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Resultados EL DIALOGO ENTRE O-GLCNACILACION, FOSFORILACION, UBIQUITINACION, ACETILACION Y SUMOYLACION CONTROLA LA ACTIVIDAD TRANSCRIPCIONAL Y LA ESTABILIDAD DE LA DELTA- LACTOFERRINA Escobar-Ramirez Adelma , Huvent Isabelle, Hoedt Esthelle, Dehénnaut Vanessa y Pierce Annick Unité de Glycobiologie Structurale et Fonctionnelle, UMR 8576 CNRS-Université des Sciences et Technologies de Lille, IFR 147, 59655 Villeneuve d’ Ascq, France Introduccion La Delta-lactoferrina (ΔLf) es un factor de transcripcin,su expresin se encuentra bajamente regulada en el caso de cancer (Fig.1). La ΔLf es un marcador de tejido sano y la alta expresin de este transcrito fue correlacionado con un buen pronstico en cancer de seno (Benaïssa et al., 2005). La Lf es el resultado del uso alternativo del promotor del gen de la lactoferrina el cual permite la produccin de dos isoformas la alternativa N-Terminal: lactoferrina (LF) la cual es secretada y la Lf la contraparte nucleocitoplasmática (Siebert and Huang, 1999). La ΔLf posee efectos antiproliferativos e induce el arresto del ciclo celular, esta es un eficiente factor de transcripción e interactúa in vivo via un elemento de respuesta a la Lf encontrado en los promotores de los genes Skp1, Bax, Dcps y SelH (Mariller et al., 2007, 2009; Hoedt et al., 2012; Hardivillé et al., 2013). Dado que la Lf posee diferentes genes blanco, modificaciones en su actividad o concentración podría tener crucial incidencia en la homeostasia celular. Plegamiento de la ∆Lf. La estructura de la ∆Lf ha sido creada usando los datos cristalograficos de la Lf,trazada usando UCSF Chimera 1.5.3. La superficie molecular muestra una exclusión del solvente con un radio de contacto de 1.4 Å (Mariller et al., 2012) Diagrama esquemático de dominios y sitios functionales de la ∆Lf El sitio de O-GlcNAcilación es indicado en el cuadro azul,los sitios de ubiquitinación en rojo, los sitios de acetilación en verde y los sitios de sumoylación en amarillo, DBD, DNA binding domain; TAD. TransActivating Domain; PEST, rapid degradation domain; NLS nuclear localization signal (despues de Mariller et al.,2012).Las modificaciones posttraduccionales modulan eficientemente la actividad y la estabilidad de la DLf. Nuestros recientes resultados mostraron que la O-GlcNAcilación regula negativamente la actividad transcripcional de la Lf mientras esta inhibe su ubiquitinación e incrementa su tiempo de vida media . Por otra parte la fosforilación activa la actividad transcripcional y su degradación (Hardiville et al., 2010). La sumoylación y acetilación parecen también modular la actividad transcripcional y la estabilidad. Modificaciones post-traduccionales en la Delta-lactoferrina La ruta de la sumoylación La SUMOylación es una modificación post-traduccional caracterizada por la unión covalente y reversible de proteínas ,small ubiquitin-like modifier (SUMO) á una proteína blanco (Garreau et Lima, 2010). En mamíferos existen 4 isoformas llamadas ,SUMO -1 ,-2, -3 y -4 ( 11 kDa) . Las proteínas SUMO estan fuertemente involucradas en la modulación de la organización nuclear y viabilidad celular, su expresión está incrementada significativamente en procesos asociados con carcinogénesis tal como el crecimiento celular,diferenciación,senescencia,estrés oxidativo y apoptosis. La ruta de la SUMOylación comprende las etapas de SUMO maduración, conjugación y deconjugación. A diferencia de la ubiquitinación,la SUMOylación de proteínas blanco solo necesita una enzyma E2 (UbC9) y un reducido número de enzymas E3 ligasas Estructura de la Delta-lactoferrina LVLK 361 GEA Type I: ψ-K-X-E NLRK 308 SEE Type II SCIK 13 RDS Type II ENYK 391 SQQ Type II YTAGK 379 CGL ? sitios putativos SUMO en la ΔLf 1 Sitio SUMO consenso óptimo y 3 sitios no consenso óptimos fueron localizados utilizando el programa SUMOsp 2.0 (htpp://bioinformatics.lcd-ustc.org/sumosp). El sitio principal de ubiquitinación podría ser también un sitio de SUMOylación NLS PEST DBD? Hinge region Lf polySUMOylada PolySUMOylación de la DLf en cèlulas HEK 293 . Cotransfección con pCMV10-3Xflag-ΔLf y pSG5-His-SUMO1. Immunoprecipitación usando anticuerpo anti-Histidina dirigido contra el 6xHis-tag e Inmunorevelación de las formas SUMOyladas de la DLf utilizando el anticuerpo anti-3xflag (M2). SUMO1 and SUMO2/3 estan dispuestas sobre la DLf SUMO-1 no forma cadenas SUMO porque ésta carece de sitio de SUMOylación. SUMO-2 y SUMO-3 tienen 97% de identidad y forman eficientemente cadenas. Sin embargo SUMO-1 puede estar conjugada a cadenas SUMO-2/3 como un terminador de la cadena y por lo tanto estar presente sobre cadenas de polySUMOylación. 3xFLAG-DLf : 75 kDa; cadena SUMO : 11 kDa; mono- SUMO-3xFLAG-DLF : 86 kDa; polySUMO--3xFLAG-DLf > 97 kDa Mutantes de SUMOylacion Representación esquemática de la construcción de las mutantes de SUMOylación. 1 único sitio SUMO es preservado. La M5S es una mutante SUMO nula. A B Identificación de los sitios SUMO I (A) y SUMO2/3 (B). Co-transfección utilizando el vector pCMV10-3xflag-ΔLf/mutantes y pSG5-His-SUMO1, pCDNA3.1-His-SUMO2/3. Inmunoprecipitación con el anticuerpo anti-3xflag (M2) e immunoblot con un anticuerpo anti-His. La GAPDH fué utilizada como control de carga. Actividad Transcripcional de la DLf y sus mutantes de SUMOylación La actividad transcripcional de la DLf y la mutante K308 están moduladas por el nivel de SUMOylación La sobreexpresión de la proteasa SENP2 conduce a un incremento en la actividad transcripcional mientras la sobreexpresión de las proteínas SUMO la regula negativamente. Sitios de acetilación en la DLf 2 sitios de acetilación: K13 y K379 K13 es el principal sitio blanco de acetiltransferases Represión de la actividad transcripcional de la DLf en K308. Desrepresión de la actividad transcripcional cuando los sitios SUMO son silenciados, mutante (M5S). Benaïssa, M., Peyrat, J.-P., Hornez, L., Mariller, C., Mazurier, J., Pierce, A. 2005. Int J Cancer 114, 299306 Gareau, J.R., Lima, C.D. 2010. Nat Rev Mol Cell Biol 11, 861871. Hardivillé, S., Hoedt, E., Mariller, C., Benaïssa, M., Pierce, A. 2010. J Biol Chem 285, 1920519218. Hardivillé S., Pina-Canseco S., Escobar-Ramirez A., Elass E., Pierce, A. 2013. Eur. J. Chem. Biol. Hoedt, E., Hardiville, S., Mariller, C., Elass, E., Perraudin, J.P., Pierce, A., 2010. Biometals 23, 441-452. Mariller, C., Benaissa, M., Hardiville, S., Breton, M., Pradelle, G., Mazurier, J., Pierce, A., 2007. FEBS J 274, 2038-2053. La Delta-lactoferrina esta sumoylada en K13,K308,K361,K379 y K391. Algunos de estos sitios de SUMOylación se encuentran localizados en áreas donde tambien se encuentran presentes otras modificaciones post-traduccionales. El sitio K13 SUMO/acetilación se encuentra localizado cerca del sitio de O- GlcNAcilación y/o fosforilación. El diálogo entre estos sitios puede constituir el código ΔLf responsable para el control de la actividad transcripcional de la DLf. Se sabe que la acetilación y la fosforilación dirigen la activación transcripcional mientras la O-GlcNAcilación y SUMOylación la reprimen. Esta región podría ser parte del dominio de transactivación. K308 y K361 son tambien sitios reguladores. Estos se localizan en la vecindad del DBD (Dominio de union al DNA). K379 está involucrado principalmente en la regulación de la estabilidad de la DLf porque esta a la vez SUMOylado o acetilado sugiriendo que tambien podría regular la actividad de la DLf. K391 participa en el control de la estabilidad de la DLf . Este sitio está en el centro de la secuencia PEST. Por lo tanto en la extremidad C-terminal un crosstalk entre fosforilación/SUMOylación/ubiquitinación podría constituir el código ΔLf responsable para el control de la estabilidad de la Deltalactoferrina. Conclusiones DLf K 308 -sumoylation K 361 sumoylation- K 379 sumoylation- K 13 acétylation- DBD ? K 379 acétylation- Mariller, C., Hardiville, S., Hoedt, E., Benaissa, M., Mazurier, J., Pierce, A., 2009. Biochimie 91, 109-122. Mariller, C., Hardivillé, S., Hoedt, E., Huvent, I., Pina-Canseco, S., Pierce, A. 2012. Biochem. Cell Biol. 90: 113 (2012) Pourcet ,B., Staels,B.,Glineur, C. 2013. Methods Mol Biol 952, 145-161 Siebert, P.D., Huang, B.C. 1997. Proc Natl Acad Sci USA 94, 21982203 Bibliografia PolySUMOylacion

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  • Resultados

    EL DIALOGO ENTRE O-GLCNACILACION, FOSFORILACION, UBIQUITINACION, ACETILACION Y

    SUMOYLACION CONTROLA LA ACTIVIDAD TRANSCRIPCIONAL Y LA ESTABILIDAD DE LA DELTA-

    LACTOFERRINA

    Escobar-Ramirez Adelma, Huvent Isabelle, Hoedt Esthelle, Dehnnaut Vanessa y Pierce Annick Unit de Glycobiologie Structurale et Fonctionnelle, UMR 8576 CNRS-Universit des Sciences et Technologies de Lille,

    IFR 147, 59655 Villeneuve d Ascq, France

    Introduccion La Delta-lactoferrina (Lf) es un factor de transcripcin,su expresin se encuentra bajamente regulada en el caso de cancer (Fig.1). La Lf es un marcador de tejido sano y la alta expresin de este transcrito fue correlacionado con un buen pronstico en cancer de seno (Benassa et al., 2005). La Lf es el resultado del uso alternativo del promotor del gen de la lactoferrina el cual permite la produccin de dos isoformas la alternativa N-Terminal: lactoferrina (LF) la cual es secretada y la Lf la contraparte nucleocitoplasmtica (Siebert and Huang, 1999). La Lf posee efectos antiproliferativos e induce el arresto del ciclo celular, esta es un eficiente factor de transcripcin e interacta in vivo via un elemento de respuesta a la Lf encontrado en los promotores de los genes Skp1, Bax, Dcps y SelH (Mariller et al., 2007, 2009; Hoedt et al., 2012; Hardivill et al., 2013). Dado que la Lf posee diferentes genes blanco, modificaciones en su actividad o concentracin podra tener crucial incidencia en la homeostasia celular.

    Plegamiento de la Lf. La estructura de la Lf ha sido creada usando

    los datos cristalograficos de la Lf,trazada usando UCSF Chimera 1.5.3.

    La superficie molecular muestra una exclusin del solvente con un radio de contacto de 1.4 (Mariller et al., 2012)

    Diagrama esquemtico de dominios y sitios functionales de la Lf El sitio de O-GlcNAcilacin es indicado en el cuadro azul,los sitios de ubiquitinacin en rojo, los sitios de acetilacin en verde y los sitios de sumoylacin en amarillo, DBD, DNA binding domain; TAD. TransActivating Domain; PEST, rapid degradation domain; NLS nuclear localization signal

    (despues de Mariller et al.,2012).Las modificaciones posttraduccionales

    modulan eficientemente la actividad y la estabilidad de la DLf.

    Nuestros recientes resultados mostraron que la O-GlcNAcilacin regula negativamente la actividad transcripcional de la Lf mientras esta inhibe su

    ubiquitinacin e incrementa su tiempo de vida media . Por otra parte la fosforilacin activa la actividad transcripcional y su degradacin (Hardiville et al., 2010). La sumoylacin y acetilacin parecen tambin modular la actividad transcripcional y la estabilidad.

    Modificaciones post-traduccionales en la Delta-lactoferrina La ruta de la sumoylacin

    La SUMOylacin es una modificacin post-traduccional caracterizada por la unin covalente y reversible de protenas ,small ubiquitin-like modifier (SUMO) una protena blanco (Garreau et Lima, 2010). En mamferos existen 4 isoformas llamadas ,SUMO -1 ,-2, -3 y -4 ( 11 kDa) . Las protenas SUMO estan fuertemente involucradas en la modulacin de la organizacin nuclear y viabilidad celular, su expresin est incrementada significativamente en procesos asociados con carcinognesis tal como el crecimiento celular,diferenciacin,senescencia,estrs oxidativo y apoptosis. La ruta de la SUMOylacin comprende las etapas de SUMO maduracin, conjugacin y deconjugacin. A diferencia de la ubiquitinacin,la SUMOylacin de protenas blanco solo necesita una enzyma E2 (UbC9) y un reducido nmero de enzymas E3 ligasas

    Estructura de la Delta-lactoferrina

    LVLK361GEA Type I: -K-X-E

    NLRK308SEE Type II

    SCIK13RDS Type II

    ENYK391SQQ Type II

    YTAGK379CGL ?

    sitios putativos SUMO en la Lf

    1 Sitio SUMO consenso ptimo y 3 sitios no consenso ptimos fueron localizados utilizando el programa SUMOsp 2.0

    (htpp://bioinformatics.lcd-ustc.org/sumosp). El sitio principal de

    ubiquitinacin podra ser tambin un sitio de SUMOylacin

    NLS

    PEST DBD?

    Hinge

    region

    Lf polySUMOylada

    PolySUMOylacin de la DLf en clulas HEK 293 . Cotransfeccin con pCMV10-3Xflag-Lf y pSG5-His-SUMO1. Immunoprecipitacin usando anticuerpo anti-Histidina dirigido contra el 6xHis-tag e

    Inmunorevelacin de las formas SUMOyladas de la DLf utilizando el anticuerpo anti-3xflag (M2).

    SUMO1 and SUMO2/3 estan dispuestas sobre la DLf

    SUMO-1 no forma cadenas SUMO porque sta carece de sitio de SUMOylacin. SUMO-2 y SUMO-3 tienen 97% de identidad y forman

    eficientemente cadenas. Sin embargo SUMO-1

    puede estar conjugada a cadenas SUMO-2/3

    como un terminador de la cadena y por lo tanto

    estar presente sobre cadenas de

    polySUMOylacin. 3xFLAG-DLf : 75 kDa; cadena SUMO : 11 kDa; mono-

    SUMO-3xFLAG-DLF : 86 kDa; polySUMO--3xFLAG-DLf >

    97 kDa

    Mutantes de SUMOylacion

    Representacin esquemtica de la construccin de las mutantes de SUMOylacin. 1 nico sitio SUMO es preservado. La M5S es una mutante

    SUMO nula.

    A B

    Identificacin de los sitios SUMO I (A) y SUMO2/3 (B). Co-transfeccin utilizando el vector pCMV10-3xflag-Lf/mutantes y pSG5-His-SUMO1, pCDNA3.1-His-SUMO2/3. Inmunoprecipitacin con el anticuerpo anti-3xflag (M2) e immunoblot con un anticuerpo anti-His. La GAPDH fu utilizada como control de carga.

    Actividad Transcripcional de la

    DLf y sus mutantes de

    SUMOylacin

    La actividad transcripcional de la DLf y la

    mutante K308 estn moduladas por el nivel de SUMOylacin

    La sobreexpresin de la proteasa SENP2 conduce a un incremento en la actividad

    transcripcional mientras la sobreexpresin de las protenas SUMO la regula negativamente.

    Sitios de acetilacin en la DLf

    2 sitios de acetilacin: K13 y K379 K13 es el principal sitio blanco de

    acetiltransferases

    Represin de la actividad transcripcional de la DLf en K308. Desrepresin de la actividad transcripcional cuando los sitios

    SUMO son silenciados, mutante (M5S).

    Benassa, M., Peyrat, J.-P., Hornez, L., Mariller, C., Mazurier, J., Pierce, A. 2005. Int J Cancer 114, 299306 Gareau, J.R., Lima, C.D. 2010. Nat Rev Mol Cell Biol 11, 861871. Hardivill, S., Hoedt, E., Mariller, C., Benassa, M., Pierce, A. 2010. J Biol Chem 285, 1920519218. Hardivill S., Pina-Canseco S., Escobar-Ramirez A., Elass E., Pierce, A. 2013. Eur. J. Chem. Biol. Hoedt, E., Hardiville, S., Mariller, C., Elass, E., Perraudin, J.P., Pierce, A., 2010. Biometals 23, 441-452. Mariller, C., Benaissa, M., Hardiville, S., Breton, M., Pradelle, G., Mazurier, J., Pierce, A., 2007. FEBS J 274, 2038-2053.

    La Delta-lactoferrina esta sumoylada en K13,K308,K361,K379 y K391. Algunos

    de estos sitios de SUMOylacin se encuentran localizados en reas donde tambien se encuentran presentes otras modificaciones post-traduccionales.

    El sitio K13 SUMO/acetilacin se encuentra localizado cerca del sitio de O-GlcNAcilacin y/o fosforilacin. El dilogo entre estos sitios puede constituir el cdigo Lf responsable para el control de la actividad transcripcional de la DLf. Se sabe que la acetilacin y la fosforilacin dirigen la activacin transcripcional mientras la O-GlcNAcilacin y SUMOylacin la reprimen. Esta regin podra ser parte del dominio de transactivacin.

    K308 y K361 son tambien sitios reguladores. Estos se localizan en la vecindad

    del DBD (Dominio de union al DNA).

    K379 est involucrado principalmente en la regulacin de la estabilidad de la DLf porque esta a la vez SUMOylado o acetilado sugiriendo que tambien podra regular la actividad de la DLf.

    K391 participa en el control de la estabilidad de la DLf . Este sitio est en el centro de la secuencia PEST. Por lo tanto en la extremidad C-terminal un

    crosstalk entre fosforilacin/SUMOylacin/ubiquitinacin podra constituir el cdigo Lf responsable para el control de la estabilidad de la Deltalactoferrina.

    Conclusiones

    DLf

    K308 -sumoylation

    K361 sumoylation-

    K379 sumoylation-

    K13 actylation-

    DBD ?

    K 379 actylation-

    Mariller, C., Hardiville, S., Hoedt, E., Benaissa, M., Mazurier, J., Pierce, A., 2009. Biochimie 91, 109-122. Mariller, C., Hardivill, S., Hoedt, E., Huvent, I., Pina-Canseco, S., Pierce, A. 2012. Biochem. Cell Biol. 90: 113 (2012) Pourcet ,B., Staels,B.,Glineur, C. 2013. Methods Mol Biol 952, 145-161 Siebert, P.D., Huang, B.C. 1997. Proc Natl Acad Sci USA 94, 21982203

    Bibliografia

    PolySUMOylacion