“Utilización de alimento natural en larvicultura de camarón”

Tatiana murilloAndrés SerranoCristhian Ayón

Jorge Luis Dueñas

Msc. Marco ÁlvarezIngeniería Marítima y Ciencias del Mar

Escuela Superior Politécnica del Litoral (ESPOL) Campus Gustavo Galindo, Km 30.5 vía Perimetral

Apartado 09-01-5863. Guayaquil, Ecuador

anserram@espol.edu.eccrialayo@espol.edu.ec malvarez@espol.edu.ec

Resumen

Esta investigación trata acerca de la utilización de alimento natural “vivo” en la larvicultura del camarón la importancia y la sustentabilidad de la misma donde se revisara todo el sistema de manejo y desarrollo de los tipos de cultivos de fitoplancton (algas) más comunes así como el de artemia que es uno de los principales alimentos en la actualidad la forma de almacenarlo y criterios para seleccionarlo su forma de calcular la eficacia de eclosión y el porcentaje de eclosión. También se analiza el manejo de sus parámetros, formulas alimenticias, aditivos, materiales que se utilizan en cada una de las fases.

Palabras claves: Acuicultura, alimento vivo, algas, artemia

AbstractThis research deals with the use of natural food "live" in shrimp larviculture the importance and sustainability of the same where you review the entire management system and development of the types of crops of phytoplankton (algae) and common the brine shrimp is one of the main foods currently stored and how they select their criteria for calculating the effectiveness of hatching and hatching rate. It also discusses the management of its parameters, formulas, food additives, materials used in each of the phases.

Key words: Aquaculture, live food, algae, brine shrimp

1.-Introducción

Si bien el desarrollo de la acuicultura a nivel mundial se va a realizar a través de sistemas de explotación semi-intensivos e intensivos, como se ha considerado de una manera general, entonces se requerirá del suministro de cantidades considerables de fertilizantes y alimentos.

En la Acuacultura, uno de los factores limitantes es la obtención y producción de alimentos que cubran todos los requerimientos para las especies de cultivo y que resulten costeables. El alimento vivo (fitoplancton y zooplancton) es esencial durante el desarrollo larvario de peces, crustáceos y moluscos.

En la actualidad la investigación orientada hacia los microorganismos como fuente de alimentación está en pleno desarrollo. En países como Japón, donde se practica con éxito la Maricultura, los cultivos masivos de microalgas, rotíferos, copépodos y cladóceros son la base de la producción comercial.

Dado el interés que existe por la Acuacultura en Latinoamérica y el Caribe, dirigido principalmente a las especies de importancia comercial de peces, moluscos y crustáceos en condiciones controladas para la producción y alta supervivencia de semillas

en sistemas de cultivo semi-intensivo e intensivo, se hace necesario el conocer las diferentes alternativas de producción de alimento vivo a gran escala, ya que es difícil sustituir el alimento natural, pues las dietas artificiales generalmente provocan altas mortalidades por deficiencias nutricionales cuando no están balanceadas.

Por otra parte, en la última década se ha tratado de sustituir los alimentos vivos por dietas micro encapsuladas o por técnicas que permitan el almacenamiento por congelado o liofilización por tiempo indefinido de estos alimentos y en términos generales no resuelven el problema real que es la demanda constante de alimento vivo y resultan incosteables.Una solución a este problema se fundamenta en el conocimiento, optimización y automatización de los sistemas de cultivo de fitoplancton y zooplancton, para llevarlos a niveles masivos de producción semicontinua o continua. Se logra optimizar un cultivo conociendo la concentración adecuada de nutrientes, buscando una coordinación entre el crecimiento y la utilización de estos nutrientes, estandarizando una taza de dilución o cosecha óptima a intervalos periódicos para lograr una producción alta y sostenida a largo plazo.El conocimiento y control de los parámetros ambientales óptimos en los cultivos de fitoplancton y zooplancton es muy importante, ya que no sólo permiten la supervivencia y desarrollo de los organismos en cultivo, sino además factores como la temperatura y la salinidad regulan la concentración y calidad de nutrientes esenciales como son las vitaminas, los aminoácidos y los ácidos grasos.

En los ecosistomas naturales acuáticos, la continuidad de las especies depende del equilibrio establecido entre los diferentes niveles de la trama trófica. Así, el desarrollo y supervivencia de larvas y juveniles depende de la presencia de organismos que conforman el fitoplancton y el zooplancton, quienes a su vez se producen en presencia de los nutrientes adecuados.

Es de gran importancia el conocer la composición química de los alimentos vivos, pues el utilizar un

recurso pobre en nutrientes esenciales puede causar el desarrollo anormal y muerte masiva de las especies en cultivo. 

2. Objetivos Investigar los métodos, operaciones, manejo

de diferentes tipos de alimento vivo y funcionamiento dentro de la fisiología de la larvicultura del camarón

Contrastar la ventajas y desventajas de producción y alimentación con alimento vivo

Observe la interacción entre el alimento vivo y la preferencia alimentación de la larva de camarón

3. Procedimientos

3.1 Alimento vivo (Microalgas).- Son llamadas microalgas a una gran cantidad de especies que constituyen el fitoplancton que abarca desde organismos autótrofos hasta microflagelados y microciliados auxótrofos.Estas especies aportan un alto contenido nutricional para peces, crustáceos y moluscos, además de ofrecer facilidades de manejo en sistemas de cultivo tanto en laboratorio como en producción a gran escala con fines comerciales.Los recipientes de cultivo más comúnmente usados son de materiales no tóxicos como las cajas de Petri, matraces Erlenmeyer, matraces Ferenback, carboys o garrafas, etc., adecuados para cultivos de laboratorio. Para cultivos a gran escala los recipientes de plástico, madera y concreto son los más recomendables, incluyendo los estanques rústicos en áreas rurales son los sistemas más económicos.En cultivos masivos la aereación es un factor muy importante para la homogenización de los nutrientes y para evitar la sedimentación de las microalgas. Las diatomeas suelen acumularse en lugares donde el agua no se mezcla, ésto también depende de la forma

del recipiente de cultivo que cuando no es adecuado retarda el crecimiento.Otro factor importante es la penetración de la luz en el cultivo; en los cultivos masivos la profundidad es tan grande que la intensidad de la luz incidente no es suficiente para la fotosíntesis, hasta el fondo del tanque. En los cultivos masivos a la intemperie la penetración de la luz es más efectiva, pero se debe reducir la intensidad de la luz fuerte, cubriendo estos

estanques con una malla. En cultivos a gran escala es recomendable la inyección de CO2 (0.5%) para contribuir al proceso fotosintético.Para muchas especies de Diatomeas la temperatura óptima oscila entre los 15 y 20°C, pocas especies de esta familia crecen a más de 28°C, las cloroficeas pueden soportar altas temperaturas; un ejemplo es el cultivo masivo a la intemperie de Chlorella saccharophila, cuyas temperaturas oscilan entre 12.5 – 30°C.El crecimiento y la división celular son afectados por la intensidad de la luz y el fotoperíodo (horas de iluminación y obscuridad) en relación también a la temperatura, por ejemplo en Diatomees a 20°C y 1,000 lux se obtiene un crecimiento favorable.

TABLA 1. CARACTERISTICAS DE ALGUNAS DE LAS ESPECIES DE ALGAS UNICELULARESUTILIZADAS EN ACUACULTURA

Estas especies se han utilizado en acuicultura marina dados su valor nutritivo y digestibilidad, además de su capacidad para crecer en cultivos masivos. La duración del ciclo celular como los requerimientos de temperatura son suceptibles de variación mediante selección de variedades.

TABLA 2. REQUERIMIENTOS PRINCIPALES DE LOS CULTIVOS DE MICROALGAS

En esta tabla se exponen los requerimientos principales de los cultivos de microalgas y sus valores aproximados. En cada caso habrá que estudiar los reqùerimientos particulares de la especie y de la variedad que se vaya a cultivar en las condiciones concretas de cultivo que se van a utilizar, por lo que estos datos son sólo orientación (Kinne, 1979).El fotoperíodo es un factor que regula la división celular, en diatomeas la reproducción asexual (división) ocurre durante el período de luz y éste es acelerado bajo iluminación continua. En contraste las especies formadoras de auxosporas (ésporas sexuales), dan lugar a células del mismo tamaño y

ésto ocurre en el período de obscuridad. Por lo tanto, el período de iluminación puede ajustarse de acuerdo a los objetivos del cultivo: el fotoperíodo continuo (horas de iluminación prolongada) produce

crecimientos rápidos, un fotoperíodo con horas de luz y obscuridad semejante al fotoperíodo solar mantiene un crecimiente normal y saludable.

3.1.2 Medio de cultivo.- Se han desarrollado diferentes medios para el cultivo de Microalgas que van desde las fórmulas para enriquecer el agua de mar natural, hasta el uso de medios artificiales que permitan resultados constantes en contraste con los resultados tan variables que brinda el uso del agua de mar natural

que entre otros factores depende del lugar donde se colecta ésta, y el tiempo de almacenamiento de la misma.El fitoplancton se desarrolla y multiplica en relación de las condiciones fisicoquímicas del medio. En términos generales son los macronutrientes o factores limitantes del crecimiento el carbono, Nitrógeno, Fósforo, Silicio, Magnesio, Potasio y Calcio, que se requieren en cantidades relativamente grandes, mientras que los llamados micronutrientes (Fierro, Manganeso, Cobre, Zinc, Sodio, Molibdeno, Cloro y Cobalto) se necesitan en menores cantidades.Existen otros medios que incluyen en su composición sustancias orgánicas (vitaminas, aminoácidos) necesarios para aquellas especies de microalgas Auxótrofas, es decir que no sintetizan por medio de la fotosíntesis este tipo de compuestos y resultan factores que pueden limitar su crecimiento; tal es el caso de Platimonas, Chrysophytas y algunas Bacillariophyceas.

3.1.3 Equipo e Instalaciones.-

1. Sala o Laboratorio de Cultivo: Se recomienda para fines de mantenimiento de cepas, transferencias sucesivas de cultivos, crecimiento de cultivos en pequeños y medianos volúmenes. Generalmente para fines de investigación las siguientes características: Laboratorio con temperatura controlada 18–20°C.

2. Paredes y pisos de azulejo en color blanco.3. Instalaciones para el cepario y cultivo

intermedios con lámparas de luz blanca fría fluorescente (20W–37W).

4. Instalaciones tipo invernadero (ventanas de cristal o plástico con temperatura controlada).

5. Cuarto de Siembra: Puede instalarse dentro del mismo laboratorio una cabina con campana de flujo laminar o bien una simple mesa de laboratorio con instalación de gas para dos mecheros para la inoculación en condiciones acépticas.

6. Sala de Producción: Para volúmenes de 200 l o más, se requieren recipientes de materiales plásticos no tóxicos y de preferencia transparentes para el desarrollo a nivel masivo de las diferentes especies del plancton. En este tipo de instalación es

recomendable el uso de la luz solar, pues el uso de la luz artificial es de muy alto costo y se require además, de equipo para mantener la temperatura a 18–20°C. En zonas de clima templado para cultivos masivos se pueden desarrollar éstos a la intemperie, cubriendo los recipientes en caso de lluvia. En la Figura 5 se muestra un ejemplo de instalaciones para cultivo masivo, utilizando la luz solar.

3.2 Alimento vivo (artemia).-El alimento vivo más importante hasta hoy es la Artemia, en particular los nauplios recién eclosionados fuera de los quistes. Los quistes de Artemia comercialmente disponibles se cosechan de grandes ecosistemas naturales y los factores que pueden interferir en la producción están fuera del control humano. Consecuente, la disponibilidad de quistes de Artemia no es predecible y los precios pueden fluctuar dentro de amplios márgenes.

Es por lo tanto de primordial importancia que tal valioso recurso natural sea utilizado en la manera más eficiente. Primeramente, al momento de adquirir, el acuacultor deberá seleccionar el mejor producto entre las alternativas ofrecidas. Luego, cuando los nauplios son producidos, las condiciones óptimas de eclosión deben ser observadas con respecto a máximizar el rendimiento. Finalmente, la Artemia producida debe ser manipulada de tal manera que sus propiedades nutritivas se conserven tan completas como sea posible hasta el momento

que éstas sean alimentadas a las larvas.

El conocimiento de que el abastecimiento de quistes de Artemia puede ser limitado ha intensificado el estudio de nuevas fuentes de alimento para larvas de camarón.

Alternativas válidas pueden ser encontradas entre los rotíferos planctónicos (e. g.Brachionus plicatilis, usualmente usado en la larvicultura de peces marinos), los copépodos y también dentro de la misma Artemia en su estadio adulto (llamado biomasa de Artemia). Sin embargo, en la búsqueda de un nuevo alimento vivo larvario no sólo se dirige a disminuirla dependencia de la industria en un artículo alimenticio, sino igualmente con el deseo de diversificar el paquete nutricional que se ofrece actualmente a las larvas.La eficiencia nutricional del alimento vivo es regida por condiciones naturales ( e.g.Artemia) o zoo-técnicas (e.g rotíferos cultivados) y es una característica determinante para cada lote. En años recientes varias técnicas han sido desarrolladas y publicadas tanto como para obtener un óptimo beneficio de las propiedades nutritivas de organismos alimentarios vivos así como para modificarlas.

3.2.1 Clasificación sistemática (artemia).-La clasificación sistemática de la Artemia hasta el nivel de género es dado por Flössner (1972):• Clase : Crustacea• Subclase : Branchiopoda• Super Orden : Anostraca• Familia : Artemiidae• Género : Artemia

-Artemia salina Lymington, Inglaterra (actualmente extincta)-Artemia tunisiana Europa-Artemia franciscana América (Norte, Central y Sur)-Artemia persimilis Argentina-Artemia urmiana Irán-Artemia monica Lago Mono, California-EUA

3.2.2 Ciclo de la artemia.-La Artemia posee la propiedad de reproducirse de dos maneras diferentes.Dependiendo de las condiciones ambientales ya sea larvas de libre natación (ovoviviparidad) o quistes o huevos latentes (oviparidad) son liberados. En el último caso el desarrollo embrionario es reversiblemente interrumpido en el útero: en la etapa de gástrula el embrión es rodeado por una cáscara protectora quitinosa y una reserva de carbohidrato es depositada. Por medio de este estado ametabólico (diapausa), la Artemia es capaz de sobrevivir condiciones ambientales extremas. Con la interrupción de la condición de diapausa y con la trasnferencia de los quistes a condiciones óptimas de

incubación, la gástrula reanuda su desarrollo hasta que ésta emerja.

La primera etapa larval de la Artemia (liberada como tal por ovoviviparidad reproduciendo hembras o incubando fuera de los quistes), también llamada Instar I, tiene un color castaño-anaranjado (reserva acumulada de vitelo) y cuyas medidas promedian 0,5 mm de longitud.

La larva Instar I es incapaz de tomar el alimento, ya que su sistema digestivo no es aún funcional (la boca y el ano están todavía cerrados). Después de alrededor de 12 horas el animal muda en la segunda etapa larval (Instar II). A partir de esta etapa el sistema digestivo es funcional y pequeñas partículas de tamaño que oscilan entre 1-40 m pueden ser ingeridas (e.g. células de algas, bacterias, detrito).

La larva de Artemia crece a la etapa adulta mediante una serie de 15 mudas. Durante este desarrollo larval las extremidades en la región frontal continuamente se diferencian resultando en, la reducción gradual de las mandíbulas larvales, finalmente reemplazadas por las mandíbulas del adulto y por un dimorfismo sexual de las segundas antenas.

3.2.3 Selección de lote nauplios de artemia).-El valor de la Artemia como fuente económico y nutricional para larvas de peces y de camarones es determinado por un número de factores:• Almacenamiento de los quistes• Morfometría de los nauplios• La calidad nutricional de los nauplios• Características de eclosión de los quistes

ALMACENAMIENTODE LOS QUISTESEl lapso de tiempo entre el envasado de los quistes y su consumo en el laboratorio puede variar desde unas pocas semanas hasta varios años. Su viabilidad durante este período depende principalmente de las condiciones de procesamiento, transporte y almacenamiento del cual sólo parte del último está bajo completo control del acuacultor.

De ser posible, se debería limitar a comprar aquellos lotes de Artemia que han sido almacenados bajo condiciones de refrigeración. Es también una buena práctica examinar el contenido de agua de los quistes ya que este parámetro correlaciona negativamente la

duración de vida de los quistes: quistes con buena eclosión pero con un contenido de agua sobreel 8% deberían únicamente ser considerados para inmediato consumo.

3.2.4 Características de eclosión de los quistes de artemia.-

El potencial de eclosión de los quistes de Artemia es cuantificado por el porcentaje de eclosión (E%) y la eficiencia de eclosión (EE). El E% es de valor biológico ya que indica la viabilidad de los quistes como tal. La EE toma enconsideración no solamente los quistes pero también las posibles impurezas. La EE es de importancia económica para el acuacultor ya que representa el número de nauplios que eclosionan de 1g de producto tomando en consideración el producto entero (i.e. quistes e impurezas posibles).

Otra característica de eclosión de importancia práctica directa para el acuacultor es la tasa de eclosión (TE) o la evolución de la eclosión durante el período de incubación. Es importante que los quistes eclosionen de manera rápida y sincrónica.Los puntos característicos en la curva de eclosión son:• t10 tiempo cuando el 10% de los quistes viables han eclosionado• t50 tiempo cuando el 50% de los quistes viables han eclosionado• t90 tiempo cuando el 90% de los quistes viables han eclosionado• ts sincronización de la eclosión: t90-t10

3.2.5 Determinación de la eficiencia de eclosión (EE).-PROCEDIMIENTO

Fijar la muestra con unas gotas de LUGOL Observación microscópica y conteo del

número de nauplios: N (= 42 en el ejemplo ilustrado) Cálculo de la EFICIENCIA DE ECLOSIÓN

(EE) Cantidad de quistes incubados: C = 2 g Volumen de la eclosión: V = 1000 ml Volumen de la muestra: M = 100 μl = 0.1

ml

3.2.5

Determinación del porcentaje de eclosión (E%).-

La muestra previamente fijada con lugol y analizada para la EE será tratada con HIPOCLORITO DE SODIO.

Las cáscaras vacías y los quistes que no eclosionaron se disuelven (descapsulación).

De estos últimos quedan los embriones. Observación microscópica y conteo de los

embriones: E (=9 en el ejemplo ilustrado). Cálculo del PORCENTAJE DE ECLOSIÓN

(E%). Número de nauplios: N (= 42 en el ejemplo

ilustrado). Número de embriones: E (= 9 en el

ejemplo).

4.- Conclusiones.

El alimento natura puede ser la mejor opción al alimentar siempre y cuando sea aplica y manejada de una manera ordenada y eficaz dando resultados buenos para la producción y calidad de la larva

El cultivo de Artemia en piscinas con agua de mar solamente es factible cuando se toma las medidas para la eliminación de predadores. Cuando se puede alcanzar esta condición, esta manera de producción de biomasa requiere menos esfuerzo o experiencia que la producción en Artemia y las cosechas son mayores.

El cultivo masivo de algas depende del control de lo parámetros físicos y químicos del medio enriquecido para que su curva de crecimiento no se a afectada.

5.-Bibliografia.

www.fao.org/docrep/field/ 003/AB473S/AB473S05.htm

www.nutrishrimp.com/ pdf/prod_30.pdf

www.revistaaquatic.com/ aquatic/art.asp?t=h&c=92

http:// pacrc.uhh.hawaii.edu/mexico/files/manual/es_04_shrimp_farming_methods.pdf

“Manual de la buenas prácticas en laboratorios de camaroneras” by Marco Alvarez