guia de practicas - farmacologia 1
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UNIVERSIDAD INCA GARCILASO DE LA VEGA Nuevos Tiempos. Nuevas Ideas
Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímica
GUIA DE PRÁCTICAS
FARMACOLOGÍA I
ALUMNO
DOCENTE
CICLO SECCIÓN/TURNO/AULA
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____________
INTRODUCCIÓN
La Farmacología es la Ciencia que se encarga de estudiar el origen, acciones y propiedades de las sustancias químicas biológicamente activas (P.A.), empleadas para aliviar, prevenir, diagnosticar y tratar una enfermedad.
El curso de Farmacología I, forma parte de la malla curricular de formación académica de los futuros profesionales Químicos Farmacéuticos y Bioquímico de la UIGV, que tiene por finalidad desarrollar competencias en los estudiantes del VIII ciclo.
La Investigación y Desarrollo de nuevos medicamentos es un proceso de investigación que dura en promedio de 12 a más años, que incluyen la etapa de descubrimiento, la etapa preclínica y la etapa clínica. Los estudios preclínicos son pruebas que se llevan a cabo en un contexto científicamente controlado con utilización de cultivos celulares, órganos aislados y/o empleo de animales de experimentación como modelos, contribuyendo así en las ciencias biomédicas.
Las prácticas de Laboratorios de Farmacología I que se han programado, tienen por objetivo, brindar los fundamentos básicos, las técnicas y procedimientos establecidos en los diferentes modelos experimentales; que incluyen, la manipulación de animales, la inducción, la evaluación de indicadores, la interpretación, etc.; que permiten comprobar y verificar, de manera experimental, las bondades farmacoterapéuticas de los P.A. que establecen los fundamentos teóricos.
En este contexto, el presente Manual de Prácticas de Laboratorio se ha diseñado con la finalidad de proporcionar al estudiante, información necesaria para realizar adecuadamente los procedimientos experimentales, que permitan desarrollar las competencias establecidas en cada experiencia.
Docentes Responsables
PROGRAMACIÓN DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO
SEMANA II: INTRODUCCIÓN. FUNDAMENTOS DE LA FARMACOLOGÍA EXPERIMENTAL SEMANA III Práctica N° 1 : Soluciones de Fármacos y Volumen de Administración. SEMANA IV Práctica N° 2 : Vías de Administración y Efecto Farmacológico. SEMANA V Práctica N° 3 : Farmacocinética Experimental. SEMANA VI Práctica N° 4 : Farmacodinamia Experimental.
SEMANA VII: EXAMEN PARCIAL SEMANA VIII Práctica No 5 : Farmacología del SNP – Anestésicos Locales SEMANA IX Práctica No 6 : Farmacología del SNP – Bloqueadores Neuromusculares SEMANA X Práctica N° 7 : Farmacología del SNC – Anestésicos Generales. SEMANA XI Práctica N° 8 : Farmacología del SNC – Psicoestimulantes y Antidepresivos. SEMANA XII Práctica N° 9 : Farmacología del SNC – Anticonvulsivantes. SEMANA XIII Práctica N° 10 : Farmacología del Dolor: Actividad Analgésica. SEMANA XIV Práctica N° 11 : Farmacología de la Inflamación: Actividad Antiinflamatoria.
SEMANA XV: EXAMEN FINAL
SEMANA XVI: INFORME Y ENTREGA DE PROMEDIOS
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PRÁCTICA N° 1
PREPARACIÓN DE SOLUCIONES Y DETERMINACIÓN DE VOLÚMENES DE ADMINISTRACIÓN
1.1. MARCO TEÓRICO Los fármacos están diseñados y preparados para ser administrado en personas que, en promedio, pesan 70 Kg, obteniéndose resultados seguros y eficaces que logran mejorar su calidad de vida. Durante el desarrollo y descubrimiento de nuevos medicamentos, los modelos experimentales forman parte de los estudios preclínicos, que implican el empleo de animales de experimentación; siendo los más empleados para llevar a cabo los bioensayos: el perro, gato, conejo, cobayo, rata, ratón, rana, sapo, etc., proporcionando datos de suma importancia para las investigaciones clínicas posteriores. Para comprobar los efectos de los medicamentos en modelos experimentales, es necesario que previamente sean diluidos a concentraciones adecuadas cuyo volumen de administración debe de ser determinada en función al peso y dosis mediante cálculos matemáticos. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Preparación de soluciones. Concentraciones de soluciones.
1.3. COMPETENCIAS
Preparar correctamente soluciones de fármacos a partir de productos farmacéuticos. Determinar el volumen de administración de las soluciones de fármacos.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Beacker Probeta Embudo Algodón
Mortero Varilla de agitación Viales Jeringas 1 mL Papel de filtro
1.5. REACTIVOS
Diclofenaco 75 mg/3mL Paracetamol 500 mg
AAS 500 mg
1.6. PROCEDIMIENTO
1° Determinar mediante cálculos matemáticos el volumen de agua destilada necesario
que se le debe de añadir a los fármacos para preparar las disoluciones, de acuerdo a las concentraciones planteado por el docente.
2° Para el caso de formas farmacéuticas sólidas, utilizar la tableta completa y pulverizarlo en el mortero y colocarlo en un beacker.
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3° Para el caso de formas farmacéuticas líquidas, medir las fracciones del volumen con la pipeta y colocarlo en un beacker.
4° Anadir el volumen de agua a b) y c) dependiendo del caso, hasta completar c. s. p. el volumen planteado por el docente.
5° Filtrar y colocar la disolución en un vial y rotularlo, indicando el fármaco, la
concentración y fecha.
PREPARACIÓN DE SOLUCIONES 1. Preparar una solución de Glibenclamida 0,5 mg/mL, si se tiene tabletas de AMARYL
4 mg.
2. Preparar una solución de Metformina 40 mg/mL, si se tiene tabletas de GLUNOR 1 g.
3. Preparar una solución de Dimenhidrinato 0,25 ‰, si se tiene tabletas de 5 mg.
4. Preparar 10 mL de una solución de Tramadol 2 mg/mL, si se tiene 2 mL de ampolla de TRAMAL 100 mg/2 Ml
5. Preparar 10 mL de una solución de Clorfenamina 0,2 mg/mL, si se tiene jarabe de
CLOROALERGAN 2 mg/5 mL
6. Preparar 50 mL de una solución de Hioscina 0,1 ‰, si se tiene 1 mL de ampolla de BUSCAPINA 20 mg/mL
7. Preparar 5 mL de una solución de Ibuprofeno 0,1 %, si se tiene suspensión de
DOLORAL 100 mg/5 mL
8. Preparar una solución de Adrenalina 0,05 mg/mL, si se tiene 1 mL de ampolla de Epinefrina 1 ‰.
9. Preparar 10 ml. de una solución de Orfenadrina 0,5 %, si se tiene 2 mL de ampolla
de NORFLEX 60 mg/ 2 mL
10. Preparar 10 mL de una solución de Metamizol 2,5 %, si se tiene gotas orales de ANTALGINA 200 mg/mL
DETERMINACIÓN DE VOLÚMENES DE ADMINISTRACIÓN 1. Se desea aplicar a un ratón de 220 g, una dosis de 1 mg/Kg de Glimepirida 0,8 mg/mL
por vía peroral. ¿Qué volumen se aplicará?
2. ¿Qué volumen de Metformina 10 mg/mL se le administrará, por vía peroral, a una rata de 340 g, si la dosis es 15 mg/Kg?
3. Un cliente llega a la veterinaria con su perro con vómitos, el Médico veterinario
determina que pesa 2,30 Kg y le inyecta por vía i.m. una dosis de 8 mg/Kg de Dimenhidrinato 0,5 %. ¿Qué volumen del fármaco le aplicó?
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4. Para evaluar la actividad analgésica del Tramadol 2,5 mg/mL se usa ratas de peso promedio de 320 g y una dosis de 3 mg/Kg, según esta información qué volumen del fármaco se aplicará en promedio.
5. Durante la práctica de antiasmáticos se aplica Clorfenamina 0,2 mg/mL a una dosis
de 0,2 mg/Kg a un cobayo de 420 g. ¿Qué volumen del antihistamínico se aplicó?
6. Se aplica Hioscina 0,1 % a una rata de 340 g a una dosis de 1,2 mg/Kg. ¿Qué volumen del fármaco se aplicó?
7. Durante la práctica de antiinflamatorios se evalúa la eficacia de diversos fármacos;
se aplica el AINE Ibuprofeno 0,1 % a un lote de ratas de peso promedio 330 g, una dosis de 1,5 mg/Kg. Según estos datos qué volumen del AINE se aplica en promedio.
8. Se aplica una dosis de 0,25 mg/Kg de Adrenalina 0,5 ‰ a un cobayo de 380 g. ¿Qué
volumen del adrenérgico se aplicó?
9. Se aplica un relajante muscular a un perro de 3 Kilos 400 gramos. El Médico veterinario prepara una solución de Orfenadrina 0,5 % para aplicarlo a una dosis de 5,5 mg/Kg. ¿Qué volumen del fármaco se aplicó?
10. Se aplica a un ratón de 275 g una dosis de 47 mg/Kg Metamizol 2,5 %. ¿Qué volumen
se administró?
1.7. RESULTADOS
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1.8. CUESTIONARIO Completar la siguiente tabla indicando los volúmenes máximos que se pueden administrar a los siguientes animales de experimentación según las vías de administración correspondiente.
Vía Volumen Máximo de Administración en animales
Ratón Rata Cobayo Conejo Gato Perro
Oral
i. m.
s. c.
i. p.
e. v.
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PRÁCTICA N° 2
VÍAS DE ADMINISTRACIÓN Y EFECTO FARMACOLÓGICO
1.1. MARCO TEÓRICO
Las soluciones de los medicamentos que se emplean para evaluar su actividad farmacológica pueden ser administradas por diferentes vías, siendo los más comunes la vía oral (v.o.), vía subcutánea (s.c.), vía intramuscular (i.m.), vía intraperitoneal (i.p.) y vía intravenosa (i.v.). Para garantizar una correcta administración, es necesario que, se realice en forma correcta y adecuada la manipulación de los animales de experimentación, respetando las técnicas de administración.
Los efectos de los fármacos son manifestaciones que desencadenan la acción que produce sobre la función celular, regulándola o modulando, pero sin generar nuevas funciones, que son evidenciadas mediante los indicadores de evaluación, que pueden ser percibidos mediante la observación, el conteo y/o a través del empleo de aparatos sencillos como termómetro, balanza, vernier, etc. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Vías de Administración: ventajas y desventajas. Acción y Efecto farmacológico. Periodo de Latencia (P. L.), Intensidad del Efecto (I. E.) y Duración del Efecto (D. E.).
1.3. COMPETENCIAS
Manipular correctamente los animales de experimentación de acuerdo a la vía de administración.
Conocer las diferentes vías de administración empleados en experimentación animal. Conocer la influencia de las vías de administración sobre el P. L., I. E. y D. E.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Cronómetro
Jeringas 1 mL Sonda metálica
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
08 Ratones albinos (Mus musculus): peso no menor de 20 g.
1.6. REACTIVOS
Solución Pentobarbital sódico 0,4 % Solución Estricnina sulfato 0,36 mg/mL 1.7. PROCEDIMIENTO
1° Marcar y pesar los animales de experimentación. 2° Observar el comportamiento y conducta de los ratones. 3° Administrar por vía oral (v.o.), intramuscular (i.m.), subcutánea (s.c.) e intraperitoneal
(i.p.) a 04 ratones una dosis de 50 mg/Kg de Pentobarbital y a los restantes una dosis de 1,8 mg/Kg de Estricnina.
4° Observar y anotar los resultados.
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1.8. RESULTADOS
Administración de Pentobarbital 0,4 %
RATÓN PESO
(g) Volumen
administrado Hora de
administración Vía de
administración P. L. I.E. D. E.
BLANCO oral
CABEZA i.m.
LOMO s.c.
COLA i.p.
Administración de Estricnina
RATÓN PESO
(g) Volumen
administrado Hora de
administración Vía de
administración P. L. I.E. D. E.
BLANCO oral
CABEZA i.m.
LOMO s.c.
COLA i.p.
1.9. DISCUSIONES
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Esquematizar las vías de administración de los fármacos empleados a los ratones
2. Mencione las diferencias entre la vía de administración y zona de absorción.
3. Esquematizar la curva farmacocinética de una administración oral y una administración endovenosa.
4. Indicar en una curva farmacocinética el periodo de latencia (P.L.), intensidad del efecto (I.E.) y duración del efecto (D.E.) y qué implicancia tiene sobre el efecto.
5. ¿Cuál es el mecanismo de acción del pentobarbital, qué efectos produce y en qué situaciones se emplea?
6. ¿Cuál es el mecanismo de acción de la estricnina, que efectos produce y en qué situaciones se emplea?
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PRÁCTICA N° 3
FARMACOCINÉTICA EXPERIMENTAL: FACTORES QUE INFLUYEN EN LA ABSORCIÓN
1.1. MARCO TEÓRICO
La Farmacocinética forma parte del estudio de la Farmacología; se encarga de estudiar el recorrido y las modificaciones que el fármaco sufre en el interior del organismo; es decir, lo que el organismo le hace al fármaco; con la finalidad de expulsarlo, debido a que el fármaco se comporta como un xenobiótico. El proceso de absorción es el proceso farmacocinético que garantiza la verdadera entrada del fármaco al torrente sanguíneo, el cual puede verse modificada por múltiples factores como los aspectos biofarmacéuticos como forma farmacéutica, vía de administración, dosis, proceso de liberación, concentración; parámetros fisicoquímicos como tamaño de partícula, solubilidad, tiempo de desintegración, velocidad de disolución, vehículo, grado de dureza, etc.
1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Proceso LADME. Factores que influyen en el Proceso Farmacocinético. Farmacología de la Estricnina y Adrenalina.
1.3. COMPETENCIAS
Evidenciar la influencia de los factores: vía de administración, la dosis y el vehículo, sobre el proceso de absorción
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Cronómetro
Jeringas 1 mL
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
06 Ratones albinos (Mus musculus): peso no menor de 20 g.
1.6. REACTIVOS
Éter etílico Solución de Pentobarbital 0,40 % Sol. Adrenalina 1/1000
Sol. Gelatina 1% Agua destilada
1.7. PROCEDIMIENTO
INFLUENCIA DE LA DOSIS SOBRE EL PROCESO DE ABSORCIÓN 1° Marcar y pesar los animales de experimentación. 2° Observar el comportamiento y conducta de los ratones. 3° Humedecer algodón con éter etílico (0,25 mL, 0,75 mL y 1,5 mLl) y colocarlo dentro
de un beacker donde se encuentra un ratón. 4° Observar y anotar los resultados.
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INFLUENCIA DEL VEHÍCULO SOBRE EL PROCESO DE ABSORCIÓN 1° Marcar y pesar los animales de experimentación. 2° Observar el comportamiento y conducta de los ratones. 3° Administrar a los 03 ratones por vía subcutánea las siguientes dosis: 50 mg/Kg. de
Pentobarbital más 0,3 mL agua destilada; 50 mg/Kg. de Pentobarbital más 0,3 mL sol. gelatina y 50 mg/Kg. de Pentobarbital más 0,3 mL sol. Adrenalina.
1.8. RESULTADOS
INFLUENCIA DE LA DOSIS SOBRE EL PROCESO DE ABSORCIÓN
RATÓN PESO
(g) Éter
etílico Hora de
administración P. L. I. E. D. E. Observaciones
BLANCO 0,25 mL
CABEZA 0,75 mL
LOMO 1,5 mL
INFLUENCIA DEL VEHÍCULO SOBRE EL PROCESO DE ABSORCIÓN
RATÓN PESO
(g) Pentobarbital
(mL) Vehículo P. L. I. E. D. E. Observaciones
BLANCO Agua
CABEZA Gelatina
LOMO Adrenalina
1.9. DISCUSIONES
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Mencione la diferencia entre absorción y Biodisponibilidad
2. Explique, cómo se evidencia la influencia de la dosis administrada sobre el proceso de absorción.
3. Explique, de qué manera influye y participan los vehículos utilizados sobre el proceso de absorción.
4. Mencione, qué factores pueden retardar y/o acelerar el proceso de absorción de un fármaco.
5. Esquematice el Mecanismo de Acción del alcohol Etílico y del Pentobarbital
6. ¿Qué importancia clínica tiene los siguientes parámetros farmacocinéticos: tiempo de
vida media, clerance y volumen de distribución?
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PRÁCTICA N° 4
FARMACODINAMIA EXPERIMENTAL – SINERGISMO Y ANTAGONISMO
1.1. MARCO TEÓRICO La Farmacodinamia forma parte del estudio de la Farmacología; se encarga de estudiar el mecanismo de acción a nivel celular y los efectos que se producen como consecuencia de ello. El mecanismo de acción son cascadas de reacciones bioquímicas que se producen a nivel celular modulando su funcionabilidad regulándola; en donde participan muchas moléculas como: primer mensajero, receptores, transductores, efectores y segundos mensajeros dando origen a la señalización celular de los fármacos. La administración de dos o más fármacos, clínicamente, se emplean para mejorar su actividad y los resultados esperados, denominándoseles Sinergia o efecto sinérgico; sin embargo, en ocasiones se emplean fármacos para reducir la actividad y los efectos no esperados de otros que pueden ser perjudiciales para la salud de los pacientes, denominándoseles como Anganonismo o efecto antagónico, comúnmente empleado en intoxicaciones. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Proceso Farmacodinámico: Mecanismo de Acción y Efecto farmacológico. Interacciones Farmacodinámicas: Sinergismo y Antagonismo. Farmacología de Estricnina, Pentobarbital, Adrenalina, Cocaína, Atropina y
Pilocarpina 1.3. COMPETENCIAS
Evidenciar y distinguir el sinergismo en animales de experimentación. Evidenciar y distinguir el antagonismo en animales de experimentación.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS.
Balanza Cronómetro
Jeringas 1 mL Jaula de fijación
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
03 Ratones albinos (Mus musculus): peso no menor de 20 g
02 Conejos de 400 a 500 g 1.6. REACTIVOS
Sol. Estricnina 0,36 mg/mL Sol. Pentobarbital 0,4 % Sol. Atropina 0,3 %
Sol. Adrenalina 1/1000 Sol. Cocaína HCl 1% Sol. Pilocarpina 1 %
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1.7. PROCEDIMIENTO
SINERGISMO ENTRE COCAÍNA Y ADRENALINA 1° Colocar el conejo y sujetarlas en la jaula de fijación y cortarle las pestañas. 2° Abrir los parpados de cada ojo; medir el diámetro de cada pupila (en mm) y la
sensibilidad corneal. 3° Instilar en el saco conjuntival derecho II sol. cocaína HCl. Después de 10 minutos
medir el diámetro pupilar y evaluar la sensibilidad corneal aspecto de la conjuntiva. 4° Instilar en el saco conjuntival de ambos ojos II sol. Adrenalina. Después de 5 minutos
medir el diámetro pupilar y evaluar la sensibilidad corneal aspecto de la conjuntiva. 5° Observar y anotar los resultados.
ANTAGONISMO ENTRE PILOCARPINA Y ATROPINA 1° Colocar el conejo y sujetarlas en la jaula de fijación y cortarle las pestañas. 2° Abrir los parpados de cada ojo; medir el diámetro de cada pupila (en mm) y la
sensibilidad corneal. 3° Instilar en el saco conjuntival derecho II sol. Pilocarpina. Después de 10 minutos
medir el diámetro pupilar y evaluar la sensibilidad corneal aspecto de la conjuntiva. 4° Instilar en el saco conjuntival de ambos ojos II sol. Atropina. Después de 5 minutos
medir el diámetro pupilar y evaluar la sensibilidad corneal aspecto de la conjuntiva. 5° Observar y anotar los resultados.
ANTAGONISMO ENTRE PENTOBARBITAL Y ESTRICNINA 1° Pesar y marcar los animales de experimentación 2° Observar el comportamiento y conducta de los ratones. 3° Administrar a un ratón una dosis de 40 mg/Kg sol. pentobarbital por vía i.p. y
determinar el periodo de latencia y duración del efecto. 4° Administrar a un ratón una dosis de 1,8 mg/Kg sol. estricnina por vía i.p. y determinar
el periodo de latencia y duración del efecto. 5° Administrar a un ratón una dosis de 40 mg/Kg sol. pentobarbital por vía i.p.; cuando
empiecen a observarse los efectos depresores administrar una dosis de 1,8 mg/Kg sol. estricnina por vía i.p. y determinar el periodo de latencia y duración del efecto.
1.8. RESULTADOS
SINERGISMO
DIAMETRO PUPILAR SENSIBILIDAD ASPECTO DE
CONEJO BASAL COCAÍNA ADRENALINA COCAÍNA +
ADRENALINA CORNEAL CONJUNTIVA
OJO DERECHO
_________
OJO IZQUIERDO
_________
_________
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ANTAGONISMO
ANTAGONISMO ENTRE PILOCARPINA Y ATROPINA
DIAMETRO PUPILAR SENSIBILIDAD
CORNEAL ASPECTO DE CONJUNTIVA
CONEJO BASAL PILOCARPINA ATROPINA PILOCARPINA +
ATROPINA
OJO DERECHO
_________
OJO IZQUIERDO
_________
_________
ANTAGONISMO ENTRE PENTOBARBITAL Y ESTRICNINA
RATONES FARMACOS Volumen
administrado Hora de
administración P. L. Observaciones
BLANCO Pentobarbital
CABEZA Estricnina
LOMO Pentobarbital +
Estricnina
1.9. DISCUSIÓN
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. ¿Qué características deben de poseer la interacción del fármaco con su molécula receptora?
2. Esquematice el mecanismo de acción de cocaína y adrenalina en el globo ocular.
3. Esquematice el mecanismo de acción de pilocarpina y atropina en el globo ocular.
4. Mencione el tipo de sinergismo y antagonismo que se produce cuando se administras los fármacos en cada experiencia.
5. Mencione 03 ejemplos clínicos de sinergismo y 03 ejemplos de antagonismo utilizados en clínica, fundamentar.
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PRÁCTICA N° 5
FARMACOLOGÍA DEL SNP – ANESTÉSICOS LOCALES
1.1. MARCO TEÓRICO
Para las intervenciones quirúrgicas menores, con frecuencia se emplean anestésicos locales, por ejemplo en odontología, podología, dermatología y en algunos casos en ginecología. Los Anestésicos Locales (A.L.), son fármacos que ejercen su acción en la zona de aplicación reduciendo la transmisión nerviosa, lo que se manifiesta con la reducción de la sensibilidad dolorosa, por lo tanto garantizando un buen proceso quirúrgico. Los anestésicos locales se clasifican de acuerdo a su estructura química en A.L. tipo ester, por ejemplo la cocaína, benzocaína y las de tipo amida, por ejemplo la lidocaína y bupivacaína. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Anestesia Local: Concepto. Tipos de anestesia local. Farmacología de los Anestésicos Locales: Lidocaína, Bupivacaína
1.3. COMPETENCIAS
Producir perdida de la sensibilidad sin afectar el estado de alerta Evidenciar los efectos de los anestésicos locales con y sin epinefrina
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Tablero de madera Equipo de disección
Jeringa de 1 mL Alfileres
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
02 sapos 1.6. REACTIVOS
Lidocaína S/E Lidocaína C/E
Bupivacaína
1.7. PROCEDIMIENTO
ANESTESIA POR PINCELACIÓN 1° Descerebrar un sapo con un estilete y colocarlo en un soporte de madera. 2° Determinar en ambas patas el umbral eléctrico basal. 3° Pincelar la piel lidocaína a una pata y lidocaína c/epinefrina a la otra pata con ayuda
de un hisopo. 4° Medir el umbral eléctrico cada 5 minutos en ambas patas y registrarlo. 5° Repetir la experiencia, utilizando lidocaína y bupivacaína.
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ANESTESIA TRONCULAR 1° Descerebrar un sapo con un estilete y colocarlo en un soporte de madera. 2° Descubrir con cuidado el nervio ciático de ambas patas y medir la sensibilidad con el
estimulador electrico 3° Poner en contacto con lidocaína en un nervio y con lidocaína c/epinefrina el otro
nervio durante 5 minutos. 4° Generar estímulos eléctricos por encima y por debajo de la zona de aplicación del
anestésico. 5° Repetir la experiencia, utilizando lidocaína y bupivacaína.
1.8. RESULTADOS
ANESTESIA POR PINCELACIÓN
ANESTESICO SENSIBILIDAD 5 min 10 min 15 min 30 min
Lidocaína s/e
Lidocaína c/e
Lidocaína
Bupivacaína
ANESTESIA TRONCULAR
ANESTESICO SENSIBILIDAD 5 min 10 min 15 min 30 min
Lidocaína s/e
Lidocaína c/e
Lidocaína
Bupivacaína
1.9. DISCUSIONES
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Esquematice el mecanismo de acción de los anestésicos locales. 2. Clínicamente, indicar las diferencias que existen entre la lidocaína y bupivacaína 3. ¿Cuál es el papel que desempeña la epinefrina cuando se asocia a los anestésicos
locales? 4. Clasifique a los A.L. y mencionar sus características farmacológicas
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PRÁCTICA N° 6
FARMACOLOGÍA DEL SNP – BLOQUEADORES NEUROMUSCULARES
1.1. MARCO TEÓRICO Los Bloqueadores Neuromusculares (BNM), son poderosos relajantes musculares, que forman parte de los medicamentos empleados en anestesiología. Estos fármacos se caracterizan porque ejercen su acción sobre la plana neuromuscular, actuando como agentes colinérgicos que producen una despolarización marcada (Bloqueadores Neuromusculares Despolarizantes: BNMD) y como antagonistas colinérgicos (Bloqueadores Neuromusculares No Despolarizante: BNMND); ambos fármacos producen parálisis. La Succinilcolina o Suxametonio, un BNMD, produce un tipo de parálisis conocido como espástica, mientras que el Vecuronio, un BNMND, parálisis flácida. Con frecuencia, clínicamente, para revertir los efectos de los BNMND se emplean fármacos anticolinesterásicos, y acelerar la etapa de recuperación del paciente. La Neostigmina es uno de los principales representativos de este grupo. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Unión Neuromuscular Farmacología de los Bloqueadores Neuromusculares: BNMD y BNMND
1.3. COMPETENCIAS
Producir experimentalmente bloqueo de la placa neuromuscular. Evidenciar los efectos de la Neostigmina sobre los bloqueadores neuromusculares
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Cronómetro
Jeringas 1 mL Jaula de fijación
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
02 pollos de peso no menor a 400 g 1.6. REACTIVOS
Sol. Vecuronio 125 g/mL
Sol. Succinilcolina 200 g/mL
Sol. Neostigmina 100 g/mL
1.7. PROCEDIMIENTO
BLOQUEO DE LA PLACA NEUROMUSCULAR 1° Pesar y marcar los pollos. 2° Observar y anotar los datos basales, especialmente a nivel del cuello, párpados y
extremidades.
3° Administrar 100 g/Kg de Succinilcolina por vía i.p.
4° Administrar 50 g/Kg de Vecuronio por vía i.p. 5° Observar y anotar los cambios en los datos basales.
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PROTECCIÓN DE LA NEOSTIGMINA SOBRE EL BLOQUEO NEUROMUSCULAR 1° Pesar y marcar los pollos. 2° Observar y anotar los datos basales, especialmente a nivel del cuello, párpados y
extremidades.
3° Administrar 50 g/Kg de Neostigmina por vía i.p.
4° Luego de 10 minutos, al primer pollo administrar 100 g/Kg de Succinilcolina por vía i.p.
5° Luego de 10 minutos, al segundo pollo, administrar 50 g/Kg de Vecuronio por vía i.p. 6° Observar y anotar los cambios en los datos basales.
1.8. RESULTADOS BLOQUEO DE LA PLACA NEUROMUSCULAR
POLLO Peso Fármacos Volumen
(mL) P.L.
Posición patas
Posición cuello
Posición parpados
Tipo parálisis
N° 1 Succinilcolina
N° 2 Vecuronio
PROTECCIÓN DE LA NEOSTIGMINA SOBRE EL BLOQUEO NEUROMUSCULAR
POLLO Peso Anticolinesterásicos Fármacos Volumen
(mL) P. L.
Posición patas
Posición cuello
Posición parpados
Tipo parálisis
CONTROL Neostigmina Suero
fisiológico
N° 1 Neostigmina Succinilcolina
N° 2 Neostigmina Vecuronio
1.9. DISCUSIÓN
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Esquematice el mecanismo de acción de los fármacos empleados durante la práctica. 2. ¿En que situaciones clínicas se emplea los Bloqueadores Neuromusculares? 3. ¿En que situaciones clínicas se emplea los anticolinesterásicos como la Neostigmina?
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PRÁCTICA N° 7
FARMACOLOGÍA DEL SNC – ANESTÉSICOS GENERALES
1.1. MARCO TEÓRICO Los anestésicos generales, son fármacos neurodepresores que ejercen su acción sobre el SNC, generando perdida de la sensibilidad, perdida de la motilidad y estado de conciencia, evidenciándose en el paciente la analgesia, hipnosis, amnesia, relajación muscular con monitorización de los signos vitales, requisitos indispensables para que realice la intervención quirúrgica. La anestesia se realiza en varias etapas, entre las que se encuentran: Etapa Preoperatoria, Etapa de Inducción, Etapa de Mantenimiento, Etapa de Recuperación y la Etapa Postoperatoria. Durante la segunda y tercera etapa se emplean los anestésicos generales que, para garantizar los objetivos deben de emplearse y aplicarse por vía inhalatoria y endovenosa, obteniéndose un sinergia, con la finalidad de reducir la dosis de cada fármaco y minimizar sus efectos adversos. La administración de anestésicos generales implica que los anestesiólogos deben de administrar la dosis adecuada en función a diversos factores como la edad, el sexo y sobre todo el peso del paciente; teniendo en cuenta que son fármacos extremadamente depresores, inclusive generando paro cardiorespiratorio, estado vegetal y hasta la muerte. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Anestesia General: Periodos de la Anestesia. Farmacología de los Anestésicos: Inhalatorios y Endovenosos.
1.3. COMPETENCIAS
Inducir un cuadro de anestesia general en modelos experimentales. Evidenciar y diferenciar las características de la anestesia general.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Cronómetro
Beacker Jeringas 1 mL
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
03 Ratones albinos (Mus musculus): peso no menor de 20 g.
1.6. REACTIVOS
Éter etílico Sol. Pentobarbital 0,4 %
Sol. Ketamina 2,5 mg/mL
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1.7. PROCEDIMIENTO
ANESTESIA INHALATORIA 1° Tomar los datos basales de sensibilidad, motilidad y estado de alerta del animal de
experimentación. 2° Impregnar 1 mL de éter en un pedazo de algodón y colocarlo dentro de un beacker
donde se encuentra un ratón. 3° Anotar los tiempos en la que empieza a perder la sensibilidad, motilidad y estado de
alerta. 4° Retire el algodón y determine el tiempo de recuperación.
ANESTESIA ENDOVENOSA
a) ANESTESIA BARBITÚRICA 1° Tomar los datos basales de sensibilidad, motilidad y estado de alerta del animal
de experimentación. 2° Administrar por vía i.p. una dosis de 50 mg/Kg. de sol. pentobarbital, observar y
anotar los cambios en los datos basales.
b) ANESTESIA DISOCIATIVA 1° Tomar los datos basales de sensibilidad, motilidad y estado de alerta del animal
de experimentación. 2° Administrar por vía i.p. una dosis de 10 mg/Kg de sol. Ketamina, observar y anotar
los cambios en los datos basales. 1.8. RESULTADOS
ANESTESIA INHALATORIA
ANESTÉSICO: ETER
BASAL PERDIDA D. E.
SENSIBILIDAD
MOTILIDAD
ESTADO ALERTA
FRECUENCIA CARDIACA
FRECUENCIA RESPIRATORIA
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ANESTESIA ENDOVENOSA
ANESTESIA BARBITÚRICA
ANESTÉSICO: PENTOBARBITAL
BASAL PERDIDA D. E.
SENSIBILIDAD
MOTILIDAD
ESTADO DE ALERTA
FRECUENCIA CARDIACA
FRECUENCIA RESPIRATORIA
ANESTESIA DISOCIATIVA
ANESTÉSICO: KETAMINA
BASAL PERDIDA D.E.
SENSIBILIDAD
MOTILIDAD
ESTADO ALERTA
FRECUENCIA CARDIACA
FRECUENCIA RESPIRATORIA
1.9. DISCUSIÓN
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Explique los diferentes tipos de anestesia general. 2. Explique el Mecanismo de Acción de los fármacos empleados 3. Explique, en qué experiencias no se produce perdida del estado de conciencia 4. Explique, por qué el tiempo de duración del efecto (D. E.) en la anestesia inhalatoria
es inferior a la anestesia barbitúrica 5. ¿Qué características particulares presenta la anestesia disociativa y en qué
situaciones clínicas se emplea? 6. Clínicamente, cuál es el procedimiento para la administración inhalatoria de los
anestésicos, teniendo en cuenta que son de naturaleza líquida. 7. En el servicio de anestesiología con frecuencia se produce en el paciente la
neuroleptoanalgesia; qué fármacos se emplea para dicho fin y cuál es el sustento
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PRÁCTICA N° 8
FARMACOLOGÍA DEL SNC – PSICOESTIMULANTES Y ANTIDEPRESIVOS.
1.1. MARCO TEÓRICO Los Psicoestimulantes son fármacos de gran actividad farmacológica que ejercen su acción sobre el SNC, desencadenando un incremento de la actividad de los neurotransmisores y por lo tanto una hiperexcitabilidad cerebral. Los antidepresivos forman parte de los neuroestimulantes, debido a que ellos tienen por objetivos incrementar los niveles de neurotransmisores como la Noradrenalina (NA), Dopamina (DA) y serotonina (5-HT) que en los cuadros depresivos estos niveles se encuentran considerablemente disminuidas. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Farmacología de los Psicoestimulantes: Anfetamina, cafeína Farmacología de los Antidepresivos: Clomipramina
1.3. COMPETENCIAS
Inducir experimentalmente neuroestimulación. Evidenciar y diferenciar los efectos de los estimulantes motores y los timoanalépticos.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Cronómetro Beacker Jeringas 1 mL
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
03 Ratones albinos (Mus musculus): peso no menor de 20 g.
1.6. REACTIVOS
Sol. cocaína 1% Sol. Cafeína 1 % Sol. Clomipramina 1%
1.7. PROCEDIMIENTO
1. Marcar y pesar los animales de experimentación. 2. Observar el comportamiento y conducta de los ratones. 3. Administrar por vía i.p. 10 mg/Kg. sol. de Cocaína. 4. Administrar por vía i.p. 20 mg/Kg. sol. Cafeína. 5. Administrar por via i.p. 15 mg/Kg. sol. Clomipramina. 6. Observar los efectos que produce, particularmente sobre la motilidad y agresividad
frente a estímulos.
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1.8. RESULTADOS
RATONES FÁRMACOS Volumen
Adm. Hora Adm.
Periodo de latencia
COMPORTAMIENTO Sueño
Duración de efecto MOTILIDAD AGRESIVIDAD
BLANCO Cocaína
CABEZA Clomipramina
LOMO Cafeína
1.9. DISCUSIONES
1.10. CONCLUSIONES
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1.11. CUESTIONARIO
1. Según los resultados obtenidos en la experiencia fundamente los efectos que producen los fármacos mediante su mecanismo de acción.
2. ¿En qué situaciones clínicas se emplea la Cocaína, Cafeína y Clomipramina? 3. Clasifique a los Psicoestimulantes y Timoanalépticos, y mencione dos fármacos de
cada uno.
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PRÁCTICA N° 9
FARMACOLOGÍA DEL SNC – ANTICONVULSIVANTES.
1.1. MARCO TEÓRICO
Los medicamentos anticonvulsivantes forman parte de la terapia neurodepresora que controla las convulsiones de cualquier etiología. Las convulsiones son desórdenes neurológicos caracterizados por una sobre descarga neuronal lo que produce una hiperexcitabilidad cerebral, manifestándose movimientos involuntarios tónico-clónicos, rigidez y contracción muscular, hipersalivación, y en ocasiones con pérdida de la conciencia.
Cuando están indicado en el tratamiento de la enfermedad epiléptica se les conoce como antiepilépticos, cuyo objetivo es controlar la enfermedad; esto se consigue cuando el paciente cumple con las indicaciones del médico en tratamientos a largo plazo, consiguiéndose que se los episodios convulsivos (crisis) se reduzca en número, en intensidad y duración. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Convulsiones: Etiología, Tipos, Manifestaciones Clínicas. Farmacología de los Anticonvulsivantes: Fenobarbital, Difenilhidantoína, Diazepam,
Ac. Valpróico, Carbamazepina. 1.3. COMPETENCIAS
Inducir experimentalmente convulsiones. Evidenciar la Neuroprotección de los anticonvulsivantes.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Cronómetro
Jeringas 1 mL Jaula de fijación
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
05 Ratones albinos (Mus musculus): peso no menor de 20 g
1.6. REACTIVOS
Sol. Fenobarbital 0,5 % Sol. Difenilhidantoína 0,3 % Sol. Diazepam 0,3 mg/mL Sol. Ac. Valpróico 0,5 %
Sol. Carbamazepina 0,4 % Sol. Pentilenotetrazol 1 % Sol. Estricnina 0,018 %
1.7. PROCEDIMIENTO
1. Marcar y pesar los animales de experimentación. 2. Observar el comportamiento y conducta de los ratones sobre la actividad espontánea
y reflejo de enderezimiento. 3. Administrar por vía i.p. 50 mg/Kg sol. Fenobarbital; 30 mg/Kg sol. Difenilhidantoína;
3 mg/Kg sol. Diazepam; 50 mg/Kg sol. Ac. Valpróico; 60 mg/Kg sol. Carbamazepina. 4. Luego de 15 minutos, proceda a administrar a los 05 ratones una dosis de 100 mg/Kg
por vía s.c. de sol. Pentilenotetrazol o 1,8 mg/Kg de sol. Estricnina. 5. Observar el grado de protección de los anticonvulsivantes.
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1.8. RESULTADOS
RATONES Peso
(g) FÁRMACOS
Vol. Admin.
Inductor de convulsiones
P.L. I.E. D.E.
BLANCO Fenobarbital
CABEZA Difenilhidantoína
LOMO Diazepam
COLA Ac. Valpróico
BASE COLA Carbamazepina
1.9. DISCUSIONES
1.10. CONCLUSIONES
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1.11. CUESTIONARIO
1. Explique el proceso Farmacodinámico de los anticonvulsivantes empleados en la experiencia.
2. ¿Cuál es el mecanismo de acción del agente inductor de las convulsiones PET y Estricnina?
3. ¿Por qué existe diferencia significativa entre los periodos de latencia (P.L.) de los anticonvulsivantes?
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PRÁCTICA N° 10
FARMACOLOGÍA DEL DOLOR – ACTIVIDAD ANALGÉSICA
1.1. MARCO TEÓRICO
El dolor o algesia es considerado como un mecanismo defensivo del organismo que se
manifiesta como consecuencia de una agresión tisular por agentes biológicos, químicos y/o
físicos. Existen diversos tipos de dolor, entre las que podemos destacar, dolor agudo y crónico;
dolor leve, moderado y severo; dolor visceral, dolor muscular, dolor articular, etc.
Los analgésicos son fármacos que reducen el umbral doloroso de tal manera que logra
controlarse. Los Analgésicos e clasifican en Narcóticos, cuyo fármaco representativo es la
morfina; y dentro de los no narcóticos, los AINES como el paracetamol, metamizol, etc; teniendo
en cuanta que los dos últimos fármacos carecen de actividad antiinflamatoria.
1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Fisiopatología del dolor: Mediadores químicos del dolor.
Farmacología de analgésicos: Codeína, Tramadol, Ketorolaco, Metamizol,
Paracetamol.
1.3. COMPETENCIAS
Producir experimentalmente algesia térmica y química.
Evaluar la actividad analgésica de los fármacos.
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza
Cocina eléctrica
Plancha de zinc
Jeringas 1 mL
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
06 Ratones (Mus musculus): peso no menor de 20 g
1.6. REACTIVOS
Suero Fisiológico
Solución Morfina 1 mg/mL (Codeína 5 mg/mL)
Solución Tramadol 5 mg/mL
Solución Metamizol 10 mg/mL
Solución Ketorolaco 3 mg/mL
Solución Paracetamol 5 mg/mL
Solución de ácido acético 2%
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1.7. PROCEDIMIENTO
ANALGESIA TERMICA – Método de la plancha caliente
1° Marcar y pesar los ratones.
2° Medir el umbral doloroso basal de cada ratón colocándola sobre una plancha de zinc
calentada a 55 °C.
3° Para evitar que el ratón huya, la plancha debe de estar provisto de un cilindro de
plástico o de vidrio para observar las reacciones del animal.
4° Administrar por vía i.p. Suero Fisiológico 0,1 ml/Kg, Morfina 10 mg/Kg (Codeína 30
mg/Kg), Tramadol 20 mg/Kg, Ketorolaco 30 mg/Kg, Metamizol 30 mg/Kg y por vía
peroral Paracetamol 50 mg/Kg.
5° Después de 20 minutos, medir el umbral doloroso y/o tiempo de resistencia a los 5,
15, 30 y 45 minutos.
ANALGESIA QUÍMICA – Método de Irritación Química
1° Marcar y pesar los animales los ratones.
2° Administrar por vía i.p. Suero Fisiológico 0,1 ml/Kg, Morfina 10 mg/Kg (Codeína 30
mg/Kg), Tramadol 20 mg/Kg, Ketorolaco 30 mg/Kg, Metamizol 30 mg/Kg y por vía
peroral Paracetamol 50 mg/Kg.
3° Después de 20 minutos, administrar por vía i.p. 0,2 ml de ácido acético y evaluar el
número de contorsiones (retorcimientos y estiramientos) que se produce durante 30
minutos.
1.8. RESULTADOS
ANALGESIA TÉRMICA
Ratón Umbral Basal
Fármacos Peso (g)
Vol. (mL)
UMBRAL DOLOROSO (RESISTENCIA)
5 min. 15 min. 30 min. 45 min.
Blanco Suero
Fisiológico
Cabeza Morfina
Lomo Tramadol
Cola Ketorolaco
Base de cola
Metamizol
Pata Paracetamol
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ANALGESIA QUÍMICA
Ratón Peso
(g) Fármacos
Vol. (mL)
Ácido acético
Numero de contorsiones
% Algesia
% Analgesia
Blanco Suero
Fisiológico 0,2 mL
Cabeza Morfina 0,2 mL
Lomo Tramadol 0,2 mL
Cola Ketorolaco 0,2 mL
Base de cola
Metamizol 0,2 mL
Pata Paracetamol 0,2 mL
1.9. DISCUSIÓN
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Esquematice el mecanismo de acción de los fármacos empleados durante la práctica. 2. ¿Qué son los nociceptores y que implicancia clínica tienen? 3. Indique el RAM de los fármacos y fundamente. 4. Indicar qué tipos de modelos experimentales existen para evaluar la actividad
analgésica.
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PRÁCTICA N° 11
FARMACOLOGÍA DE LA INFLAMACIÓN – ACTIVIDAD ANTIINFLAMATORIA
1.1. MARCO TEÓRICO La Inflamación, al igual que el dolor y la pirésis, son mecanismo de defensa del organismo que se manifiesta como consecuencia de la presencia de cuerpos extraños o agresión a nivel tisular, desencadenando mediadores químicos como prostaglandinas (PG), leucotrienos (LT), bradicinina (BC), interleucinas (IL), histamina (H), factor de necrosis tumoral (FNT) y presencia de células como neutrofilos, eosinofilos, etc. entre los mediadores químicos de mayor importancia son las PG, considerados como mediadores proinflamatorios que se forman en la cascada de reacciones bioquímicas de la vía del ácido araquidónico (AA) con participación activa de una enzima denominada prostaglandin sintetasa, comúnmente conocido como ciclo-oxigenasa (COX). Los aniinflamatorios se clasifican en Antiinflamatorios Esteroideos (AIES) y aniinflamatorios no esteroideos (AINES), siendo el primer grupo conocido como Corticoides o Glucocorticoides cuya acción antiinflamatoria es superior, mientras que los AINES se caracterizan porque pueden poseer actividad analgésica, antiinflamatoria, algunos actividad antipirética y actividad antiplaquetaria. 1.2. CONCEPTOS QUE EL ALUMNO DEBE DE CONOCER
Fisiopatología de la Inflamación: Mediadores Químicos de la Inflamación. Farmacología de los Antiinflamatorios: Aines y Corticoides
1.3. COMPETENCIAS
Inducir inflamación experimental a nivel plantar en ratones. Evidenciar y comparar la Actividad Antiinflamatoria de los Fármacos. Evaluar la actividad antiinflamatoria de los fármacos
1.4. MATERIALES Y EQUIPOS
Balanza Mecánica Balanza Analítica Vernier
Tijeras Jeringas 1 mL
1.5. MATERIAL BIOLÓGICO
04 Ratones (Mus musculus): peso no menor de 20 g
1.6. REACTIVOS
Suero Fisiológico Solución de Formol 10 % Albumina de huevo 50%
Diclofenaco 2,5 mg/mL Ac. Acetilsalicilico1 mg/mL Dexametasona 2 mg/mL
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1.7. PROCEDIMIENTO
EDEMA PLANTAR INDUCIDO POR FORMOL 1° Pesar y marcar los ratones. 2° Administrar por vía i.p suero fisiológico 10 mL/Kg, Diclofenaco 30 mg/Kg,
Dexametasona 4 mg/Kg. y por vía oral Ácido Acetilsalicílico 20 mg/Kg. 3° Luego de 15 minutos, inducir edema en la aponeurosis plantar derecha del ratón con
0,1 ml de formol. 4° Después de 30 minutos, sacrificar los animales por dislocación cervical y proceder a
cortar ambas patas 5° Determinar el peso de cada pata y la diferencia de peso. 6° Determinar la actividad antiinflamatoria de los fármacos, mediante la siguiente
fórmula:
Actividad antiinflamatoria (%) = Dc - Dt
Dc
×100
Donde: Dc: diferencia de peso control Dt: diferencia de peso del tratamiento
EDEMA PLANTAR INDUCIDO POR ALBUMINA 1° Pesar y marcar los ratones. 2° Medir la pata trasera izquierda con ayuda del vernier (en mm) 3° Administrar por vía i.p suero fisiológico 10 ml/Kg, Diclofenaco 30 mg/Kg,
Dexametasona 4 mg/Kg y por vía oral Ácido Acetilsalicílico 20 mg/Kg. 4° Luego de 20 minutos, inducir edema en la aponeurosis plantar izquierda de la rata
con 0,1 ml de albúmina de huevo. 5° Realizar mediciones de la pata inflamada con el vernier cada 20 minutos, durante
una hora. 6° Determinar el porcentaje de inhibición de los fármacos y graficarlo vs. tiempo.
Actividad antiinflamatoria (%) = VC - Vt
vc
×100
Donde: Vc: diferencia de volumen del control Vt: diferencia de volumen del tratamiento
1.8. RESULTADOS
EDEMA PLANTAR INDUCIDO POR FORMOL
Ratón Peso
(g) Fármacos
Vol. (mL)
Formol pata
derecha pata
izquierda Actividad
Antiinflamatoria (%)
Blanco Control (S.F.) 0,01 mL
Cabeza Diclofenaco 0,01 mL
Lomo Dexametasona 0,01 mL
Cola AAS 0,01 mL
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EDEMA PLANTAR INDUCIDO POR ALBUMINA
Ratón Peso (g)
Fármacos Antiinflamatorios
Vol. (mL)
Albumina de huevo
Inflamación pata izquierda (mm)
Basal 20' 40' 60'
Blanco Control (S.F.) 0,1 ml
Cabeza Diclofenaco 0,1 ml
Lomo Dexametasona 0,1 ml
Cola AAS 0,1 ml
1.9. DISCUSIONES
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1.10. CONCLUSIONES
1.11. CUESTIONARIO
1. Esquematice el mecanismo de acción de los fármacos empleados durante la práctica. 2. Mencionar las indicaciones clínicas de los fármacos empleados. 3. Indique el RAM de los fármacos y fundamente. 4. Indicar qué tipos de modelos experimentales existen para evaluar la actividad
antiinflamatoria.
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