2752 examen coproparasitoscopico

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Universidad Nacional Autónoma de MéxicoFacultad de Estudios Superiores Zaragoza

Microbiología General II

COPROPARASITOSCOPICO

Integrantes: Alvizuri Fernández Juan de DiosPérez Piedras Guadalupe

Equipo: 5

Grupo: 2752

OBJETIVOS Realizar un examen macroscópico y microscópico de

la materia fecal.

Determinar la presencia de parásitos en la materia fecal.

OBTENCIÓN DE LA MUESTRA DE HECES.

Por expulsión natural. Por purgantes solo para casos de amebosis.

intestinal crónica y estrongiloidosis. Por cucharilla rectal solo para recién nacidos.

Recipiente de recolección Frasco de boca ancha con tapa de rosca. Cantidad de muestra requerida 2-5 g.

Examen macroscópico

Permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos, enteros o fraccionados , así como los cambios en las características organolépticas de las heces eliminadas (color, consistencia, olor y elementos).

PRESENCIA DE SANGRE

SANGRE Formes hemorroides sangrantes

blandas

MOCO Y SANGRE ulceración amibiana

liquidas

SANGRE OCULTA hemorragias internas

DETECCION DE PARASITOS

MACROSCOPICOS

Ascaris adultos

Fragmentos de D. latum

Proglotides de T. saginata y

T. solium

Larvas de Strongyloides

Examen directo Este método permite

buscar principalmente en muestras frescas, la presencia de formas evolutivas móviles de parásitos de tamaño microscópico trofozoitos, quistes de protozoos, así como larvas o huevos de helmintos

Examen microscópicoEn un portaobjetos se

colocan dos gotas, de

solución salina y de

lugol

tomar la muestra

de materia fecal,

se debe escoger la

parte que tenga

elementos

anormales

se homogeniza en

la lámina primero en

la solución salina y

luego en el lugol, se

le colocan los

cubreobjetos

Entamoebahistolytica

Entamoeba coli Entamoebahartmanni

Endolimaxnana

Iodamoebabeutschlii

quiste

Trofozoito

DEFINICIÓN CPS: Es el estudio de la materia fecal para la búsqueda e

identificación de formas parasitarias con fines diagnósticos.

CLASIFICACIÓN DE EXÁMENES

COPROPARASITOSCÓPICOSPOR SU EXPRESIÓN

NUMÉRICA

MÉTODOS ESPECIALES

CUALITATIVOS:

a.En fresco

b.Centrifugación

Flotación (Faust)

c.Flotación (Willis)

d.Sedimentación (Ritchie)

CUANTITATIVOS:

a.Concentración (Ferreira)

b.Dilución (Stoll)

c.Técnica de Beaver

d.Método modificado de Kato-

Miura

e.Técnica de Kato.katz

Tamizado

Graham

Baermann

Harada-Mori

EXAMENES CUALITATIVOS

CPS de flotación con solución de sacarosa Técnica que se utiliza para casos de emergencia cuando

no se tienen otros reactivos a la mano.

Este procedimiento es muy útil para trabajo de campo.

Limitaciones: La solución de sacarosa atrae moscas, provocando las molestias consiguientes.

CPS de concentración por centrifugación flotación (FAUST, 1938) Se basa en que los quistes y/o huevos de los parásitos flotan

en la superficie por ser de menor densidad que el sulfato dezinc a 33,3%, cuya densidad 1.180

Método indicado para el diagnóstico de huevos livianos de helmintos(Necator, tricocéfalos, Ascaris, H. nana).

Hacer una suspensión

homogénea con 1 o 2

gramos de material

fecal y 10 ml de agua

Se filtra a través de

gasa colocada en el

embudo y se

directamente en el

tubo

Se centrifugan a 2000 rpm durante 1 min.

Se decanta el

sobrenadante y se

resuspende el

sedimento con agua.

Se agregan 2 a 3

ml de solución de

sulfato de zinc

tubos y se

homogeneiza.

Se centrifugan

a 2000 rpm

durante 1 min.

Se recoge la con

el asa la muestra

de la película

superficial que se

encuentra en el

menisco, durante 2

o 3 ocasiones

sucesivas y se

deposita en el

portaobjetos

Se colocan 2 gotas de

lugol, se homogeneiza

con el ángulo de un

cubreobjetos y se pone

este sobre la

preparación.

Se observa

con

objetivos de

10x y 40x.

METODOLOGIA

Método de salmuera de Willis Este método basado en la propiedad que tienen las

soluciones de densidad alta, de hacer flotar objetos menos densos, la salmuera de 1.200° Bé, es lo que hace que la mayor parte de huevos de helmintos floten.

CPS de concentración por sedimentación con centrifugación (Ritchie) Es usado para concentrar huevos, quistes y larvas

de helmintos.

No importa la densidad que tenga, los detritusorgánicos se eliminan con el éter.

El motivo por el cual se utiliza el formol es paramantener la integridad de los parásitos.

EXAMENES CUANTITATIVOS

Examen CPS cuantitativo por dilución de Stoll

FUNDAMENTO:

Este método se basa en los principios de saponificación,

homogenización y aclaración. El fundamento es

básicamente aritmético, se basan en diluciones

empleadas.

Es útil para saber la intensidad de la infección por ciertas

uncinarias y helmintos.

FORMA DE REPORTAR

Ejemplo:Si la materia fecal es pastosa y se encontraron en todos

los campos 4 huevos de uncinaria en 0.15ml de lamuestra:

4 x 200 = 800Se reportará así: 800 h. mL. h. de uncinarias

HECES MUESTRA

(mL)

FACTOR

Duras 0.075 50

Pastosas 0.075 100

Líquidas 0.075 200

Duras 0.150 100

Pastosas 0.150 200

Líquidas 0.150 400

CPS cuantitativo de Ferreira Es un método de concentración de una suspensión de

materia fecal 1:10, que tiene la característica de considerarse como cuantitativo.

Forma de reportar

El total de huevos o larvas encontrados se multiplica por 5;de esta manera se obtiene el número de huevo s o larvaspor gramo de heces.

Método de frote grueso (Kato y Miura)

FUNDAMENTO:

Es un método cuantitativo de helmintos. El cual se basa

en la acción que tiene la glicerina como aclarador de los

huevos de helmintos y el verde de malaquita como

colorante de contraste.

FORMA DE REPORTAR

El número de huevos o larvas observados en toda la

preparación se multiplica por un factor constante de 20.

CPS cuantitativo con frote grueso de Kato Y Katz

Es un método que solo sirvepara cuantificar huevos dehelmintos.

FORMA DE REPORTAR.De la misma forma que para latécnica de Kato y Miura

Huevo de Necator tras la

extensión de heces en un

frotis grueso de kato (x 540)

CPS directo cuantitativo

Utilidad: Es un método excelente para grandes volúmenes de muestras y se presenta la necesidad después de hacer un cuantitativo, de hacer recuentos de huevo de helmintos

Limitaciones: La pequeña cantidad de muestra que se utiliza.

Forma de reportar: Según la cantidad de material fecal que se haya tomado, el cálculo se hace con una simple regla de tres para obtener la cuenta de hgh

Exámenes especiales para el diagnostico de parasitosis del aparato

digestivo

Tamizado

Es utilizado en el análisis cualitativo y se considera un método mecánico de separación.

Utilidad: se usa para la recolección de parásitos o segmentos de estos en la materia fecal.

RECOLECCIÓN PERIANAL Y PERINEAL CON CINTA DE CELOFÁN ADHESIVO(GRAHAM 1941)

Esta técnica se basa en que la hembra adulta de

Enterobius vermicularis habitualmente no deposita sus

huevos en el interior del intestino, sino que por lo general

emigra durante la noche, hacia las márgenes del ano,

depositando los huevos en los pliegues perianales.

.

Preparación de

Graham huevo de

Enterobius

vermicularis

EXAMEN DE CONTENIDO DUODENAL

Se usa para demostrar la presencia de parásitos o formas parasitarias que se alojan en el duodeno o bien en las parasitosis que son problemas de diagnostico como giardiosis, fasciolosis y estrongiloidosis; por medio de una capsula de gelatina que tiene en su interior un hilo de algodón absorbente.

MÉTODO DE CONCENTRACIÓN CON EL DISPOSITIVO DE BAERMAN.

Se utiliza para concentrar larvas de S.stercolaris, N.americanus y Ancylostoma spp; también se ha descrito su uso para la recuperación de larvas de T.spiralis después de la digestión de músculo infectado.

Fundamento:

Se basa en los tropismos positivos: geotropismo, termo tropismo e hidrotropismo de los trofozoítos de protozoos y larvas de helmintos..

MÉTODOArmar el dispositivo. Se llena el embudo con

agua que previamente

se calentó a 40°C de

tal manera que la malla

y la gasa se mojen.

Se coloca la

materia fecal

sobre la malla y la

gasa.

Se deja reposar

durante 2 hrs,

para que las

larvas pasen al

agua del embudo.

Pasadas las 2hrs,

se abre la pinza, se

deja salir el agua y

se recibe en el vaso

de precipitados.

Se centrifuga el líquido durante un

minuto a 2000rpm se toma del

sedimento y se coloca entre porta y

cubre y se examina con la lupa del

microscopio

Método de cultivo en papel filtro (Harada-Mori) Es un dispositivo por medio del cual se verifica el

desarrollo de huevos o larvas de N. americanus, Ancylostoma spp. y S. stercoralis, con objeto de obtener las filariformes infectantes, pues en este estadio es donde las características son diferenciables.

Medio de Kupferber y Sprince Es un medio simple de

tripticasa y suero para cultivo de Trichomonas vaginalis.

Medio de N.N.N. (Novy, Nicolle, McNeal) Es un medio eficaz para el aislamiento y cultivo de

Trypanosoma cruzy y Leishmania spp., es un medio sumamente económico.

Constituido por dos fases: una sólida que es un agar sangre con una concentración elevada de sal y la líquida es con solución Ringer.

Amiba en fresco.

Ayuda a determinar la presencia en lasevacuaciones de trofozoítos de Entamoebahistolytica, apoyando este diagnóstico.

Es un método, sencillo de realizar y que nosayudará en la búsqueda de protozoarios, así como susquistes y trofozoitos.

Enterobiusvermicularis

Trichuristrichiura

Ascaris lumbricoidesfértil

Ascarislumbricoidesinfértil

Huevos encontrados en heces humanos de

nematodos

Taenia spp Hymenolepisnana

Hymenolepis diminuta Diphyllobothriumlatum

Dipyllidiumcaninum

Huevos encontrados en heces humanos de

cestodos

Paragonimuswestermani

Nanophyetussalmincola

Fasciolahepatica

Echinostomaspp.

Huevos encontrados en heces

humanas de trematodos

Taenia solium Taenia saginata Diphyllobothrium latum Dipylidium caninum

Hymenolepis nana Hymenolepis diminuta

BIBLIOGRAFIA

Irene H. A., Paz M.S.S., Margarita C.B. Diagnóstico Morfológico de las Parasitosis. 2ª Ed. México: Méndez Editores, 2002: 181-192,193-214

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Markell Edwar. Parasitología medica, 6ª edic., Edit. Mac-Graw-Hill, Madrid, España 1990.

Faust Ernest. Parasitología clínica, 4º edic. Edit. Salvat mexicana, Méx. DF. 1981.

Romero Cabello Raúl, Microbiología y parasitología humana, Editorial Medica Panamericana, México,1993.

Biagi Francisco, Enfermedades Parasitarias, 2da. Ed., Editorial La Prensa Medica Mexicana, México, 1994.

Tay Zavala Jorge, Parasitología Medica, Editorial Méndez Editores, México, 1995.

www.dpd.cdc.gov/

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