malaria
DESCRIPTION
Descripción de la epidemiología, etiología, presentación clínica, diagnóstico y tratamiento de la infección por el parásito plasmodiumTRANSCRIPT
MALARIA
Herberth MaldonadoFELLOW INFECTOLOGÍA PEDIÁTRICA
UNIVERSIDAD SAN CARLOS DE GUATEMALA
Plasmodium
Protozoo del grupo ApicomplexaCuatro especies de Plasmodium afectan
al ser humanoP.vivaxP.falciparumP.ovaleP.malariae
Costos Incrementa la morbilidad y mortalidad asociada a
otras enfermedadesImpide el crecimiento económico Efectos adversos en productividad, ausentismo,
mortalidad prematura y costos médicosUn episodio de malaria provoca una pérdida
estimada de 5 a 20 días de trabajoUna familia en una familia que se dedica a la
agricultura puede ser 60% menos productiva
Historia
• Malaria del italiano “mal aria” • Mosquitos hace 30 millones de años• Descripción de signos y síntomas en antiguos
escritos hindúes y chinos• En 1700 inició el tratamiento con la raíz del árbol
Cinchona• En 1800 fue descrito el ciclo de transmisión a
travéz de vector por los premios nobel Laveran y Ross
Metas del Milenio 6.C Haber detenido y comenzado a reducir la incidencia
de malaria para el año 2015
T³TestTreatTrack
Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
0
500
1000
1500
2000
2500
3000
3500
4000
4500
Casos
6361
52 62 31 4683
10099 90 112 101 95 100 107 71 101
104
123
124
239 228 217 217 201 199 170 188 121189
211308
1,350
1,417
1,3931,031
890 881
505 447 430
1,102
2,474
2,041
2,4372,549 2,446
2,7992,661
1,681
1,483
2,448
1,608
1,208
1,420
1,517
2,775
3,844
3,472 3,545
4,445
En abril del 2006 inicia la distribución de PIIs en las Áreas de Salud del Proyecto Malaria
GRÁFICA No. 1: Casos confirmados de malaria por mes en las Áreas del Proyecto Malaria 2005-2009 y enero a julio 2010
Año
2005
2006
2007
2008
2009
2010
FUENTE: Direcciones de Área de Salud, Coordinación de ETV
Casos confirmados de malaria de las 5 áreas de salud
Año 2005 2006 2007 2008 2009 2010Ene-agosto
Casos 31504 26129 10350 2304 1203 467
Áreas de salud de alta transmisión
1 Escuintla
2 Izabal
3 Retalhuleu/Quetzaltenango
4 Suchitepéquez
5 Alta Verapaz
6 Chiquimula/Zacapa
7 Baja Verapaz
8 San Marcos
9 Ixcán
10 Peten Norte/Peten Suroriente
11 Peten Suroccidente
Áreas de salud de pre eliminación
12 Huehuetenango
13 Quiche/Ixil
14 Jutiapa/Jalapa/El Progreso
15 Santa Rosa/Guatemala Nororiente/Guatemala Noroccidente/Guatemala Sur/Guatemala Central
16 Solola/Chimaltenango
Vías de transmisión• Picadura del mosquito
hembra del género Anopheles infectado
• Transfusión de sangre infectada.
• Agujas y jeringas contaminadas.
• Transmisión congénita
Periodo de incubación
• El lapso entre la picadura del mosquito infectivo y la
aparición de los síntomas es de:
– Plasmodium vivax: 12 a 18 días
– Plasmodium falciparum: 9 a 14 días
– Plasmodium ovale: 12 a 18 días
– Plasmodium malariae: 18 a 40 días
Resistencia Genética
• Células falciformes (Hemoglobina S,E,C)
• Talasemias
• Déficit glucosa 6-fosfato-deshidrogenasa
• Negatividad antígeno Duffy
• Ovalocitosis asiática
Cuadro Clínico
• Malestar general• Cefalea• Fatiga• Dolores abdominales y
musculares• Fiebre y escalofríos• Dolores torácicos• Nauseas
• Vómitos• Diarreas• Anemia• Esplenomegalia
Malaria Severa por P.falciparum
• Malaria Cerebral• Distrés respiratorio • Postración• Hiperparasitemia
(>500,000/mm³ ~ 10%)• Anemia severa (< 5
g/dl)• Hipoglicemia ≤ 40mg/dl• Ictericia
• Insuficiencia Renal: anuria ≥ 24 horas
• Hemoglobinuria• Choque• Imposibilidad de beber
y alimentarse• Hiperpirexia (≥40%)
Severe falciparum Malaria. WHO. Trans R Soc Trop Med Hug. 2000;94(supp 1)
Mandell, Bennett, & Dolin: Principles and Practice of Infectious Diseases, 6th ed
Sindrome palúdico por P.vivax y P.ovale
• Anemia atribuible a la parasitemia• Hiperesplenismo con riesgo de rotura tardía
del bazo• Recaída, hasta 3 a 5 años después de la
infección primaria asociada a estadio hepático latente (hipnozoíto)
Malaria congénita
• Raro• Causados en su mayoría por P.vivax y
P.falciparum• Manifestaciones similares a sepsis neonatal,
con fiebre y síntomas inespecíficos como falta de apetito, irritabilidad y letargo
Grupos de Riesgo• Primoinfección• Niños• Embarazadas• Inmunocomprometidos
– Asplenia funcional
Hallazgos de Laboratorio• ↓ Hb• ↑ LDH• RGB ↑ ↓• Plaquetas (≤ 70,000)• Acidosis metabólica• Hiperlactatemia• ↑ creatinina
Diagnóstico
• Microscopia de Frotis sanguíneo• Prueba rápida• Reacción en cadena de polimerasa
Tipo de extendidos sanguíneos
Existen dos tipos:
1. Delgado o frotis 2. Grueso o gota gruesa
Preparación del material
• Alcohol etílico al 70% (para desinfectar)
• Algodón o gasa (Para limpiar el área)
• Lancetas nuevas• Láminas porta-objetos (Limpias)
• Guantes• Bata• Lápiz (Para rotular la lámina)
• Boletas de solicitud de examen
Procedimiento
• En niños pequeños se puede usar el dedo gordo del pie o el talón, también puede usarse el lóbulo de la oreja
Procedimiento…
• Limpiar el dedo con una torunda de algodón con alcohol
• Dejar secar el alcohol del dedo.
• Sostener el dedo del paciente para favorecer la salida de la sangre.
Procedimiento… Dejar salir las primeras 3 gotas de
sangre y removerlas con algodón seco
Colocar dos gotitas de sangre sobre el portaobjetos
Limpiar la sangre del dedo con una torunda de algodón
Preparación de frotis
• Sobre la segunda gota de sangre, colocar otra lámina porta objeto en un ángulo de 45°.
• Extender rápidamente a lo largo de la lámina porta objeto que tiene las muestras.
Gota gruesa
• Esparcir rápidamente la gota de sangre y extenderla uniformemente hasta formar una gota gruesa de 1 cm de lado o de diámetro. De preferencia, realizar el homogenizado de la muestra en una sola dirección.
Lámina con gota gruesa y frotis
Tratamiento antes de colorear
• Las muestras deben estar bien secas antes de colorear.– Frotes: cubra con alcohol metílico absoluto por 30
seg.
– Gota gruesa: No necesita fijación. En caso de gotas gruesas muy viejas o muy gruesas, necesitan hemolizarse
Procedimiento de coloración
Procedimiento de coloración
Características morfológicas de Plasmodium vivax
Características morfológicas de Plasmodium falciparum
Pruebas RápidasDeterminan antígenos de malaria
Usos:– Áreas con dificultad de acceso a un
diagnostico microscópico oportuno.– Situaciones epidemiológicas.
Características de Pruebas rápidas
• Especificidad: detecta la presencia de pLDH, un enzima producida tanto por las formas sexuales como asexuales del parásito. No existe reacción cruzada con el LDH humano ni el factor reumatoideo.
• Sensibilidad: detecta niveles periféricos de parasitemia mayores de +/2.
Ventajas
– Buena especificidad (97.3-99.0 %) y sensibilidad (90.5-92.0%).
– Útil en comunidades rurales donde no se cuenta con microscopio.
– Puede ser usado como prueba confirmatoria de gota gruesa en caso de dudas por falta de entrenamiento del microscopista.
– Son de fácil uso e interpretación y no requieren microscopios.
Ventajas
– Pueden detectar una infección cuando los parásitos se encuentran retenidos en lo vasos sanguíneos.
– Pruebas estables a 2-30°C y a un alto porcentaje de humedad.
– En vista de que la enzima es producida solamente por parásitos vivos, se postula que esta prueba rápida es útil para evaluar la respuesta a la terapia antimalárica.
Desventajas– No permiten la cuantificación parasitaria.
– Detecta parasitemias por encima de 100 parásitos / uL sangre ó +/2.
– El umbral de detección de estas pruebas disminuyen en parasitemias bajas.
Desventajas
– Detecta antígenos producidos por gametocitos inmaduros, que pueden persistir posteriormente al tratamiento, lo cual puede llevar a una falsa interpretación del resultado.
– No es posible diferenciar especies entre P. vivax, P. malariae y P. ovale y no diferencia infecciones mixtas.
– Tiene mayor especificidad que sensibilidad
Otras pruebas diagnósticaspara malaria
• Inmunofluorescencia indirecta (IFI)• PCR
Pdrprocedimiento
Diagnóstico Diferencial• Influenza• Dengue• Leptospirosis• Gastroenteritis• Fiebre Tifoidea• Meningitis bacteriana• Fiebre reumática• Choque séptico
TratamientoTipo Dosis Adulto Dosis Pediátrica
P.falciparum o especie no identificada
Cloroquina600 mg base PO inmediatamente luego 300 mg base po a las 6, 24, and 48 hours Dosis total: 1,500 mg base
OR Hydroxychloroquine 620 mg base PO inmediatamente seguido de 310 mg base PO a las 6, 24, and 48 horas Dosis total: 1,550 mg
Cloroquina10mg/kg PO inmediatamente5 mg/kg a las 6, 24 y 48 horas
Hidroxicloroquina10mg/kg PO inmediatamente5 mg/kg a las 6, 24 y 48 horas
Dosis total:25 mg/kg
TratamientoTipo Dosis Adulto Dosis Pediátrica
P.vivax, ovale, malariae no complicadoSensible a cloroquina
Cloroquina600 mg base PO inmediatamente luego 300 mg base po a las 6, 24, y a las 48 hours Mas Primaquina 30 mg PO al día por 14 días
O Hydroxychloroquine 620 mg base PO inmediatamente seguido de 310 mg base PO a las 6, 24, and 48 horasMas Primaquina 30 mg PO al día por 14 días
Cloroquina10mg/kg PO inmediatamente5 mg/kg a las 6, 24 y 48 horasMas Primaquina 0.5 mg/kg PO al día por 14 días
Hidroxicloroquina10mg/kg PO inmediatamente5 mg/kg a las 6, 24 y 48 horas
Mas Primaquina 0.5 mg/kg PO al día por 14 días
