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UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA AMAZONIA PERUANA
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS Escuela de Formación Profesional de Biología.
PROPAGACIÓN VEGETATIVA DE Heteropsis flexuosa (H.K.B.) Bunting y Thoracocarpus bissectus (Vell.) Harling EN EL CENTRO
DE INVESTIGACIONES JENARO HERRERA DEL INSTITUTO DE INVESTIGACIONES DE LA AMAZONÍA PERUANA (IIAP), LORETO -
PERÚ
TESIS
Requisito para optar el título profesional de
BIÓLOGA
Autora:
Marilú Sarmiento Chumbe
Iquitos - Perú
2014
ii
JURADO CALIFICADOR Y DICTAMINADOR
Blga. Felicia Díaz Jarama, MSc PRESIDENTE
Blga. Adriana del P. Burga Cabrera, MSc
MIEMBRO
Blgo. Richard J. Huaranca Acostupa, MSc
MIEMBRO
v
DEDICATORIA
Con mucho cariño y gratitud a mi padre
Aureliano, donde se encuentre, porque
con su humildad y sus consejos me
enseño a actuar con honestidad.
A mi madre Adela, por su constante
apoyo y comprensión en todo momento.
A mis hermanos Víctor Hugo y Manuela
por confiar en mí, así como a Pablo y
Paúl, de quienes recibí constante apoyo y
comprensión.
A DIOS, por darme la vida y hacer posible
este logro.
vi
AGRADECIMIENTO
A la Universidad Nacional de la Amazonía Peruana (UNAP), por la formación
académica otorgada.
A la Facultad de Ciencias Biológicas (FCB), por los conocimientos brindados durante
todos los años de mi formación como profesional.
Al Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana (IIAP), por el financiamiento
e infraestructura para la ejecución de este trabajo de tesis.
Mi más sinceros agradecimiento a la Blga. Nallaret Dávila Cardozo quién me dio la
oportunidad de conocer más de cerca el mundo de las plantas y participar en el
presente trabajo.
De forma especial deseo agradecer a mis asesores M.Sc. Eurídice Honorio y Dr.
Roberto Pezo Díaz, por la oportunidad de realizar el trabajo de tesis bajo sus
asesoramientos desinteresado, así como en el monitoreo, elaboración y redacción
de la tesis.
Agradecimiento especial al Blgo. Richard Javier Huaranca Acostupa, por las
sugerencias brindadas e incondicional colaboración en el análisis estadístico.
vii
Al Blgo. Nelson Medina del Carpio por su incondicional amistad y apoyo en el
procesamiento de datos.
A los señores Nitzen Saavedra y Leonardo Ríos por su esfuerzo y dedicación
durante los trabajos de campo.
A todas las personas que de una u otra manera han contribuido en la ejecución y
culminación del presente trabajo de investigación.
viii
ÍNDICE DE CONTENIDO
DEDICATORIA ................................................................................................................ v
AGRADECIMIENTO ....................................................................................................... vi
ÍNDICE DE CONTENIDO .............................................................................................. viii
ÍNDICE DE CUADROS ..................................................................................................... x
ÍNDICE DE GRÁFICOS .................................................................................................... xi
ÍNDICE DE ANEXOS ...................................................................................................... xii
I. RESUMEN ............................................................................................................... 1
II. INTRODUCCIÓN ..................................................................................................... 3
III. REVISIÓN DE LITERATURA ..................................................................................... 6
3.1 Productos Forestales No Maderables (PFNM) ................................................ 6
3.2 Clasificación de los Productos Forestales No Maderables .............................. 7
3.3 Clasificación de las Fibras Vegetales ................................................................ 8
3.4 Importancia de las Fibras Vegetales ................................................................ 9
3.5 Avances en el Estudio Sobre la Ecología y el Manejo de los Géneros
Heteropsis y Thoracocarpus .......................................................................... 11
3.6. Avances en el Estado de Conocimiento de las Especies ............................... 15
3.7. Descripción Botánica de las Especies ........................................................... 16
3.7.1. Cesto Tamshi (según Cronquist 1981).............................................. 16
3.7.2. Alambre Tamshi (según Croat, T. 1992) ............................................. 17
3.8. Propagación Vegetativa ................................................................................ 19
IV. MATERIALES Y MÉTODOS .................................................................................... 26
4.1. Descripción General de la Zona de Estudio .................................................. 26
4.1.1. Ubicación del Área de Estudio ............................................................ 26
ix
4.1.2. Ecología de Zona ................................................................................ 26
4.1.3. Accesibilidad ....................................................................................... 27
4.2. Métodos........................................................................................................ 27
4.2.1. Ensayo de Propagación Vegetativa de “Alambre y Cesto Tamshi..... 27
4.2.2. Camas de Almacigo ............................................................................ 28
4.2.3. Siembra de las Estacas ....................................................................... 29
4.2.4. Diseño Experimental .......................................................................... 29
4.2.5. Observaciones y Mediciones en el Vivero ......................................... 32
4.2.6. Análisis de Resultados ........................................................................ 33
V. RESULTADOS ........................................................................................................ 34
5.1. Sobrevivencia ............................................................................................... 34
5.1.1. Heteropsis flexuosa ............................................................................ 34
4.1.2. Thoracocarpus bissectus .................................................................... 36
5.2. Número de brotes ........................................................................................ 38
5.2.1. Heteropsis flexuosa ............................................................................ 38
5.2.2. Thoracocarpus bissectus .................................................................... 40
5.3. Altura de brotes ............................................................................................ 42
5.3.1. Heteropsis flexuosa ............................................................................ 42
5.3.2. Thoracocarpus bissectus .................................................................... 44
5.4. Número de hojas .......................................................................................... 46
5.4.1. Heteropsis flexuosa ............................................................................ 46
5.4.2. Thoracocarpus bissectus .................................................................... 48
5.5. Enraizamiento ............................................................................................... 50
5.5.1. Heteropsis flexuosa ............................................................................ 50
x
5.5.2. Thoracocarpus bissectus .................................................................... 52
VI. DISCUSIÓN ........................................................................................................... 55
6.1. Propágulo...................................................................................................... 55
6.2. Sustrato......................................................................................................... 55
6.3. Intensidad de Luz .......................................................................................... 57
VII. CONCLUSIONES .................................................................................................... 59
VIII. RECOMENDACIONES ........................................................................................... 61
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ................................................................................... 62
ÍNDICE DE CUADROS
Cuadro 1: Esquema de los tratamientos combinados para la especie Heteropsis
flexuosa ..................................................................................................... 31
Cuadro 2: Esquema de los tratamientos combinados para la especie Thoracocarpus
bissectus .................................................................................................... 32
Cuadro 3: Análisis de Varianza de la variable sobrevivencia de las estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. ............................................... 35
Cuadro 4: Análisis de Varianza de la variable sobrevivencia de las estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación. ....................................... 37
Cuadro 5: Análisis de Varianza de la variable número de brotes de las estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. ............................................... 39
Cuadro 5: Análisis de Varianza de la variable número de brotes de las estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación. ....................................... 41
xi
Cuadro 7: Análisis de Varianza de la variable altura de brotes de las estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. ............................................... 43
Cuadro 8: Análisis de Varianza de la variable altura de brotes de las estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación. ....................................... 45
Cuadro 9: Análisis de Varianza de la variable número de hojas de las estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. ............................................... 47
Cuadro 10: Análisis de Varianza de la variable número de hojas de las estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación. ....................................... 49
Cuadro 11: Análisis de Varianza de la variable enraizamiento de las estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. ............................................... 51
Cuadro 12: Análisis de Varianza de la variable enraizamiento de las estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación. ....................................... 53
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico 1: Porcentaje de sobrevivencia por Tratamiento de estacas de Heteropsis
flexuosa a la sexta evaluación. ................................................................ 36
Gráfico 2: Porcentaje de sobrevivencia por Tratamiento de estacas de Heteropsis
flexuosa a la sexta evaluación. ................................................................ 38
Gráfico 3: Porcentaje de brotes por Tratamiento de estacas de Heteropsis
flexuosa a la sexta evaluación. ................................................................ 40
Gráfico 4: Porcentaje de brotes por Tratamiento de estacas de Thoracocarpus
bissectus a la sexta evaluación. ............................................................... 42
xii
Gráfico 5: Porcentaje de altura de brotes por Tratamiento de estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. .............................................. 44
Gráfico 6: Altura de brotes por Tratamiento de estacas de Thoracocarpus
bissectus a la sexta evaluación. ............................................................... 46
Gráfico 7: Promedio de número de hojas de las estacas de Heteropsis flexuosa
a la sexta evaluación. .............................................................................. 48
Gráfico 8: Promedio de número de hojas de las estacas de Thoracocarpus
bissectus a la sexta evaluación. ............................................................... 50
Gráfico 9: Número de raíces por Tratamiento formadas en las estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación. .............................................. 52
Gráfico 10: Número de raíces por Tratamiento formadas en estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación. ...................................... 54
ÍNDICE DE ANEXOS
ANEXO 1: Mapa de Ubicación del Área de Estudio .................................................... 72
ANEXO 2: Ficha de Registro de Datos ......................................................................... 73
ANEXO 3: Galería Fotográfica ..................................................................................... 74
I. RESUMEN
El presente estudio se realizó en los viveros del Instituto de Investigación de la
Amazonia Peruana (IIAP) con sede en Genaro Herrera, con la finalidad de
determinar la capacidad de producir brotes y enraizamiento por medio de
estacas de las especies de tamshi, Heteropsis flexuosa (H.K.B.) Bunting y
Thoracocarpus bissectus (Vell.) Harling en condiciones de vivero teniendo en
cuenta la influencia de la luz y el sustrato.
Para el análisis estadístico de los resultados se utilizó el factorial 4 x 2 x 2,
obtenido de 4 niveles de tipo de propágulo, 2 niveles de tipo de sustrato y 2
niveles de intensidad de luz, arreglado al diseñó completamente al azar con 16
tratamientos y 2 repeticiones por cada tratamiento, para el caso de Heteropsis
flexuosa. Y el factorial 2 x 2 x 2, obtenido de 2 niveles de tipo de propágulo, 2
niveles de tipo de sustrato y 2 niveles de intensidad de luz, arreglado al diseñó
completamente al azar con 8 tratamientos y 2 repeticiones por cada tratamiento,
para el caso de Thoracocarpus bissectus.
Así mismo se puede mostrar que en ambas especies los tratamientos combinados
que no presentaron brotes ni enraizamientos (0%) es a1b2c1, tallos jóvenes,
aserrín descompuesto y toda luz y los que presentaron una mejor respuesta a la
propagación fueron los tratamientos combinados a1b1c2, estacas de tallos
jóvenes, materia orgánica y poca luz.
Se determinó para ambas especies que el factor Luz, es determinante en la
3
II. INTRODUCCIÓN
Actualmente, hay una preocupación mundial referente a la producción,
conservación, protección, explotación y utilización racional de los recursos
naturales y el Perú no está ajeno de este problema ya que presenta una alta
diversidad de recursos naturales y gran parte de esta diversidad es utilizada por
pobladores locales a través de la caza, pesca, recolección de frutos, extracción de
madera, entre otras actividades, (CATIE – UICN, 1995).
En muchos lugares del mundo después de las plantas alimenticias, los productos
diferentes a la madera son abundantes y constituyen un aporte muy importante
en la economía del poblador rural y de otros sectores sociales y en especial las
plantas que producen fibras ya que son utilizados local e internacionalmente en la
fabricación de artesanías y muebles, etc. (Maiti, 1995). Es el caso del Perú que
tiene las fibras vegetales de unas especies conocidas como “tamshi”; distribuidas
en los bosques amazónicos primarios (Baluarte & Castillo, 2001). Esta fibra tiene
un rol importante en la vida del poblador rural porque es utilizada en la
construcción de sus viviendas como material de amarre y en la producción de
artesanías y utensilios domésticos (Baluarte & Del Castillo, 1998). También es
utilizado por el poblador urbano esta fibra en la manufactura de muebles y
artesanías que proviene únicamente de las poblaciones silvestres (Baluarte,
1997).
4
En la amazonia peruana ya se han realizado investigaciones sobre la biología,
ecología y manejo de poblaciones naturales de dos especies que producen
fibras en el pueblo de Jenaro Herrera; “cesto tamshi” Thoracocarpus bissectus
(Rodríguez, 2002) y “alambre tamshi” Heteropsis flexuosa (Saldaña, 2004). En el
caso de Heteropsis flexuosa (una de las especies más comerciales), el
aprovechamiento no sostenido de las raíces ha conllevado a la pérdida del
potencial ecológico y la rápida degradación de la especie a tal punto que pone
en riesgo su sobrevivencia (Baluarte & Del Castillo, 1998).
Teniendo en cuenta esta problemática se ha visto la necesidad de realizar
investigaciones sobre la reproducción o propagación vegetativa de estas dos
especies. Ya que se entiende como la propagación vegetativa a un método
alternativo en corto tiempo y muy fácil, que estabiliza y transmite fielmente las
características hereditarias deseables de los progenitores que se puede emplear
ventajosamente, cuando es difícil conseguir semillas o simplemente las
especies producen poco o nada de semillas. La reproducción vegetativa utiliza
parte de la planta, distinta a las semillas. Existe dos clases de reproducción
vegetativa: la reproducción natural y la reproducción artificial (hecho por el
hombre) (Catie, 1998).
Para muchas especies la falta de conocimiento de cómo propagarlas en vivero, es
una de las mayores barreras. Por este motivo el presente estudio pretende
contribuir con un conocimiento básico sobre la reproducción vegetativa por
estacas y esquejes de dos especies de “tamshi”, y de esta manera poder
5
proporcionar los primeros indicios de propagación, con finalidades de
repoblamiento de sitios afectados. Por lo tanto, los objetivos del presente estudio
son los siguientes:
Evaluar la capacidad de propagación vegetativa por estacas (capacidad de
producir brotes y raíces) del tallo de Thoracocarpus bissectus y de las ramas y
tallos de Heteropsis flexuosa.
Determinar el método más adecuado de propagación vegetativa, teniendo en
cuenta la influencia de la luz y el sustrato.
6
III. REVISIÓN DE LITERATURA
3.1 Productos Forestales No Maderables (PFNM)
Los PFNM han sido definidos por la FAO (2001) como bienes de origen
biológico distintos a la madera procedente de los bosques. Asimismo,
Ocampo (1997), señala que en la década pasada y presente, los PFNM son
tema de reflexión en diferentes foros, tanto nacionales como internacionales.
Entre los PFNM más utilizados por los pobladores locales tenemos los frutos
comestibles, plantas medicinales, tintes, cortezas, fibras vegetales, etc. (FAO,
1994). Todos estos productos pueden ser extraídos sin destruir los bosques,
sin embargo puede suceder lo contrario, especialmente cuando adquieren
importancia comercial. La extracción del recurso puede causar daño a menos
que se implemente programas integrales de manejo sostenible. No obstante
los PFNM están relacionados y se complementan con las actividades que
conforman un desarrollo forestal sostenible (FAO, 1995).
Al respecto Ticktin (2004) menciona que la sobreexplotación de los PFNM, se
debe a que existe demanda e ingresos a millones de personas por todo el
mundo. Y recomienda a todos los investigadores tener en cuenta este
problema para que así puedan diseñar evaluaciones que puedan atenuar los
efectos negativos de las cosechas. Del mismo modo Baluarte (1997) refiere
que los PFNM en estos últimos años está cobrando un notable auge, ya que
juega un rol importante en la vida del poblador de la selva. Además genera
7
empleo e ingresos económicos en los pobladores de escasos recursos y de
esta manera contribuyen en la producción local de artesanías (FAO, 1994).
3.2 Clasificación de los Productos Forestales No Maderables
Peña & Illsley (2001) clasifican a los productos forestales no maderables,
según sus usos genéricos, en:
Alimentos y bebidas: Se refiere a hongos, mieles silvestres, raíces,
tubérculos, semillas, frutillas, hierbas, tallos y flores comestibles y agraves
para producir bebidas alcohólicas.
Medicina tradicional: Diversas especies vegetales que son parte de la cultura
"herbolaria" utilizadas por las comunidades campesinas y a veces adoptadas
en el medio urbano. Son conocidas como "medicina naturista" y algunas son
utilizadas como tóxicas.
Instrumentos rituales: numerosos tallos y flores de uso ceremonial, así como
cortezas y resinas aromáticas utilizadas en celebraciones solemnes, como el
copal. También musgos y henos usados en los arreglos navideños y algunas
especias como el jengibre, orégano, diversos tipos de pimientas, canela y
anís.
8
Insumos industriales: Se refiere principalmente a esencias, colorantes y
taninos empleados en la fabricación de perfumes, jabones, alimentos e
industria farmacéutica para medicamentos, anticonceptivos y productos
de belleza.
Artesanías: Se refiere a raíces, tallos, fibras, hojas, frutos y semillas que son
utilizados para elaborar productos artísticos y artesanales, como la "cáscara
de coco". Los bejucos y carrizos, usados en la fabricación de muebles rústico;
y en la cestería, las fibras blandas y duras, como las hojas de algunas
palmeras y raíces de hemiepífitas; el algodón silvestre en la industria textil;
la madera labrada, las lacas, colorantes naturales y los bellos productos.
Ornamentales: Están las orquídeas y una gran variedad de flores que se
comercializan "vivas" o “secas”; partes de plantas de uso decorativo y las que
se venden en maceta.
3.3 Clasificación de las Fibras Vegetales
Para la clasificación de las fibras vegetales, varios autores se basaron en las
características morfológicas, anatómicas, industriales y contenido químico.
De su parte Maiti (1995) clasificó y agrupó a las fibras de acuerdo a su
utilización en:
9
a) Fibras textiles. Las que tienen mayor importancia comercial en la
industria textil para la fabricación de telas, prendas de vestir,
cordelería y redes; como el “algodón” Gossypium barbadense, “yute”
Urena lobata.
b) Fibras para cepillo. Fibras de consistencia rígidas y muy resistentes como
la “escoba” Sorghum vulgare.
c) Fibras para trenzar. Aquí se incluye a los que tienen robustos tallos y
hojas flexibles. Las fibras se entretejen para confeccionar sombreros de
paja, sandalias, sillas y otros objetos similares como el “tamshi” Heteropsis
flexuosa y Thoracocarpus bissectus, “chambira” Astrocaryum chambira,
etc.
d) Fibras para relleno. Son fibras de uso doméstico o industrial que se
utiliza para rellenar (colchones, almohadas, calefactores, empaque de
máquinas industriales, etc.) y para reforzar algunos materiales, como el
“algodón” Gossypium barbadense, “topa” Ochroma pyramidale, etc.
e) Fibras para papel. Comprende a diversas fibras: leñosas y textiles que
son utilizados en forma directa o después de un tratamiento industrial o
químico, como el “algodón” Gossypium barbadense.
3.4 Importancia de las Fibras Vegetales
Las fibras vegetales se encuentran en las raíces, tallos, hojas, frutos y semillas
10
y se extraen mediante diferentes procesos. Estas fibras han desempeñado un
papel importante desde tiempos muy remotos, porque estos siempre han
sido utilizados como fuente de vestir, cordeles, sogas y para cubrir otras
necesidades. Algunas fibras vegetales tienen gran demanda en los mercados
nacionales e internacionales en condiciones de cultivo en forma natural o
silvestre e incluso compiten con la lana seda y fibras sintéticas, tal es caso del
“algodón” Gossypium barbadense (Maiti, 1995).
En la Amazonia peruana un grupo de especies de fibras vegetales llamadas
“tamshi” tienen un rol muy importante en la vida del poblador rural, porque
son utilizadas en la construcción de sus viviendas, en la fabricación de
utensilios domésticos, canastas, sombreros, camas, lámparas, artesanías, y en
la fabricación de muebles (Baluarte & Del Castillo, 1998).
El nombre de “tamshi” ha sido designado a varias especies productoras de
fibras vegetales como: “alambre tamshi” (Heteropsis flexuosa), “vaca
tamshi” (Heteropsis oblongifolia) “guasas tamshi” (Heteropsis spp), “lamas
tamshi” (Heteropsis spp), “cesto tamshi” (Thoracocarpus bissectus). Estas
especies son hemiepifitas secundarias con raíces cilíndricas largas que
cuelgan de los árboles hospederos como si fueran alambres, (Baluarte & Del
Castillo, 1998).
Actualmente en Iquitos la actividad manufacturera en torno al tamshi ha
cobrado auge y provee mano de obra y genera ingresos a cerca de 500
11
familias (Baluarte, 1998). El 97% utilizan estas especies de los bosques
naturales de poblaciones silvestres (Baluarte, 1997a).
3.5 Avances en el Estudio Sobre la Ecología y el Manejo de los Géneros
Heteropsis y Thoracocarpus
Knab-Vispo et al. (2003), realizaron observaciones ecológicas del género
Heteropsis, reportando la distribución y densidad de este género en un
bosque tropical húmedo en el sur de Venezuela. Encontrando que el 26% de
los árboles tenían hemiepifitas del género Heteropsis, pero las densidades de
colonización eran muy variantes en los tipos de bosques, observándose una
variación de 0% (en bosques inundados y de altura) hasta 74% (en bosques
temporalmente inundados a lo largo de las quebradas). La mayor cantidad de
individuos fueron encontrados en árboles de diámetro a la altura del pecho
(DAP) entre 20 y 50 cm.
Del mismo modo, Soares et al. (2002) observaron la ecología de cinco
especies del género Heteropsis (Araceae) en la Reserva Forestal Adolfo
Ducke, Manaus, Brasil, en 16 transeptos de 250 metros por un metro
(1000 m2) distribuidos en cuatro ambientes. Registrando 271 individuos de
este género correspondientes a las siguientes especies: Heteropsis flexuosa
(Kunth) G.S. Bunting, Heteropsis macrophylla A.C. Sm., Heteropsis
tenuespadix G.S. Bunting; con densidades diferentes en cuatro tipos de
hábitats, siendo las especies más abundantes Heteropsis tenuespadix (37%)
12
seguida de Heteropsis flexuosa (29%) y la menos abundante fue Heteropsis
macrophylla.
De igual forma, Plowden et al. (2003) evaluaron la importancia ecológica y
cosecha de las raíces de Heteropsis flexuosa en el Este de la Amazonia
brasileña. Registrando 371 árboles por hectáreas, de ellos 115 árboles tenían
raíces comerciales con un promedio de 0.9 raíces cosechables y 2.4 no
cosechables. La densidad fue de 1332 raíces por hectárea con el 26% de
raíces cosechables. Donde comprobaron que estas plantas no tenían
preferencias por ningún tipo de planta hospedera. En el experimento de
aprovechamiento de las raíces, el 63% de las plantas murieron y 16%
mostraron un crecimiento después de 7 meses.
Así mismo, Hoffman (1997) estudió aspectos de la biología y uso de
Heteropsis flexuosa en las Guyanas en la producción de fibras de raíces
aéreas. Creciendo las raíces aéreas en un promedio de 156 cm por mes y
algunos alcanzaron la madurez al cabo de seis meses. Los métodos que se
utilizan actualmente en las Guyanas, parece no afectar las poblaciones,
porque el aprovechamiento se realiza a bajas intensidades.
En lo que se refiere al Perú existen algunos avances de investigación de
especies de “tamshi” como las realizadas por Baluarte & Del Castillo (1998)
en Sinchicuy (Loreto – Perú) Investigaron la biología, ecología y utilización del
Thoracocarpus bissectus., concluyendo que la especie se encuentra
13
gravemente amenazada debido al uso intensivo del recurso. Posteriormente
Baluarte (2000), evaluó la densidad de plantas y fibras de Thoracocarpus
bissectus en una parcela de 0.25 ha en el mismo lugar. Reportó 4 plantas con
41 raíces, cada una con 491.36 m de raíz, que en estado verde tuvieron un
peso aproximado de 54 Kg. sin corteza y nudos. El peso seco de las mismas
sin corteza se reduce a 48.5% del peso inicial.
Del mismo modo Rodríguez (2002), realizó un inventario de plantas de
Thoracocarpus bissectus, en el Centro de Investigaciones de Jenaro Herrera,
con la finalidad de generar técnicas para el manejo sostenido de la especie.
Se ensayaron tres alternativas de aprovechamiento, los tratamientos
consistieron en las cosechas de las raíces dejando inalterado 1, 2, 3 y dejando
ninguna raíz. Reportó que una hectárea de bosque presenta 21 plantas
adultas con 64 raíces productivas y 61 raíces verdes con 339 m y 256 m de
longitud. Asimismo, observó escasa regeneración natural. Después del
aprovechamiento, observó que las raíces rebrotaban, presentando el mayor
incremento para el tratamiento 2 y 3, con 45 m y 49 m en el séptimo mes y
un crecimiento mensual de 2.94 m y 3.47 m por planta.
Por otro lado, Alvan (2001) realizó un inventario de Heteropsis flexuosa en
Jenaro Herrera, comprobando una vez más que esta especie no tiene
preferencias por algún tipo de árbol hospedero. Reportó 76 árboles
hospederos pertenecientes a 38 especies y 23 familias diferentes.
Adicionalmente realizó una encuesta donde comprobó que el 85% de las
14
viviendas fueron construidas usando esta especie.
Del mismo modo Saldaña (2004), investigó la biología, ecología y manejo de
Heteropsis flexuosa en Jenaro Herrera. En una hectárea de bosque natural,
encontró 31 individuos con raíces productivas, con una producción de 102
raíces que es igual a 640 m lineales; 23 individuos jóvenes y 19 plántulas de
regeneración natural. En este estudio también se simuló la poda de raíces
aéreas de cada planta a diferentes intensidades: dejando 1, 2, y 3 raíces en
contacto con el suelo.
En la misma línea Honorio et al. (2004), al evaluar los ensayos de
aprovechamiento a diferentes intensidades, encontraron que las plantas
sometidas a una baja intensidad de poda produjeron 11 raíces por planta,
acumulando un promedio de 27 cm de nuevas raíces con un crecimiento
promedio de 139 cm/año. Las plantas que sólo tenían una raíz en contacto
con el suelo murieron en un 53% y 7% murieron las que tenían tres raíces en
contacto con el suelo.
Por otra parte Baluarte (1997), reportó la importancia económica de estas
especies en la manufactura de muebles. Encontrando de 30 a 40 talleres
familiares dedicados a esta actividad, las cuales utilizan las siguientes
especies: tamshi (Thoracocarpus bissectus), “huambé” (Philodendon
solimoesense), cashavara (Desmoncus sp), y “uña de gato” (Uncaria
guianensis, U. tomentosa).
15
3.6. Avances en el Estado de Conocimiento de las Especies
Heteropsis, es un género Neotropical de la familia Araceae, representado por
12 a 13 especies, siendo la más conocida y comercial H. flexuosa. Esta
especie se distribuye desde Brasil y Bolivia hasta el norte de Nicaragua, con
un centro de diversidad en la región sur oriental de Venezuela y las Guayanas
(Hoffman, 1997). En la Amazonía peruana se ha reportado la presencia de 5
especies de este género, reportándose H. flexuosa en los departamentos de
Amazonas, Loreto, Ucayali, Madre de Dios, Pasco y Puno (Baluarte & Del
Castillo, 1998). Knab-Vispo et al. (2003), mencionan que Heteropsis tiene
una preferencia por ciertos tipos de hábitat, dependiendo mucho de la
fertilidad de los suelos, la época de inundación y la estructura de los bosque.
Estas especies no tienen preferencias por el tamaño y especies de árboles
hospederos.
Thoracocarpus, es un género monoespecífico (T. bissectus) que pertenece a
la familia Cyclanthaceae, de distribución Neotropical (Eriksson 1995). Se
encuentra en los países de Surinam, Guyana Británica, Guyana Francesa,
Colombia, Panamá, Trinidad, (Harling, 1958), también en Costa Rica, Brasil,
Perú y Bolivia (Baluarte 1997a). Y en el Perú se encuentra en los
departamentos de Amazonas, Loreto, San Martín y Madre de Dios, (Brako &
Zaruchi, 1993). En el departamento de Loreto habita en los bosques
primarios de terraza alta y media de las cuencas de los ríos Nanay, Tigre,
Napo, Marañón, Ucayali y Amazonas, (Baluarte & Del Castillo, 1998). Los
16
primeros resultados reportados sobre la ecología y biología de esta especie
fue dada por Baluarte (1997a).
3.7. Descripción Botánica de las Especies
3.7.1. Cesto Tamshi (según Cronquist 1981)
REINO : Plantae DIVISIÓN : Magnoliophyta (ANGIOSPERMAE) CLASE : Liliopsida SUB CLASE : Monocotiledónea ORDEN : Cyclanthales (Pandanales – APGII) FAMILIA : Cyclanthaceae GENERO : Thoracocarpus ESPECIE : Thoracocarpus bissectus (Vell.) Harling NOMBRE VULGAR : Cesto tamshi
Planta hemiepifitas secundaria (germina en el suelo y luego se elevan
trepando), crece desde el suelo hasta 6 – 7 m de altura sobre el
fuste de árboles (hospederos). Tallo densamente anillado (por
cicatrices de hojas), y de consistencia blanda, que envuelve el tronco
o las ramas de los árboles hospederos. Hojas semejantes a palmeras,
espiraladas. Pecíolo de 25 cm de longitud, base de la hoja
asimétrica; limbo bisectado. (Baluarte, 1997).
17
Cada hoja paralelodroma cuenta con 11 – 15 nervaduras finas que van
desde la base hasta el ápice. En las axilas de las hojas se aprecia cerca
de 8 brácteas prominentes colocadas una encima de la otra.
(Rodríguez, 2002).
Flores estaminadas, simétricas en forma de embudo, pistiladas con el
ovario mayormente inmerso en el pedúnculo; tépalos libres, agudos o
acuminados; estigmas lateralmente comprimidos, ligeramente
uncinados (Rodríguez, 2002). Infrutescencia tipo espádices de color
verde olivo al inicio y marrón en la madurez, elipsoide de 5,7 por 3 cm,
conformado por varios compartimientos en forma de celdas
cuadradas, estos compartimientos están soldados basalmente.
Semillas oblongas, aplanadas y delgadas, amarillentas, diminutamente
estriadas; la infrutescencia se une a la planta por un receptáculo de
6 cm. de largo por 1 cm. de sección, superficie anillada cuya distancia
entre anillos se reduce conforme se acerca a la base del fruto,
(Baluarte, 1997). Raíces largas, nudosas (2 a 14 nudos), que se
proyectan en forma paralela hacia el suelo. De las raíces principales
nacen las raíces secundarias y están dando lugar a otras (Baluarte,
2000).
3.7.2. Alambre Tamshi (según Croat, T. 1992)
REINO : Plantae
DIVISIÓN : Magnoliophyta (ANGIOSPERMAE)
18
CLASE : Liliopsida
SUB CLASE : Monocotiledónea
ORDEN : Arales
FAMILIA : Araceae
GENERO : Heteropsis
ESPECIE : Heteropsis flexuosa (H.B.K.) Bunting
NOMBRE VULGAR : Alambre tamshi
Planta hemiepífitas secundaria, leñosa trepadora. Crece de 5 – 20 m
sobre el fuste de los árboles altos, pero también se le puede encontrar
en árboles de menor tamaño como regeneración natural. Conocida en
otros lugares como “titica” (Brasil), “mamure” (Venezuela), y “nibbi”
(Guyanas). Tallo aéreo, erecto, pegado al árbol hospedero con
ramificación lateral horizontal, presenta estipulas supraaxilares antes
de salir las hojas. Ejes verdaderos en el ápice, de los cuales surgen las
inflorescencias (Saldaña, 2004).
Raíces gampiformes. Posee yemas axilares en las bases superiores de
inserción del pecíolo, presente tanto en el tallo principal como en las
ramas laterales. Ramas jóvenes de coloración verde, pasando a una
tonalidad marrón amarillento en el envejecimiento. Raíces
subterránea de tamaño variable (10 cm a 20 cm de bajo del suelo).
Hojas dísticas, alternas con nervadura primaria, ancho de 5 - 8 cm y
largo de 17 – 23 cm; lado inferior con prominencia en la nervadura
19
principal y una coloración verde claro opaco. Pecíolo de 6 mm, con
nervaduras anastomosada. Inflorescencia de una a dos espádices
terminales, con coloración verde clara que se une a la hoja por
receptáculo de aproximadamente de 5 cm de largo. Fruto color verde
y marrón cuando está maduro. Semillas elipsoides aplanados (Saldaña,
2004).
3.8. Propagación Vegetativa
Según Rojas (1993), señala que los vegetales a diferencia de los animales,
poseen un gran número de células indiferenciadas o embrionarias dispersas
entre las células que forman los tejidos. Las células retienen muchas
características que las aproximan en su actividad fisiológica y más aún, en su
potencialidad, a las del embrión. De hecho, estas células pueden originar un
nuevo individuo con un estimulo adecuado. Así mismo señala, que la
presencia de yemas en los tallos de las plantas permiten que se reproduzcan
de modo vegetativo, y puesto que no hay diferencia de otras características
genéticas, la planta que produce de una yema será exactamente igual a la
planta madre, lo que representa un enorme ventaja si se desea multiplicar
una variedad determinada sin cambio alguno.
Como es sabido, muchas especies de plantas poseen tallos subterráneos que
sirve para perpetuar una variedad; pero cuando la especie no tiene rizoma o
tubérculos, puede reproducirse por secciones de tallos con yemas que se
20
colocan en tierra húmeda, denominada, ¨estacas ¨. Así mismo, manifiesta
que algunas estacas de ciertas especies muestran dificultad para enraizar;
con lo que se estimula el proceso con el uso de hormonas auxinicas
(Hartmann & Kester, 1983).
Y siguiendo con lo mismo Pisabarro (2000), también coincide diciendo
que las plantas tienen una capacidad de regeneración muy grande, que
permite su propagación vegetativa. Esta propagación asegura la conservación
del genotipo que se propaga (clon). Y el uso de la propagación vegetativa
está aumentando rápidamente y es de vital importancia para el
mejoramiento genético forestal. (Zobel & Talbert, 1994).
Vásquez et al. (1997), también coinciden en señalar que la propagación
clonal o vegetativa de plantas es una producción a partir de partes
vegetativas. Se utilizan tejidos vegetales que conserven la potencialidad de
multiplicación y diferenciación celular para generar nuevos tallos y raíces a
partir de cúmulos celulares presentes en diversos órganos. Este tipo de
propagación tiene esencialmente tres variantes, que son: 1) la micro
propagación a partir vegetales en cultivo in vitro; 2) la propagación a partir de
bulbos, rizomas, estolones, tubérculos o segmentos (esquejes) de las
plantas que conserven la potencialidad de enraizar, y 3) la propagación por
injertos de segmentos de la planta sobre tallos de plantas respectivas más
resistentes.
21
Quijada (1980), señala que la propagación de las plantas por estacas permite
el fomento de clones o grupos de plantas que se obtuvieron de una planta de
origen seminal; así mismo elimina diferencia de constitución genética entre
los árboles. Mientras Hartman & Kester (1983), mencionan que las técnicas
de reproducción vegetativa son embriones, estolones, hijuelos, estacas,
injertos, micro propagación.
Por su parte Montoya & Camara (1996), recomiendan como se puede
obtener estacas: a partir de brotes de cepas madres o de ramas de diferentes
edades y ponerse a enraizar con o sin hojas, siendo más frecuente el buscar el
enraizamiento en estacas con hojas.
Font – Quer (1985); Cuculiza (1956), indican que la germinación por estacas
es un método asexual artificial, que consiste en obtener una nueva
planta madre y puesta en condiciones convenientes, emite raíces y desarrolla
un brote el que más tarde originará una planta idéntica a la planta de cual
proceda. Y que es muy ventajoso, porque se puede iniciar con muchas
plantas en un espacio limitado, se producen estacas, partiendo de unas
pocas plantas, es poco costoso, es rápido y sencillo, no se necesitan de las
técnicas especiales que se necesitan en injerto, (Hartman, 1980).
Mientras Fuller et al. (1983), afirman que en la reproducción asexual no
interviene ni meiosis ni unión de gametos, sino que una porción del cuerpo
de la planta se separa del cuerpo de la madre y al crecer se convierte en un
22
nuevo individuo. La fragmentación es un método de reproducción asexual;
que es la rotura del cuerpo de una planta multicelular en segmentos, donde
cada parte de ella está por convertirse en una planta totalmente nueva.
Así mismo Cuellar (1995), menciona las ventajas que proporciona la
propagación asexual (por medio de estacas) presenta ventajas en
comparación a la propagación vegetal, seria la facilidad de disponer del
material vegetal en comparación con las semillas y que las plantas nuevas
sean genéticamente iguales a los progenitores.
Según Ochse et al. (1965), dicen que la germinación por estacas es un
método basado en principios científicos de gran valor, ya que son resultados
de muchos años de investigación. Mientras Aguirre (1986), dice que en
estos últimos años se han visto avances, donde se desarrollan ensayos de
propagación en semillas y vía vegetativa pero aun la tasa de germinación y
prendimiento han sido bajas, para muchas especies nativas
Quijada (1980), reporta una clasificación en base a la propagación vegetativa:
23
MF = Muy fácil, porcentaje encima del 100%
F = Fácil, porcentajes promedios del 60%
M = Moderadas, porcentajes promedios del 40%
D = Difíciles, porcentajes promedios hasta el 20%
MD = Muy difícil, porcentajes usualmente 0%
Zobel & Talbert (1994), recomiendan que se debe utilizar un sustrato
adecuado para poner a germinar las estacas ya sea de ramas, raíces y así
tener una planta nueva. La selección de especies nuevas debe hacerse con
mucho cuidado y deben estar adaptadas al medio ambiente, del lugar, es
decir, clima, suelo, y ambiente biótico (Anderson 1995).
Por su parte Hartman (1980), recomienda que el material para las estacas,
sean las porciones de las plantas que estén en buen estado nutritivo; y de
preferencia que sean jóvenes ya que enraízan con más facilidad que aquellas
que provienen de plantas viejas y maduras. Las partes basales de las ramas
terminales y las ramillas laterales enraízan con facilidad. La planta madre de
la cual se va obtener las estacas debe poseer ciertas características
fenotípicas, como: tener buen fuste, de buena altura no muy ramificado, con
pocos nudos estar libre de enfermedades, que sean moderadamente
vigorosas y tener mucho en cuenta la edad de la planta reproductora.
24
La obtención y preparación de las estacas que se va a propagar, se
realiza el mismo día, ya sea en el vivero o en un lugar definitivo de plantación.
Las ramas, raíces seleccionadas deben ser cortadas por los tamaños
aconsejables por los expertos. Si existe inconvenientes, todo el material
seleccionado será protegido del desecamiento, se colocará en sombra, bajo
riego, grama, musgo, paja, aserrín, arena húmeda o enterrado en alguna zanja
(Koening & Melchior, 1978).
Los cortes deben ser lisos, sin daños en la superficie, ni huecos en la médula y
el corte tiene que ser en bisel la parte basal de la estaca, para facilitar la
plantación y para que tenga mayor absorción (Primo & Cuñat, 1968).
Y la mejor época para la siembra es cuando el suelo esta mojado, también
cuando las condiciones atmosféricas son húmedas o hay poca evaporación
(Schubert, 1980). La profundidad de la plantación debe permitir un buen
equilibrio entre la parte aérea y la parte que está enterada: para así evitar
que la estaca se seque se voltee y produzca pocas raíces. De preferencia se
debe colocar inclinado dejando un ángulo de inclinación más o menos de
30` y dejar una yema fuera, ya que de esta manera se está asegurando
que la estaca brote y no se pudra (Enda – Caribe & Catie, 1989).
El sustrato es el soporte físico del cultivo y la protección de las raíces
(Montoya & Camara, 1996). Debe ser de textura ligeramente suelta,
tener buena porosidad para permitir un adecuado drenaje y la penetración
25
del aire (Galloway & Borgo, 1983). Todo el sustrato que será puesto en el
vivero debe ser tamizado o cernido con una malla de metal, para así evitar
partículas gruesas, raíces ajenas, palos, vidrios, etc. (Maury, 1995).
26
IV. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1. Descripción General de la Zona de Estudio
4.1.1. Ubicación del Área de Estudio
El presente estudio se realizó en el Centro de Investigación de Jenaro
Herrera (CIJH) del Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana
(IIAP).
Ubicado en el distrito de Jenaro Herrera, provincia de Requena,
departamento de Loreto. El CIJH se encuentra a 2.8 Km del pueblo de
Jenaro Herrera, cuyas coordenadas geográficas son 4º 55’’ S, 73º
44’ E (Anexo 01). La altitud es de 125 m sobre el nivel del mar y 10 m
sobre el nivel del río (Ornen, 1976).
4.1.2. Ecología de Zona
La zona presenta una precipitación media anual de 2889 mm, siendo
abril el mes de mayor precipitación (294 mm) y julio el de menor
precipitación (115 mm). Los meses más lluviosos se dan entre octubre
y mayo y los meses menos lluviosos entre junio y septiembre. La
temperatura media anual es de 26.9 ºC con una variación de 2 ºC. La
temperatura promedio máximo de 32.6 ºC y mínima de 21.1 ºC. El
promedio de humedad es 87% (Marengo, 1983).
27
4.1.3. Accesibilidad
La zona de influencia del área de estudio presenta dos paisajes
bien definidos: la planicie de inundación y la zona de altura (tierra
firme). En la zona de altura o tierra firme se puede diferenciar tres
unidades fisiográficas; la terraza baja, la terraza alta y la colina baja
(López & Freitas, 1990).
4.2. Métodos
4.2.1. Ensayo de Propagación Vegetativa de “Alambre y Cesto Tamshi
Se ensayó la propagación vegetativa utilizando estacas o esquejes, las
cuales se obtuvieron de plantas madres existentes en el bosque
cercano al centro de investigación (Anexo 03, foto 1). Cada estaca tuvo
20 cm de longitud, se seleccionaron por el color y textura en el mismo
lugar de extracción, se transportaron en bolsas de plástico, para luego
ser puestos en baldes con agua y ser remojados por 24 horas, para así
mantener la humedad de las estacas y evitar el desecamiento de las
mismas.
Heteropsis flexuosa: las estacas fueron tomadas de los tallos y ramas
de la planta madre a las cuales les quito las hojas hasta dejarles sin
una hoja (Anexo 03, Foto 3), los cuales se clasificaron en tallos jóvenes
y maduros. Se consideró tallos y ramas jóvenes a aquellos que
presentaban una coloración verde; y tallos y ramas maduras a aquellas
28
que presentaban una tonalidad marrón amarillenta.
Thoracocarpus bissectus: las estacas fueron tomadas del tallo de la
planta madre, que también se les quito las hojas hasta dejarles sin una
hoja. (Anexo 03, Foto 2), se clasificaron en tallos jóvenes y maduros.
Se considero tallos jóvenes a aquellos que se encontraban cerca al
ápice de la planta y que presentaban un color verdoso; y tallos
maduros a aquellos que presentaban numerosos nudos tortuosos y de
un color marrón amarillento.
4.2.2. Camas de Almacigo
Se utilizaron las camas de almacigo del vivero del CIJH, cuyas medidas
son 1 m x 10 m de largo, las cuales fueron divididos cada 2 m para
cada tratamiento (Anexo 03, Foto 5). Se utilizaron dos tipos de
sustrato 1) 50% de materia orgánica y 50% de arena arcillosa, 2) 50%
de aserrín descompuesto y 50% de a r e n a arcillosa (Anexo 03,
Foto 4). Las proporciones fueron mezcladas para ser depositados en
las camas de almacigo. Todos los componentes de los sustratos se
obtuvieron de los alrededores del centro de investigación.
Las camas fueron expuestas a diferentes intensidades de luz: luz
completa y poca luz. Las camas de luz completa fueron aquellas
que estaban expuestas directamente al sol y las camas de poca
29
luz, aquellas que presentaban ligero techo de hojas de palmeras.
(Anexo 03, Fotos 6 y 7).
4.2.3. Siembra de las Estacas
Para ambas especies la siembra de las estacas se realizó al segundo
día de su extracción. La distancia entre ellas fue de 20 cm x 20 cm,
con un ángulo de inclinación de aproximadamente 20º. El riego del
material se realizó cada día por la mañana, cuando no se presentaban
precipitaciones y si había precipitaciones durante el día se suspendía
el riego.
4.2.4. Diseño Experimental
En el presente trabajo de investigación se aplicó el diseño factorial
completamente al azar con arreglo factorial. En el caso de Heteropsis
flexuosa corresponde a un arreglo factorial de 4 x 2 x 2, considerando
16 unidades experimentales o tratamientos con 2 repeticiones que
hacen un total de 32 muestras. Los factores y niveles considerados
fueron los siguientes:
30
Diseño experimental para la especie: Heteropsis flexuosa
FACTOR A: PROPÁGULO VEGETATIVO
a1 = Tallo Joven
a2 = Tallo adulto
a3 = Rama Joven
a4 = Rama Adulta
FACTOR B: SUSTRATO
b1 = 50% materia orgánica + 50% arena arcillosa
b2 = 50% aserrín + 50% arena arcillosa
FACTOR C: INTENSIDAD DE LUZ X 24 HORAS
c1 = Mucha luz
c2 = Poca luz
Al combinar los factores y niveles resultaron los tratamientos
combinados que se muestran en el cuadro 01.
31
Cuadro : Esquema de los tratamientos combinados para la especie
Heteropsis flexuosa
FACTOR
Sustrato
(b1) / luz
(c1)
Sustrato
(b1) / luz
(c2)
Sustrato
(b2) / luz
(c1)
Sustrato
(b2) / luz
(c2)
Total Prop. Veg.
(a)
a1
a1b1c1
(T1)
a1b1c2
(T2)
a1b2c1
(T3)
a1b2c2
(T4)
4
a2
a2b1c1
(T5)
a2b1c2
(T6)
a2b2c1
(T7)
a2b2c2
(T8)
4
a3
a3b1c1
(T9)
a3b1c2
(T10)
a3b2c1
(T11)
a3b2c2
(T12)
4
a4
a4b1c1
(T13)
a4b1c2
(T14)
a4b2c1
(T15)
a4b2c2
(T16)
4
Total 4 4 4 4 16
Para Thoracocarpus bissectus fue con un arreglo factorial de 2 x 2 x
2, considerando 8 unidades experimentales con 2 repeticiones que
hacen un total de 32 muestras. Factores estudiados fueron los
siguientes: LUZ
Diseño experimental para la especie: Thoracocarpus bissectus
FACTOR A: PROPÁGULO VEGETATIVO
a1 = Tallo joven
a2 = Tallo maduro
FACTOR B: SUSTRATO
b1 = 50% materia orgánica + 50% arena arcillosa
32
b2 = 50% aserrín + 50% arena arcilloso
FACTOR C: INTENSIDAD DE LUZ X 24 HORAS
c1 = Mucha luz
c2 = Poca luz
Al combinar los factores y niveles resultaron los tratamientos
combinados que se muestran en el cuadro 02.
Cuadro 1: Esquema de los tratamientos combinados para la especie
Thoracocarpus bissectus
FACTOR
Sustrato
(b1) / luz
(c1)
Sustrato
(b1) / luz
(c2)
Sustrato
(b2) / luz
(c1)
Sustrato
(b2) / luz
(c2)
Total Prop. Veg.
(a)
a1 a1b1c1
(T1)
a1b1c2
(T2)
a1b2c1
(T3)
a1b2c2
(T4) 4
a2 a2b1c1
(T5)
a2b1c2
(T6)
a2b2c1
(T7)
a2b2c2
(T8)
4
Total 4 4 4 4 16
En resumen se realizaron 24 tratamientos, sembrándose 1748 estacas,
distribuyendo 18 estacas por tratamiento.
4.2.5. Observaciones y Mediciones en el Vivero
Las observaciones y mediciones se realizaron cada 15 días desde julio
hasta noviembre del 2006 siendo un total de seis mediciones. Para
realizar las observaciones y mediciones, las estacas eran sacadas del
suelo. Todo esto se realizaba por las mañanas o por las tardes para
33
no producir el marchitamiento y desecamiento de las estacas. El
total de estacas en el experimento fue 1748.
Además del riego y mantenimiento de las parcelas, cada 15 días,
durante el periodo experimental se realizó las siguientes evaluaciones:
Supervivencia de estacas.
Cantidad de estacas con rebrote.
Cantidad de estacas con hojas
Cantidad de estacas enraizadas.
Se consideró como estaca viva a toda aquella, cuya corteza
permanecía sin signos de secamiento.
Se consideró estacas muertas todas aquellas, que tuvieron la corteza
podrida o arrugada por el secado.
4.2.6. Análisis de Resultados
Se realizó el análisis de varianza de las diferentes variables tomadas.
Cuando los datos eran cualitativos fueron transformados a la forma
√x+1. Así mismo, se utilizó el modelo estadístico ANOVA con arreglo
factorial 4 x 2 x 2 para Heteropsis flexuosa y ANOVA con arreglo
factorial 2 x 2 x 2 para Thoracocarpus bissectus.
34
V. RESULTADOS
Los resultados que se muestran a continuación corresponden a la evaluación de la
propagación vegetativa de Heteropsis flexuosa y Thoracocarpus bissectus en el
vivero del Centro de Investigación Jenaro Herrera durante el periodo de julio a
noviembre del 2006, siendo un total de seis evaluaciones.
5.1. Sobrevivencia
5.1.1. Heteropsis flexuosa
En el Cuadro Nº 3 del Análisis de Varianza de la variable sobrevivencia
se puede observar que los factores independientes (propágulo,
sustrato luz) y la interacción del sustrato x luz son altamente
significativos y la interacción de los tres factores (propágulo x sustrato
x luz) son poco significativos a un nivel de 0.05%. Al realizar la
prueba de Tukey, este muestra que los tratamientos 2 y 12
presentaron mayor número de estacas vivas y muy similares los
tratamientos 10 y 14 que también presentaron estacas vivas pero en
menor número, como se puede apreciar en el Gráfico Nº 1.
35
Cuadro 2: Análisis de Varianza de la variable sobrevivencia de las
estacas de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
FUENTE
Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 3 0.666 0.222 6.6644 0.0002
Sustrato 1 0.014 0.014 0.4294
Propágulo x Sustrato 3 0.671 0.224 6.7115 0.0002 Luz 1 2.209 1.209 66.2820 0.0000 Propágulo x Luz 3 0.129 0.043 1.2932 0.2759 Sustrato x Luz 1 0.759 0.759 22.7780 0.0000
Propágulo x Sustrato x
Luz 3 0.393 0.131 3.9321 0.0085
Error 560 18.664 0.033 Total 575 23.506
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Sobrevivencia
Tratamiento 2 = 1.390 a Tratamiento 1 = 1.140 cde
Tratamiento 12= 1.320 ab Tratamiento 3= 1.140 cde
Tratamiento 14= 1.260 abc Tratamiento 11 = 1.140 cde
Tratamiento 10= 1.260 abc Tratamiento 15 = 1.140 cde
Tratamiento 6 = 1.210 bcd Tratamiento 16 = 1.130 cde
Tratamiento 8 = 1.160 cd Tratamiento 9 = 1.110 cde
Tratamiento 4 = 1.160 cd Tratamiento 13 = 1.070 de
Tratamiento 7 = 1.150 cde Tratamiento 5 = 1.000 e
36
Gráfico 1: Porcentaje de sobrevivencia por Tratamiento de estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
4.1.2. Thoracocarpus bissectus
En el Cuadro Nº 4 del Análisis de Varianza de la variable
sobrevivencia se puede observar que los factores independientes
propágulo y sustrato son significativos a diferencia del factor luz
presentando una alta diferencia significativa y la interacción de los
tres factores (propágulo x sustrato x luz) es significativo a un nivel de
0.5%. Al realizar la prueba de Tukey, se muestra que los tratamientos
2 y 4, muestran que han presentado mayor número de estacas vivas,
a diferencia del tratamiento 6 fue el que presentó menor número de
estacas vivas como se puede apreciar en el Gráfico Nº 2.
37
Cuadro 3: Análisis de Varianza de la variable sobrevivencia de las
estacas de Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 1 0.131 0.131 3.3988 0.0663
Sustrato 1 0.131 0.131 3.3988 0.0663
Propágulo x Sustrato 1 0.071 0.071 1.8278 0.1775
Luz 1 0.561 0.561 14.5166 0.0002
Propágulo x Luz 1 0.365 0.365 9.4411 0.0023
Sustrato x Luz 1 0.005 0.005 0.1360
Propágulo x Sustrato x
Luz 1 0.005 0.005 0.1360
Error 280 10.819 0.039 Total 287 12.0890
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Sobrevivencia
Tratamiento 2= 1.350 a Tratamiento 5 = 1.180 bc
Tratamiento 4= 1.290 ab Tratamiento 1 = 1.160 bc
Tratamiento 3= 1.240 abc Tratamiento 7 = 1.160 bc
Tratamiento 8= 1.210 abc Tratamiento 6 = 1.140 c
38
Gráfico 2: Porcentaje de sobrevivencia por Tratamiento de estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
5.2. Número de brotes
5.2.1. Heteropsis flexuosa
En el Cuadro Nº 5 del Análisis de Varianza de la variable número de
brotes se puede observar que los factores independientes Propágulo,
Sustrato y luz; y la interacción de los tres factores muestran una alta
diferencia significativa a un nivel de 0.5%. Al realizar la prueba de
Tukey indica que el tratamiento 2 presentó mayor número de
formación de brotes. A diferencia de los tratamientos 5, 9, 13 y 15,
que no presentaron estacas con formación de brotes. (Ver Gráfico Nº
3).
39
Cuadro 4: Análisis de Varianza de la variable número de brotes de las
estacas de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 3 2.181 0.727 5.8473 0.0006
Sustrato 1 2.250 2.550 18.1006 0.0000
Propágulo x Sustrato 3 2.153 0.718 5.7728 0.0007
Luz 1 14.063 14.063 113.1285 0.0000
Propágulo x Luz 3 1.007 0.336 2.7002 0.0450
Sustrato x Luz 1 2.507 2.507 20.1676 0.0000
Propágulo x Sustrato x
Luz 3 1.451 0.484 3.8920 0.0090
Error 560 69.611 0.124 Total 575 95.222
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Número de Brotes
Tratamiento 2 = 0.780 a Tratamiento 1 = 0.090 cde
Tratamiento 6 = 0.500 ab Tratamiento 7 = 0.060 de
Tratamiento 10 = 0.370 bc Tratamiento 3 = 0.030 de
Tratamiento 12 = 0.310 bcd Tratamiento 11= 0.030 de
Tratamiento 14 = 0.230 bcde Tratamiento 5 = 0.000 e
Tratamiento 4 = 0.200 cde Tratamiento 9 = 0.000 e
Tratamiento 8 = 0.170 cde Tratamiento 13 = 0.000 e
Tratamiento 16 = 0.170 cde Tratamiento 15 = 0.000 e
40
Gráfico 3: Porcentaje de brotes por Tratamiento de estacas de
Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
5.2.2. Thoracocarpus bissectus
En el Cuadro Nº 6 del Análisis de Varianza de la variable Número de
brotes se puede observar que el factor Propágulo no es significativo a
diferencia del factor sustrato y luz que son altamente significativo y la
interacción de los tres factores no muestran una diferencia
significativa a un nivel de 0.5%. Al realizar la prueba de Tukey y gráfico
Nº 04, se muestra que los tratamientos 2 y 4 muestran que han
presentado mayor número de estacas con brotes y el tratamiento 6
fue el que presento menor número de brotes.
41
Cuadro 5: Análisis de Varianza de la variable número de brotes de las
estacas de Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 1 0.500 0.500 1.0141 0.3148
Sustrato 1 0.222 0.222 0.4507 0.0000
Propágulo x Sustrato 1 2.722 2.722 5.5211 0.0195
Luz 1 5.014 5.014 10.1690 0.0016
Propágulo x Luz 1 1.681 1.681 3.4085 0.0659
Sustrato x Luz 1 1.681 1.681 3.4085 0.0659
Propágulo x Sustrato x
Luz 1 0.125 0.125 0.2535
Error 280 138.056 0.493 Total 287 150.000
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Número de Brotes
Tratamiento 2 = 0.8100 a Tratamiento 1 = 0.3900 ab
Tratamiento 4 = 0.7800 a Tratamiento 8 = 0.3900 ab
Tratamiento 5 = 0.5900 ab Tratamiento 7 = 0.2600 b
Tratamiento 3 = 0.5900 ab Tratamiento 6 = 0.1700 b
42
Gráfico 4: Porcentaje de brotes por Tratamiento de estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
5.3. Altura de brotes
5.3.1. Heteropsis flexuosa
En el Cuadro Nº 7 del Análisis de Varianza de la variable altura de
brotes se puede observar que los factores independientes Propágulo y
Sustrato muestran que no existe diferencia significativa a diferencia
del factor luz (C), que si muestra una alta diferencia significativa a un
nivel de 0.5%. Lo mismo sucede con la interacción de los tres
factores (propágulo, sustrato y luz), donde no se expresa diferencia
alguna. Al realizar la prueba de Tukey, se muestra que los
tratamientos 6 y 2 son que más presentaron estacas con brotes más
largos. Y un parecido fueron los tratamientos 16, 10, 8, 14, 12 y 4,
que también presentaron estacas con brotes pero de menor tamaño.
43
A diferencia de los tratamientos 1, 11, 7, 5, 9, 3, 13 y 15 que no
presentaron estacas con brotes de mayor tamaño, (ver Gráfico Nº 5).
Cuadro 6: Análisis de Varianza de la variable altura de brotes de las
estacas de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 3 28.556 9.519 0.4712
Sustrato 1 35.701 35.701 1.7671 0.1843
Propágulo x Sustrato 3 79.565 26.522 1.3127 0.2694
Luz 1 1056.250 1056.250 52.2812 0.000
Propágulo x Luz 3 28.469 9.490 0.4697
Sustrato x Luz 1 35.601 35.601 1.7621 0.1849
Propágulo x.Sustrato x.
Luz 3 76.954 25.651 1.2697 0.2839
Error 560 11313.829 20.203 Total 575 12654.925
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Altura de Brotes
Tratamiento 6 = 4.5200 a Tratamiento 1 = 0.0600 b
Tratamiento 2 = 3.9500 a Tratamiento 11= 0.0300 b
Tratamiento 16 = 3.2000 ab Tratamiento 7 = 0.0300 b
Tratamiento 10 = 2.3400 ab Tratamiento 5 = 0.0000 b
Tratamiento 8 = 2.3000 ab Tratamiento 9 = 0.0000 b
Tratamiento 14= 2.0900 ab Tratamiento 3 = 0.0000 b
Tratamiento 12 = 1.9900 ab Tratamiento 13 = 0.0000 b
Tratamiento 4 = 1.4300 ab Tratamiento 15 = 0.0000 b
44
Gráfico 5: Porcentaje de altura de brotes por Tratamiento de estacas
de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
5.3.2. Thoracocarpus bissectus
En el Cuadro Nº 8 del Análisis de Varianza de la variable altura de
brotes se puede observar que los factores independientes propágulo y
sustrato son poco significativo a diferencia del factor luz que si es
altamente significativo y la interacción de los tres factores también
son pocos significativos a un nivel de 0.5%. Al realizar la prueba de
Tukey, se muestra que los tratamientos 4 y 2 muestran que han
presentado mayor número de estacas con brotes largos, (Gráfico Nº
6).
45
Cuadro 7: Análisis de Varianza de la variable altura de brotes de las
estacas de Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 1 42.090 42.090 11.0285 0.0010
Sustrato 1 14.178 14.178 3.7149 0.0549
Propágulo x Sustrato 1 27.689 27.689 7.2551 0.0075
Luz 1 324.488 324.488 85.0224 0.000
Propágulo x Luz 1 44.258 44.258 11.5966 0.008
Sustrato x Luz 1 21.725 21.725 5.6924 0.0177
Propágulo x Sustrato x
Luz 1 22.056 22.056 5.7791 0.0169
Error 280 1068.620 3.816 Total 287 1565.104
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Altura de Brotes
Tratamiento 4 = 4.1400 a Tratamiento 5 = 0.3200 b
Tratamiento 2 = 4.1000 a Tratamiento 3 = 0.3200 b
Tratamiento 8 = 1.6500 b Tratamiento 1 = 0.1700 b
Tratamiento 6 = 0.7600 b Tratamiento 7 = 0.1300 b
46
Gráfico 6: Altura de brotes por Tratamiento de estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
5.4. Número de hojas
5.4.1. Heteropsis flexuosa
En el Cuadro Nº 9 del Análisis de Varianza de la variable Número de
hojas se puede observar que los factores independientes Propágulo y
Sustrato no muestran diferencia significativa a comparación del
factor Luz que si muestra una alta diferencia significativa. Pero donde
no se expresa diferencia significativa alguna es en la interacción de los
tres factores (Propágulo, Sustrato y luz). Al realizar la prueba de Tukey,
se muestra que el tratamiento 2 presentó estacas con más número de
hojas y muy similares los tratamientos 6, 10, 16, 8, 4, 14 y 12 que han
presentado menor número de estacas con la presencia de hojas y en
algunos tratamientos nula, (ver Gráfico Nº 7).
47
Cuadro 8: Análisis de Varianza de la variable número de hojas de las
estacas de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 3 6.188 2.063 0.5720
Sustrato 1 9.507 9.507 2.6367 0.1050
Propágulo x Sustrato 3 10.076 3.359 0.9316
Luz 1 212.674 212.674 58.9850 0.0000
Propágulo x Luz 3 6.188 2.063 0.5720
Sustrato x Luz 1 9.507 9.507 2.6367 0.1050
Propágulo x Sustrato x
Luz 3 10.076 3.359 0.9316
Error 560 2019.111 3.606 Total 575 2283.326
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Número de Hojas
Tratamiento 2 = 2.1400 a Tratamiento 1 = 0.0000 b
Tratamiento 6 = 1.4500 ab Tratamiento 3 = 0.0000 b
Tratamiento 10 = 1.3900 ab Tratamiento 5 = 0.0000 b
Tratamiento 16 = 1.1400 ab Tratamiento 7 = 0.0000 b
Tratamiento 8 = 1.1200 ab Tratamiento 9 = 0.0000 b
Tratamiento 4 = 0.9200 ab Tratamiento 11= 0.0000 b
Tratamiento 14 = 0.9200 ab Tratamiento 13= 0.0000 b
Tratamiento 12 = 0.6700 ab Tratamiento 15= 0.0000 b
48
Gráfico 7: Promedio de número de hojas de las estacas de Heteropsis
flexuosa a la sexta evaluación.
5.4.2. Thoracocarpus bissectus
En el Cuadro Nº 10 del Análisis de Varianza de la variable número de
hojas se puede observa que los factores independientes Propágulo y
Sustrato no muestran diferencia significativa alguna a diferencia del
factor Luz que si muestra una alta diferencia significativa y la
interacción de los tres factores (Propágulo, Sustrato y Luz) son
altamente significativos a un nivel de 0.5%. Al realizar la prueba de
Tukey, se muestra que los tratamientos 2 y 4, muestran que han
presentado mayor número de hojas por estacas, (ver Gráfico Nº 8).
49
Cuadro 9: Análisis de Varianza de la variable número de hojas de las
estacas de Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 1 16.056 16.056 3.5969 0.0589
Sustrato 1 30.681 30.681 6.8734 0.0092 Propágulo x Sustrato 1 14.222 14.222 3.1862 0.0753 Luz 1 378.125 378.125 84.7113 0.000 Propágulo x Luz 1 16.056 16.056 3.5969 0.0589 Sustrato x Luz 1 30.681 30.681 6.8734 0.0092
Propágulo x Sustrato x
Luz 1 14.222 14.222 3.1864 0.0753
Error 280 1249.833 4.464 Total 287 1749.875
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Número de Hojas
Tratamiento 2 = 3.6700 a Tratamiento 1 = 0.0000 b
Tratamiento 4 = 3.3900 a Tratamiento 3 = 0.0000 b
Tratamiento 8 = 1.0000 b Tratamiento 5 = 0.0000 b
Tratamiento 6 = 0.8100 b Tratamiento 7 = 0.0000 b
50
Gráfico 8: Promedio de número de hojas de las estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
5.5. Enraizamiento
5.5.1. Heteropsis flexuosa
En el Cuadro Nº 11 del Análisis de Varianza de la variable
enraizamiento se puede observar que los factores independientes
Propágulo y Sustrato muestran que son poco significativos, a
diferencia del factor Luz, que si muestra una alta diferencia
significativa y la interacción de los tres factores si muestran una
alta diferencia significativa. Al realizar la prueba de Tukey, el
tratamiento 2 fue el que presentó mayor número de estacas con
raíces y muy similar el tratamiento 10 y en algunos tratamientos no
presentaron estacas enraizadas, (Gráfico Nº 9).
51
Cuadro 10: Análisis de Varianza de la variable enraizamiento de las
estacas de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 3 1.519 0.506 3.8741 0.0092
Sustrato 1 0.766 0.766 5.8577 0.0158
Propágulo x Sustrato 3 1.061 0.354 2.7052 0.0447
Luz 1 8.266 8.266 63.2391 0.0000
Propágulo x Luz 3 1.227 0.409 3.1303 0.0253
Sustrato x Luz 1 0.918 0.918 7.0266 0.0083
Propágulo x Sustrato x
Luz 3 1.297 0.432 3.3074 0.0199
Error 560 73.194 0.131 Total 575 88.248
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Enraizamiento
Tratamiento 2 = 0.5900 a Tratamiento 3 = 0.03000 c
Tratamiento 10 = 0.3900 ab Tratamiento 1 = 0.0000 c
Tratamiento 6 = 0.2300 bc Tratamiento 5 = 0.0000 c
Tratamiento 4 = 0.2000 bc Tratamiento 7 = 0.0000 c
Tratamiento 8 = 0.1700 bc Tratamiento 9 = 0.0000 c
Tratamiento 16 = 0.1700 bc Tratamiento 11 = 0.0000 c
Tratamiento 12 = 0.1400 bc Tratamiento 13 = 0.0000 c
Tratamiento 14 = 0.09000 bc Tratamiento 15 = 0.0000 c
52
Gráfico 9: Número de raíces por Tratamiento formadas en las estacas
de Heteropsis flexuosa a la sexta evaluación.
5.5.2. Thoracocarpus bissectus
En el cuadro Nº 12 del Análisis de Varianza de la Variable
Enraizamiento se observa que los factores independientes Propágulo
y Luz si muestran una alta diferencia significativa a diferencia del
factor sustrato y la interacción de los tres factores (Propágulo,
Sustrato y Luz), no muestran diferencia significativa a un nivel de
0.5%. Al realizar la prueba de Tukey, indica que el tratamiento 2,
muestra mayor número de raíces por estaca y en menor número el
Tratamiento 4 y 5, (ver Gráfico Nº 10).
53
Cuadro 11: Análisis de Varianza de la variable enraizamiento de las
estacas de Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
FUENTE Grados
de
Libertad
Suma de
Cuad.
Cuadrado
Media Valor F Prob.
Propágulo 1 2.722 2.722 10.4813 0.0014
Sustrato 1 0.014 0.014 0.05335
Propágulo x Sustrato 1 0.222 0.222 0.8556
Luz 1 11.681 11.681 44.9733 0.0000
Propágulo x Luz 1 2.722 2.722 10.4813 0.0014
Sustrato x Luz 1 0.014 0.014 0.0535
Propágulo x Sustrato x
Luz 1 0.222 0.222 0.8556
Error 280 72.722 0.260 Total 287 90.319
* Significancia al nivel 0.5%
Prueba de Tukey de la Variable Enraizamiento
Tratamiento 2 = 1.420 a Tratamiento 1 = 0.0300 b
Tratamiento 4 = 0.4500 b Tratamiento 3 = 0.0000 b
Tratamiento 6 = 0.3700 b Tratamiento 5 = 0.0000 b
Tratamiento 8 = 0.0900 b Tratamiento 7 = 0.0000 b
54
Gráfico 10: Número de raíces por Tratamiento formadas en estacas de
Thoracocarpus bissectus a la sexta evaluación.
55
VI. DISCUSIÓN
6.1. Propágulo
Como se puede observar en los Gráficos Nº 1, 2, 3, 4, 7, 8, 9 y 10, los
tratamientos conformados por estacas provenientes de tallos jóvenes dieron
buenos resultados tanto en la sobrevivencia, número de brotes, número de
hojas y enraizamiento; pero no influyó en la altura del brote, dando un
similar resultado en la propagación de ambas especies. A diferencia del
trabajo de Quinteros (1994) realizado en Artocarpus comunis, quien obtuvo
mayor porcentaje de sobrevivencia y germinación en estacas provenientes
de la raíz de la planta madre. Y difiere también con Celis (2001) quien trabajo
con Vochysia lomatophylla standley (quillosisa), y reporta que no tuvo
ninguna estaca enraizada proveniente de las ramas del dosel de las plantas
madres.; todas estuvieron muertas al final de la propagación.
6.2. Sustrato
Según los cuadros Nº 3, 4, 7, 8, 9, 10, 11 y 12 y gráficos Nº 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7,
8, 9 y 10, se puede apreciar que en la propagación de estas dos especies
existe un similar resultado; es decir no existe una diferencia significativa
con respecto a la variable Sustrato para estas dos especies en la
sobrevivencia, altura de brotes, número de hojas y enraizamiento, es
decir que el tipo de sustrato utilizado para la siembra de las estacas de
ambas especies, estadísticamente no han influenciado en su crecimiento y
56
desarrollo para este trabajo de investigación y puede sembrase tanto
utilizando sustrato con 50 % materia orgánica + 50 % arena arcillosa o
usando el sustrato que contenía 50% aserrín + 50% arena arcillosa. Este
resultado difiere al reporte de Celis (2001), con Vochysia lomatophylla
standley “quillosisa” donde trabajo con dos tipos de sustrato el primero
compuesto por 40% tierra negra + 20% arena blanca + 40% de aserrín
descompuesto y el segundo por 40% tierra negra + 20% arena blanca +
40% de aserrín muy descompuesto; siendo el factor sustrato muy
importante en la propagación de esta especie ya que ninguna estaca
enraizó ni presentó signos de vida, experimentó que el aserrín tuvo la
propiedad de convertir el suelo en sustrato muy poroso y al mismo tiempo
en un gran absorbente de humedad; y la tierra negra, tiene dentro de su
composición gran proporción de materia orgánica que también da buena
porosidad al suelo y sumándose a la característica de la materia orgánica
de ser higroscópico posiblemente hicieron que la humedad del sustrato
fuera mayor ya que esta especie no necesita de mucha humedad; todo lo
contrario sucede con las dos especies de tamshi que si necesitan de de
un sustrato con estas características.
Vela (1999), reporta que en la propagación de Erythrina fusca ´Amasisa¨, el
sustrato le permitió obtener un mayor número de estacas de 85.15% de
germinación cuando éste contenía (estacas de las ramas, 50% de tierra
negra y 50% de humus de lombriz), en un periodo de germinación de 10 a
57
20 días, lo cual difiere con este trabajo debido a que el sustrato no influyó
estadísticamente en la germinación de las estacas.
También Pezo (2001) reporta que no obtuvo resultados positivos,
después de tres meses de la siembra de las estacas de Vochysia
lomatophylla ¨standley¨ en sustrato compuesto por 40% de materia
orgánica, 20% de arena y 40% de de tierra negra solo presentaron brotes
dos estacas. Lo que comparte con los resultados obtenidos con estas dos
especies, que no mostraron significancia alguna al tipo de sustrato; pero
cabe mencionar que podrían estar influenciando otros factores en el
crecimiento, aparte del sustrato.
6.3. Intensidad de Luz
Los tratamientos que estuvieron conformado por estacas sembrados
bajo sombra (poca luz), en las dos especies respondieron de una forma
moderada a la propagación, tanto en la sobrevivencia, número de brotes,
altura de brotes, número de hojas y enraizamiento, y muy a lo contrario
sucedió con las estacas que estuvieron expuestas directamente a la luz,
dando resultados negativos, (Gráficos Nº 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 y 10). En
algunos tratamientos la mortalidad fue mayor del 50% y algunos casos
llegando al 100% como por ejemplo el T5 (a2b1c1). Resultados que coinciden
con los reportes de Quinteros (1994), en un estudio de propagación por
estacas de Artocarpus comunis Forst ¨Pandisho¨, donde manifiesta que el
58
mejor resultado obtenido fueron las estacas provenientes de raíces, en
camas de techo de palmera (poca luz) y en un tiempo de germinación de 35
días.
El análisis de varianza para la propagación de estas dos especies, nos
indica que tiene diferencia significativa el factor luz, tanto en la
sobrevivencia, número de brotes, altura de brotes, número de hojas y
enraizamiento, (Cuadros Nº 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 y 12). Por lo tanto se
podría decir que el factor Luz es una limitante en la propagación por
estacas de estas especies, lo que comparte con los resultados obtenidos por
Saldaña (2004), en la propagación de estacas de Heteropsis flexuosa, que
el mayor porcentaje de estacas con rebrotes fueron las que estuvieron en el
vivero y bajo sombra (tinglado) 43.3%.
Con los métodos utilizados de propagación por estacas en este experimento
se obtuvo estacas con brotes y enraizando en un tiempo mayor de 60 días, a
diferencia de Gutiérrez (2005), quien trabajó con camu camu (Myrciaria
dubia Mc Vaugh), quien obtuvo plantones enraizados a partir de los 45 días
y Saldaña (2004), que también propagó Heteropsis flexuosa y tuvo
plantones con rebrote a los 30 días. El brotamiento y enraizamiento de estas
especies fue muy lento, debido a que estas estacas no tenían ningún tipo de
estimulante, como en el caso del experimento de Romiris et al. (2002),
quienes obtuvieron mayor número de estacas enraizadas de Acacia horrida
“huaranguillo” utilizando sustancias enraizantes como el agua de coco.
59
VII. CONCLUSIONES
1. Que el mejor resultado obtenido, en las dos especies, fue en el tratamiento
conformado por tallos jóvenes, sustrato compuesto por 50% de materia
orgánica + 50% de arena franco arcilloso y poca luz. (T2 = a1b1c2), que ha
mostrado una respuesta más positiva a la propagación, dando un mayor
porcentaje de sobrevivencia, presencia de brotes, altura de brotes, hojas y
raíces, a diferencia de los demás tratamientos que también respondieron a la
propagación pero en menor porcentaje.
2. El tratamiento compuesto por tallos jóvenes, materia orgánica y poca luz
(a1b1c2), para ambas especies, se puede decir que se aproximan más a un
resultado positivo para la propagación, teniendo para Heteropsis flexuosa, una
sobrevivencia de 94.44%, número de brotes 77.78%, promedio de altura de
brotes de 3.94 cm, promedio de numero de hojas de 2.14 y un promedio de
raíces de 0.58. Y para Thoracocarpus bissectus, una sobrevivencia de
83.33%, número de brotes 81.53%, promedio de altura de brotes de 4.04 cm,
promedio de numero de hojas de 3.67 y un promedio de raíces de 1.42.
3. El tratamiento compuesto por tallo joven, aserrín y a toda luz (T5 =
a2b1c1), resultó siendo totalmente negativo para la propagación por estacas,
mostrando un 0% de sobrevivencia, solo en la especie de Heteropsis flexuosa.
4. El factor Intensidad de luz, es determinante en la propagación por estacas de
ambas especies ya que las estacas que fueron sembradas y expuestas
60
directamente al sol, sobrevivieron muy pocas y la presencia de raíces casi fue
nula, esto demuestra que para la propagación de esta especie el factor
intensidad de luz es factor limitante.
61
VIII. RECOMENDACIONES
1. Se recomienda utilizar para la propagación de estas dos especies el
tratamiento T2= a1, b1, c1, que obtuvo mejores resultados durante este
trabajo, es decir sembrar las estacas provenientes de tallos jóvenes y bajo
sombra.
2. Se recomienda que en trabajos posteriores no sacar las estacas de las
camas para no alterar el crecimiento de la planta.
3. La propagación por estacas no debe realizarse exponiendo éstas
directamente al sol; debe realizarse bajo sombra, ya que el factor Luz es
determinante en su crecimiento.
4. En lo sucesivo, probar hormonas estimuladoras de enraizamiento en cualquier
ensayo de germinación con estacas de alambre y cesto tamshi.
5. Probar la propagación de alambre y cesto tamshi por micropropagación
donde se tenga que ensayar diferentes medios de cultivo.
62
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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bissectus (vell) Harling, especie de importancia económica en la Amazona
Peruana.
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tamshi” Thoracocarpus bissectus (vell, Harling). Folia amazónica 11(1-2):
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63
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resumen: IX congreso nacional de botánica. Iquitos- Peru. 267 Pág.
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ANEXO 2: Ficha de Registro de Datos
Especie : _________________________________________
Fecha : _________________________________________
Tipo de Propágulo : _________________________________________
Nº Propágulo Sobrevivencia Nº de Brotes
Nº de Raíces Nº
Hojas
Altura del
Brote
74
ANEXO 3: Galería Fotográfica
Foto 1: Selección de las Plantas
Madres
Foto 2: Raíces de
Thoracocarpus bissectus
Foto 3: Raíces de Heteropsis
flexuosa
Foto 4: Preparación de sustrato