nombre del proyecto: docencia, investigaciÓn y …

Universidad Autónoma de Sinaloa Dirección General de Servicio Social

DOCENCIA, INVESTIGACIÓN Y SERVICIO DE DIAGNÓSTICO CLÍNICO VETERINARIO

MC. José Johanatan Valdez Sandoval

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NOMBRE DEL PROYECTO: DOCENCIA, INVESTIGACIÓN Y SERVICIO DE DIAGNÓSTICO CLÍNICO

VETERINARIO

CICLO: 2020 – 2021-2

MODALIDAD: UNIDISCIPLINAR

ELABORADO POR: López Navarro Lourdes Deyanira

BRIGADISTA: López Navarro Lourdes Deyanira

ASESOR DE PROYECTO: MC. José Johanatan Valdez Sandoval

Culiacán Rosales, Sinaloa; 19 de marzo de 2021.




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I. Título del proyecto de servicio social DOCENCIA, INVESTIGACIÓN Y SERVICIO DE DIAGNÓSTICO CLÍNICO VETERINARIO

II. Antecedentes El Laboratorio Clínico es el espacio físico donde se efectúan una gran diversidad de procedimientos médicos, científicos, técnicos, etc., que en conjunto representan un valioso recurso de la clínica al documentar el estado de salud (Medicina Preventiva) o de enfermedad (Medicina Curativa). Existe una única razón por la que el médico veterinario envía la muestra al laboratorio, y esta es que necesita información para tomar decisiones adecuadas; ya que el clínico solo observa en el paciente una serie de manifestaciones clínicas, como signos, síntomas y/o síndromes, que no puede cuantificar por lo que deben ser traducidos a datos concretos.

La Patología Clínica, Análisis Clínicos o en palabras más sencillas, el Laboratorio Clínico; no es más que la aplicación de los métodos de laboratorio y el uso de los resultados en la solución de los problemas clínicos.

En los últimos años ha venido creciendo el uso del Laboratorio Clínico, como una herramienta de diagnóstico como auxilio al clínico. La correlación de los resultados de laboratorio, junto con los del historial clínico del paciente permiten al clínico llegar a un diagnóstico más acertado, y tomar en cuenta las diferentes variables, para adoptar la mejor terapia de respuesta a lo que afecta al paciente.

La función primordial del Laboratorio Clínico, es la de “efectuar determinaciones analíticas cualitativas y cuantitativas de líquidos orgánicos, como: sangre, orina y otras sustancias”. Con objetivos específicos de: detectar enfermedades asintomáticas, confirmar el diagnóstico, establecer el pronóstico, evaluar el tratamiento, proporcionar información estadística epidemiológica, detección, manejo y control de problemas de salud pública, entre otros (Gallo, 2014).

La escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia nace en 1979 como fruto de la política de diversificar la oferta educativa de la Universidad a través de crear opciones de nivel licenciatura distinta a las tradicionales y acorde con los planteamientos generales de la saciedad civil y los sectores productivos de la entidad. En sus inicios, ésta formó parte del proyecto Conjunto de Estudios Profesionales para la Salud, cuyo propósito central era agrupar las carreras relacionadas con este campo. Sin embargo, la idea no cristalizó, y las escuelas circunscritas alrededor del proyecto tuvieron que separarse. Durante el mismo año, como parte importante de los trabajos, se celebra en la ciudad de Culiacán el Encuentro Nacional de Escuelas de Medicina Veterinaria y




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Zootecnia con Sistema Modular, el cual respalda y hace los últimos ajustes al proyecto; además, se compromete a dotar a la escuela con la planta básica de maestros formados en este sistema de enseñanza aprendizaje. La creación de este centro se basa en estudios de la práctica profesional del médico veterinario, el mercado ocupacional y las prospectivas de desarrollo de la actividad ganadera en el estado, caracterizadas éstas a partir de las proyecciones realizadas por los propios productores, organismos federales y estatales vinculados con el sector pecuario.

El proyecto académico de la EMVZ se desarrolló por medio del Plan de Perfeccionamiento del Personal Académico en forma conjunta con la Unión Ganadera Regional de Sinaloa, el Colegio de Médicos Veterinarios Zootecnistas de Sinaloa y la Asociación Nacional de Escuelas de Medicina Veterinaria con Sistema Modular. En el ciclo escolar 1992-1993, el plantel realiza un foro de Evaluación y transformación curricular con la perspectiva de renovar su estructura académico-administrativa en función de la demanda de un entorno social cambiante. El Plan de Estudios quedó constituido por una combinación de los sistemas modular y de asignaturas. En 1998 se dio una nueva restructuración, quedando bajo la misma modalidad combinada.

El área de los laboratorios inicia a la par con el seguimiento de la escuela y entre ellos se encuentra el Laboratorio de Análisis Clínicos, el cual fue fundado por los Q.F.B. Jesús Oscar Espinoza de los Monteros Méndez y María Rosario Quintero Verdugo, ambos jubilados de la Universidad Autónoma de Sinaloa, marcando así la importancia de los Análisis clínicos para la realización de un diagnóstico, brindando así los diferentes examen clínicos como son biometrías hemáticas, EGOS, diferenciación de blancos, etc., para saber el estado físico del animal.

Para 1984 se inicia la construcción de la Unidad de Laboratorios, iniciando sus actividades primeramente los laboratorios de: Parasitología, Alimentos y Toxicología. Para 2005 el Laboratorio de Análisis Clínicos se independiza del Laboratorio de Microbiología y se encuentra en el lugar que actualmente ocupa. Del año 2007 al presente se encuentra la Q.F.B Guadalupe Estrada Sánchez. Del 2012 al 2017 se encuentra al MC. Alberto Garfio Romero. Finalmente, en 2017 se integra MC. José Johanatan Valdez Sandoval.

III. Justificación del proyecto EL proyecto tiene la finalidad de apoyar al Laboratorio de Análisis Clínicos en todas las actividades que se realice en dicho lugar, al igual que crea interés en el brigadista hacia esta rama de la medicina veterinaria, enseñándole los diferentes exámenes clínicos que se pueden hacer para llegar a un diagnóstico definitivo.




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IV. Objetivos General Lograr un manejo adecuado del equipo con el que cuenta el Laboratorio de Análisis Clínicos al igual que aprender los procedimientos de los diferentes exámenes clínicos que ofrece el mismo y saber interpretar sus resultados. Del mismo modo apoyar a los maestros en la impartición de sus prácticas a sus alumnos de Bioquímica.

Específicos

Estandarizar las técnicas y equipo del laboratorio

Apoyar con la limpieza del material del laboratorio e inventario del mismo.

Apoyo al docente con las prácticas semestrales.

Interpretación de los resultados.

V. Metas

Manejo correcto de los equipos y procedimientos del laboratorio.

Interpretar resultados.

Impartir prácticas a los alumnos.

Realizar mínimamente 60 biometrías hemáticas en un periodo de 6

meses.




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VI. Localización geográfica del proyecto Las actividades se realizarán principalmente en el laboratorio de Análisis Clínicos de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad

Autónoma de Sinaloa, ubicada en km. 3.5, salida carretera internacional a 1 km al oeste del mercado de abastos, Fraccionamiento San Benito, 80260 Culiacán, Sinaloa.

VII. Actividades a realizar

Mantenimiento y limpieza del laboratorio.

Elaboración de reportes.

Capacitación.

Inventario del equipo y material.

Colaboración de actividades.

Biometrías hemáticas.

Conteo de leucocitos.

Examen General de Orina.

Diferenciación celular.




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VIII. Recursos La Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia es quien se encarga de

suministrar los recursos, materiales y equipo para que el laboratorio labore como

es debido. Parte de los recursos se consiguen gracias a los servicios que el

laboratorio cobra.

IX. Financiamiento

El financiamiento es a través de la propia facultad, teniendo ingreso por el trabajo

ofrecido en el mismo laboratorio.

X. Metodología.

Lectura del procedimiento para las técnicas empleadas en el

laboratorio.

a) Medición de hematocrito

Biométrica hemática manual

- Homogenizar las muestras a procesar en el agitador automático durante 3-5

minutos.

- Por absorción, se vierte la sangre en un capilar con heparina, del lado de la

marca, hasta la mitad o ¾ del largo del capilar.

- Con el uso de fuego se sella el extremo limpio del capilar, hasta donde indica

la marca.

- Tras esperar a que se enfrié se asegura que este bien sellado inclinando la

muestra, si esta no se mueve de su lugar significará que está correctamente

sellado.

- Se ingresa la muestra a la microcentrífuga, agregando su contrapeso

correspondiente.

- Se programa el inicio del ciclo con un tiempo de 5 minutos.




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- La muestra ya centrifugada se coloca sobre el medidor de hematocrito,

acomodando sobre la línea roja la división del paquete eritrocitario con el

paquete de glóbulos blancos (división buffycoat).

- Se ajusta la base circular debajo de la muestra, el extremo derecho se alinea

con el inicio del paquete eritrocitario y el extremo izquierdo con el final del

plasma de la muestra. Ambas líneas deben de estar ajustadas a la vez. Abajo

se muestra el porcentaje de hematocrito.

Biometría hemática automática

- Homogenizar las muestras a procesar en el agitador automático durante 3-5

minutos.

- Prepara el equipo automático, se retira la tapa del tubo contenedor de

capilares y con el uso de guantes y un gancho se retira la cubierta interna del

mismo, se deposita dónde estaba el tubo en la caja donde venía.

- Golpeando delicadamente el tubo, se inclina levemente para que los

capilares sean expuestos y poder tomar uno con pizas de puntas gomosas,

evitando la contaminación del seleccionado y los otros.

- Se coloca el capilar en la pipeta de capilares del lado de las marcas verdes

que tiene para guía.

- Se toma la muestra en el capilar, asegurando de no tener burbujas y que

llegue a la marca negra.

- Se apunta el lado expuesto del capilar levemente arriba y con un movimiento

rápido y firme se limpia el excedente exterior del capilar, evitando que por

absorción se pierda el contenido interior.

- Delicadamente, se pone la tapa respectiva del capilar, usando solo el peso

de la pipeta y con un movimiento preciso se retira el capilar con todo y tapa.

- Sujetando el capilar de la parte más próxima a la pipeta, se extrae de la pipeta

y se gira entre los dedos índice y pulgar durante unos 20 a 30




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- segundos para mezclar la muestra con el contenido del capilar, teniendo

sumo cuidando de que no caiga, se toque la parte central, se contamine o

dañe de alguna forma.

- Se coloca el flotador del capilar acostando el capilar apuntando al flotador

para que este se introduzca utilizando solo el capilar para maniobrar. En este

paso, el capilar se encuentra en una posición delicada, donde puede

fragmentarse por la presión que se ejerce al separar el capilar junto al

flotador. De fracturarse el capilar, se tendrá que iniciar el proceso desde el

inicio con material nuevo.

- Si el embolo no cede se usa un pequeño gancho metálico para aflojarlo un

poco, esto es como última opción.

- Se centrifuga la muestra, poniendo el lado de la tapadera al borde y el lado

del flotador al centro, durante 5 minutos.

- Tras centrifugar se envía la muestra al lector automático previamente

calibrado, asegurando de que el lector indique la especie que se pretende

analizar.

a) Conteo de glóbulos blancos

- Preparar la cámara de Neubauer colocando el cubre objeto de la cámara

sobre las 2 áreas centrales.

- Tras homogenizar la muestra en el agitador automático se utiliza una pipeta

de lisis con un flotador blanco (la de flotador roja es para eritrocitos), con una

manguera de plástico en el extremo superior (donde no están las líneas para

medir), y se absorbe la muestra hasta la primera marca del tubo de lisis, es

aproximadamente hasta la mitad del largo inferior del tubo.

- Con cuidado, se absorbe líquido de Turk hasta que llegue a la marca de la

mitad superior del tubo de lisis, llenando la zona ancha del tubo.

- Se agita levemente y luego se desechan las primeras 3 gotas del tubo.




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- Por absorción, se vierte el contenido del tuvo en una de las 2 áreas de la

cámara hasta que esta se llene.

- Cada cámara de Neubauer tiene la capacidad de albergar 2 muestras.

- Se procede a observar con el uso del microscopio a 4X.

- Localizando los cuadrantes (líneas verticales y horizontales que forman

cuadros) se realiza el conteo de celular blancas en los 4 cuadrantes (4

esquinas, 1 cuadro grande, 16 cuadros pequeños).

- Se suman los 4 conteos y el resultado se multiplica por 50, dando un

aproximado del total de células blancas en el individuo del cual proviene la

muestra.

b) Diferencias de glóbulos blancos

- Se coloca la muestra en el agitador automático durante 3 a 5 minutos.

- Se prepara una gradilla para colocar la muestra.

- Se pone una servilleta o sanita sobre el área donde se trabajará y colocar la

muestra ellas.

- No olvidar el uso de guantes. Se preparan 2 porta objetos, 1 esmerilado para

marcar e identificar cada muestra a analizar (en caso de ser más de 1).

- Con un palito de madera se toma una gota de sangre y se coloca a un

costado de la parte esmerilada del porta objetos.

- Con el segundo porta objetos, uno de los bordes pequeños se coloca sobre

la muestra

- Sin ejercer demasiada fuerza, con un movimiento firme y moderadamente

rápido se extiende la muestra por la laminilla tratando de que quede con el

cuerpo definido de un frotis.




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c) Tinción

1. Se emplea alcohol metílico como fijador del frotis, sumergiéndolo durante 10

a 15 segundos y esperar a que se seque agitándolo ligeramente con las

manos, cuidando de que no resbale o la muestra sea dañada.

2. Realice una inmersión del frotis en el reactivo Eosina de 10 a 15 segundos.

3. Enjuague el frotis con agua destilada retirando el excedente sin que el flujo

de agua toque la muestra, solo la parte trasera.

4. Realice una inmersión del frotis en el reactivo Azul de Metileno durante 10 a

15 segundos.

5. Enjuague el frotis de la misma forma antes mencionada para retirar el exceso

y esperar a que seque agitándolo con las manos, cuidando de que no resbale

o la muestra sea dañada.

d) Microscopio

- La muestra ya teñida y seca se coloca en el microscopio, cuidando que el

lado donde está la muestra coincida en el lado superior del porta objetos.

- Con la mira de 10X se ajusta para una correcta visualización de las células.

- Se cambia a 40X y se vuelve a ajustar para observar adecuadamente las

células.

- Finalmente, antes de colocar la mira de 100X, se agrega un poco de aceite

de inmersión.

- Se ajusta la mira y se procede a contar 100 células blancas (o 50, para luego

multiplicar por 2).

- Tras contar 100 células (especificando cuantas células de cada tipo), el

número resultante es el porcentaje aproximado de las células blancas en el

individuo.




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Capacitación del funcionamiento de equipos utilizados.

Se realiza una breve explicación del funcionamiento de cada equipo, y de las

partes que los componen. Al final se procesa una muestra en los diferentes

equipos para entender mejor dicho funcionamiento.

Manejo adecuado de los reactivos químicos del laboratorio.

Se realizará una investigación del uso y contenido químico de cada reactivo

para saber con exactitud su clasificación y grado de peligrosidad, y así saber

cómo manipularlo y en donde utilizarlo al igual de saber cómo actuar en caso

de un accidente.

Limpieza y mantenimiento del laboratorio antes y después de casa

actividad realizada.

Todos los viernes se llevará a cabo un roll de limpieza en el Laboratorio de

Análisis Clínicos, empezando con la limpieza de los equipos con alcohol al

70% al igual con la mesa central. Después se lavará el material que haya

sido utilizado, y al mismo tiempo se lavará la tarja. También se checarán los

contenedores de PRBI para ser trasladados al cuarto de los residuos

peligrosos en caso de que ya haya llegado a su capacidad, por último, se

revisara que no quede ningún equipo conectado.

Colaboración en las actividades realizadas en el laboratorio en apoyo a

los docentes.

En la ayuda con las actividades previamente nos informan de las prácticas

que se llevaran a cabo para tener una idea en lo que vamos apoyar y al igual

estudiar sobre dicho tema ya que nosotros instruiremos al alumnado para la

realización de dicha práctica.




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XI. Supervisión y asesoría La supervisión estará a cargo del MC José Johanatan Valdez Sandoval y el/la

auxiliar, del Laboratorio de Análisis Clínicos. La asesoría la llevará a cabo por

el/la misma auxiliar de laboratorio

XII. Evaluación La evaluación se realizará cada mes, mediante la entrega de reportes mensuales con base en las actividades realizadas y su productividad y beneficio tanto para la sociedad como para el propio laboratorio, a lo largo del desarrollo del proyecto del Servicio Social.

XIII. Resultados esperados Mes 1.- Capacitación y mantenimiento del Laboratorio de Análisis Clínicos y colaboración en las actividades que se presenten. Realización de inventario al inicio de semestre. Mes 2.- Mantenimiento del Laboratorio y colaborar en las actividades que se presenten. Auxiliar de prácticas en Unidad de Aprendizaje de Bioquímica. Mes 3.- Capacitación y mantenimiento del Laboratorio de Análisis Clínicos y colaborar en las actividades que se presenten. Auxiliar de prácticas en Unidad de Aprendizaje de Patología Clínica, así mismo participar en un proyecto de hato ganadero de bovino. Mes 4.- Mantenimiento del Laboratorio y colaborar en las actividades que se presenten. Auxiliar de prácticas en Unidad de Aprendizaje de Bioquímica. Mes 5.- Mantenimiento del Laboratorio y colaboración en las actividades que se presenten. Auxiliar de prácticas en Unidad de Aprendizaje de Bioquímica. Mes 6.- Mantenimiento del Laboratorio y colaboración en las actividades que se presenten. Elaboración del informe final de resultados.

XIV. Fuentes

Gallo, C. (julio de 2014). MANUAL DE DIAGNOSTICO CON ENFASIS EN

LABORATORIO CLINICO VETERINARIO. Obtenido de UNIVERSIDAD

NACIONAL AGRARIA: http://repositorio.una.edu.ni/2745/1/tnl70g172m.pd.

http://repositorio.una.edu.ni/2745/1/tnl70g172m.pd

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XV. Cronograma de actividades



OBJETIVO ESPECIFICO

ACTIVIDAD

META

AVANCE DE META % MESES

RESPONSABLE (S)

FEB MAR ABR MAY JUN JUL/AGO

1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 1 2

Estandarizar las técnicas y equipo

del laboratorio

Biometrías hemáticas

Lograr manejar con éxito el

equipo

4.5

9

13

.5

18

22

.5

27

31

.5

36

40

.5

45

49

.5

54

58

.5

63

67

.5

72

76

.5

81

85

.5

90

94

.5

10

0

Responsable de la unidad receptora:


Asesor: MC. José Johanatan Valdez

Sandoval

Brigadista:

López navarro Lourdes Deyanira

EGO

25

50

75

10

0

Conteo de blancos

5.8

11

.6

17

.4

23

.2

29

34

.8

40

.6

46

.4

52

.2

58

63

.8

69

.6

75

.4

81

.2

87

92

.8

10

0

Diferenciación celular

Aprender las técnicas de cada examen clínico

4.5

9

13

.5

18

22

.5

27

31

.5

36

40

.5

45

49

.5

54

58

.5

63

67

.5

72

76

.5

81

85

.5

90

94

.5

10

0

Apoyar con la limpieza del material del laboratorio e inventario del

mismo.

Mantenimiento y limpieza del laboratorio

Llevar a cabo las medidas de

bioseguridad

4

.5

9

13

.5

18

22

.5

27

31

.5

36

40

.5

45

49

.5

54

58

.5

63

67

.5

72

76

.5

81

85

.5

90

94

.5

10

0

Apoyo al docente con las prácticas

semestrales.

Auxiliar de prácticas

Lograr apoyo docente

4.5

9

13

.5

18

22

.5

27

31

.5

36

40

.5

45

49

.5

54

58

.5

63

67

.5

72

76

.5

81

85

.5

90

94

.5

10

0

Auxiliar de proyectos

20

4

0

60

80

10

Exponer las actividades

realizadas durante el servicio social

Búsqueda de literatura para elaboración de

informes y reporte final

Entregar

documentos de validación de actividades realizadas durante el

servicio social

50

10

0

Realización y presentación de

informe final

50

10

0

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XVI. Programa de actividades/carta descriptiva

Cuadro de actividades

Proyecto Recursos

Objetivos Metas Actividades Humanos Materiales Económicos

Colaboración -Llevar a -Mantenimiento Docentes Se plantearan El en todas las cabo y limpieza del académicos actividades financiamiento actividades práctica las laboratorio. especializados semestralment es a través de de trabajo estudiantiles -Colaboración en el área de la e en el que se la propia del en tiempo y de actividades. patología solicitara el facultad, laboratorio y forma. -Elaboración de clínica y uno o material teniendo al mismo -Procesar reportes. dos brigadistas necesario para ingresos por el tiempo las -Auxiliar de de S.S. el desarrollo de trabajo capacitarse muestras de prácticas. las actividades ofrecido por el durante el manera -Auxiliar de de servicio, mismo desarrollo de responsable proyectos. investigación y laboratorio. las diferentes y certera. -Biometrías docencia.

tareas que -Colaborar hemáticas.

se en los -Conteo de

desarrollan proyectos leucocitos.

en el que se -Diferenciación

Laboratorio presenten celular.

de Análisis durante la

Clínicos de la estadía en

Facultad de el

Medicina Laboratorio

Veterinaria y de Análisis

Zootecnia de Clínicos.

la -Mejorar las

Universidad técnicas

Autónoma de aprendidas

Sinaloa. para poder

realizar un

trabajo más

eficaz.

Nombre y firma de responsables

BRIGADISTA ASESOR DE PROYECTO López Navarro Lourdes Deyanira MC. José Johanatan Valdez Sandoval

nombre del proyecto: docencia, investigaciÓn y …

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