guia del lshh
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GUIA DEL LABORATORIO DEL SERVICIO DE HEMATOLOGÍA Y HEMOTERAPIA
HOSPITAL UNIVERSITARIO
VIRGEN DE LAS NIEVES
Versión 1.08
GUIA DEL LABORATORIO DEL SERVICIO DE HEMATOLOGÍA Y HEMOTERAPIA
Edición 01/08
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INDICE 1. INTRODUCCIÓN ................................................................................................... 4 2. PROPÓSITO Y ALCANCE .................................................................................... 5 3. ORGANIGRAMA DEL LSHH ................................................................................ 5 4. GENERALIDADES PARA LA TOMA DE MUESTRAS DEL LSHH ..................... 6
4.1. Conceptos ......................................................................................................... 6 4.2. Extracción de sangre venosa .......................................................................... 6
4.2.1. Normas básicas para la extracción de sangre para el LSHH ..................... 7 4.2.2. Tubos de extracción .................................................................................... 8 4.2.2.1. Tubo con activador del coágulo: ............................................................... 8 4.2.2.2. Tubo con EDTA:........................................................................................ 8 4.2.2.3. Tubo para PDF: ......................................................................................... 9 4.2.2.4. Tubo con citrato:........................................................................................ 9 4.2.3. Extracción de sangre en situaciones especiales ...................................... 11
4.3. Sangre capilar ................................................................................................. 11 5. PETICIONES DEL LSHH..................................................................................... 12
5.1. Petición electrónica......................................................................................... 13 5.2. Petición normal ................................................................................................ 14 5.3. Petición urgente............................................................................................... 14 5.4. Petición de estudio de Médula Ósea ............................................................. 15 5.5. Petición de transfusión ................................................................................... 15 5.6. Hoja de consulta para control de anticoagulación....................................... 16
6. SISTEMA DE IDENTIFICACIÓN DE MUESTRAS Y PETICIONES DEL LSHH. 17 6.1. Códigos de barras ........................................................................................... 17 6.2. Rotulación de muestras .................................................................................. 18 6.3. Muestras para transfusión (Pruebas cruzadas)............................................ 18
7. GUÍA PARA LAS EXTRACCIONES SANGUÍNEAS DEL LSHH ....................... 18 8. RECEPCIÓN Y CONTROL DE MUESTRAS Y PETICIONES EN EL LSHH ...... 20 9. INCIDENCIAS PREANALÍTICAS ........................................................................ 20
9.1. Incidencias que impiden el procesamiento de muestras y peticiones. .. 21 9.1.1. Muestra y Petición con datos no Coincidentes ....................................... 21 9.1.2. Petición sin identificar con código de barras ........................................... 21 9.1.3. Muestra con Volumen Incorrecto ............................................................ 21 9.1.4. Muestra Coagulada ................................................................................. 21 9.1.5. Muestra Hemolizada ............................................................................... 21 9.1.6. Muestra Lipémica .................................................................................... 21 9.1.7. Muestra en Tubo Incorrecto .................................................................... 21 9.1.8. Muestra Mal Identificada o Sin Identificar ............................................... 21 9.1.9. Muestra con Problema en Código de Barras .......................................... 21 9.1.10. Muestra de Citrato No Recibida .............................................................. 22 9.1.11. Muestra con EDTA No Recibida ............................................................. 22 9.1.12. Muestra para PDF no recibida ................................................................ 22 9.1.13. Muestra de Suero no Recibida................................................................ 22 9.1.14. Petición ilegible ....................................................................................... 22 9.1.15. Petición sin solicitud de estudio .............................................................. 22 9.1.16. Petición sin origen y/o destino................................................................. 22
9.2. Incidencias que originan una observación en el informe de resultados . 22 9.2.1. Muestra Insuficiente ................................................................................ 22
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9.2.2. Formato petición incorrecto...................................................................... 22 9.2.3. Petición sin HC/NUHSA ........................................................................... 23 9.2.4. Petición sin médico peticionario ............................................................... 23
9.3. Incidencias que originan la devolución de muestras y/o petición ......... 23 9.3.1. Muestra (para transfusión) sin nombre e H. C. Completos ...................... 23 9.3.2. Muestra (para transfusión) sin identificar persona que realiza extracción 23
9.4. Otras incidencias.......................................................................................... 23 9.4.1. Intervalo de confirmación excesivo .......................................................... 23 9.4.2. Muestra estropeada en LSHH.................................................................. 23 9.4.3. Muestra mal transportada ........................................................................ 23
10. BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................... 24 ANEXO I CONSIDERACIONES PREANALÍTICAS POR DETERMINACIÓN DE LA CARTERA DE SERVICIOS. ........................................................................................... 25
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1. INTRODUCCIÓN
El objetivo del laboratorio clínico es la obtención de información sobre el
estado de salud de una persona. Esta información puede utilizarse para establecer un diagnóstico, evaluar la evolución y/o pronóstico de una enfermedad, valorar la efectividad de un tratamiento, realizar un cribado en una población, etc... Para ello, a partir de muestras biológicas, se realizan pruebas en las que se miden una serie de magnitudes de índole diferente: bioquímicas, hematológicas, inmunológicas, microbiológicas, parasitológicas, toxicológicas, etc.
El tiempo que transcurre entre la realización de una petición por un clínico y el análisis de la muestra, es lo que conocemos como fase preanalítica y es donde, en la actualidad, se producen entre el 75 y el 80% de los errores que ocurren en todo el proceso analítico, debido a los avances tecnológicos e informáticos que se han producido en las fases analítica y postanalítica.
Años 90 Informatización
Más del 50% de los errores se producen en la fase analítica por problemas de imprecisión e
inexactitud
Reducción de errores en fase analítica y aumento en la preanalítica (60%) y en la postanalítica (25%)
Errores en fase analítica: 6 - 8 %, en postanalítica 13 % y en preanalítica > 75 %
Años 70 Procesos manuales
Años 80 Automatización
Es responsabilidad del laboratorio garantizar la calidad de sus resultados,
controlando todos los procedimientos desde que el médico solicita el análisis hasta que éste recibe el informe final, incluyendo pues, la fase preanalítica (Decreto 112/88 de autorización de laboratorios de la Junta de Andalucía, anexo III, apartado a: “ ... la fase preanalítica deberá quedar garantizada por el responsable de la actividad sanitaria del laboratorio...”)
“Podemos tener los resultados analíticos más fiables, el mejor sistema de información, la última tecnología y
el mejor tiempo de respuesta, pero todo esto de qué sirve, si le damos el resultado al paciente equivocado”
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2. PROPÓSITO Y ALCANCE
El propósito de esta guía es proporcionar información práctica y útil a los profesionales del hospital y de nuestra área sanitaria de influencia sobre los procedimientos realizados en el Laboratorio del Servicio de Hematología y Hemoterapia (LSHH), proporcionar información y establecer las normas para la obtención de muestras para nuestro laboratorio y establecer unos criterios claros y concisos para la aceptación de muestras y peticiones para su estudio.
Su objetivo es mejorar la calidad de los estudios hematológicos y mejorar la satisfacción de nuestros clientes tanto internos como externos.
3. ORGANIGRAMA DEL LSHH
El laboratorio del Servicio de Hematología y Hemoterapia (LSHH) se sitúa en la
planta baja del edificio medicoquirúrgico, del Hospital Virgen de las Nieves. Este laboratorio da respuesta a los edificios del ámbito Caleta, al Hospital San Juan de Dios y a toda el área sanitaria de influencia del HUVN. También hay un laboratorio en el edificio de Rehabilitación y Traumatología para dar respuesta a los servicios de dicho edificio que funciona como Banco de Sangre y laboratorio de Coagulación básico.
El LSHH se divide en cuatro áreas:
1. Hematología Biológica: funciona como laboratorio de rutina con horario de lunes a viernes de 8 a 15 horas.
2. Hemostasia y Coagulación: funciona como laboratorio mixto de rutina y urgencias, funciona las 24 horas del día durante siete días a la semana.
3. Banco de Sangre: funciona como laboratorio mixto de rutina y urgencias, funciona las 24 horas del día durante siete días a la semana.
4. Control tratamiento de anticoagulación (TAO): funciona como una consulta en horario de 8 a 15 horas de lunes a viernes, y en horario de 15 a 20 horas los lunes y jueves, en ella se hace la determinación del INR para el control de este tratamiento.
Interno Externo
120614 958020614120315 958020315120013 958020013120602 958020602120552 958020552120553 958020553120551 958020551120550 958020550121655 958021655
DIR
ECTO
RIO
TEL
EFO
NIC
O
Laboratorio LSHH-HRT
Consulta TAOHematología BiológicaCoagulación Especial
Hemostasia y CoagulaciónBanco de Sangre
Jefe de ServicioSupervisorSecretaría
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4. GENERALIDADES PARA LA TOMA DE MUESTRAS DEL LSHH
4.1. Conceptos La toma de muestras es el acto en el que se obtiene, una parte de tejido,
líquido, secreción o excremento de una persona, para su estudio en un laboratorio, cuando dicha obtención se efectúa con un método invasivo se denomina extracción.
Es importante también diferenciar entre espécimen y muestra; espécimen es la parte del sistema biológico que obtenemos para su estudio, muestra es la parte del espécimen que debidamente tratada se utiliza para el estudio, en algunos casos espécimen y muestra coinciden, en otros no. Ejemplo: para un hemograma el espécimen es sangre total y la muestra también, para una coagulación el espécimen es también sangre total y la muestra plasma (obtenido tras la centrifugación de la sangre total). El término espécimen está en desuso por lo que siempre en esta guía hablaremos de muestra, para referirnos a ambos.
Las muestras que se requieren para los estudios hematológicos son: sangre (venosa y capilar), médula ósea y L.C.R.
4.2. Extracción de sangre venosa La sangre venosa es la muestra hematológica por excelencia, por la riqueza de
datos que aporta y su relativa facilidad para obtenerla. No es propósito de esta guía describir el procedimiento de venopunción, pero sí hacer una serie de recomendaciones sobre esta técnica y establecer unas normas básicas que sirvan de orientación al profesional que realice el procedimiento.
El LSHH, por dos motivos determinantes, recomienda realizar las extracciones
sanguíneas SIEMPRE CON SISTEMA DE VACÍO:
aporta medidas de seguridad para el profesional con el fin de evitar la exposición accidental por inoculación.
evita dos de los errores preanalíticos más frecuentes, la hemólisis de las células y el incorrecto llenado del tubo (error crítico para las muestras de los estudios de coagulación).
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4.2.1. Normas básicas para la extracción de sangre para el LSHH
Identificar SIEMPRE al paciente antes de realizar la extracción. En el caso de extraer muestras para una transfusión sanguínea esta identificación se hará de forma inequívoca (BOE - RD 1088 2005, Art: 17).
Identificar petición y muestras con el mismo código de barras, extremar las precauciones en este paso porque un error aquí es, normalmente indetectable en la fase analítica, y si se detecta, conlleva la anulación de toda la serie analítica. En el caso de muestras para transfusión o pruebas de compatibilidad, remitirse al punto 6, apartado 6.3 de esta guía.
Colocar el compresor (o torniquete) entre 7 y 10 cm por encima del lugar elegido para la venopunción, soltarlo inmediatamente después de canalizar la vena. NUNCA DEBE ESTAR COLOCADO MÁS DE DOS MINUTOS pues altera el equilibrio entre el líquido y los elementos formes de la sangre (aumento 10% el valor del hematocrito, del 15% de la coagulación...)
Realizar una punción lo más “atraumática” posible, sobre todo si incluye estudio de coagulación, cuanto más limpia sea la punción menos factores titulares se liberarán.
Evitar las causas de hemólisis de la muestra: El uso jeringa y aguja para la extracción multiplica el riesgo de
hemolizar las muestras: tirar con excesiva fuerza del émbolo de la jeringa, usar llave de tres vías, forzar el paso de sangre por la aguja o llenar el tubo sin dejar deslizar la sangre por la pared interna del mismo
Extraer sangre de un hematoma Agitar los tubos de extracción con fuerza en lugar de invertirlos
suavemente, para mezclar la muestra con el aditivo (anticoagulante o activador).
Si se usa jeringa y aguja para realizar la extracción, hay que recordar: No destapar NUNCA los tubos, al volver cerrarlos puede producirse
un exceso de presión dentro y hacer que salte el tapón durante el transporte.
Respetar el volumen de llenado de cada tubo, y en especial el de coagulación.
Llenar los tubos dejando resbalar la sangre por la cara interna de los mismos, no dejarla caer directamente al fondo, ni forzar el paso de la sangre por la aguja.
Respetar el orden de extracción de los tubos: este variará en función del sistema utilizado para realizar la extracción. (Ver el siguiente cuadro)
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3. Tubo de hemograma
4. Tubo de PDF
1. Tubo de coagulación
2. Tubo de hemograma
3. Tubo de bioquímica
4. Tubo de PDF
(Recomendación H3 - H5 de la NNCCLS)
Sistema con vacío Jeringa y aguja
1. Tubo de coagulación
2. Tubo de bioquímica
4.2.2. Tubos de extracción Existen diferentes tubos de recogida de sangre para su análisis, dependiendo del tipo de éste y de las determinaciones a realizar se emplean tubos con distintos aditivos; para diferenciarlos a simple vista se emplea un código de colores regulado por la norma ISO 6710.
4.2.2.1. Tubo con activador del coágulo: Se usa para el estudio de determinaciones en suero, este tipo de tubo no lleva ningún anticoagulante, por el contrario su pared interna está recubierta con una sustancia activadora del coágulo que facilita y acelera el proceso de retracción del coágulo; en el fondo del tubo hay un gel separador que al centrifugar se interpone entre el suero y el coágulo separándolos definitivamente e impidiendo su homogeneización posterior. Su volumen de llenado es de 5 o 7 ml .
Este tubo se utiliza preferentemente en el área de Hematología biológica para el estudio de anemias, aunque también se utiliza para pruebas complementarias del estudio de coagulación especial y algunas específicas del Banco de Sangre.
TAPÓN COLOR MARRÓN
4.2.2.2. Tubo con EDTA: Se utiliza para el estudio cuantitativo y cualitativo de las células sanguíneas, tanto para su recuento y estudio de su morfología (hemograma), como para el estudio inmunohematológico (grupos sanguíneos, pruebas de compatibilidad etc...). El EDTA K3 es sal tripotásica del ácido etilendiamintetraacético, un anticoagulante con un efecto quelante sobre el calcio.
TAPÓN COLOR MALVA
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4.2.2.3. Tubo para PDF: Se utiliza únicamente para el estudio de los productos de
degradación de la fibrina (PDF). Contiene un inhibidor de tripsina de soja y veneno de Bothrops atrox para la recogida de 2 ml de sangre, estos aditivos provocan la formación de un coágulo de forma rápida, incluso en presencia de heparina. Es habitual la presencia de hemólisis en el suero que no afecta al ensayo. Esta determinación pertenece al área de coagulación y hemostasia.
TAPON COLOR AZUL MARINO
4.2.2.4. Tubo con citrato: El citrato sódico es el anticoagulante para realizar los estudios de coagulación. Su acción anticoagulante se basa en la precipitación de los iones de calcio; se usa en forma acuosa de citrato trisódico 0.106M (C6H5O7Na3-2H2O) tamponado para estabilizar el pH del plasma. Una vez centrifugado el tubo obtenemos plasma que es la muestra usada para las determinaciones de coagulación. (El plasma se diferencia del suero – ambos obtenidos tras la centrifugación de la sangre- en su riqueza en factores de coagulación).
TAPÓN COLOR CELESTE
La característica primordial de este tubo es que el volumen de
anticoagulante que contiene está preparado para un volumen determinado de sangre. La relación volumen de citrato sódico / plasma tiene que ser 1:9, una parte de citrato por nueve de plasma. Cuando no se llena el tubo correctamente se modifica esta proporción y esto aumenta el valor del tiempo de tromboplastina parcial (PTT) y del tiempo de protrombina (PT), especialmente sí la relación aumenta a 1:7. También cuando el valor del hematocrito supera el 55% se alteran los valores del PT y del PTT debido a que se reduce el volumen de plasma en el espécimen aumentando la relación citrato-plasma; este citrato “extra” en el plasma, forma complejos con el calcio agregado durante la medición de estas determinaciones elevando ambos tiempos.
En el cuadro de la página siguiente dispone de una guía donde comprobar si el llenado del tubo está dentro del rango permitido.
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4.2.3. Extracción de sangre en situaciones especiales Evítese la extracción de sangre del brazo donde el paciente tenga colocada
una vía de perfusión, la muestra obtenida estará diluida. Si no hubiera otra opción (vías en ambos brazos por ejemplo), y siempre que sea posible, cierre la perfusión y espere al menos dos minutos para realizar la extracción.
La extracción de sangre de un catéter debe asegurar que ni la solución perfundida ni el uso de heparina van a interferir en el resultado del análisis. Siempre debe desecharse un volumen de al menos dos o tres veces el de la luz del catéter, si la extracción es para un estudio de coagulación no debe usarse este método si no es en el momento de la implantación de la vía. Se recomienda utilizar un adaptador de vacío para el llenado de los tubos.
La obtención de sangre arterial para realizar estudios hematológicos no está aconsejada. En cualquier caso tenga en cuenta que las jeringas de extracción arterial están heparinizadas, por lo que no pueden usarse para la extracción de un estudio de coagulación.
No obstante, en la práctica diaria se dan situaciones en las que no es posible usar otra opción que las descritas en los puntos anteriores, en estos casos debe informarse al Laboratorio de las características de la extracción y de la imposibilidad de realizarla de otra forma.
4.3. Sangre capilar La mal denominada sangre capilar es la obtenida mediante punción cutánea.
En realidad es una mezcla de sangre procedente de arteriolas, vénulas y capilares con líquidos intersticiales e intracelulares; su composición depende fundamentalmente de la cantidad de flujo sanguíneo en la zona de punción y de la profundidad de penetración de la lanceta.
En el LSHH este tipo de muestra se usa para dos determinaciones, el tiempo de sangría de Ivy y el control de tratamiento anticoagulante (TAO) en consulta externa.
En adultos la zona de punción ideal es el lateral de los dedos de la mano para el control de TAO y el antebrazo para el Ivy, en RN se usa también la superficie plantar externa o interna del talón (sin superar los 2,4 mm de profundidad).
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Aspectos que deben considerarse en una punción cutánea:
Una vez desinfectada la zona de punción debe dejarse secar el antiséptico usado para que no interfiera en el análisis posterior de la muestra y para que haya un mejor flujo de las gotas.
Desechar la primera gota que fluye; está contaminada de factores y líquidos tisulares.
Si las gotas no fluyen libremente aplicar una ligera presión sobre la zona, no se debe exprimir ni forzar el flujo, esto puede hemolizar la muestra o incrementar la proporción de fluidos intersticiales en ella.
El precalentamiento de la zona de punción puede favorecer su vascularización.
Utilizar siempre lancetas para realizar esta técnica. El uso de agujas hipodérmicas o I.V. está totalmente desaconsejado. (Una de las primeras causas de pinchazos accidentales)
5. PETICIONES DEL LSHH
Cualquier petición realizada al LSHH debe contener un mínimo de información (legible) que permita una identificación inequívoca del paciente, de su ubicación, del destino del informe de resultados (si no es el mismo de su ubicación), de la persona responsable de la petición y de las determinaciones requeridas.
Localización del paciente (origen de la petición): servicio, habitación y cama, consulta, centro de salud... y destino del informe de resultados si fuese distinto
al origen.
Sospecha diagnóstica o motivo que origina la petición
Estudio o determinaciones solicitados
DATOS MÍNIMOS DE UNA PETICIÓN
Identificación única del paciente: con nombre y apellidos legibles y un número de identificación: la historia clínica del hospital o el NUHSA (número único de
historia de salud de Andalucía).
Identificación del facultativo responsable de la petición
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Además una petición debe contener información sobre la situación clínica del
paciente o sobre aquellos aspectos preanalíticos que la enfermera que realice la extracción pueda considerar de relevancia para la fase analítica.
El personal del LSHH comprueba antes de procesar cada petición la información contenida en la misma y la concordancia entre ésta y la de la/s muestra/s, cualquier incidencia observada es registrada según el Procedimiento General de Recepción de Muestras del LSHH, procediendo al rechazo, devolución de dicha petición o a la introducción de un comentario en el informe de resultados. (Ver punto 8 de esta Guía)
A continuación se detalla el petitorio del LSHH especificando las características de cada petición y la información adicional específica para cada una de ellas.
5.1. Petición electrónica Se realiza con el programa de Peticiones a Laboratorio, aplicación que se encarga de realizar peticiones de analíticas a los diferentes laboratorios con los que trabaja el hospital: Laboratorio General, Urgencias, Hematología, etc. Las peticiones hechas con este sistema tienen las siguientes ventajas:
Captura los datos demográficos del host del hospital
Permiten realizar las peticiones a múltiples pacientes (todos los enfermos encamados o de la agenda de una consulta
Está adaptado a las necesidades de cada servicio
Se dispone en cualquier momento de todos los resultados de un paciente
Mejora la trazabilidad preanalítica pues permite saber la hora de la extracción (Confirmación de la extracción)
Recepción inmediata de los resultados tras su validación
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5.2. Petición normal
En esta petición se realizan todas las solicitudes con carácter rutinario a las secciones de Hematología Biológica, Hemostasia y coagulación y Banco de Sangre. No es válida para la petición de transfusión o de pruebas cruzadas. La cumplimentación de datos es manuscrita o bien con etiqueta preimpresa.
Nº Hª CLINICA
1er APELLIDO
2º APELLIDO
NOMBRE
MUJER
HOMBRE . .
SERVICIO: MEDICO PETICIONARIO: (Código) ORIENTACION DIAGNOSTICA / TRATAMIENTO:
HOSPITAL / CENTRO: HAB. / CAMA / CONSULTA:
ORI
GEN
DEM
OG
RÁFI
COS
Espacio para código de barras
S.S./NUHSA
FECHA NACIMIENTO
ESCRIBIR CON LETRA DE IMPRENTA, CLARA. ES OBLIGATORIO Nº DE HISTORIA O NUHSA
SI DISPONE, PEGAR ETIQUETA IDENTIFICATIVA DE DATOS DEMOGRÁFICOS
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HOSPITAL UNIVERSITARIO VIRGEN DE LAS NIEVES GRANADA
PETICION NORMAL
TTPA P.D.F.
AT III
ESTUDIO DE ANEMIAS
HEMATOLOGÍA BIOLÓGICA
HEMOSTASIA Y COAGULACIÓN ESTUDIO DE HIPERCOAGULABILIDAD
SOLO PACIENTES HEMATOLOGÍA
ACIDO FÓLICO
VITAMINA B12PSEUDOTROMBOPENIA INDUCIDA POR EDTA
METABOLISMO Fe
FACTOR VIII
FACTOR V TP
FIBRINOGENO
DIMERO D
ESTUDIO DE HIPOCOAGULABILIDAD SOSPECHA C.I.D.
EST. BASICO DE COAGULACION
HEMATIMETRÍA
ESTUDIO Hb A2
HAPTOGLOBINA
A
A
A
A
A
A
C
D D
D
D
B
B
B
B
B
B
B
B
B
BB
D
D
A B
D
PETICION NO VALIDA PARA TRANSFUSION
CRIOGLOBULINAS
COOMBS INDIRECTO (EAI)
GRUPO SANGUÍNEO / Rh
BANCO DE SANGRE
IDENTIFICACIÓN Ac.
COOMBS DIRECTO
A
A
A
A
A
FIRMA DE QUIEN EXTRAE FIRMA DE QUIEN RECIBE LSHH
FECHA Y HORA EXTRACCIÓN FECHA Y HORA RECEPCIÓN LSHH
PREA
NALÍ
TICA
EN CADA DETERMINACIÓN SE ESPECIFICA EL TUBO (O TUBOS) NECESITADOS
A CB D
TUBO EDTA (T. MALVA)
TUBO CITRATO (T. CELESTE)
TUBO PDF (T. AZUL M.)
TUBO GELOSA S/S (T. MARRÓN)
Nº Hª CLINICA
1er APELLIDO
2º APELLIDO
NOMBRE
MUJER
HOMBRE . .
SERVICIO: MEDICO PETICIONARIO: HOSPITAL / CENTRO: HAB. / CAMA / CONSULTA:
LABORATORIO SERVICIO DE HEMATOLOGIA Y HEMOTERAPIA
HOSPITAL UNIVERSITARIO VIRGEN DE LAS NIEVES. GRANADA
PETICION URGENTE
Espacio para código de barras
S.S./NUHSA
FECHA NACIMIENTO
ORIENTACION DIAGNOSTICA / TRATAMIENTO:
PTTA
SOLO PACIENTES HEMATOLOGÍA
HEMATIMETRÍA
DIMERO D
P.D.F.
PT
FIBRINOGENO
LABORATORIO DE HEMATOLOGÍA - URGENCIAS
EST. URGENTE COAGULACIÓN
A
Petición Urgente
Petición normal
5.3. Petición urgente
Para las peticiones de carácter urgente al LSHH de las secciones de Coagulaci
ón y Banco de Sangre. No es válida para la petición de transfusión o de pruebas cruzadas. La cumplimentación de datos es manuscrita o bien con etiqueta preimpresa.
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5.4. Petición de estudio de Médula Ósea
Esta petición se tramita para el studio h
5.5. Petición de transfusión
o cluye
e ematológico de la Médula Ósea, su cumplimentación completa (datos analíticos previos y datos exploratorios) es esencial para el desarrollo del informe final.
La petición de transfusión no solin las determinaciones analíticas necesarias sino también un acto clínico. Su cumplimentación correcta es determinante para mantener en todo momento la seguridad transfusional (Real Decreto 1088/2005)
Esta petición incluye el consentimiento informado para el proceso transfusional.
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5.6. Hoja de consulta para control de anticoagulación
La hoja de consulta para control de TAO es
Si se conoce, número de Ficha TAO (en su
entación de alguno de estos campos originará la devolución de
específica para controlar a un paciente anticoagulado que se ha encamado, o para remitirlo a la consulta de anticoagulación.
A parte de la información mínima de una petición es obligatorio cumplimentar los siguientes datos para dar de alta al paciente en la base de datos:
hoja de dosificación)
Peso (fundamental para calcular la dosis de Heparina de bajo peso molecular)
Tipo y dosis actual de anticoagulante que toma
Motivo por el que está anticoagulado Motivo por el que está encamado
La no cumplimla hoja de consulta a la unidad peticionaria.
A la entrada en vigor de estas peticiones no se admitirán las que se realicen en P-10 ni en
ningún otro documento que no sean los aquí descritos.
Laboratorio del Servicio de Hematología y Hemoterapia
ANEXO 2 Hospital Universitario Virgen de las Nieves
Lunes Martes Miércoles Jueves Viernes Sábado Domingo
En caso de INICIO acompañe esta hoja de un tubo de citrato y uno de EDTA
ANEXO 2 PO-LSHH-APE
NUSSA
MEDICO
HABITACION
CENTRO
PESONº FICHA TAO (si se conoce)
Espacio para código de
barras
FECHA DE NACIMIENTO
NOMBRE Y APELLIDOS
Nº HISTORIA CLINICA
DIAGNOSTICO
SERVICIO
Consignar sí algunas de estas circunstancias clínicas concurren en el paciente:
□ HTA descontrolada □ Hepatopatía □ Nutrición parenteral
□ Trombopenia □ Embarazo □ Otros:……………………………….
Si ya tomaba un anticoagulante previo, indicar tipo y dosis:
□ Aldocumar 1 mg □ Aldocumar 3 mg □ Aldocumar 5 mg □ Sintrom 1 mg □ Sintrom 4 mg □ Otros:……………………………….. □ Warfarina □ HBPM(especificar)……………………………………………………………….
Dosis en la última semana:
Señale la opción que desee:
□ Inicio de anticoagulación oral □ Control y seguimiento de anticoagulación oral □ Inicio de anticoagulación con Heparina Sódica al 5% en perfusión continua (PC) □ Paso de anticoagulación oral a Heparina de bajo peso molecular □ Paso de Heparina Sódica al 5% en PC a anticoagulación oral □ Paso de Heparina de bajo peso molecular a anticoagulación oral □ Otras situaciones: Indicar en el cuadro adjunto
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. SISTEMA DE IDENTIFICACIÓN DE MUESTRAS Y PETICIONES DEL LSHH
En el LSHH se usan varios sistemas diferentes de identificación de muestras, dependie
6.1. Códigos de barras usado para las peticiones y muestras que requieren
extracción
tención en la correcta identificación de petición y muestras
iqueta del tubo, verticalm
6
ndo del tipo de petición:
Este sistema es el sanguínea (excepto las de transfusión). Cada etiqueta consta de 8 pegatinas
con código y 18 sólo con número; de las 8 con código, 2 son para las peticiones y las 6 restantes para las muestras (cada una tiene la leyenda del tubo al que corresponde), las etiquetas pequeñas sirven para identificar las copias de las peticiones, otras muestras, alícuotas, etc. Se diferencian de las etiquetas del resto de laboratorios por tener impresa en la numeración una BANDA AZUL.
Es fundamental extremar la a; por ello la identificación de ambas se realizará a la vez en el momento de la
extracción, un error en este paso es indetectable posteriormente. Nunca se manipularán los códigos, en el caso de que el Laboratorio tenga la más mínima duda sobre la identificación de la muestra, o se descubra la manipulación de un código se rechazará esa muestra y todas las que se sospeche puedan estar implicadas.
El código de barras se colocará sobre la etente, de forma que permita ver el contenido de los mismos.
Etiqueta numerada con código de barras
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6.2. Rotulación de muestras on las iniciales del enfermo, el número de historia
clínica y l
s adjudica un número - código de barras de
6.3. Muestras para transfusión (Pruebas cruzadas) fusiones) tienen un
tratamien
7. UÍA PARA LAS EXTRACCIONES SANGUÍNEAS DEL LSHH
En su servicio dispone de una guía que le facilitara realizar una extracción sanguínea
En la página siguiente se encuentra la guía específica para atención
Las muestras se rotulan ca cama de procedencia. Hay que prestar la máxima atención en que los datos
de la petición coincidan con los de la muestra. La identificación se realiza en la etiqueta del tubo ya que fuera de ella se dificulta su lectura.
Al llegar las muestras al Laboratorio se lel LSHH.
Las muestras para pruebas de compatibilidad (transto especial, pues la información que deben contener está legislada por el Real
Decreto 1088/2005, siendo por lo tanto de obligado cumplimiento. En la muestra debe identificarse de manera inequívoca al receptor, con nombre y apellidos completos, número de historia clínica y firma del extractor. La muestra que no reúna estos requisitos quedará invalidada.
G
para el LSHH, hay dos versiones de la guía, una adaptada para Atención Primaria y otra para especialización, con un catálogo de pruebas mayor.
especializada:
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COLOR TAPÓN
VOL. MUESTRA
ADITIVOETIQUETA CÓDIGO
DE BARRAS
5 ml Activador coágulo
Gel Separador
BIOQ. ANEMIAS
3 ml EDTA K3HEMO
ANEMIAS
5 ml Activador coágulo
Gel Separador
PEQUEÑA SIN C.B.
3 ml EDTA K3HEMO COAG
2 ml Inhibidor de Tripsina de Soja
PEQUEÑA SIN C.B.
HEMO BANCO
ROTULADO
5 ml Activador coágulo
Gel Separador
PEQUEÑA SIN C.B.
ESTUDIO DE COAGULACIÓN: Tubo de Coagulación ESTUDIO DE COAGULACIÓN CON PLAQUETAS: 1 Tubo Coagulación y 1 Tubo Hemograma ATIII, DIMERO D: Tubo de Coagulación ESTUDIO DE TROMBOFILIA: 3 Tubos Coagulación (6 si son de 2,8 ml), 2 Tubos Hemograma y 2 Tubos Bioquímica ESTUDIO DIATÉSIS HEMORRÁGICA: 3 Tubos Coagulación y 1 Tubo Hemograma DOSIFICACIÓN DE FACTORES: 2 Tubos de Coagulación
P.D.F. (Solicitar Tubo al Laboratorio de Hematología)
Citrato Sódico
3 ml EDTA K3
GRUPO SANGUÍNEO Y Rh ESCRUTINIO DE ANTICUERPOS IRREGULARES (COOMBS INDIRECTO) COOMBS DIRECTO CRIOFIBRINÓGENO (Transportar al Laboratorio a temperatura corporal)
PRUEBAS CRUZADAS (PET. TRANSFUSIÓN): Tubo de Hemograma rotulado con nombre y apellidos completos del enfermo, nº de Hª Clínica y firma de extractor
LABOR. LSHH-HRT: 121655 958021655
ORDEN DE LLENADO DE LOS TUBOS (CON SISTEMA DE VACÍO)
(Recomendación H3 - H5 de la NNCCLS)
CRIOAGLUTININAS: Tubo de Hemograma y Tubo de Bioquímica CRIOGLOBULINAS: Tubo de Bioquímica (Transportar al Laboratorio a temperatura corporal)
DETERMINACIONES
TELÉFONOS LSHH
3º TUBOS HEMOGRAMA
ESTUDIO DE ANEMIAS: Los dos tubos METABOLISMO DEL HIERRO, ÁCIDO FÓLICO, VITAMINA B12: Tubo Bioquímica HbA2, ELECTROFORÉSIS DE Hb: Tubo Hemograma HEMATIMETRÍA: Tubo Hemograma (Sólo enfermos de HEMATOLOGÍA)
958020553
BA
NC
O S
AN
GR
E
2,8 ml 4,5 ml
COAG. ESP
LABORATORIO DEL SERVICIO DE HEMATOLOGÍA Y HEMOTERAPIAGUÍA DE EXTRACCIONES SANGUÍNEAS
HOSPITAL UNIVERSITARIO VIRGEN DE LAS NIEVES
BANCO DE SANGRE: 120550 958020550
2º TUBOS BIOQUÍMICA
HEM
OST
ASI
A Y
C
OA
GU
LAC
IÓN
HEM
ATO
LOG
ÍA
BIO
LÓG
ICA
120553
VOLUMEN CORRECTO DE LLENADO TUBOS DE COAGULACIÓNRECOMENDACIONES
SECRETARÍA LSHH: 120013 958020013
COAG. ESPECIAL:
958020552
958020551 1º TUBOS COAGULACIÓN
HEMAT. BIOLÓGICA:
COAGULACIÓN:
120552
120551
Utilizar SIEMPRE sistema de vacío
Identificar al paciente antes de realizar la extracción.
SIEMPRE
Identificar petición y muestras con el mismocódigo de barras, extremar las precauciones en este paso.
Soltar el compresor in
s altera el equilibrio entre el líquido
mediatamente despuésde canalizar la vena. NUNCA DEBE ESTAR COLOCADO MÁS DE DOS MINUTOS pue
y loselementos formes de la sangre (aumento10% el valor del hematocrito, del 15% de la coagulación...)
Respet nado de los tubos. ar el orden de lle Invertir ada tubo entre 3 SUAVEMENTE c y 5
veces. Realizar una punción lo más “atraumática”
posible, sobre todo si incluye estudio decoagulación, cuanto más limpia sea lapunción menos factores titulares se liberarán.
Si se usa jeringa y aguja para la extracción,hay que recordar:
No destapar os tubos, al volver a cerrarlos puede producirse un exceso depresión dentro y hacer que salte el tapóndurante el transporte.
NUNCA l
Respetar el volumen de llenado de cadatubo, en especial el del tubo de coagulación.
Dejar resbalar la sangre por la carainterna del tubo, no dejarla caerdirectamente al fondo, ni forzar el paso a través de la aguja.
El orden de llenado varía: 1º T. Coagulación 2º T. Hemograma 3º T. VSG 4º T. Bioquimica
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8. RECEPCIÓN Y CONTROL DE MUESTRAS Y PETICIONES EN EL LSHH
A lo largo de la guía se ha intentado exponer la importancia de la calidad de las muestras en la obtención de unos resultados lo mas fieles posibles a la situación clínica del paciente.
Cada área del LSHH dispone de una zona de recepción de muestras propia, centralizada en el turno de mañana (peticiones de rutina) en el área de Coagulación y Hemostasia. Cada petición y muestra es evaluada antes de su procesamiento en base a los siguientes parámetros:
Comprobación de la identificación de la petición y las muestras y de la concordancia entre ellas.
Comprobación de los datos de la petición Comprobación de la idoneidad de la muestra:
Volumen Aspecto Tipo Identificación (otra vez)
Comprobación de las condiciones de transporte y conservación de las muestras.
Cualquier anomalía detectada será registrada e informada como incidencia preanalítica. 9. INCIDENCIAS PREANALÍTICAS
Las incidencias preanalíticas en el LSHH se clasifican en:
las que impiden el procesamiento de la petición y muestra las que originan una anotación u observación en el informe de resultados las que originan la devolución de la petición y/o muestras al servicio
peticionario. En general, sólo se devolverán las peticiones procedentes de procedimientos
invasivos (punciones de M.O. y L.C.R.), peticiones de transfusión y partes interconsulta para anticoagulación (previo registro en el SIL); la petición y la muestra se acompañarán siempre del Registro de Devoluciones de Peticiones y Muestras del LSHH. El resto de peticiones y muestras, cuando se haya detectado en ellas una incidencia preanalítica, se registrarán en el SIL con el código correspondiente a la incidencia detectada, enviándose al destino el informe de la incidencia.
Cuando la incidencia ocurra en una muestra recogida en un procedimiento invasivo se intentará corregir telefónicamente con el servicio peticionario.
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9.1. Incidencias que impiden el procesamiento de muestras y peticiones.
9.1.1. Muestra y Petición con datos no Coincidentes Impide siempre el procesamiento de dicha petición, en el caso de ser una petición de transfusión, de anticoagulación oral, o una muestra invasiva procede su devolución.
9.1.2. Petición sin identificar con código de barras Impide siempre el procesamiento de dicha petición, en el caso de ser una muestra invasiva procede su devolución.
9.1.3. Muestra con Volumen Incorrecto Impide el procesamiento de las muestras extraídas en tubo de citrato (tapón celeste). (Ver punto 4.2.2.4. de esta Guía).
9.1.4. Muestra Coagulada Impide el procesamiento de las muestras extraídas en tubo de citrato (tapón celeste) y en tubo con EDTA (tapón malva).
9.1.5. Muestra Hemolizada Impide el procesamiento de las muestras extraídas en tubo de citrato (tapón celeste) –plasma- y en tubo de Bioquímica (tapón marrón) –suero-.
9.1.6. Muestra Lipémica Impide el procesamiento de las muestras extraídas en tubo de citrato (tapón celeste) –plasma- y en tubo de Bioquímica (tapón marrón) –suero-.
9.1.7. Muestra en Tubo Incorrecto Impide el procesamiento de cualquier muestra, en el caso de ser una petición de transfusión u hoja de consulta de anticoagulación oral procede su devolución.
9.1.8. Muestra Mal Identificada o Sin Identificar Impide el procesamiento de cualquier muestra. En el caso de ser una muestra para petición de transfusión aplicar los puntos 9.3.1. y 9.3.2. de esta Guía.
9.1.9. Muestra con Problema en Código de Barras Impide el procesamiento de cualquier muestra.
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9.1.10. Muestra de Citrato No Recibida Impide el procesamiento de este tipo de muestras, en el caso de ser una hoja de consulta de anticoagulación oral procede su devolución.
9.1.11. Muestra con EDTA No Recibida Impide el procesamiento de este tipo de muestras, en el caso de ser una petición de transfusión procede su devolución.
9.1.12. Muestra para PDF no recibida Impide el procesamiento de este tipo de muestras.
9.1.13. Muestra de Suero no Recibida Impide el procesamiento de este tipo de muestras.
9.1.14. Petición ilegible Impide el procesamiento de la petición siempre que no se pueda discernir sin atisbo de duda la identificación del paciente. En el caso de ser una petición de transfusión, de anticoagulación oral, o una muestra invasiva procede su devolución. En el LSHH se procederá a la lectura de la petición por al menos dos personas, siempre que sea posible.
9.1.15. Petición sin solicitud de estudio Impide el procesamiento de la petición. En el caso de ser una petición de transfusión, de anticoagulación oral, o una muestra invasiva procede la devolución de dicha petición.
9.1.16. Petición sin origen y/o destino Impide el procesamiento de la petición. En el caso de ser una petición de transfusión, de anticoagulación oral, o una muestra invasiva procede la devolución de dicha petición.
9.2. Incidencias que originan una observación en el informe de resultados
9.2.1. Muestra Insuficiente Impide el procesamiento de algunas de las determinaciones solicitadas al agotarse la muestra.
9.2.2. Formato petición incorrecto Se especifica cuando no se haya usado el formato oficial del LSHH para ese tipo de petición. (Ver punto 5 de esta guía)
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9.2.3. Petición sin HC/NUHSA Se realiza esta observación cuando no se especifique en la petición el número de identificación inequívoca del paciente.
9.2.4. Petición sin médico peticionario Cuando no haya constancia clara del médico responsable de la petición, en el caso de ser una petición de transfusión procede su devolución.
9.3. Incidencias que originan la devolución de muestras y/o petición
A parte de las incidencias que en los casos de petición de transfusión, hoja de consulta de anticoagulación o muestras invasivas se han especificado en los apartados anteriores, se señalan dos incidencias específicas:
9.3.1. Muestra (para transfusión) sin nombre e H. C. Completos Se devolverán petición y muestra a la unidad peticionaria con el Registro de Devoluciones cumplimentado.
9.3.2. Muestra (para transfusión) sin identificar persona que realiza extracción Se devolverán petición y muestra a la unidad peticionaria con el Registro de Devoluciones cumplimentado.
9.4. Otras incidencias
9.4.1. Intervalo de confirmación excesivo Cuando el tiempo transcurrido entre la confirmación de la extracción en Petición Electrónica y la recepción de la muestra es superior a 3,5 horas.
9.4.2. Muestra estropeada en LSHH Cuando en el propio LSHH se rompe un tubo de extracción, se derrama o se invalida accidentalmente. En peticiones solicitadas vía urgente se comunicará telefónicamente al servicio peticionario.
9.4.3. Muestra mal transportada Cuando se detecte alguna incidencia producida por un transporte incorrecto o deficiente al LSHH.
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10. BIBLIOGRAFÍA
Jou, Josep Mª y colaboradores. Manual de obtención, transporte y
conservación de muestras biológicas en Hematología y Hemoterapia.
Asociación Española de Hematología y Hemoterapia. 2003.
Rodak, F. Bernadette. Hematología: fundamentos y aplicaciones clínicas. 2ª
Edición. Buenos Aires: Médica Panamericana, 2004.
Manual de Calidad Preanalítica. Servicio Andaluz de Salud. 2001.
Proceso Soporte: Laboratorios Clínicos. Consejería de Salud. 2003.
Procedimiento General de Recepción de muestras del LSHH
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ANEXO I
CONSIDERACIONES PREANALÍTICAS POR DETERMINACIÓN DE LA CARTERA DE SERVICIOS.
Consideraciones preanalíticas por determinación 25
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CARTERA DE SERVICIO LSHH. 2008
ACIDO FOLICO Sinónimos: Srm-Folatos; c
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia
Suero 3 ml Tubo BIOQUÍMICA Evitar hemólisis Sí En la semana previa a la 4,20 - 19,90 (Tapón MARRÓN) extracción no debe tomar: metotrexate u otros antagonistas del fólico.
ALFA 2 ANTIPLASMINA Sinónimos: A2AP
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos Intervalo de referencia
Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
ALFA NAFTIL ESTERASA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos Intervalo de referencia
Aspirado de Médula Ósea
ANTI FACTOR X ACTIVADO Sinónimos: ANTI Xa
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos Intervalo de referencia
Plasma Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No Extraer la muestra al 0,1 - 2 UI/ml (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta menos 4 horas después determinación puede precisar de de haber administrado cita previa. HBPM.
Consideraciones preanalíticas por determinación 26
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ANTICOAGULANTE LUPICO Sinónimos: LA; Anticoagulante tipo fosfolípido
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos Intervalo de referencia
Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO Para la funcionalidad del Si Suspender el tratamiento Negativo en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta con anticoagulantes orales determinación puede precisar de 20 días previos a extracción, cita previa. y HBPM 24 horas antes.
ANTICOAGULANTES CIRCULANTES Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia
Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINA IgG Sinónimos: ACA-G; Ac.Antifosfolipidos G.
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No < 15 UGPL en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINAS IgM Sinónimos: ACA-M; Ac.Antifosfolipidos M.
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No < 15 UMPL en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
Consideraciones preanalíticas por determinación 27
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ANTICUERPOS ANTIHEPARINA CIRCULANTES Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 4 ml Tubo BIOQUIMICA No Negativos
ANTICUERPOS IRREGULARES (ESCRUTINIO) Sinónimos: Test de Coombs indirecto; EAI
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero y 4 ml Tubo EDTA La positividad de la No Negativo sangre total (Tapón MALVA) determinación puede originar la necesidad de mayor cantidad de muestra.
ANTITROMBINA III ANTIGÉNICA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Para la funcionalidad del No No 80 - 120 % en plaquetas servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
ANTITROMBINA III COAGULATIVA Sinónimos: AT III
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 4 ml Tubo CITRATO No No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
BETA 2 GLICOPROTEINA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No No < 15 (?) en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
Consideraciones preanalíticas por determinación 28
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CAPACIDAD DE FIJACION DE LA TRANSFERRINA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia
Suero Tubo BIOQUÍMICA No 245 - 420 mcg/dl (Cálculo Matemático) (Tapón MARRÓN)
CLORO ACETATO ESTERASA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Aspirado de Médula Ósea
CRIOAGLUTININAS (DESPITAJE) Sinónimos: Aglutininas frías
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero y 8 ml T. BIOQUÍMICA (T. MARRÓN) y No Negativo sangre total T. EDTA (T. MALVA)
CRIOFIBRINÓGENO Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma 4,5 ml Tubo CITRATO El tubo de suero se mantendrá a No Suspender terapia heparínica Negativo (Tapón CELESTE) 37º hasta que se retraiga el coágulo.
CRIOGLOBULINAS Sinónimos: Criocrito
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 5 ml Tubo BIOQUÍMICA Evitar la hemólisis y la lipemia. No Negativas (Tapón MARRÓN) El tubo de suero se mantendrá a 37º hasta que se retraiga el coágulo.
Consideraciones preanalíticas por determinación 29
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D-DIMERO Sinónimos: Pla-dímero D de la fibrina, e
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma 2 ml Tubo CITRATO No 0.1 - 0.5 pg/mL (Tapón CELESTE)
ELUCION DE ANTICUERPOS Sinónimos: Test de Lui por congelación
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 2 ml Tubo EDTA Evitar las muestras hemolizadas No Negativo (Tapón MALVA)
EXAMEN MORFOLÓGICO DE L.C.R. Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia L.C.R.
FACTOR ANTIGENO VON WILLEBRAND Sinónimos: vWF:Ag; Cofactor de la ristocetina
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No > 70 % en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
FACTOR II Sinónimos: Pla-Factor II de la coagulación.
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
Consideraciones preanalíticas por determinación 30
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FACTOR IX Sinónimos: Pla-Factor IX de la coagulación, c arb
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR V Sinónimos: Proacelerina, Factor lábil.
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR VII Sinónimos: Pla-Factor VII de la coagulación, c arb
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR VIII Sinónimos: Pla-Factor VIII de la coagulación, c arb
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR VIII CROMOGENICO Sinónimos: FVIIIc
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
Consideraciones preanalíticas por determinación 31
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FACTOR X Sinónimos: Pla-Factor X de la coagulación, c arb
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR XI Sinónimos: Pla-Factor XI de la coagulación, c arb Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR XII Sinónimos: Pla-Factor XII de la coagulación, c arb
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 80 - 120 % en plaquetas (Tapón CELESTE)
FACTOR XIII Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
FENOTIPO ERITROCITARIO Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No (Tapón MALVA)
Consideraciones preanalíticas por determinación 32
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FERRITINA Sinónimos: Srm-Ferritina; c
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 3 ml Tubo BIOQUÍMICA No 30 - 300 ng/ml (Tapón MARRÓN)
FIBRINOGENO CLAUSS Sinónimos: Pla-Fibrinógeno, e
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma 5 ml Tubo CITRATO No No administrar heparina 150- 350 mg/dl (Tapón CELESTE) una hora antes de efectuar la extracción.
FORMULA LEUCOCITARIA MANUAL Sinónimos: Frotis de sangre periférica
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No (Tapón MALVA)
FOSFATASA ACIDA GRANULOCÍTICA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No (Tapón MALVA)
FOSFATASA ALCALINA LEUCOCITARIA Sinónimos: Fosfatasa alcalina granulocítica; FAL; FAG
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total / Tubo EDTA No Aspirado M.O. (Tapón MALVA)
Consideraciones preanalíticas por determinación 33
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GRUPO SANGUINEO Sinónimos: Sistema ABO-Rh; grupo hemático
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 5 ml Tubo EDTA Se usan los hematíes para No (Tapón MALVA) determinar el grupo hemático y suero para el grupo sérico.
HAPTOGLOBINA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero Tubo BIOQUÍMICA No 30 - 300 mgrs/dl (Tapón MARRÓN)
HEMOGLOBINA A2 Sinónimos: (San) Hb-Hemoglobina A2, X
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No 2.4 - 4.3% (Tapón MALVA)
HEMOGLOBINA FETAL Sinónimos: (San) Hb-Hemoglobina F, X
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No detectable en adultos (Tapón MALVA)
HEMOGRAMA Sinónimos: Hematimetría Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No (Tapón MALVA)
Consideraciones preanalíticas por determinación 34
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HIERRO Sinónimos: Srm-Hierro (II + III); c
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 3 ml Tubo BIOQUÍMICA No 37 - 145 ug/dl (Tapón MARRÓN)
INDICE DE SATURACION DE TRANSFERRINA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia
INR (CONTROL DE ANTICOAGULACION ORAL) Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre capilar No necesita No En función del diagnóstico
MEDULOGRAMA Sinónimos: Biopsia ósea
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Aspirado medular La obtención de espécimen la No realiza el hematólogo.
MIELOPEROXIDASA Sinónimos: Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Aspirado M. Ósea
Consideraciones preanalíticas por determinación 35
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PANEL DE IDENTIFICACION DE ANTICUERPOS Sinónimos: Identificación de Ac irregulares
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre Total Tubo EDTA (Tapón MALVA) No
PLASMINÓGENO Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No 80 - 120 % en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
P.D.F. Sinónimos: Srm-Productos de degradación del fibrinógeno, c
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 5 ml Tubo específico El tubo específico para esta No No realizar la extracción si 0 - 40 µg/ml (Tapón AZUL MARINO) determinación se solicitará al el paciente está en LSHH tratamiento con heparina.
PROTEINA C COAGULATIVA Sinónimos: Proteína C
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No Suspender el tratamiento 80 - 120 % en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta con anticoagulantes orales determinación puede precisar de 20 días previos a extracción cita previa. Suspender HBPM 24 horas previas.
PROTEINA S COAGULATIVA Sinónimos: Proteína S
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No Suspender el tratamiento 80 - 120 % en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta con anticoagulantes orales determinación puede precisar de 20 días previos a extracción cita previa. Suspender HBPM 24 horas previas.
Consideraciones preanalíticas por determinación 36
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PROTEINA S LIBRE Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No Suspender el tratamiento 80 - 120 % en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta con anticoagulantes orales determinación puede precisar de 20 días previos a extracción cita previa. Suspender HBPM 24 horas previas.
PROTEINA S TOTAL Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No Suspender el tratamiento 80 - 120 % en plaquetas. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta con anticoagulantes orales determinación puede precisar de 20 días previos a extracción cita previa. Suspender HBPM 24 horas previas..
PRUEBA CRUZADA Sinónimos: Prueba de compatibilidad donante-receptor
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA La identificación de los tubos No Negativas (Tapón MALVA) será con nombre completo del receptor, cama, nº de historia y firma de la persona que realiza la extracción. La incorrecta identificación de tubos y/o petición origina la devolución automática según el procedimiento.
PRUEBA DE LA FUNCION PLAQUETAR Sinónimos: PFA Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 5 ml Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No COL/Epi: 94 - 193 seg. (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta COL /ADP: 71 - 118 seg. determinación puede precisar de cita previa.
Consideraciones preanalíticas por determinación 37
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RESISTENCIA A LA PROTEÍNA C Sinónimos: APC - V
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre Tubo CITRATO Para la funcionalidad del No > 2 (?) en plaquetas (Tapón CELESTE) servicio la realización de esta determinación puede precisar de cita previa.
RETICULOCITOS Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total Tubo EDTA No 0,5 - 2,5 % (Tapón MALVA)
SIDEREMIA Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia
TEST DE COOMBS DIRECTO Sinónimos: Prueba directa de Coombs poliespecífica
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No Negativo (Tapón MALVA)
TEST DE COOMBS MONOESPECIFICO Sinónimos: Prueba directa Coombs, PDAGH
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total 3 ml Tubo EDTA No Negativo (Tapón MALVA)
Consideraciones preanalíticas por determinación 38
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TEST DE ETANOL Sinónimos: Etanol
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma 3 ml Tubo CITRATO No Negativo (Tapón CELESTE)
TIEMPO DE PROTROMBINA (TP) Sinónimos: TP, Actividad de protrombina, tiempo de Quick; INR
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma 3 ml Tubo CITRATO No Tiempo: 11 – 13.5 sg (Tapón CELESTE) Actividad: 80 - 120 % INR: 0.87 – 1.30
TIEMPO DE PROTROMBINA CORREGIDO Sinónimos: Mezcla de PT
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma Tubo CITRATO No Siempre inferior al control (Tapón CELESTE) paralelo.
TIEMPO DE REPTILASE Sinónimos: Test de Batroxobin
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 5 ml Tubo CITRATO No 15 - 18 sg. en plaquetas (Tapón CELESTE)
TIEMPO DE SANGRIA (IVY) Sinónimos: Tiempo de hemorragía
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre capilar No necesita Medición "in situ" del tiempo de No Debe evitarse el 5 - 7 minutos hemorragia de un paciente con tratamiento con lanceta de corte estandarizado; antiagregantes la técnica la realiza el personal plaquetarios 1 semana. del LSHH.
Consideraciones preanalíticas por determinación 39
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TIEMPO DE TROMBINA Sinónimos: Pla-Tiempo de protrombina, TT
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma pobre 2 m Tubo CITRATO No 15 - 18 seg. en plaquetas (Tapón CELESTE)
TIEMPO PARCIAL TROMBOPLASTINA CORREGIDO Sinónimos: Mezcla de PTTa
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma Tubo CITRATO No Siempre inferior al control (Tapón CELESTE) paralelo
TIEMPO TROMBOPLASTINA PARCIAL Sinónimos: PTTa, TPTA, APTT
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Plasma Tubo CITRATO No 30 - 36 seg. (Tapón CELESTE)
TINCION DE PAS Sinónimos: Tinción de ácido peryodico de Scaiff
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total Tubo EDTA Aspirado M.O. (Tapón MALVA)
TINCION NEGRO SUDAN Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Sangre total Tubo EDTA Aspirado M.O. (Tapón MALVA)
Consideraciones preanalíticas por determinación 40
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TITULACION DE ANTICUERPOS Sinónimos: Título de Ac. Irregulares
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero / Plasma 5 ml Tubo EDTA No (Tapón MALVA)
TRANSFERRINA Sinónimos: Srm-Transferrina; c
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 3 ml Tubo BIOQUÍMICA Sí 200 - 360 mg/dl (Tapón MARRÓN)
VITAMINA B12 Sinónimos:
Tipo muestra Vol. Mínimo Contenedor Observaciones Ayuno Supresión de ttos. Intervalo de referencia Suero 3 ml Tubo BIOQUÍMICA No utilizar nunca heparina (que Sí Suprimir ácido ascórbico 240 - 900 pg/ (Tapón MARRÓN) liga a la vitamina B12) ni fluoruro.
Consideraciones preanalíticas por determinación 41
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