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BIOQUI GUIA DE SUPERVIVENCIA – FAMURP 2016 MIJAIL JACOME NUÑEZ PROTECCION COMPLETA CONTRA EL EXAMEN DE LABORATORIO

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Page 1: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

BIOQUI GUIA DE SUPERVIVENCIA – FAMURP

2016

MIJAIL JACOME NUÑEZ

PROTECCION COMPLETA CONTRA EL

EXAMEN DE LABORATORIO

Page 2: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

PRACTICA 3: ESPECTROFOTOMETRICA – CURVA DE CALIBRACION

LEY DE LAMBERT: Rayo de luz en medio absorbente, Intensidad IP Espesor.

LEY DE BEER: Rayo de luz en medio absorbente, Intensidad IP Concentracion.

LEY DE LAMBERT-BEER: Relación exponencial entre la transmisión de luz a través de una sustancia y la concentración

así como de la transmisión y longitud del cuerpo que la luz esta atravesando.

𝐶𝑜𝑛𝑐𝑒𝑛𝑡𝑟𝑎𝑐𝑖𝑜𝑛 ¿ ? =𝐶𝑜𝑛𝑐𝑒𝑛𝑡𝑟𝑎𝑐𝑖𝑜𝑛 𝑆𝑡

𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑐𝑖𝑎 𝑆𝑡×𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑐𝑖𝑎 (𝐴𝑏𝑠 𝑜 𝐷𝑂)¿ ?

𝐹𝐴𝐶𝑇𝑂𝑅 𝐷𝐸 𝐶𝐴𝐿𝐼𝐵𝑅𝐴𝐶𝐼𝑂𝑁 (𝐹𝐶) = 𝐶𝑜𝑛𝑐𝑒𝑛𝑡𝑟𝑎𝑐𝑖𝑜𝑛

𝐴𝑏𝑠 𝑜 𝐷𝑂

Absorbancia es lo mismo que densidad óptica (DO).

𝐴𝑏𝑠 𝑜 𝐷𝑂 = 2 − 𝑙𝑜𝑔𝑇

APLICACIÓN:

N° tubo St 1 St 2 St 3 St 4 St 5 Pb

ml. de sol standart 2 4 6 8 10 -

ml. Agua destilada 8 6 4 2 - 8.5

ml. muestra problema - - - - - 1.5

% Transmitancia 85.5 70.8 59.1 50 40.7 42.7

Calcular Absorbancia ¿? ¿? ¿? ¿? ¿? ¿?

Calcular mg % ¿? ¿? ¿? ¿? ¿? ¿?

En el laboratorio nos dan solamente la TRANSMITANCIA, debemos calcular la Abs y mg%.

DATO: Concentracion de cristal violeta = 5mg%.

PRIMER PASO, CALCULO DE LA ABSORBANCIA:

𝐴𝑏𝑠 𝑜 𝐷𝑂 = 2 − 𝑙𝑜𝑔𝑇

St1 => 2 – log85.5 = 0.068

St2 => 2 – log70.8 = 0.150

St3 => 2 – log59.1 = 0.228

St4 => 2 – log50 = 0.301

St5 => 2 – log40.7 = 0.39

Pb (Problema) => 2 – log42.7 = 0.37

SEGUNDO PASO, CALCULO DE mg%:

St1:

5mg 100 ml

Xmg 2ml

X = 0.1 mg

0.1mg 10 ml

Xmg 100ml

X = 1mg%

St2:

5mg 100 ml

Xmg 4ml

X = 0.2 mg

Page 3: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

0.2mg 10 ml

Xmg 100ml

X = 2mg%

St3:

5mg 100 ml

Xmg 6ml

X = 0.3 mg

0.3mg 10 ml

Xmg 100ml

X = 3mg%

St4:

5mg 100 ml

Xmg 8ml

X = 0.4 mg

0.4mg 10 ml

Xmg 100ml

X = 4mg%

St5:

5mg 100 ml

Xmg 10ml

X = 0.5 mg

0.2mg 10 ml

Xmg 100ml

X = 5mg%

TERCER PASO, para calcular los mg% o [ ] de la muestra problema se realiza un procedimiento distinto:

𝐹𝐶 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 = ∑ 𝐹𝐶𝑠𝑡

5

St1 => 1/0.068 = 14.71

St2 => 2/0.150 = 13.34

St3 => 3/0.228 = 13.16

St4 => 4/0.301 = 13.29

St5 => 5/0.39 = 12.82

TOTAL = 67.32

FC total = 57.32/5=13.46

Pb => [ ]¿? = 13.46 x 0.37= 4.98 mg%.

RESPUESTA: La concentracion de la muestra problema es de 4.98 mg por 100 ml de solucion.

Curvas de calibración en la siguiente pagina…

Page 4: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

CURVAS DE CALIBRACION

INTERPRETACION: La absorbancia es directamente proporcional a la concentracion.

INTERPRETACION: La transmitancia es inversamente proporcional a la concentracion.

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PRACTICA 4: FACTORES QUE AFECTAN LA ACTIVIDAD ENZIMATICA

Factores imporantes: pH, [enzima], [sustrato], temperatura.

pH:

Extra: pH de amilasa = 6.9.

Temperatura:

[Sustrato]:

[Enzima]

TIPO DE REACCION: 1er Orden (Velocidad DP a pH).

pH OPTIMO = Máxima actividad de enzima, menor o

mayor pH = reducción en actividad.

TIPO DE REACCION: 1er Orden (Velocidad DP a Temperatura).

TEMPERATURA OPTIMA = Máxima actividad de enzima,

menor o mayor TEMPERATURA = reducción en actividad, a

mayor temperatura la enzima se desnaturaliza con la

consecuente pérdida de actividad.

TIPO DE REACCION: MIXTA

ORDEN 0

Al aumentar la [ ] de sustrato la enzima tiene mas sitios

donde actuar pero al no aumentar la [ ] de enzima, la

cantidad de enzima que se encuentra en el medio se satura

y ya no se forma mas producto, por eso en la primera parte

la reacción es de 1er ORDEN y al saturarse la enzima ya es

de ORDEN 0 porque no se forma mas producto.

TIPO DE REACCION: 1er ORDEN

Esto va en relación a la cantidad de sustrato que se

disponga, si esta cantidad es infinita entonces al aumentar

la [ ] de enzima la velocidad de la reacción seguirá

aumentando progresivamente hacia el infinito.

Page 6: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

IMPORTANTE:

Para calcular la actividad enzimática en la prueba con pH:

Actividad enzimática = DO (blanco) – DO (1) – DO(2) – DO(3) – DO(4) – DO(5).

Para calcular la actividad enzimática en la prueba con [enzima]:

Actividad enzimática = DO (blanco) – DO (1) – DO(2) – DO(3) – DO(4) – DO(5).

Para calcular la actividad enzimática en la prueba con temperatura:

Actividad enzimática = DO (blanco) – DO (1) – DO(2) – DO(3) – DO(4) – DO(5).

Para calcular la actividad enzimática en la prueba con [sustrato]:

Actividad enzimática = Lectura inicial – Lectura final (esto se hace en cada tubo ya que se mide la DO

2 veces, una cada 5 minutos; notar que esta formula es para cada tubo).

INHIBICION ENZIMATICA Y VALORES DEL Km Y Vmax

⁅S⁆ (mM)

V1, sin inhibidor

(mmol.min-1)

V2, con inhibidor (mmol.min-1)

3,0 4,58 3,66

5,0 6,4 5,12

7,0 7,72 6,18

9,0 8,72 6,98

11,0 9,5 7,60

PRIMER PASO: Invertir todo.

1/[S] 1/V1 1/V2

0,34 0,22 0,273

0,2 0,156 0,195

0,142 0,129 0,162

0,12 0,114 0,143

0,09 0,105 0,132

SEGUNDO PASO: Usando la calculadora científica o Excel realizamos el calculo de la pendiente en función lineal.

1/[S] y 1/V1

1/[S] y 1/V2

Ecuacion para V1: y = 0.0614 + 0.467x

Ecuacion para V2: y = 0.0788 + 0.572x

Page 7: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

𝑦 = 𝑎 + 𝑏𝑥

𝐾𝑚

𝑉𝑚𝑎𝑥= 𝑏

1

𝑉𝑚𝑎𝑥= 𝑎

1

𝐾𝑚= 𝑎 𝑥

1

𝑏

CUARTO PASO: Para realizar la grafica de Lineweaver-Burk necesitamos 1/Km y 1/Vmax.

V1 = Sin inhibidor:

Aplicando las formulas obtenemos:

1/Km = 0.132

1/Vmax = 0.0614

Vmax = 16.28

V2 = Con inhibidor:

Aplicando las formulas obtenemos:

1/Km = 0.136

1/Vmax = 0.078

Vmax = 12.82

Observando la Vmax demostramos que la velocidad con inhibidor es menor que sin usar un inhibidor.

-0.132

-0.0614

-0.078

-0.136

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PRACTICA 5: DIGESTION ENZIMATICA DEL ALMIDON

ALMIDON: Polimero de glucosa con enlaces α1-4 (amilosa) y α1-6 (amilopectina).

En presencia del reactivo de Benedict (CuSO4 principalmente) un azúcar “reductor” precipita Cu2O que es de un

color rojo ladrillo.

GLUCOSA FRUCTOSA

ALMIDON

AZUCARES REDUCTORES: GLUCOSA, FRUCTOSA, MALTOSA.

NO SON AZUCARES REDUCTORES: SACAROSA, ALMIDON.

Digestion enzimática del almidon por accion de AMILASA => DEXTRINA, MALTOSA, MALTOTRIOSA Y GLUCOSA.

PRIMERA PARTE: DETERMINACION DEL SUSTRATO

Todos los tubos presentan almidon.

El tubo 1: Presenta el sustrato (almidon), buffer y NaCl (activador) pero no la enzima.

El tubo 2: Presenta el sustrato, buffer y el activador además de la enzima.

El tubo 3: Presenta el sustrato, buffer, no presenta activador y H2O además de la enzima.

El tubo 4: Presenta el sustrato, no presenta buffer, presenta HCl y la enzima.

PARA LA DETERMINACION DEL SUSTRATO: Se agrega HCl a todas la muestras para detener la reacción y se agrega

LUGOL que es el indicador.

El tubo 5 es de la preparación realizada en el tubo 1, el tubo 6 es de la preparación realizada en el tubo 2 y asi

sucesivamente.

TUBO 5: Tenemos todas las condiciones pero no la enzima por tanto el ALMIDON sigue completo y la solución se tiñe

de COLOR AZUL.

TUBO 6: Tenemos todas las condiciones y la enzima por tanto el ALMIDON se ha HIDROLIZADO y el lugol no se puede

fijar al producto de la hidrolisis que es la ACRODEXTRINA con un COLOR TRANSPARENTE.

TUBO 7: Falta el activador por tanto la reacción se da a medias, la solución se tiñe de ROSA PALIDO por que queda la

ERIDEXTRINA.

TUBO 8: Hemos agregado el HCl que es un acido y por tanto altera el pH optimo para el funcionamiento de la enzima

e inclusive la desnaturaliza por tanto el ALMIDON NO SE HIDROLIZA, obtenemos por tanto COLOR AZUL.

α1-6 α1-4

α1-4 α1-4 α1-4 α1-4

AMILOPECTINA (20%)

AMILOSA (80%)

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SEGUNDA PARTE: DETERMINACION DEL PRODUCTO

Como en la anterior prueba de las preparaciones que habíamos realizado agregamos REACTIVO DE BENEDICT, el

tubo 9 proviene del tubo 5, el tubo 10 proviene del tubo 6 y asi sucesivamente, el tubo 13 es GLUCOSA pura con

reactivo de BENEDICT.

TUBO 9: Teniamos ALMIDON, en reactivo de BENEDICT NO DA PRECIPITADO por tanto NO ES AZUCAR REDUCTOR.

TUBO 10: Teniamos ACRODEXTRINA o DEXTRINA que con BENEDICT da una solución celeste verdosa con precipitado

rojo por tanto ES AZUCAR REDUCTOR.

TUBO 11: Teniamos ERIDEXTRINA que da un resultado similar al tubo 10 siendo AZUCAR REDUCTOR.

TUBO 12: En reactivo de BENEDICT no forma precipitado, recordemos que quedaba ALMIDON que NO ES AZUCAR

REDUCTOR.

TUBO 13: Glucosa al 1% con BENEDICT forma precipitado ROJO LADRILLO por tanto es AZUCAR REDUCTOR.

TERCERA PARTE: REACCION DE BENEDICT

Tenemos Glucosa, Fructosa, Maltosa y Sacarosa “puras” que exponemos al reactivo de Benedict:

AZUCARES REDUCTORES: GLUCOSA, FRUCTOSA, MALTOSA.

NO SON AZUCARES REDUCTORES: SACAROSA, ALMIDON.

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PRACTICA 6: PRUEBA DE TOLERANCIA ORAL DE LA GLUCOSA

En sospecha de metabolismo anormal de la glucosa (DIABETES).

Para realizar la prueba en un paciente:

75g de glucosa (idealmente es 100g pero se obtiene el mismo resultado) + 400ml de H2O + 2 limones (para ayudar a

que el paciente tome la solución).

Aplicando lo aprendido en la PRACTICA 5:

Tenemos 2 muestras: 1 de nosotros (estamos sanos) y 1 de nuestro paciente del que tenemos sospecha de diabetes.

Exponemos esas 2 muestras al reactivo de Benedict y obtenemos:

Nuestra muestra de orina no forma precipitado.

La muestra de nuestro paciente forma precipitado ROJO LADRILLO => CONCLUSION: El paciente esta

eliminando azucares reductores (no sabemos si es glucosuria u otras, solo sabemos que es un azúcar).

𝑉. 𝑁. (𝐺𝐿𝑈𝐶𝑂𝑆𝐴 𝑆𝐸𝑅𝐼𝐶𝐴) = 75 → 115 𝑚𝑔/𝑑𝐿

𝑉. 𝑁. (𝐺𝐿𝑈𝐶𝑂𝑆𝐴 𝑆𝐸𝑅𝐼𝐶𝐴) = 4,16 → 6,39 𝑚𝑚𝑜𝑙/𝐿

CURVA DE TOLERANCIA ORAL DE LA GLUCOSA:

Nosotros en el laboratorio vamos a tener muestras de suero de un paciente al que se le han tomado dichas muestras

cada 30 minutos, mezclamos con Reactivo de glucosa y luego incubamos para luego medir su DO (Abs).

Con los mg/dl que obtengamos (ver mas adelante) realizamos una grafica que va a ser similar a las que están en la

parte superior.

Los valores estándar que debemos conocer son:

A los 0 minutos: Menor a 115 mg/dL.

A los 60 minutos: Menor a 180 mg/dL.

A los 120 minutos: Menor a 140 mg/dL.

Si la glucosa supera los 180 mg/dL a los 60´ el paciente generalmente presenta glucosuria.

CONVERSION DE mg/dL A mmol/L:

Ej: 75 mg/dL. 75𝑚𝑔

𝑑𝐿𝑥

1𝑑𝐿

10−1𝐿= 750𝑚𝑔/𝐿

𝑚𝑔 → 𝑚𝑚𝑜𝑙

1mol C6H12O6 180g

XmolC6H12O6 750g

X = 75/18 = 4.16 mmol/L

DETERMINACION DE LA GLUCOSA SERICA

Tubo 1 (Blanco) 2 (St) 3 (0´) 4 (30´) 5 (60´) 6 (90´) 7 (120´)

DO (Abs) - 0.231 0.274 0.366 0.650 0.624 0.582

DATO: St de glucosa = 100 mg/dL

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PRIMER PASO: Factor de Calibracion Estandar.

𝐹𝐶𝑠𝑡 =100

0.231= 433

SEGUNDO PASO: Calculo de mg/dL usando la formula ( [ ] ¿? = FCst x Abs ¿? )

0´ => 0.274 x 433 = 118.64 mg/dl

30´ => 0.366 x 433 = 158.48 mg/dl

60´ => 0.650 x 433 = 281.45 mg/dl

90´ => 0.624 x 433 = 270.2 mg/dl

120´ => 0.582 x 433 = 252 mg/dl

A los 60´ el paciente supero los 180 mg/dl y a 120´ (generalmente tiende a disminuir) sigue sobre los niveles

normales.

CONCLUSION: El paciente no metaboliza bien la glucosa, presenta una curva de tolerancia a la glucosa anormal y

probablemente sea diabético.

DIABETES

Un diabético presenta generalmente:

Polidipsia (sed).

Polifagia (hambre).

Poliuria (orina excesiva).

Al haber menos insulina la glucosa se eleva = Hiperglucemia, la glucosa en exceso no puede ser usada por el

organismo y en respuesta se inicia la gluconeogénesis que eleva aun mas la glucosa en sangre.

Se requieren sustratos para la gluconeogénesis (aminoácidos y lípidos) lo que lleva a proteólisis muscular causando

atrofia y que se manifiesta como polifagia (requiere materia prima para reparar el musculo que se esta

destruyendo), aumenta la lipolisis que a su vez aumenta los acidos grasos séricos que se transforman a cuerpos

cetónicos (acidos) los cuales reducen el bicarbonato (HCO3) en sangre derivando hacia una ACIDOSIS DIABETICA.

Page 12: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

PRACTICA 7: ACIDOSIS DIABETICA

Cuerpos cetónicos: Aceto acetato, Acetona (volátil) y B-hidroxibutirato.

Estos en sangre reducen el pH.

El bicarbonato en sangre esta asociado a sodio.

HCO3Na + HCl -> H2CO3 + NaCl -> H2O + CO2 + NaCl

𝑉. 𝑁. (𝐵𝐼𝐶𝐴𝑅𝐵𝑂𝑁𝐴𝑇𝑂 𝑆𝐸𝑅𝐼𝐶𝑂) = 26 → 32 𝑚𝐸𝑞/𝐿

PRIMERA PARTE => NEUTRALIZACION DEL BICARBONATO

Tenemos 2 Beackers con 1ml de suero en los que agregamos 5ml de HCl.

Para titular el Beacker 1 se requirió 2ml de NaOH.

5ml – 2ml = 3ml (Volumen de HCl neutralizado por el HCO3 que estaba en el suero).

Para titular el Beacker 2 se requirió 3,4 ml de NaOH.

5ml – 3,4ml = 1.6ml (Volumen de HCl neutralizado por el HCO3 que estaba en el suero).

Convertir los ml a L.

DATO: La normalidad = 0.1.

Ahora para calcular los mEq de HCO3 que había en el suero realizamos el siguiente procedimiento:

Beacker 1:

PRIMERA PARTE:

10−2 =#𝐸𝑞

3𝑥10−3⁄

#𝐸𝑞 = 3𝑥10−5

#𝑚𝐸𝑞 = 3𝑥10−5𝐸𝑞 𝑥 1000 𝑚𝐸𝑞

1 𝐸𝑞⁄

#𝑚𝐸𝑞 = 3𝑥10−2 (𝑒𝑛 1 𝑚𝑙)

SEGUNDA PARTE:

3x10^-2 1ml

XmEq 1L(1000ml)

X = 30 mEq/L

Beacker 2:

PRIMERA PARTE:

10−2 =#𝐸𝑞

16𝑥10−4⁄

#𝐸𝑞 = 16𝑥10−6

#𝑚𝐸𝑞 = 16𝑥10−6𝐸𝑞 𝑥 1000 𝑚𝐸𝑞

1 𝐸𝑞⁄

#𝑚𝐸𝑞 = 16𝑥10−3 (𝑒𝑛 1 𝑚𝑙)

SEGUNDA PARTE:

16x10^-3 1ml

XmEq 1L(1000ml)

X = 16 mEq/L

La muestra del Beacker 1 se encuentra en los valores normales pero la muestra del Beacker 2 esta disminuido.

CONCLUSION: El paciente del Beacker 2 probablemente se encuentre en acidosis.

SEGUNDA PARTE => TEST DE ROTHERA

Esta prueba se utiliza para determinar únicamente acetona (que es volátil y da el olor característico de manzana a un

diabético en acidosis), evidencia la presencia únicamente de acetona.

SO4(NH4)2 o Sulfato de Amonio + Nitroprusiato de Na + Orina

Si hay presencia de cuerpos cetónicos => Anillo purpura-rojizo.

Si no hay presencia de cuerpos cetónicos => Anillo transparente.

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PRACTICA 8: PERFIL LIPIDICO Y RIESGO CORONARIO

Enfermedad cardiaca coronaria = 1ra causa de morbilidad prematura causada por aumento en el colesterol

plasmático.

El HDL aumenta con los flavonoides, ejercicio y dieta adecuada.

La hipercolesterolemia no da síntomas, da signos.

Lipidos séricos = Colesterol + Trigliceridos.

Triglicerido = Glicerol + 3 acidos grasos (cadena carbonada con un grupo carboxilo).

HDL = Transporte en reversa del colesterol (hacia el hígado), de protección.

VALOR NORMAL DEL COLESTEROL = 160 - 200 mg/dl

VALOR NORMAL DE TRIGLICERIDOS = 60 – 200 mg/dl

VALOR NORMAL DEL HDL = 40 – 60 mg/dl

VALOR NORMAL DEL VLDL = 5 – 40 mg/dl

Si el colesterol pasa de 350 mg/dl se empiezan a observan Xantomas.

ECUACION DE FRIEDEWALD:

LDL = Colesterol total – HDL – VLDL (expresado en mg/dl)

VLDL = TG/5 si y solo si TAG < 400 mg/dl.

FACTOR DE CALIBRACION = CONCENTRACION/ABSORBANCIA O DENSIDAD OPTICA.

FORMULAS:

COLESTEROL = FC x DO

TRIGLICERIDOS = FC x DO

HDL = DO x FD

FD = FACTOR DE DILUCION = 76.5/ABSORBANCIA ESTANDAR.

RIESGO CORONARIO:

1) COLESTEROL TOTAL/HDL

Debe ser menor a 5, si es mayor = riesgo.

2) LDL/HDL

Debe ser menor a 3.5, si es mayor = riesgo.

Se disminuye el riesgo coronario con ejercicio + dieta.

DETERMINACION DEL COLESTEROL

Tubo N° Blanco Standard Muestra

1 Muestra

2

St-Colesterol: 200 mg/dl - 30 ul - -

Suero –Pb - - 30 ul 30 ul

Reactivo Color 3.0 ml 3.0 ml 3.0 ml 3.0 ml

ABSORBANCIA - 0.299 0.178 0.383

1) Calcular el FC:

FC = CONCENTRACION/ABSORBANCIA = 200/0.299 = 668.9

2) Muestra 1:

M1 = 668.9 X 0.178 = 119.1 mg/dl => Deseable

3) Muestra 2:

M2 = 668.9 X 0.383 = 256 mg/dl => Calculando el riesgo coronario se determina si hay riesgo.

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DETERMINACION DE TRIGLICERIDOS

Tubo N° Blanco Standard Muestra

1 Muestra

2

St-Triglicérido: 200 mg| dl - 30 ul - -

Suero -Pb - - 30 ul 30 ul

Reactivo Color 3.0 ml 3.0 ml 3.0 ml 3.0 ml

ABSORBANCIA - 0.384 0.151 0.642

1) Calcular el FC:

FC = 200/0.384 = 520.84

2) Muestra 1:

M1 = 520.84 X 0.151 = 78.54 => OK

3) Muestra 2:

M2 = 520.84 X 0.642 = 334.38 => MUY ALTO

4) Calculo del VLDL:

M1: 78.64/5 = 15.73

M2: 334.38/5 = 66.87

DETERMINACION DEL HDL

Tubo N° Blanco Standard Muestra 1 Muestra 2

Sobrenadante (ml) - - 0.30 0.30

Standard (ml) - 0.03 - -

Reactivo (ml) 3.00 3.00 3.00 3.00

ABSORBANCIA - 0.291 0.140 0.063

1) Factor de Dilucion:

FD = 76.5/0.291 = 262.89

2) Muestra 1:

M1 = 0.140 X 269.89 = 36.80 => OK

3) Muestra 2:

M2 = 0.063 X 269.89 = 16.55 => MUY BAJO

DETERMINACION DEL LDL

MUESTRA 1:

LDL = 119.1 – 36.8 - 15.73 = 66.57

MUESTRA 2:

LDL = 256 – 66.87 – 16.55 = 172.58

RIESGO CORONARIO

COLESTEROL/HDL < 5

LDL/HDL < 3.5

Page 15: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

MUESTRA 1:

A) 119.1/36.8 = 3.24 => OK

B) 66.57/36.8 = 1.8 => OK

MUESTRA 2:

A) 256/16.55 = 15.46 => ALTISIMO

B) 172.58/16.55 = 10.42 => ALTISIMO

CONCLUSION:

Paciente 1 no presenta ningún riesgo, en estado correcto de salud.

Paciente 2 presenta un alto riesgo, debe mejorar sus habitos de vida.

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PRACTICA 9: ICTERICIA E HIPERBILIRRUBINEMIA

Se presenta ictericia si la bilirrubina > 2 – 2.5 mg/dl => Se acumula en tejidos con mayor numero de fibras

elásticas (piel + mucosas) = ICTERICIA.

Hiperbilirrubinemia (No conjugada o Indirecta): En anemia hemolítica, Sindrome de Gilbert (Deficiencia parcial

de glucoroniltransferasa con leve ictericia, es benigno) y Sindrome de Crigler Najar (No glucoroniltransferasa =

ictericia no hemolítica con alto nivel de bilirrubina en sangre que ocasiona daño cerebral en el infante).

Hiperbilirrubinemia (Conjugada o Directa): Insuficiente capacidad de excreción como en hepatitis aguda,

obstrucción biliar, cirrosis hepática o colestasia.

PRE-HEPATICA Aumento de

Bilirrubina indirecta Sobreproduccion

Anemia hemolítica (autoinmune o esferocitosis). Talasemias. Anemia megaloblastica. Absorcion de hematomas.

La bilirrubina indirecta es

insoluble por tanto esta unida a la Hb y

no filtra.

HEPATICA

Aumento de Bilirrubina indirecta

Menor captación Sindrome de Gilbert Aumento en la excreción de la

bilirrubina directa ya que esta es

soluble y es filtrada por el riñon.

Menor conjugación Enfermedad de

Crigler Najar

Aumento de la Bilirrubina directa

Alteracion en transporte y

excreción

Sindrome de Dubin-Johnson

Sindrome Rotor

Obstruccion en via biliar intrahepatica

Cirrosis Biliar

Necrosis hepatocelular

Hepatitis

POST-HEPATICA Aumento de la

Bilirrubina directa Obstruccion en via biliar extrahepatica

Calculos biliares Calculos de cabeza

de pancreas

BILIRRUBINA TOTAL = 0.3 – 1.1 mg/dl

BILIRRUBINA DIRECTA = 0.1 – 0.4 mg/dl

BILIRRUBINA INDIRECTA = 0.2 a 0.7 mg/dl

La bilirrubina total medida con el acido sulfanilico diazodato, la bilirrubina indirecta medida con benzoato de

cafeína.

Reaccion de Ehrlich => Urobilinogeno.

Reaccion de Gmelin => Bilirrubina urinaria.

Bilirrubina = pigmento de heces y orina, 4 porfirinas abiertas.

Aumento de bilirrubina indirecta => alteración de antes de que entre al hígado (hemolisis masiva).

Aumento de bilirrubina directa => menor captación hepática, no conjugación y no hay excreción.

Heces claras = no bilirrubina = obstrucción, si hay bilirrubina en orina = no metabolismo.

Los carotenos ocasionan falsa ictericia => No se fijan a las mucosas.

La ictericia causada por BILIRRUBINA DIRECTA (HIDROSOLUBLE) y por tanto es la única que se puede difundir y

fijar al tejido.

Si la bilirrubina directa e indirecta están ambos elevados => Hemolisis y obstrucción.

Si todos los niveles de bilirrubina aumentados = Hiperbilirrubinemia (2.2 mg/dl de bilirrubina).

BILIRRUBINA DIRECTA BILIRRUBINA INDIRECTA

0.1 a 0.4 mg/dl 0.2 a 0.7 mg/dl

Soluble Insoluble

Libre Unida a albumina

Via circulación hepático renal Entra al higado

Conjugada con ac. glucoronico No conjugada

Page 17: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

Blanco Directa Total

Muestra 200 ul 200 ul 200 ul

Agua Destilada 2.4 ml 2.4 ml -

Desarrollador - - 2.4 ml

Reactivo sulfanílico 200 ul - -

Diazorreactivo - 200 ul 200 ul

ABSORBANCIA 0.057 0.177 0.252

Nos dan de dato:

Concentracion estándar = 2mg%

DO estándar = 0.09

1) CALCULO DEL FACTOR DE CALIBRACION:

FC = 2/0.09 = 22.23

2) CALCULO DE LA BILIRRUBINA TOTAL:

BT = FC (Abs – Blanco)

BT = 22.23 (0.252-0.057) = 4.33

3) CALCULO DE LA BILIRRUBINA DIRECTA:

BD = FC (Abs – Blanco)

BD = 22.23 (0.177 – 0.057) = 2.66

4) CALCULO DE LA BILIRRUBINA INDIRECTA:

BT = BD + BI

4.33 = 2.66 + BI

BI = 1.67

CONCLUSION:

Todos los niveles de bilirrubina en este paciente se encuentran aumentados, sufre de hiperbilirrubinemia.

Page 18: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

PRACTICA 10: TRANSAMINACION

AA en el hígado Eliminacion de α-amino = TRANSAMINACION => Paso del amino desde el aminoácido entrante al

α-cetoglutarato formando además un α-cetoacido, es una reacción REVERSIBLE.

DATO: Prolina, hidroxiprolina, lisina y treonina no participan en transaminacion.

TRANSAMINASAS Y LESIONES TISULARES

Alanina aminotransferasa (ALT) = Glutamato – piruvato transaminasa (GPT), específicamente

hepática, menor en hepatitis vírica pero mayor en cirrosis, enfermedad hepática, tumores hepáticos,

colestasis y hepatitis toxica.

glutamato + piruvato ⇌ α-cetoglutarato + alanina

Aspartato aminotransferasa (AST) = Glutamato – oxalacetato transaminasa (GOT) en corazón,

hígado y musculo; en cantidades elevadas en infarto agudo de miocardio, hepatopatía y miopatías

(daño celular grave).

L-aspartato + 2-oxoglutarato ⇌ oxalacetato + L-glutamato

Creatina quinasa => Primera en liberarse al suero sanguíneo tras un ataque cardiaco, ellas dan

información sobre la gravedad de la lesión.

Creatina quinasa GOT GTP

Tubo N° 1 1 2

PIRUVATO 0.2 M (ml) 0.3 0.3

GLUTAMATO 0.2 M (ml) 0.3 0.3

ARSENITO 0.2 M (ml) 0.4 0.4

ENZIMA ACTIVA 0.2 M (ml) 0 1

ENZIMA INACTIVA 0.2 M (ml) 1 0

Aminacion de α-cetoglutarato

quedando como glutamato.

Desaminacion de α-aminacido

quedando como α-cetoacido.

Dador de aminos en rutas

biosinteticas y de excreción.

TRANSAMINACION => Enzima = Transaminasa

Cofactor = Piridoxal fosfato (de vit. B6).

Transportador de aminos

Racemizacion (Cα)

Descarboxilacion

Transaminasa = Amino transferasa

Page 19: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

En la guía se proporciona este cuadro que en realidad no es muy útil en el procedimiento, se usaron “capilares” para

distribuir la muestra en el papel de silica con 4 puntos equidistantes que eran de: Alanina, Glutamato, M1 y M2.

Buscabamos determinar a que correspondían la muestra 1 y la muestra 2.

Rf = relación de frentes, expresa la posición de un compuesto sobre la placa.

Rf = Distancia de la sustancia/Distancia del solvente

El solvente es el agua por tanto mediamos hasta donde el H2O subia en el papel de silica.

Se obtuvo que la distancia del H2O (solvente) era de 14,3 cm.

La distancia de la alanina fue de 7,2 cm.

La distancia del glutamato fue de 5,7 cm.

La distancia de la muestra 1 fue de 7,2 cm.

La distancia de la muestra 2 presentaba 2 puntos: a 5,3 cm y a 7 cm.

CALCULO DEL RF:

ALANINA: 7.2/14.3 = 0.5 cm.

GLUTAMATO: 5.7/14.3 = 0.39 cm.

MUESTRA 1: 7.2/14.3 = 0.5 cm => Por tanto es de ALANINA.

MUESTRA 2:

Punto 1: 5.3/14.3 = 0.37 cm => Muy cercano al GLUTAMATO.

Punto 2: 7/14.3 = 0.48 cm => Muy cercano al de ALANINA.

Page 20: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

PRACTICA 11: BALANCE NITROGENADO, RELACION INGESTA – EXCRETA

Evaluacion del metabolismo proteico, se evalua mediante el nitrógeno total estimado.

BN = N. INGERIDO – (N. UREICO + N. CREATININICO + 2)

Nitrogeno ureico = 88%, Nitrogeno creatininico = 7%, Nitrogeno eliminado por sudor o piel 3% (no significativo).

Las proteínas y aa no se almacenan por tanto el exceso se exceta.

Tipos:

BN 0 => Ingesta = Excreta => Ideal, en individuos sanos.

BN (-) => Ingesta < Excreta => En inanición, desnutrición, vejez, diabetes no controlada, fiebre, estrés (sepsis,

post quirúrgico, traumatismo, quemaduras).

BN (+) => Ingesta > Excreta => En niñez (crecimiento), gestantes, pacientes en recuperación y post inanición.

Valores:

>2 = Anabolismo

2 a -2 = Equilibrio

-2 a -5 = Catabolismo leve

-5 a -10 = Catabolismo moderado

< -10 = Catabolismo severo

Volumen normal de la orina = 1.4 a 1.5 L

Nitrogeno ingerido:

1g de Nitrogeno = 1g de proteína/6.25

6.25:

100g proteínas 16g de N (experimentalmente)

X 1g de N

X = 6.25 => Por cada 6.25g de proteínas se elimina 1g de N.

Si se presenta albuminuria la formula tiene una variación:

BN = N. INGERIDO – (N. UREICO + N. CREATININICO + 2 + PROTEINA URINARIA/6.25)

Valores normales de los parámetros:

VN DE CREATININA = 0.8 – 1.5 g/dia

VN DE UREA = 15 – 30 g/dia

VN DE N. Ureico = 7 – 14 g/dia

Ingesta de proteínas en adulto: 0.7 a 0.8g/kg/dia.

Creatinina:

Producto de la actividad muscular, disminuye al movilizarla. De la degradación de creatinina,

se filtra en los riñones y se excreta en la orina, se utiliza para valorar la función renal.

Peso Molecular = 113

# de N = 3

Creatina:

Derivado de Arginina, Glicina y Metionina, se sintetiza en el hígado y páncreas, esta

presente en el musculo y la neurona, se usa como vector para el transporte de ATP

hacia la miofibrilla.

Urea:

Producto de la degradación de compuestos nitrogenados mediante el ciclo de la urea.

Urea por accion de UREASA => 2NH3 + CO2

Peso Molecular = 60

# de N = 2

DATOS GENERALES DEL PACIENTE

PACIENTE 1: Volumen de orina = 1500ml, Peso = 65 kg, Ingesta proteica = 1g/kg.

PACIENTE 2: Volumen de orina = 1200ml, Peso = 42 kg, Ingesta proteica = 0.7g/kg.

Page 21: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

DETERMINACION DEL NITROGENO INGERIDO

PACIENTE 1:

1 X 65 = 65g de proteína

Para el calculo del nitrógeno ingerido recordar: 6.25 g de proteínas = 1 g de N.

65/6.25 = 10.4g de N

PACIENTE 2:

0.7 X 42 = 29.4 g de proteina

Para el calculo del nitrógeno ingerido recordar: 6.25 g de proteínas = 1 g de N.

29.4/6.25 = 4.704g de N

DETERMINACION DE LA CREATININA

N° TUBO BL ST Muestra 1 Muestra 2

ORINA 1/10 ml 0.04 0.04

AGUA ml 0.8 0.2 0.8 0.8

St. 1.5 mg/dl ml 0.2

R. Pícrico ml 1.6 0.8 1.6 1.6

Buffer Alcalino ml 0.4 0.2 0.4 0.4

ABSORBANCIA - 0.159 0.8 0.099

1) Creatinina en orina:

Absorbancia de la muestra/Absorbancia del estándar x 150

Muestra 1:

0.8/0.159 x 150 = 754.72 mg/dl

Muestra 2:

0.099/0.159 x 150 = 93.396 mg/dl

2) Creatinina urinaria en 24 horas:

Creatinina en orina X Volumen de orina en 24 Hrs (L)

Muestra 1:

754.72 x 1.5 = 1132.08

Muestra 2:

93.396 x 1.2= 112.0752

3) Nitrogeno creatininico en 24 horas:

(Creatinina urinaria x 0.37)/100

Muestra 1:

1132.08 x 0.37/100 = 4.1886 g/dia

Muestra 2:

112.0752 x 0.37/100 = 0.4146 g/dia

¿De donde proviene el 0.37?

La creatinina presenta 3 Nitrogenos, 3x14 = 42. 113 es el peso molecular de la creatinina.

113g de creatinina 42g de Nitrogeno

1g de creatinina X => 0.37

Page 22: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

DETERMINACION DE LA UREA

N° TUBO Blanco Standard Muestra 1 Muestra 2

Orina:1/100 (ml) 0.02 0.02

St:66mg/dl (ml) 0.02

Reactivo de trabajo (ml) 2.0 2.0 2.0 2.0

Mezclar incubar 3' a 37°C o 5’ a T° ambiente

Reactivo de Hipoclorito (ml) 2.0 2.0 2.0 2.0

Mezclar incubar 5' a 37°C o 10’ a T° ambiente

ABSORBANCIA - 0.891 0.164 0.090

1) Factor Urea:

66/Abs estándar => 66/0.891 = 74

2) Urea en orina en 24 horas:

Factor Urea X DO de muestra X Volumen (ml)

Muestra 1:

74 x 0.164 x 1500 = 18204

Muestra 2:

74 x 0.090 x 1200 = 7992

3) Nitrogeno ureico en 24 horas:

(Urea en orina en 24 horas x 0.455)/1000

Muestra 1:

18204 x 0.455/1000 = 8.285 g/dia

Muestra 2:

7992 x 0.455/1000 = 3.636 g/dia

¿De donde proviene el 0.455?

La urea presenta 2 Nitrogenos, 2x14 = 28. 60 es el peso molecular de la Urea.

60g de urea 28g de Nitrogeno

1g de urea X => 0.46

BALANCE NITROGENADO

PACIENTE 1:

BN = 10.4 – (8.28 + 4.188 + 2) = -4.068

PACIENTE 2:

BN = 4.704 – (0.414 + 3.63 + 2) = -1.34

CONCLUSION:

El paciente numero 1 presenta un catabolismo leve, necesita reponer las perdidas.

El paciente numero 2 esta sano, es normal.

Page 23: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

PRACTICA 12: EVALUACION DE MASA PROTEICA VISCERAL Y ESQUELETICA

Compartimiento visceral midiendo: Transferrina, Pre-albumina, Albumina => Proteina total.

Compartimiento esquelético: Excrecion de la creatinina.

Nivel alto de albumina: Inflamacion o infección (hepatitis) además de transtornos en la medula osea.

Nivel bajo de albumina: Hemorragia, transtorno hepático, glomerulonefritis, desnutrición, absorción insuficiente o

quemaduras.

La albumina mantiene la presión oncotica (carga -), para sintetizar hormonas tiroideas, transporte de acidos

grasos, control del pH.

PROTEINA TOTAL ALBUMINA CREATININA PESO/TALLA VARON MUJER VARON MUJER VARON MUJER VARON MUJER

7,01

6,99 3,89 3,9 660-830 430-670 30-38 29-34

g/dL g/dL g/dL g/dL mg/24h/m mg/24h/m Kg/m Kg/m

KWASHIORKOR

MARASMO

Observamos que hay poca diferencias de genero en cuanto a la PROTEINA TOTAL y ALBUMINA SERICA.

Indicadores para el Kwashiorkor: PROTEINA TOTAL y ALBUMINA SERICA.

Indicadores para el Marasmo: CREATININA URINARIA e INDICE PESO Y TALLA.

KWASHIORKOR

En niños de 1-3 años, dieta baja en proteínas pero ingesta de CH normal o excesiva.

Sintomatologia: Irritabilidad, diarrea, falta de crecimiento, infecciones, cambios en el color del pelo, piel escamosa,

infiltración grasa en el hígado, menor masa muscular y edema masivo.

MARASMO

Carencia de alimentos en general (poca proteínas y poco CH), mas común en el primer año de edad.

Cuasado también por infecciones o parasitosis, también parto prematuro, malabsorción o interrupción temprana de

la lactancia.

Sintomatologia: Crecimiento deficiente, poca grasa subcutánea, delgadez extrema, anemia, ulceraciones por presión,

cambio en la textura del cabello el color normal.

KWASHIORKOR MARASMICO

Malnutricion grave con edema y peso menor al 60% de lo esperado de su edad. Presentan caracterisiticas del

marasmo y edema, además se puede observar dermatosis y hepatomegalia.

CARACTERISTICA KWASHIORKOR Hipoalbuminemia

MARASMO Caquexia

EDEMA SI NO

DERMATOSIS FRECUENTE RARO

CARÁCTER IRRITABLE APATICO

IMC NORMAL/AUMENTADO DISMINUIDO

GRASA CORPORAL NORMAL/AUMENTADO DISMINUIDO

ALBUMINA DISMINUIDO NORMAL/AUMENTADO

MASA MUSCULAR NORMAL DISMINUIDO

HIGADO GRASO SI NO

INSULINA NORMAL DISMINUIDO

CORTISOL NORMAL/DISMINUIDO AUMENTADO

DATOS GENERALES DEL PACIENTE:

PACIENTE 1: Peso = 45kg, Talla = 1.65m, Indice Peso/Talla = 27.27, Volumen de Orina en 24hrs = 1500ml.

PACIENTE 2: Peso = 50kg, Talla = 1.56m, Indice Peso/Talla = 32.05, Volumen de Orina en 24hrs = 1200ml.

Page 24: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

DETERMINACION DE LA PROTEINA TOTAL

BL Muestra 1 Muestra 2 St

Agua destil. 20 ul

Suero 20 ul 20 ul

St. Prot. Tot 5.7 g/dl 20 ul

R. Color 2.0 ml 2.0 ml 2.0 ml 2.0 ml

ABSORBANCIA - 0.127 0.131 0.162

1) Calculando el FC:

FC = Concentracion/Abs estándar

FC = 5.7/0.162 = 35.185

2) Calculando la proteína total:

Concentracion Muesta = FC x Absorbancia de muestra

MUESTRA 1:

35.185 x 0.127 = 4.468g/dl

MUESTRA 2:

35.185 x 0.131 = 4.609g/dl

INTERPRETACION: Ambos pacientes presentan la proteína total sérica baja.

DETERMINACION DE LA ALBUMINA SERICA

BL Problema Problema St

Agua destil. 20 ul

Suero 20 ul 20 ul

St. Albúmina 3.3 g/dl 20 ul

R. Color 2.0 ml 2.0 ml 2.0 ml 2.0 ml

ABSORBANCIA - 0.677 0.551 0.435

1) Calculando el FC:

FC = Concentracion/Abs estándar

FC = 3.3/0.435 = 7.586

2) Calculando la proteína total:

Concentracion Muesta = FC x Absorbancia de muestra

MUESTRA 1:

7.586 x 0.677 = 5.135g/dl

MUESTRA 2:

7.586 x 0.551 = 4.179g/dl

INTERPRETACION: Ambos pacientes presentan niveles correctos de albumina serica.

Page 25: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

DETERMINACION DE LA CREATININA URINARIA

N° TUBO BL ST Muestra 1 Muestra 2

ORINA 1/10 ml 0.04 0.04

AGUA ml 0.8 0.2 0.8 0.8

St. 1.5 mg/dl ml 0.2

R. Picrico ml 1.6 0.8 1.6 1.6

Buffer Alcalino ml 0.4 0.2 0.4 0.4

ABSORBANCIA - 0.170 0.054 0.092

1) Calculando la creatinina urinaria:

Creatinina urinaria (mg/dl) = Absorbancia muestra/Absorbancia estándar x 150

MUESTRA 1:

0.054/0.170 x 150 = 47.64mg/dl

MUESTRA 2:

0.092/0.170 x 150 = 81.176mg/dl

2) Calculando la creatinina urinaria en 24hrs:

Creatinina urinaria x Volumen de orina (L) x 10

MUESTRA 1:

47.64 x 1.5 x 10 = 714.6mg/24hrs

Luego: 714.6/1.65 (talla del paciente 1) = 433.09 mg/24hrs/m

MUESTRA 2:

81.176 x 1.2 x 10 = 974.112mg/24hrs

Luego: 974.112/1.56 (talla del paciente 2) = 624.43 mg/24hrs/m

INTERPRETACION: Si ambos pacientes son varones entonces ambos pueden ser marasmaticos, si ambos son mujeres

entonces están dentro del rango normal.

GLOBAL

Paciente 1:

Indice peso/talla: 27.27

Proteina total sérica: 4.468g/dl

Albumina sérica: 5.135g/dl

Creatinina urinaria: 433.09 mg/24hrs/m

Paciente 2:

Indice peso/talla: 32.05

Proteina total sérica: 4.609g/dl

Albumina sérica: 4.179g/dl

Creatinina urinaria: 624.43 mg/24hrs/m

Si el paciente es varon: El índice

peso/talla y la creatinina urinaria

corresponden a un marasmatico.

Si el paciente es mujer: El único índice

bajo es el de proteína total, no se

concluye que tenga Kwahiorkor, esta

normal.

Page 26: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

PRACTICA 13: METODOS PARA LA EVALUACION NUTRICIONAL

PESO CORPORAL:

%𝑃𝑒𝑠𝑜 𝐼𝑑𝑒𝑎𝑙 = 𝑃𝑒𝑠𝑜 𝐴𝑐𝑡𝑢𝑎𝑙𝑃𝑒𝑠𝑜 𝐼𝑑𝑒𝑎𝑙⁄ 𝑥100

+120% = OBESIDAD

110-120 = SOBREPESO

90-110 = NORMAL

80-90 = DESNUTRICION LEVE

70-80 = DESNUTRICION MODERADA

-69% = DESNUTRICION GRAVE

PESO IDEAL SEGÚN TALLA (Metodo Practico):

HOMBRES

1.45->1.5 => 53±1

1.5->1.55 => 56±1

1.55->1.6 => 59±1

1.6->1.65 => 62±1

1.65->1.7 => 65±1

1.7->1.75 => 68±1

1.75->1.8 => 72±1

1.8->1.85 => 76±1

MUJERES

1.40->1.45 => 46±1

1.45->1.5 => 49±1

1.5->1.55 => 52±1

1.55->1.6 => 55±1

1.6->1.65 => 58±1

1.65->1.69 => 61±1

IMPORTANTE: Es +1 si se aproxima al límite superior y es -1 si se aproxima al limite inferior.

INDICE DE MASA CORPORAL:

𝐼𝑀𝐶 = 𝑃𝑒𝑠𝑜𝑇𝑎𝑙𝑙𝑎2⁄

+40 = OBESO MORBIDO

35-39,9 = OBESIDAD SEVERA

30-35,9 = OBESIDAD MODERADA

25,1-30 = SOBREPESO

19,1-25 = NORMAL

17-19 = DESNUTRICION LEVE

16-16,9 = DESNUTRICION MODERADA

-16 = DESNUTRICION SEVERA

ADECUACION DE LA DIETA:

𝐴𝑑𝑒𝑐𝑢𝑎𝑐𝑖𝑜𝑛 𝑑𝑒 𝐷𝑖𝑒𝑡𝑎 = 𝐸𝑛𝑒𝑟𝑔𝑖𝑎 𝑑𝑒 𝐷𝑖𝑒𝑡𝑎

𝑁𝑒𝑐𝑒𝑠𝑖𝑑𝑎𝑑 𝐸𝑛𝑒𝑟𝑔𝑒𝑡𝑖𝑐𝑎⁄ 𝑥100%

V.N. = 100%, aumento = sobrepeso, disminución = desnutrición.

GASTO CALORICO:

𝐷𝑢𝑟𝑎𝑐𝑖𝑜𝑛 𝑑𝑒 𝑎𝑐𝑡𝑖𝑣𝑖𝑑𝑎𝑑 𝑥 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑥 𝑃𝑒𝑠𝑜

Hombres = 2800 Kcal/24h, Mujeres = 2200 – 2500 Kcal/24h.

En el paciente su metabolismo basal:

Varon = (1xpesox24)+50%

Mujer = (0,9xpesox24)+50%

PLIEGUE CUTANEO:

Estimado del almacenamiento de lípidos.

Varon = 12,5 mm.

Mujer = 16,5 mm.

+3

+3

+3

+3

+3 +4

+4

+3

+3

+3

+3

+3

Page 27: Laboratorios de Bioquimica FAMURP-2016

CIRCUNFERENCIA MUSCULAR DEL BRAZO:

𝐶𝑖𝑟𝑐𝑢𝑛𝑓𝑒𝑟𝑒𝑛𝑐𝑖𝑎 𝑀𝑢𝑠𝑐𝑢𝑙𝑎𝑟 𝑑𝑒𝑙 𝐵𝑟𝑎𝑧𝑜 = 𝐶𝑖𝑟𝑐𝑢𝑛𝑓𝑒𝑟𝑒𝑛𝑐𝑖𝑎 𝐵𝑟𝑎𝑧𝑜 − (3,34 𝑥 𝑃𝑙𝑖𝑒𝑔𝑢𝑒 𝑐𝑢𝑡𝑎𝑛𝑒𝑜)

VN Circunferencia Muscular:

Varon = 25,3 mm.

Mujer = 23,2 mm.

VN Circunferencia Brazo:

Varon = 29,3 mm.

Mujer = 28,5 mm.

TABLA DE COMPOSICION DE ALIMENTOS:

𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑃𝑟𝑜𝑡𝑒𝑖𝑛𝑎𝑠 𝑥 4 = 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑃𝑟𝑜𝑡𝑒𝑖𝑛𝑎𝑠

𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝐶𝑎𝑟𝑏𝑜ℎ𝑖𝑑𝑟𝑎𝑡𝑜𝑠 𝑥 4 = 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝐶𝑎𝑟𝑏𝑜ℎ𝑖𝑑𝑟𝑎𝑡𝑜𝑠

𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝐿𝑖𝑝𝑖𝑑𝑜𝑠 𝑥 9 = 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝐿𝑖𝑝𝑖𝑑𝑜𝑠

𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑇𝑂𝑇𝐴𝐿 = 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑃𝑟𝑜𝑡𝑒𝑖𝑛𝑎𝑠 + 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝐶𝑎𝑟𝑏𝑜ℎ𝑖𝑑𝑟𝑎𝑡𝑜𝑠 + 𝐾𝑐𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝐿𝑖𝑝𝑖𝑑𝑜𝑠

Ej: Cantidad de proteínas en leche fresca de vaca = 3.1g/100g, supongamos que una persona consume 200ml de

leche fresca de vaca al dia:

Si en 100g hay 3.1g en 200g habrá => 6.2g de proteínas => 6.2 x 4 = 24.8 Kcal obtenemos de 200ml de leche fresca de

vaca.

GASTO ENERGETICO POR ACTIVIDAD FISICA (TENER COMO REFERENCIA):

En esta pagina se encuentran la cantidad de proteínas, grasas, carbohidratos y demás en determinados alimentos:

http://www.ins.gob.pe/insvirtual/images/otrpubs/pdf/Tabla%20de%20Alimentos.pdf