bacterias fijadoras de n

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Abundancia y Diversidad funcional de bacterias Abundancia y Diversidad funcional de bacterias fijadoras libres de nitrógeno en suelos del Sur del fijadoras libres de nitrógeno en suelos del Sur del Trapecio Amazónico Colombiano Trapecio Amazónico Colombiano Andrea Mantilla Andrea Mantilla M Sc M Sc Andrea Mantilla Andrea Mantilla M.Sc M.Sc Septiembre Septiembre de 2010 de 2010

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Abundancia y Diversidad funcional de bacterias Abundancia y Diversidad funcional de bacterias fijadoras libres de nitrógeno en suelos del Sur del fijadoras libres de nitrógeno en suelos del Sur del 

Trapecio Amazónico ColombianoTrapecio Amazónico Colombiano

Andrea MantillaAndrea Mantilla M ScM ScAndrea Mantilla Andrea Mantilla M.ScM.Sc

Septiembre Septiembre de 2010de 2010

ContenidoContenido

1.1. IntroducciónIntroducción

2.2. ObjetivosObjetivos

33 M d lM d l3.3. MetodologíaMetodología

44 ResultadosResultados4.4. ResultadosResultados

5.5. ConclusionesConclusionesFlor de Inirida.  Fuente: Rene López

IntroducciónIntroducciónAmazonia: Reserva Natural de Biodiversidad

IntroducciónIntroducción

Bosque húmedo tropical. PNNA. Fuente: Augusto Mazorra.  Mico.  Tarapacá.  Fuente: René López.  Heliconias.  Guaviare. Fuente: René López. Comunidad Indígena. Fuente: René López

? ? ? ?

El suelo y la rizósferaEl suelo y la rizósferaEl suelo y la rizósferaEl suelo y la rizósfera

Diversidad de macro ymicroorganismos.microorganismos.

Ciclos biogeoquímicos.

Actividad microbiana Actividad microbiana.

P y N más limitantes.

Perfil Suelo Amazónico.  Fotografía Clara Peña. 

FBN: Mantenimiento del equilibrio de N en la TierraFBN: Mantenimiento del equilibrio de N en la TierraFBN: Mantenimiento del equilibrio de N en la TierraFBN: Mantenimiento del equilibrio de N en la Tierra

Arazá.  Fuente: Jaime Barrera

amaneciendopensamientos1.blogspot.com/2008/03  Cocona.  Fuente: Jaime Barrera

Bacterias fijadoras de nitrógenoBacterias fijadoras de nitrógeno

Bacterias fijadoras simbióticasBacterias fijadoras simbióticas Bacterias diazótrofasBacterias diazótrofas

Formación de nódulos. Fuente: http://locuras‐mooy blogspot com

Formación de quistes de Azotobacter sp.p. Fuente:http://locuras‐mooy blogspot commooy.blogspot.com http://locuras‐mooy.blogspot.com

DiazótrofasDiazótrofas PGPRPGPR

1 2 3

Fijación de Nitrógeno       Producción de Auxinas

Desarrollo Vegetal 

1)Azospirillum. Fuente: http://www.dista.unibo.it. 2) Morfogénesis Copoazú. Fuente: Olga Rodríguez. 3) Ensayo matera. Fuente: http://www.dista.unibo.it. 4) Copoazú. Fuente: Jaime Barrera 4

Objetivo generalObjetivo general

Estimar la abundancia y diversidad funcional

de bacterias diazótrofas aisladas en suelos del

sur del trapecio amazónico colombiano parap p

seleccionar aislamientos con potencial para el

desarrollo de preformulaciones.desarrollo de preformulaciones.

Objetivos específicosObjetivos específicosAislar y caracterizar la comunidad cultivable de bacterias diazótrofas

Objetivos específicos Objetivos específicos 

a partir de suelo.

Evaluar y seleccionar in vitro los microorganismos diazótrofos cony g

mayor capacidad fijadora de nitrógeno.

Evaluar y seleccionar in vitro aislamientos diazótrofos productores deEvaluar y seleccionar in vitro aislamientos diazótrofos productores de

AIA.

E l l f ti id d d b t i di ót f t dEvaluar la efectividad de bacterias diazótrofas como promotoras de

crecimiento vegetal sobre el crecimiento de cocona bajo condiciones

de cultivo in Vitro.

Área de estudioÁrea de estudioÁrea de estudioÁrea de estudio

Bosque PNNA. Fuente: Augusto Mazorra

Chagra .Fuente: Clara PeñaPastizal.  Finca ganadera Villa Claudia. Fuente: J. P. Forero

Aislamiento de diazótrofasAislamiento de diazótrofasAislamiento de diazótrofasAislamiento de diazótrofas

C í l10 g de muestra en 90 ml de S.S. 0,85% (10‐1)

Agitación a 250 rpm x  1 h 30°C

Cortar raíces, macerarlas y homogenizar con el suelo

Diluciones seriadas hasta 10 ‐5

AMI

Siembra dilución 10‐4 en medios Burk´s y Ashby

Siembra diluciones 10 ‐2 a 10 ‐5 

Incubar x 8 d 30ºC

Incubar x 5 d 30°C

AEROB

ICROA

Recuento (UFC/g de suelo) y descripción morfológica

en JMV y Nfb semisólidos 

R t NMP/ d l

Incubar x 5 d 30 CIOS

EROLIRecuento por NMP/g de suelo y 

protocolo de Dobereiner

IOS

Ensayos ARA y AIA

Inoculacióny suspensión S S 0 85%

Reemplazo de 0.2% C2H2

Cromatografía de gasesInoculación

BHI x 24hDO: 1.8 – 2.2 Abs: 600nm 

en S.S. 0.85% con C2H2

Incubación por 48h 

Aerobios: 4.5hMicroaerófilos: 24h

30ºCProducción de C2H4 

C.N + Trp 0.3% x

Centrifugar y filtrar

C.N + Trp 0.3% x 72h en oscuridad

Cromatograma de HPLC muestra 35‐2Cromatografía Líquida

Amplificación gen nifHAmplificación gen nifH 

A B C

DE

(A): Extracción DNA. Fuente: Corpogen. (B): Amplificación nifH. Fuente: E. Mendoza. (C): Secuenciación. Fuente: Sinchi –Corpogen. (D): Alineamiento de secuencias NCBI‐GB. Fuente: Corpogen. (E): Análisis filogenético. Fuente: Corpogen.

Evaluacion del efecto promotorEvaluacion del efecto promotor Porcentaje de germinación y evaluación viabilidad de Tª ambiente y exposición y evaluación viabilidad de

semillas

Selección de 5Selección de 5

y pa luz directa

AIA

Selección de 5 aislamientos: altos valores

de ARA y valores bajos, medios y altos de

AIA

Valores de ARA:12,518 (847,25 + 551,9 nmoles de etileno/h/ml). 

Preparación del inóculo microbiano en buffer PBS.

Cultivos  de 24‐48 h en AN a una concentración 

Inoculación: 5 replicas por

final de 106 UFC 

Inoculación: 5 replicas por inoculo, cada replica con 10

semillas. N= 350

25C con un fotoperiodo de 16 horas de luz y 8 h de oscuridad durante 5 días. . 

Abundancia Diazótrofas Aerobias y MicroaerófilasAbundancia Diazótrofas Aerobias y MicroaerófilasAbundancia Diazótrofas Aerobias y MicroaerófilasAbundancia Diazótrofas Aerobias y MicroaerófilasDiazótrofas aerobias Diazótrofas Microaerófilas

80

100

120

140

o (10 ex

p5)

6.00E+02

8.00E+02

1.00E+03

1.20E+03

g de

 suelo

Terraza

0

20

40

60

UFC

/g de su

el

Terraza

Varzea

0.00E+00

2.00E+02

4.00E+02

Bosque Pastizal Chagra

NMP/

g Terraza

Várzea

PASTIZAL CHAGRA BOSQUE

COBERTURA

Cobertura

51 aislamientos agrupados en 19 morfologías. 

Nº de Morfologías:  B > CH >  P.  

Distribución morfologías:  B > CH >  P.

No relación entre paisajes y distribución de morfologías

Ensayo de ARAEnsayo de ARAEnsayo de ARAEnsayo de ARARelación ARA y CoberturaRelación ARA y Cobertura

3000 Aislamientos aerobios: Valores hasta

1000

1500

2000

2500

ileno

/hor

a/m

l de

de c

ultiv

o

Diazótrofos aerobios

Aislamientos aerobios: Valores hasta11,062 + 170,24 nmoles etileno/hora/mlde medio de cultivo de Burk´s.

Aislamientos microaerofilos: valores

0

500

1000

BOSQUE PASTIZAL CHAGRAA. vinelandii

nmol

es d

e et

im

edio

d Aislamientos microaerofilos: valoreshasta 8905,72 + 1117,57 nmolesetileno/hora/ml de medio Nfb.

Control positivo (Azospirillum

Medio de cultivo

Aislamientos recuperados

Aislamientos ARA (+)

Aislamientos ARA positivoAislamientos ARA positivoControl positivo (Azospirillumbrasilense ): valores entre 847,25 + 551,9nmoles de etileno/hora/ml.

117 aislamientos fueron ARA (+) 38p ( )

Burk´s 76 28

Ashby 51 45

Nfb 110 39

117 aislamientos fueron ARA (+), 38perdieron está capacidad, siendo 79 losque se encuentran conservados enCryoBank.

JMV 76 5

TOTAL 313 117

y

Producción de compuestos indólicosProducción de compuestos indólicosProducción de compuestos indólicosProducción de compuestos indólicos

41 aislamientos registraron valores de producción de AIA por HPLC mayores a losregistrados por el control positivo A. lipoferum, con valores que oscilan entre 16,61 + 0,52 y357,13 + 22,43.

Los valores de AIA reportados por los aislamientos de bacterias diazótrofas del banco del Los valores de AIA reportados por los aislamientos de bacterias diazótrofas del banco delInstituto han sido hasta 100 veces mas altos que bacterias de los mismos géneros aisladasen maíz (Bashan, 2004), pastizales y caña de azúcar (Baldani et al. 2007).

GC1

Diapositiva 17

GC1 Gladys Cardona, 25/04/2010

Amplificación del genAmplificación del gen nifHnifH

1    2   3   4   5   6    7   8   9   10  C+ C‐MP   

Amplificación del gen Amplificación del gen nifHnifH2  y 32  y 3

320 pb 66

Filotipo Alineamiento de secuencias

1 Bradyrhizobium sp CBC1 Bradyrhizobium sp., CBC

2 A. Vinelandii, CBC

3 A. Vinelandii, CBC

4 K. pneumoniae, Enterobacter sp. , P. agglomerans, CBC77

5 K. pneumoniae, Enterobacter sp. CBC

6 K. pneumoniae, Enterobacter sp. , P. agglomerans, CBC

7 Enterobacter sp. , P. agglomerans, CBC

8 K. pneumoniae, Enterobacter sp. , P. agglomerans, CBC

77

9 Paenibacillus sp., CBC

10 S. enterica, Enterobacter sp. y CBC 44

Efecto promotor sobre semillas de CoconaEfecto promotor sobre semillas de Cocona 

Viabilidad y Calidad de las semillas Medición tamaño de la radícula

Figura 1. Determinación del efecto de bacterias diazótrofas sobre el crecimiento de la radícula de semillas de cocona. 

Figura 2. Efecto de bacterias diazótrofas sobre el crecimiento y germinación de semillas de cocona, dado en peso seco.

ConclusionesConclusionesLa FBN de bacterias diazótrofas de la región amazónica (a partir de losensayos de ARA) mostraron una alta eficiencia (400% mas fijación)

ConclusionesConclusiones

ensayos de ARA), mostraron una alta eficiencia (400% mas fijación)comparados con los controles positivos usados A. Vinelandii .

l l d AIA d l i l i d b i di ó f los valores de AIA reportados por los aislamientos de bacterias diazótrofasdel banco del Instituto han sido hasta 100 veces mas altos que bacterias delos mismos géneros aisladas en maíz (Bashan, 2004), pastizales y caña deazúcar (Baldani et al 2007)azúcar (Baldani et al. 2007).

Los resultados de secuenciación del gen nifH agruparon los aislamientos10 fil ti d d l fil ti (7) lb ó l í d i l i ten 10 filotipos, en donde el filotipo (7) albergó a la mayoría de aislamientos.

La mayoría de éstos géneros pertenecen a la familia Enterobacteriaceaeampliamente reportados como fijadores de nitrógeno y patógenos para elhombre animales y plantashombre, animales y plantas.

ConclusionesConclusiones

S d á d l 50% d l li i d l i

ConclusionesConclusiones

Se destaca que más del 50% de los alineamientos de las secuenciasencontradas corresponden a bacterias no cultivables, resaltando que granparte de las bacterias diazótrofas existentes en la zona de estudio son génerosaún desconocidos y por tanto constituyen una fuente de nuevas especiesaún desconocidos y por tanto constituyen una fuente de nuevas especies.

El banco de bacterias diazótrofas del sur del Trapecio Amazónico sed i l d i i l i é ddestaca por su potencial promotor de crecimiento vegetal, constituyéndosecomo un insumo importante para el desarrollo de preformulacionesmicrobianas para potencializar el efecto de enmiendas orgánicas sobre eldesarrollo de cultivos de importancia económica para la región amazónicadesarrollo de cultivos de importancia económica para la región amazónicacolombiana.

Muchas GraciasMuchas Gracias