, respectivamente. C * valor se calculó como 11,37 y H ° se encontró calcula el valor -
3.68. Mallén-Aubert et al. (2001) se menciona que la zanahoria púrpura a pH 4,0; tiene H ° = 2,3
y C * = 25,6. Nuestros muestras tenían un negativo H ° valor que se varió -3,68--23,96
correspondiente a un tono azulado.
El extracto de antocianina de zanahoria negro (6 ° Brix) se reguló a 20 ° Brix como un contenido de
sólidos de alimentación con diferentes maltodextrinas DE, como agentes de recubrimiento y secó
por pulverización a 160, 180 y 200 ° C temperaturas de entrada de aire y los cambios de
antocianina contenido de la polvos se dan en la Fig. 1 .
Fig. 1.
Contenido de antocianinas de los polvos microencapsulados que son secadas por pulverización con
diferentes maltodextrinas DE AT 160, 180 y 200 ° C de entrada de aire.
Opciones Figura
Para temperaturas de entrada dado, las temperaturas de salida medidos se dan en la Tabla 1 . Los
resultados se compararon para cada maltodextrina separado. Se demostró que el aumento de las
temperaturas de secado por pulverización reducen el contenido de humedad de los polvos y
contenido de humedad varió desde 1,09 hasta 3,76% para polvos, donde los caudales se
mantuvieron constantes como 5 ml / min. Contenido de antocianinas de los polvos se secó por
pulverización con MDX 29 se evaluó estadísticamente y a 160 ° C contenido de antocianinas
temperatura de secado de polvo se encuentra más alta y estadísticamente importante en el
intervalo de confianza del 95% de acuerdo con 180 y 200 ° C. Los mismos resultados fueron
tomadas para Glucodry 210 como MDX 29 donde efecto de la temperatura de secado en la SD 10
microencapsulación no había mostrado ningún efecto significativo estadísticamente.Así, para
sistemas que contienen maltodextrinas de Lower, hasta las temperaturas de entrada de aire C 180
° se puede utilizar. Cai y Corke (2000) También se informó de que una mayor temperatura de
secado (> 180) no es adecuado para secado por pulverización de betacianinas. Así que para
comparar el efecto de diferentes maltodextrinas DE, temperaturas de entrada de aire en el proceso
de secado por pulverización mantuvieron constantes como 160 ° C. Para disminuir la temperatura
de salida del aire de 107 ° C a 102 ° C, la tasa de flujo de alimentación se aumentó a 6,37 ml /
min. Cambios en el contenido de antocianina de polvos que se secaron a 160 ° C se dan en
la Fig. 2 .
Fig. 2.
Contenido de antocianinas de polvos microencapsulados que son secado por pulverización con diferentes
maltodextrinas DE AT 160 ° C de temperatura de entrada de aire constante.
Opciones Figura
Debido al aumento en la tasa de flujo de alimentación, el contenido de humedad de los polvos
también se incrementaron y se encontró 5,50% para MDX 29, 5,48% para Glucodry 210 y 6,03%
SD 10. El contenido de antocianinas de los polvos que se microencapsulado con Glucodry 210
(630 Se encontró mg antocianina / 100 g de materia seca de polvo) 28,45% más que MDX 29 y SD
10 y fue encontrado esta diferencia estadísticamente importante en el nivel de confianza del
95%. Principal et al. (1978) también fueron secados por aspersión concentrado de uva con 10-13
DE maltodextrina y se encontró contenido de antocianinas como 492 mg / 100 g de polvo
seco. Cuando la temperatura del aire de salida se redujo de 107 ° C a 102 ° C a 160 ° C
temperaturas de secado de entrada de aire constante, antocianina contenido de polvos se
incrementó (36,83% para MDX 29, 16,05% para Glucodry 210, 7,9% para SD 10) . Estos
resultados revelaron que el aumento de maltodextrinas DE son más sensibles a las temperaturas
del aire de salida más altas debido a las maltodextrinas de menor peso molecular contenían
cadenas más cortas y reacciones de oxidación de aldehídos en los lados abiertos de las moléculas
puede conducir a deformaciones estructurales durante los procesos de calentamiento. Como
resultado el 20% de alimentación contenido sólido y 160-180 ° C temperaturas de secado,
antocianinas zanahoria negros pueden estar microencapsuladas con 20-21 DE Glucodry
210. Wagner y Warthesen (1995) se encontraron 15 DE hidroliza almidón proporcionado mayor
estabilidad de acuerdo con 4 DE, DE 25 y 36,5 DE para la superficie de retención de caroteno de
zanahoria coágulo.
El contenido de antocianinas y la CE 50 valores de la muestra se indican en la Tabla 2 . De acuerdo
con los resultados de la prueba de correlación de Pearson entre el contenido total de antocianinas
y CE 50 valores de muestras, el coeficiente de correlación resultó ser -0.957 donde la correlación es
significativa al nivel 0,05 (2 colas). Valor de correlación negativo significa con el contenido de
antocianinas creciente, EC 50 valor disminuye por lo que la cantidad necesaria de muestra necesita
para disminuir la concentración inicial de DPPH (CE 50 ) en un 50% se convierte en inferior ( Brand-
Williams et al., 1995 , Parejo et al. , 2000 y Sánchez-Moreno et al., 1998 ). Los investigadores
anteriores ( Camire et al., 2002 , Moyer et al., 2002 y Wang et al., 1997 ) informaron de la actividad
antioxidante tiene una alta correlación con el contenido de antocianinas y la composición fenólica
total de materiales alimenticios.
Tabla 2.
CE 50 , antiradial eficiencia y coeficientes de correlación de muestras
Muestras
Contenido de antocianinas (mg / 100 g) CE 50
A AE B PendienteC
Coeficiente de correlación
Zanahoria Negro 125,17 ± 17,22 30,23 ± 1,65 d
0,033 -0.037 0,994
Extracto de antocianina (6 ° Brix) 2.721,61 ± 5,92 2.74 ± 0.21 una
0,365 -0.220 0,997
Polvo de antocianina microencapsulados con MDX 29
482,96 ± 1,46 23,64 ± 0,50 c
0,042 -0.029 0,990
Polvo de antocianina microencapsulados con Glucodry 210
630,92 ± 15,71 17.12 ± 0.85 b
0,058 -0.040 0,999
Polvo de antocianina microencapsulados con SD 10
499,39 ± 22,23 22,88 ± 0,69 c
0,044 -0.029 0,989
Trolox 0.107 un 9.34 -8.305 0,952
a-d Letras diferentes en la misma columna indican diferencias significativas a p ⩽ 0.05.
La
Concentración Eficiente (CE 50 : muestra mg / mg DPPH).
B
Eficiencia Antiradial (AE: 1 / CE 50 ).
C
La regresión exponencial, ln (DPPH rem %) = x (mg de muestra / mg DPPH) + Y .
Opciones de la tabla
Cambios en el color de polvo microencapsulado con diferentes maltodextrinas DE se comparan
en la Tabla 3 .
Tabla 3.
L * , a * , b * , C * y H ° valores de polvos microencapsuladosPolvos microencapsulados con diferentes maltodextrinas DE Producción L * un * b * C * H °
MDX 29 1 50.69 ± 0.38 un
26,02 ± 0,30 d
5,91 ± 0,19 f
26.68 ± 0.26 g
12,79 ± 0,53 i
Polvos microencapsulados con diferentes maltodextrinas DE Producción L * un * b * C * H °
2 50.68 ± 0.41 un
24,42 ± 0,69 d
5,50 ± 0,27 f
25.04 ± 0.09 g
12.69 ± 0.60 i
Glucodry 210 1 53.82 ± 0.21 b
29,16 ± 0,19 e
5,83 ± 0,17 f
29,74 ± 0,22 h
11,31 ± 0,28 k
2 54.46 ± 0.25 b
29,23 ± 0,02 e
5,21 ± 0,02 f
29,69 ± 0,02 h
10,10 ± 0,06 k
SD 10 1 55,91 ± 0,28 c
29,53 ± 0,35 e
5,18 ± 0,07 f
29,98 ± 0,33 h
9,95 ± 0,21 k
2 56,82 ± 0,18 c
31,11 ± 0,22 e
5,08 ± 0,20 f
31,52 ± 0,25 h
9,28 ± 0,30 k
a-k : Letras diferentes en la misma columna indican diferencias significativas a p ⩽ 0.05.
Opciones de la tabla
Las diferencias en la DE de maltodextrinas tuvieron efectos significativos ( p ⩽ 0,05)
en L * valores. Con la disminución de DE, L * se incrementaron los valores de
polvos. a * y C * valores de las muestras con MDX 29 resultaron ser significativamente menor que
las muestras producidas con Glucodry 210 y SD 10. No hay cambios fueron encontrados
en b * valores de muestras estadísticamente. H ° se encontró estadísticamente importantes valores
de MDX se encontraron 29 muestras a ser mayor en función de otras muestras y
diferencia. Superior a * e inferior H ° indica sombra brillante y púrpura del color rojo. Se concluye
con el aumento de DE, el color de las antocianinas se convierte en un color más pálido.
La humedad higroscópica de polvos secados por aspersión se incrementó con el aumento de valor
de ED de maltodextrina, humedad higroscópica de muestras se muestra en la Tabla 4 que varió
desde 72,83 hasta 83,33%. Maltodextrinas de menor peso molecular contenían grupos más
hidrófilos ( Cai y corke, 2000 ).
Tabla 4.
Las propiedades de los polvos secados por aspersión de pigmentoPolvos microencapsulados con diferentes maltodextrinas DE secan por pulverización a 160 ° C de entrada de aire / 102 ° de temperatura de salida del aire C
Contenido de materia seca total (g / 100 g)
La humedad higroscópica (g / 100 g)
MDX 29 94,53 ± 0,58 83.33
Glucodry 210 93,97 ± 0,56 76.64
SD 10 94,51 ± 0,79 72.83
Opciones de la tabla
3.1. Evaluación de la estabilidad de almacenamiento
La estabilidad de antocianinas en los polvos secados por pulverización microencasulated se evaluó
en diversas condiciones de temperatura de almacenamiento y la luz. El contenido de antocianinas
de polvos encapsulados se redujeron en un 33% al final de los 64 días de almacenamiento a 25 ° C
( Fig. 3 ). A 4 ° C temperatura de almacenamiento, la pérdida de antocianinas se determinó como
11% ( Fig. 4 ).
Fig. 3.
Estabilidad en el almacenamiento de antocianinas encapsulados en diferentes maltodextrinas de By
secador por aspersión a 25 ° C.
Opciones Figura
Fig. 4.
Estabilidad en el almacenamiento de antocianinas encapsulados en diferentes maltodextrinas de By
secador por pulverización en 4 ° C.
Opciones Figura
Al final del período de 8 semanas de almacenamiento, el color rosa de las muestras no se cambió
a 4 ° C, donde se volvió a marrón a 25 ° C. La cinética de la degradación de antocianinas fueron
monitoreados durante el período de almacenamiento, constantes de velocidad y se determinaron
valores de la vida media de reacciones. Trabajos anteriores sobre la degradación de antocianinas
mostraron que la reacción seguido en la cinética de degradación de primer orden ( Calvi y Francis,
1978 , Cemeroğlu et al., 1994 , Kirca et al., 2003 y Markasis, 1974 ). Un aumento en la
temperatura de almacenamiento condujo a un aumento en las constantes de velocidad. Las
constantes de velocidad se predijo con el uso de ecuaciones como log ( C o /C t ) = k × t y t 1/2 = ln
0,5 / k , donde k es la pendiente, C o es el contenido de antocianinas inicial, C t es el contenido de
antocianinas en un momento específico y t es el tiempo. (Semivida t 1/2 ) Los valores se
determinaron a continuación y se dan en la Tabla 5 .
Tabla 5.
Datos de degradación cinética para SD 10, Glucodry 210 y MDX 29 secó por pulverización polvos
microencapsulados bajo diferentes condiciones de almacenamiento
Condiciones de almacenamientoMuestra microencapsulado con maltodextrinas k (10 3 días -1 ) t 1/2 (meses)
4 ° C SD 10 0.8 28
Glucodry 210 0.8 28
MDX 29 0.9 25
25 ° C SD 10 2.3 10
Glucodry 210 2.3 10
MDX 29 2.5 9
Exposición a la luz (3000 lx a 25 ° C)
SD10, Glucodry 210, MDX 29 2.4 9
Opciones de la tabla
La mitad de la vida de las antocianinas a 4 ° C temperatura de almacenamiento fue encontrado 25
meses en los que es 10 meses para 25 ° C temperatura de almacenamiento. Exposición a la luz a
25 ° C causó 9 meses vidas medias para muestras donde la degradación fue causado tanto efecto
de luz y temperatura.Cambios en el contenido de antocianina de polvos bajo exposición a la luz
3000 lx se muestran en la Fig. 5 .
Fig. 5.
Estabilidad en el almacenamiento de antocianinas encapsulados en diferentes maltodextrinas de By
secador por pulverización expuesto a 3.000 lx de la luz a una temperatura constante de 25 ° C.
Opciones Figura
No se encontró efecto entre polvos microencapsulados con el uso de diferentes tipos de
maltodextrina como un material de pared durante el período de almacenamiento.
3.2. El tamaño de partícula y la microestructura
Migrographs SEM de partículas que eran secó por pulverización a 160 ° C de temperatura de
entrada de aire con 20 ° Brix alimentar a niveles de sólidos mostró que el tamaño de partícula de
los polvos varió de 3 micras a 20 micras aproximadamente ( Fig. 6 ).
Fig. 6.
Micrografías de microcápsulas de polvos secados por pulverización de pigmentos de antocianina de
zanahorias negro que contienen diversos materiales de la pared (a) MDX 29, (b) Glucodry 210, (c) SD 10.
Opciones Figura
Todas las cápsulas secadas por pulverización que contienen maltodextrinas con equivalente de
dextrosa diferente parecía esferas lisas. Se encontró que las partículas microencapsuladas con
MDX 29 mostraron una menor resistencia a la del vacío aplicado durante el experimento.
4. Conclusión
Para el secado por atomización de antocianinas zanahoria negro, temperaturas de entrada de aire
más altas (> 160 a 180 ° C) causado más pérdidas de antocianina. 20-21 DE maltodextrina que es
Glucodry 210 como un material de pared dio el más alto contenido de antocianinas en polvo al final
del proceso de secado. Como colorante natural en forma de polvo de antocianinas de zanahoria
negro, la posibilidad de uso de maltodextrina como una tecnología material de la pared y el secado
por pulverización se discutieron en ese estudio. El almacenamiento a 4 ° C aumenta la vida media
de secados por aspersión pigmentos de antocianina 3 veces de acuerdo a 25 ° C temperatura de
almacenamiento.
Referencias
1.
o Anon, 1972
o Anon
o TS 1125, Meyve Sebze Mamulleri Titre Edilebilir Asitlik Tayini
o Türk Standartları Enstitüsü, Ankara (1972)
o
2.
o Anon, 1974
o Anon
o TS 1728, Meyve Sebze Mamüllerinde pH Tayini
o Türk Standartları Enstitüsü, Ankara (1974)
o
3.
o Anon, 1991
o Anon
o TS 362, Bezelye Konservesi
o Türk Standartları Enstitüsü, Ankara (1991)
o
4.
o Anon, 1995
o Anon (1995). AOAC Official Methods of Analysis de la Asociación de Químicos
Agrícolas .Junta Willliam Harwitz, Presidente y Ed. Comité sobre Métodos de Análisis
Editting. Chichilo, P., Clifford PA, Reynolds H. (10a ed). Asociación de los químicos analíticos
oficiales, Washington, DC.
o
5.
o Birks, 1999
o S. Birks
o El potencial de zanahorias
o Alimentos-Fabricación, 47 (4) (1999), pp. 22-23
o
6.
o Brand-Williams et al., 1995
o W. Brand-Williams, ME Cuvelier, C. Berset
o El uso de un método de radicales libres para evaluar la actividad antioxidante
o -Lebensmittel Wissenschaft y Technologie, 28 (1995), pp. 25-30
o
7.
o Brouillard, 1982
o R. Brouillard
o Estructura química de antocianinas
o P. Markasis (Ed.), Antocianinas como colorantes alimentarios, Academic Press, Londres, Reino Unido
(1982), pp. 1-40
o
8.
o Cai y Corke, 2000
o YZ Cai, H. Corke
o Producción y propiedades de los pigmentos betacianina Amaranthus secados por
pulverización
o Journal of Food Science, 65 (6) (2000), pp. 1248-1252
o
9.
o Calvi y Francis, 1978
o P. Calvi, FJ Francis
o Estabilidad de uva Concord (V. labrusca ) antocianinas en sistemas modelo
o Journal of Food Science, 43 (1978), pp. 1448-1456
o
10.
o Camire et al., 2002
o ME Camire, A. Chaovanalikit, MP Dougherty, J. Briggs
o Arándano y uva antocianinas como colorantes de cereales de desayuno
o Journal of Food Science, 67 (1) (2002)
o
11.
o Canbaş, 1985
o A. Canbaş
o Siyah havucun renk maddesi üzerine bir raíz dañada
o Doğa, 9 (3) (1985), pp. 394-398
o
12.
o Cemeroğlu et al., 1994
o B. Cemeroğlu, S. Velioglu, S. Işık
o Cinética de degradación de antocianinas en el jugo de cereza agria y concentrado
o Journal of Food Science, 59 (6) (1994), pp. 1216-1219
o
13.
o Desorby et al., 1997
o SA Desorby, FM Netto, TP Labuza
o Comparación de secado por pulverización, secado en tambor y secado por congelación
para la encapsulación beta caroteno y preservación
o Journal of Food Science, 62 (6) (1997), pp. 1159-1162
o
14.
o Doughall et al., 1998
o DK Doughall, DC Baker, EG Gakh, MA Redus, NA Whittemore
o Las antocianinas de cultivos en suspensión de zanahoria silvestre acilados con ácidos
carboxílicos suministrados
o Carbohydrate Research, 310 (1998), pp. 177-189
o
15.
o Egan et al., 1981
o H. Egan, RS Kirk, R. Sawyer
o Análisis químico de Pearson de los alimentos
o (8ª ed.) Churchill Living Stone, Londres (1981) 591p
o
16.
o El y Karakaya, 2003
o SN El, S. Karakaya
o La evaluación de la actividad antioxidante de los verdes seleccionados
o Revista Internacional de Ciencias de la Alimentación y Nutrición, 55 (1) (2003), pp. 67-74
o
17.
o Francis, 1989
o FJ Francis
o Colorantes para alimentos: antocianinas
o CRC Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 28 (4) (1989), pp. 273-315
o
18.
o Giusti y Wrolstad, 1996
o MM Giusti, RE Wrolstad
o Extracto de antocianina Rábano como colorante rojo natural de las cerezas al
marrasquino
o Journal of Food Science, 61 (4) (1996), pp. 688-694
o
19.
o Glassgen et al., 1992
o NOSOTROS Glassgen, V. Wray, S. Dieter, JW Metzger, HU Seitz
o Las antocianinas de cultivos en suspensión de células de Daucus carota
o Fitoquímica, 31 (5) (1992), pp. 1693-01
o
20.
o Harborne, 1967
o JB Harborne
o Bioquímica comparativa de los flavonoides
o Academic Press, Londres, Reino Unido (1967) 1-35
o
1.
o Kerkhof y Thijssen, 1974
o PAJA Kerkhof, HAC Thijssen
o La retención de los componentes del aroma en el secado de extracción de soluciones
acuosas de carbohidratos
o Journal of Food Technology, 9 (1974), p. 415
o
2.
o Kirca et al., 2003
o Kirca, A., Özkan, M., y Cemeroğlu, B. (2003). La estabilidad térmica de las antocianinas de
zanahoria negra en jugo de naranja rubio. En: Congreso Internacional de Tecnologías de la
Información en la Agricultura, Alimentación y Medio Ambiente (pp 525-528.). 07 al 10 octubre,
Izmir, Turquía.
o
3.
o Principal et al., 1978
o JH principal, FM Clydesdale, FJ Francis
o El secado por pulverización antocianina se concentra para su uso como colorantes
alimentarios
o Journal of Food Science, 43 (1978), pp. 1693-1697
o
4.
o Malien-Aubert et al., 2001
o C. Mallén-Aubert, O. Dangles, MJ Amiot
o La estabilidad del color de los extractos comerciales anyhocyanin basados en relación
a la composición fenólica. efectos protectores de la pigmentación intra e
intermoleculares
o Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49 (2001), pp. 170-176
o
5.
o Markasis, 1974
o P. Markasis
o Las antocianinas y su estabilidad en los alimentos
o Critical Reviews in Tecnología de los Alimentos, 4 (4) (1974), pp. 437-456
o
6.
o Mazza y Miniati, 1993
o G. Mazza, E. Miniati
o Las antocianinas en frutas, verduras y granos
o CRC Press, Londres (1993)
o
7.
o Moyer et al., 2002
o RA Moyer, KE Hummer, CE Finn, B. Frei, RE Wrolstad
o Las antocianinas, compuestos fenólicos y capacidad antioxidante en diversos frutos
pequeños
o Journal of Agricultural and Food Chemistry, 50 (2002), pp. 519-525
o
8.
o Narayan y Venkataraman, 2000
o MS Narayan, LV Venkataraman
o Caracterización de las antocianinas deriva de cultivos de células de zanahoria
o Food Chemistry, 70 (2000), pp. 361-363
o
9.
o Parejo et al., 2000
o I. Parejo, C. Codina, C. Petrokis, P. Kefalas
o Evaluación de la actividad de eliminación de la evaluación de Co (II) inducida por EDTA
luminol quimioluminiscencia y el ensayo de radicales libres DPPH
o Revista de Métodos farmacológicos y toxicológicos, 44 (2000), pp. 507-512
o
10.
o Rodríguez-Saona et al., 1999
o LE Rodríguez-Saona, MM Giusti, RE Wrolstad
o El color y el pigmento estabilidad de rábano rojo y antocianinas papas de pulpa de
color rojo en sistemas modelo de jugo
o Journal of Food Science, 64 (1999), pp. 451-456
o
11.
o Sánchez-Moreno et al., 1998
o C. Sánchez-Moreno, JA Larrauri, F. Saura-Calixto
o Un procedimiento para medir la eficiencia antiradial de polifenoles
o Revista de la Ciencia de Agricultura, 76 (1998) y la Alimentación, pp. 270-276
o
12.
o Shahidi y Han, 1993
o F. Shahidi, X.-P. Han
o La encapsulación de ingredientes alimentarios
o Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 33 (6) (1993), pp. 501-547
o
13.
o Ersus et al., 2004
o S. Ersus, T. Baysal, U. Yurdagel, SN El
o Efectos del proceso de secado de la actividad antioxidante de zanahorias moradas
o Nahrung, 48 (1) (2004), pp. 57-60
o
14.
o Wagner y Warthesen, 1995
o LA Wagner, J. Warthesen
o Estabilidad de los encapsulados carotenos zanahoria secadas por pulverización
o Journal of Food Science, 60 (5) (1995), pp. 1048-1053
o
15.
o Wang et al., 1997
o H. Wang, G. Cao, RL Antes
o La capacidad total antioxidante de frutas
o Journal of Agricultural and Food Chemistry, 44 (1997), pp. 701-705
o
Autor correspondiente. Tel .: +90 535 9594208; fax: +90 232 3427592.
Copyright © 2006 Elsevier Ltd. Todos los derechos reservados.
Acerca de ScienceDirect
Contacto y soporte
Información para anunciantes
Términos y condiciones
Política de privacidad
Copyright © 2014 Elsevier BV excepto determinados contenidos facilitados por terceros. ScienceDirect® es una
marca registrada de Elsevier BV
Las cookies son usadas por este sitio. Para rechazar o aprender más, visite nuestro Galletas página
Cambiar de sitio móvil Artículos recomendados
1.
1. Estabilidad de antocianinas y la actividad antioxidante de açaí secado por aspersión
( Euterpe oleracea Mart.) de jugo producidos con diferentes agentes portadores
2. 2010, Food Research International
más
2.
1. Métodos eficientes para la extracción y la microencapsulación de los pigmentos rojos de
un híbrido Rose
2. 2009, Journal of Food Engineering
más
3.
1. Efectos de pH y temperatura del medio de extracción en el coeficiente de difusión eficaz de
pigmentos anthocynanin de zanahoria negro ( Daucus carota var. L.)
2. 2006, Journal of Food Engineering
más
4. Ver más artículos »
Citando artículos ( 123 )
Contenido del libro relacionados