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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES
ESCUELA DE BIOLOGÍA
TESIS DE GRADO PREVIO A LA OBTENCIÓN DE
TÍTULO DE BIÓLOGO
Cuantificación de Plomo (Pb) en el ensamble de
Murciélagos (Mammalia: Chiroptera) de la ciudad
de Guayaquil y zonas aledañas (Guayas-Ecuador).
MICHELLE ANABELLA BAQUERIZO HERMENEGILDO
2016
I
©DERECHO DE AUTOR
MICHELLE ANABELLA BAQUERIZO HERMENEGILDO
2016
II
DIRECTOR DE TESIS
Blgo. Jaime Salas Zambrano M.Sc
III
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES
ESCUELA DE BIOLOGÍA
Calificación que otorga El Tribunal que recibe la Sustentación y
Defensa del Trabajo individual de Titulación
TESIS
“Cuantificación de Plomo (Pb) en el ensamble de Murciélagos (Mammalia: Chiroptera) de la ciudad de Guayaquil y zonas
aledañas (Guayas-Ecuador).”.
Autor: MICHELLE ANABELLA BAQUERIZO HERMENEGILDO
Previo a obtener el Título de BIÓLOGO
MIEMBROS DE TRIBUNAL CALIFICACIÓN
Blga. Mónica Armas Soto, MSc. …….……………………. PRESIDENTA DEL TRIBUNAL
Blga. Ángela Ayala Bazurto, MSc. …….……………………. MIEMBRO DEL TRIBUNAL
Ing. Guillermo Baños Cruz, Msc …….……………………. MIEMBRO DEL TRIBUNAL SUSTENTACION Y DEFENSA DEL TRABAJO INDIVIDUAL DE TITULACIÓN REALIZADA EN LA SALA DE MAESTRÍA DE LA FACULTAD. Fecha:………………………………………………………….CERTIFICO
Abg. JORGE SOLORZANO CABEZAS SECRETARIO
IV
DEDICATORIA
Fruto de mi esfuerzo, y con gran satisfacción se lo dedico a mis padres,
hermanos y sobrinos…
V
AGRADECIMIENTOS
A mí distinguido director de tesis MSc. Jaime Salas Zambrano por guiarme a lo
largo del presente trabajo, por su paciencia, apoyo y predisposición para todas
y cada una de mis consultas.
A Fundación PROBOSQUE por permitirme muestrear dentro del Bosque
Protector Cerro Blanco.
A Fundación Siglo XXI, por permitirme el ingreso a los parques lineales
ubicados a lo largo de la Av. Barcelona y seguir con la fase de campo.
Al Instituto de Investigaciones de Recursos Naturales (IIRN), por las facilidades
que se me otorgaron para llevar a cabo los análisis (Fase de laboratorio).
A MSc. Mariuxi Mero, por su predisposición para guiarme con los análisis físicos
y químicos de las muestras.
A la Dra. Beatriz Pernia, por su predisposición para guiarme con el análisis de
datos estadísticos.
Al grupo de trabajo del laboratorio Ambar, David, Jorge, Josue, Kenya, Nelson,
por brindarme su amistad, apoyo y motivación, en especial a Lissette y Alfredo,
mil gracias por impartirme esos pequeños conocimientos sobre el programa de
georreferenciación ArcGis, por su apoyo y su amistad, gracias.
Finalmente, y no por ser menos importantes, a mis colegas y grandes amigos,
Mayra Simbaña, Ronald González y María Quiñonez, por todo su apoyo y
predisposición brindada en los muestreos.
VI
CONTENIDO
RESUMEN .................................................................................................... xii
ABSTRACT .................................................................................................. xiii
1. INTRODUCCIÓN ..................................................................................... 1
1.1. Marco Teórico ................................................................................... 5
2. ANTECEDENTES ................................................................................. 10
3. JUSTIFICACIÓN ................................................................................... 15
4. HIPÓTESIS ........................................................................................... 17
5. OBJETIVOS .......................................................................................... 17
Objetivo general ........................................................................................ 17
Objetivos Específicos ................................................................................ 17
6. ÁREA DE ESTUDIO .............................................................................. 18
6.1. AREA URBANA .............................................................................. 18
Ciudad de Guayaquil....................................................................... 18
Cantón Eloy Alfaro (Durán) ............................................................. 20
6.2. ÁREA DE CONSERVACIÓN .......................................................... 21
Bosque Protector Cerro Blanco ............................................................. 21
7. METODOLOGÍA .................................................................................... 23
7.1. MATERIALES Y EQUIPOS ............................................................. 23
Materiales de campo ............................................................................. 23
VII
Reactivos, materiales y equipos usados en el laboratorio ..................... 23
7.2. Diseño de muestreo ........................................................................ 25
7.3. Implementación de diseño de muestreo en las áreas de estudio ... 25
7.4. FASE DE CAMPO........................................................................... 28
7.5. FASE DE LABORATORIO .............................................................. 31
8. ANÁLISIS ESTADÍSTICO ...................................................................... 41
9. RESULTADOS ...................................................................................... 42
10. DISCUSION ........................................................................................... 85
11. CONCLUSIONES .................................................................................. 92
12. RECOMENDACIONES.......................................................................... 93
13. BIBLIOGRAFÍA ...................................................................................... 94
14. GLOSARIO .......................................................................................... 105
ANEXOS .................................................................................................... 107
VIII
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Anatomía de un Murciélago. ............................................................. 7
Figura 2. Esquema de la Ecolocalización ........................................................ 7
Figura 3. Proceso de Bioacumulacion y Biomagnificacion ............................... 9
Figura 4. Área de estudio ............................................................................... 27
Figura 5. Técnica de captura a nivel del suelo ............................................... 28
Figura 6. Técnica de captura a nivel Subdosel .............................................. 29
Figura 7. Toma de medidas morfométricas. ................................................... 30
Figura 8. Cámara saturada de cloroformo ..................................................... 31
Figura 9. Fijación del individuo para la disección ........................................... 32
Figura 10. Vouchers preparados vía seca ..................................................... 34
Figura 11. Vouchers preparados vía húmeda ................................................ 34
Figura 12. Ingreso de muestras en el museo ................................................. 35
Figura 13. Muestra homogenizada y secada en la estufa .............................. 36
Figura 14. Pulverización y pesaje de muestra................................................ 37
Figura 15. Muestras digeridas en beackers ................................................... 38
Figura 16. Muestras aforadas en balones de 25 ml. ...................................... 38
Figura 17. Digestión de muestras en tubos de ensayo .................................. 39
Figura 18. Filtración de muestras. .................................................................. 39
Figura 19. Lectura de muestras ..................................................................... 39
Figura 20.Saccopteryx bilineata ..................................................................... 45
Figura 21. Carollia brevicauda ....................................................................... 46
Figura 22.Phyllostomus elongatus ................................................................. 48
Figura 23.Micronycteris megalotis .................................................................. 49
Figura 24.Artibeus fraterculus ........................................................................ 50
IX
Figura 25.Artibeus aequatorialis ..................................................................... 52
Figura 26.Artibeus lituratus ............................................................................ 54
Figura 27. Platyrrhinus matapalensis ............................................................. 56
Figura 28.Glossophaga soricina ..................................................................... 58
Figura 29. Molossus molossus ....................................................................... 60
Figura 30.Promops davisoni........................................................................... 62
Figura 31. Tadarida brasiliensis ..................................................................... 63
Figura 32. Nyctinomops macrotis .................................................................. 64
Figura 33.Eumops wilsoni .............................................................................. 66
Figura 34.Cynomops greenhalli ..................................................................... 67
Figura 35. Myotis nigricans ............................................................................ 69
Figura 36. Propuesta de Ciclo del Plomo en Murciélagos en la ciudad de
Guayaquil y zonas aledañas .......................................................................... 84
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Total de Familias, Géneros y Especies de quirópteros obtenidos. ... 70
Tabla 2.Concentraciones de plomo en la especie Tadarida brasiliensis*. ..... 72
Tabla 3.Concentraciones de plomo en la especie Molossus molossus. ........ 72
Tabla 4.Concentraciones de plomo en la especie Glossophaga soricina. ..... 73
Tabla 5.Concentraciones de plomo en la especie Saccopteryx bilineata. ...... 74
Tabla 6. Concentraciones de plomo en la especie Artibeus fraterculus. ........ 74
Tabla 7.Concentraciones de plomo en la especie Artibeus lituratus .............. 75
Tabla 8.Concentraciones de plomo en la especie Artibeus aequatorialis ...... 76
Tabla 9.Concentraciones de plomo en la especie Platyrrhinus matapalensis 76
X
Tabla 10.Concentraciones de plomo en la especie Carollia brevicauda ........ 77
Tabla 11.Concentraciones de plomo en la especie Phyllostomus elongatus . 77
Tabla 12. Concentraciones de plomo en la especie Micronycteris megalotis 77
Tabla 13. Concentraciones de plomo en la especie Eumops wilsoni ............. 78
Tabla 14.Concentraciones de plomo en la especie Nyctinomops macrotis ... 78
Tabla 15. Concentraciones de plomo en la especie Promops davisoni ......... 78
Tabla 16.Concentraciones de plomo en la especie Cynomops greenhalli ..... 79
Tabla 17.Concentraciones de plomo en la especie Myotis nigricans ............. 79
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico 1. Porcentaje de captura de individuos vivos ..................................... 43
Gráfico 2. Total de muestras analizadas en tejido óseo y tejido blando ......... 43
Gráfico 3. Concentración total de plomo en individuos capturados en zona
urbana ............................................................................................................ 44
Gráfico 4. Concentración total de plomo en individuos capturados en Bosque
....................................................................................................................... 44
Gráfico 5.Comparación de concentración de plomo en muestra de hueso de M.
molossus ........................................................................................................ 80
Gráfico 6.Comparación de concentraciones de plomo en muestra de tejido
blando entre especies de zona urbana y áreas de conservación................... 81
Gráfico 7.Concentraciones de plomo a nivel de Gremio Trófico en muestras de
tejido blando ................................................................................................... 82
Gráfico 8.Concentraciones de plomo en muestras de tejido óseo a nivel de
Gremio Trófico ............................................................................................... 83
XI
INDICE DE ANEXOS
Anexo 1. Planilla de campo .......................................................................... 108
Anexo 2. Codificación y medidas de muestras analizadas. ......................... 109
Anexo 3 Muestras tomadas del museo ........................................................ 124
Anexo 4. Puntos de Muestreo ...................................................................... 126
Anexo 5. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y
hembras de la especie M. molossus ............................................................ 127
Anexo 6. Comparación de rangos de concentración de plomo entre hembras de
la especie M. molossus de zona urbana y de bosque. ................................. 128
Anexos 7. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos
de la especie M. molossus de zona urbana y de bosque. ............................ 128
Anexo 8. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y
hembras de la especie A. aequatorialis. ..................................................... 129
Anexo 9. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y
hembras rangos de la especie G. soricina. .................................................. 129
Anexo 10. Comparación de rangos de concentración de plomo entre hembras
de la especie G. soricina de zona urbana y de bosque. ............................... 130
Anexo 11. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y
hembras de la especie A. lituratus ............................................................... 130
Anexos 12. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos
de la especie A. lituratus de zona urbana y de bosque. ............................... 131
Anexo 13. Permiso de investigación ............................................................ 132
Anexo 14. Carta de Autorización otorgada por "Fundación Siglo XXI" ........ 137
Anexos 15. Collage de especies analizadas ................................................ 138
Anexos 16 Grupo de trabajo ........................................................................ 139
XII
RESUMEN
Durante los meses de septiembre del 2015 a julio del 2016 se colectaron
murciélagos dentro de los límites urbanos de la ciudad de Guayaquil, Durán y
en el Bosque Protector Cerro Blanco. Se analizaron un total de 87 individuos,
agrupados en 4 familias (Molossidae; Phyllostomidae; Vespertilionidae y
Emballonuridae) 14 géneros y 17 especies. De estos, los géneros más
abundantes fueron Artibeus, Molossus y Glossophaga. 59 individuos fueron
colectados vivos, 12 hallados muertos y 16 tomados del museo de la Facultad
de Ciencias Naturales. Cada muestra obtenida fue procesada y leída en el
Espectrofotómetro de Absorción Atómica del Laboratorio de
Espectrofotometría del Instituto de Investigaciones de Ciencias Naturales
(IIRN), laboratorio acreditado de la Facultad de Ciencias Naturales de la
Universidad de Guayaquil (UG). La más alta concentración de plomo fue
hallada en la especie Molossus molossus que habita en el Bosque con una
concentración de 150,36 mg/kg, mientras que la especie Artibeus fraterculus
presento una concentración de 128,52 mg/Kg, considerada la más alta entre
las especies estudiadas que habitan en zona urbana.
Palabras claves: Bioacumulación, Contaminación, Conservación,
Quirópteros, Ecotoxicología.
XIII
ABSTRACT
During the months of September 2015 to July 2016 bats were collected within
the city limits of the city of Guayaquil, Duran and the Cerro Blanco Protected
Forest. 14 genera and 17 species a total of 87 individuals, comprising 4
families (Phyllostomidae, Vespertilionidae, Molossidae and Emballonuridae)
were analyzed. Of these, the most abundant genera were Artibeus, Molossus
and Glossophaga. 59 individuals were collected alive, 12 found dead and 16
taken from the museum of the Faculty of Natural Sciences. Each sample
obtained was processed and read on the atomic absorption spectrophotometer
Spectrometry Laboratory of the Research Institute of Natural Sciences (IIRN)
accredited laboratory Faculty of Natural Sciences of the University of
Guayaquil (UG). The highest concentration of lead was found in the Molossus
molossus species that lives in the Forest with a concentration of 150,36 mg /
kg, while the species Artibeus fraterculus had a concentration of 128,52 mg /
kg, considered the highest among the species studied living in urban areas.
Keywords: bioaccumulation, contaminants, Conservation, Chiroptera,
Ecotoxicology
1
1. INTRODUCCIÓN
Uno de los contaminantes de mayor riesgo en la naturaleza son los metales
pesados, a diferencia de otras sustancias nocivas para el ambiente éstos son
elementos químicos que tienen la capacidad de ser biorefractarios; una vez
que invaden el ecosistema pueden permanecer en él durante cientos de años
(Romero, 2005), por no ser biodegradables, lo cual dificulta su degradación o
eliminación del nicho al que invaden (Alcivar & Mosquera, 2011; INECC,
2009). Estos elementos tóxicos se encuentran en forma natural en la corteza
terrestre, y están sujetos a ciclos biogeoquímicos que determinan su
presencia y concentración en los diferentes ecosistemas (Lozano, 2010).
La perturbación antropogénica puede modificar considerablemente la
distribución y concentración de los metales pesados en el ambiente (Guerrero,
2014; Mero et al., 2012). En general, esto ocurre durante la extracción minera,
el refinamiento de productos mineros o por la liberación al ambiente de
efluentes industriales y emisiones vehiculares (ATSDR, 2007; Contreras,
Mendoza, & Arismendis, 2004).
De esta forma, el hombre desempeña un papel fundamental en el aporte de
metales pesados en el medio ambiente, introduciéndolo en distintas
actividades industriales, tales como: la fabricación de cerámicas, vidrios,
pigmentos, armamentos, reactivos químicos, tuberías, aditivos antidetonante
de gasolina, insecticidas, protección contra rayos x, entre otros (Limo, 2003;
Martinez et al., 2008; WHO, 1989).
2
Varios estudios previos en la ciudad de Guayaquil (Guayas, Ecuador) han
determinado que existe contaminación por metales pesados (Alcívar &
Mosquera 2011; Kuffó 2013; Mero 2010; Mero et al., 2012; Rodriguez 2013;
Siavichay 2013), con evidencia que organismos de ecosistemas estuarinos
bioacumulan elementos como plomo (Pb), cadmio (Cd) y mercurio (Hg), y
presumen que su principal origen es la combustión de carburantes fósiles,
minería, industria metalúrgica e incineración de residuos (Kuffó, 2013; Novo,
1999; Yates et al., 2014).
En el caso de los seres vivos, su concentración puede incrementarse a lo largo
de la cadena de alimentación, dicho proceso denominado bioacumulación
(Escobar, 2010). La ingesta de plantas o animales contaminados puede
provocar síntomas de intoxicación a niveles críticos (INECC, 2009; Lozano,
2010; Romero, 2005).
En cuanto al plomo, las fuentes de contaminación son más variadas y
proceden de varios ámbitos. Gran parte del plomo se obtiene por reciclado de
chatarras como las placas de baterías y de las escorias industriales como
soldaduras, metal para cojinetes, recubrimientos de cables, entre otros
(Cousillas, 2007; MAGRAMA, 2013). Las áreas urbanas y cercanas a
carreteras han sido la principal fuente de plomo antropogénico; debido a ello
las concentraciones de plomo se encuentran más elevadas en el suelo y en
organismos con mucha proximidad a carreteras donde la densidad de tráfico
es elevada (Cousillas, 2007).
El óxido plumboso (Pb O) ha sido usado durante muchos años como pigmento
blanco en las pinturas; en muchos países se sigue usando el tetraetilo de
3
plomo ([C2H5]4Pb) como aditivo de las naftas añadidos a los carburantes de
automóviles, los cuales al combustionarse, producen partículas del metal que
pasan al aire y quedan en el polvo de los caminos (ATSDR, 2007; WHO,
1989). Estos compuestos se usan en soldaduras, en la cobertura maleable de
algunas pilas, y como elementos en las baterías de los autos (Arellano, 2007).
Como se mencionó anteriormente, la fauna y flora son sensibles a estos
metales pesados, pues no lo pueden eliminar y se almacena en su interior;
esta retención de tóxicos da lugar a los procesos de bioacumulación y
biomagnificación (Escobar, 2010). En Ecuador, se están observando estos
procesos como principal efecto de la contaminación urbana, pero la mayoría
de estudios están enfocados a organismos acuáticos (Jiménez, 2012; Mero,
2010; Mero et al., 2012; Siavichay, 2013), y muy pocos en fauna terrestre y
vegetación (Ayala & Romero, 2013; Ballesteros, 2011; Sarmiento, 2013).
Entre los organismos urbanos que podrían servir como biomonitores para
determinar niveles de contaminación de un ecosistema se encuentran los
murciélagos (Walker et al.,2007; Williams et al., 2010).
Los murciélagos son mamíferos con la capacidad de volar, por lo que al
realizar sus actividades pueden trasladarse desde zonas de bosque hasta
zonas urbanas, y viceversa; también se le atribuye la alta especialización
hacia diferentes hábitos alimenticios y a su adaptación para ocupar nichos
ecológicos abandonados (Alava, 2014; Ayelen, 2013; Tirira, 2011; Vleut et al.,
2013). Por estas adaptaciones ecológicas es posible hallarlos en ambientes
urbanos.
4
Entonces, tomando en consideración la contaminación de la ciudad en donde,
la fauna y flora son la principal evidencia de bioacumulación de estos metales
tóxicos y que los murciélagos se han adaptado para residir zonas urbanas se
plantea la siguiente pregunta de investigación:
¿Cuál es la diferencia de la concentración de plomo (Pb) entre murciélagos
que habitan en la ciudad de Guayaquil y zonas aledañas (Guayas-Ecuador)?
5
1.1. Marco Teórico
Orden Chiroptera
Los murciélagos son uno de los grupos más numerosos de mamíferos en el
mundo y están representados por un amplio número de especies en el
Ecuador (Tirira, 2007). Las adaptaciones y cambios evolutivos que presentan
son únicos, no observados en otro orden de mamíferos, como la capacidad
de volar, el desarrollo de sistema de ecolocalización (Fig. 1 y 2), la alta
especialización hacia diferentes hábitos alimenticios, los ha hecho distribuirse
en casi todo los continentes permitiéndoles ocupar nichos ecológicos
anteriormente vacíos (Alava, 2014; Burneo, Proaño, & Tirira, 2015; Tirira,
2007).
Taxonómicamente, los murciélagos de encuentran en el orden Chiroptera, el
cual comprende 18 familias, 202 géneros y más de 1.100 especies distribuidas
en casi todo el planeta, ya que no han tenido mucho éxito en algunas islas
oceánicas muy aisladas, los polos o las zonas más frías de los hemisferios
(ACG, 2014; Batworlds, 2015).
En Ecuador, los quirópteros son el taxón más diverso de mamíferos,
conformadas por 8 familias, 64 géneros y 171 especies, distribuidas y
registradas en todo el territorio ecuatoriano, incluyendo las islas Galápagos y
los altos páramos, hasta cerca de los 4500 m de altitud (Burneo et al., 2015;
Tirira, 2015).
6
El occidente ecuatoriano goza de una disposición única de hábitats
neotropicales por la influencia directa de bosques húmedos del Chocó-Darién
por el norte y formaciones desérticas de Perú y Chile por el sur.
Características que han puntualizado una propia riqueza de especies con
niveles altos de endemismo para varios grupos taxonómicos, incluidos los
murciélagos. Se han realizado muestreos en 16 localidades a lo largo de la
costa incluyendo el Bosque Protector Cerro Blanco, suministrando
información biológica y de distribución geográfica para 66 especies de seis
familias: Emballonuridae, Phyllostomidae, Noctilionidae, Thyropteridae,
Vespertilionidae, y Molossidae (Alava, 2014).
Este grupo ejerce funciones ecológicas importantes: como la contribución a la
sucesión secundaria de bosques tropicales por la dispersión de semillas,
además cumplen un rol muy importante en el proceso de polinización, debido
a sus hábitos alimenticios son considerados controladores de plagas, entre
otros (Castro & Galindo, 2012; Muscarella & Fleming, 2007; Williams et al.,
2010).
Los murciélagos cumplen con las siguientes características que enmarcan a
esta especie como bioindicadora: son un taxón abundante, tienen un punto de
vista ecológico (desempeñan funciones en el ecosistema), poseen una
taxonomía diferenciada y son tróficamente diversos (Alava, 2014; Tirira,
2007). Debido a su diversidad y abundancia en los trópicos, ellos pueden
ofrecer una visión amplia de la salud de un ecosistema (Alava, 2014; Fenton
et al., 1992; Hill & Smith, 1984; Muscarella & Fleming, 2007).
7
Figura 1. Anatomía de un Murciélago.
Fuente: tomado de la web http://www.fotolog.com
Figura 2. Esquema de la Ecolocalización
Fuente: tomado de la web https://askabiologist.asu.edu
8
Generalidades
El término Ecotoxicología es una derivación del termino Toxicología, dicha
ciencia estudia los efectos adversos de sustancias tóxicas sobre organismos
individuales, consecuentemente la ecotoxicología estudiará las alteraciones
ambientales causadas por agentes tóxicos y la toxicidad directa sobre los
organismos presentes (Casarett & Doull, 2001; INECC, 2009).
Las principales vías de entrada de contaminantes a la atmósfera son por
evaporación, emisiones de chimenea y otras matrices; el transporte de
contaminantes en el aire generalmente es mucho más rápido que en la
hidrósfera, debido a que el aire tiene menor viscosidad (Casarett & Doull,
2001). El transporte de contaminantes en el aire se produce principalmente
por procesos de difusión o de advección. La difusividad del contaminante en
el aire depende de su peso molecular en comparación con: el aire,
temperatura del aire, separación molecular en colisión, energía de interacción
molecular, y la constante de Boltzmann (Calderón & Maldonado, 2008;
Casarett & Doull, 2001).
La contaminación puede dar lugar a una cascada de eventos, comenzando
con efectos sobre la homeostasis de los individuos y que se extiende a través
de poblaciones, comunidades, ecosistemas y paisajes (Placeres, Olite, &
Toste, 2006; Reyna, 1992). Otro suceso de contaminación es la
bioacumulación, evento que se da cuando los organismos vivos, absorben
tóxicos inversamente proporcional al que sus cuerpos pueden eliminar, por lo
9
que el contaminante se bioacumula en sus tejidos u órganos (Escobar, 2010).
Cuando ya existe una bioacumulación y este es transferido de un nivel trófico
a otro incrementando su concentración a través de la cadena trófica, se
considera que ha ocurrido la biomagnificación (Fig. 3); por lo que se considera
que los carnívoros es el gremio más propenso a acumular altas
concentraciones de elementos tóxicos (Escobar, 2010).
Figura 3. Proceso de Bioacumulacion y Biomagnificacion
Fuente: tomado de la web http://www.ecoticias.com
10
2. ANTECEDENTES
Entre los principales trabajos sobre bioacumulación de metales pesados en
murciélagos a nivel internacional se pueden citar:
Walker et al., (2007), en una primera evaluación de las concentraciones
de metales pesados tóxicos en murciélagos de los géneros Pipistrellus,
Plecotus y Myotis (Vespertilionidae) de Gran Bretaña, hallaron que la
acumulación de Pb, Cd y Hg en individuos de la región sur-oeste es
similar a la medida en los murciélagos de otros lugares de Europa.
Yates et al., (2013) realizaron una investigación determinando mercurio
en las especies: Pipistrellus subflavusdel, Myotis septentrionalis, Myotis
leibii, Myotis sodalis, Lasiurus borealis, Lasiurus cinereus y
Lasionycteris noctivagans, en el noroeste de EE.UU, concluyendo que
en las poblaciones de murciélagos de examinados, las hembras tenían
altas concentraciones de mercurio (Hg) y que el mismo se transfiere
fácilmente a las crías a través de la leche materna.
Zocche et al., (2010) evaluaron las concentración de metales pesados
en especies de murciélagos insectívoros en una zona minera de Brasil;
las especie Molossus molossus presentó 5.8 (±2.8) µg/g; Tadarida
brasiliensis concentro valores ≤ 7.38 µg/g mientras que Eptesicus
diminutus obtuvo valores ≤ 5.41 µg/g.
11
Williams et al., (2010) en Kosñipata, Cuzco (Perú) realizaron el primer
reporte sobre la contaminación de metales pesados en murciélagos de
Sudamérica; en un área perteneciente a la zona de amortiguamiento
del Parque Nacional Manu. En los géneros Carollia, Anoura y Sturnira
se hallaron niveles de Pb, Cd, Cu y Zn, siendo atribuidas la presencia
de Cu y Zn a ciertas funciones fisiológicas de las especies, mientras
que Pb y Cd estarían siendo absorbidas por vía respiratoria.
Entre las principales investigaciones realizadas a nivel nacional e
internacional sobre las concentraciones de metales pesados en ecosistemas
estuarinos y marino-costeras, tenemos:
Ahumada (1994), en la Bahía de San Vicente (Chile) demostró que los
bivalvos estarían siendo contaminados por metales pesados y
bioacumulando principalmente el Cd, seguido por el Zn, Ni y Pb debido
principalmente a la contaminación por parte de Industrias que
descargaban sus residuos líquidos directamente a la Bahía.
Ayala & Romero, (2013) realizaron un trabajo en el cantón Arenillas,
provincia del Oro, al sur de Ecuador, para cuantificar presencia de
Mercurio (Hg) y Arsénico (As) en la leche de las vacas de dicho sector,
concluyendo que de acuerdo a la Norma Técnica Ecuatoriana NTE
0009:2008, las concentraciones de arsénico no sobrepasan los límites
máximos permisibles para todas las muestras de leche de vaca
12
analizadas, mientras que los niveles de mercurio sobrepasan 2.2 veces
el limite permisible. Los autores estiman que la elevada presencia de
mercurio este causada por los químicos utilizados para la extracción de
oro en la mina artesanal los cuales presuntamente serian vertidos
directa o indirectamente en los afluentes del rio Arenillas, el mismo que
sería utilizado para el riego de pastizales o consumo directo del ganado
vacuno.
Mero (2010): en cuatro esteros del Estuario Interior del Golfo de
Guayaquil (Provincia del Guayas): Chupadores Grande, Chupadores
Chico, Las Loras y Las Cruces, determinó las concentraciones de
plomo y cadmio en moluscos bivalvos de interés comercial. Los
resultados indican que la especie que presentó mayor concentración
de cadmio fue el ostión, con valores promedio de 8.02 ppm
(Chupadores Chico), 6.25 ppm (Chupadores grande), 8.24 ppm (Las
Loras) y 7.49 ppm (Las Cruces); la mayor concentración de plomo fue
encontrada en los ostiones del estero Las Cruces con 5.03 ppm,
seguido de los ostiones del estero Chupadores Chico a los que se les
cuantificó 1.96 ppm. En los esteros Chupadores Grande y Las Loras,
las mayores concentraciones de plomo se encontraron en mejillones
con 1.98 y 1.75 ppm, respectivamente.
Mero et al. (2012): En Puerto El Morro (Provincia del Guayas) se
determinó las concentraciones de cadmio y plomo en dos especies de
moluscos de importancia comercial: concha prieta (Anadara
13
tuberculosa) y pata de mula (A. grandis); el promedio hallado en estas
especies fue de 4.24 y 4.01 ppm de cadmio y 3.37 y 2.62 ppm de plomo
para A. tuberculosa y A. grandis respectivamente. Estos resultados
evidencian una alta concentración de estos elementos tóxicos en los
organismos.
Siavichay (2013) determinó que el Cangrejo rojo (Ucides occidentalis)
residente de la Reserva Ecológica Manglares Churute tienen la
capacidad de concentrar Cadmio (Cd) y Plomo (Pb) en su tejido blando
y hepatopáncreas. Sin embargo las concentraciones halladas de Plomo
en U. occidentalis fueron inferiores a los límites máximos establecidos-
LME por la Legislación Internacional “Reglamento N° 1881/2006 de la
Comisión de la Unión Europea” (39CE), concluyendo que la presencia
de estos metales se encuentran en niveles permisibles y su presencia
no afecta al Cangrejo rojo.
Rodriguez (2013) analizó los niveles de metales pesados (Cd, Pb, Ni)
en los sedimentos de los esteros de la Ciudad de Guayaquil (Provincia
del Guayas), donde las más altas concentraciones se registraron en el
Puente 5 de Junio con valores promedio de 8,77 ppm para cadmio (Cd),
de 64,67 ppm para níquel (Ni) y de 230,08 ppm para plomo (Pb).
Kuffó (2013) cuantificó los niveles de metales pesados en mejillones
(Mytella strigata) de la zona urbano-marginal, en el estero salado de
Guayaquil; determinando que esta especie concentró los elementos
14
Cd, y Pb presentes en el agua, los cuales se han bioacumulado,
llegando en ambos casos a sobrepasar los LMP (Límites máximos
permisibles). En el caso del Pb el valor hallado fue de 3.10 ppm,
excediendo en 1 ppm el valor normal permisible el cual es de 2 ppm,
situación que constituye un riesgo para el ser humano y los animales,
aunque este tipo de molusco no es consumido por el ser humano, si es
parte intermedia de la red trófica acuícola que al final puede llegar al
hombre.
Por lo antes mencionado, es evidente que en Ecuador se ha investigado sobre
el efecto de la contaminación por metales pesados con énfasis en
ecosistemas estuarinos y marino-costeros, a través de su bioacumulación en
organismos propios de estos hábitats, pero no se ha desarrollado aún este
tema en ecosistemas terrestres, y sus efectos en organismos vertebrados
como los murciélagos, por lo que este es un trabajo inédito sobre los niveles
de concentración de metales pesados con fauna terrestre en Ecuador.
15
3. JUSTIFICACIÓN
Los quirópteros cumplen un papel crucial como agentes polinizadores y
controladores de plagas, e incluso como biomonitores para determinar niveles
de contaminación en un determinado ecosistema, dada su diversidad, a los
quirópteros se les atribuye un alto nivel de interacción en los ecosistemas
(Castro & Galindo, 2012; Muscarella & Fleming, 2007; Williams et al., 2010).
En este contexto, los murciélagos constituyen una parte integral del
ecosistema y su protección es considerada como de alta prioridad (Tirira,
2011).
Entre sus principales amenazas están la pérdida de hábitat, la destrucción y
perturbación de refugios, y el uso indiscriminado de sustancias tóxicas, que
incluyen los metales pesados(Burneo et al., 2015). Debido a que no se han
llevado a cabo estudios definitivos sobre los efectos nocivos en los
murciélagos, las concentraciones de metales que se encuentran en órganos
específicos sólo pueden ser interpretadas por comparación con las
concentraciones asociadas con la letalidad u otros efectos adversos
importantes demostrados por estudios toxicológicos en otros mamíferos (Kunz
& Parsons, 2009).
En el Ecuador la diversidad de quirópteros es particularmente alta, con 171
especies (Burneo et al., 2015; Tirira, 2015) y en ecosistemas de bosque seco,
como el Bosque Protector Cerro Blanco se ha identificado un total de 34
especies, representando el 20% del total de especies registradas en el país
(Alava, 2014).
16
En estos ecosistemas, algunas de estas especies han sido ubicadas en
categorías de amenaza como Eptesicus innoxius (Vulnerable-VU),
Amorphochilus schnabli (En Peligro-EN), Cabreramops aequatorianus (En
Peligro Crítico-CR), entre otras (Tirira, 2011).
Por lo dicho anteriormente, es necesario el desarrollo de investigaciones
orientadas a determinar si la contaminación por metales pesados están
afectando negativamente a las poblaciones de murciélagos (Yates et al.,
2014; Burneo et al., 2015).
En esta investigación se cuantifica la concentración de Plomo (Pb) en
murciélagos que habitan en la ciudad de Guayaquil y zonas aledañas, y el
Bosque Protector Cerro Blanco, reconocido internacionalmente como un Área
de Importancia para la Conservación de Murciélagos-AICOM (Burneo et al.,
2015) por lo que servirá como un insumo técnico en la elaboración de nuevas
propuestas de conservación a nivel local y nacional, y monitoreo de la
contaminación en ecosistemas terrestres y su fauna.
17
4. HIPÓTESIS
Existen diferencias de concentraciones de plomo (Pb) entre quirópteros de
zona urbana y los que habitan en bosques, lo cual representa una amenaza
para su conservación
5. OBJETIVOS
Objetivo general
Cuantificar la concentración de plomo (Pb) en murciélagos de
Guayaquil y sus zonas aledañas.
Objetivos Específicos
Estimar los niveles de concentración de Pb, en murciélagos que
habitan dentro del área de conservación “Bosque Protector Cerro
Blanco” y sus alrededores, y zonas urbanas como es la ciudad de
Guayaquil y el cantón Eloy Alfaro (Durán).
Establecer un patrón de comparación entre las diferencias de
concentración de Pb presentes en las distintas especies objeto de esta
investigación.
Identificar taxonómicamente especies o gremio trófico de murciélagos
que están bioacumulando plomo (Pb).
18
6. ÁREA DE ESTUDIO
El área de estudio se desarrolló principalmente en dos escenarios
identificados como:
6.1. AREA URBANA
Ciudad de Guayaquil
Guayaquil es la ciudad más grande de Ecuador, está situada en la
convergencia de dos grandes ríos: el Daule y el Babahoyo los cuales se unen
al norte de la ciudad que descargan en el Golfo de Guayaquil, el cual es el
principal río y accidente geográfico de todo el país. Está a 4 m.s.n.m. su
coordenada geográfica es: 2°11′00″S, 79°53′00″O, (Halberstadt, n.d.). El
escaso relieve con el que cuenta la ciudad, está formado por cerros que
atraviesan la ciudad y luego convergen dando a lugar al sistema montañoso
llamado "Chongón-Colonche" situado al oeste de la ciudad el cual alcanza los
800 msnm (Acosta, 2014; Gobierno Provincial del Guayas, 2012).
La ciudad está rodeada por bosques naturales, al Oeste en la región costera,
se extienden miles de hectáreas de Manglares, grandes árboles de la costa
del país con raíces sobre el mar, la isla Santay, frente a la ciudad, es un
Parque nacional. Los Manglares de Puerto Hondo, son un Parque nacional
para conservar el manglar en esta área, está dirigido por un club ecológico,
que ofrece la posibilidad de hacer ecoturismo.
19
Al Norte está el Cerro Azul, que es la extensión de la cordillera "Chongón
Colonche", también declarado Parque nacional, con grandes extensiones de
bosques naturales; al Este de la ciudad, se extienden grandes zonas agrícolas
y bosques, establecidos en las riberas de los ríos que bajan de la cordillera de
los Andes, hasta formar el río Guayas (Gobierno Provincial del Guayas, 2012).
También se puede apreciar áreas verdes, recreativas y sitios turísticos dentro
de la ciudad y en sus alrededores en los cuales podemos observar
notoriamente nuestra diversa fauna y flora, entre ellos tenemos:
Bosque Protector Cerro Blanco, dentro del perímetro urbano de la
ciudad, en el kilómetro 16 de la carretera Guayaquil - Salinas.
Bosque Protector Bosqueira: ubicado dentro de la ciudad.
Bosque Protector “La Prosperina”: ubicado dentro de la ciudad.
Bosque Papagayo de Guayaquil: ubicado dentro de la ciudad.
Malecón del Salado: ubicado dentro de la ciudad.
Área nacional de recreación Parque Lago, se encuentra en el Km. 26
de la carretera Guayaquil - Salinas.
Su temperatura es cálida durante casi todo el año. Presenta una temporada
húmeda y lluviosa que se extiende enero a mayo; y la temporada seca que va
desde junio a diciembre. Debido a que se ubica en plena zona ecuatorial, la
ciudad tiene temperaturas cálidas durante todo el año, la temperatura
promedio oscila entre los 25 y 28 °C (Gobierno Provincial del Guayas, 2012;
Prefectura del Guayas, n.d.).
20
Guayaquil tiene suelos muy fértiles que permiten una abundante y variada
producción agrícola y ganadera. Se cultiva algodón, oleaginosas, caña de
azúcar, arroz, banano, cacao y café y frutas tropicales como el mango,
maracuyá (Gobierno Provincial del Guayas, 2012; Prefectura del Guayas,
n.d.).
Dentro de la ciudad se encuentran las fábricas de: cemento, pinturas
cervecerías, madera y papel, la empresa eléctrica, entre otras; estas
industrias se han convertido en uno de los motores que genera en la
actualidad el 31% de lo que se produce en Ecuador. Las conexiones viales y
las nuevas tecnologías han permitido la descentralización de la industria, sin
embargo la ciudad sigue albergando casi el 40% de 5.437 industrias
registradas en todo el país; dando como resultado 2.184 industrias con
residencia en Guayaquil (Ecuavisa, 2013).
Cantón Eloy Alfaro (Durán)
El Cantón está ubicado frente a la ciudad de Guayaquil a 6 km de distancia.
Está a 11 m.s.n.m., su temperatura promedio es de 25°C y su precipitación
promedio anual es de 500 a 1000 mm., su coordenada geográfica es:
2°10′00″S 79°50′00″O. La parte oriental del cantón Durán está recorrida por el
río Guayas; por la parte suroeste se encuentra una pequeña cadena de
elevaciones, destacándose el Cerro de las Cabras con una altura de 88
m.s.n.m. (Gobierno Provincial del Guayas, 2012; Guayas Turistico, 2013;
Prefectura del Guayas, n.d.).
21
Dentro del Cantón de Duran se encuentra el Área Nacional de Recreación
Isla Santay, el cual posee una gran diversidad biológica y alberga una
importante fauna de especies que se encuentran en categoría de amenaza
según lo reportado en lista roja de mamíferos del Ecuador (Gobierno
Autónomo Descentralizado Municipio de Durán, 2015)
En la parte occidental se encuentran suelos fértiles actos para la agricultura;
en la parte Norte, el suelo es bajo, permitiendo el asentamiento del mayor
porcentaje de los habitantes del cantón. La producción agropecuaria cumple
un rol muy importante dentro de la ciudad, Durán se ha convertido en una
zona industrial de primer orden (Prefectura del Guayas, n.d.).
El cantón de Durán se ubica en una zona de manglar tropical semi húmeda,
gran parte de los territorios naturales han sido intervenidos para la ganadería,
piscicultura y las camaroneras, degradado así su cobertura vegetal,
generando parches continuos en extensión y alterándolo para fines de
crecimiento urbanístico. La alteración del ecosistema de bosque seco así
como del ecosistema de manglar es evidente en todo el territorio (Gobierno
Autónomo Descentralizado Municipio de Durán, 2015).
6.2. ÁREA DE CONSERVACIÓN
Bosque Protector Cerro Blanco
Declarado Bosque Protector mediante Acuerdo Ministerial No.119 expedido
por el Ministerio de Agricultura y Ganadería, el 9 de noviembre de 1992.
22
Decreto de creación, Acuerdo Ministerial No. 143 del Ministerio de Agricultura
y Ganadería del 20 de abril de 1989, declaró 2.000 ha como bosque protector.
La ultima Declaratoria, Acuerdo No. 092 del Ministerio del Ambiente del 3 de
Octubre del 2000 ampliando el BPCB por un total de 6.078 ha (Fundación Pro-
Bosque, 2013).
Es uno de los últimos remanentes del ecosistema bosque seco tropical de la
costa ecuatoriana, así como uno de los más grandes y mejor conservados
fragmentos del bosque seco tropical ecuatoriano, que alberga especies
endémicas de la región. Está ubicado en el extremo suroeste de la Cordillera
Chongón Colonche en la ciudad de Guayaquil, Provincia del Guayas con una
elevación que fluctúa entre los 50 y 400 m.s.n.m. (Alava, 2014; Fundación
Pro-Bosque, 2013).
El bosque es destacado por:
Es uno de los 30 sitios prioritarios para la conservación de aves en la
Región Tumbesina.
Es uno de las cuatro áreas protegidas a nivel nacional que alberga
nueve especies de aves globalmente amenazadas.
En ella se registra un total de 221 especies de aves, de las cuales 30
tienen rangos de distribución limitados y 24 son endémicas de la
Región Tumbesina.
Es reconocido internacionalmente como un Área de Importancia para
la Conservación de Murciélagos-AICOM (Burneo et al 2015).
23
7. METODOLOGÍA
7.1. MATERIALES Y EQUIPOS
Materiales de campo
- Cámara fotográfica
- GPS GARMIN ETREX 60
- Redes de neblina (BIOWEB)
- Linterna manos libres (LED)
- Calibrador
- Hoja de Registro de las especies
- Carpas para camping
- Pequeñas fundas de tela para transportación de murciélagos
- Un par de guantes de caucho
- Ovillos de piola
Reactivos, materiales y equipos usados en el laboratorio
- Acetileno
- Ácido nítrico 65%, Fco x 2.5 Litros, Merck
- Peróxido de hidrogeno 30%, Fco x Lt, Merck
- Alcohol Industrial.
- Cloroformo.
24
- Agua ultrapura.
- Guantes de examinación de nitrilo.
- Fundas de cierre hermético x 50.
- Mortero.
- Cápsulas de porcelana.
- Beackers de 50 ml.
- Tubos de ensayo.
- Fiolas de 25 ml.
- Envase para muestra de orina estéril.
- Papel de empaque.
- Papel Whatman No.40 de 12.5cm, caja x 100.
- Parafilm.
- Jeringuilla de 1ml.
- Plato calentador.
- Balanza analítica.
- Equipo de disección.
- Estufa.
- Espectrofotómetro de Absorción Atómica modelo Perkin Elmer, Analyst 100.
25
7.2. Diseño de muestreo
Se utilizó el diseño de muestreo por conglomerados: cada área de estudio fue
dividida en cuadrantes, grupos o conglomerados, cada conglomerado fue
dividido en subconjuntos o subconglomerados y las zonas a muestrear fueron
escogidas de forma aleartoria, por medio de esta técnica se obtuvieron los
puntos de muestreo (Martínez, 1984). La técnica fue sencilla, económica,
rápida y fácil, ya que en lugar de realizar un muestreo de toda una ciudad, se
asignó los recursos a pocos conglomerados seleccionadas de forma aleatoria
(Nieves & Domínguez, 2010). El diseño de muestreo se acopló a la
investigacion por ser un área de gran tamaño.
7.3. Implementación de diseño de muestreo en las áreas de estudio
El área que comprende los límites urbanos de la ciudad de Guayaquil fue
dividida en conglomerados de una superficie de 5 km; cada conglomerado
está dividido en dos subconjuntos de un área de 2,5 km x 5km y los puntos de
capturas tienen un diámetro de 1 km.
Por otro lado los límites que comprenden la zona urbana del cantón Duran fue
dividida en conglomerados de una superficie de 1 Km, cada conglomerado fue
dividido en dos subconjuntos o de un área de 0,5 Km x 1 Km, y cada punto de
captura cuenta con un diámetro de 0,5 Km (Figura 4; Anexo 3).
26
Las capturas de individuos dentro del Bosque Protector Cerro Blanco fue
producto de senderismo, debido a que es un área de recreación turística de
fácil acceso en comparación con las otras áreas de muestreo.
27
Figura 4. Área de estudio
28
7.4. FASE DE CAMPO
Captura de individuos
Para la captura de los murciélagos se usaron las redes de neblina, de 3, 6 y 9
metros de longitud, las cuales fueron colocadas en puntos estratégicos que
permitieron el éxito en las capturas (Kunz & Parsons, 2009).
Se emplearon dos técnicas de captura:
Nivel de suelo: Técnica que consiste en colocar las redes a nivel de suelo o a
nivel de la vegetación cercana, las mismas serán desplegadas según los
objetivos del estudio (Fig. 5).
Figura 5. Técnica de captura a nivel del suelo
Nivel de subdosel: En esta técnica se emplean tubos largos que ayudarán a
alcanzar la altura necesaria a las redes, casi de 4 o 5 metros; en caso de no
tener tubos con dichas alturas se bolean las redes para que estas alcancen
dichas alturas (Fig.6).
29
Figura 6. Técnica de captura a nivel Subdosel
Para el registro de los individuos capturados se diseñó una planilla (Anexo. 1)
en donde se anotaron las principales medidas morfométricas y biológicas,
como lo son (Fig. 7):
LT: Largo total, desde el extremo del hocico hasta el extremo de la cola.
CC: Largo de la cabeza y el cuerpo juntos, desde el extremo del hocico hasta
la base de la cola.
LC: Largo de la cola, sin contar pelos sobresalientes, si es que los hubiera.
LO: Largo de la oreja, desde su base hasta la punta, por la cara anterior.
AB: Largo del antebrazo (solo en murciélagos), desde el codo hasta la base
del pulgar.
LP: Largo de la pata posterior, desde el talón hasta la punta de las garras.
Cr: Largo del cráneo (se indica únicamente en aquellas especies donde su
medición será importante para la identificación), sexo, estado de madurez y
según los criterios taxonómicos de Albuja, (1999) y Tirira, (2007) se identificó
la taxonomía de cada individuo. Las jornadas de captura tuvieron apertura
desde las 17h00 hasta las 21h00.
30
Figura 7. Toma de medidas morfométricas.
Búsqueda de individuos muertos en zonas urbanas
Para esto, se realizaron caminatas dentro de la ciudad de Guayaquil y Durán,
principalmente en lugares donde existen casas de construcción mixta o
abandonada en jornadas matutinas. Aquellos individuos hallados fueron
colectados y posteriormente ingresados al laboratorio de Espectrofotometría
del Instituto de Investigaciones de Recursos Naturales (IIRN), para ser
analizados.
Selección de vouchers de Museo de la Universidad de Guayaquil-Facultad de
Ciencias Naturales
Para ampliar la muestra de análisis, se obtuvieron muestras del tejido óseo
del antebrazo de vouchers de murciélagos que reposan en el Museo de la
Universidad de Guayaquil - Facultad de Ciencias Naturales, seleccionando
aquellas que fueron colectadas dentro de los límites del área de estudio, como
la parte urbana de Guayaquil, así como del Bosque Protector Cerro Blanco,
entre otros.
31
7.5. FASE DE LABORATORIO
Sacrificio
Antes de iniciar el proceso de disección, cada individuo es introducido en una
cámara saturada de cloroformo hasta la asfixia y muerte del mismo (Fig. 8)
(Alava, 2014; Misuraca, 2007).
Figura 8. Cámara saturada de cloroformo
Disección
Concluido el sacrificio cada individuo, fue colocado sobre una tabla de
disección en posición cara ventral hacia arriba, extendiendo y fijando sus
extremidades. Se procedió hacer un corte en la línea medio ventral,
manteniendo las tijeras en posición horizontal para evitar rupturas en los
tejidos (Fig. 9).
32
Figura 9. Fijación del individuo para la disección
Preparación de vouchers
Para la preservación de los individuos capturados se consideraron estas dos
técnicas:
Vía Húmeda: Las muestras húmedas, se prepararon con formol al 10%, en
recipientes de vidrio, para luego en laboratorio fueron cambiados a un medio
con etanol (alcohol etílico) al 70% (Simmons & Voss, 2009).
Luego de la disección a los individuos sometidos a esta técnica se les inyecto
previamente 1 ml de formol distribuido en las extremidades, principales
articulaciones y cabeza. Se le colocaron sus respectivas etiquetas, fueron
sumergidos en el formol preparado por 48 horas para su fijación, transcurrido
este tiempo se los retiró del formol, fueron enjuagados con abundante agua,
finalmente se los cambió a un medio de etanol para su preservación (Fig.10).
Vía Seca: La preparación de pieles fue realizada mediante técnicas
estandarizadas (Simmons & Voss, 2009).
33
Esta técnica fue realizada luego de la disección, en donde se colocan los
dedos entre la piel y el músculo subyacente para separar la piel del cuerpo de
forma cuidadosa sin malformar la piel y sin ocasionar rupturas sobre la misma,
se separó la piel del cuerpo alrededor de la región genital. A continuación, se
separó la piel de todo, los muslos y la base de la cola, asegurándose de dejar
las vértebras de la cola en la piel.
Se retiró la mayor parte de músculos hasta la altura del tobillo,
cuidadosamente se realizó un corte a nivel de la tibia luego, se deslizo en su
normalidad la posición de piel. Se expulsó los dos músculos de los hombros,
se separó la piel del músculo subyacente a un punto más o menos la mitad
de la parte superior del brazo, y luego se cortó a través del húmero justo
debajo del hombro. A continuación, se sujetó el cuerpo en una mano y la piel
en la otra, y se tiró suavemente de la piel hacia arriba sobre cuello y la cabeza.
Con los dedos se retiró la piel de la parte posterior del cráneo. A medida que
el pliegue de la retracción de la piel se aproxima a la región del oído, se vio
un tubo rígido pero flexible que conecta la región del oído a cada lado del
cráneo a la piel adyacente.
Se examinó la piel para tener la seguridad de eliminar cualquier sangre seca
u otro material con los dedos. Se rellenó con algodón, tomando en cuenta que
el relleno se asimétrico sin estirar la piel para que el resultado sea proporcional
al animal vivo, abdomen y se cosió los bordes de la incisión entre sí, mediante
pequeñas puntos de sutura que comenzaban en la región genital.
Una vez extraído el cráneo, se continuó con la limpieza manual del mismo,
que consistió en la extracción de piel restante y cerebro hasta dejarlo
34
totalmente limpio. Terminados estos procesos, a los vouchers se les colocó
sus respectivas etiquetas y fueron colocadas en fundas ziploc, de igual
manera a los cráneos se les escribió el código con rapidógrafos y se los
guardó en unas cajitas de acrílico en cuyo interior se colocó algodón para
evitar deterioro de los cráneos (Fig.11).
Concluida la preparación de vouchers en los individuos colectados, se
procedió con el respectivo ingreso a la colección del Museo de la Facultad de
Ciencias Naturales, iniciando el ingreso con el número de colección del Museo
MUG-500 hasta MUG-583 (Fig. 12).
Figura 10. Vouchers preparados vía seca
Figura 11. Vouchers preparados vía húmeda
35
Figura 12. Ingreso de muestras en el museo
36
Obtención de tejido para análisis
En los individuos colectados vivos, se extrajo los tejidos blandos como
pulmones, corazón, hígado, páncreas y riñones, por medio de una pinza roma;
al finalizar la extirpación se comprobó que estos estén libres de adventicios
(Misuraca, 2007).
En los individuos colectados post morten y de Museo, se les extrajo el tejido
óseo a partir del antebrazo, con ayuda del bisturí, retirando los restos de
músculo y piel.
Tratamiento de la muestra de tejido blando y óseo
Cada muestra obtenida fue homogenizada en un mortero; cada una de ellas
fue trasvasada en recipientes de porcelana para ser secadas en la estufa
durante una noche a 100°C (Fig. 10); concluida esta fase, las muestras fueron
pulverizadas y pesadas en beackers y/o tubos de ensayo de acuerdo al peso
seco obtenido (Fig. 13).
Figura 13. Muestra homogenizada y secada en la estufa
37
Figura 14. Pulverización y pesaje de muestra
Digestión en beackers
Las muestras secas y pulverizadas fueron sometidas en beackers tapados
con vidrios reloj a un proceso de digestión basado en los protocolos del
Laboratorio de Espectrofotometría del Instituto de Investigaciones de
Recursos Naturales (IIRN) de la Facultad de Ciencias Naturales (FCCNN) de
la Universidad de Guayaquil (UG). Las muestras fueron tratadas con
volúmenes (ml.) adecuados de ácido nítrico y peróxido de hidrogeno (Fig.11);
una vez digeridas, todas las muestras fueron filtradas con papel watman N°40
y aforadas con agua ultrapura en balones de 25ml respectivamente (Fig.12)
(Misuraca, 2007).
38
Figura 15. Muestras digeridas en beackers
Figura 16. Muestras aforadas en balones de 25 ml.
Digestión en tubos de ensayo
Aquellas muestras que presentaron peso seco inferiores a 0.0500 gr se
procesaron en tubos de ensayo siguiendo protocolos del Laboratorio de
Espectrofotometría (IIRN) con ligeras modificaciones; adicionando volúmenes
(ml.) adecuados de ácido nítrico y peróxido de hidrógeno, las mismas fueron
selladas herméticamente y durante 15 min estuvieron en baño maría (Fig.14);
concluida la digestión, las muestras fueron filtradas con papel watman N°40,
y aforadas con agua ultrapura en balones o fiolas de 25 ml. (Fig. 15).
39
Figura 17. Digestión de muestras
en tubos de ensayo
Figura 18. Filtración de muestras.
Lectura de muestras
Luego de pasar por el proceso de digestión, las lecturas de las muestras se
realizaron en el espectrofotómetro de Absorción Atómica modelo Perkin
Elmer, Analyst 100 (Fig. 16).
Previo a la lectura se calibró el equipo mediante la curva de estándares para
el elemento Plomo (Pb), concluida la calibración del equipo se procedió a las
lecturas del blanco y de las muestras respectivamente (cada muestras se
analizó por triplicado).
Figura 19. Lectura de muestras
40
Fórmula
Los resultados finales en ppm son obtenidos merdiante la siguiente fórmula
proporcionada por el laboratorio:
41
8. ANÁLISIS ESTADÍSTICO
Las concentraciones obtenidas de plomo de las murciélagos fueron
analizados con el programa de paquete estadístico Minitab17. Se usó el
Diagrama de caja (Boxplot) para los gráficos de concentraciones de plomo
(mg/Kg) vs especies; vs gremio trófico; vs comparación entre zona urbana y
bosque. Además; se empleó la prueba estadística no paramétrica Kruskall-
Wallis para comparar los rangos de concentraciones de plomo obtenidas entre
murciélagos de zona urbana y de bosque (“Minitab 17 Statistical Software,”
2010; Nieves & Domínguez, 2010).
Las tablas con las concentraciones finales fueron editadas en la hoja de
trabajo de Excel.
42
9. RESULTADOS
Se analizaron un total de 87 individuos (Anexo 1) divididos en 4 familias, 14
géneros y 16 especies (Tabla 1) comprendidos en:
59 individuos colectados vivos: divididos entre 20 de Bosque y 39 de
zona urbana (Gráfico 1).
12 individuos colectados post morten y 16 individuos tomados del
Museo, para un total de 28 individuos que fueron analizados a nivel de
tejido óseo (Ver Gráfico 2 y Anexo 2).
A nivel general la más alta concentración de plomo fue hallada en la especie;
Molossus molossus con 150, 36 mg/kg (Tabla 3) la cual fue colectada dentro
del bosque; mientras que de las especies colectadas en zona urbana fue A.
fraterculus (128,52 mg/Kg) (tabla 6)
.
Desglosando los resultados de muestras analizadas en tejido óseo y blando,
tenemos: las más altas concentraciones de plomo halladas en muestras de
tejido óseo en individuos de zona de bosque corresponden a varias especies
insectívoras; como M. molossus (150,36 mg/Kg), seguida por la especie
nectarívora G. soricina (121,07 mg/Kg) (Tabla 2), de igual forma ocurre en la
zona urbana con las especies: Saccopteryx bilineata (120,08 mg/Kg);
frugívora A. fraterculus (128,52 mg/Kg) (Ver Tabla 3,4,5,6).. Adicionalmente
solo un individuo de la especie T. brasiliensis presento una elevada
concentración de plomo (178,40 mg/Kg) (Tabla 2).
43
Gráfico 1. Porcentaje de captura de individuos vivos
Gráfico 2. Total de muestras analizadas en tejido óseo y tejido blando
0
10
20
30
40
50
60
70
80
12
59
16
Nú
me
ro d
e i
nd
ivid
uo
s
Análisis en tejido óseo Análisis en tejido blando
Individuoscolectados viviosdurante elmuestreo
Individuos tomadosdel Museo
Individuos hallados muertos
44
Gráfico 3. Concentración total de plomo en individuos capturados en zona urbana
Gráfico 4. Concentración total de plomo en individuos capturados en Bosque
S. bi li
neata
P. dav
isoni
T. b
rasi
lensi
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M. n
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E. wi lso
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M. m
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P. mata
palensis
A. litu
ratu
s
A. fra
terc
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A. aequat
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140
120
100
80
60
40
20
0
Plo
mo
mg
/Kg
45
A continuación se presenta una descripción de las especies analizadas en el estudio:
MBH= CODIGO DE ANALISIS / MUG= CODIGO DE MUSEO
ESPECIE DESCRIPCION
Clase: Mammalia Orden: Chiroptera Suborden: Microchiroptera Familia: Emballonuridae Subfamilia: Emballonurinae
Figura 20.Saccopteryx bilineata
Murciélago negro de listas Cortesía de Jaime Salas
Descrita por primera vez por Temmink en 1838. Se alimentan de pequeños insectos como
mosquitos y mariposas nocturnas; buscan alimento cerca de fuentes de agua. Dorso marrón
negruzco con dos líneas delgadas, prominentes, blancas, que se extienden desde los hombros
hasta el anca. Orejas largas, estrechas y puntiagudas, más pequeñas que la cabeza.
Medidas: CC: 42-62, LC: 16-24, LP: 9-15, LO: 12-19, AB: 42-53, peso: 6-12 g.
Distribución y Hábitat
Costa y Amazonia. Habita en bosques tropicales de tierras bajas, húmedos y secos, entre 30
y 660 m de altitud. También han sido registrados en áreas abiertas, como pastizales (Albuja,
1999; Brito, Camacho, & Vallejo, 2016; Tirira, 2007, 2015).
Muestra
1 Individuo (MUG-00551/MBH-0050) hallado muerto, colectado en noviembre del 2014, en la
parroquia Chongón, ubicado en el Km 24 vía a la costa.
46
Familia: Phyllostomidae Genero: Carollia
Figura 21. Carollia brevicauda
Foto tomada de la página web de Mamíferos del ecuador
Wied-Neuwied en 1821. Se alimentan de semillas, principalmente espigas de piperáceas
(Piper), pero también puede alimentarse de otros frutos e insectos pero en menor medida
Especie de mediano tamaño dentro del género. El hocico es corto y cónico con el apéndice
nasal largo y lanceolado. Los bordes laterales de la base de la hoja nasal son libres. Orejas
puntiagudas, medianas y triangulares. Presentan unas pequeñas verrugas en el mentón,
dispuestas en semicírculos, alrededor de otra más grande (Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC 53-70, LC 4-10, LP 11-15, LO 15-21, AB 37-42. Peso 13-19 gr.
Distribución y Hábitat
En Ecuador se encuentran en la Costa, Amazonía y estribaciones de los Andes dentro de los
bosques tropicales y subtropicales (Tirira, 2007).
Habitan en casi todos los ecosistemas posibles, sean bosques primarios, secundarios, bosques
de galería, bordes de bosque, bosques intervenidos, zonas alteradas, áreas de cultivo,
47
pastizales, jardines e incluso lugares cercanos a centros urbanos. Prefieren zonas alteradas en relación a bosques prístinos
(Tirira, 2007).
Se refugian en árboles huecos, cuevas, grietas, minas abandonadas, alcantarillas o techos de casas. Utilizan el estrato bajo del
bosque, donde se concentra la mayor cantidad de arbustos y plantas con las semillas que son parte de su dieta (Albuja, 1999;
Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Muestra
1 individuo tomado del museo capturado en Cerro Blanco en el 2014 (MUG-00475/MBH-0043).
4 individuos capturados en Cerro Blanco durante la fase de muestreo (MUG-00574 / MBH-0046, MUG-00549 / MBH-0048, MUG-
00550 / MBH-0049).
1 individuo colectado en el sur oeste de la ciudad, el cual murió luego de la captura.(MUG-00553 / MBH-0055)
Se analizaron un total de 6 individuos de esta especie.
48
Familia Phyllostomidae
Subfamilia: Phyllostominae
Figura 22.Phyllostomus elongatus
Murciélago nariz de lanza menor Foto tomada de la página web Mamíferos del Ecuador.
Descrita por É. Geoffroy en 1810. Su dieta varía de acuerdo a la época del año y puede
alimentarse de insectos grandes, frutos, polen y néctar.
De tamaño grande y cuerpo robusto. Dorso de color marrón oscuro a marrón rojizo. La cabeza
y el hocico son anchos y prominentes. Orejas anchas, triangulares, cortas y con las puntas
redondeadas. Hoja nasal simple, ancha, lanceolada y de mediano tamaño, ojos grandes. Pelo
corto, aterciopelado y suave.
Medidas: CC 65-100, LC 15-24, LP 14-20, LO 25-32, AB 58-71. Peso 30-57 gr.
Distribución y Hábitat En el Ecuador está distribuida en la Costa norte, Amazonía y estribaciones bajas de los Andes,
dentro de los bosques tropicales y subtropicales bajos. Se refugia en huecos de árboles, nidos
de termitas, cuevas y en techos de las casas (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007,
2015).
Muestra 1 Individuo MBH-0044 tomado del museo, fue colectado dentro del Bosque Protector Cerro Blanco en el 2014
49
Género: Micronycteris
Figura 23.Micronycteris megalotis
Murciélago negro pequeño Cortesía de Leonardo Alava
Descrita por Gray en 1842. Se alimentan de insectos grandes (como escarabajos, chicharras,
cucarachas, libélulas, mariposas y larvas de mariposas) que capturan directamente de la
vegetación o del suelo; raras veces toman sus presas en el aire; la dieta de insectos varia a lo
largo del año, dependiendo de la posibilidad de alimento y de las estaciones climáticas. De
tamaño pequeño, pelaje largo y abultado; dorso marrón claro, grisáceo o rojizo; pliegue en la
base de las orejas bajo, dividido por un surco central poco profundo.
Medidas: CC: 42-55, LC: 8-15, LP: 14-20, LO: 15-22, AB: 33-38, peso: 5-9 g.
Distribución y Hábitat
Costa, Amazonia y estribaciones de los Andes. Habita en bosques tropicales, subtropicales y
templados, en su mayoría húmedos, entre 50 y 2.950 m de altitud (Albuja, 1999; Brito et al.,
2016; Tirira, 2007, 2015).
Muestra
1 Individuo (MUG-00512 / MBH-0013) fue colectado dentro del Bosque protector Cerro Blanco
50
Familia: Phyllostomidae Subfamilia: Stenodermatinae Género: Artibeus
Figura 24.Artibeus fraterculus
Murciélago frutero fraternal Cortesía: Jaime Salas
Descrita por Anthony en 1924. Se alimenta principalmente de frutos, en especial de bayas
carnosas (como higos, Ficus); también consumen semillas y otros tipos de frutos; en ciertas
ocasiones suelen alimentarse de néctar y flores, que se encuentran en las copas de los árboles
y de insectos. Es la especie más pequeña dentro de los Artibeus grandes.
Dorso de color gris oscuro a marrón grisáceo; la región ventral es pálida, con las puntas de los
pelos de un tono gris plateado que le da un aspecto escarchado; rostro con cuatro líneas
pálidas tenues, las inferiores apenas perceptibles; trago de color gris a gris oscuro; alas de
color gris negruzco (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC: 64-76, LP: 12-16, LO: 15-21, AB: 52-59, peso: 30-55 g.
Distribución y Hábitat
Costa centro y sur, y estribaciones suroccidentales. Habita en bosques secos tropicales y
subtropicales, entre 0 y 1.600 m de altitud (Tirira, 2007).
51
Muestra (Detalles en Anexo 2)
1 individuo capturado en la ciudadela La Alborada Etapa XI (MUG-00500/MBH-0001)
1 individuo capturado en la Facultad de CCNN (MUG-00524/MBH-0025)
1 individuo capturado en el parque lineal de av. Barcelona (PJ) (MUG-0056/MBH-0058)
1 individuo capturado en Durán (MUG-00501/MBH-0002)
1 individuo capturado dentro de Cerro Blanco (MUG-00571/MBH-0079)
1 individuo hallado muerto en la cdla Kennedy Norte en junio del 2007 (MUG-00563/MBH-0069)
2 individuos tomados del museo, colectados en el Jardín Botánico en el 2004 (MUG-00288/MBH-0065; MUG-00289/MBH-0071)
Un total de 8 individuos analizados de esta especie.
52
Figura 25.Artibeus aequatorialis
Murciélago frutero del Ecuador Cortesía: Jaime Salas
Descrita por Anderson en 1906. De tamaño grande y cuerpo robusto. Dorso de color gris, gris
oscuro o marrón grisáceo, con los pelos cortos (menores a 8 mm); la región ventral es más
pálida, con las puntas de los pelos grisáceas o plateadas, que le dan un ligero aspecto
escarchado, líneas faciales delgadas, a veces poco evidentes; trago de color gris; alas
negruzcas, a menudo con las puntas blanquecinas; patas y parte superior de la membrana
caudal con escaso pelaje (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC: 70-79, LP: 16-20, LO: 19-25, AB: 57-68, peso: 32-65 g.
Distribución y hábitat
Costa y estribaciones occidentales. Habita de preferencia en bosques húmedos, tropicales y
subtropicales; mientras que es raro en bosques secos; se lo encuentra de 0 a 1.700 m de
altitud. Común y ampliamente distribuido. Es una especie resistente a ambientes perturbados
(Tirira, 2007).
53
Muestra
5 individuos colectados en la Facultad de CCNN (MUG-00517/MBH0018; MUG-00518/MBH-0019; MUG-00519/MBH-0020;
MUG-00523/MBH-0024; MUG-00527/MBH-0028)
1 individuo capturado en el parque lineal la de av. Barcelona (PJ) (MUG-0055/MBH-0057)
2 individuos tomados del museo, colectados en Cerro Blanco. (MBH-0040; MBH-0041)
1 individuo colectado muerto en la cdla Kennedy Norte en junio del 2007 (MUG-00562/MBH-0068)
Obteniendo un total de 9 individuos analizados de para esta especie.
54
Figura 26.Artibeus lituratus
Murciélago frutero grande. Cortesía: Jaime Salas
Descrito por Olfers en 1818. Muy grande, el mayor del género y uno de los murciélagos más
grandes de América. Dorso de marrón, marrón acanelado a marrón gris amarillento, con el
pelaje corto; región ventral de color marrón grisáceo, con el pelo de un solo color hasta la base;
líneas faciales conspicuas, con las franjas superiores más anchas y pronunciadas que las
inferiores; trago amarillo; alas marrones; piernas y cara dorsal de la membrana caudal con
abundante pelaje (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC: 80-101, LP: 15-21, LO: 18-25, AB: 65-78, peso: 50-86 g.
Distribución y Hábitat
Costa, Amazonia. Habita en bosques y estribaciones de los Andes. En bosques tropicales,
húmedos y secos, entre 0 y 1.700 m de altitud (Tirira, 2007).
55
Muestra
7 individuos colectados en la Facultad de CCNN (MUG-00516/MBH-0017; MUG-00520/MBH-0021; MUG-00526/MBH-0027;
MUG-00528/MBH-0029; MUG-00529/MBH-0030; MUG-00530/MBH-0031; MUG-00531/MBH-0032)
3 individuos capturado en el parque lineal la de av. Barcelona (PJ) (MUG-00557/MBH-0059; MUG-00558/MBH-0060; MUG-
00559/MBH-0061)
2 individuos capturado en el parque lineal la de av. Barcelona (Puente de la 17) MUG-00567/MBH-0076; MUG-00570/MBH-0078.
3 individuos colectados dentro del Bosque Protector Cerro Blanco. (MUG-00574/MBH-0082; MUG-00575/MBH-0083; MUG-
00576/MBH-0084)
15 individuos analizados de esta especie.
56
Género: Platyrrhinus
Figura 27. Platyrrhinus matapalensis Murciélago de nariz ancha del occidente. Cortesía de Andrea AuHing
Descrito por Velazco en el 2005. Se alimentan de frutos, (de preferencia Ficus), que toman de
los estratos medio y alto del bosque; también ingieren néctar y ciertos insectos (como
mariposas nocturnas). De tamaño pequeño. Dorso de color marrón claro a marrón pálido; pelos
del vientre bi-coloreados; líneas en el rostro prominentes, con el par superior más evidente;
línea dorsal bien definida; borde de la membrana caudal con abundantes o escasos pelos
cortos (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC: 52-65, LP: 8-12, LO: 12-17, AB: 35-40, peso: 11-19 g
Distribución y Hábitat
Amazonia y estribaciones orientales. Habita en bosques húmedos tropicales y subtropicales,
entre 200 y 1.300 m de altitud. Están presentes en bosque primarios, secundarios, intervenidos,
de galería, bordes de bosque, cerca de zonas cultivadas y en áreas ligeramente abiertas (Tirira,
2007).
57
Muestra
2 individuo colectado dentro del Bosque Cerro Blanco, el cual fue analizado a nivel de tejido óseo.( MUG-00513/MBH-0014;
MUG-00548/MBH-0047)
1 individuos tomados del museo, muestras colectadas en Cerro Blanco en el, 2014 (MUG-00475 MBH-0039).
58
Familia Phyllostomidae Subfamilia: Glossophaginae Género: Glossophaga
Figura 28.Glossophaga soricina
Murciélago de lengua larga común. Cortesía de Andrea Au-Hing
Descrita por Pallas en 1766. Se alimentan de néctar, polen, frutos e insectos pequeños
asociados a flores (como mariposas y moscas); pelaje de marrón canela a marrón pálido
incisivos superiores centrales notoriamente más grandes que los externos; incisivos inferiores
grandes, con las coronas triangulares y sin espacio central (Albuja, 1999; Brito et al., 2016;
Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC: 43-65, LC: 5-12, LP: 8-14, LO: 10-16, AB: 33-40, peso: 5-14 g.
Distribución y Hábitat
En el Ecuador se distribuye en Costa, Amazonia y estribaciones de los Andes. Habita en
bosques húmedos y secos, tropicales y subtropicales entre 0 y 1.600 m de altitud, aunque
usualmente no sobrepasa los 1.200 m. es un grupo de murciélagos poco especializado, por lo
que su dieta es diversa y dependiente de la disponibilidad de alimento; con frecuencia visitan
flores del banano (Musa); también otras de los géneros Acacia, Agave, Ceiba, Cordia, Inga,
Ipomoea (Tirira, 2007).
59
Muestras
3 individuos capturados en la Facultad de CCNN. (MUG-00521/MBH-0022;MUG-00522/MBH-0023; MUG-00525/MBH-0026)
1 individuo capturado en el Parque Lineal de la Av. Barcelona (Policía Judicial) (MUG-0054/MBH-0056).
3 individuos capturados en la av. Barcelona (Puente de la 17) (MUG-00564/MBH-0073; MUG-00565/MBH-0074; MUG-
00566/MBH-0075).
1 individuo colectado dentro del Bosque Cerro Blanco (MUG-0052/MBH-0054).
1 individuo capturado dentro del Bosque Papagayo (MUG-00578/MBH-0086).
2 muestras tomada del museo, colectados dentro de Cerro Blanco en el año 2012 (MUG-00203/MBH-0072) y 2014 (MUG-
00469/MBH-0037;)
1 individuo colectado muerto en el Malecón 2000 en el 2011. (MUG-00561/MBH-0067).
Obteniendo un total de 12 individuos analizados de esta especie.
60
Familia: Molossidae Subfamilia: Molossinae Género: Molossus
Figura 29. Molossus molossus Murciélago mastín común. Foto: Michelle Baquerizo
Descrita por Pallas en 1766. Se alimentan de insectos, de preferencia mariposas nocturnas,
escarabajos y hormigas voladoras. De tamaño pequeño a mediano. Dorso de color marrón
grisáceo a marrón pálido, con los pelos medianamente largos (mayor a 2,5 mm) y de color
blanco puro en la base; el pelaje se extiende hasta las membranas (Albuja, 1999; Brito et al.,
2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC: 60-69, LC: 33-39, LP: 8-10, LO: 10-13, AB: 34-42, peso: 12-17 g.
Distribución y Hábitat
Costa, Amazonia y estribaciones de los Andes. Habita en bosques tropicales, subtropicales y
templados bajos, húmedos y secos, entre 0 y 2.200 m de altitud, con mayor frecuencia se lo
encuentra por debajo de los 1.100 m.
Forman colonias de pequeñas a grandes, entre 10 y varios cientos de individuos.
Su primer pico de actividad dura alrededor de una hora, luego de lo cual regresan a su refugio;
el segundo pico es menos intenso y termina poco antes del amanecer (Tirira, 2007).
61
Muestra
10 individuos colectados en un refugio hallado en Duran- Recreo III Etapa (MUG-00502/MBH-0003; MUG-00503/MBH-0004;
MUG-00504/MBH-0005; MUG-00505/MBH-0006; MUG-00506/MBH-0007; MUG-00507/MBH-0008; MUG-00508/MBH-0009;
MUG-00509/MBH-0010; MUG-00510/MBH-0011; MUG-00511/MBH-0012)
6 Individuos colectados dentro del Bosque Cerro Blanco (MUG-00546/MBH-0045; MUG-00568/MBH-0077; MUG-00572/MBH-
0080; MUG-00573/MBH-0081), de los cuales 2 (MUG-00514/MBH-0015; MUG-00515/MBH-0016) de ellos fueron analizados a
nivel de tejido.
3 Muestras de museo (MUG-00280/MBH-0062; MUG-00281/MBH-0063; MUG-00282/MBH-0064), hallados muertos en el Centro
de la ciudad, y Guayacanes en el 2004.
1 individuo hallado muerto en el Bosque Protector Prosperina (Espol).( MUG-00583/MBH-0087)
1 individuo hallado muerto en Daular-Chongón en el 2014.(MUG-00569/ MBH-0053)
Obteniendo un total de 21 individuos analizados de esta especie.
62
Genero: Promops
Figura 30.Promops davisoni Murciélago mastín canela con cresta Foto Cortesía de Jaime Salas
Descrita por Thomas en 1921. Es un murciélago insectívoro, del cual poco se conoce sobre su
historia natural. De tamaño intermedio. El pelaje dorsal es marrón chocolate oscuro, con la
parte basal blanquecina, formando una clara banda que se extiende hasta casi la mitad del
largo de los pelos, resultando en una clara apariencia dicrómica de los pelos dorsales (Albuja,
1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: AB 46, LT 52, LC 6.
Distribución y Hábitat
Habita en bosques secos y húmedos
Endémica del occidente de los Andes de Ecuador y Perú, se conoce del Río Mongoya, en la
provincia de Manabí, Ecuador central, del Santuario Nacional Lagunas de Mejía, en el
departamento de Arequipa, al suroccidente de Perú, y de Pampa Alta (Tirira, 2007).
Muestra
1 individuo colectado en el norte (Atarazana) (MUG-00583MBH-0070).
63
Genero: Tadarida
Figura 31. Tadarida brasiliensis Murciélago de cola libre del Brasil. Foto tomada de la página web de Mamíferos del ecuador
Descrita por Geoffroy en 1824. Se alimenta de pequeños insectos, mariposas nocturnas,
escarabajos y moscas. De tamaño mediano. Hocico puntiagudo y dirigido levemente hacia
arriba. Labio superior con pliegues verticales profundos, y sobrepuesto al labio inferior. Mentón
y quijada planos. Orejas grandes, redondeadas, separadas en la base pero muy juntas, lo que
da la apariencia de estar unidas (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Mediadas: CC 46-57, LC 28-36, LP 8-10, LO 16-20, AB 41-46. Peso 10-13 gr.
Distribución y Hábitat
En el Ecuador está distribuida en la Costa norte, Sierra norte y estribaciones orientales dentro
de los bosques tropicales, subtropicales y templados. Se refugia en el interior de cuevas
grandes y pequeñas, grietas en rocas, huecos en árboles y techos de casas, formando grandes
concentraciones de individuos que pueden ser de miles hasta varios millones de individuos.
Inician su actividad tan pronto oscurece.
Muestra 1 individuo hallado muerto en el sur de la ciudad, localidad el Guasmo, 1995 (MUG-
00202/MBH-0051).
64
Genero: Nyctinomops
Figura 32. Nyctinomops macrotis Murciélago grande de cola libre Foto tomada de la página web de Mamíferos del ecuador
Descrita por gray en 1840. Se alimenta de insectos, especialmente mariposas nocturnas, pero
también puede comer grillos y cigarras. De tamaño grande. Hocico puntiagudo y dirigido hacia
arriba. Labio superior profundamente arrugado con pliegues verticales que cuelgan por encima
del labio inferior. Las orejas son grandes y se unen en su base. El borde posterior de la oreja
no se dobla hacia atrás. Cuando las orejas son reclinadas hacia adelante llegan hasta la punta
de la nariz (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: CC 74-78, LC 51-61, LP 10-12, LO 25-30, AB 58-64. Peso 17-20 gr
Distribución y Hábitat
En el Ecuador se distribuye en la Costa centro y Amazonía centro, dentro de los bosques
tropicales húmedos y secos. Forman grupos numerosos y se refugian en cuevas, grietas de
rocas, árboles huecos y edificaciones abandonadas (Tirira, 2007).
65
Muestra
1 individuo colectado muerto en el sur de la ciudad, tercer puente de la perimetral, 2009 (MUG-00560/MBH-0066)
1 individuo colectado muerto en el sur de la ciudad. Localidad “Guasmo (MUG-00196/MBH-0052)”
1 individuo colectado muerto en los alrededores del estadio Copwell 2011(MUG-00545/MBH-0036)
1 individuo colectado muerto en el norte de la ciudad en los alrededores del centro comercial “Riocentro Norte”, 2016 (MUG-
00577/MBH-0085)
Obteniendo un total de 4 individuos analizados de esta especie.
66
Género: Eumops
Figura 33.Eumops wilsoni
Murciélago de bonete de Wagner Cortesía de Andrea Au-Hing.
Descrita por Baker, Mcdonough, Swier, Larsen, Carrera y Ammerman en 2009. Se alimentan
de insectos grandes, como escarabajos, mariposas, cigarras y grillos.
Distribución y hábitat
Bosques tropicales secos del suroccidente del Ecuador. Actualmente el rango de distribución
de esta especie no se puede determinar más allá de los especímenes identificados
genéticamente. Se refugian en pequeños grupos en el interior de troncos huecos, se reportan
casos de que pueden compartir refugios con otras especies de molósidos (Albuja, 1999; Brito
et al., 2016; Tirira, 2007, 2015).
Medidas: AB: 58.2; LT: 126,9; LC: 46.0; LP: 46.0; LO: 21,8; Peso: 26,3.
Muestra
2 individuos hallados muertos en el centro de la ciudad (Clínica Alcívar M-00542/MBH-0033;
calle Boyacá MUG-00544/MBH-0035) entre los años 2006 y 2007.
67
Genero: Cynomops
Figura 34.Cynomops greenhalli
Murciélago mastín de rostro cara de perro de Greenhall
Foto Cortesía de Jaime Salas
Descrito por Goodman en 1958. Se alimentan de insectos. Pueden formar colonias pequeñas,
de hasta ocho individuos, o muy numerosas, de cientos de individuos.
El hocico y el mentón son anchos, de perfil redondeado. El labio superior no presenta arrugas
verticales y está ligeramente plegado hacia adentro para coincidir con el labio inferior. Las fosas
nasales se presentan como agujeros perforados en la superficie, La parte superior del hocico,
entre los ojos y las fosas nasales es plana, sin la cresta central elevada. Las orejas son
redondeadas, bien separadas en la frente, sin que se unan en la corona, plegadas
longitudinalmente para formar un compartimento sobre los ojos. Cuando se las reclina hacia
adelante, llegan hasta la mitad de la distancia entre los ojos y la nariz. El borde posterior de la
oreja ligeramente doblado en dirección posterior (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007,
2015).
Medidas: CC 57-62, LC 29-34, LP 8-10, LO 13-16, AB 33-38. Peso 12-20 gr. Machos
ligeramente más grandes que las hembras.
68
Distribución y hábitat
En el Ecuador está distribuida en la Costa sur y estribaciones noroccidentales. Se conoce de su presencia en dos localidades:
Mindo en la provincia de Pichincha y la Ceiba en la provincia de Loja. Pueden formar colonias pequeñas, de hasta ocho
individuos, o muy numerosas, de cientos de individuos. Se refugian en huecos de árboles o en troncos caídos, entre hojas de
palmas o en los techos de casas. Inician su actividad, tan pronto como oscurece.
Están presentes en bosques primarios y secundarios, bosques de galería o zonas alteradas. Prefiere volar en zonas abiertas,
cerca de cuerpos de agua (Tirira, 2007).
Muestra
2 individuos tomados del museo, capturados en Cerro Blanco en el 2014 (MUG-00474/MBH-0042; MUG-00470/MBH-0038).
69
Familia: Vespertilionidae
Subfamilia: Vespertilioninae
Figura 35. Myotis nigricans Murciélago negro pequeño Cortesía de Jaime Salas
Descrita por Schinz en 1821. Se alimentan de insectos (como mariposas nocturnas,
escarabajos y moscas) que atrapan en el aire, de preferencia cerca del agua o sobre el dosel
forestal. Dorso de color marrón acanelado a marrón grisáceo oscuro, con los pelos oscuros
que aparentan ser de un solo color en toda su extensión, pero tienen las puntas tenuemente
pálidas; pelos medianos en el centro de la espalda; región ventral de color marrón pálido, con
la base de los pelos más oscura que las puntas (Albuja, 1999; Brito et al., 2016; Tirira, 2007,
2015)
Medidas: CC: 40-54, LC: 31-43, LP: 6-9, LO: 11-14, AB: 32-37, peso: 4-6 g.
Distribución y Hábitat
Habita en bosques húmedos y secos, tropicales y subtropicales bajos, entre 50 y 1.200 m de
altitud. Se refugian en huecos en árboles, grietas, cuevas, debajo de rocas o puentes, también
en casas abandonadas o habitadas, en techos. Inician su actividad pronto como oscurece.
Son veloces durante el vuelo (Tirira, 2007)
Muestra 1 individuo colectado en Mapasingue Este en el 2010 (MUG-00543/MBH-0034).
70
Tabla 1. Total de Familias, Géneros y Especies de quirópteros obtenidos.
Familia Nombre
científico Nombre común
Categoría de
amenaza
(Lista Roja
de Ecuador)
Emballonuridae Saccopteryx
bilineata
Murciélago negro de
listas.
LC
Phyllostomidae
Carollia
brevicauda
Murciélago sedoso de
cola corta.
LC
Artibeus
fraterculus
Murciélago frutero
fraternal.
LC
Artibeus
lituratus
Murciélago frutero
grande.
LC
Artibeus
aequatorialis
Murciélago frutero de
Ecuador.
LC
Platyrrhinus
matapalensis
Murciélago de nariz
ancha del occidente.
NT
Glossophaga
soricina
Murciélago de lengua
larga común.
LC
Phyllostomus
elongatus
Murciélago nariz de
lanza menor.
LC
Micronycteris
megalotis
Murciélago orejudo
pequeño común.
LC
71
Familia Nombre
científico Nombre común
Categoría de
amenaza
(Lista Roja
de Ecuador)
Molossidae
Molossus
molossus
Murciélago mastín
común.
LC
Promops
davidsoni
Murciélago mastín
canela con cresta
LC
Tadarida
brasiliensis
Murciélago de cola
libre del Brasil.
LC
Nyctinomops
macrotis
Murciélago grande de
cola libre
LC
Eumops wilsoni Murciélago de bonete
de Wagner
LC
Cynomops
greenhalli
Murciélago rostro de
perro Greenhall
DD
Vespertilionidae Myotis
nigricans
Murciélago negro
pequeño
LC
*LC: PREOCUPACION MENOR *DD: DATOS INSUFICIENTES *NT: CASI
AMENAZADO (Tirira, 2011).
72
Tabla 2.Concentraciones de plomo en la especie Tadarida brasiliensis*.
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
M-00202 MBH-0051 178,40
Tabla 3.Concentraciones de plomo en la especie Molossus molossus.
Cód. Museo Cód.
Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00502 MBH-0003 8,18
MUG-00503 MBH-0004 3,15
MUG-00504 MBH-0005 10,10
MUG-00505 MBH-0006 7,80
MUG-00506 MBH-0007 4,03
MUG-00507 MBH-0008 4,13
MUG-00508 MBH-0009 3,67
MUG-00509 MBH-0010 2,44
MUG-00510 MBH-0011 1,90
MUG-00511 MBH-0012 10,94
MUG-00514 MBH-0015 150,36
MUG-00515 MBH-0016 59,45
MUG-00546 MBH-0045 13,00
MUG-00569 MBH-0053 119,05
73
Cód. Museo Cód.
Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00280 MBH-0062 37,40
MUG-00281 MBH-0063 56,03
MUG-00282 MBH-0064 34,05
MUG-00564 MBH-0077 101,43
MUG-00572 MBH-0080 6,77
MUG-00573 MBH-0081 69,77
MUG-00583 MBH-0087 5,10
Tabla 4.Concentraciones de plomo en la especie Glossophaga soricina.
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00521 MBH-0022 20,63
MUG-00522 MBN-0023 14,19
MUG-00525 MBH-0026 5,74
MUG-00469 MBH-0037 35,77
MUG-00552 MBH-0054 9,63
MUG-00554 MBH-0056 14,29
MUG-00561 MBH-0067 61,86
MUG-00203 MBH-0072 121,07
MUG-00567 MBH-0073 31,63
MUG-00568 MBH-0074 48,00
74
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00570 MBH-0075 37,23
MUG-00578 MBH-0086 67,86
Tabla 5.Concentraciones de plomo en la especie Saccopteryx bilineata.
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00551 MBH-0050 120,08
Tabla 6. Concentraciones de plomo en la especie Artibeus fraterculus.
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00500 MBH-0001 5,53
MUG-00501 MBH-0002 8,52
MUG-00524 MBH-0025 4,68
MUG-00556 MBH-0058 4,10
MUG-00288 MBH-0065 39,22
MUG-00563 MBH-0069 66,10
MUG-00289 MBH-0071 128,52
MUG-00566 MBH-0079 8,76
75
Tabla 7.Concentraciones de plomo en la especie Artibeus lituratus
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00516 MBH-0017 4,31
MUG-00520 MBH-0021 3,75
MUG-00526 MBH-0027 1,17
MUG-00528 MBH-0029 0,87
MUG-00529 MBH-0030 3,17
MUG-00530 MBH-0031 1,37
MUG-00531 MBH-0032 4,90
MUG-00557 MBH-0059 2,69
MUG-00558 MBH-0060 2,04
MUG-00559 MBH-0061 7,36
MUG-00571 MBH-0076 3,59
MUG-00565 MBH-0078 9,54
MUG-00574 MBH-0082 35,71
MUG-00575 MBH-0083 15,23
MUG-00576 MBH-0084 24,63
76
Tabla 8.Concentraciones de plomo en la especie Artibeus aequatorialis
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00517 MBH0018 3,53
MUG-00518 MBH-0019 1,51
MUG-00519 MBH-0020 0,71
MUG-00523 MBH-0024 3,85
MUG-00527 MBH-0028 1,59
MUG-00472 MBH-0040 18,16
MUG-00473 MBH-0041 37,28
MUG-00555 MBH-0057 2,90
MUG-00562 MBH-0068 57,01
Tabla 9.Concentraciones de plomo en la especie Platyrrhinus matapalensis
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00513 MBH-0014 87,32
MUG-00471 MBH-0039 19,40
MUG-00548 MBH-0047 6,84
77
Tabla 10.Concentraciones de plomo en la especie Carollia brevicauda
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00475 MBH-0043 30,76
MUG-00547 MBH-0046 3,26
MUG-00549 MBH-0048 10,89
MUG-00550 MBH-0049 14,44
MUG-00553 MBH-0055 42,74
Tabla 11.Concentraciones de plomo en la especie Phyllostomus elongatus
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00469 MBH-0044 81,52
Tabla 12. Concentraciones de plomo en la especie Micronycteris megalotis
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00512 MBH-0013 37,57
78
Tabla 13. Concentraciones de plomo en la especie Eumops wilsoni
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00532 MBH-0033 16,33
MUG-00534 MBH-0035 19,38
Tabla 14.Concentraciones de plomo en la especie Nyctinomops macrotis
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00535 MBH-0036 26,52
M-00196 MBH-0052 95,78
MUG-00560 MBH-0066 38,84
MUG-00577 MBH-0085 14,06
Tabla 15. Concentraciones de plomo en la especie Promops davisoni
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00583 MBH-0070 15,36
79
Tabla 16.Concentraciones de plomo en la especie Cynomops greenhalli
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00470 MBH-0038 16,09
MUG-00474 MBH-0042 12,17
Tabla 17.Concentraciones de plomo en la especie Myotis nigricans
Cód. Museo
Cód. Análisis
Concentración de Plomo (mg/Kg)
Zona urbana Área de
conservación
T. Blando T. Óseo T. Blando T. óseo
MUG-00533 MBH-0034 20,08
Los resultados obtenidos en los análisis de tejido blando (corazón, pulmones,
hígado y riñones) en individuos de bosque indican que la más alta
concentración de plomo se obtuvo en M. molossus (69,77 mg/Kg) (Tabla 3),
mientras que en aquellas especies capturadas en zona urbana reflejan que la
concentración más alta fue en G. soricina (mg/Kg) (Tabla 4).
Sin embargo, en las demás especies de quirópteros analizadas se destaca al
menos un individuo con una elevada concentración de plomo. Tenemos: A.
lituratus con 24,63 mg/Kg; A. aequatorialis con 57,01 mg/Kg; P. matapalensis
con 87,32 mg/Kg; Carollia brevicauda con 42,74 mg/Kg; P. elongatus con
81,52 mg/Kg; M. megalotis con 37,57 mg/Kg; Eumops wilsoni con 19,38
80
mg/Kg; N. macrotis con 95,78 mg/Kg; Promops davisoni con 15,36 mg/Kg; C.
greenhalli con 16,09 mg/Kg; M. nigricans con 20,08 mg/Kg (Ver tabla
7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17).
Se compararon los resultados de tejido óseo de especie M. molossus de zona
urbana y de bosque; usando el diagrama de cajas y la prueba de Kruskall -
wallis, obteniendo que las muestras no presentan diferencia de medianas (P
= 0,724) a pesar de que los M. molossus en el bosque presenten la mayor
concentración de plomo (Gráfico 5).
Gráfico 5.Comparación de concentración de plomo en muestra de hueso de M. molossus
Se hizo una comparación entre las concentraciones de plomo obtenidas de
tejido blando de especies de bosque y de zona urbana empleando el diagrama
BosqueCiudad
160
140
120
100
80
60
40
20
0
M. molossus
Pb
(m
g/K
g)
Boxplot of M. molossus URBANO-BOSQUE (HUESO)
A
A
81
de cajas y la prueba estadística Kruskall-wallis, obteniendo los siguientes
resultados:
La especie frugívora A. fraterculus (P = 0,157) y la especie insectívora M.
molossus (P = 0,063) no presentaron diferencia entre las medianas de las
concentraciones de plomo. En cambio con la especie frugívora A. lituratus (P
= 0,010) si presenta diferencias en las medianas, en el Gráfico 6 podemos
observar que esta diferencia de medianas se debe a que las concentraciones
más elevadas de plomo en esta especie fue hallada dentro del área de
conservación.
Gráfico 6.Comparación de concentraciones de plomo en muestra de tejido blando entre especies de zona urbana y áreas de conservación
M. molossusA. lituratusA. fraterculus
100
80
60
40
20
0
Pb
(m
g/K
g)
Boxplot of A. fraterculus. A. lituratus. M. molossus
Ciudad
Bosque
A A A
A
B
A
82
A nivel de gremio trófico también se hicieron comparaciones de
concentraciones de plomo en tejido blando entre zona urbana y de bosque
(Insectívoro P = 0,073; Nectarívoro P = 0,275; Frugívoro P = 0,002), en el
Gráfico 7 podemos observar que el gremio frugívoro presenta diferencia
estadística entre sus medianas lo que nos indica que las concentraciones
entre zona de bosque y de ciudad no son iguales, debido a que las
concentraciones más elevada de plomo de este gremio fue hallado en
aquellos individuos capturados en el área de conservación.
Gráfico 7.Concentraciones de plomo a nivel de Gremio Trófico en muestras de tejido blando
De igual forma, se compararon las concentraciones de plomo halladas en
tejido óseo entre zona urbana y de bosque (Insectívoro P = 0,380; Nectarívoro
P = 0,655; Frugívoro P = 0,201) indicando que no existen diferencias entre las
FRUGIVORONECTARIVOROINSECTIVORO
100
75
50
25
0
Pb
(m
g/K
g)
SECTIVORO; NECTARIVORO; FRUGIVORO (ORGANOS URBANO-BOSQUE)
Ciudad
Bosque
A
A A
A
A B
83
medianas de los rangos de concentraciones de plomo entre cada gremio
(Gráfico 8).
Gráfico 8.Concentraciones de plomo en muestras de tejido óseo a nivel de Gremio Trófico
Finalmente se comparó los rangos de concentraciones entre machos y
hembras de especies que presentaron mayor número de individuos utilizando
la prueba no paramétrica Mann-Whitney, concluyendo que no existen
diferencias significativas entre las medianas de los rangos entre las
poblaciones de machos y hembras a nivel de las especies M. molossus, A.
lituratus, G. soricina y A. aequatorialis; también se realizó una comparación
entre machos y hembras de estas especies estratificándolas por zona urbana
y de bosque, en las cuales no se muestran diferencias significativas entre los
rangos de las medianas de concentración de plomo (Anexos 5-12).
FRUGIVORONECTARIVOROINSECTIVORO
200
150
100
50
0
Pb
(m
g/K
g)
A
A
A
AA
A
Ciudad
Bosque
84
De acuerdo a los resultados obtenidos, a las condiciones en las que fueron
hallados ciertos individuos y a la literatura revisada se sugiere que el ciclo del
plomo en murciélagos seria el siguiente (Fig. 36):
Figura 36. Propuesta de Ciclo del Plomo en Murciélagos en la ciudad de
Guayaquil y zonas aledañas
85
10. DISCUSION
En este trabajo, las concentraciones más altas de plomo en quirópteros en las
zonas de bosque fueron Molossus molossus (150,36 mg/Kg); Glossophaga
soricina (121,07 mg/Kg) y Platyrrhinus matapalensis (87,32 mg/Kg), en
cambio dentro de la zona urbana las especies con concentraciones altas de
plomo fueron: Saccopteryx bilineata (120,08); Molossus molossus (119,05
mg/Kg); Artibeus fraterculus (128,52 mg/Kg) y Glossophaga soricina (61,86
mg/Kg) (Ver Tabla 2, 3, 4, 5, 6, 9 ), todos estos valores se obtuvieron de las
lecturas a partir de muestras de tejido óseo; por otro lado analizando los
resultados presentados por Williams et al. (2010) en la zona de
amortiguamiento del Parque Nacional Manu (Perú), en el cual reporta
elevadas concentraciones de plomo en las especies Anoura caudifer con
344,0 mg/Kg y Sturnira oparaphyllum con 14,24 mg/Kg; ambas pertenecientes
a la familia Phyllostomidae tal como en nuestro caso lo son G. soricina y A.
fraterculus podríamos discernir que algunas de estas especies podrían ser
tomadas en cuenta como bioindicadores de plomo, es importante mencionar
que estas especies suelen alimentarse de frutas con características carnosas
y bayas. Hasta la fecha no existen reportes bibliográficos científicos que
reporten concentraciones o presencia de plomo en este tipo de frutos, por lo
cual solo nos atrevemos a sugerir que la fuente de plomo para este mamífero
seria la alimentación por estos frutos. Es probable que las altas
concentraciones halladas obedezcan a que estos valores provienen de tejido
óseo ya que, de acuerdo con Sanin et al., (1998), las concentraciones de
plomo hallados en tejido óseo son consideradas como biomarcadores de
plomo, ya que es un tejido vivo que constantemente se encuentra en un
86
proceso de formación y reabsorción, por lo que las concentraciones de plomo
halladas en muestras de los antebrazos de los murciélagos mostrarían el
grado de concentración real de plomo, a diferencia del que es encontrado en
tejido blando, por lo que el trabajo realizado por Williams et al. (2010) reflejaría
solo la exposición ambiental reciente.
Al comparar las concentraciones de plomo obtenidas entre especies de zona
urbana y de bosque tenemos que especies halladas en zonas urbanas como
A. fraterculus, A. aequatorialis y M. molossus, en muestras de tejido blando
presentan concentraciones que van desde 0,71 a 10,94 mg/Kg de plomo,
mientras que los análisis en tejido óseo de la misma zona urbana en estas
especies presentan concentraciones mucho mayores que van desde 34,05 a
128,52 mg/Kg de plomo, lo que nos indica que el mejor estimador de
concentración de plomo en murciélagos es el tejido óseo (Ver Tabla 2, 6, 8).
En cambio, las concentraciones más altas a partir de tejido blando en zonas
de bosque fueron en las especies: M. molossus (69,77 mg/Kg), A. lituratus
(35,71 mg/Kg) y C. brevicauda (14,44 mg/Kg); mientras que dentro de la zona
urbana fueron: M. molossus (10,94 mg/Kg), G. soricina (48,00 mg/Kg) y P.
davisoni (15,36 mg/Kg). Estos valores discrepan entre zonas, reflejando un
nivel de concentración más alto en aquellas especies capturadas en zona de
bosque (Ver tabla 3), indicando que en esta área la presencia de plomo es
más elevada en comparación con la zona urbana.
87
Los individuos colectados vivos durante la fase de campo del presente trabajo
no presentaron signos visuales por intoxicación aguda de plomo en los
pulmones como cambios en tonalidad, aparición de pequeños tumores o
protuberancias por lo que se presume que el ingreso de plomo no es por vía
respiratoria, sino por el tipo de dieta, lo cual coincide con Williams, et al.
(2010), y es consistente con el ciclo propuesto de plomo en murciélagos, en
donde se enfatiza que una de las principales captaciones de este metal es por
ingesta (Ver Fig. 36).
En cuanto al análisis por gremio trófico, el grupo de los insectívoros
(Molossidae, Vespertilionidae y Emballonurinae) presentó mayores niveles de
concentración de plomo destacándose un ejemplar de M. molossus (MUG-
00514) que obtuvo 150,36 mg/Kg, (Ver tabla 3; Gráficos 7 y 8), lo cual
concuerda con lo reportado en Gran Bretaña por Walker et al., (2007), en
géneros de insectívoros como Pipistrellus, Plecotus y Myotis
(Vespertilionidae). Debido a esto, se presume que este gremio bioacumula
mayormente Pb, considerando que su principal fuente de alimentos son los
insectos, éstos pueden estar relacionados con alguna interacción con
pesticidas usados en estas áreas
Las fuentes hídricas más cercanas para los murciélagos residentes de la
ciudad de Guayaquil y alrededores son el río Guayas y el Estero Salado;
según los estudios realizados determinando metales pesados en agua
superficial, sedimentos y organismos de estas áreas (Alcivar & Mosquera,
88
2011; Jiménez, 2012; Kuffó, 2013; Mero, 2010; Mero et al., 2012; Rodriguez,
2013; Siavichay, 2013) no se registran valores que sobrepasen los límites
máximos permisibles de plomo en el agua (0,01 mg/Kg) según el TULSMA.
Sin embargo, el sedimento sí presenta concentraciones altas de plomo (64,
38 mg/Kg) en comparación con las halladas en el agua, por lo que es
necesario considerar las dinámicas (flujo y reflujo) de los estuarios, ya que
pueden quedar sólidos suspendidos con concentraciones de Pb en agua y a
su vez estos ser ingeridos por estos mamíferos (Sanchez et al., 2009).
El análisis entre sexos en las especies: Molossus molossus, Glossophaga
soricina, Artibeus aequatorialis y Artibeus lituratus, halladas en zona urbana y
de bosque, indicaron que no existían diferencias en las concentraciones de
plomo entre machos y hembras (Ver Anexos 5-12), concordando con Williams,
et al. (2010) al realizar el mismo análisis en especies de Sturnira y Carollia en
Perú, lo cual nos indica que el proceso de bioacumulación de plomo en estas
especies se da indistintamente del sexo o si son de zona urbana o de bosque.
Los resultados obtenidos en el presente trabajo evidencian que existen
diferencias entre las concentraciones de plomo en murciélagos de zona
urbana con las de bosque, siendo éste último el sitio donde las
concentraciones de Pb fueron más altas (Ver Gráficos 3 y 4), no obstante, los
valores obtenidos sólo muestran diferencia estadística a nivel del gremio
frugívoro, y en la especie M. molossus (Ver Gráficos 6 y 7), las cuales son
altas en comparación con los valores hallados en los trabajos realizados por
Walker et al., (2007) y William et al., (2010).
89
En este estudio, debido a la disponibilidad de ejemplares, no se analizó tejido
de especies que están en categorías de amenaza como En Peligro Crítico, En
Peligro y Vulnerable de acuerdo con la lista roja de mamíferos de Ecuador
(Tirira 2011), pero sí se analizaron muestras a partir de Platyrrhinus
matapalensis, categorizada como Casi Amenazada-NT (Tirira 2011), y en la
que se registró una concentración de 87,32 mg/Kg (MUG-00513, Tabla 9), y
en Cynomops greenhalli categorizada como Datos Insuficientes (Tirira, 2011)
registraron una concentración máxima de 16,09 mg/Kg (MUG-00470, Tabla
16). Ambas especies fueron colectadas del Bosque Protector Cerro Blanco, y
las concentraciones halladas en estas dos especies podrían ser consideradas
muy altas (Walker, et al., 2007; Williams, et al., 2010); este resultado puede
ser usado como criterio al momento de evaluar el riesgo de extinción de estas
especies.
Por todo lo presentado, se demuestra que el grupo de murciélagos está
bioacumulando de forma activa Pb en la ciudad de Guayaquil y sus
alrededores, no obstante el alcance de esta investigación no incluyó un
análisis de los posibles efectos negativos que estarían provocando en sus
poblaciones. Varios autores (Misuraca 2007; ATSDR, 2007) debaten sobre la
carcinogenecidad del Plomo y sus compuestos en seres humanos, por lo que
en murciélagos puede tener el mismo efecto. Investigaciones usando
indicadores histopatológicos en otros vertebrados, han mostrado ser buenos
detectores de efectos de contaminación de sustancias tóxicas, hallando
hiperplasia, vacuolización de hepatocitos, aneurismas y sinequias en
90
branquias; inclusiones hialinas en hígado y centros melanomacrófagos en
riñón; además de cambios anatomopatológicos a nivel branquial, hepático y
renal (Schwaiger et al., 1997; Blazer 2002; Van Dyk, et al., 2007; Argota et al.,
2012; Naranjo et al., 2014). En base a lo antes mencionado, se considera que
un próximo paso para determinar los posibles efectos de contaminación por
plomo en quirópteros es a través de análisis histopatológicos en tejidos como
riñones, hígado, pulmones y cerebro.
Por otro lado, técnicamente es muy difícil determinar algún valor como límite
máximo permisible sobre los niveles de plomo (Pb) en murciélagos, que a
pesar del número alto de muestras analizadas (n=87). Actualmente, en la
legislación ecuatoriana no existen límites máximos permisibles en fauna
terrestre de acuerdo al Acuerdo Ministerial 028 por lo este trabajo de
investigación es una primera aproximación que analiza un taxón de fauna
terrestre como biomonitores de plomo en zonas urbanas para ambientes
costeros en Ecuador, por ser sensibles a esos contaminantes y presentar
respuestas medibles a nivel de órganos y tejidos (Williams, et al. 2010; Walker,
et al. 2007). Adicionalmente, deben tenerse en cuenta criterios biológicos y
ecológicos como el tipo de hábitat, gremio trófico, y variación intraespecífica
(edad, sexo, gravidez), ya que en los resultados obtenidos se han observado
que las concentraciones de plomo difieren entre cada gremio e incluso entre
géneros (Ver Gráficos 6, 7, 8). En resumen, existen muchos vacíos de
información biológica y ecológica, para proponer un límite máximo permisible,
91
y este estudio deberá ser considerado como base para futuras
investigaciones.
Las concentraciones halladas en esta investigación en las distintas especies
de quirópteros colectados en Guayaquil y sus alrededores son un reflejo del
incremento de concentración de metales pesados en el ecosistema debido a
al aumento de la actividad industrial, y el desarrollo urbano (Alcivar &
Mosquera, 2011; Jiménez, 2012; Kuffó, 2013; Mero, 2010; Mero et al., 2012;
Rodriguez, 2013; Siavichay, 2013), tanto en zona urbana como de zonas de
bosque, por lo que también es necesario analizar las concentraciones de otros
metales pesados como el Cadmio, Níquel, Zinc, Mercurio y sus efectos en las
poblaciones de murciélagos, como sugieren los trabajos de Walker et al.,
(2007) y Williams et al., (2010).
En base a los resultados obtenidos, se evidencia que los niveles de
concentración hallados en los murciélagos urbanos y de bosque en Guayaquil
y su zona de influencia constituyen una amenaza emergente para su
sobrevivencia (Burneo et al., 2015), y se debe incentivar estudios similares
para analizar el efecto de estos contaminantes en sus poblaciones en otras
ciudades costeras ecuatorianas densamente pobladas o con crecimiento
industrial constante, como por ejemplo Esmeraldas por presentar la Refinería,
también en Manta por su cercanía a las instalaciones de la Refinería del
Pacifico (ANDES, 2015; “Refinería del Pacifico | RDP,” n.d.).
92
11. CONCLUSIONES
Las más altas concentraciones de plomo fueron halladas en las especies que
habitan en zona de bosque, en donde los rangos de concentración variaron
de 3, 26 mg/Kg a 150,36 mg/Kg
La especie M. molossus (150,36mg/Kg) presentó la concentración más
elevada dentro del Bosque Protector Cerro Blanco.
El gremio trófico insectívoro mostró los valores de plomo más altos en la
especie M. molossus (Bosque 150,36 mg/Kg), seguido del grupo de
nectarívoros en la especie Glossophaga soricina (Bosque 121,07 mg/Kg), y
por último los frugívoros en la especie Artibeus fraterculus (Urbano 128,52
mg/Kg).
Los rangos de concentración de plomo hallados en los individuos colectados
en zona urbana están comprendidos entre 0,71 mg/Kg y 128,52 mg/Kg.
Excepcionalmente, solo un individuo de la especie T. brasiliensis presentó una
elevada concentración de plomo (178,46 mg/Kg).
Los resultados muestran que los análisis realizados a partir de tejido óseo son
mejores estimadores de concentración de plomo que aquellos realizados a
partir de tejido blando.
No se observaron diferencias en las concentraciones de plomo entre sexos en
las especies Molossus molossus, Glossophaga soricina, Artibeus
aequatorialis y Artibeus lituratus.
En función de un principio de precaución, la contaminación por Pb debe
considerarse como una amenaza emergente para especies de quirópteros
que están enlistadas con riesgo de extinción, sobre todo en Platyrrhinus
matapalensis (NT) y Cynomops greenhalli (DD).
93
12. RECOMENDACIONES
Replicar investigaciones similares de concentración de metales
pesados en quirópteros, u otros grupos taxonómicos de fauna terrestre,
en otras ciudades y áreas de conservación en la provincia del Guayas,
a nivel costero o a nivel nacional.
Ampliar los análisis de metales pesados con otros metales pesados
como lo son; Cadmio (Cd); Níquel (Ni); Mercurio (Hg) y Zinc (Zn) en
murciélagos de Guayaquil y sus alrededores.
Considerar a los museos como una fuente primaria para tomar
muestras de tejido óseo de las distintas especies de fauna terrestre,
para determinar el grado de concentración real de plomo, o de otros
metales pesados, al que las especies se encuentran expuestas.
Evaluar los posibles efectos negativos que produce el Pb en
murciélagos por medio de exámenes histopatológicos en tejidos como:
hígado, cerebro, riñones y otros, que nos permitan tener una mejor
perspectiva de presencia de signos de diagnóstico por intoxicación de
plomo en murciélagos, y sus consecuencias en la salud de sus
poblaciones.
Este trabajo debe complementarse con investigaciones sobre las
concentraciones y efectos de los metales pesados correlacionándolos
con variables biológicas y ecológicas, con miras a proponer un límite
máximo permisible en murciélagos.
Validar el ciclo de plomo en murciélagos propuesto en el presente
trabajo en futuras evaluaciones de este tipo de tóxicos en mamíferos.
94
13. BIBLIOGRAFÍA
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105
14. GLOSARIO
Bioacumulación: Evento que se da cuando los organismos vivos, absorben
tóxicos inversamente proporcional al que sus cuerpos pueden eliminar, por lo
que el contaminante se bioacumula en sus tejidos u órganos.
Biodegradable: Se aplica al producto o sustancia que puede descomponerse
en elementos químicos naturales por la acción de los agentes naturales, como
el sol, el agua, las bacterias, las plantas o los animales.
Biomagnificación: Evento que se da cuando ya existe una bioacumulación y
este es transferido de un nivel trófico a otro incrementando su concentración
a través de la cadena trófica.
Biomonitores: Organismos que permiten relacionar las concentraciones de
un contaminante con los efectos producidos. Contribuye con el seguimiento
en los cambios producidos en las condiciones ambientales y su influencia
sobre el medio.
Biorefractarios: Aquellos cuerpos o sustancias que resisten la acción del
fuego; no pierden forman, no se degradan.
Ciclos biogeoquímicos: Deriva del movimiento cíclico de los elementos que
forman los organismos biológicos (bio) y el ambiente geológico (geo) e
interviene un cambio químico.
Ecotoxicología: Ciencia que estudia las alteraciones ambientales causadas
por agentes tóxicos y la toxicidad directa sobre los organismos presentes
106
Toxicología: Ciencia que estudia los efectos adversos de sustancias toxicas
sobre organismos individuales
Valor umbral: Cantidad mínima de señal que ha de estar presente para ser
registrada por un sistema
107
ANEXOS
108
Anexo 1. Planilla de campo
Planilla de campo usada en la investigación para anotar las principales medidas morfometricas, nombre de especie, fecha de
colecta y lugar.
CONT. ANEXO 2
109
Anexo 2. Codificación y medidas de muestras analizadas.
LT: Largo total CC: Largo de la cabeza y el cuerpo juntos. LC: Largo de la cola. LO: Largo de la oreja. AB: Largo del antebrazo.
LP: Largo de la pata posterior. Cr: Largo del cráneo (se indica únicamente en aquellas especies donde su medición será importante
para la identificación). TE: Testículos escrotados. VA: Vagina abierta.
FECHA COD. DE
ANÁLISIS
COD. DE
MUSEO ESPECIE LOCALIDAD
MEDIDAS (mm)
SEXO
TEJIDO
TOMADO Obs.
LT CC CO LO AB LP
04
-se
p-1
5
MBH-0001 MUG-
00500
Artibeus
fraterculus
ALBORADA XI
ETAPA
54 54 -- 13 55 10 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones.
TE
05
-se
p-1
5
MBH-0002 MUG-
00501
Artibeus
fraterculus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
66 66 -- 14 54 13 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones.
VA
CONT. ANEXO 2
110
06
-se
p-1
5
MBH-0003 MUG-
00502
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
82 53 29 8 35 6 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones.
TE
MBH-0004 MUG-
00503
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
84 56 28 8 35 5 ♂ Corazón,
hígado, riñones. TE
MBH-0005 MUG-
00504
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
83 54 29 9 36 6 ♂ Corazón,
hígado, riñones. TE
MBH-0006 MUG-
00505
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
78 50 28 7 34 5 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA
MBH-0007 MUG-
00506
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
80 51 29 8 34 6 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones.
VA
MBH-0008 MUG-
00507
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
80 52 28 7 34 5 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA
CONT. ANEXO 2
111
MBH-0009 MUG-
00508
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
77 50 27 8 35 5 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TA
MBH-0010 MUG-
00509
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
78 50 28 8 35 5 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA
MBH-0011 MUG-
00510
Molossus
molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
85 55 30 8 35 5 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0012 MUG-
00511 M. molossus
DURAN -
RECREO III
ETAPA
73 46 27 7 34 5 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones.
TE
16
-oct-
15
MBH-0013 MUG-
00512
Micronycteris
megalotis
CERRO
BLANCO
50 42 8 12 35 5 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones.
VC, MURIO
DESPUES DE
LA CAPTURA
MBH-0014 MUG-
00513
Platyrrhinus
matapalensis
CERRO
BLANCO
44 44 ----- 15.3 39 8 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TA
CONT. ANEXO 2
112
MBH-0015 MUG-
00514 M. molossus
CERRO
BLANCO
82 52 30 7 35 5 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TA
MBH-0016 MUG-
00515 M. molossus
CERRO
BLANCO
80 50 30 10 35 7 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VC
15
-dic
-15
MBH-0017 MUG-
00516
Artibeus
lituratus
FACULTAD
CCNN
75 75 - 16 67 10 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, AULTO,
PECHO
PELADO
MBH0018 MUG-
00517
A.
aequatorialis
FACULTAD
CCNN
70 70 - 16 65 11 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE, adulto,
ectoparásitos
MBH-0019 MUG-
00518
A.
aequatorialis
FACULTAD
CCNN
71 71 - 19 65 16 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TA,
ectoparásitos
MBH-0020 MUG-
00519
A.
aequatorialis
FACULTAD
CCNN
76 76 - 18 69 13 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, adulto,
mamas
desarrolladas,
ectoparásitos
CONT. ANEXO 2
113
MBH-0021 MUG-
00520
Artibeus
lituratus
FACULTAD
CCNN
62 62 - 11 52 11 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, adulto.
MBH-0022 MUG-
00521
Glossophaga
soricina
FACULTAD
CCNN
45 39 6 11 35 6
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VC,, JUVENIL
MBN-0023 MUG-
00522 G. soricina
FACULTAD
CCNN
41 36 5 10 34 6 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VC, JUVENIL.
ECTOPARASI
TOS
MBH-0024 MUG-
00523
A.
aequatorialis
FACULTAD
CCNN
77 77 - 17 65 13 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
Mamas poco
desarrolladas,
preñada,
ectoparásitos
MBH-0025 MUG-
00524 A. fraterculus
FACULTAD
CCNN
57 57 - 13 54 10 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, ADULTO
PARASITOS
MBH-0026 MUG-
00525
Glossophaga
soricina
FACULTAD
CCNN
43 37 6 10 35 7 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, JUVENIL
CONT. ANEXO 2
114
16
-15
-15
MBH-0027 MUG-
00526 A. lituratus
FACULTAD
CCNN
77 77 - 15 67 15 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TA, JUVENIL
MBH-0028 MUG-
00527
A.
aequatorialis
FACULTAD
CCNN
75 75 - 18 64 12 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, adulto
MBH-0029 MUG-
00528
Artibeus
lituratus
FACULTAD
CCNN
79 79 - 19 73 14 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, mamas
desarrolladas,
juvenil,
preñada
MBH-0030 MUG-
00529
Artibeus
lituratus
FACULTAD
CCNN
79 79 - 18 70 14 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE, adulto,
ectoparásitos
MBH-0031 MUG-
00530
Artibeus
lituratus
FACULTAD
CCNN
77 77 - 18 70 16 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA, juvenil,
ectoparásitos,
preñada
MBH-0032 MUG-
00531
Artibeus
lituratus
FACULTAD
CCNN
79 79 - 18 68 15 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE, JUVENIL,
ECTOPARASI
TOS
CONT. ANEXO 2
115
20
07
MBH-0033 MUG-
00532
Eumpos
wilsoni
CLINICA
ALCIVAR 56 ♂
hueso de
antebrazo
individuo
colectado
muerto
20
10
MBH-0034 MUG-
00533
Myotis
nigricans
MAPASINGUE 31 ♂ hueso de
antebrazo
individuo
colectado
muerto
20
06
MBH-0035 MUG-
00534
Eumpos
wilsoni
CENTRO DE LA
CIUDAD 56 ♀
hueso de
antebrazo
individuo
colectado
muerto
20
11
MBH-0036 MUG-
00535
Nyctinomops
macrotis
ESTADIO
COPWELL 41 ♂
hueso de
antebrazo
individuo
colectado
muerto
MU
ES
TR
AS
DE
MU
SE
O
MBH-0037
MUG-
00469
Glossophaga
soricina
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
MBH-0038
MUG-
00470
Cynomops
greenhali
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
MBH-0039 MUG-
00471
Platyrrhinus
matapalensis
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
CONT. ANEXO 2
116
MBH-0040
MUG-
00472
Artibeus
jamaicensis
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
MBH-0041
MUG-
00473
Artibeus
jamaicensis
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
MBH-0042
MUG-
00474
Cynamops
greenhali
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
MBH-0043
MUG-
00475
Carolia
brevicaudia
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
MBH-0044
MUG-
00469
Phyllostomu
s elongatus
CERRO
BLANCO
hueso de
antebrazo
Fe
b/2
01
6
MBH-0045 MUG-
00546 M. molossus
CERRO
BLANCO
73 50 23 10 36 4 ♂ órganos, TE
Fe
b/2
01
6
MBH-0046 MUG-
00547
Carollia
brevicauda
CERRO
BLANCO
60 45 15 13 41 16 ♂ órganos, TE
CONT. ANEXO 2
117
4-0
3-
16
MBH-0047 MUG-
00548
Platyrrhinus
matapalensis
CERRO
BLANCO
41 41 0 36 9 ♂ órganos TE 1
1/0
3/1
6
MBH-0048 MUG-
00549
Carollia
brevicauda
CERRO
BLANCO
60 48 12 13 40 13 ♀ órganos VA
12
/04
/16
MBH-0049 MUG-
00550
Carollia
brevicauda
CERRO
BLANCO
56 45 11 12 38 10 ♀ órganos VA
Nov/2
01
4
MBH-0050 MUG-
00551
Saccopteryx
bilineata
DAULAR-
CHONGON
35 ♂ Hueso de
Antebrazo
Colectados
muertos
Mu
estr
a
de
mu
se
o
MBH-0051 M-00202 Taradira
brasilensis
GUASMO 60 ♀ Hueso de
Antebrazo
Colectados
muertos
MBH-0052 M-00196 Nictinomops
macrotis
GUASMO 43 ♂ Hueso de
Antebrazo
Colectados
muertos
Nov/2
01
4
MBH-0053 MUG-
00569 M. molossus
DAULAR-
CHONGON 34 ♂
Hueso de
antebrazo
Colectados
muertos
CONT. ANEXO 2
118
9/4
/16
MBH-0054 MUG-
00552 G. soricina
CERRO
BLANCO
35 ♀ órganos
sin
ectoparásitos,
adulto
18
/4/1
6
MBH-0055 MUG-
00553
Carollia
brevicauda
SUR OESTE 34 ♂ hueso de
antebrazo
sin
ectoparacitos,
adulto
28
/0
420
16
MBH-0056 MUG-
00554
Glossophaga
soricina
PJ 64 56 8 12 34 9 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(TE) SIN
ECTOPARASI
TOS
MBH-0057 MUG-
00555
A.
aequatorialis
PJ 83 83 -- 25 65 15 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(TE) SIN
ECTOPARASI
TOS
MBH-0058 MUG-
00556
Artibeus
fraterculus
PJ 75 75 -- 21 54 14 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(TE) SIN
ECTOPARASI
TOS
MBH-0059 MUG-
00557 A. lituratus PJ 90 90 -- 22 72 16 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(TE) SIN
ECTOPARASI
TOS
CONT. ANEXO 2
119
MBH-0060 MUG-
00558 A. lituratus PJ 85 85 -- 21 65 15 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(TE) SIN
ECTOPARASI
TOS
MBH-0061 MUG-
00559 A. lituratus PJ 89 89 -- 22 71 17 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(TE) SIN
ECTOPARASI
TOS
Mu
estr
as d
e m
useo
MBH-0062 MUG-
00280
Molossus
molossus
CENTRO DE LA
CIUDAD
hueso
MBH-0063 MUG-
00281
Molossus
molossus GUAYACANES hueso
MBH-0064 MUG-
00282
Molossus
molossus
GUAYACANES hueso
MBH-0065 MUG-
00288
Artibeus
fraterculus
JARDÍN
BOTÁNICO
hueso
Ju
n/2
00
9
MBH-0066 MUG-
00560
Nictinomops
macrotis
3ER PUENTE
PERIMETRAL
42 ♂ hueso Colectado
muerto
CONT. ANEXO 2
120
Ju
n/2
01
1
MBH-0067 MUG-
00561
Glosophaga
soricina
MALECÓN
2000
35 ♂ hueso Colectado
muerto
Ju
n/2
00
7
MBH-0068 MUG-
00562
Artibeus
jamaicensis
KENNEDY
NORTE
58 ♂ hueso Colectado
muerto
Ju
n/2
00
7
MBH-0069 MUG-
00563
Artibeus
fraterculus
KENNEDY
NORTE
61 ♀ hueso Colectado
muerto
Mayo
2016 MBH-0070
MUG-
00583
Promops
davisoni ATARAZANA hueso
Mu
estr
as d
e m
useo
MBH-0071 MUG-
00289
Artibeus
fraterculus
JARDIN
BOTANICO
hueso
MBH-0072 MUG-
00203
Glossophaga
soricina
CERRO
BLANCO
hueso
CONT. ANEXO 2
121
4/0
5/2
01
6
MBH-0073 MUG-
00567
Glossophaga
soricina
AV.
BARCELONA
43 37 6 10 35 7 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(VA) SIN
ECTOPARASI
TOS
MBH-0074 MUG-
00568
Glossophaga
soricina
AV.
BARCELONA
44 38 6 10 35 7 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(VA) SIN
ECTOPARASI
TOS
MBH-0075 MUG-
00570
Glossophaga
soricina
AV.
BARCELONA
43 36 7 10 35 7 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
(VA) SIN
ECTOPARASI
TOS
04
/06
/20
16
MBH-0076 MUG-
00571 A. lituratus
CERRO
BLANCO
76 76 - 18 69 16 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0077 MUG-
00564 M. molossus
AV.
BARCELONA
68 41 27 7 34 5 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0078 MUG-
00565 A. lituratus
AV.
BARCELONA
78 78 - 18 71 16 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
CONT. ANEXO 2
122
MBH-0079 MUG-
00566 A. fraterculus
AV.
BARCELONA
54 54 -- 13 55 10 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0080 MUG-
00572 M. molossus
CERRO
BLANCO
70 43 27 7 34 5 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0081 MUG-
00573 M. molossus
CERRO
BLANCO
73 46 27 7 34 5 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA
MBH-0082 MUG-
00574 A. lituratus
CERRO
BLANCO
80 80 - - 18 73 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0083 MUG-
00575 A. lituratus
CERRO
BLANCO
77 77 - - 18 69 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
MBH-0084 MUG-
00576 A. lituratus
CERRO
BLANCO
77 77 - 18 70 16 ♂
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
TE
CONT. ANEXO 2
123
06/06/
2016 MBH-0085
MUG-
00577 N. macrotis
RIOCENTRO
NORTE
46 ♀ hueso muerto
Ju
n/2
01
6 MBH-0086
MUG-
00578 G. soricina
BOSQUE
PAPAGAYO-
GUAYAQUIL
43 37 6 10 35 7 ♀
Corazón,
pulmones,
hígado, riñones
VA
MBH-0087 MUG-
00583 M. molossus BOSQUEIRA 33 ♂ hueso
Murió luego
de colecta
124
Anexo 3 Muestras tomadas del museo
Código
asignado
para
análisis
ESPECIE Lugar COD. DE
MUSEO FECHA
MBH-0037 Glosophaga
soricina
Cerro
Blanco MUG-00469
2014
MBH-0038 Cynomops
greenhalli
Cerro
Blanco MUG-00470 2014
MBH-0039 Platyrrhinus
matapalensis
Cerro
Blanco MUG-00471 2014
MBH-0040 Artibeus
jamaicensis
Cerro
Blanco MUG-00472 2014
MBH-0041 Artibeus
jamaicensis
Cerro
Blanco MUG-00473 2014
MBH-0042 Cynomops
greenhalli
Cerro
Blanco MUG-00474 2014
MBH-0043 Carollia
brevicauda
Cerro
Blanco MUG-00475
2014
MBH-0044 Phyllostomus
elongatus
Cerro
Blanco MUG-00469
2014
MBH-0051 Tadarida
brasilensis Guasmo MUG-00202 1995
125
MBH-0052 Nyctinomops
macrotis Guasmo MUG-00196 1995
MBH-0062 Molossus
molossus Centro MUG-00280 2004 dic
MBH-0063 Molossus
molossus Guayacanes MUG-00281 2004 nov
MBH-0064 Molossus
molossus Guayacanes MUG-00282 2004 nov
MBH-0065 Artibeus
fraterculus
Jardín
Botánico MUG-00288 2004 dic
MBH-0071 Artibeus
fraterculus
Jardín
Botánico MUG-00289 2004 dic
MBH-0072 Glossophaga
soricina
Cerro
Blanco MUG-00203
2002
agosto
126
Anexo 4. Puntos de Muestreo
Posición geográfica satelital de los puntos de muestreo en coordenadas UTM
Zona/Lugar Coordenada X Coordenada Y
Cerro Blanco 607461 9760448
Cerro Blanco 606461 9760971
Daular-Chongón 598913 9746536
Gye – Clínica Alcívar 623697 9756005
Gye- Guayacanes 622271 9762939
DURAN- Recreo 3era Etapa 630113 9759051
Gye – Alborada Xi Etapa 620911 9759570
Gye – Facultad CCNN 619744 9760023
Gye- Malecón 2000 623762 9757755
Gye – Centro 623244 9756718
Gye – Sur Oeste 617865 9756135
Gye- Parque Lineal (Pj) 618124 9757496
GYE- 3er Puente De La Perimetral 618448 9754385
Gye- Guasmo 624540 9750597
Gye – Kennedy Norte 622855 9761125
GYE – Parque Lineal (Puente De La
17) 620587 9757690
ESPOL 618473 9761283
Cerro Blanco 609445 9762340
Cerro Blanco 609259 9758704
Cerro Blanco 609980 9763979
127
Cerro Blanco 608820 9759067
Cerro Blanco 608822 9759483
Cerro Blanco 609259 9758704
Cerro Blanco 602200 9760570
Cerro Blanco 601679 9762935
Bosque Papagayo-Guayaquil 608494 9765512
Cerro Blanco 610873 9760801
Anexo 5. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y hembras de la especie M. molossus
128
Anexo 6. Comparación de rangos de concentración de plomo entre hembras de la especie M. molossus de zona urbana y de bosque.
Anexos 7. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos de la especie M. molossus de zona urbana y de bosque.
129
Anexo 8. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y hembras de la especie A. aequatorialis.
Anexo 9. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y hembras rangos de la especie G. soricina.
130
Anexo 10. Comparación de rangos de concentración de plomo entre hembras de la especie G. soricina de zona urbana y de bosque.
Anexo 11. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos y hembras de la especie A. lituratus
131
Anexos 12. Comparación de rangos de concentración de plomo entre machos de la especie A. lituratus de zona urbana y de bosque.
132
Anexo 13. Permiso de investigación otorgado por el Ministerio del Ambiente
133
134
135
136
137
Anexo 14. Carta de Autorización otorgada por "Fundación Siglo XXI"
138
Anexos 15. Collage de especies analizadas
a: Saccopteryx bilineata, b:Phyllostomus elongatus, c: Carollia brevicauda, d:
Micronycteris megalotis; e: Artibeus fraterculus, f: Artibeus aequatorialis, g:
Artibeus lituratus, h: Platirrhynus matapalensis, i: Glossophaga soricina, j.
Molossus molossus, k: Promops davisoni, l: Tadarida brasilensis, m:
Nyctinomops macrotis, n: Eumops wilsoni, o: Cynomops greenhalli, p: Myotis
nigricans.
a b c d
e f g h
i j k l
m n o p
139
Anexos 16 Grupo de trabajo