secretarÍa de agricultura, ganaderÍa,
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SECRETARÍA DE AGRICULTURA, GANADERÍA, DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACIÓN
Lic. Francisco Javier Mayorga Castañeda Secretario
MC. Mariano Ruiz-Funes Macedo Subsecretario de Agricultura
Ing. Ignacio Rivera Rodríguez Subsecretario de Desarrollo Rural
Dr. Pedro Adalberto González Hernández Subsecretario de Fomento a los Agronegocios
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES,
AGRÍCOLAS Y PECUARIAS
Dr. Pedro Brajcich Gallegos Director General
Dr. Salvador Fernández Rivera Coordinador de Investigación, Innovación y Vinculación
Dr. Enrique Astengo López Coordinador de Planeación y Desarrollo
Lic. Marcial A. García Morteo Coordinador de Administración y Sistemas
CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONALDEL NOROESTE
Dr. Erasmo Valenzuela Cornejo Director Regional
Dr. Miguel Alfonso Camacho Casas Director de Investigación
Dr. Jesús Arnulfo Márquez Cervantes Director de Planeación y Desarrollo
Lic. José Silva Constantino Director de Administración Dr. Emilio Jiménez García
Director de Coordinación y Vinculación en el estado de Sonora
CAMPO EXPERIMENTAL VALLE DEL YAQUI
M.C. Lope Montoya Coronado Jefe de Campo
M.C. Jesús Rafael Valenzuela Borbón Responsable del Sitio Experimental Valle del Mayo
La serie de Folletos Técnicos está integrada por publicaciones cuyo objetivo es presentar información sobre los cultivos, en los cuales el INIFAP-CIRNO a través del Campo Experimental Valle del Yaqui realiza investigación, con el fin de apoyar con una asistencia técnica adecuada a los productores de esta región agrícola del estado de Sonora.
COMITÉ EDITORIAL CEVY
Presidente: M.C. Lope Montoya Coronado
Secretario: M.C. Juan José Pacheco Covarrubias
Vocales Agrotecnia: M.C. Juan Manuel Cortés Jiménez
M.C. Manuel de Jesús Beltrán Fonseca Dr. Juan Manuel Ramírez Díaz
Vocal Mejoramiento Genético: M.C. Isidoro Padilla Valenzuela
Vocales Sanidad Vegetal: Dr. Pedro Figueroa López
M.C. José Alfonso Ramírez Arredondo
Diseño de portada e interiores Raúl Arturo Gámez Chú
Edición y Revisión Comité Editorial del CEVY
CAMPO EXPERIMENTAL VALLE DEL YAQUI, (INIFAP) Dr. Norman E. Borlaug km 12
Apartado Postal 115 85000 Cd. Obregón, Sonora, México
TELÉFONOS: (644) 414 5700 y 414 5806 FAX: (644) 413 0930
CORREO ELECTRÓNICO: [email protected]
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INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES, AGRÍCOLAS Y PECUARIAS
CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL DEL NOROESTE
CAMPO EXPERIMENTAL VALLE DEL YAQUI
manual para la
producción de frijol
en el sur de sonora
M.C. Isidoro Padilla Valenzuela Investigador del Programa de Frijol / Garbanzo. CEVY-CIRNO-INIFAP
M.C. Nemecio Castillo Torres Investigador del Programa de Leguminosas Comestibles / Canola.
CEVY-CIRNO-INIFAP
M.C. José Alfonso Ramírez Arredondo Investigador del Programa de Fitopatología. CEVY-CIRNO-INIFAP
M.C. Inés Armenta Cárdenas Investigador del Programa de Entomología. CEVY-CIRNO-INIFAP
M.C. Fernando Cabrera Carbajal Investigador del Programa de Uso y Manejo del Agua. CEVY-CIRNO-INIFAP
M.C. Manuel Madrid Cruz Investigador del Programa de Maleza / Algodonero. CEVY-CIRNO-INIFAP
M.C. José Eliseo Ortiz Enríquez Investigador del Programa de Uso y Manejo del Agua. CEVY-CIRNO-INIFAP
Ciudad Obregón, Sonora, México Diciembre del 2009
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Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Progreso No. 5, Barrio de Santa Catarina Delegación Coyoacán C.P. 04010 México D.F. Teléfono: (55) 3871-8700
ISBN 978-607-425-245-3
Primera Edición 2009
La presente publicación se terminó de imprimir en el mes de
diciembre del 2009, en los talleres gráficos de Triángulo
Impresión, Coahuila No. 1055 sur, Colonia Campestre, Cd.
Obregón, Sonora. Teléfono (644) 412-6397
No está permitida la reproducción total o parcial de esta
publicación, ni la transmisión de ninguna forma o por cualquier
medio, ya sea electrónico, mecánico, fotocopia, por registro u
otros medios, sin el permiso previo y por escrito a la institución.
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CONTENIDO Página
Introducción ............................................................................ 5
Origen del frijol ......................................................................... 7
Valor nutricional ....................................................................... 8
Requerimiento de clima para el cultivo del frijol ..................... 11
Condiciones de clima y suelo en el sur de Sonora ................ 12
Manejo del suelo .................................................................... 19
Variedades ............................................................................ 22
Época de siembra .................................................................. 27
Método y densidad de siembra .............................................. 31
Fertilización y nutrición del frijol ............................................. 33
Inoculación............................................................................. 37
Manejo del agua .................................................................... 38
La calidad del agua sobre el cultivo y el suelo en condiciones controladas. ....................................................... 40
La salinidad del agua, condición de humedad y niveles de fertilización nitrogenada en la emergencia del frijol ........... 40
Riego por gravedad en suelos de aluvión .............................. 45
Riego por gravedad para suelos barrial profundo .................. 47
Riego por gravedad para suelos de aluvión pesado .............. 50
Riego por goteo ..................................................................... 51
Manejo de plagas insectiles y roedores ................................ 59
Principales enfermedades del cultivo de frijol y su manejo ................................................................................... 91
Maleza y su control ............................................................... 98
Prácticas agronómicas para reducir el daño por heladas ... 101
El sistema de relevo frijol-cártamo ...................................... 105
Cosecha .............................................................................. 107
Manejo de postcosecha ....................................................... 109
Literatura citada ................................................................... 111
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5
INTRODUCCIÓN
El frijol (Phaseolus vulgaris L.) junto con el maíz (Zea
mayz L.) es uno de los cultivos básicos más importantes en México, ya que es la principal fuente de proteína de la mayor parte de la población. El consumo per cápita de frijol se estima en 11 kg (Lépiz, et al., 2007). Muñoz y Chávez (1998) encontraron que el frijol representa 15% de los alimentos ingeridos en la dieta normal y el maíz 65%. De acuerdo con la Organización para Agricultura y la Alimentación (FAO, 2008), en México se siembran alrededor de 1.2 millones de hectáreas anuales con un rendimiento promedio de alrededor de 740 kg/ha, mientras que la demanda se calcula en 1.4 millones de toneladas al año. Los sistemas de producción están definidos principalmente con base en: 1) Ciclo de siembra: Primavera, primavera-verano y otoño-invierno; 2) En condición de humedad: temporal y riego; 3) Nivel socioeconómico: agricultura de subsistencia, y empresarial (Acosta et al., 2000). Aproximadamente el 70% se establece en condiciones de temporal. Los principales tipos de frijol que se siembran y consumen son: pinto nacional y americano, azufrado regional y azufrado peruano, flor de mayo, flor de junio, negro y bayo. Los hábitos de consumo varían por región, de tal manera que en el noroeste se prefieren los tipos azufrado. En el norte y noreste se prefieren los pintos y bayos. En el centro, aunque se consumen de todas las clases comerciales, existe una tendencia hacia flor de mayo y en el sur del país se consume frijol negro, principalmente (Castellanos et al., 1997)
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En Sonora se cultiva frijol en 7,600 hectáreas de
donde se obtienen 11,600 toneladas anuales (SIAP, 2005).
Se estima una demanda estatal de 50,000 toneladas anuales
de las cuales el 60% se cubre con frijol pinto americano que
se importa de las áreas frijoleras de Colorado y Nebraska, en
Estados Unidos de América y generalmente a un mayor
precio que la oferta local. El sur de Sonora, es una región
con tradición frijolera, donde la siembra se realiza en dos
épocas: otoño-invierno y primavera-verano. Las rotaciones
más importantes son frijol-frijol, frijol-garbanzo, frijol-
hortalizas y en los últimos ciclos se ha incursionado en la
rotación frijol-cártamo.
Las variedades predominantes en el sur de Sonora
son de grano grande (> 40 g/100 semillas) y de color amarillo
(azufrado) que ocupan el 90% del área. Las principales
variedades utilizadas son: Azufrado Peruano 87 (32.2%),
Azufrado Pimono 78 (21.6%), Azufrado Higuera 94 (34%),
Azufrado Noroeste 94 (2%) y Azufrado (0.4%) (CRSV, 2009).
Una de las principales causas que limitan la producción de
frijol azufrado en la región es la virosis, entre las que
destacan el mosaico común (BCMV), el mosaico sureño
(BSMV), el mosaico clorótico (BClMV), el mosaico dorado
(BGYMV) y el virus de la hoja enrollada de la calabaza
(SLRMV) que al presentarse en forma combinada, pueden
ocasionar la pérdida total de la producción (Padilla et al.,
2000). El resto de la superficie (10%) se cubre con las
variedades de frijol pinto americano o nacional con las
variedades Pinto Bill-Z, Pinto Saltillo y Pinto Bayacora. Una
de las principales causas que limitan la producción de frijol
pinto es la enfermedad conocida como roya o chahuixtle
(Uromyces appendiculatus var. appendiculatus) la cual
puede reducir el rendimiento entre 50 y hasta 59%
(Valenzuela y Armenta, 1990; Ramírez, 1991). La principal
causa de la baja superficie con frijoles de tipo pinto es la falta
de variedades nacionales de ese tipo con calidad de grano y
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con larga vida de anaquel pues la testa del grano de las
variedades disponibles tiende a oscurecerse por oxidación
después de tres meses de cosechado. Además, debe
considerarse la adaptación de las variedades de frijol al clima
y al suelo y enfermedades prevalecientes en las áreas de
producción del sur de Sonora.
Este folleto tiene la finalidad de poner a disposición
de los productores, técnicos, académicos y demás personas
interesadas en el sur de Sonora, información técnica del
cultivo de frijol. Se hace énfasis en los componentes
tecnológicos de mayor importancia para la producción
moderna de frijol, el uso de maquinaria para la rotación con
hortalizas y oleaginosas, los sistemas de riego presurizado,
el manejo de insectos que ocasionan daño directo e insectos
vectores de virus, enfermedades fungosas, y el manejo
nutrimental de la planta.
ORIGEN DEL FRIJOL
La especie Phaseolus vulgaris o frijol común es
originaria del área México-Guatemala. En estos países se
encuentra una gran diversidad de variedades tanto en forma
silvestre como en forma de cultivo y constituye el principal
componente de la dieta alimenticia (Gentry, 1969; Freytag,
1975; Vargas et al., 2006).
Las semillas y vainas de estas plantas se usan como
alimento y producción de forraje (Bliss, 1980). El nombre de
la planta se designa también a la semilla conocida en los
distintos países de habla hispana con el nombre de frijol,
judía, poroto, caraota, habichuela, entre otros. Es un
alimento muy apreciado por su elevado contenido proteínico
el cual fue introducido a Europa a mediados del siglo XV,
empezando a difundirse sobre todo en España (Mateo,
1965).
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Diversas variedades de frijol fueron el alimento en el que se basó la dieta de nuestros antepasados, aunque ahora existen otras fuentes de proteína provenientes de vegetales. En nuestro país el frijol sigue siendo fundamental en la alimentación, y en la mayoría de los platillos de origen Mexicano. El frijol es un cultivo que se ha practicado desde hace 5000 años antes de la era cristiana (Debouck e Hidalgo, 1985). Desde el punto de vista taxonómico esta especie es el prototipo del género Phaseolus y su nombre científico es Phaseolus vulgaris L. asignado por Linneo en 1753 y pertenece a la familia de las leguminosas, subfamilia Papileonidas, tribu Phaseolas Subtribu Faseolas, Género Phaseolus. Las principales especies que se cultivan en México son: P. vulgaris, L. (frijol común), P. coccineus L. (frijol ayocote), P. lunatus, L. (frijol lima) y P. acutifolius, Gray (frijol tépari) (Mateo, 1965; Debouck e Hidalgo, 1985; Vargas et al., 2006). El número cromosómico de estas especies es de 2n= 22 (Bliss, 1980).
VALOR NUTRICIONAL
El frijol está considerado como una de las plantas que
aportan una mayor cantidad de substancias alimenticias, esto se refiere principalmente al contenido proteínico de la semilla, así como a los aminoácidos esenciales de esta leguminosa. En un estudio realizado en la época de los 60’s por Crispín (1967) se determinó el contenido de proteínas y de triptófano en los tipos de frijol más comunes en México como se presenta en el Cuadro 1, en donde puede apreciarse que los tipos de frijol canario y negro, en general son los de mayor contenido de proteínas y triptófano por lo cual se consideran de mayor poder alimenticio, sin embargo, son los que tienen menor consumo en el país.
En estudios más recientes (Guzmán et al., 2002)
encontró que además de proteínas y minerales, la semilla de frijol contiene otros compuestos conocidos como
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fotoquímicos que proveen beneficios adicionales a la salud humana; entre estos se reportan a los oligosácaridos, taninos, antocianinas, ácido fítico, inhibidores de proteasas, lectinas, daizeína y genisteína. Se ha demostrado que los compuestos benéficos del frijol antes mencionados, neutralizan los efectos de sustancias cancerígenas, previenen las enfermedades cardiovasculares, la diabetes y la osteoporosis (Messina, 1999; Anaya, et al., 2009; Geil y Anderson, 1994; Chung et al., 1998). En el Cuadro 2, se aprecian los contenidos nutrimentales del frijol. Según estos autores, el contenido nutrimental del frijol cultivado puede llegar a tener 33% de proteína; sin embargo, el nivel de digestibilidad de proteína (52-75%) y la relación de la eficiencia proteínica (PER) (0.7-1.5) es menor comparado con la caseína, que es la proteína de referencia (digestibilidad = 90.2, PER = 2.9). Por otra parte, la proteína del frijol presenta alto contenido de lisina (6.4-7.6 g/100 g de proteína); es decir, satisface los requerimientos mínimos recomendados por la Organización para la Alimentación y la Agricultura (FAO) y por la Organización Mundial para la Salud (WHO), ambas por sus siglas en inglés. De acuerdo con (Guzmán et al., 2002) el frijol también es una fuente importante de calcio, hierro, fósforo, y zinc, y de las vitaminas tiamina, niacina y ácido fólico.
CUADRO 1. CONTENIDO DE PROTEÍNAS Y TRIPTOFANO DE
LOS TIPOS DE FRIJOL MÁS COMUNES EN MÉXICO*. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
TIPOS DE FRIJOL
PROTEÍNAS POR 100 G DE MATERIA SECA
TRIPTOFANO POR 100 G DE MATERIA SECA
Negro 24.84 0.223
Bayo 24.64 0.226
Amarillo 24.04 0.214
Pinto 23.03 0.171
Canario 25.19 0.333
Blanco 26.95 0.179
Según Crispín (1967)
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CUADRO 2. CARACTERÍSTICAS QUÍMICAS Y NUTRIMENTALES DEL FRIJOL COMÚN. CEVY-
CIRNO-INIFAP, 2009*.
COMPOSICIÓN QUÍMICA
(%)
AMINOÁCIDOS ESENCIALES
(g/100 g proteína)
MINERALES (mg/100g)
VITAMINAS (mg/100 g)
CALIDAD DE LA PROTEÍNA
DIGESTIBILIDAD (%)
(PER)*
Proteínas (14-33) Fenilananina+tirosina
(5.3-8.2) Calcio (9-200)
Tiamina (B1) (0.86-1.14)
52-75 0.7-1.5
Lípidos (1.5-6.2) Isoleucina (2.8-5.8) Fósforo (460) Niacina (B3) (1.16-2.68)
Fibra total (14-19) Leucina (4.9-9.9) Hierro (3.8-
7.6) Acido fólico (0.17-0.58)
Carbohidratos (52-76)
Lisina (6.4-7.6) Magnesio
(200)
Metionina+cisteína
(1.2-1.5) Zinc (2.2-4.4)
Treonina (4.4-7.0)
Valina (4.5-6.7)
*Adaptado de Guzmán-Maldonado et al., 2002.
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REQUERIMIENTO DE CLIMA PARA EL CULTIVO DEL FRIJOL
El frijol es una planta de clima húmedo y benigno,
dando las mejores producciones en climas cálidos y requiere las siguientes condiciones del clima y suelo (Bliss, 1980; ITESCAM, 2009).
Temperatura: En el Cuadro 3 se presentan las
temperaturas críticas para el desarrollo de frijol a través de diferentes fases de desarrollo. Puede apreciarse que los rangos óptimos para su crecimiento y desarrollo, oscilan entre 16 a 28 °C. Es importante indicar que la planta de frijol es susceptible a frío ya que no tolera temperaturas por debajo de los 0° C.
Cuando la temperatura oscila entre 12-15ºC, la
vegetación es poco vigorosa y por debajo de 15ºC, la mayoría de los frutos quedan en forma de “ganchillo”. Por encima de los 30ºC también aparecen deformaciones en las vainas y se produce el aborto de flores.
CUADRO 3. TEMPERATURAS CRÍTICAS PARA FRIJOL EN
DISTINTAS FASES DE DESARROLLO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Temperatura óptima del suelo ........................................... 15-20 ºC
Temperatura ambiente óptima de germinación ................. 20-30 ºC
Temperatura mínima de germinación ................................ 10 ºC
Temperatura óptima durante el día ................................... 21-28 ºC
Temperatura óptima durante la noche .............................. 16-18 ºC
Temperatura máxima biológica ......................................... 35-37 ºC
Temperatura mínima biológica .......................................... 10-14 ºC
Temperatura mínima letal .................................................. 0-2 ºC
Temperatura óptima de polinización ................................. 15-25 ºC
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Humedad: la humedad relativa óptima del aire
durante la primera fase de cultivo es del 60% al 65%, y
posteriormente oscila entre el 65% y el 75%. Humedades
relativas muy elevadas favorecen el desarrollo de
enfermedades en la parte aérea de la planta y dificultan la
fecundación. Es importante que la planta se mantenga sin
oscilaciones fuertes de humedad.
Luminosidad: es una planta de día corto, aunque en
las condiciones de invernadero no le afecta la duración del
día. No obstante, la luminosidad condiciona la fotosíntesis,
soportando temperaturas más elevadas cuanto mayor es la
luminosidad, siempre que la humedad relativa sea adecuada.
CONDICIONES DE CLIMA Y SUELO EN EL SUR DE
SONORA
Localización geográfica.
El sur de Sonora se ubica dentro del área de
influencia del Campo Experimental Valle del Yaqui y
comprende básicamente los Distritos de Desarrollo Rural 148
y 149, los cuales abarcan Cajeme, Benito Juárez, Bácum,
San Ignacio Río Muerto, Guaymas, Navojoa, Etchojoa,
Huatabampo, Álamos, Quiriego, Rosario Tesopaco y Yécora.
Esta región se ubica en la provincia fisiográfica llanura
Costera del Pacífico y abarca de los 26º 45´ a los 27º 40’ de
latitud Norte y de los 108º 25’ a los 110º 35’ de longitud
Oeste con una altitud promedio de 30 msnm. En la Figura 1
se muestra la red con 23 estaciones climatológicas
automatizadas estratégicamente distribuidas en la región y
en donde se monitorean las condiciones de temperatura,
humedad, velocidad y dirección del viento, etc., (accesibles
en el sitio www.agroson.org) para apoyar en la toma de
decisiones en materia de manejo agronómico y prevención
de problemas fitosanitarios.
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FIGURA 1. MAPA DEL SUR DE SONORA Y REPRESENTACIÓN DE LA UBICACIÓN DE LA RED DE ESTACIONES CLIMATOLÓGICAS AUTOMATIZADAS. CEVY-CIRNO-INIFAP. 2009.
Tipos de tenencia de la tierra. En la productividad agrícola de la región, la tenencia
de la tierra es un factor socioeconómico muy importante. En el Valle del Yaqui y las comunidades indígenas se tiene bajo condiciones de riego un total de 264,888 ha y 28,850 productores (Cuadro 4). El 63% corresponde a tierra ejidal y comunal y está distribuida entre el 74% de los productores. El resto de la superficie es del sector privado y se distribuye entre 6,347 pequeños propietarios.
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CUADRO 4. TENENCIA DE LA TIERRA DE LA SUPERFICIE DE RIEGO EN EL VALLE DEL YAQUI. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009
TENENCIA * SUPERFICIE (ha) PRODUCTORES
Propiedad privada 98,009 (37%) 6,347 (22%)
Ejidal 135,093 (51%) 18,464 (64%)
Comunal 31,786 (12%) 4,039 (14%)
Total 264,888 (100%) 28,850 (100%)
* Fuente: DDR, 148, Cajeme
En la región del Mayo, 51 % de la superficie de riego
es ejidal y se distribuye entre 7,725 ejidatarios. A la pequeña propiedad corresponde el 49 % y está distribuida entre 3,737 usuarios (Cuadro 5).
CUADRO 5. TIPO DE TENENCIA DE LA TIERRA Y USUARIOS
EN EL VALLE DEL MAYO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
LOCALIDAD
EJIDAL PEQUEÑA PROPIEDAD
SUPERFICIE (HA)
USUARIOS SUPERFICIE
(HA) USUARIOS
Navojoa 10,791 1,491 16,272 1,516
Etchojoa 17,540 2,658 12,248 827
Huatabampo 20,434 3,576 16,688 1,394
Total 48,765 7,725 47,208 3,337
Fuente: DDR 149, Navojoa
Temperatura.
En el Cuadro 6 se muestran los parámetros climáticos
de la región del Valle del Mayo en promedio de 1968 a 1991.
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En la parte alta del valle se tienen temperaturas máximas
promedio de 34.1 ºC y 12.8 ºC de mínima. En la región de
Huatabampo que está más cercana a la costa, se tienen 33.0
ºC de máxima y 13.5 °C de mínima. Las temperaturas
extremas se dan en diciembre y enero con -3.5 ºC y en julio y
agosto con 45 ºC. La oscilación térmica mensual es muy
extremosa (> 14 ºC).
La información de clima del Cuadro 7 corresponde al
Valle del Yaqui. Las temperaturas mínimas medias y
máximas medias en cada mes son una indicación de las
condiciones de temperatura probable para cada mes en
referencia. La precipitación promedio en el año es de
alrededor de 280 mm y el 75% se registra en los meses de
verano (junio a septiembre) en forma de lluvias torrenciales y
el 25% restante ocurre en los meses de invierno (noviembre
a marzo) con lluvias intermitentes llamadas comúnmente
“equipatas”.
Suelos.
En el Valle del Yaqui, los suelos son de topografía
plana con pendientes que varían de 0.1 a 0.3 % con
exposición de noroeste a sureste. Son profundos de origen
aluvial con excepciones en las áreas cercanas a las
montañas en que fueron formados in situ (INIFAP, 2001).
Existen cinco grandes grupos de suelo: aluvión ligero,
aluvión pesado, barrial profundo, barrial compactado y barrial
pedregoso (Figura 2). Aparentemente, la siembra de frijol
puede realizarse en los tres primeros tipos de suelo. Por otra
parte, es importante realizar los análisis de suelo previo al
establecimiento del cultivo, y también determinar la calidad
del agua si es que se va a utilizar agua de pozo en los
riegos.
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CUADRO 6. PARÁMETROS CLIMÁTICOS DEL VALLE DEL MAYO EN LA ESTACION TERMO PLUVIOMÉTRICA DEL CIANO (27° 00’ LN y 109° 30’ LO), 39 MSNM. DATOS PROMEDIO DE 1968 A 1991. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Parámetros MESES
ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC
Temp. °C
Media min. 6.0 5.9 6.5 9.0 11.9 18.5 21.8 21.5 20.8 15.8 9.4 6.5
Media Max. 26.3 27.8 29.3 33.8 36.9 40.0 40.2 39.5 39.1 26.4 31.9 30.1
PP. (mm) 25.7 13.6 9.1 1.7 1.5 2.8 9.4 91.7 93.3 26.6 14.4 30.1
Evo (mm) 92.1 119.6 275.0 290.0 287.5 290.7 279.1 285.0 261.4 209.5 123.0 114.0
CUADRO 7. PARÁMETROS CLIMÁTICOS DEL VALLE DEL YAQUI. ESTACIÓN METEOROLÓGICA DE
LA COMISIÓN NACIONAL DEL AGUA EN EL BLOCK 910 (27º22’14’’ LN y 109º55’41’’ LO). 37 msnm. DATOS PROMEDIO DE 1959 A 1990. CEVY- CIRNO-INIFAP, 2009
Parámetros MESES
ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC
Temp. °C
Media min. 12.5 13.1 14.7 17.4 21.0 25.7 28.1 28.1 27.3 23.2 17.3 14.1
Media Max. 23.7 25.2 27.2 31.2 34.1 36.0 36.0 35.6 35.8 34.0 29.1 24.6
PP. (mm) 19.7 9.7 4.0 2.1 0.6 3.3 58.2 74.5 45.1 28.5 10.1 21.1
Evo (mm) 76.4 93.1 137.5 193.3 247.0 267.6 231.8 210.2 184.6 164.0 117.5 81.3
Hum. Rel. (%) 75 73 70 58 54 62 73 77 74 66 65 73
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FIGURA 2. TIPOS DE SUELO EN EL VALLE DEL YAQUI, SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
En el Valle del Mayo existen diez series de suelo
(Beltrán y Cabrera, 2002): Jupateco, Moroncarit, Huatabampo, Bacame, Campo León, Sebampo, Navojoa, Tesia, Camoa y Buyacusi (Figura 3). A continuación se describen brevemente algunos de los más importantes:
Serie Jupateco: Su textura es migajón arcilloso;
presenta algunas limitantes importantes para el cultivo de frijol, como alto porcentaje de sodio intercambiable que altera negativamente las propiedades físicas de los suelos, mostrando condiciones desfavorables de aireación, mal drenaje interno que favorece las concentraciones de carbonatos de calcio. Además, se combina con manto freático elevado. Por esta razón se le considera como una de las series de suelo más problemática en la región.
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Serie Moroncarit: Es la más afectada por salinidad y
sodicidad. Presenta fuerte encostramiento que impide la
emergencia de las plántulas, así como altos contenidos
salinos que merman la germinación de la semilla del frijol.
Presenta manto freático somero y sus texturas típicas son
franca y franca limosa.
Serie Huatabampo: Tiene un perfil con horizonte
arcilloso superficial, con influencia de manto freático (1.16 m)
que deposita niveles intermedios de sales en la zona de
raíces. Estos suelos resultan riesgosos para la siembra de
frijol.
Serie Bacame: Pertenece al grupo de texturas
llamado “aluvión”. Por su origen son ricos en carbonatos de
calcio, los cuales por su excelente drenaje vertical en su
perfil hay poca ocurrencia de lavado descendente de dichos
carbonatos los cuales cuando se precipitan forman un
estrato compacto que presenta alta resistencia a la
penetración de raíces. Sin embargo, este tipo de suelo es el
más apropiado para la siembra de frijol.
Serie Campo León: Son suelos de tipo arcilloso. Sus
factores limitantes inducidos por la naturaleza de su textura
son; estrato impermeable, salinidad, sodicidad y presencia
de manto freático, por lo cual el frijol no es apropiado en
estos suelos.
Serie Sebampo: Son suelos de textura franco
arcilloso. Presenta un perfil interno deficiente principalmente
en las depresiones de antiguos cuerpos de agua, donde se
aprecian acumulaciones de sales y sodio influenciados por
mantos freáticos elevados. No son apropiados para la
siembra de frijol.
19
Serie Navojoa: Son en su mayoría suelo del tipo arcilloso. Su limitante principal es la presencia de un extracto de riego endurecido a los 40 cm de profundidad, producto del uso excesivo de maquinaria, la eliminación de residuos de cosecha y además presenta contenidos medios de sodio lo cual se incrementa con la profundidad del perfil. Dentro de esta serie hay áreas de suelo que pertenecen a la serie Sebampo que son aptos para frijol.
FIGURA 3. SERIES DE SUELO EN EL DISTRITO DE RIEGO 038 DEL RIO MAYO. (REYES Q. C. 1999; SOC. DE USUARIOS DEL DDR 038). CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
MANEJO DEL SUELO Selección del terreno:
Los mejores suelos para la siembra de frijol se
encuentran en las áreas cercanas a los ríos con suelos de
20
textura francas, de migajón-limoso, donde no sean influenciados por mantos freáticos elevados y acumulaciones de sales. Es importante considerar suelos nivelados que tengan buen drenaje (< 48% de saturación) y nivelación adecuada para evitar problemas de encharcamientos. Respecto a la salinidad del suelo, en este aspecto debe tomarse en cuenta de que niveles de conductividad eléctrica mayor a 1.5 milimhos/cm es perjudicial para el frijol, ya que puede reducir los rendimientos en más de 20% (Figura 4). El cultivo de esta leguminosa también prospera en los suelos de barrial con porcentajes de arcilla menores o igual 60%; con menos de 48% de saturación.
FIGURA 4. TOLERANCIA DE CULTIVOS A LA SALINIDAD DEL
EXTRACTO DE SATURACIÓN DEL SUELO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16
mmhos/cm
FRIJOL
M AIZ
SOYA
SORGO
TRIGO
CARTAM O
ALGODONERO
10% 20% 50%
DISTRIBUCION DE REND.
21
Preparación del terreno:
Es indispensable formar una buena “cama” de
siembra para lograr una mejor distribución de la semilla, del
fertilizante y del agua de riego, pues a la vez que se propicia
una buena emergencia, se minimizan los ataques de hongos
del suelo, plagas insectiles y la presencia de maleza. Las
labores a realizar para la preparación del terreno son
variables y dependen de las condiciones de cada terreno. El
frijol puede establecerse en suelo preparado mediante
labranza completa o tradicional y también con el sistema de
labranza mínima.
Labranza completa o tradicional:
Se efectúan labores tradicionales como: cinceleo,
barbecho, rastreos, nivelación y surcado. La utilización de
éstas deberá decidirse de acuerdo a las siguientes
observaciones.
Cinceleo: cuando se tenga presencia de capas
endurecidas en el subsuelo, que impidan el drenaje interno
del suelo.
Barbecho: Efectuar en terrenos con alta infestación
de maleza o cuando se presentan capas endurecidas en los
primeros 30 cm de profundidad.
Nivelación: Cuando se observen desniveles menores
en el terreno.
Surcado: Cuando se realice labranza completa o
tradicional.
Escarificar: Escarificar o “revivir” el surco es una
práctica obligada tanto en suelo de aluvión como en barrial
22
cuando el terreno “da punto” después del riego de pre
siembra. En suelos de aluvión si se va a sembrar en plano
esto puede lograrse con un simple paso de rastra. La
utilización de cultivadora rotativa o “Liliston” es más común
en ambos tipos de suelo y su objetivo es conservar el surco y
poner la semilla en el lomo del mismo para evitar daño
directo por exceso de humedad ante la eventualidad de
precipitaciones pluviales o daño indirecto por el ataque de
hongos de suelo.
Labranza mínima:
Si el cultivo anterior presenta distancia entre surcos
adecuada para la siembra de frijol, es posible la utilización
del sistema de labranza mínima. En suelo de barrial se
retiran los residuos de la cosecha anterior, se efectúa el
riego de pre siembra y, posteriormente, se escarifica para
proceder a la siembra.
En aluvión, después de desechar los residuos de
cosecha y efectuar el riego, se dan dos pasos de rastra para
dejar el terreno en condiciones de sembrar.
Una opción importante es la utilización de
sembradoras con disco cortador frontal, ya que este además
de cortar la paja del cultivo anterior permite disponer de una
mejor cama de siembra en el segmento donde se deposita le
semilla.
VARIEDADES
La elección de la calidad de semilla de la variedad a
sembrar, es uno de los aspectos más importantes en la
siembra de frijol. En la producción de semilla debe
considerarse que existen diferentes categorías que se
clasifican en base a la pureza genética como sigue:
23
Original: Esta semilla constituye la fuente inicial para
la producción de semillas de las categorías básica,
registrada y certificada y es el resultado del proceso de
mejoramiento o selección de variedades vegetales. La
semilla original conserva los caracteres pertinentes con los
que la variedad fue inscrita en el Catálogo Nacional de
Variedades Vegetales.
Básica: La que conserva un muy alto grado de
identidad genética y pureza varietal, proviene de la semilla
original o de la misma básica y es producida y reproducida o
multiplicada cumpliendo con las reglas de la Ley de
Producción, Certificación y Comercio de Semillas, publicada
en el Diario Oficial de la Federación el 15 de junio de 2007.
Registrada: La que conserva un alto grado de
identidad genética y pureza varietal, proviene de una semilla
original, básica o registrada y es producida, reproducida o
multiplicada de acuerdo con las reglas a que refiere la ley
federal de semillas vigente.
Certificada: La que conserva un grado adecuado y
satisfactorio de identidad genética y pureza varietal, proviene
de la semilla original, básica o registrada y es producida,
reproducida o multiplicada de acuerdo con las reglas de la
ley federal de semillas.
En cualquier clase o categoría de semilla deben
respetarse al máximo los cuidados en la producción para
conservarse la identidad genética y fenotípica de la variedad,
la cual debe reunir las siguientes cualidades;
Pureza varietal: Es la transmisión de los factores
hereditarios internos y externos de la planta.
24
Pureza física: Que esté libre de semilla de maleza,
de otros cultivos, de otras variedades de frijol, de materia
inerte y apariencia uniforme.
Buena germinación y vigor: Que produzca plantas
vigorosas.
Libre de organismos patógenos: Los que causan
enfermedades dentro y fuera de la semilla.
La semilla original y básica se produce en los centros
de mejoramiento genético, generalmente en cantidades
mínimas. En la producción de semilla registrada y certificada
es donde los productores participan bajo la supervisión del
SNICS, con las indicaciones en tiempo y forma dadas por el
personal técnico, para asegurar al máximo, obtener semilla
de la más alta calidad. Las recomendaciones señaladas van
enfocadas a conservar las características de los materiales,
según los descriptores de las variedades y a la vez, evitar la
diseminación de problemas fitosanitarios como es el caso de
moho blanco, agentes virales (transmitidos por mosquita
blanca, áfidos y crisomélidos), que son altamente
perjudiciales al cultivo.
En el sur de Sonora es factible la producción de
distintos tipos de frijol, pero actualmente se tiene información
actualizada para la producción de frijol azufrado, pinto
americano, negro y blanco (alubias).
En el Cuadro 8 se describen las principales
características agronómicas de las variedades sugeridas
para el sur de Sonora. En las Figuras 5 a 9 se ilustran
brevemente algunas de las variedades de frijol de más
reciente liberación e introducción en el sur de Sonora.
25
CUADRO 8. CARACTERÍSTICAS AGRONÓMICAS DE LAS VARIEDADES DE FRIJOL SUGERIDAS PARA EL SUR DE SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
VARIEDAD HÁBITO DE
CRECIMIENTO DÍAS A
FLORACIÓN DÍAS A
MADUREZ
REACCIÓN A: RENDIMIENTO (t/ha) ROYA VIRUS
AZUFRADOS
Azufrado Higuera 94 Mata 42 105 R T 2.9
Azufrado Janasa Mata 41 108 R T 2.8
Azufrado Noroeste 94 Mata 41 111 R T 2.7
Azufrado Peruano 87 Mata 47 110 R S 2.6
Azufrado Regional 87 Mata 43 108 R T 2.5
PINTOS
Pinto Saltillo Guía 38 90 R T 2.8
Pinto Bayacora Guía 45 105 R S 2.3
Pinto Bill-Z Guía 43 95 S R 2.4
NEGROS
Sataya 425 Guía 53 112 R T 2.5
Negro Sinaloa Guía 46 115 R T 2.1
Negro Pacífico Guía 50 112 R T 2.1
BLANCOS (ALUBIAS)
Aluyori Mata 43 108 R T 2.7
R= Resistente; T= Tolerante
26
FIGURA 5. PINTO SALTILLO PRODUCE GRANO RESISTENTE A LA
OXIDACIÓN Y LA PLANTA ES DE HÁBITO DE GUÍA ARBUSTIVO, RESISTENTE A CHAHUIXTLE.
FIGURA 6. AZUFRADO HIGUERA 94, AMPLIAMENTE ACEPTADA EN
EL MERCADO, POSEE ALTO POTENCIAL DE RENDIMIENTO Y PRODUCE GRANO DE ALTA CALIDAD.
FIGURA 7. ALUYORI, FRIJOL DE TIPO ALUBIA, RESISTENTE A VIROSIS, Y RINDE HASTA 3.0 TON/HA, Y TIENE CALIDAD PARA EXPORTACIÓN. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
27
FIGURA 8. AZUFRADO PERUANO 87, TIENE EXCELENTE
ADAPTACIÓN EN EL SUR DE SONORA.
FIGURA 9. AZUFRADO REGIONAL 87, PRODUCE GRANO TIPO
BOLITA, CON EXCELENTE ADAPTACIÓN AL SUR DE SONORA Y ALTA CALIDAD CULINARIA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
ÉPOCA DE SIEMBRA Existen dos épocas bien definidas para la siembra de
esta leguminosa: otoño-invierno (O-I) y primavera-verano (P-
V). El periodo recomendado de siembra en O-I es del 20 de
septiembre al 31 de octubre (Figura 10). En esta época se
tiene un mayor potencial de rendimiento, se adapta un
mosaico más amplio de variedades (Cuadro 9), mejor calidad
28
de grano y como consecuencia, una mayor rentabilidad por
unidad de superficie. Sin embargo, se tiene alto riesgo de
heladas en fechas de siembra posteriores al 10 de octubre y
también coincide con condiciones de alta humedad propicias
para el desarrollo de enfermedades. En fechas tempranas
del 10 al 30 de septiembre, las temperaturas cálidas
favorecen una alta incidencia de insectos vectores de virus
como mosquita blanca y chicharrita a tal grado que se han
tenido que aplicar medidas de regulación sanitaria; sin
embargo, se tiene el escape a daño por heladas y la ventaja
de que su cosecha se realiza antes que en el estado de
Sinaloa, lo que permite alcanzar los mejores precios. Otros
riesgos importantes en fechas tempranas, es el ataque de
enfermedades de plántulas que son favorecidas por
condiciones de altas temperaturas del suelo, tales como
pudrición negra (Macrophomina phaseolina) y la presencia
de huracanes.
CUADRO 9. EFECTO DE LA FECHA DE SIEMBRA (TON/HA) EN
FRIJOL. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009*.
SEP. 28 OCT. 5 OCT. 15 MEDIA
Bill-Z 2.799 2.949 2.786 2.845
Pinto Mestizo 3.112 3.360 3.061 3.178
A. Janasa 3.027 3.563 3.467 3.352
P. Bayacora 3.188 3.764 3.396 3.449
A. Noroeste 3.588 3.501 3.844 3.644
A. Higuera 3.172 3.320 3.369 3.287
A. Peruano 87 3.652 4.144 3.929 3.804
*Adaptado de Padilla et al. (2003)
29
FIGURA 10. RENDIMIENTO (TON/HA) DEL FRIJOL A TRAVÉS DE FECHAS EN EL CICLO OTOÑO-INVIERNO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Las siembras de primavera-verano se sugieren del 20
de enero al 28 de febrero; los mejores rendimientos se obtienen cuando se siembra en enero y durante los primeros diez días de febrero. Las variedades Azufrado Peruano 87, Azufrado Pimono 78 (Mayocoba) y Pinto Bill-Z han mostrado un mejor resultado (Figura 11). Una nueva variedad, Pinto Saltillo, ha sido introducida recientemente al sur de Sonora (Padilla et al., 2008), la cual ha mostrado buena adaptación en esta época de siembra, sin embargo, pese a su precocidad, no se sugiere en fecha de siembra tardía, debido a que es sensible a altas temperaturas durante la fase reproductiva. Las altas poblaciones de mosquita blanca B. argentifolii cuyo daño directo (Padilla et al., 2005) ha obligado la regulación de las fechas de siembra, particularmente en este ciclo, ya que el cultivo inicia con bajas temperaturas y su ciclo reproductivo ocurre cuando las
30
temperaturas favorecen a la plaga. De acuerdo con Padilla (1992) las siembras en marzo reducen el rendimiento en 45% debido a la disminución en la expresión de los componentes del rendimiento. Las variedades con grano de color negro como Jamapa, Negro Sinaloa y Negro Sataya 345, no se recomiendan para este ciclo, ya que debido a su ciclo tardío son afectadas durante su fructificación por las altas temperaturas (> 36°C). La variedad Azufrado Higuera ha tenido muy buena aceptación en el mercado por la intensidad del color amarillo en el grano; sin embargo en el sur de Sonora, solamente se adapta a siembras de otoño-invierno, ciclo en el cual ha registrado buena estabilidad de rendimientos desde 2.44 hasta 3.32 t/ha, tanto con bajas temperaturas como con presencia de mosquita blanca (Padilla et al., 2008). No obstante, en siembras de primavera-verano, dicha variedad es afectada tanto en la calidad del grano como en la viabilidad de la semilla, si prevalecen temperaturas altas.
FIGURA 11. RENDIMIENTO DEL FRIJOL A TRAVÉS DE
FECHAS DE SIEMBRA EN EL CICLO PRIMAVERA-VERANO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
0
0.5
1
1.5
2
2.5
TO
N/H
A
Azufrado
Peruano 87
Bill-Z Mayocoba Azufrado
Regional 87
VARIEDADES
Ene-24 Feb-11 Mar-04 Mar-08
31
METODO Y DENSIDAD DE SIEMBRA Las siembras se hacen en plano o sobre el lomo del
surco y generalmente en húmedo, con sembradora convencional aunque la mayoría de los productores la realizan con sembradoras neumáticas de precisión (Figura 12). La separación entre surcos depende del sistema de riego. En riego por gravedad se utilizan separaciones de 0.75 a 0.80 m en hilera sencilla. La cantidad de semilla va de 90 a 120 kg dependiendo de la variedad, con lo cual se siembra de 18 a 22 semillas y en algunos casos hasta 25 semillas por metro lineal (Cuadro 10). Aunque la mayoría de los productores usan el mismo método de siembra en ambas épocas para evitar pérdidas de tiempo en las modificaciones a la maquinaria, cuando se utilizan los sistemas de riego presurizado, particularmente el riego por goteo, se emplean camas de dos a tres hileras con separaciones de 70 y 30 cm entre éstas, respectivamente. Los resultados de investigación indican que en O-I, las variedades de frijol pinto presentan mayor riesgo de roya o chahuixtle y al moho blanco por las condiciones de alta humedad relativa, por lo que no es recomendable utilizar altas poblaciones de plantas. Por el contrario, en PV el frijol responde al incremento en la densidad de siembra y a la reducción en la distancia entre surcos. Si la maquinaria lo permite, se puede sembrar de 0.60 a 0.70 m entre surcos. La siembra en camas a doble hilera a 1.0 m entre camas y 40 cm entre hileras está siendo utilizada actualmente en lotes con riego presurizado. Además, se adapta muy bien en las variedades de hábito de mata en cualquier sistema de siembra.
Padilla (1991) evaluó el efecto de cuatro densidades
de siembra en el rendimiento y comportamiento agronómico de dos variedades de frijol contrastantes en el hábito de crecimiento bajo condiciones del Valle del Mayo, Son. El experimento se realizó en San Ignacio Cohuirimpo, Sonora, durante el ciclo Primavera-Verano 1991, con un agricultor
32
cooperante, en un suelo de aluvión; los tratamientos fueron cuatro distancias entre surcos (0.60, 0.70, 0.80 y 0.90 m) en dos variedades: Azufrado Pimono 78 de hábito de mata y Pinto Bill-Z con hábito de guía. El análisis de los resultados no mostró diferencia en el rendimiento de las variedades evaluadas. Solamente se encontró diferencia entre las distancias de siembra y la interacción, esta última se debió a la variedad Mayocoba la cual superó en 19% a P. Bill-Z en siembras a 0.60 m. En promedio de ambas variedades, las mejores distancias fueron 0.60 y 0.70 m con 3,018 y 2,248 kg/ha, respectivamente. Se observó una mayor sensibilidad de Bill-Z en lo que se refiere a respuesta a la variación en la distancia de siembra, sin embargo, no se detectó un efecto notable de compensación al aumentar la distancia entre surcos. En general, ambos genotipos rindieron más por unidad de área al aumentar la densidad de plantas.
FIGURA 12. SEMBRADORAS NEUMÁTICAS PARA EL ESTABLECIMIENTO DE 1 A 3 HILERAS DE PLANTAS DE FRIJOL, EQUIPADAS PARA LA APLICACIÓN DE INSECTICIDA GRANULADO SISTÉMICO.
33
CUADRO 10. DENSIDAD DE PLANTAS EN FRIJOL DE ACUERDO CON EL MÉTODO DE SIEMBRA Y VARIEDAD PARA EL SUR DE SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
VARIEDAD HILERA SENCILLA* DOBLE HILERA**
Plantas/m Kg/ha Plantas/m Kg/ha
Azufrado Higuera 94 18-20 125 14-16 100
Azufrado Janasa 18-20 117 14-16 94
Azufrado Noroeste 94 18-20 117 14-16 94
Azufrado Peruano 87 18-20 117 14-16 94
Azufrado Pimono 78 18-20 117 14-16 94
Azufrado Regional 87 18-20 92 14-16 94
Aluyori 2008 18-20 150 14-16 120
Jamapa 14-16 60 12-14 50
Sataya 425 14-16 60 12-14 50
Negro Pacífico 14-16 60 12-14 50
Negro Sinaloa 14-16 60 12-14 50
Pinto Saltillo 14-16 66 12-14 57
Pinto Bayacora 14-16 84 12-14 73
Pinto Bill-Z 14-16 66 12-14 57 *Ancho de surco o de hilera 0.08 m, ** Ancho de surco 0.60 m y entre hilera de hilera 0.40
FERTILIZACION Y NUTRICION DEL FRIJOL La fertilización es un factor importante en la
producción de cualquier cultivo. En frijol, un abastecimiento adecuado de nitrógeno favorece un desarrollo vigoroso y favorece la producción de proteínas. En cambio, un aporte excesivo de nitrógeno puede provocar un desarrollo vegetativo excesivo en el que puede ocurrir retraso y reducción de la floración y un retraso en la maduración; trayendo como consecuencia un alargamiento del ciclo vegetativo del cultivo.
34
Las variedades de frijol cultivadas comúnmente en el
sur de Sonora tienen ciclo vegetativo intermedio (90 a 100
días a madurez fisiológica) por lo tanto la aplicación de
fertilizantes debe hacerse en el momento oportuno, debido a
que el cultivo acumula las dos terceras parte o más del peso
seco total durante las fases de floración y formación de
vainas que ocurre entre los 40 a 60 días a partir de la
siembra.
Cedano y colaboradores (1999) con base a otros
autores afirman que la planta de frijol demanda mayor
cantidad de nitrógeno que de otros nutrimentos, ya que éste
interviene en la formación de las proteínas que contiene la
semilla (20 a 22%) y los requerimientos del nitrógeno
aumentan durante las fases de formación y llenado de
vainas, además de ser considerado el nutrimento que tiene
mayor movilidad en el suelo y alta solubilidad. Pruebas de
aplicaciones fraccionadas de este elemento realizadas por
estos autores indican que es mejor aplicarlo todo a la
siembra.
Diversos estudios han demostrado que con la
fertilización nitrogenada se puede incrementar el rendimiento
del frijol (Scarisbrick et al., 1982; Escalante y Escalante,
1994; Rodríguez y Escalante, 1994). Los cambios en el
rendimiento, por lo general se relacionan con el número de
vainas a la cosecha (Escalante y Kohashi, 1986) y con el
número de órganos reproductivos formados durante el
crecimiento de la planta. La magnitud de éste, es afectada
por las condiciones ambientales (Escalante et al., 1980). La
abscisión de órganos reproductivos (botones, flores y
vainas), estas últimas menores de tres centímetros
(Escalante y Kohashi, 1993) limita la expresión de un mayor
rendimiento. White e Izquierdo (1991) señalan que aún bajo
condiciones óptimas de crecimiento, la abscisión de órganos
reproductivos por planta es superior al 50% y es afectada por
35
los factores del ambiente (Breyedan et al., 1978; Binkley,
1993). Mann y Jaworski (1970) señalan que el déficit de
nutrimentos, particularmente el nitrógeno (N) incrementó la
tasa de abscisión de flores y vainas en soya. Asimismo,
Breyedan et al., (1978) encontraron que el N, redujo el
aborto de flores en 12%. El mecanismo como esto ocurre es
desconocido. Subhadrabandhu et al., (1978) y Tucker et al.,
(1975) sugieren que, prevenir la caída de órganos
reproductivos podría conducir a un rendimiento más alto, a
tal grado que Izquierdo (1981) señala que bajo condiciones
óptimas de agua y nutrimentos podría estimarse un
rendimiento “potencial” del frijol superior a 6.2 toneladas por
hectárea.
En evaluaciones realizadas en el valle del mayo,
Sonora de 1984 a 1990 de los factores riego y fertilidad en el
cultivo de frijol se determinó que la dosis de N-P-K debe ser
80-40-00, en aplicaciones totales de pre-siembra, tanto para
el ciclo otoño-invierno como para primavera-verano (Cabrera,
1988).
No obstante lo anterior hay que utilizar la herramienta
de análisis de suelo para una mejor aproximación a la dosis
de nutrientes por aplicar. En la práctica con base a los
resultados de análisis de laboratorio se da la siguiente guía:
1) si el resultado del análisis ubica al suelo con un nivel
medio de fertilidad hay que usar la fórmula 80-40-00, 2) si lo
ubica en un nivel pobre, entonces utilizar la fórmula 160-40-
00 procurando aplicar dos tercios a la siembra y un tercio
antes del primer riego de auxilio.
Si se cuenta con el análisis de suelo y considerando
diferentes metas de producción, se puede estimar la dosis de
fertilización con nitrógeno en función de su contenido y nivel
de materia orgánica del suelo de acuerdo con el Cuadro 11.
36
CUADRO 11. DOSIS DE FERTILIZACIÓN CON NITRÓGENO (KG/HA) EN FRIJOL SEGÚN EL ANÁLISIS DE SUELO. CEVY-CIRNO-INIFAP 2009*
NITRÓGENO NO3 (ppm)
MATERIA ORGÁNICA
(%)
RENDIMIENTO ESPERADO
(t/ha)
DOSIS DE NITRÓGENO**
CON NODULACIÓN
SIN NODULACIÓN
10 0.5 2.5 75 195
10 0.5 3.0 135 254
10 0.5 3.5 195 315
10 1.5 2.5 45 165
10 1.5 3.0 105 225
10 1.5 3.5 165 285
20 0.5 2.5 0 125
20 0.5 3.0 65 185
20 0.5 3.5 125 245
20 1.5 2.5 0 95
20 1.5 3.5 95 215
*Adaptado de Macías y Mendoza (2002) ** Considerar si el cultivo anterior fue una gramínea esquilmante (maíz o
sorgo) y si los residuos se dejaron en el terreno, aplicar 30 a 40 kg/ha adicionales de nitrógeno para facilitar su descomposición.
En el caso de detectar síntomas de deficiencia
nutricional durante el desarrollo del cultivo, es recomendable efectuar un análisis foliar, previo al inicio de floración, para poder realizar una corrección oportuna ya sea aplicando al suelo o bien mediante una fertilización foliar. En el Cuadro 12 se muestran las concentraciones nutrimentales que sirven como referencia para conocer el estado nutrimental del cultivo en la etapa de inicio de floración.
37
CUADRO 12. CONCENTRACIONES CONSIDERADAS COMO ACECUADAS, DETECTADAS EN LAS HOJAS DE FRIJOL AL INICIO DE FLORACIÓN Y ANALIZADAS EN BASE A MATERIA SECA. CEVY-CIRNO-INIFAP 2009*.
Porcentaje (%)
N P K Ca Mg
3.0-6.0 0.25 - 0.50 1.8-2.5 0.8-3.0 0.25-0.70
Partes por millón (ppm)
Fe Mg Cu Mn Zn
300-450 15-30 30-60 30-300 40-60
*Adaptado de Macías y Mendoza (2002)
INOCULACIÓN Las plantas leguminosas como el frijol, garbanzo,
soya o alfalfa pueden obtener la mayor parte del nitrógeno que necesitan de la amplia disponibilidad de nitrógeno gaseoso del aire. El aire tiene alrededor de 80% de nitrógeno. Estas plantas obtienen y utilizan este elemento mediante la simbiosis con bacterias del género Rhizobium, una vez formados los nódulos en sus raíces.
La inoculación es la práctica mediante la cual se
provee a las raíces de estas plantas con la bacteria específica, de acuerdo al cultivo, para llevar a cabo este proceso de fijación; la cantidad de nitrógeno fijado por el frijol fluctúa de 60 a 100 kg/ha.
Los nódulos efectivos son generalmente grandes y se
agrupan en la raíz primaria y en las raíces secundarias superiores. En contraste, los nódulos inefectivos son pequeños, numerosos y con frecuencia distribuidos en todo el sistema radicular. Los nódulos efectivos son grandes y su color interno un es rosado intenso. El mejor momento para
38
realizar una inspección y determinar si se llevó a cabo adecuadamente la nodulación, es durante la máxima floración. Es conveniente realizar esta inspección previa al riego de auxilio para poder agregar una fertilización complementaria, en caso de que el proceso de fijación no se dé en forma satisfactoria.
Es importante observar algunas precauciones para
efectuar una adecuada inoculación, además de las que el fabricante especifique en el envase. Estas se enumeran a continuación: a) Utilice el inoculante específico para el cultivo, b) Inocule solamente la cantidad de semilla que vaya a sembrarse el mismo día, c) Humedezca ligeramente la semilla d) Mezcle perfectamente la semilla con el inoculante, e) Evite el contacto directo de la semilla con el sol y el viento, f) No utilice inoculantes cuya fecha de caducidad haya vencido.
La inoculación de la semilla se sugiere en suelos
donde en los últimos tres años no se haya sembrado frijol.
MANEJO DEL AGUA Comportamiento del frijol a la calidad del agua.
En pruebas de campo iniciadas en el ciclo 1997-98 en
el Valle del Mayo, Sonora (sitio Juliantabampo) en suelo no salino, se estableció frijol y se sometió al efecto de salinidad del agua de riego con 400, 600 y 1,000 ppm. La evaluación mostró impacto sobre la altura de planta al marcar tendencia a disminuir (diferencia significativa con 1,000 ppm) cuando la salinidad en el agua de riego aumentó. Esa misma tendencia se encontró en el número de vainas por planta y en el número de grano por vainas, así como en el rendimiento (Cuadro 13), el cual fue disminuyendo al incrementar la concentración de sales en el agua de riego aplicada en el cultivo, aunque la diferencia no fue significativa.
39
CUADRO 13 RESPUESTA DEL FRIJOL A LA SALINIDAD DEL AGUA DE RIEGO. HUATABAMPO, SON. MÓDULO 1. CEMAY. 1997-98.
TRATAMIENTO (ppm)
ALTURA DE PLANTA
(cm)
NÚMERO DE
VAINAS
GRANOS POR
VAINA
RENDIMIENTO (t/ha)
400 37.0 14.0 5.25 2.156
600 36.7 11.0 5.00 2.078
1000 32.7 10.7 4.50 2.035
En el ciclo agrícola 1998-99, se evaluó el efecto
salino del agua en el rendimiento de grano y altura de planta. Se encontró que hubo diferencia significativa entre las aplicaciones de dos calidades de agua de riego (400 y 800 ppm), como se puede apreciar en el Cuadro 14, el cual muestra una merma en el rendimiento de grano de 466 kg/ha, y una reducción de 4 cm de altura de planta al aumentar la concentración salina del agua.
El análisis de resultados muestra que el cultivo de
frijol es afectado significativamente en su rendimiento al aplicar 800 ppm en el agua de riego, coincidiendo con lo evaluado por Beltrán et al., (1998), y otras fuentes que indican a este cultivo como sensible al estrés por salinidad.
CUADRO 14 RESPUESTA DEL FRIJOL A LA SALINIDAD DEL
AGUA DE RIEGO. HUATABAMPO, SON. MÓDULO 1. CEMAY. 1998-99.
SALINIDAD DEL AGUA
RENDIMIENTO (ton/ha)
ALTURA DE PLANTA (cm)
400 2.601 40.17
800 2.135 36.20
40
LA CALIDAD DEL AGUA SOBRE CULTIVO Y SUELO EN CONDICIONES CONTROLADAS. Efecto en la emergencia del frijol
A la par con el tema; en macetas se probaron tres
concentraciones de sales totales en el agua de riego (300, 600 y 1000 ppm) en dos leguminosas (Alfalfa y Frijol) y una gramínea (Trigo). Los resultados mostraron con claridad que en el caso de alfalfa y frijol hay un decremento significativo en la emergencia de plántulas (Cuadro 15) al aumentar la concentración salina del agua, con valores en el porcentaje inicial de 73 y 85% de germinación a una reducción del 60% respectivamente; sin embargo en el caso de trigo no se detectó efecto alguno a estos tratamientos. Lo anterior concuerda con lo publicado en el manual 60 del Departamento de Agricultura de Estados Unidos, donde resalta que el trigo es más tolerante que el frijol y la alfalfa.
CUADRO 15. EFECTO DE LA CALIDAD DEL AGUA DE RIEGO
SOBRE LA EMERGENCIA DE PLANTAS DE ALFALFA, FRIJOL Y TRIGO. CEMAY. 1997.
CONCENTRACIÓN DE SALES DEL AGUA
(ppm)
PORCENTAJE DE EMERGENCIA
ALFALFA FRIJOL TRIGO
300 073 85 80
600 57 68 87
1000 60 60 81
LA SALINIDAD DEL AGUA, CONDICION DE HUMEDAD Y NIVELES DE FERTILIZACION NITROGENADA EN LA EMERGENCIA DE FRIJOL.
Los factores mencionados producen una fuerte
variación en el porcentaje de plantas emergidas, que se debe a la compleja interacción de estos factores y otros que
41
intervienen en el proceso de germinación de la semilla. Conforme al análisis estadístico se encontró efecto significativo (LSD con =5%) del factor fertilizante (nitrogenado), y de la interacción fertilizante x humedad en el suelo al momento de la siembra, así como la interacción fertilizante x salinidad del agua.
En los Cuadros del 16 al 19, se muestran las
tendencias del efecto negativo de los factores calidad del agua condición de humedad y niveles de fertilización sobre el porcentaje de emergencia de las plántulas. En el Cuadro 16 se muestra que el porcentaje de emergencia se disminuye con el incremento en la adición de nitrógeno y conforme a la comparación de medias soporta hasta 50 kg de N/ha al momento de la siembra.
CUADRO 16. EFECTO DE LA FERTILIZACIÓN NITROGENADA
EN LA EMERGENCIA DE FRIJOL. CICLO 1999-2000. CEMAY.
KG DE N/HA % DE EMERGENCIA
0 37.5 a
50 33.4 a
Por otra parte la salinidad del agua tiene efecto
negativo en el porcentaje de emergencia, ya que al aumentar esta disminuye la emergencia (Cuadro 17).
CUADRO 17. EFECTO DE LA SALINIDAD DEL AGUA DE
RIEGO EN EL PORCENTAJE DE EMERGENCIA DE FRIJOL. CICLO 1999-2000. CEMAY.
SALINIDAD DEL AGUA (ppm) % DE EMERGENCIA
300 36.7
1200 25.0
Por otra parte se observó que la condición de
humedad en el suelo es importante, ya que esta favorece al porcentaje de emergencia del frijol (Cuadro 18).
42
CUADRO 18. EFECTO DEL ESTADO DE HUMEDAD EN EL SUELO AL MOMENTO DE LA SIEMBRA SOBRE EL PORCENTAJE DE EMERGENCIA. CICLO O-I 1999-2000. CEMAY.
HUMEDAD DEL SUELO A LA SIEMBRA
% DE EMERGENCIA
SIEMBRA EN HUMEDO 45
SIEMBRA EN SECO 16.7
Lo más ilustrativo sobre el efecto de los factores
evaluados puede observarse en el Cuadro 19, donde es claro que el mejor tratamiento es el que se compone con siembra en húmedo + riego con 300 ppm en el agua + cero fertilización a la siembra. Mientras que el peor es el tratamiento compuesto por siembra en seco + riego con 300 ppm en el agua + 50 kg de N/ha, aunque a partir de ahí el efecto se empieza a ver, por lo que significa crear una condición adversa al sembrar en seco y después regar aun con agua de buena calidad.
Posteriormente en el ciclo 2005-06 se validó el efecto
salino del agua sobre el cultivo de frijol en campo. Se probó la calidad del agua (1,085 ppm) proveniente de pozo vs 450 ppm proveniente de la presa sobre fríjol azufrado, en suelo franco arenoso, sin problemas de salinidad (< 2 dS/m), con adecuado drenaje interno (8 cm/hr). El rendimiento estimado donde se regó con agua de 450 ppm fue de 3.5 t/ha, mientras que con agua de 1085 ppm fue de 2.7 t/ha. Lo anterior marca una merma en el rendimiento de 24% por efecto salino del agua de riego. Esto corrobora la información respecto del efecto en cultivos sensibles, por tanto el productor que tiene acceso al uso de agua directa de pozo o bien a la mezcla de agua con sales similar a la usada en esta validación o entre los rangos de referencia 800 a 1,200 ppm podrá tener las bases para decidir que cultivo establecer en función de la calidad del agua.
43
CUADRO 19. EFECTO DE HUMEDAD EN EL SUELO, SALINIDAD DEL AGUA Y FERTILIZACIÓN NITROGENADA EN LA EMERGENCIA DE FRIJOL. O-I 1999-2000. CEMAY.
SISTEMA DE SIEMBRA SALINIDAD
EN EL AGUA (PPM)
KG DE N/HA
0 50 100
% DE EMERGENCIA
EN HUMEDO 300 70 40 50
EN HUMEDO 1200 45 30 35
EN SECO 300 25 0 0
EN SECO 1200 40 0 0
Manejo de los riegos
El frijol responde favorable o desfavorablemente al tipo de suelo, así los mejores suelos para esta leguminosa son aquéllos de textura media o migajón como serían los suelos de aluvión y barrial profundo de nuestra región. Los suelos de barrial compactado no son muy recomendables para sembrar frijol.
La alta sensibilidad de las plantas de frijol al déficit
hídrico durante el período de floración, se debe a que las leguminosas dejan de producir raíces durante esta etapa y se observa una reducción en la masa radicular debido a la muerte de las raíces viejas (Salter y Goode, 1967). Por otro lado, Dreibrodt, citado por Salter y Goode (1967) estudió el efecto de la sequía en el suelo en diferentes etapas fenológicas del desarrollo del frijol y menciona que cuando las plantas sufrieron sequía en cualquiera de sus etapas fenológicas, el rendimiento de grano fue bajo. Por otro lado, discuten que el efecto de la sequía en la etapa de floración es irreversible. Si las condiciones de sequía prevalecen durante la fase final de formación de vainas se reduce también el rendimiento.
44
López et al., (1983) mencionan que un aspecto muy
importante para el desarrollo y producción de frijol, es aplicar
el agua de riego en cantidades suficientes. Se debe de tener
cuidado de que el terreno tenga suficiente humedad en las
etapas críticas del cultivo como son: Nacencia, floración y
llenado de grano. Kramer y Kozlowski (1979) consideran que
regímenes deficientes de agua afectan cada aspecto del
crecimiento, modificando la anatomía, morfología y
metabolismo de las plantas. El efecto depende del grado de
duración de la tensión hídrica, así como del estado
fenológico de la planta.
Lépiz y Navarro (1983) mencionan que en el
Noroeste de México no existe un criterio bien definido sobre
cuánta agua, como aplicarla y cuándo regar el cultivo de
frijol, mientras que Ochoa (1973) afirma que los riegos en el
cultivo de frijol se requieren en número suficiente y oportuno
para el mejor crecimiento de las planta. Después del riego de
siembra, es necesario dar de tres a cuatro riegos más,
espaciados entre 20 a 25 días uno de otro.
Castro y Ortiz en 1990 estudiaron seis tratamientos
de riego en el cultivo de frijol para suelos de barrial
compactado en una fecha de siembra del 01 de marzo, los
tratamientos de riego se basaron en la fenología del cultivo
manejando dos, tres y cuatro riegos de auxilio. El mayor
rendimiento de grano se logró manejando cuatro riegos de
auxilio aplicados secuencialmente en las etapas de
desarrollo vegetativo, inicio de floración, formación de vainas
y llenado de vainas.
Efetha (2008) establece que las necesidades de agua
en frijol dependen de la variedad, densidad de población,
manejo del riego, tipo de sistema de riego y del cultivo y las
condiciones del clima durante su ciclo. El frijol en Alberta,
45
Canadá consume 368 mm de agua (36.8 cm o 3.7 millares
de m3/ha) los niveles de humedad en el suelo deberán
mantenerse en 60% de humedad aprovechable en la zona
activa de 90 cm y el 80% del consumo lo hace de los
primeros 60 cm de profundidad de las raíces. Es muy
importante mantener buenos niveles de humedad durante las
etapas de floración y llenado de vainas que es el período
crítico, la demanda de agua es de 6.6 mm/día. Un color
verde oscuro del follaje es un indicador visual de stress. Un
stress por falta de humedad de más de 5 días reducirá el
número de vainas, el número de granos por vaina y
consecuentemente reduce el rendimiento por hectárea.
Berglund (1997) opina que el frijol se necesita de 305
a 457 mm (3 a 4.5 millares de m3/ha) de agua para una
buena producción y bajo estas condiciones es capaz de
producir de 68 a 136 kilos de grano/25.4 mm de agua
aplicada. Durante el período vegetativo antes de la floración
y después de la maduración de las vainas el frijol es
relativamente tolerante a la sequía sin un impacto fuerte en
la producción, sin embargo durante el período de floración y
llenado de vaina no deberá bajar la humedad más del 50%
para alcanzar el máximo rendimiento.
RIEGO POR GRAVEDAD EN SUELOS DE ALUVIÓN
El sur de Sonora cumple con los requerimientos climáticos para que el frijol se desarrolle en dos ciclos: primavera-verano y otoño-invierno. En función de eso se estimó el requerimiento de agua en cada uno de ellos, en suelos de aluvión. El ciclo otoño-invierno es el más benigno para el cultivo, exceptuando los riesgos de heladas y chahuixtle. La duración del ciclo promedia 110 días y el requerimiento de agua o uso consuntivo (U. C.) indica que se requieren aplicar alrededor de 34 cm para llegar adecuadamente a madurez fisiológica (Cuadro 20).
46
CUADRO 20. USO CONSUNTIVO DEL FRIJOL EN OTOÑO-INVIERNO*. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
SEP OCT NOV DIC ENE TOTAL
U.C/MES 1.73 11.81 11.43 7.24 2.16
U.C./ACUM. 1.73 13.54 24.97 32.21 34.37 34.37 *FECHA DE SIEMBRA=25 de septiembre; MADUREZ= 13 de enero
En primavera-verano, el cultivo se somete a un
ambiente con mayores temperaturas y evapotranspiración en las etapas criticas. Durante este ciclo se acorta el ciclo a 100 días en promedio, pero a la vez, el aumento del calor produce una demanda de alrededor de 41 cm (Cuadro 21).
CUADRO 21. USO CONSUNTIVO DEL FRIJOL EN PRIMAVERA-
VERANO*. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
FEB MAR ABR MAY TOTAL
U.C/MES 2.1 11.8 12.9 14.3
U.C./ACUM. 2.1 13.9 26.8 41.1 41.1 *FECHA DE SIEMBRA=15 de febrero; MADUREZ= 26 de mayo
Con la información anterior y estudios de riego en
campo, se generó el calendario de riego que se muestra en Cuadro 22. Para el ciclo otoño-invierno, en el cual se ilustra que se deben dar cuatro riegos en total. Es importante señalar que el seguimiento de las etapas fenológicas del cultivo es determinante para hacer una adecuada aplicación necesaria de agua en este ciclo.
CUADRO 22. CALENDARIO DE RIEGO PARA FRIJOL DE
OTOÑO-INVIERNO, EN SUELO DE ALUVIÓN. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
GERMINACIÓN PRIMER AUXILIO
SEGUNDO AUXILIO
TERCER AUXILIO
TOTAL
INTERVALO (DÍAS)
0 35 18 18 71
LÁMINA (CM)
15 13 10 10 48
ETAPA BOTONES FLORALES
FLORACIÓN LLENADO
DEL GRANO
47
En forma similar se obtuvo el calendario de riegos
para el ciclo primavera-verano (Cuadro 23). Por otra parte, el
cultivo exige de oxigenación adecuada en la zona de raíces,
por esta razón los suelos francos sin o con pocas arcillas
expandibles son mejores para lograr el mayor potencial de
rendimiento. Por lo tanto, al manejar este cultivo mediante
riego de gravedad, deben evitarse los encharcamientos y
longitudes de surco mayores a 200 metros de longitud o
terrenos desnivelados que dificulten alcanzar cuando menos
una eficiencia de riego en parcela de 70%.
CUADRO 23. CALENDARIO DE RIEGO PARA FRIJOL DE PRIMAVERA-VERANO, EN SUELO DE ALUVIÓN. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
GERMI- NACIÓN
1° 2° 3° 4° TOTAL
INTERVALO (DÍAS)
0 35 20 20 18 91
LÁMINA (CM)
15 13 10 10 10
ETAPA BOTONES FLORALES
FLORACIÓN FORMACION DE VAINAS
LLENADO DEL
GRANO
RIEGO POR GRAVEDAD PARA SUELOS DE BARRIAL PROFUNDO
1.- Aplicar el riego de pre siembra con lámina bruta de 23 cm
o 2.3 millares de m3/ha, aquí la siembra tiene que ser en
húmedo.
2.- Aplicar el primer riego de auxilio en pleno desarrollo
vegetativo cuando la planta tenga 5 a 6 trifolios (Etapa
48
V5) según el Cuadro 24, esto se presenta alrededor de
los 30 días para las siembras de primavera y a los 35
días para las siembras de otoño ya que mientras las
siembras de primavera inician su ciclo en un período de
bajas temperaturas y terminan en un período de altas
temperaturas, en las siembras de otoño es todo lo
contrario. Aplicar una lámina bruta de 13 cm o 1.3
millares de m3/ha.
3.- Aplicar el segundo riego de auxilio en la etapa de
floración (R6) (Cuadro 25) alrededor de 25 días después
de aplicar el primer riego de auxilio y esto es para ambos
ciclos de siembra, es decir, para primavera y para otoño.
En esta etapa no se debe de castigar al frijol ya que si se
hace hay caída de flores y se reduce el rendimiento de
grano. La falta de agua en esta etapa es más crítica en
siembras de primavera que en otoño. La lámina a aplicar
es de 13 cm o 1.3 millares de m3/ha.
4.- Aplicar el tercer riego de auxilio en la etapa de inicio de
formación de vainas (R7) (Cuadro 25) a los 15 días
después del segundo riego de auxilio
independientemente del ciclo de siembra. Este riego es
muy importante ya que si se castiga la planta en esta
etapa existe caída de vainas pequeñas. La lámina bruta a
aplicar es de 13 cm o 1.3 millares de m3/ha.
5.- Aplicar el cuarto y último riego de auxilio en la etapa
de llenado de vainas (R8) (Cuadro 25) o lo que también
se le llama ejotes tiernos y se presenta a los 15 a 20 días
después del tercer riego de auxilio. Aquí es importante
tratar de dar el riego ligero con el fin de evitar pudrición
de vainas ya que existe grano formado. La lámina a
aplicar es de 13 cm o 1.3 millares de m3/ha.
49
CUADRO 24. DESCRIPCIÓN DE LAS ETAPAS DE DESARROLLO DURANTE LA FASE VEGETATIVA DEL FRIJOL (Phaseolus vulgaris L.)*. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
ETAPAS DENOMINACIÓN DESCRIPCIÓN
V0 Germinación Desde la siembra hasta 50% de los
cotiledones.
V1 Emergencia 50% de los cotiledones están por encima de la superficie del suelo
V2 Hojas primarias
unifoliadas
50% de las plántulas presentan los protófilos (hojas primarias) desplegadas en el segundo nudo del tallo principal, comenzando por el nudo cotiledonar
V3 Primera hoja trifoliolada
50% de las plantas presentan la primera hoja trifoliolada totalmente
desplegada en el tercer nudo del tallo principal, comenzando por el nudo
cotiledonar
V4 Tercera hoja trifoliolada
50% de las plantas presentan la tercera hoja trifoliolada totalmente desplegada
en el quinto nudo del tallo principal, comenzando por el nudo cotiledonar
V4.4 Cuarta hoja trifoliolada
50% de las plantas presentan la cuarta hoja trifolilolada totalmente desplegada
en el sexto nudo del tallo principal, comenzando por el nudo cotiledonar
V4.5 Quinta hoja trifoliolada
50% de las plantas presentan la quinta hoja trifoliolada totalmente desplegada en el séptimo nudo del tallo principal, comenzando por el nudo cotiledonar
*De acuerdo al sistema de Fernández et al., 1985.
50
CUADRO 25. DESCRIPCIÓN DE LAS ETAPAS DE DESARROLLO DURANTE LA FASE REPRODUCTIVA DEL FRIJOL (Phaseolus vulgaris L.)*. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
ETAPAS DENOMINACIÓN DESCRIPCIÓN
R5 Prefloración 50% de las plantas con el primer
racimo en cualquier nudo sobre el tallo principal.
R6 Floración 50% de las plantas con la primera flor abierta en cualquier nudo sobre el tallo
principal.
R7 Formación de
vainas
50% de las plantas que presenten la primera vaina con corola de la flor
colgada o desprendida en cualquiera de los nudos del tallo principal.
R8 Llenado de
vainas
50% de las plantas con la primera vaina llena, con granos de tamaño
completo y cambios de coloración de verde hasta adquirir el color característico de la variedad.
R9 Maduración 50 % de las plantas con presencia de la primera vaina decolorada y seca, amarillamiento y caída de las hojas.
*De acuerdo al sistema de Fernández et al., 1985.
RIEGO POR GRAVEDAD PARA SUELOS DE ALUVIÓN PESADO
1.- Aplicar el riego de pre siembra con lámina de 23 cm o 2.3
millares de m3/ha. Aquí la siembra debe de ser en húmedo.
2.- Aplicar el primer riego de auxilio más retrasado que
cuando se siembra en suelos de barrial y se recomienda aplicarlo en la etapa de pleno desarrollo vegetativo a inicio de botones florales, a los 40 días después de la siembra, en este tipo de suelos por sus características
51
propias el frijol presenta poco amarillamiento y también se puede eliminar un riego de auxilio. Aplicar una lámina bruta de 13 cm o 1.3 millares de m3/ha.
3.- Aplicar el segundo riego de auxilio en la etapa de
floración, a los 20 días después de haber aplicado el primer riego de auxilio con lámina bruta de 13 cm o 1.3 millares de m3/ha.
4.- Aplicar el tercero y último riego de auxilio en la etapa de
formación de vainas a los 20 días después del tercer riego de auxilio con lámina bruta de 13 o 1.3 millares de m3/ha.
PRECAUCIONES: En las siembras de primavera-
verano debe observarse un especial cuidado con el último riego ya que coincide con altas temperaturas y no se debe de dejar agua encharcada ya que por el alto calor que se transmite del agua a la planta, hay muerte de éstas o una maduración acelerada de la planta que no es normal. En el ciclo de primavera es posible que se pueda modificar un poco el calendario de riegos para suelos de aluvión ya que existen ciclos de siembra donde en los meses de marzo y abril es muy caliente. Si esto se presenta así es preferible reducir el intervalo entre riegos, es decir, utilizar láminas más pequeñas, pero aplicar riegos frecuentes, lo cual implica que en lugar de tres riegos, se deberán manejar cuatro riegos de auxilio.
RIEGO POR GOTEO Sistema de riego por goteo con baja presión
De acuerdo con la compañía de riego NETAFIM
(www.netafim.com/irrigation), diseñadora del sistema de riego por goteo LES (Low Energy System o sistema de baja presión), los principales componentes de este riego son los siguientes:
52
Un filtro de malla manual tipo A, el cual mantiene un excelente filtrado con baja pérdida de presión.
Válvulas de control, las cuales mantienen el flujo constante al campo y también el gasto de agua a la parcela.
Un tubo de PVC, el cual mide la presión requerida por el sistema.
Un sistema de nutrigación, para aplicar fertilizantes utilizando el venturi.
Un sistema de nutrigación DC de 12 voltios, fácil de instalar y operar.
Tubería principal marca polynet XF, la cual transporta agua de la fuente a las tuberías regantes, el polynet es un polietileno de doble pared fácil de instalar, es liviano, se coloca superficial y se enrolla para el siguiente ciclo, fácil de almacenar y está disponible en 6, 8, 10 y 12 pulgadas de diámetro.
Conectores, para asegurar una buena conexión entre la tubería polynet y la cinta de riego o regante.
Cintas de riego de doble pared con goteros integrados en la pared de la cinta, la cinta proporciona uniformidad en el riego y tiene resistencia al taponamiento, es ideal para cultivos de campo, y para el sistema de baja presión (LPS), se puede usar en forma superficial o enterrada.
Accesorios y herramientas LPS como manómetros, tapones, coples, etc.
En el Block 710 del PIEAES (Patronato para la
Investigación y Experimentación Agrícola del Estado de Sonora) se llevó a cabo un estudio de frijol ciclo Primavera-Verano 2006-07 con un sistema de riego por goteo denominado LES o sistema de riego de baja presión; más económico que el sistema de riego por goteo tradicional (30% menos), cuyas características se describen previamente y se ilustran en las Figuras 13 a 15. El tipo de
53
suelo se clasifica como textura arcillosa con 55 a 60 % de arcilla y con problemas de compactación, es decir, son suelos que no son recomendables para el cultivo de frijol ya que no desarrollan bien, manifestando este menos altura, problemas fuertes de amarillamiento y el potencial de rendimiento es bajo.
FIGURA 13. TUBERÍA PRINCIPAL POLYNET XF, TRANSPORTE DE AGUA DE LA FUENTE A LAS TUBERÍAS REGANTES, EN FRIJOL SEMBRADO EN SECO Y RIEGO DE GERMINACIÓN CON EL SISTEMA DE RIEGO POR GOTEO LES. CICLO O-I 2006-07. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
El Cuadro 26 muestra las características agronómicas
para ambos sistemas de riego: la fecha de siembra (6 al 11 de febrero del 2007) y la fertilización. En el caso de riego por gravedad se realizó al momento de la preparación del terreno y luego se aplicó el riego de presiembra (la siembra fue en seco). En el riego por goteo LES no se aplicó fertilización, ésta se realizó como ferti-irrigación, aplicandose gradualmente a través del sistema de riego. El número de riegos fue mayor en el goteo debido a que se aplican láminas pequeñas y más frecuentes, la variedad, densidad de siembra y aplicaciones de plaguicidas y nutrientes foliares fueron lo mismo para los dos sistema de riego.
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FIGURA 14. SIEMBRA DE FRIJOL EN SECO APLICÁNDOSE EL RIEGO DE GERMINACIÓN POR GOTEO LES. CICLO 2006-07. CEVY-CIRNO-INIFAP. 2009.
CUADRO 26. FRIJOL BAJO RIEGO POR GRAVEDAD Y POR GOTEO LES EN LA VARIEDAD PINTO BILL-Z. CICLO O-I 2006-07. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
CULTIVO FECHA DE SIEMBRA
FERTILIZACIÓN TOTAL N-P
RIEGOS DENSIDAD
Frijol (G) 6-2-2007 103-52 6 72 kg/ha
Frijol (LES) 11-2-2007 111-69 11 72 kg/ha
G: Gravedad LES: Sistema de baja presión
En el Cuadro 27 se muestra el rendimiento de frijol
bajo los dos sistemas de riego. El mayor rendimiento fue bajo riego por goteo LES con 1,255 kg/ha contra 644 kg/ha del riego por gravedad, es decir, con 611 kg/ha a favor del riego por goteo LES el cual representó cerca del 100% más de rendimiento. En relación a la cantidad de agua aplicada en el riego por gravedad se aplicaron 7.80 millares de m3/ha, es decir, 78 cm de lámina de agua contra 2.99 millares de m3/ha del riego por goteo LES, y en consecuencia, un ahorro de agua de 4.89 millares de m3/ha lo cual representa el 160% de ahorro de agua. También en la eficiencia resultó
55
mejor el riego por goteo LES en forma espectacular ya que en riego por gravedad se necesitaron 12,111 litros de agua para producir un kilogramo de frijol contra 2,517 litros en riego por goteo, es decir, 4.8 veces más eficiente el riego por goteo que el de gravedad. De esta información puede apreciarse que los suelos de barrial compactado no suelen ser aptos para la siembra rentable de frijol, a menos que se logre un buen control de la humedad. El riego de gravedad no es recomendable en estos suelos.
CUADRO 27. RENDIMIENTO EN RIEGO POR GOTEO LES Y
GRAVEDAD EN FRIJOL. EN SUELO DE BARRIAL COMPACTADO. CICLO O-I 2006-07. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
SISTEMA DE RIEGO
RENDIMIENTO kg/ha
MILLARES DE M
3/HA
EFICIENCIA: LITROS DE AGUA/Kg
Goteo LES 1,255 3.16 2,517
Gravedad 644 7.80 12,111
FIGURA 15. TANQUE ELEVADO, CON AGUA A 2.5 M, EL CUAL PROVOCA LA GRAVEDAD Y LA PRESIÓN EN LAS CINTAS DE RIEGO POR GOTEO LES. CICLO 2006-07.
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Riego por goteo tradicional El riego por goteo se desarrolló en muchas partes del
mundo como una forma de ahorrar agua, pero su aceptación y crecimiento comercial sucedió hasta que se desarrollaron las tuberías de polietileno, inicia en la época de los 60´s y se desarrolla en las regiones áridas, los agricultores se dieron cuenta que podían incrementar el rendimiento y bajar la cantidad de agua aplicada. En la época de los 80´s se introdujo a la jardinería con bastante éxito. A medida que se ha avanzado se han tenido problemas en la calidad de los productos, el diseño y en las instalaciones (Benami y Ofen 1983).
Actualmente el riego por goteo está siendo utilizado
extensivamente en la agricultura y en la jardinería. Dentro de los beneficios se encuentra el bajo volumen de aplicación de agua, alta uniformidad en la aplicación, control del medio ambiente en la zona de las raíces, mejor control de enfermedades, instalación en terrenos con problemas de topografía, adaptable a suelos problemáticos, conservación del agua, eficiente aplicación química, mayor tolerancia a la salinidad, conservación y ahorro de energía, incremento del crecimiento de la planta y mejoramiento en la calidad de las cosechas.
Los productores están buscando herramientas que
les permitan incrementar la eficiencia de la aplicación de los nutrientes y el agua. La fertigación con el riego por goteo puede proporcionar a los productores un sistema que logre mejorar el manejo de nutrientes y una mayor productividad de sus campos. En Florida, Estados Unidos de América se recomiendan las aplicaciones antes de la siembra de todo el fósforo y micronutrientes, así mismo aplicar el 20 y 40% del nitrógeno y potasio, respectivamente y el resto de la dosis es inyectada a través del sistema de riego (Hochmuth et al., 1995 y Clark et al., 1995).
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Cabrera y Padilla (2005) evaluaron en campo de productor cooperante, el efecto de siembra en bordos y en plano sobre el rendimiento de frijol y el comportamiento de la humedad en el suelo bajo riego por goteo, además de determinar, en la práctica, la funcionalidad de la cortadora-enchorizadora-sembradora de frijol en ambos métodos de siembra. El análisis de los datos mostró que es indistinto sembrar en bordo o en plano, ya que el rendimiento medio fue 2,738 versus 2,489 kg/ha, respectivamente. Con respecto al contenido de humedad en el suelo, el seguimiento de éste indicó que en bordos fue mayor su contenido que en plano en dos profundidades (0-15 y 15-30 cm), en todo el periodo del 18 de noviembre 2004 al 3 de enero del 2005, lo cual es congruente con la mayor lámina de agua aplicada (32.4 cm en bordo vs 24 cm en plano). Es posible que esto marque la pequeña diferencia en el rendimiento que hay entre tratamientos. Hasta aquí el método de siembra en plano muestra ventajas sobre el método siembra en bordos, ya que se utilizó menos lámina, así como el costo requerido para hacer los bordos, porque además se observó en campo que la máquina cortadora-enchorizadora-sembradora funcionó adecuadamente en ambos métodos de siembra.
En otro estudio similar Cabrera y Padilla (2007)
evaluaron la siembra en bordos y en plano de frijol a nivel comercial bajo riego por goteo en tres líneas avanzadas de frijol claro provenientes del Programa de Mejoramiento Genético de frijol del Campo Experimental Valle del Fuerte (Mo 94/95 1039, Mo 94/95 1041 y Mo 94/95 784), una variedad de frijol alubia (Aluyori) y con dos testigos (Azufrado Higuera y Azufrado Peruano 87). La separación de líneas regantes fue de 1.8 m en suelo franco. Los resultados indicaron que es factible establecer el cultivo de frijol con maquinaria convencional en “camas” o en plano a 1.9 m de separación, a doble hilera con 60 cm de distancia entre ellas. En la Figura 16 se observa que en “cama” o bordo, se tuvo 1983 kg/ha, en tanto que en plano rindió 1.789 kg/ha. Ambos tratamientos tuvieron menor rendimiento que el productor, el
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cual fue de 2.808 kg/ha y mostró diferencia respecto a siembra en bordo y plano con riego por goteo. El tamaño de grano tuvo similar tendencia al rendimiento (Figura 17) y mostró diferencia estadística respecto a siembra en bordo y plano con riego por goteo. La diferencia puede explicarse por dos eventos determinantes: 1) La fecha de siembra del productor fue el 5 de octubre y en riego por goteo fue el 18 de octubre. 2) Hubo ocurrencia de helada el día 21 de enero con temperaturas de 0.5 °C a los 94 días de la siembra y por el diferencial en fecha de siembra se afectó el estrato fructificado superior en el frijol con riego por goteo, mientras que en siembra tradicional solo fue afectado el tercio superior dado su desarrollo más avanzado. Como producto del sistema diferente de aplicar el agua de riego, en gravedad se aplicaron 60 cm y en goteo 35 cm. En cuanto a las variedades, hubo significancia estadística y también para la interacción. Esta diferencia se debió a la línea Mo 94/95 1041 la cual rindió 1.719 ton/ha. El resto de los genotipos fueron iguales con producciones de 1.981 en Azufrado Higuera y 1.864 ton/ha en Azufrado Peruano 87. La interacción se encontró en la variedad Aluyori, la cual mostró mejor comportamiento sembrada en plano.
FIGURA 16. RENDIMIENTO DE FRIJOL EN DIFERENTES SISTEMAS DE SIEMBRA CON RIEGO POR GOTEO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
0
500
1,000
1,500
2,000
2,500
3,000
CAMAS PLANO TRADICIONAL
KG
/HA
MÉTODO DE SIEMBRA
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FIGURA 17. EFECTO DEL SISTEMA DE SIEMBRA EN RIEGO POR
GOTEO SOBRE EL TAMAÑO DEL GRANO DE FRIJOL. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
MANEJO DE PLAGAS INSECTILES Y ROEDORES Medidas de control de poblaciones de insectos plaga y roedores
Las plagas son responsables en alto grado de
mermas en el rendimiento y el manejo que se les dé es determinante para lograr una buena producción. Es frecuente encontrar dos tipos de daño: el directo, ocasionado por insectos masticadores, y el indirecto, causado por insectos chupadores, que transmiten principalmente enfermedades de tipo viral.
El éxito en el manejo de las plagas está en función de
la oportunidad y secuencia en que se utilicen las diferentes medidas de control. Un buen inicio de un programa de manejo integrado de plagas es ajustarse a las fechas de siembra sugeridas y mantener libre de malezas al cultivo, bordos y canales, para eliminar las primeras infestaciones de insectos posibles transmisores de enfermedades, igualmente
39
40
41
42
43
44
45
CAMAS PLANO PRODUCTOR
GR
AN
OS
/10
0 G
RA
MO
S
MÉTODO DE SIEMBRA
60
importante es monitorear las principales plagas del cultivo, con el objeto de determinar el momento de realizar las acciones de control. El uso de insecticidas debe integrarse a estas medidas, respetando la época de aplicación, dosis, días a cosecha y registro del uso del producto en el cultivo.
Las plagas que se encuentran presentes en este
cultivo en sonora y en orden cronológico con el desarrollo del mismo son: gallina ciega Phyllophaga spp, gusanos trozadores Agrotis ipsilon (Hufnagel) y Feltia subterranea (Fabricius), conchilla prieta Blapstinus sp, grillo de campo Acheta assimilis, gusano saltarin Elasmopalpus lignosellus (Zeller), chrysomelidos o doradillas Diabrotica balteata, LeConte, Diabrotica variegata Jacoby, cerotoma del pacífico Cerotoma dilatipes, Jacoby, escarabajo rayado del pepino Acalymma vittata Fabricius y Lema sp, trips Caliothrips (= Hercothrips) phaseoli Hood, pulgones Myzus persicae (Sulzer), Aphis fabae, Acyrthosiphum dirodum, y A. pisum (Harris), mosquita minadora de la hoja Liriomyza sp, mosquita blanca Bemisia argentifolii Bellows & Perring y Bemisia tabaci Gennadius, chicharrita Empoasca fabae (Harris) chinches apestosas Nezara viridula (L) y Euschistus servus (Say), gusano falso medidor Trichoplusia ni (Hubner) gusano de la vaina, Heliothis zea (Boddie) y Heliothis virescens (Fabricius) y roedores (rata de campo) Rattus norvegicus, Berkenhout, R. rattus L., Sigmodon arizonae Mayor y Lyomis pictus Genoways.
Plagas del suelo. Estas plagas se deben tratar de
una manera preventiva con aplicaciones de pre-siembra o durante la siembra si existe un problema. Los tratamientos después de la siembra generalmente no son efectivos excepto en el caso de los cebos para los gusanos trozadores. Una buena preparación del terreno y una recolección de los residuos de cosecha del cultivo anterior, ayuda a disminuir los ataques de esta plaga. Las especies Feltia spp. y Elasmopalpus lignosellus son insectos que cortan el cuello de la planta recién emergida.
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Gallina ciega, Phyllophaga spp. Se conocen muchos géneros asociados a diferentes cultivos especialmente en las condiciones de clima frío. Las larvas son de color blanco con tres pares de patas predominantes, la larva tiende a adoptar una forma de “C”, la cabeza es de color marrón, las mandíbulas negras y fuertes. Ocasiona daños en estado de larva, como trozador de plántulas y raíces. Los adultos de dicho género, presentan una alta preferencia para el consumo de follaje tierno de plantas (Nanclares y Ramírez, 1992, citados por Arias y Guzmán, 2001). Para determinar la presencia de esta plaga en el suelo se debe hacer un muestreo de campo. El número de muestras es 5 por hectárea al azar. Cada muestra debe tener 30 x 30 x 30 cm. de profundidad. El nivel crítico para gallina ciega es de 0.50 larvas medianas, ó 0.25 larvas grandes por muestra.
En el estado de Sonora, se ha observado que una
sola larva es capaz de trozar más de 10 plantas por metro lineal de surco (considerando el surcado de la plantación a 80 cm de separación) en el ciclo agrícola, de tal forma que una infestación de una larva por metro cuadrado (Figura 18) es suficiente para destruir la mitad de la cantidad inicial de plantas obligando al agricultor a resembrar, lo que representa una pérdida de aproximadamente el 12 % de un costo estimado de $20,000 de producción por hectárea.
FIGURA 18. LARVA Y DAÑO DE GALLINA CIEGA EN FRIJOL. CEVY-
CIRNO-INIFAP, 2009.
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El control etológico, se realiza mediante la utilización de lámparas trampa de luz negra (luz ultravioleta) o mechones de diesel encendidos en los alrededores de los campos de frijol. Con este método se logra atraer gran cantidad de adultos (escarabajos) que son los que depositan los huevecillos, disminuyendo la cantidad de larvas en el futuro.
Gusanos trozadores, Agrotis ípsilon, Feltia
subterránea y otras especies. Las hembras ponen cientos de huevecillos en forma individual o en masas (dependiendo de la especie) cerca del suelo, sobre las hojas o tallos. Después de eclosionar, las larvas jóvenes se alimentan de la superficie de las hojas durante un período corto, pero las larvas más viejas bajan al suelo, hacen túneles y por las noches salen a alimentarse. Cuando se les molesta, las larvas tienden a enroscarse como formando una letra C. Las larvas de A. ípsilon (Figura 19), miden entre 30 y 45 mm de largo por 7 mm de ancho. La cabeza es de color castaño rojizo. La piel es de color gris casi negro de aspecto grasiento. En el lado ventral y lateral tienen adornos pálidos. En la línea media dorsal lleva una franja más clara que el resto del cuerpo. Las larvas se curvan sobre un costado de su cuerpo, actitud típica en esta especie.
FIGURA 19. LARVA Y ADULTO DE A. ípsilon. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Las larvas de F. subterránea (Figura 20), son de color
pardo gris usualmente con dos bandas claras sobre el dorso
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y marcas en forma de “v” de color más claro, tegumento de textura áspera con gránulos cónicos, cubiertos por minúsculos tubérculos inclinados.
FIGURA 20. LARVA Y ADULTO DE F. subterranea. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Las larvas consumen las raíces, cortan el cuello de la
planta y consumen hojas tiernas, se les considera en el grupo de los "gusanos cortadores", especialmente perjudiciales en plantas jóvenes. Al terminar de comer una planta se traslada a la planta más cercana, atacan a plantas pequeñas de 5 a 15 cm de altura. Generalmente se ubican en focos (zonas localizadas dentro del predio agrícola) y causan pérdidas altas al trozar o cortar las plantas de frijol si no se les detecta oportunamente. Los gusanos trozadores hacen el daño en horas de la noche y se pueden localizar escarbando el suelo junto a la base de la planta cortada. Es importante su detección temprana sobre todo durante las labores previas a la siembra, para un control oportuno.
Durante la emergencia, cuando las plantas son
atacadas por los trozadores, se observa un marchitamiento y muerte repentina de la planta. El daño se distingue del causado por hongos porque en la raíz o tallo se observa la superficie roída o cortada por estos insectos, mientras que en los daños causados por hongos, se observan manchas o lesiones de color marrón o rojizo a lo largo de los tallos y en las raíces.
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El control químico se recomienda hacerlo de preferencia por la tarde o noche, debido a que es cuando estos insectos tienen mayor actividad alimenticia y están ligeramente más expuestos a los insecticidas cuando estos se desplazan de una planta a otra.
Conchilla prieta, Blapstinus sp. Esta plaga se
encuentra en pequeños focos de infestación durante la postemergencia de las plantas en las orillas de los campos. Tanto los adultos como las larvas (Figura 21) se encuentran enterrados y trozan las plantitas en su base. Los adultos son escarabajos negros de unos 6 mm de largo; a las larvas se les llama “falsos gusanos de alambre” y son muy delgadas, duras y de color amarillo brillante con las patas muy chicas y miden 1.5 cm de largo.
FIGURA 21. ADULTOS Y LARVA DE Blapstinus sp. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Esta plaga es difícil de controlar con aplicaciones al
follaje por encontrarse enterrada o dentro del tallo de la planta. En caso de infestaciones severas se recomienda primeramente aplicaciones de insecticidas en tratamiento a la semilla o bien aplicaciones de insecticidas de acción de contacto y estomacal dirigidas a los focos de infestación.
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Grillo de campo o grillo común, Acheta assimilis (Fabricius). Esta plaga (Figura 22), se puede presentar en campos colindantes con áreas baldías o drenes enhierbados. Los grillos son de hábito nocturno y durante el día permanecen en las grietas del suelo. Las hembras ovipositan en las grietas del terreno. Los huevecillos son de color blanco cremoso, en forma de plátano, de 2 mm de largo y son puestos en grupos en agujeros bajo la superficie del suelo o bajo los terrones, La ninfa es de color pardo a negra, pasan por ocho estadios y el adulto es de color gris oscuro a negro profundo de unos 20 a 25 mm de largo. Los daños los causan tanto adultos como ninfas, al comer el follaje y raíces de plantas jóvenes y plántulas al nivel de las hojas cotiledonales o del punto de crecimiento.
FIGURA 22. ASPECTO DE UN ADULTO DE GRILLO DE CAMPO. CEVY-
CIRNO-INIFAP, 2009.
Control. Cebos envenenados con salvado y
distribuidos a voleo entre el cultivo en la tarde. El uso de cebo para el control de plagas es una
herramienta importante en cultivos recién emergidos (en estado de plántula) que son atacados por plagas nocturnas o trozadores, para las cuales es difícil el control con la aplicación de insecticidas líquidos.
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Fórmula
• 10 Kg de aserrín o salvado • 3 Kg de azúcar o un cuarto de litro de extracto de vainilla • 3 – 5 Litros de agua • 150 gramos de Lannate 90 WP
Los 3.0 kg de azúcar o la vainilla se disuelven en los
3 o 5 litros de agua y luego se le agregan los 150 gramos de Lannate 90 WP. Después se mezcla esta solución con el aserrín o salvado. Se debe realizar una buena distribución de la solución para lograr tener buena homogeneidad del cebo. Si el medio que se está usando (aserrín o salvado) no se humedece bien, en la siguiente mezcla se puede aumentar el volumen de agua que se utilice. Esta mezcla es suficiente para tratar una hectárea.
Los cebos se deben esparcir cerca de las plantas en
las tardes si no se esperan lluvias. Gusano saltarín Elasmopalpus lignosellus. Esta
plaga se puede presentar en focos de infestación durante la postemergencia de las plantas. Las larvas siempre se encuentran bajo tierra en túneles de seda o barrenando los tallitos a la altura del nudo de la raíz (a nivel del suelo), debido a esto las plantitas se secan de un día para otro. Los gusanos son muy característicos, miden hasta 2.5 cm de largo, son muy delgados y tienen la apariencia de culebritas de coralillo (Figura 23), ya que son de color rojizo con anillos verdosos. Cuando se les disturba (molesta) se mueven nerviosamente.
Prefiere plantas muy jóvenes a los brotes nuevos de
las plantas para poner sus huevecillos y alimentar a sus larvas. Las plantas son atacadas cuando miden unos 10 a 12 cm de altura, con solo 2 hojas verdaderas desarrolladas, y el tallo mide de 5 a 6 mm de diámetro.
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El daño comienza por flacidez de las hojas que continúa como un “adormecimiento” de las plantas, las cuales al final se caen a un lado. El daño se distribuye en forma irregular en la plantación, aun cuando pueden observarse grupos de dos o tres plantas vecinas dañadas. Al examinar las plantas se observa un orificio lateral de unos cinco mm de diámetro en la base del tallo por el cual se asoma la larva al ser molestada. Al abrir el tallo longitudinalmente se observa el túnel perforado por la larva, el cual va de la base de la planta hasta cerca del sitio de unión de los peciolos.
Los adultos (Figura 23), no causan daño a la planta.
FIGURA 22. LARVA DE GUSANO SALTARÍN. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
FIGURA 23. ADULTOS DE GUSANO SALTARÍN. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Chrysomelidos o doradillas. Diabrotica balteata y
Diabrotica variegata (Figuras 24, a y b, respectivamente) y
Cerotoma dilatipes (Figura 24, c), Acalymma vittata (Figura
25, a) y Lema sp (Figura 25, b). Por ser especies muy
similares en cuanto a hábitos y daños que ocasionan al
cultivo, solo se describirá a D. balteata. El adulto de esta
especie (Figura 24, a), mide unos 6 milímetros de largo, es
de color verde claro con bandas amarillentas transversales
en los élitros. Ocasionalmente se presenta en infestaciones
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altas, causando daño al frijol antes de floración. El daño se
manifiesta como orificios de diversos tamaños. Cuando las
plantas son chicas pueden destruirlas completamente. En
infestaciones muy fuertes, ataca flores y vainas tiernas. Los
adultos migran al frijol de plantas cultivadas o silvestres que
crecen en los alrededores o también pueden proceder de
larvas y pupas que viven en el suelo donde se siembra frijol,
maíz o tomate continuamente. Se presentan en gran
abundancia durante los primeros 15 días de emergido el
cultivo y permanecen alimentándose del follaje hasta un
poco antes de la cosecha. Cuando el daño ocurre durante el
proceso de germinación, los cotiledones al abrirse presentan
perforaciones parecidas a las causadas por los adultos; las
plantas dañadas se atrofian y se atrasan en su crecimiento.
Si el daño ocurre muy temprano la planta puede morir y si la
parte afectada es la raíz de las plantas ya germinadas, las
hojas basales toman un color amarillo y el desarrollo se
retrasa considerablemente. Algunos de estos síntomas se
pueden confundir como debidos a mala calidad de la semilla.
También ocasiona daño indirecto al transmitir los virus del
mosaico rugoso y del mosaico sureño. Se considera que una
población de cuatro o más insectos por metro lineal, en
planta chica (10 a 15 cm), es el umbral económico de esta
plaga.
(a) (b) (c)
FIGURA 24. (a) ADULTO DE D. balteata, (b), D. variegata y (c), ADULTO DE Cerotoma spp. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
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Solo se justifica su control cuando se observen cuatro adultos por planta de frijol en la primera semana de edad del cultivo o durante la floración, en cuyo caso se recomienda la aspersión de insecticidas. En otros estados de desarrollo, las plantas de frijol se recuperan del ataque, por lo que no se justifica el control químico.
(a) (b)
FIGURA 25. Adulto de Acalymma vittata (a) y Adulto de Lema sp. (b) CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Trips. Caliothrips (= Hercothrips) phaseoli. Los
trips (Figura 26), son insectos muy pequeños. Los adultos miden de 1 a 2 mm, la hembra es de color marrón oscuro, el borde anterior de la cabeza amarilla, tarso y ápices de las tibias amarillo; segmentos antenales III-V de color amarillo con sombra marrón apical; las alas anteriores de color café, con 3 bandas blancas transversales sub-apical, medial y sub-basal, la mediana, pero a veces débil. Son de gran movilidad. Viven principalmente en el envés de la hoja, pero también se localizan en el haz. Chupan la savia de las plantas, dañando las hojas. Los huevecillos son insertados en los tejidos del envés de las hojas; las ninfas raspan y chupan las hojas produciendo cicatrices que en su conjunto le dan a la hoja un aspecto cenizo. Posteriormente las hojas muy atacadas se tornan color cobrizo y después se acartonan, pudiendo ocasionar la defoliación prematura de la planta. Las mayores poblaciones de adultos se presentan en verano y se localizan a lo largo de las nervaduras de las
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hojas del primer tercio (inferior) de las plantas de frijol, Pueden atacar a la planta desde los primeros estados de desarrollo del cultivo. Además de atacar a las hojas, también atacan a las flores y a las vainas causando raspaduras que se necrosan dando una apariencia marrón o parda a las partes afectadas. El daño se puede reflejar en una considerable merma en el rendimiento.
FIGURA 26. ADULTO DE TRIPS Y DAÑO EN EL FOLLAJE. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Se sugiere el control químico cuando se detecten
más de cinco adultos por planta y se observen las hojas inferiores con aspecto cenizo. El muestreo es determinante para hacer una aplicación anillada en lugar de una total
Mosquita blanca. Bemisia argentifolii y Bemisia
tabaci. Esta plaga (Figura 27), se ha convertido en los últimos años en la plaga de mayor importancia económica del frijol; su mayor peligro radica en la trasmisión de los geminivirus (Begomovirus) y en especial el “mosaico dorado” (BGYMV Bean Golden Yellow Mosaic Virus y BGMV Bean Golden Mosaic Virus.) ((Lardizaval et al., 2008).
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FIGURA 27. MOSQUITA BLANCA Bemisia sp. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Esta enfermedad está ampliamente distribuida en
America tropical y subtropical. Causa importantes pérdidas en rendimiento en variedades susceptibles. El síntoma foliar consiste en un mosaico intenso, en que alternan áreas de color verde con áreas de color amarillo intenso, que pueden llegar a cubrir toda la hoja. El virus pertenece al subgrupo lll del género Geminivirus (nombre propuesto: Bigeminivirus). Es transmitido en forma persistente propagativa por la mosca blanca Bemisia tabaci. No se transmite por semilla. Su ámbito de hospedantes se limita a unas pocas especies de leguminosas y a una malvácea. Los adultos de este insecto colonizan las partes jóvenes de la planta, realizando las posturas en el envés de la hoja, de donde emergen las primeras ninfas que son móviles. Tras fijarse en la planta pasan por tres estadios ninfales y uno de pupa. Los daños directos como amarillamiento y debilitamiento de la planta son ocasionados por ninfas y adultos al alimentarse
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absorbiendo la savia de las hojas. Los daños indirectos se deben a la formación de fumagina sobre la melaza que producen al alimentarse, manchando y dañando los frutos, así como dificultando el desarrollo normal de las plantas. El combate se basa en el uso de variedades resistentes y en la siembra en áreas libres o con baja población del vector. El combate del vector con insecticidas adecuados ha permitido reducir la incidencia de geminivirus en cultivos como el tomate, pero su uso no siempre es rentable en frijol. Temik 15 g (Cuadro 28), es un insecticida ampliamente utilizado en esta región para el control de mosquita blanca
CUADRO 28. EFECTO DE LA APLICACIÓN DE TEMIK SOBRE
EL RENDIMIENTO DE FRIJOL EN EL VALLE DEL MAYO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
TRATAMIENTO FORMA DE APLICACION RENDIMIENTO
KG/Ha
7+4 kg /Ha Fraccionado en la siembra y en
el primer riego de auxilio. 3.216
7 kg/Ha En la siembra. 3.117
5 kg/Ha En la siembra. 2.879
7 kg/Ha En el 1er riego de auxilio. 2.852
Sin aplicar 2.747
Las mayores poblaciones de este insecto ocurren durante el verano (junio-agosto) y decrecen en el invierno (a partir de octubre), por lo cual las fechas de siembra son determinantes para reducir riesgos de daño por mosquita blanca. Se considera que siembras muy tempranas (septiembre) o muy tardías (finales de octubre) son las más afectadas. En general, las siembras de la tercera decena de octubre son las más apropiadas para disminuir los riesgos mencionados. Cuando se requieren aplicaciones de insecticidas debe considerarse la etapa fenológica en que se encuentra el cultivo. Los muestreos y aplicaciones deberán realizarse antes de las 8:00 a.m. o bien durante la tarde,
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debido a la actividad de vuelo de la plaga. Los adultos de mosca blanca miden 1.5 milímetros, son de color blanco-amarillento; se les encuentra en el envés de las hojas y cuando se les disturba vuelan rápidamente. Ellos ovipositan cientos de huevecillos en el envés de las hojas; las ninfas son aplanadas y al nacer se pegan a las hojas succionando la savia y produciendo mucha excreta melosa en donde se desarrolla un hongo denominado fumagina lo que da una coloración negruzca a las plantas. Como el control químico es difícil y costoso, antes de aplicar insecticidas se debe hacer una buena evaluación de los niveles de plaga y estimar sus posibles daños económicos. Se ha encontrado que la aplicación de soluciones jabonosas ayuda al control de la plaga con un menor costo, pero las aplicaciones deben hacerse con pulverizadores que garanticen una buena cobertura. La solución jabonosa actúa sobre la ligera capa cerosa que protege el cuerpo de la plaga y al exponerla al sol, provoca su deshidratación y muerte.
Aplicaciones de 2 kg de detergente foca disueltos en
200 litros de agua por hectárea han resultado en un control superior al 85% de adultos de mosquita blanca.
Áfidos o pulgones. En el sur de Sonora se
identificaron 7 especies de áfidos posibles transmisores de enfermedades virales en este cultivo: Myzus persicae, Aphis citrícola, Macrosiphum euphorbiae, Acyrthosiphon dirhodum, A. pisum, Ropalosiphum maidis y Macrosiphum avenae.
Debido a que las hembras no necesitan aparearse
con el macho para reproducirse, en pocos días se observan poblaciones muy altas que se localizan en el envés de las hojas formando colonias. En una colonia se pueden encontrar áfidos sin alas o con alas; estos últimos son los que transmiten el virus del mosaico común del frijol de una planta a otra. Aunque las poblaciones de áfidos sean muy bajas, su capacidad de transmitir el virus es muy alta.
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Myzus persicae. Este insecto (Figura 28), tiene una gran diversidad de hospedantes cultivadas y silvestres entre las que se encuentran hortalizas solanáceas como el chile, el tomate y la papa, crucíferas como la colza o mostaza y malváceas como la malva, entre otras familias de plantas. De estas, los pulgones migran al frijol. El daño directo ocasionado por los áfidos es insignificante, pero su habilidad para transmitir el virus del mosaico común del frijol los convierte en una plaga económicamente importante. Este virus es el patógeno más importante de este cultivo, debido a que puede ser transmitido en un alto porcentaje, mecánicamente, por la semilla, y por varias especies de áfidos en el campo. De acuerdo con la variedad de frijol, la cepa o el variante del virus y la época de infección, un promedio de un 35 % de las semillas producidas por una planta infectada antes de la floración da origen a plantas enfermas. La transmisión secundaria del virus puede ser efectuada por un áfido vector en el lapso de un minuto, antes de que un insecticida pueda atacar al insecto. (Cardona, et al., citados por Chaparro, 1982). Las especies más importantes en la transmisión de esta enfermedad son Myzus persicae y Aphis gossypii, entre otras. Este insecto se puede encontrar desde la emergencia de la planta por el envés de las hojas cotiledonales y hojas trifoliadas hasta floración.
FIGURA 28. NINFAS DE Myzus persicae. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
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Mosaico común del frijol. El potyvirus del mosaico común del frijol ataca solamente a leguminosas, y principalmente al género Phaseolus. En frijol común los síntomas incluyen un mosaico con alternancia de áreas verde claro y verde oscuro, con algo de arrugamiento. En algunas combinaciones hospedante–patógeno puede darse necrosis del tejido. El virus puede causar severas reducciones de la cosecha, sobre todo cuando es portado en la semilla. Es transmitido por más de 30 especies de áfidos (insectos chupadores) en forma no persistente. Al alimentarse en plantas enfermas los áfidos adquieren el virus y lo transmiten a plantas sanas en pocos segundos. Solo unas pocas plantas enfermas al inicio del cultivo son suficientes para que los áfidos infecten las restantes (Arias y Guzmán, 2001). La principal fuente de inóculo es la semilla infectada. Para el combate se ha recomendado el uso de semilla certificada y de variedades resistentes. El combate químico del vector no es eficaz para combatir al virus. Sin embargo, se recomienda combatirlo cuando se encuentren dos o más insectos por folíolo (Cuadro 28).
Mosquita minadora de la hoja, Liriomyza trifolii.
Pertenece al orden Díptera, familia Agromycidae. El daño por minador de las hojas (Figura 29) se
reconoce porque las pequeñas larvas (gusanitos) forman túneles serpenteados en las hojas a lo largo de las nervaduras principales y secundarias. Es común encontrar en los túneles presentes en las nervaduras, las pupas del minador. El ataque se inicia en las hojas inferiores o más viejas y puede alcanzar la parte superior de la plántula (Tamayo y Londoño, 2001).
Los ataques por el minador del género Liriomyza se
confunden con los causados por la antracnosis. Es muy importante diferenciar los daños por el insecto y la enfermedad. Los ataques por las larvas del minador se
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localizan a lo largo de las nervaduras, éstas son de colores rojo claro y transparentes cuando se observan a trasluz, similares a los síntomas causados por la antracnosis aunque este último ocasiona lesiones de color rojo fuerte en las nervaduras y no son transparentes.
FIGURA 29. ADULTO Y DAÑO DE MINADOR DE LA HOJA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Chicharrita del frijol, Empoasca fabae. El ciclo
biológico, comienza por la puesta de los huevecillos que realizan las hembras insertando éstos en el interior de los tejidos de la planta, principalmente en las nervaduras más tiernas por el envés de las hojas. En estas condiciones los huevecillos son muy difíciles de localizar, se reconocen, porque la zona donde se alojan se vuelve más oscura¸ estos tienen un color blanquecino, son alargados y tienen 1 mm de longitud. De los huevecillos emergen ninfas que son pequeñas de colores verde pálido, muy semejantes a los adultos (Figura 30), pero carecen de alas y se caracterizan por la capacidad de moverse de lado con mucha rapidez. Los adultos son de color verde de aproximadamente 3 mm de largo, con la cabeza más ancha que el cuerpo, lo que le confiere forma triangular (Murguido, 1995).
Este insecto es importante porque puede atacar en
cualquier fase fenológica del cultivo y su incidencia causa mermas considerables en los rendimientos y a veces pérdidas totales. Bajo las condiciones climáticas del sur de
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sonora, se presentan regularmente desde la emergencia de la planta hasta el inicio de floración, principalmente cuando existen condiciones de altas temperaturas y de sequía. En infestaciones fuertes, los adultos se encuentran en cualquier parte del follaje; las ninfas se localizan preferentemente en el envés de las hojas y en mayor cantidad en la parte baja y media de la planta (Rodríguez et al., 1996). Las plantas atacadas no se desarrollan normalmente, presentan deformación y enroscamiento de las hojas hacia abajo; amarillamiento de los bordes de las hojas; deformación de las vainas; achaparramiento en general de la planta y pérdidas sustanciales de la producción. El combate deberá realizarse al encontrar tres ninfas o adultos por hoja trifoliada (Valenzuela y Armenta, 1987).
FIGURA 30. ASPECTO DE ADULTOS DE CHICHARRITA EMPOASCA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Chinches apestosas. Nezara viridula y Euschistus
servus Nezara viridula (Hemíptera) (chinche apestosa Verde)
es una chinche fitófaga y polífaga que ataca numerosos cultivos, entre ellos el frijol. Su ataque ocurre a lo largo de todo el ciclo fenológico del cultivo, pero su mayor peligrosidad es durante la etapa reproductiva cuando los granos comienzan a llenarse. En este período, la densidad
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de chinche tolerada es de 0.5 chinches/m lineal mientras que en la etapa vegetativa es de 2 chinches/ m lineal.
Ciclo de vida. Las hembras pueden volar hasta 1000
metros por día en busca de un lugar donde ovipositar (Todd, 1989). Los huevecillos son en forma de barril (Figura 31, a), de 1 mm de alto, de color amarillo cremoso y se vuelven rosado-naranja. Son puestos en grupos de 20 a 200 sobre la superficie de la hoja, a menudo en un paquete más o menos hexagonal y tardan unos cinco días en eclosionar (King y Saunders, 1984).
La chinche verde se desarrolla a través de cinco
estadios ninfales. Las ninfas, de primer estadio son gregarias y aparentemente no se alimentan (Todd, 1989). Tienen un cuerpo globular, la cabeza y el tórax negro y el abdomen rojo. El segundo y tercer estadios son negros con manchas rojas y blancas en el abdomen. El cuarto y quinto estadios (Figura 31 b), son verdes con marcas blancas, negras y rojas. Tarda de unos 25 a 40 días en pasar por los cinco estadios. El adulto (Figura 31, c), es de color verde brillante por encima, más pálido por debajo. Tiene forma de escudo. Vuela haciendo un ruido característico. Libera un olor punzante cuando es molestado. La oviposición comienza cinco días después de la última muda (King y Saunders, 1984).
a) (b) (c)
FIGURA 31. (A) HUEVOS, (B) NINFA Y (C) ADULTO DE N. viridula. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
79
Euschistus servus. (chinche apestosa café) El adulto (Figura 32, b) es color café y mide de 10 a 15 milímetros de largo y se caracteriza por el mal olor que despide. Los huevecillos son depositados en masa y tienen forma de balero (Figura 32, a), son de un tono amarillo cristalino y cuando van a eclosionar se tornan en un tinte rosáceo. Las ninfas pasan por estadios de color variable, tales como café claro, negro con café y verde con manchas café. Cada hembra deposita unos 60 huevecillos en grupos de 17.6 en promedio en un período de 107 días. Los cincos instares ninfales requieren de 29 días. Los adultos se alimentan de flores y vainas en formación e inyectan substancias tóxicas que provocan la caída de flores, avanamiento, manchado y malformación del grano. Se sugiere el control químico a inicio de la infestación a partir de la etapa de floración.
(a) (b) (b)
FIGURA 32. (a) HUEVOS Y (b), ADULTOS DE E. servus. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Daño. Los adultos y las ninfas son encontrados
usualmente sobre las porciones de las plantas donde se encuentran frutos inmaduros (Todd, 1989). Estos chupan la savia de la fruta en desarrollo, inyectando una saliva tóxica que causa necrosis local, pudrición y marchitez (King y Saunders, 1984). Al introducir su estilete, remueven el contenido celular, causando malformación o caída de los frutos y semillas (Panizzi, 1997).
80
Los daños de chinches se traducen generalmente en
pérdidas de rendimiento por disminución de vainas, del
número de granos o del peso de los granos. Adicionalmente
los daños inciden afectando distintos parámetros de calidad
de semilla o un efecto fisiológico negativo conocido como
“retención foliar”, lo cual dificulta la maduración y por ende la
cosecha de frijol.
Control. Es importante tener en cuenta que estos
insectos suelen iniciar los ataques y establecer infestaciones
iníciales en los bordes y cabeceras de los lotes, lo cual
facilita el control localizado de la plaga. Para la evaluación
poblacional se recomienda golpear las plantas hacia la mitad
del camellón y si cae una o más chinches por cada metro de
surco se sugieren insecticidas para su control.
Lepidópteros. Los lepidópteros son insectos que se
alimentan de las hojas al igual que los crisomélidos y otras
especies defoliadoras, sin embargo, el frijol al igual que la
gran mayoría de los cultivos pueden tolerar un nivel alto de
defoliación mientras están produciendo hojas nuevas
continuamente. La pérdida del área de hojas en el cultivo de
frijol se hace más perjudicial en la primera semana de edad
de la planta y al final de la etapa vegetativa, aunque la
defoliación en las etapas tardías del desarrollo del grano no
tiene gran efecto sobre el rendimiento.
Gusano falso medidor Trichoplusia ni. Es de color
verde claro (Figura 33, a) y posee una línea verde o crema a
cada lado del cuerpo. Al caminar sobre las hojas o tallos
dobla la parte media del cuerpo, con lo cual semeja estar
midiendo el trayecto con su cuerpo. Generalmente perforan
las hojas y se considera que solo son importantes cuando
producen defoliaciones superiores al 30 % del tejido
(Tamayo y Londoño, 2001).
81
(a) (b)
FIGURA 33. (A) LARVAS Y (B), ADULTOS DE ADULTOS DE T. ni. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Gusano de la vaina, Heliothis zea y H. virescens.
Los adultos de ambas especies (Figura 34, b y c), depositan sus huevecillos aisladamente y por lo general en el haz de las hojas terminales de la planta. Esta plaga no es común que se presente en infestaciones altas en esta región; sin embargo, pueden presentarse durante la época de formación de vainas debido a emigraciones del cultivo de garbanzo y de maíz. El daño es causado por las larvas (Figura 34, a), que se alimentan de hojas tiernas, flores y vainas; este último es el principal, ya que mordisquean las vainas y las perforan penetrando a estas para alimentarse de los granos en formación. Disminuyen considerablemente el rendimiento si no se le combate oportunamente.
(a)
(b) (c)
FIGURA 34. (a) Larva de Heliothis sp, (b) ADULTO DE H. virescens y (c) ADULTO DE H. zea. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
82
Picudo de la vaina (Apion godmani). Es uno de los insectos que debido a su pequeño tamaño, comúnmente pasan desapercibidos y no se les toma la debida importancia. Es importante que el técnico agrícola utilice la red entomológica para detectarlo con oportunidad y poderlo combatir adecuadamente Regularmente causa daños que se estiman sean del 10 al 15 %, principalmente en las vainas y granos en formación lo cual ya justifica sobradamente su control. Se hospeda en muchas especies vegetales silvestres y aparece en los campos de cultivo desde que las plantas tienen su tercera hoja trifoliada hasta la prefloración. Son de color negro grisáceo (Figura, 35), de aproximadamente 2.5 mm de largo, con pelos blancos escamosos sobre la superficie de su cuerpo y élitros estriados.
FIGURA 35. ADULTO DE Apion godmani. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Las hembras adultas perforan las vainas en
formación, depositando generalmente un huevecillo de aproximadamente 0.25 mm de tamaño, de color blanco transparente y forma ovalada, que eclosiona en 5 días. Tienen 3 instares larvales que desarrolla en 6 días; las larvas son apodas, de forma curvada, con 3.5 mm de largo y color blanco con la cabeza oscura. El estado prepupal tiene una duración de 2 días, el de pupa 9 días y 13 días después de este, los adultos emergen. El adulto puede permanecer cerca del capullo dentro de la vaina por varias semanas, con muy poca actividad.
El daño principal del picudo es causado por las larvas
en las vainas en formación, que pueden abortar y caer. Una
83
vez que inicia la formación de los granos en la vaina, las larvas producen perjuicios más significativos. Las larvas del segundo instar perforan el mesocarpio de la pared de la vaina y empiezan a destruir las semillas; generalmente se encuentra una larva en cada semilla, aunque en los casos de ataques severos se observan fácilmente hasta 5 en cada semilla y de 20 a 25 en cada vaina. Las vainas afectadas que contienen varias larvas en su interior, se deforman.
Las medidas de control de esta plaga pueden ser:
1. Control cultural. Tan pronto finalice la cosecha, se deberá incorporar en el suelo todos los residuos para eliminar las larvas, pupas, adultos y huevecillos que se hayan quedado al final del cultivo. Además, debe sembrarse a tiempo y evitar los cultivos escalonados.
2. Control químico. Una vez que el ejote se desarrolla en el
campo, es conveniente hacer muestreos periódicos cada 7 días para decidir qué, cuándo y cuanto aplicar. Los muestreos deben de iniciarse en la prefloración; mediante 50 golpes con red entomológica, cuando el resultado es un adulto por golpe de red se debe iniciar el control químico para minimizar los porcentajes de oviposición antes de la floración.
En el periodo de floración realizar un muestreo de
larvas y pupas, seleccionado una vaina por planta cada 5 metros en surco al azar, repitiendo cada 5 surcos. Cuando el resultado es una larva por cada 50 vainas, realizar dos aplicaciones químicas de Carbaryl o Metamidafós; la segunda aplicación 7 días después de la primera.
Roedores
Rata de campo: Sigmodon sp. Este roedor de
hábitos nocturnos, preferentemente de tipo gregario, se localiza en mayor cantidad cerca de drenes, canales y caminos, principalmente cuando éstos se encuentran
84
enmontados. En observaciones de campo, en el sur de Sonora, se ha estimado que esta plaga por si sola ha llegado a ocasionar pérdidas de alrededor del 30 % al alimentarse de las vainas en formación (Figura, 36) y destruir gran cantidad de tallos y plantas.
FIGURA 36. DAÑO DE RATA EN LA ETAPA DE LLENADO DEL GRANO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
Sigmodon hispidus, Rattus norvegicus, R. rattus.
Estas son las tres especies de rata de campo consideradas como plaga importante en los Valles del Mayo y Yaqui (Pacheco, 1985). Sin embargo en los últimos años (2007 al 2009), las Juntas Locales de Sanidad Vegetal del Sur de Sonora, han estado capturando en mayor población (Figura 37) las especies Sigmodon arizonae (Figura 38) y Lyomis pictus (Figura, 39).
El control de las ratas en el campo con venenos,
trampeo (Figura 39), y otros métodos no es una solución eficaz de largo plazo. La mejor medida es la prevención del crecimiento de las poblaciones; esto requiere una coordinación de toda el área.
En el Cuadro 29 se muestran las plagas más
comunes en frijol y los productos y dosis sugeridos para su control en el sur de Sonora
85
FIGURA 37. DINÁMICA DE POBLACIÓN DE RATA DE CAMPO EN EL MUNICIPIO DE HUATABAMPO, SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
FIGURA 38. RATA DE CAMPO, Sigmodon arizonae (FOTO DE BERNARDO PÉREZ LÓPEZ). CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
FIGURA 39. RATA DE CAMPO, Lyomis Pictus (FOTO DE BERNARDO PÉREZ LÓPEZ). CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
86
CUADRO 29. PRINCIPALES PLAGAS DEL FRIJOL Y MEDIDAS DE CONTROL EN EL SUR DE SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
PLAGA DAÑO PRODUCTO COMERCIAL DOSIS/HA ÉPOCA DE APLICACIÓN
Ga
llin
a c
ieg
a Se alimenta de raíces y
pelos absorbentes. Semevin 350 SC
(Thiodicarb) 2.5 L/100 kg de semilla
Al momento de la siembra Al encontrar una o más
larvas por metro cuadrado Al observar daño en planta,
lo mejor es fertilizar y adelantar el primer riego de auxilio.
Furadan 3 G (Carbofuran) 20 – 30 kg
Gu
sa
no
s
tro
za
do
res
Cortan las plántulas por su base Lorsban 480 EC
(Clorpyrifos) 1.5 - 2.0 L
Al observar el 10 % de plantas trozadas por metro lineal Aplicar cuando se observen grupos de plantas dañadas. Dirigir el control a los manchones, o bien si se encuentra más de un gusano Por metro lineal.
Tamaron 600 CE (Metamidofos)
1.5 – 2.0 L
Co
nc
hil
la
pri
eta
Trozan las plántulas por su base
Semevin 350 SC (Thiodicarb)
2.5 L/100 kg de semilla Al observar 2 o más plantas
trozadas por metro lineal de surco Lorsban 480 EC
(Clorpyrifos) 1.5 – 2.0 L
Tamaron 600 CE (Metamidofos)
1.5 – 2.0 L
Gri
llo
de
ca
mp
o
Comen el follaje y raíces de plantas jóvenes y plántulas al nivel de las hojas cotiledonales o del punto de crecimiento
Cebos envenenados
10 kg de aserrín o salvado + 3 kg de azúcar o un cuarto de L de extracto de vainilla + 3 a 5 L de agua + 150 gramos de Lannate 90 WP
Al encontrar 2 o más plantas trozadas por metro lineal y se encuentren grillos en las grietas del suelo.
Continúa Cuadro 25…
87
Continuación Cuadro 25…
PLAGA DAÑO PRODUCTO COMERCIAL DOSIS/HA ÉPOCA DE APLICACIÓN G
us
an
o
sa
lta
rín
Barrena los tallos de las plántulas a la altura del nudo de la raíz
Semevin 350 SC (Thiodicarb) 2.5 L / 100 kg de
semilla Preventivo en tratamiento a
la semilla o bien, al encontrar 2 o más plantas trozadas por metro lineal de surco
Lorsban 480 E (Chlorpyrifos) 1.5 – 20 L
Tamaron 600 CE (Metamidofos) 1.5 – 2.0 L
Dia
bró
tic
as
(Cri
so
mé
lid
os
)
Se alimentan del follaje, raíces y flores. Transmisión de enfermedades Perforan hojas, flores, brotes tiernos y vainas. Son insectos trasmisores de virus
Tamaron 600 CE (Metamidofos) 1.0 L Cuando se observen 2 o más adultos por planta durante las primeras 3 semanas de crecimiento y 4 adultos o más por planta en la etapa de floración e inicio y fructificación.
Sevin 80 PH (Carbaryl) 1.0 kg
Baytroid 2.5 EC (Ciflutrina) 0.5 L
Decis 2.5 EC (Deltametrina) 0.5 L
Diazinon 25 CE (Diazinon) 1.0 L
Tri
ps
Raspan el tejido de hojas, flores y vainas y succionan la savia
Dimetoato 40 CE (Dimetoato) 1.0 L Cuando se observen 5 o más trips por foliolo. Diazinon 25 CE (Diazinon) 1.0 L
Engeo 247 SC (Thiamethoxam +
Lambda-cihalotrina) 0.1 L
Mo
sq
uit
a b
lan
ca Succionan la savia de
las hojas y trasmiten virus (ocasiona achaparramiento)
Temik 5 g (Aldicarb) 5.0 – 7.0 kg Al momento de la siembra En planta desde la
emergencia hasta dos semanas de edad Cuando se observe un adulto por hoja. En plantas mayores solo si se observan más de un adultos por hoja.
Detergente (acidos grasos) 2.0 kg
Actara 25 WG (Thiamethoxam) 0.6 kg
Chess 50 WG(Pymetrozine) 0.06 kg
Rescate 20 SP (Acetamiprid) 0.2 kg
Thiodan 35 EC (Endosulfan) 2.0 – 3.0 L
Continúa Cuadro 25…
88
Continuación Cuadro 25…
PLAGA DAÑO PRODUCTO COMERCIAL DOSIS/HA ÉPOCA DE APLICACIÓN p
ulg
on
es
Succiona la savia y transmite virus
Engeo 247 SC (Thiamethoxam + Lambda-cihalotrina)
0.1 L En planta desde la
emergencia hasta dos semanas de edad Cuando se observen uno o más adultos por foliolo. En plantas mayores solo si se observan más de dos adultos por foliolo
Muralla 100 EC (Imidacloprid + Cyflutrin)
0.15 L
Dimetoato 40 CE (Dimetoato) 1.0 L
Min
ad
ore
s d
e l
a h
oja
Forman túneles serpenteados en las hojas a lo largo de las nervaduras principales y secundarias.
Rotor 40 CE (Dimetoato) 1.0 L Cuando encuentre adultos de
minador en 10 a 15 plantas o puntos muestreados de cada 100, durante los primeros 15 a 20 días de desarrollo del cultivo, o bien cuando tenga entre 15 a 20% de plantas “tiernas” con daño (minas) recientes
Bazudin 25 EC (Diazinon) 1.0 L
Lorsban 480 EC 1.25 – 1.5
L
Lorsban 75 WG 0.75 – 1 kg
Trigard 75 WP (Ciromazina) 0.15 kg
Ch
ich
arr
ita
Habita en el envés de las hojas. Causa achaparramiento de planta, encarruja las hojas, deforma las vainas y reduce el rendimiento. Es favorecida por las altas temperaturas y la sequia.
Paratión metílico 720 CE 1.0 L Aplicar cuando se tengan un
promedio de 5 insectos por planta chica o más de 10 por planta grande Perfektion CE (dimetoato) 1.0 L
Thiodan 35 EC (Endosulfan) 2.0 – 2.5 L
Engeo 247 SC (Thiamethoxam + Lambda-cihalotrina)
0.1 L
Continúa Cuadro 25…
89
Continuación Cuadro 25…
PLAGA DAÑO PRODUCTO COMERCIAL DOSIS/HA ÉPOCA DE APLICACIÓN C
hin
ch
es
ap
es
tos
as Inyectan substancias
tóxicas que provocan la caída de flores, avanamiento, manchado y malformación del grano.
Engeo 247 SC (Thiamethoxam + Lambda-cihalotrina) 0.1 L
Durante la etapa de floración y formación de vainas, al observarse 2 o más chinches por cada 10 metros lineales de surco
Muralla 100 EC (Imidacloprid + Cyflutrin) 0.15 L
Dimetoato 40 CE (Dimetoato) 1.0 L
Tamaron 600 CE (Metamidofos) 1.0 L
Le
pid
óp
tero
s q
ue
a
tac
an
fo
lla
je y
fru
to
(va
ria
s e
sp
ec
ies
)
Se alimentan de follaje y/o vaina
Arrivo 20 EC (Cypermetrina) 0.75 – 0.8 L Para gusanos defoliadores
solo cuando se observe defoliación superior al 20 %. Para gusano del fruto al observar 2 o más gusanos por metro lineal de surco.
Avaunt 30 WG (Indoxacarb) 0.333 kg
Rimon 100 E (Novaluron) 0,2 L
Lorsban 480 EC (Chlorpyrifos) 1.5 – 2.0 L
Xentari 10.3 WG (Bacillus thuringiensis)
1.0 kg
Pic
ud
o d
e l
a v
ain
a
En campo se alimentan de flores y vainas y de grano en almacén
Baytroid 2.5 EC (Ciflutrina) 0.5 L Desde floración hasta formación de vainas. Decis 2.5 EC (Deltametrina) 0.5 L
Diazinon 25 EC (Diazinon) 1.0 L
Engeo 24.7 SC (Thiamethoxam + Lambdacihalotrina)
0.15 – 0.2 L
Karate Zeon 2.5 CS (Lambda-cihalotrina)
0.5 L
Fosfamin A (Fosfuro de aluminio) 1 a 5
pastillas/m3 de
semilla. En semilla almacenada
Continúa Cuadro 25…
90
Continuación Cuadro 25…
PLAGA DAÑO PRODUCTO COMERCIAL DOSIS/HA ÉPOCA DE
APLICACIÓN R
ata
de
ca
mp
o
Cortan plantas y se comen el grano en la vaina.
Cebos envenenados
25 kg de semilla de trigo + 1.0 kg de
manteca de res + 375 g de Lannate 90 WP (Metomil) + 1 kg de
melaza
Preventivo desde la etapa de vainas tiernas.
Para evitar que los roedores detecten el olor humano, use guantes durante la colocación de los cebos. Storm (Flocoumafen)
3 a 5 pastillas cada 10 metros lineales
Rodilon pellet (Difethialone) Colocar una bolsita cada 5 a 10 metros
lineales
91
PRINCIPALES ENFERMEDADES DEL CULTIVO DE FRIJOL Y SU MANEJO
El cultivo de frijol en el sur de Sonora es afectado por
diversas enfermedades que afectan desde preemergencia hasta plantas adultas.
Muerte de plántulas o dumping off. Es ocasionado
por un complejo de hongos del suelo como son Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid., Sclerotium rolfsii Sacc., Rhizoctonia solani Kühn, Fusarium solani y F. oxysporum f.sp. phaseoli Kendrick & Snider, estos ocasionan pudrición en preemergencia o después de emergida las plántulas, los síntomas son una pudrición color café, rojiza, o negra a la altura del cuello o nivel del suelo con marchitez y secado de las plantas (Figura 40e) ocasionando baja población, su mayor incidencia es en suelos con poco drenaje y con exceso de riego o lluvias abundantes y ocasiona mayores daños en el periodo comprendido desde la siembra hasta las tres semanas posteriores a la emergencia. Para su control se sugiere rotación de cultivos y manejo eficiente de la humedad del suelo a través de los riegos y tratamientos a la semilla con Captan 80 % y Sepavax (10 % carboxin + 30 % de Captán) en dosis de 0.5 kg / 100 kg de semilla (Ramírez, 1991).
Moho blanco. El agente causal es el hongo
Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary ataca hojas, tallos y vainas se presenta cuando existen condiciones de temperaturas inferiores a los 20 ºC y alta humedad debido a precipitaciones continuas y prolongadas, se manifiesta como un algodoncillo color blanco sobre los tejidos afectados, los cuales se tornan de una textura blanda, posteriormente se forman estructuras de color obscuro que corresponden a las estructuras de fructificación del hongo (Figura 40 c), para su control se sugieren aplicaciones de benomil o carbendazim en dosis de 0.5 kg de producto comercial por hectárea y rotación de cultivos en suelos infestados.
92
Roya o Chahuixtle. Es ocasionado por el hongo Uromyces phaseoli-typica Arthur el cual se desarrolla cuando existen condiciones de temperaturas superiores a los 20 ºC y alta humedad ambiental debido a lluvias. Los síntomas consisten en pequeños puntos cloróticos de alrededor de un milímetro de diámetro sobre las hojas, tallos y vainas, estas pústulas desarrollan y alcanzan un diámetro de dos milímetros de color anaranjado, además rodeados de un halo de color amarillo, estas pústulas rompen el tejido y provocan deshidratación por la pérdida de agua (Figura 40 f). En su control en investigaciones regionales (Cuadros 30 y 31) se obtuvieron buenos resultados con aplicaciones de tebuconazol, seguido por Zineb y mancozeb (Ramírez, 1993)
Cenicilla. Es causada por el hongo Erysiphe
polygoni, DC., se presenta cuando el cultivo se encuentra en la etapa de fructificación y se manifiesta como un polvillo color blanco sobre las hojas y tallos, ocasiona una deshidratación de los tejidos afectados y un envejecimiento prematuro del cultivo (Figura 40 d). En cuanto a control en investigaciones regionales (Cuadros 30 y 31) se obtuvieron buenos resultados con aplicaciones de tebuconazol, seguido por clorotalonil y mancozeb (Ramírez, 1993).
CUADRO 30. EFECTO DE TRATAMIENTOS DE FUNGICIDAS
CONTRA ROYA Y CENICILLA EN FRIJOL EN EL VALLE DEL MAYO. CICLO OTOÑO-INVIERNO 1990-91. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009
TRATAMIENTO % DE PUSTULAS DE
ROYA MUERTAS1
% DE AREA FOLIAR DAÑADA
ROYA CENICILLA
TESTIGO 9.2 a* 34.1 a* 21.6 a*
CLOROTALONIL 22.7 b 15.5 b 10.2 b
MANCOZEB 37.8 bc 8.7 c 13.7 b
ZINEB 58.4 c 6.0 c 20.8 a
BITERTANOL 87.5 d 0.6 d 0.3 c
TEBUCONAZOL 89.7 d 1.0 d 0.0 c 1
Por ciento de pústulas de roya muertas ocho días posteriores a la primera aplicación.
* Tratamientos con igual letra entre columnas sin diferencia significativa al 0.05%
93
(a) (b)
(c) (d)
(e) (f)
FIGURA 40. SÍNTOMAS DE LAS PRINCIPALES ENFERMEDADES DEL FRIJOL EN EL SUR DE SONORA: A) MOSAICO DORADO, B) MOSAICO COMÚN, C) MOHO BLANCO, D) CENICILLA, E) PUDRICIÓN NEGRA Y F) CHAHUIXTLE O ROYA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
94
CUADRO 31. RENDIMIENTO DE FRIJOL CON APLICACIÓN DE FUNGICIDAS PARA EL CONTROL DE ROYA Y CENICILLA. CICLO OTOÑO-INVIERNO 1990-91. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009
FUNGICIDA DOSIS/HA % PLANTAS1 RENDIMIENTO
2
TEBUCONAZOLE 0.26 L 7.7 a* 1.979 a*
BITERTANOL 0.33 L 9.6 a 1.742 ab
CLOROTALONIL 1.6 Kg 28.5 b 1.690 bc
MANCOZEB 1.6 Kg 31.6 b 1.685 bc
ZINEB 1.44 Kg 30.7 b 1.589 c
TESTIGO 79.2 c 0.999 d 1 % DE PLANTAS CON 50% O MÁS DE DEFOLIACION
2 RENDIMIENTO DE GRANO EN TONELADAS / HA
* TRATAMIENTOS CON IGUAL LETRA ENTRE COLUMNAS SIN DIFERENCIA SIGNIFICATIVA AL 0.05%.
Tizón del halo. Es ocasionado por la bacteria
Pseudomonas syringae pv phaseolicola (Burk.) Dowson la cual desarrolla con temperaturas de 16 a 20 ºC, humedad relativa mayor a 80%, lluvia y rocío. Provoca manchas circulares, con el centro necrosado y rodeado por un halo amarillento verdoso que ocasiona una defoliación prematura. En las vainas se forman manchas circulares de aspecto grasoso, con exudados color crema, la semilla infectada transmite la enfermedad (Campos, 1991; Prudencio et al., 2008).
Tizón común. Es causado por la bacteria Xanthomonas axonopodis pv. Phaseoli (Smith) Dowson, está considerada como una de las cuatro principales enfermedades del fríjol en México. Ocasiona manchas irregulares, rodeadas por un halo amarillento delgado, desarrolla generalmente en los márgenes de las hojas. Es favorecida por temperaturas de 27 a 28 ºC, humedad relativa alta y lluvias frecuentes, los síntomas en vainas y semillas
95
son manchas pequeñas irregulares y rojizas, con exudado amarillento y la bacteria puede transmitirse por semilla (Campos, 1991; Prudencio et al., 2008).
En el sur de Sonora durante el ciclo otoño invierno 2009-10 se presentaron condiciones de alta humedad debido a precipitaciones que favorecieron el desarrollo del tizón común que se manifestó con mayor severidad en Pinto Bill Z y Pinto Saltillo, para lo cual fue necesario realizar aplicaciones de fungicidas-bactericidas a base de cobre como Cupravit y Kocide 2000.para su control.
Para el control de estos tizones bacterianos se sugiere variedades tolerantes como son Flor de Mayo M33, Pinto Villa, Bayo Madero y Negro 8025. Uso de semilla sana. Densidades de siembra óptimas y aplicaciones de fungicidas a base de cobre.
Virosis. Es ocasionada por un complejo de virus. Esta enfermedad es de gran importancia porque puede ocasionar pérdidas totales y los virus son difíciles de controlar porque no existen en la actualidad productos químicos que los eliminen. En el cultivo del frijol en el sur de Sonora la incidencia de enfermedades de tipo viral se está incrementando rápidamente. Los daños que ocasionan son severos debido a que es un complejo de cinco virus involucrados, los cuales se pueden encontrar asociados en la misma planta (Ramírez y Armenta, 1993). Los virus identificados en el sur de Sonora se dan a continuación, así como la sintomatología que induce cada uno de ellos.
Virus mosaico común del frijol.
Se transmite por semilla y por áfidos, es importante a
finales del otoño y durante el invierno. Sus síntomas consisten en un mosaico de manchas angulares porque se encuentran delimitadas por las nervaduras y estas manchas
96
son de color verde intenso intercaladas con manchas de color verde normal. Las plantas infectadas presentan hojas con el ápice enrollado hacia abajo, conocida comúnmente como “uña de gato” (Figura 40 b).
Virus mosaico sureño del frijol
Se transmite por semilla y por diabróticas. Sus
síntomas corresponden a un mosaico con manchas angulares de color verde más tenue del normal, acompañado de un arrugamiento de la lámina foliar y hojas más pequeñas. En ocasiones cuando el daño es fuerte (a principios de otoño) las hojas presentan distorsión parecida a la inducida por alta infestación de insectos chupadores.
Virus moteado clorótico del Frijol
Se transmite por diabróticas. Es importante a
principios de la estación de otoño, sus síntomas son manchas redondeadas y difusas porque no se encuentran delimitadas por las nervaduras, las cuales al unirse forman manchas amarillentas hasta de 10 milímetros de diámetro. Posteriormente cuando la infección desarrolla puede ocasionar el amarillamiento de todas las hojas de la planta.
Virus mosaico dorado del Frijol
Su vector es la mosquita blanca y es importante
durante la primavera, verano y principios de otoño. Sus síntomas corresponden a manchas de formas angulares por la limitación de las nervaduras y son de un color amarillo brillante sin llegar a ocasionar deformación en la lámina foliar (Figura 25 a).
Virus hoja enrollada de la calabaza
Su vector es mosquita blanca y es importante durante
la primavera, verano y principios de otoño; sus síntomas al
97
principio son el desarrollo de hojas nuevas más pequeñas con un doblez del ápice y márgenes hacia abajo y rugosidad de la lámina foliar, posteriormente se forman manchas de color amarillo intercaladas con manchas de color verde normal. También existe un acortamiento en la longitud de los entrenudos ocasionando un menor desarrollo de las plantas. Esta enfermedad se detectó en otoño de 1991 en el Valle del Mayo y sus daños son severos, lo que la coloca como una de las principales dentro del complejo viral para el cultivo del frijol en esta región.
Las alternativas de control de virosis son limitadas por
su complejidad, entre estas: el control de vectores, la cual es
solo aplicable a virus que se transmiten por diabróticas y
mosquita blanca. Para el control de diabróticas se sugiere
realizar aspersiones con Sevin 80 PH, 1.0 kg / ha. Para
reducir la transmisión de virus por mosquita blanca se deben
aplicar insecticidas granulados al momento de la siembra
como Temik 15G, en dosis de 5 a 6 kg/ha.
La mejor alternativa de control de enfermedades
virales en frijol es a través de resistencia genética, semilla
sana y fechas de siembra.
Las variedades de frijol más tolerantes a virosis son
las de tipo guía y se sugiere sembrarlas en fechas
tempranas (septiembre) en el ciclo otoño-invierno, y tardías
(febrero) en el ciclo primavera- verano.
En el control genético de virosis se ha encontrado
diferente comportamiento de variedades de frijol en las
fechas de siembra con mayor incidencia (Ramírez et al.,
1996). Los materiales con menor daño por virosis y mayor
rendimiento en el ciclo 1993-94 fueron Pinto Bill-Z, Azufrado
Higuera, Canario 72 y Jamapa (Cuadro 32).
98
CUADRO 32. COMPORTAMIENTO DE MATERIALES DE FRIJOL A VIROSIS EN EL SUR DE SONORA. CICLO 1993-94. CIRNO-CIRNO-INIFAP, 2009.
VARIEDADES % DE VIROSIS* RENDIMIENTO
(ton/ha) INCIDENCIA SEVERIDAD
Jamapa 10.92 6.53 3.329
Bill- Z 0.36 0.11 2.993
Azpa 22 24.17 16.78 2.878
Azpa 15 14.00 13.72 2.787
Azufrado Higuera 5.67 2.36 2.264
Canario 72 8.20 4.76 1.862
Azufrado Peruano 87 36.03 30.59 1.446
Azufrado Noroeste 35.70 26.65 1.372
Azufrado Regional 87 10.41 5.73 1.315
Azufrado Pimono 78 55.99 47.16 1.212
*Resultados de virosis en muestreo realizado el 16 de nov.
MALEZA Y SU CONTROL
Actualmente la siembra del cultivo de frijol se ha
diversificado con varios tipos y variedades en el sur de
Sonora, ya que en el Valle del Mayo predominan los tipos
azufrados, mientras que en el Valle del Yaqui y Guaymas,
los pintos. Los primeros generalmente son de crecimiento
determinado o de mata, mientras que los pintos son de
hábito indeterminado o de guía.
Lo anterior influye en la capacidad que tiene la planta
en competir con las malezas que se presentan, y en un
momento dado, también se refleja en la “plasticidad” de
dicha planta para soportar o asimilar un posible efecto
fitotóxico de un herbicida, dependiendo de la variedad.
99
Las especies de malezas que se presentan en frijol son anuales y perennes; las principales son: chual Chenopodium spp L., verdolaga Portulaca oleracea L., envidia Sonchus oleraceus L., bledo Amaranthus palmeri S. Watson y Amaranthus retroflexus L., malva Malva parviflora L.; las perennes, zacate Johnson Sorghum halepense (L.) Pers., zacate bermuda Cynodon dactylon (L.) Pers., coquillo Cyperus rotundus L. y correhuela Convolvulus arvensis L.
Estas dos últimas son frecuentes en terrenos de
aluvión o de textura franco-limoso, y dichos suelos son los más adecuados para la siembra de esta leguminosa.
El control de las especies anuales se lleva a cabo
principalmente con labores culturales, como siembras “en húmedo” y pasos de cultivadora cuando la planta está en las primeras etapas de crecimiento. Sin embargo, las especies perennes requieren de un manejo especial, dado lo difícil de su control, durante todo el período de crecimiento del cultivo.
El uso de herbicidas puede ser en presiembra o
postemergentes selectivos con el cultivo ya emergido. Actualmente se ha observado, que las variedades de más reciente liberación, han mostrado cierto grado de fitotoxicidad a los herbicidas tradicionales recomendados.
En el Cuadro 33 se muestran los herbicidas
recomendados para frijol en la región del sur de Sonora; tanto Basagrán como Flex son selectivos en postemergencia al cultivo, el primero se sugiere principalmente para maleza de hoja ancha anual y en las primeras etapas de desarrollo del cultivo, mientras que Flex es efectivo para el combate de maleza perenne como correhuela. El herbicida Pívot está autorizado su aplicación solo en las variedades presentadas en el Cuadro 21; sin embargo, al hacer un estudio sobre la fitotoxicidad que puedan ocasionar estos herbicidas a las variedades recomendadas en la actualidad se observó que
100
Flex y Basagrán ocasionaron secazón (tejido muerto) en los márgenes de las hojas de las plantas, principalmente en la variedad Azufrado Higuera.
En presiembra, la aplicación del producto puede realizarse antes de la preparación del terreno o posterior al riego para siembra, sobre maleza perenne como correhuela y zacate Johnson en pleno crecimiento vegetativo; para esto se recomienda Glifosato (Faena), en dosis de 2 a 4 L de material comercial por hectárea, correspondiendo las dosis altas a malezas perennes.
CUADRO 33. HERBICIDAS SUGERIDOS PARA EL CONTROL
DE MALEZA DEL FRIJOL EN EL SUR DE SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009
NOMBRE INGREDIENTE
ACTIVO
DOSIS COMERCIAL (L MC/HA)*
MALEZA QUE
CONTROLA
ÉPOCA DE APLICACIÓN
Basagran 480 CE
Bentazon 960 g/ha
2.0 hoja ancha Postemergente a cultivo y maleza.
Que la maleza tenga de 2-4 hojas verdaderas.
Flex 20 CE
Fomesafen 150-200 g/ha
0.75-1.0 hoja ancha Postemergente a cultivo y Maleza.
Controla correhuela.
Pívot 10 SL
Imazethapyr 75 g/ha
0.75 hoja ancha y angosta
Postemergencia temprana de maleza.
Se recomienda en frijol negro y flor de
mayo.
Select 2 EC
Clethodim 100-200 g/ha
0.5-1.0 hoja angosta
Postemergente a maleza y cultivo.
Poast 2 CE
Sethoxydim 300-600 g/ha
1.5-3.0 hoja angosta
Postemergente a maleza y cultivo. Dosis altas en
Maleza perenne.
Faena 480 SL
Glifosato 960-1920 g/ha
2.0-4.0 hoja ancha y angosta
Aplicarse en Presiembra. Dosis
altas en maleza perenne.
*Litros de Material Comercial por hectárea
101
PRÁCTICAS AGRONÓMICAS PARA REDUCIR EL DAÑO POR HELADAS
Para el frijol la temperatura mínima letal es de 0 °C,
mientras que para otras especies como el pepino son afectados a temperaturas inferiores a 3 °C; en cambio, los cereales pueden soportar valores por debajo de 0 °C (AFRD, 2006). El grado de daño que causa una helada depende de su intensidad y duración. De acuerdo con datos de estaciones climatológicas colectados en el transcurso de los últimos ciclos, la más alta probabilidad de ocurrencia de heladas en el sur de Sonora, se concentra a finales del mes de diciembre y la primera quincena de enero (Figuras 41 y 42). En consecuencia, las siembras de otoño-invierno son las más susceptibles.
Es importante considerar que las leguminosas
pueden ser categorizadas en cultivos de invierno y de estación caliente tomando como base sobre todo, su capacidad de emerger en condiciones frías del suelo y en su tolerancia a daño por helada. En particular, los cultivos de invierno (chícharo, lenteja, y garbanzo) exhiben la aparición hipogea de los cotiledones, en contraste con los cultivos de ambiente cálido (frijol común y soya), cuya germinación es epígea (los cotiledones aparecen sobre el suelo). Los cultivos con emergencia epígea, son especialmente sensibles al daño de heladas porque el nudo cotiledonar (punto de crecimiento) se expone a temperatura ambiente después de su aparición. Además, las temperaturas mínimas para la germinación de la semilla y el crecimiento son diferentes entre especies. Con el frijol y la soya se requieren temperaturas base de cerca de 5°C y de 10°C, respectivamente (Laing et al., 1984; Raper y Kramer, 1987), comparado con temperatura base cercana a 0°C para el garbanzo, chícharo, y la lenteja (Roberts et al., 1988; Summerfield et al., 1989; Ney y Turc, 1993). Por lo tanto, el frijol y la soya requieren típicamente una fecha tardía, de
102
mediados de mayo a principios de junio en la mayoría de las localidades, de las grandes planicies de Estados Unidos, para reducir el riesgo de daños de helada.
FIGURA 41. TEMPERATURAS MÍNIMAS REGISTRADAS EN EL MES DE ENERO DEL 2006. CEVY-CIRNO-INIFAP 2009.
FIGURA 42. TEMPERATURAS MÍNIMAS DEL DÍA 29 DE DICIEMBRE DEL 2007. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
0.9
2.7
1.7 1.7
2.8
2
0.30.4
1.31.4
2.2
1.9
2.3
2.12.2
2.9
1.7
0.7
2.2
1.5
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
17/01-
03:00
a.m.
17/01-
04:00
a.m.
17/01-
05:00
a.m.
17/01-
07:00
a.m.
17/01-
08:00
a.m.
18/01-
04:00
a.m.
18/01-
05:00
a.m.
18/01-
06:00
a.m.
18/01-
07:00
a.m.
18/01-
08:00
a.m.
° CCEMAY
CHAPOTE
-0.5
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
04:50
a.m.
5:10
a.m
05:20
a.m.
05:40
a.m.
06:10
a.m.
06:20
a.m.
06:40
a.m.
07:10
a.m.
07:20
a.m.
07:40
a.m.
INTERVALO DE MEDICION
° C
EL SAHUARAL EL CHAPOTE TRES CARLOS
103
En diversos estudios se han reportado prácticas
agronómicas con el propósito de minimizar el impacto de
bajas temperaturas, entre éstas el manejo del fertilizante, la
fecha de siembra, riegos de auxilio, evitar escardas y las
variedades o el uso de espumas agrícolas a base de
poliuretano (AFRD, 2006). En el caso del manejo del riego,
esto combinado con los pronósticos disponibles obtenidos de
la red de estaciones meteorológicas de la región, permite
realizar oportunamente el suministro de humedad suficiente
para contrarrestar el efecto nocivo de una helada. Por otro, el
productor, basado en estos elementos puede decidir si
realiza o no escardas al cultivo.
Se ha observado que las variedades con mayor
densidad de follaje y con menor intervalo en el periodo de
floración y fructificación son las más tolerantes al daño de
heladas, independientemente del hábito de crecimiento,
como es el caso de la variedad Azufrado Higuera.
Un carácter importante en la variedad Azufrado
Higuera es su mayor peso de grano (50 a 52 g/100 semillas)
y su color amarillo uniforme (Salinas et al., 1995) lo cual le
ha permitido ganar un nicho especial en el mercado de los
frijoles azufrados. En condiciones del sur de Sonora, el
potencial de rendimiento de las variedades de frijol supera
las 3.5 toneladas por hectárea en condiciones óptimas
(Padilla, 2008); sin embargo, según datos de las estaciones
meteorológicas más cercanas a un lote de validación, donde
ocurrieron temperaturas mínimas de 2.7 a –0.7 °C durante el
día 29 de diciembre de 2007 (Figura 42) a los 91 días de
establecido el cultivo que afectaron el follaje del tercio
superior interrumpiéndose el llenado normal del grano. Como
puede apreciarse en la Figura 43, A. Higuera, Mo 94/95 1039
(Azufrado Janasa) y la línea Mo 94/95 1041 pese al daño de
frío tienen producciones que permiten recuperar la inversión
realizada.
104
Una práctica cultural muy importante es la fecha de siembra temprana (mediados de septiembre) pues ayuda a obtener la cosecha en el mes de enero y se tiene la oportunidad de aprovechar las ventanas de comercialización antes que en otras regiones; sin embargo, en esta fecha, es necesario hacer una buena selección de la variedad y darle a ésta un manejo adecuado del riego para así evitar daño por vientos calientes y de pudrición de plántulas por daño de hongos del suelo. Según Padilla et al. (2009) las variedades comerciales Pinto Saltillo y Azufrado Higuera fueron las mejores con 3.037 y 2.815 t/ha, respectivamente, ambas con grano de excelente calidad y resistencia a mosaicos, lo cual representa una buena combinación de cualidades ya que en esta época de siembra se tiene un alto riesgo de daño por virosis.
El suministro de fertilizantes con base en las
necesidades de la planta en las diferentes etapas es un factor importante para evitar excesos sobre todo en el caso del nitrógeno. Una dosis mínima de nitrógeno y fósforo obliga que la planta acorte el ciclo de desarrollo entre 8 a 10 días dependiendo de las condiciones climatológicas y con ello evadir el riesgo de siniestro.
FIGURA 43. EFECTO DE LA BAJA TEMPERATURA EN EL RENDIMIENTO DE VARIEDADES DE FRIJOL EN EL SUR DE SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP 2009.
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
4
t/h
a
A. Higuera A. Noroeste A. Regional A. Peruano Mo 94/95
1039
Mo 94/95
1041
Variedades
2006-07
2007-08
105
EL SISTEMA DE RELEVO FRIJOL-CARTAMO Una opción importante en la siembra de frijol de
otoño-invierno en el sur de Sonora es la utilización de cortadoras frontales, las cuales permiten sembrar frijol sobre frijol, o establecer cártamo, sorgo, maíz, etc., aprovechando la humedad del último riego. Una práctica eficiente para el manejo del agua y la tierra es la siembra de cártamo durante la etapa de corte del frijol, es decir, establecer esta oleaginosa una vez que la planta de frijol ha llegado a madurez fisiológica y en la cual existe aún humedad suficiente del último riego, para la germinación del segundo cultivo (Figuras 44 a 47). De esta manera se tiene la ventaja de obtener dos cosechas en el periodo de octubre a junio, sembrando el frijol a principios de octubre y el cártamo durante la segunda quincena de enero y la primera decena de febrero. En este sistema también se aprovecha la misma maquinaria que se usa para las labores culturales del frijol sin los ajustes necesarios cuando se establecen otros cultivos.
En el Cuadro 34 se muestra los costos y la
rentabilidad del sistema durante ciclo otoño-invierno 2007-08, donde resalta que el efecto más importante se manifiesta en los costos en la siembra del cártamo los cuales se reducen en un 50%.
FIGURA 44. CORTADORA-ENCHORIZADORA DE FRIJOL DE OCHO SURCOS. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
106
FIGURA 45. PROCESO DE CORTE DE FRIJOL Y SIEMBRA DE CÁRTAMO SOBRE LA HUMEDAD RESIDUAL DEL ÚLTIMO RIEGO DE AUXILIO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
FIGURA 46. LA TRILLA DE FRIJOL SE REALIZA A PRINCIPIOS DE FEBRERO EL CÁRTAMO SE ENCUENTRAN EN LA FASE DE EMERGENCIA. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
107
FIGURA 47. LA TRILLA DEL CÁRTAMO SE REALIZA EN JUNIO COMPLETANDO DOS COSECHAS. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
CUADRO 34. ANÁLISIS DE RENTABILIDAD DEL SISTEMA DE RELEVO FRIJOL-CÁRTAMO EN SIEMBRAS DE OTOÑO-INVIERNO. CEVY-CIRNO-INIFAP 2009.
CULTIVO RENDIMIENTO
(TON/HA)
RENDIMIENTO DE FORRAJE (PACAS/HA)
COSTO DE PRODUCCION
(HA)
GANANCIA ($)
FRIJOL 2.6 70 12,942 37,878
CARTAMO 2.3 -- 5,000 18,400
TOTAL 56,278
Precio de la tonelada de frijol = $18,500.00 Precio de la paca de frijol = $30.00
COSECHA Las prácticas de manejo empleadas durante esta
última etapa son muy importantes y se debe prestar especial atención al momento de efectuarlas, ya que de la
108
oportunidad y la manera de efectuarse, dependerá en gran parte la recuperación de la inversión. Resultados de investigaciones (Coronel y Garibaldi, 1977; González, 1990; Padilla, 1992b) indican que con solo poner énfasis en esta etapa del cultivo, el rendimiento se puede incrementar en 18 a 25%.
La cosecha es una fase crítica dentro del proceso de
producción ya que lo ganado por el buen manejo del cultivo, se puede perder por una cosecha inoportuna y/o mal manejada. Si al momento de la cosecha las vainas están muy secas, puede perderse grano por dehiscencia (desgrane) o por quebrado de los mismos durante la trilla. Por el contrario, si la cosecha se adelanta demasiado, cuando las vainas y granos todavía contienen un alto porcentaje de humedad, los granos no alcanzan la forma, tamaño y color típico de la variedad, y además se corre un alto riesgo de problemas de pudrición en bodega debido a los altos niveles de humedad presentes en el producto.
En el sur de Sonora las fechas óptimas de corte son
entre los 109 a 115 días después de la siembra, dependiendo del ciclo de la variedad, las condiciones climatológicas prevalecientes durante el desarrollo del cultivo y del manejo agronómico. En un estudio realizado por Padilla (1992b) se encontró que adelantar el corte en 8 días significa una pérdida de 16 % en Pinto Bill-Z y de 28 % en Azufrado Regional 87 (Cuadro 35). La variedad Pinto Bill-Z fue la menos afectada debido a su precocidad. Al adelantar el corte se interrumpe el llenado de grano lo cual ocasiona presencia de grano manchado, disminución del peso específico y mayor porcentaje de granos chupados. En cambio, el retraso en las labores de corte reduce el rendimiento en 14.6 % en Pinto Bill-Z y en 12.7 % en Azufrado Regional 87, debido principalmente a la pérdida de grano por dehiscencia de las vainas durante las operaciones de corte y trilla, así como a disminución excesiva de la humedad en el grano. Con la
109
realización oportuna de corte y trilla en el sur de Sonora, se ha determinado una pérdida menor al 5% en el rendimiento de grano.
CUADRO 35. EFECTO DE LOS DÍAS A CORTE EN EL
RENDIMIENTO EN DOS VARIEDADES DE FRIJOL EN EL SUR DE SONORA. CEVY-CIRNO-INIFAP 2009.
DÍAS A CORTE (DDS)
VARIEDAD (TON/HA)
PINTO BILL-Z AZUFRADO
REGIONAL 87
109 2.860 2.098
115 2.744 1.979
124 2.443 1.831
101 2.393 1.509
PROMEDIO DE VARIEDADES
2.610 1.854
DDS = Días después de la siembra
MANEJO POSTCOSECHA Cuando la siembra de frijol es mayor a una hectárea,
es muy recomendable que el productor, en principio, se asegure de contar con equipo especializado, para labores propias del cultivo como es la preparación del terreno, escardas o cultivos, y para las aplicaciones de pesticidas, cosecha y trilla. En el sur de Sonora, se justifica ampliamente lo anterior, debido los altos costos de la mano obra y a que el uso de maquinaria permite una mayor eficiencia y rapidez en la ejecución de labores y como consecuencia dar un mejor aprovechamiento al recurso tierra.
Ya una vez cosechado el grano se pueden utilizar
cribas manuales o mecánicas para separar el grano de impurezas y de esa manera darle el mayor valor agregado posible al producto (Figura 48).
110
El productor tiene varias opciones para el manejo del producto de acuerdo a sus condiciones de manejo. Entre esta la de pignorar, vender de inmediato o almacenar en forma colectiva o individual para negociar mejores condiciones de comercialización.
En caso de optar por almacenar su producción para
la búsqueda de mejor trato comercial, deberá observar las siguientes recomendaciones:
Limpiar y fumigar la bodega de almacenamiento
La bodega no debe tener humedad ni temperaturas altas
Secar el grano antes de almacenarlo, hasta alcanzar el 12 ó 14% de humedad
Eliminar las impurezas, mediante uso de zarandas ó cribas ( semilla de maleza, paja y terrones)
Envasar el grano en costales, no mayores de 50 kg
Hacer piIas o estivas no mayores de 3 m de alto, con pasillos o andadores
Muestrear periódicamente la humedad y la presencia de gorgojos.
FIGURA 48. CRIBADORA MECÁNICA DE FRIJOL EN EL VALLE DEL MAYO. CEVY-CIRNO-INIFAP, 2009.
111
LITERATURA CITADA
Acosta G., J. A., R. Rosales S., R. Navarrete M. y E. López S. 2000. Desarrollo de variedades mejoradas de frijol para condiciones de riego y temporal en México. Agric. Téc. Méx. 26 (1): 79-98.
AFRD. 2006. Protection against Frost damage. Agric Food and Rural Development, Alberta, Canada. www.agric.gov.ab.ca.
Anaya L., M. A., M. Ramos G., O. P. García O. L. M. Salgado R., M. G. F Loarca P., R. Reynoso C. 2009. Importancia del consumo del frijol en la prevención y complicaciones de la diabetes. Memorias del II Congreso Internacional y Feria Nacional de Frijol. Zacatecas, Zacatecas. pp. 82-83.
Armenta C., I. y I. Padilla V. 1992. Dinámica poblacional de insectos vectores de virus en frijol. Informe Técnico del Programa de Entomología. Ciclo Primavera-Verano. CEMAY-CIRNO-INIFAP.
Beltrán F. M. J. y F. Cabrera C. 2002. La calidad del agua de riego y su impacto en los cultivos y suelos del Bajo Río Mayo. Folleto Técnico N° 12. INIFAP-CIRNO-CEMAY. Navojoa, Sonora.
Benami, A. and A. Ofen. 1983. Irrigation Engineering: Sprinkler, trickler, surface irrigation. Principles, design and agricultural practices. Faculty of Agricultural Engineering. Tecnion, Israel Institute of Technology.
Berglund, D., T. Courneya, D. Franzen, P. Glogoza, K. Hellevang, V. Hofman, B. Kuntz, A. Lamey, T. Scherer and R. Zollinger. 1997. Irrigation. In: Dry Bean Production Guide. North Dakota State University. Consulta internet: http://www.ag.ndsu.edu/pubs/plantsci/rowcrops.
Bliss, F. A. 1980. Common Bean. In: Hybridization of crop plants. W. R. Fehr and H. H. Hadley (eds.) American Society of Agronomy and Crop Science Society of America. Madison, WI, USA.
Bos, L. 1964. Tentative List of Viruses Reported from Naturally Infected Leguminous Plants. Nerth. J. Plant Path. 70:161-174.
Bos, L. 1971. Bean Common Mosaic Virus C.M.I./A.A.B Descriptions of Plant Viruses. No. 73.
Bos, L. 1979. Bean Yellow Mosaic Virus C.M.I./A.A.B Descriptions of Plant Viruses. No. 40.
112
Breyedan, R.E., Egli, D.B., and J. E. Legget. 1978. Influence of nitrogen nutrition on total N, nitrate, and carbohydrate levels in soybeans. Agron. J. 69:965-1969.
Brinkley, A. 1993. The amount of blossom and pod drop on six varieties of garden beans. Proc.Am. Soc. Hort. Sci. 29:489-492.
Cabrera C. F. 1998. Un análisis de la investigación realizada en los cultivos agrícolas de riego en el valle del mayo. Área de de suelos. Documento de trabajo, campo experimental valle del mayo, CIANO-INIFAP.
Cabrera C., F. y I. Padilla V. 2005. Evaluación de diferentes métodos y calendarios de riego en frijol azufrado bajo condiciones de aluvión en el ciclo otoño-invierno 2004-05. Informe anual del programa de Leguminosas comestibles. INIFAP-CIRNO-Campo Experimental Valle del Mayo.
Cabrera C., F. y I. Padilla V. 2007. Validación comparativa de los métodos de siembra en cama y en plano en tres líneas y tres variedades de frijol bajo el sistema de riego por goteo en el sur de Sonora. Informe del Programa de Leguminosa Comestibles ciclo Otoño-Invierno 2006-07. INIFAP-Valle del Mayo.
Campos, A. J. 1991. Enfermedades del fríjol. Editorial Trillas. Primera Edición. México. P. 70-73.
Castellanos, J. Z., H. Guzmán M., A. Jiménez, C. Mejía, J. J. Muñoz R., J. A. Acosta G., G. Hoyos, E. López S. D. González E., R. Salinas P., J. González A., J. A. Muñoz V., P. Fernández H. y B. Cáceres. 1997. Hábitos preferenciales de los consumidores de frijol común (Phaseolus vulgaris L.) en México. Archivos Latinoamericanos de Nutrición. 47 (2):163-167.
Castro, Z.E. y Ortiz, E.J.E. 1990. Respuesta del frijol (Phaseolus vulgaris, L.) a seis tratamientos de riego, en base a la fenología, en el Valle del Yaqui, Sonora. Tesis de licenciatura. Instituto Tecnológico y de Estudios Supriores de Monterrey. Campus Obregón, División de Ciencias agropecuarias.
Cedano J., De la Rosa D., Sánchez A. Y Oviedo F. 1999. Fraccionamiento de nitrógeno en frijol (Phaseolus vulgaris L.) en el valle de san Juan. Agronomía mesoamericana 11(1): 151-154.
113
Centro Internacional de Agricultura Tropical, CIAT, 1987. Sistema estándar para la evaluación de germoplasma de frijol. A. Schoonhoven, M. A. Pastor (Comp.). Cali, Colombia. 56 p.
Chung, K. T. Wong, T. Y. Wei, C. I. Huang, Y-W. and Lin Y. 1998. Tannins and human health: A review. Crit. Rev. Food Sci Nutr. 38:421-464.
Clark, G. A. Stanley, C. D., Smajstrla, A. G. and Zazueta F. S. 1995. Consideraciones para el diseño de la micro irrigación para la producción de hortalizas. Seminario Internacional de Plasticultura. Hermosillo, Sonora. Febrero de 1995.
Coronel, E. F. y I. M. Garibaldi. 1977. Uso de tecnología y evaluación de pérdidas de frijol. Publicación técnica CIAS N° 5. INIA-SARH. Culiacán, Sinaloa
Costa, A. S. 1965. Three Whitefly Transmitted Virus Diseases of Bean in Sao Paulo, Brazil, Plant Prot. Bull. (FAO) 13: 121-130.
Crispín M. A. 1967. El frijol como fuente de proteína. Agricultura Técnica de México (INIA-SAG). Vol. II No 7.
Crispín, A. and Campos, J. 1986. Bean diseases of importance in México in 1975. Plant Dis. Rep. 60: 534-535.
Crispín, M.A. And Yerkes, W.D. Jr. 1956. Los virus del frijol. Agricultura Técnica en México. 3:19, 35-36.
CSRV, 2009. Datos estadísticos del Comité Regional de Sanidad Vegetal. Navojoa, Sonora, México.
Debouck, G. D. y R. Hidalgo. 1985. Morfología de la planta de frijol. In: Frijol: Investigación y Producción. López M., F. Fernández y A. Schoonhoven (eds.). Programa de las Naciones Unidas para el Desarrollo (PNUD). Centro Internacional para la Agricultura Tropical. Cali, Colombia. pp. 7-8.
Efetha, A. 2008. Irrigation Management of dry beans. Agricultural and Rural Development. Government of Alberta 2. Kramer, P.J. and Kozlowski, T.T. 1979. Physiology of woody plants. Academic, London, England. p.811.
Escalante, J. A.; Kohashi S., J. 1993. El rendimiento y crecimiento del frijol. Manual para toma de datos. Colegio de Postgraduados. Montecillo Mpio. De Texcoco Méx. México. 84 p.
Escalante, J. A.; Kohashi S., J.; Gómez, R., O. 1980. Efecto del sombreado artificial en tres épocas a partir de la floración sobre el rendimiento en semilla y sus componentes del frijol (Phaseolus vulgaris L.). Agrociencia 42: 5-16.
114
Escalante, J. A.; Kohashi, S., J. 1986. Influencia de la edad al trasplante en el rendimiento y sus componentes de variedades de Phaseolus vulgaris L. de guía trepador. Agrociencia 65:51-59.
Escalante, L.E. Escalante, J.A. 1994. Yield components of beans (P. vulgaris L.) and their response to nitrogen and population density. Proceedings 15th World Congress of Soil Science. Acapulco Gro. México. pp. 83-84.
Fernández, F., P. Gepts y M. López. 1985. Etapas de desarrollo en la planta de fríjol (Phaseolus vulgaris L.) p. 61-78. En: López, M. F. Fernández y A. Schoonhoven (eds.). En Frijol: Investigación y producción. CIAT. Cali, Colombia. p. 61-78.
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2008. Statistical data. Rome, Italy.
Freytag, G. F. 1955. Variation of the common bean en Central America. Ph. D. Thesis, Washington University, St. Louis. Mo, USA.
Fulton, J.P., Games, R. And Scott, H. A. 1975. Cowpea Chorotic Mottle and Bean Yellow Stipple Viruses. Phytopathology. 65: 741-742
Geil, P.B. and Anderson, J. W. 1994. Nutricional and health implication of dry bean: a review. J. Am. Coll. Nutr. 13:549-558
Gentry, H. S. 1969. Origin of the common bean, Phaseolus vulgaris. Econ. Bot. 23 (81): 55-69.
González, R. C. 1990. Cosecha de frijol: problemas y alternativas de solución en la Costa de Nayarit. En: Memorias del XIII Congreso Nacional de Fitogenética. Cd. Juárez, Chihuahua. p. 470.
Guzmán M., S. H., J. A. Acosta G., M. A Álvarez-Muñoz, S. García D. y G. Loarca-Piña. 2002. Calidad alimentaria y potencial nutracéutico del frijol (Phaseolus vulgaris L.). Agric. Téc. Méx. 28 (2)159-173.
Hampton, R. Beczner, et al. 1978. Host Reactions of Mechanically Transmissible Legume Viruses of the Northern Temperate Zone. Phytopathology. 68: 984-997.
Hochmuth, G. J. 1995. Manejo de Fertilizantes con riego por goteo para hortalizas. Seminario Internacional de Plasticultura. Hermosillo, Sonora. Febrero de 1995.
115
INIFAP, 2001. Guía técnica para los cultivos del área de influencia del Campo Experimental “Valle del Yaqui”. Centro de Investigación Regional del Noroeste. Cd. Obregón, Sonora, México. 282 p.
Izquierdo, J. A. 1981. The effect of accumulation and remobilization of cart assimilate and nitrogen on abscission, seed development, and yield of common bean (Phaseolus vulgaris L.) with differing architectural forms. Ph. dissertation. Michigan State University, East Lansing, MI, USA. 205 p.
Jiménez, G. E, 1985. Etiology Pathology and Characterization of viruses from Bean – Growing in the Sonora Desert of México. Ph.D. Dissertation, University of Arizona. Tucson. 73 pp.
Jiménez, G. E. y Nelson, M. R. 1986. Los virus del frijol en las áreas agrícolas de sonora. Folleto Técnico No. 2. SARH-INIFAP-CIANO-CAECH. 16 p.
Kramer, P. J. and T. T. Kozlowski. 1979. Physiology of woody plants. Academic, London, England. p 811.
Laing, D.R., P.G. Jones, and J.H.C. Davis. 1984. Common bean (Phaseolus vulgaris L.). p. 305–351. In P.R. Goldworth and N.M. Fisher (ed.) the physiology of tropical field crops. John Wiley & Sons, London.
Lardizábal, R., R., Arias S. y Segura R., 2008. Manual de producción de frijol.USAID RED. Proyecto de Diversificación Económica Rural, Julio. 17 p.
Lépiz I. R., S. Sánchez P., E. López A. A. González A. y S. Núñez G. 2007. El cultivo de frijol en las regiones centro y sur de Jalisco. Tecnología para altos rendimientos. Universidad de Guadalajara. Las agujas, Municipio de Apopan, Jalisco, México. 34 p.
Lépiz, I.R. y Navarro, S.F.J. 1983. Frijol en el Noroeste de México (Tecnología de producción). Libros técnicos. Primera edición. SARH-INIA-CIAPAN. Comisión Permanente para la Investigación y Experimentación Agrícola en Sinaloa. Culiacán, Sinaloa, México. p.117.
López, G. A., Loaiza, V.J.M., Morúa, L.J.G., Ortega, P.F., Romo, C.R. y Torres, R.E. 1983. Guía para los cultivos agrícolas en los Ríos Sonora y San Miguel. Folleto para productores # 6. Primera Edición. SARH-INIA-CIANO-CAECH. Hermosillo, Sonora. pp. 18-19.
116
Macías C., J. y J. L. Mendoza R. 2002. Fertilización. En: Memoria del Curso Tecnología de Producción del Cultivo de Frijol. Fundación Produce Sinaloa. Culiacán, Sinaloa. pp. 13-17
Mann, J.D.; Jaworski, E.J. 1970. Comparison of stresses which may limit soybean yields. Crop. Sci. 10:620-624.
Mateo, B. J. 1965. Leguminosas de grano. Ed. Salvat. Barcelona, España
Messina, M. J. 1999.Legumes and soybean: overview of their nutricional profiles and health effects. Am. J. Clin. Nutr. 70 (supl) 439S-450S.
Montenegro, B. J. y Galindo, A. J. 1974. El Virus del Mosaico Común del Frijol en el Estado de Guanajuato y Evaluación de Resistencia a Variedades. Agrociencia 18: 85-89.
Murguido, C. A. (1995). Biología, Ecología y Lucha contra el salta hojas Empoasca kraemeri Ross y Moore (Homóptera: Cicadellidae) en el frijol (Phaseolus vulgaris L.) Tesis presentada en opción del grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas. INISAV. Ciudad de La Habana, Cuba. 98 p.
Netafim, LPS, components. www.netafim.com/irrigation.
Ney, B., and O. Turc. 1993. Heat-unit-based description of the reproductive development of pea. Crop Sci. 33:510–514.
Ochoa, M.R. 1973. El cultivo de frijol en Aguascalientes. Circular CIAB, # 47. Primera edición. INIA-SAG. Centro de Investigaciones Agrícolas del Bajío-Campo Agrícola Experimental del Pabellón, Aguascalientes, México. p. 7.
Padilla V. I., I. Armenta C., R. A. Salinas P. y J. E. Ortiz E. 2009. Evaluación de variedades de frijol de distinto tipo de grano en fecha temprana, en el Valle del Yaqui, Sonora, México. 55 Reunión Anual de la Sociedad del PCCMCA, 2009. La ciudad de San Francisco de Campeche, Campeche, México, del 7 al 11 de septiembre de 2009.
Padilla V., I. 1991. Effect of furrow distance in agronomic and yield behavior of 2 bean varieties: Navolato Cohuirimpo, Sonora State. [Research advances CIANO. Spring-Summer 1991-1991], Ramirez D., J. M. (Compiled). Cd. Obregón, Son. (México): Centro de Investigaciones Agrícolas del Noroeste, Mar 1994. p. 98-99. www.fao.org/agris/search/display.
117
Padilla V., I. 1992. Respuesta del frijol (Phaseolus vulgaris L.) a la fecha de siembra en el Valle del Mayo. Res. Memorias del XIV Congreso Nacional de Fitogenética. Tuxtla Gutiérrez, Chiapas. México. p. 75.
Padilla V., I. 1992b. Época de corte en frijol (Phaseolus vulgaris L.): efecto en el rendimiento y calidad del grano. En: Memorias del XIV Congreso Nacional de Citogenética. Tuxtla Gutiérrez, Chiapas.p. 417.
Padilla V., I. J. A. Ramírez A., y I. Armenta C. 2005. Rendimiento y componentes agronómicos del frijol (Phaseolus vulgaris L.) en dos épocas de siembra en el Valle del Mayo. En: Memoria del VIII Congreso Internacional de Ciencias Agrícolas. Mexicali, Baja California. pp. 331-336.
Padilla V., I., F. Cabrera C. y R. A. Salinas P. 2008. Tecnología de producción para frijol en el Estado de Sonora. Memoria del día de Agricultor 2008. Campo Experimental Valle Yaqui. INIFAP-CIRNO. Publicación Especial # 15. pp. 53-55.
Padilla V., I., I. Armenta C., J. A. Ramírez A., M. y Madrid C. 2000. Tecnología para producir frijol en el Sur de Sonora. Folleto para productores No. 17. SAGARPA-INIFAP-Campo Experimental Valle del Mayo. Navojoa, Sonora, México. 24 p.
Panizzi, A. 1997. Wild hosts of pentatomids: ecological significance and role in their pest status on crops. Annual Review of Entomology 42: 99-122.
Prudencio S. J. M, Navarrete M. R., Navarrete, M. J. y Acosta G. A. 2008. Dinámica de los tizones común y del halo del fríjol en el valle de México. Agricultura Técnica en México vol. 34: 213-223.
Ramírez A., J. A. 1991. Control de enfermedades radicales en el frijol (Phaseolus vulgaris L) con tratamientos químicos a la semilla en la Costa de Hermosillo. Revista mexicana de Fitopatología. Vol. 9 (1). 53-56.
Ramírez A., J. A. 1991. Control químico de Uromyces phaseoli-Typica y Eryciphe polygoni en frijol en el Valle del Mayo, Sonora. XVIII Congreso Nacional de Fitopatología, Puebla de los Ángeles, Puebla. 24 al 26 de julio de 1991.
Ramírez A., J. A. 1993. Control químico de Uromyces phaseoli-typica y Erysiphe polygoni en el cultivo de frijol en el Valle del Mayo. Revista Mexicana de Fitopatología. Vol. 11(1):86-88.
118
Ramírez A., J. A. y I. Armenta C. 1993. Enfermedades virales en frijol y su control en el sur de Sonora. CIANO-INFORMA. Vol. III (1) pp. 18-19.
Ramírez A., J. A., I. Padilla V., y I. Armenta C. 1996. Comportamiento de variedades de frijol a virosis en el Valle del Mayo, México. Memorias XXI Congreso Nacional de Fitopatología y Proceedings XXXVI Annual Meeting of the American Phytopathological Society-Caribbean Division. Resumen 28.
Raper, C.D., Jr., and P.J. Kramer. 1987. Stress physiology. p. 589–641. In J.R. Wilcox (ed.) Soybeans: Improvement, production and uses. 2nd ed. Agron. Monogram. 16. ASA, CSSA, and SSSA, Madison, WI.
Richards, L.A. 1954. Diagnosis and improvement of saline and alkali soils. USDA Agricultural Handbook 60, 160 p.
Roberts, E.H., R.J. Summerfield, R.H. Ellis, and K.A. Stewart. 1988. Photo thermal time for flowering in lentils (Lens culinaris) and the analysis of potential vernalization responses. Ann. Bot. 61:29–39
Rodríguez G., M. T.; Escalante E. J.A. 1994. Effects of nitrogen supply on extraction and accumulation of nitrogen and their relationship to seed yield in Phaseolus vulgaris L. Ann. Rep. Bean Improvement Cooperative. 37: 173-174.
Salinas P., R. A., F. J. Navarro S., F. G. Rodríguez C. y I. Padilla. V. 1995. Azufrado Noroeste y Azufrado Higuera: Nuevas variedades para Sinaloa. Folleto Técnico No 11. INIFAP-Campo Experimental Valle del Fuerte. Juan José Ríos, Sinaloa.16 p.
Salter, P.J., and J.E Goode. 1967. Crop responses to water at different stages of growth. Commonwealth Agricultural Bureaux. Primer Edition, Maid stone, Kent, England. p. 246.
Scarisbrick, D.H.; Olufajo, O.O., and R.W Daniels. 1982. The effect of nitrogenous fertilizer on the seed yield, and yield components of Phaseolus vulgaris. J. Agric. Sci. Camb. 99:665-668.
SIAP. 2005. Datos estadísticos del Servicio de Información Estadística Agroalimentaria y Pesquera. SAGARPA. México, D.F.
119
Subhadrabandhu, S., Adams, M.W., and D.A. Reicosky. 1978. Abscission of flower and fruits in Phaseolus vulgaris L. I: Cultivar difference in flowering pattern and abscission. Crop Sci. 18(5):893-896.
Summerfield, R.J., R.H. Ellis, and E.H. Roberts. 1989. Vernalization in chickpea (Cicer arietinum): Fact of artefact? Ann. Bot. 64:599– 603.
Tamayo, M. P.J. y M. E. Londoño. 2001. Manejo integrado de enfermedades y plagas del frijol. Manual de campo para su reconocimiento y control. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. Corpoica Regional 4, Centro de Investigación “La Selva”. Boletín Técnico 10. 80 p.
Todd, J. 1989. Ecology and behavior of Nezara viridula. Annual Review of Entomology 34: 273-292.
Tucker, C.L.; Miller, M.D.; Webster, B.D. 1975. Effects of ethephon on seed yield of Phaseolus vulgaris L. HortScience 10(2):156-157.
Valenzuela L., J. y I. Armenta C. 1990. Guía para cultivar frijol en el sur de Sonora. Folleto para productores No 1. Campo Experimental Valle del Mayo. SAGARPA-INIFAP-CIANO. Cd. Obregón, Sonora, México, pp. 16.
Vargas V., M. L., J. S. Muruaga M., J. A. Acosta G., R. Navarrete M., P. Pérez H., G. Esquivel E., M. B. G. Irizar G. y J. M. Hernández C. 2006. Colección Núcleo de Phaseolus vulgaris L. del INIFAP. Catálogo de accesiones de la forma domesticada. Libro Técnico N° 10. CIRCE-INIFAP-Campo Experimental Valle del México. Texcoco, Estado de México. p. 3.
White E., J.W. and J. Izquierdo. 1991. Physiology of yield potential and stress tolerance. In. Common beans: Research for crop improvement. Ed. Schoonhoven A. Van. and O. Voysest. C.A.B. International - CIAT. pp. 287-382.
www.itescam.edu.mx/principal/sylabus/fpdb/recursos/r25798 (consultado el 13 de febrero de 2009)
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AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen a los colaboradores de campo: Al Sr. Raymundo Valenzuela Zavala asistente del programa de Leguminosas Comestibles del Campo Experimental Valle del Yaqui-INIFAP, y al Sr. Manuel Quintero Valenzuela del programa de Entomología actualmente jubilados.
Así mismo, se agradece a las diferentes instituciones, dependencias y directivos que han apoyado moral y económicamente al desarrollo y validación de la investigación en el cultivo de frijol, al Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), a la Fundación Produce Sonora, AC, a la SAGARPA Federal, la SAGARPHA estatal, al Patronato para la Investigación y Experimentación Agrícola del Estado de Sonora (PIEAES).
Un reconocimiento especial a los señores agricultores del Valle del Mayo Sr. Santiago Quiroz Lagarda y Cristóbal Campos Blanco por su apoyo incondicional durante el proceso de investigación y transferencia de tecnología de frijol. También a los Sres. Ricardo Luders y Fernando Signoret por su apoyo en parcelas de validación y transferencia de tecnología en el Valle del Yaqui, Sonora.
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PERSONAL INVESTIGADOR DEL CAMPO EXPERIMENTAL VALLE DEL YAQUI*
M.C. LOPE MONTOYA CORONADO JEFE DE CAMPO / CÁRTAMO [email protected]
M.C. RAFAEL VALENZUELA BORBÓN RESPONSABLE DEL SITIO EXPERIMENTAL VALLE DEL MAYO [email protected]
M.C. INÉS ARMENTA CÁRDENAS ............................................................................................. ENTOMOLOGÍA [email protected] M.C. CÉSAR MARTÍN ARMENTA ............................................................................................ FITOPATOLOGÍA CASTRO [email protected] M.C. RAMÓN ANTONIO ARMENTA CEJUDO .................................................................................. ECONOMÍA [email protected] M.C. MANUEL DE JESÚS BELTRÁN FONSECA .......................................................... SUELOS / VALIDACIÓN [email protected] M.C. FERNANDO CABRERA CARBAJAL ............................................................. USO Y MANEJO DEL AGUA [email protected] ING. JESÚS ANTONIO CANTÚA AYALA ...................................... LEGUMINOSAS COMESTIBLES / CANOLA [email protected] M.C. NEMECIO CASTILLO TORRES ............................................. LEGUMINOSAS COMESTIBLES / CANOLA [email protected] ING. Q. GABRIELA CHÁVEZ VILLALBA ................................................................................................... TRIGO [email protected] DR. JUAN MANUEL CORTÉS JIMÉNEZ ......................................................................... NUTRICIÓN VEGETAL [email protected] M.S. OSCAR MANUEL COTA AGRAMONT ................................................................................................. MAÍZ [email protected] ING. EDGAR ALBERTO CUBEDO RUÍZ .................................................. FITOPATOLOGÍA/BIOTECNOLOGÍA [email protected] M.C. JOSÉ JUAN DUARTE RAMÍREZ .................................................................................................... SUELOS [email protected] M.C. PEDRO FÉLIX VALENCIA ............................................................................. PREDICCIÓN DE COSECHA [email protected] DR. PEDRO FIGUEROA LÓPEZ ................................................................................ TRIGO / FITOPATOLOGÍA [email protected] DR. GUILLERMO FUENTES DÁVILA ................................................... FITOPATOLOGÍA / CARBÓN PARCIAL [email protected] M.C. MANUEL DE JESÚS GUERRERO HERRERA ..................................................................... MAÍZ / AGAVE [email protected] M.C. ALFONSO LAGARDA GONZÁLEZ ......................................................... VALIDACIÓN DE TECNOLOGÍA [email protected] M.C. MANUEL MADRID CRUZ ................................................................................... MALEZA / ALGODONERO [email protected] M.C. ARTURO MORALES CUEN ....................................................................................................... FORRAJES [email protected] M.C. ADOLFO MORENO BEDOY ........................................................... FITOPATOLOGÍA / BIOTECNOLOGÍA [email protected] ING. XOCHILT MILITZA OCHOA ESPINOZA ..................................................................................... CÁRTAMO [email protected] DR. ALEJANDRO ORTEGA CORONA ......................................................................................... MAÍZ / AGAVE [email protected] M.C. ALMA ANGÉLICA ORTÍZ ÁVALOS ......................................................................... NUTRICIÓN VEGETAL [email protected] M.C. JOSÉ ELISEO ORTÍZ ENRÍQUEZ .................................................................. USO Y MANEJO DEL AGUA [email protected] M.C. JUAN JOSÉ PACHECO COVARRUBIAS .......................................................................... ENTOMOLOGÍA [email protected] M.C. ISIDORO PADILLA VALENZUELA ............................................................................. FRIJOL/GARBANZO [email protected] M.C. JOSÉ ALFONSO RAMÍREZ ARREDONDO .................................................................... FITOPATOLOGÍA [email protected] DR. JUAN MANUEL RAMÍREZ DÍAZ ....................................................................................................CÍTRICOS [email protected] M.C. JESÚS ARTURO SAMANIEGO RUSSO ......................................................................................CÍTRICOS [email protected] M.C. ERNESTO SÁNCHEZ SÁNCHEZ ...............................................................................................FRUTALES [email protected] DR. LUIS MIGUEL TAMAYO ESQUE..................................................................................................... MALEZA [email protected] DR. VICTOR VALENZUELA HERRERA .................................................................................................... TRIGO [email protected] DR. JUAN MANUEL VALENZUELA VALENZUELA....................................................................... HORTALIZAS [email protected]
*Hasta noviembre del 2009
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La presente publicación se terminó de imprimir el
mes de diciembre del 2009 en los talleres
gráficos de Triángulo Impresión, Coahuila
No. 1055 sur, Colonia Campestre,
Cd. Obregón, Sonora.
Teléfono (644) 412-6397
Su tiraje fue de 1,000 ejemplares