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EVALUACION DEL POTENCIAL DE REGENERACION DE DIFERENTES GENOTIPOS
COLOMBIANOS Y COMERCIALES DE CACAO (Theobroma cacao L.) VIA EMBRIOGENESIS
SOMATICA
Contexto global
• Aumento de la demanda de mercados como China, 5% anual.
• Cambios dramáticos en las preferencias del consumidor.
• Crecimiento del 10% en los precios de los granos de cacao en los últimos años.
• La existencia de un déficit de 160.000 toneladas de cacao en grano en 2014.
Contexto colombiano
• Posición geográfica estratégica.
• Ganador de Colombia "Salon du Chocolat" 2013 y 2014, debido a las propiedades de calidad, sabor y aroma de las variedades colombianas.
• El proceso de paz requiere el desarrollo de una agricultura sostenible y el cambio de cultivos ilegales por el cacao.
Renovar 80,000
hectáreas
Incrementar cultivos 50,000
hectáreas
143 millones de
plantas propagadas
Hoy Tiempo
Métodos biotecnologicos
Nuevo sistema
Propagación
convencional
Injertación
Propagación por semilla
Sistemas Tradicionales
De
sem
pe
ño
Ventajas de la tecnología
3 million plantas/año
A través de biotecnolgía
1 million plantas/año
A través métodos convencionales
Comparación métodos
El cultivo de tejidos ha contribuido a resolver aspectos fundamentales en biología vegetal, como la teoría celular y la totipotencia. Agrupa un conjunto de herramientas
biotecnológicas importantes.
Somatic embryogenesis (SE)
Baurens et al. 2004; Monteuuis et al. 2008; Smulders and de Klerk 2011; Zheng et al. , 2013
Es el proceso a través del cual un individuo se regula a partir de
tejidos somáticos mediante la
diferenciación de un embrión.
Una propiedad que es única para los
organismos vegetales y se presenta con mayor facilidad en explantes
muestreados de tejidos inmaduros e individuos relativamente jóvenes
Este proceso ocurre espontáneamente in
vivo o puede inducirse in vitro
Historia de la embriogénesis somática
Haberlandt 1902
Warris 1950
Miettinen 1952
Steward &Reinart 1958
Loyola-Vargas et al ., 2016
Historia de la embriogénesis somática en T. cacao
• Embriones cigóticos: Esan, 1977; Pence et al.., 1979, 1980; Kononowicz 1984; Santos, et al., 1989
• Tejido nucelar: Sandahl et al., 1989; Chatelet et al.., 1992; Figueira and Janick, 1993
• Hojas: Litz, 1986
• Botones florales: Sandahl et al.., 1989; Lopez-Baez et al., 1993
MS media (Murashige & Skoog,
1962) and DKW media (Driver
& Kuniyuki, 1984)
Embriogenesis somática primaria
Botones florales
• Sandahl et al., 1989
• Lopez-Baez et ai., 1993
• Alemanno et al., 1996
• Alemanno et al., 1997
• Li et al., 1998
• Fontanel et al., 2002 (INDI)
• Maximova et al., 2002 (PCG)
• Tan et al., 2003
• Silva et al., 2005
• Quiannoo et al., 2008
• Monsalve et al., 2005
• Urrea et al., 2011
Embriogénesis somática secundaria
• Alemanno et al., 1997
• Maximova et al., 2002 (PCG)
• Garcia et al., 2016
• Urrea et al., 2011
Gallego et al., 2016 Henao et al., 2018
Línea investigación propagación Cacao (Theobroma cacao) 2006-2018
Producción de 5 millones plantas/año
1ra Etapa
•Implementación de procesos y técnicas biotecnológicas para la producción de cacaos con alto contenido de polifenoles
•3 años. Ministerio de Agricultura
2da Etapa
•Producción de embriones somáticos de cacao en Sistemas de Inmersión Temporal (RITA) procedentes de material elite
•6 meses
3ra etapa
•Producción masiva de material elite de cacao (Theobroma cacao) a través de procesos biotecnológicos
•9 meses. Colciencias
Etapa final
•Desarrollo e Implementación de estrategias biotecnológicas para el mejoramiento de la propagación de material élite de cacao en Antioquia.
•3 años. Sistema General de Regalias
2008
2011
2012
2015
2016
2018
2021
Objetivo : Evaluar el potencial de regeneración in vitro de clones universales y
regionales de cacao con los protocolos descritos por Li et al., 1998 y Fontanel et
al., 2002 con algunas modificaciones.
Características Clones
CCN 51 TSH 565 EET8 ICS 35 ICS 95 SYS 12 SYS 13 SYS- 16 SYS 24
Origen Ecuador Trinitario Costa Rica Trinitario Trinitario Región
Yariguies
(Santander)
Región
Yariguies
(Santander)
Región
Yariguies
(Santander)
Región
Yariguies
(Santander)
Productividad 1441
kg/ha/año
1212
kg/ha/año
1235
kg/ha/año
1598
kg/ha/año
902
kg/ha/año
>2000
kg/ha/año
>2000
kg/ha/año
>2000
kg/ha/año
1000 – 2000
kg/ha/año
Morfología Fruto oblongo,
ápice obtuso,
rugosidad
intermedia
longitud 21,4
cm aprox, peso
763,5 g aprox.
Auto
compatible
Fruto oblongo,
ápice obtuso,
rugosidad
intermedia,
longitud 20,9
aprox., peso
670 g aprox.
Auto
incompatible
Fruto
elíptico, ápice
atenuado,
rugosidad
intermedia,
longitud 21.6
cm aprox. ,
peso 930.7g
aprox. Auto
incompatible
Fruto
oblongo, ápice
agudo,
rugosidad
intermedia,
longitud 23.9
cm aprox. ,
peso 914.4 g
aprox. Auto
incompatible
Fruto
oblongo, ápice
agudo,
rugosidad
intermedia,
longitud 19,2
cm aprox. ,
peso 568,7 g
aprox. Auto
compatible
Mazorca
elíptica, ápice
agudo,
rugosidad
ligera, auto
compatible
Mazorca
oblonga, ápice
atenuado,
rugosidad
intermedia,
auto
compatible
Mazorca
elíptica, ápice
atenuado,
rugosidad
ligera, auto
incompatible
Mazorca
elíptica, ápice
apezonado,
rugosidad
ligera, auto-
incompatible.
Color del fruto Rojo-naranja
(maduro)
Rojo
intermedio
(maduro)
Rojo naranja
(maduro)
Amarillo
(maduro)
Rojo naranja
(maduro)
Amarillo
(maduro)
Amarillo
(maduro)
Morado
(maduro)
Rojo (maduro)
Reacción a
principales
enfermedades
Alta resistencia
a Monilia,
susceptible a
Phytopthora
Susceptible a
Monilia
Susceptible a
Monilia
Susceptible a
Monilia
Altamente
resistente a
monilia
Métodos 1. Protocolo para la selección y recolección del material vegetal en campo. • Para el desarrollo experimental de la investigación se utilizan clones elite de cacao seleccionados por la
Compañía Nacional de Chocolates (TSH565, EET8, ICS39, ICS95,CCN51, SYS12, SYS13, SYS16, SYS24).
La Granja La Nacional
(Támesis, Antioquia.)
La Granja Yariguíes
(Barrancabermeja, Santander.)
Protocolo de desinfección para la introducción in vitro de explantes florales
Se debieron modificar los tiempo de exposición a los compuestos
químicos desinfectantes descritos por Urrea et al.., (2011), además de la
hora de colecta de las flores. .
Protocolo de desinfección
Se colocan los botones florales en tubos cónicos de 50ml estériles y se enjuagan
con agua destilada 3 veces
Se adiciona una solución de NaClO al 1% durante 10 minutos
Se enjuagan los explantes con agua destilada estéril 3 veces
Los explantes se dejan incubando en una solución de estreptomicina a
250ppm durante 30min
Se enjuagan los explantes con agua destilada estéril 3 veces
Las flores se colocan en cajas de petri estériles con papel absorbente para
retirar el exceso de humedad
Proceso de siembra
Se colocan los botones florales estériles en tubos cónicos
Se descartan los botones semiabiertos y las florez
Se retira el exceso de humedad con papel absorvente
Se sujeta el boton floral por el pedunculo y se corta la parte
apical
Se retiran los petalos y estaminodios
Se sembraron 25 explantes por caja de petri (Petalos y
estamonodios)
Medios de cultivo
Los medios de cultivo del protocolo reportado por Penn State University (Guiltinan et al., 2003) son:
• PCG (Primary Callus Growth): Inducción de callo
• SCG1 (secondary callus growth medium): Expresión de embriones
• ED (Embryo Development): Maduración de los embriones.
Los medios utilizados según el protocolo
del laboratorio de Nestlé (Fontanel et al.,
2002) son:
• INDI como medio de inducción
• INDexp como medio de expresión
• MM6 para la maduración de
embriones
Explante : Pétalos y estaminodios)
Tiempos de cultivo
• PCG e INDI (Inducción de callo): 30, 40, 50 y 60 días
• SCG1e INDexp (Expresión de embriones ):
• 15, 25 y 35 días
• ED y MM6 (Maduración de los embriones): 10, 15, 20, 25, 30, 35 y 40 días después de transferidos.
• Conversión de embriones a plántula: 60 días
25 explantes por caja Petri, cada
tratamiento con 10 cajas de Petri y 5
repeticiones.
Variables de respuesta
• Número promedio de embriones en
cada etapa y tiempo de cultivo.
• Número de embriones
germinados/Número total de ES
por frasco: Porcentaje de
conversion.
Callogénesis Callogénesis, tipo de callo y estructuras proembriogénicas (PE) inducidas en el explante de pétalos, genotipo TSH565, medio INDI.
(A) Después de 18 días
(B) Después de 25 días
(C) Después de 30 días
(D) PE en ICS39 con el explante de pétalos después de 50 días en la inducción de PCG y 25 días en expresión de SCG
(E) PE en SYS4 con el explante de estaminodio después de 30 días de inducción y 25 días en INDexp expresión.
(F) PE en SYS24 después de 30 días en el medio de inducción PCG y 15 días en el medio de expresión SCG
(G) Callo blanco filamentoso (FC) y Células redondas y translúcidas del vítreo blanco ( TC), el segundo tipo consistió en amarillo ceroso.
Formación de embriones
• Embriones somáticos globulares no regenerantes (A) EET8 (B) ICS1 (C) ICS95 (D) SYS12.
• Regeneración de embriones somáticos globulares (E) TSH565 (F) SYS4 (G) SYS13 (H) CCN51.
• Embriones somáticos cotiledonares (I) SYS13 (J) CCN51 (K) TSH565 (L) ICS60.
• Proliferación de SSE (M) SYS13. Alargamiento y desarrollo SSE (N) TSH565 (O) CCN51 (P) SYS4.
Elongación y desarrollo
A) Plántulas obtenidas durante la conversión de SSE a partir de la secuencia de etapas en SYS13
(B) Desarrollo de plántulas SYS4 hasta 60 días en medio MM6. Plántulas con raíces al menos 60 días en MM6 listos para la aclimatización.
(C) THS565
(D) CCN51
(E) Aclimatización de las plántulas durante 84 días en sustrato 1: 2, derecha TSH565 izquierda CCN51.
CONCLUSIONES
• Se describe un protocolo de regeneración vía embriogénesis somática secundaria de alta frecuencia para
los genotipos CCN51 y TSH565
• Se estandariza el proceso regeneración vía embriogénesis primaria y secundaria en los genotipos regionales
con alto contenido de polifenoles SYS4 y SYS13. Además de la embriogénesis somática primaria para
SYS24 y SYS16.
• Para los genotipos comerciales ICS60, ICS1, EET8, ICS95, ICS39 se alcanzo la el desarrollo de embriones
primarios, pero no la conversión efectiva de estos hasta plántula.
Desarrollo e implementación de
estrategias biotecnológicas para el mejoramiento de la
propagación de material élite de
cacao en Antioquia.
ETAPA: Producción
Biofabrica
ETAPA: Investigación y desarrollo
Abastecimiento constante de
plantas elite de cacao
Fortalecer la cadena productiva del cacao en
Antioquia desde medianos y pequeños
productores del grano mediante la siembra de
material vegetal producido por métodos
biotecnológicos.
Objetivos específicos
1. Desarrollar y escalar una tecnología para la producción de genotipos elite de cacao mediante técnicas in vitro a nivel de biofábrica
Caucasia
Dabeiba
Tamesis
Necocli
Variedad X
Variedad X
Caucasia
2. Evaluar en diferentes pisos térmicos el desempeño agronómico en campo de los genotipos propagados por métodos biotecnológicos
Sede Caucasia Sede Urabá Sede Támesis Sede Dabeiba 450 m s. n. m. 1600 m s. n. m. 34 m s. n. m. 250 m s. n. m.
Tratamiento Control: Yemas de material de campo + plantas de
semilla cigótica (Método convencional)
Tratamiento 1: Plantas Biotec Tratamiento 2: Plantas Biotec COPA + Plantas semilla cigótica PATRON
Tratamiento 3: Yemas de material de campo COPA + Plantas Biotec PATRON
Tratamiento 4: Plantas Biotec COPA + Plantas Biotec PATRON
3. Capacitar y acompañar a los agricultores de diferentes subregiones en el
establecimiento y manejo del cultivo.
Impactos
infraestructura de la Biofabrica
•Generación de un espacio para investigación y desarrollo, innovación y emprendimiento, transferencia de conocimiento y tecnología
Generación de 27 empleos directos
•Adultos preferiblemente mujeres, con grado bachiller.
Cultivos experimentales en los municipios de Caucasia, Támesis, Dabeiba y Necocli
• Espacio demostrativo para Fomentar la participación de la comunidad
Generación de cultivos en familias rurales de Caucasia, Támesis, Dabeiba y
Necocli
Generación de empleos en cada zona
Formación posgrado, pregrado, practicas profesionales
• Adriana Gallego. Bióloga. Universidad de Antioquia. 2011
• Adriana Portela. Bióloga. Universidad del Tolima. 2015
• Tatiana Ospina. Biotecnología. Colegio Mayor de Antioquia. 2015
• Hector Jaime Salazar. Biólogo. Universidad del Quindío. 2016
• Ana Maria Heno Ramírez. Est doctorado. Universidad de Antioquia. EN CURSO
A B
C
A) Casa de la Cultura de Mutatá B) Descanso y refrigerio
C) Participantes segunda jornada en la tarde C) Sesión de
demostración de cultivos celulares en estereoscopio
D
Criterios de evaluación:
• Modelo de negocios
• Pertinencia de la innovación
• Oportunidad del mercado
• Presentación y habilidades de
comunicación • Impacto social
Tercer puesto en el pitch final del “The leaders in innovation fellowship
programme” con el proyecto CACAWA®
Proyecto Emprendedor Descripción
Nanofique®
CRISTIAN BLANCO TIRADO
Desarrollo e un prototipo de nano fique ™. Nano Fique es un material útil para deshacerse de colorantes en las aguas residuales de las industrias textiles. Con un valor de mercado de 27 millones de dólares, se esta trabajando en el lanzamiento de Nanofique Limited, una compañía de lanzamiento registrada en el Reino Unido.
TRANSPOSON TnC_T7
MARTHA LUCIA CEPEDA-HERNANDEZ
Corpogen ha desarrollado una tecnología para incrementar la posibilidad de encontrar compuestos de alto interés comercial y alto valor agregado, en librerías genómicas y metagenómicas. Esta tecnología se basa en el diseño de un transposón que incrementa hasta en un 40% el porcentaje de éxito de encontrar dichos compuestos. La tecnología ya ha pasado la validación comercial y está bajo aplicación PCT (Patent Cooperation Treaty)
CACAWA®
ANA MARIA HENAO RAMIREZ
CACAWA® es una tecnología que permite la producción masiva de plantas de cacao a través de procesos biotecnológicos. Mediante la tecnología puede producirse hasta 3 millones/año mientras los métodos convencionales solo permiten obtener 1 millón/año. Se iniciará con una producción proyectada de 3 millones de plantas/año, a un precio de COP 1400/planta. Para esto se requiere de una inversión de COP 1073 millones, logrando normalizar la producción al cuarto año de operación. Los resultados del ejercicio es una Tasa Interna de Retorno (TIR) de 66%, con un Valor Presente Neto (VPN) de COP 3.224 millones en los 10 primeros años de operación, a un costo de capital del 16%.