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Manual de Prácticas de Laboratorio de OCEANOGRAFÍA BIOLÓGICA II

Responsables de la elaboración del manual de Oceanografía biológica II

Elizabeth del Carmen Orellana Cepeda

Mariana Elvira Callejas Jiménez

Rosario Jara Montañez

Universidad Autónoma de Baja California

Facultad de Ciencias Marinas

[Avalado, Validado] el [fecha] por Consejo Técnico

Directorio

Dr. Felipe Cuamea VelázquezRector UABC

Dr. Oscar Roberto López BonillaVicerrector, UABC Campus Ensenada

Dr. Juan Guillermo Vaca RodríguezDirector FCM

Dr. Víctor Antonio Zavala HamsSubdirector, FCM

Universidad Autónoma de Baja California

Facultad de Ciencias Marinas

ÍndiceIntroducción..........................................................................................................................................................................1

Encuadre del Sistema de Prácticas........................................................................................................................................2

Introducción......................................................................................................................................................................2

Competencias a las que contribuye...................................................................................................................................3

Niveles de Desempeño...................................................................................................................................................3

Ubicación dentro del mapa curricular...............................................................................................................................4

Programa del Sistema de Prácticas...................................................................................................................................5

Contenido de Prácticas de Laboratorio de OCEANOGRAFÍA BIOLÓGICA II..................................................................6

1. INTRODUCCIÓN........................................................................................................................................................7

1.1. COMPARACIÓN DE UN REPORTE CIENTÍFICO CON UN REPORTE TÉCNICO..........................................................7

1.2. INVESTIGACIÓN BIBLIOGRÁFICA SOBRE UN RECURSO ACUICULTURAL A NIVEL GLOBAL......................................8

1.3. DESCRIPCIÓN E INTERPRETACIÓN DE UN TRANSECTO CUBIERTO POR UN CRUCERO.........................................10

2. SUBMAREAL............................................................................................................................................................11

2.1. CRUCERO OCEANOGRÁFICO................................................................................................................................12

2.2. EPIFAUNA............................................................................................................................................................15

2.3. MEIOFAUNA........................................................................................................................................................17

3. LITORAL....................................................................................................................................................................20

3.1. ASENTAMIENTO DE ORGANISMOS EN LA ZONA LITORAL...................................................................................20

Anexos................................................................................................................................................................................23

Normas Generales de Seguridad e Higiene.....................................................................................................................23

Medidas Generales en Caso de Accidente......................................................................................................................24

Plan general de emergencia........................................................................................................................................24

Fuego en el laboratorio...............................................................................................................................................24

Fuego en el cuerpo......................................................................................................................................................24

Quemaduras................................................................................................................................................................25

Cortes..........................................................................................................................................................................25

Derrame de productos químicos sobre la piel.............................................................................................................25

Corrosiones en la piel por ácidos y álcalis.................................................................................................................25

Corrosiones en los ojos...............................................................................................................................................26

Ingestión de productos químicos.................................................................................................................................26

Rúbricas de evaluación....................................................................................................................................................27

Rúbricas de evaluación de reporte técnico......................................................................................................................27

Rúbricas de evaluación de reporte científico..................................................................................................................29

Rúbricas de evaluación de presentación oral..................................................................................................................31

Rúbricas de evaluación de reporte fotográfico...............................................................................................................32

Rúbricas de evaluación de bitácora................................................................................................................................32

Manual de Prácticas de Laboratorio de Oceanografía biológica IIIntroducción Página 1

Introducción

Este manual está diseñado para estudiantes del área de Biología. Está destinado a servir de complemento a la materia de Oceanografía biológica I, previa a este curso, que forma parte de la carrera de Licenciatura en Oceanología de la Facultad de Ciencias Marinas de la Universidad Autónoma de Baja California, pero podrá, mediante adaptaciones y modificaciones leves, ser usado en cualquier carrera afín.

Elizabeth del Carmen Orellana Cepeda Facultad de Ciencias Marinas de la UABCMariana Elvira Callejas JiménezRosario Jara Montaño

Manual de Prácticas de Laboratorio de Oceanografía biológica IIEncuadre del Sistema de Prácticas Página 2

Encuadre del Sistema de Prácticas

Introducción

El propósito de este curso práctico de laboratorio y campo es motivar y aportar herramientas al estudiante para resolver problemas del bentos y la acuacultura, utilizando el método científico en el conocimiento y estudio de algunos de los procesos que afectan a los organismos marinos que conforman la comunidad bentónica y que interactúan en la zona costera, lo que es suma importancia para el profesionista en las ciencias del mar.

El objetivo general es que al finalizar el curso, el alumno evaluará de manera práctica, los procesos oceanográfico-biológicos más importantes en el bentos y determinará la influencia de cada una de las variables abióticas sobre las especies que conforman una comunidad bentónica.

Los objetivos particulares son:

Recabar información de calidad sobre la importancia ecológica y económica de algunos de los recursos acuículturales presentes en México que pueden incidir en la alimentación o economía del hombre o sobre otros grupos biológicos con curiosidad y compromiso.

Construir gráficas a partir de las bases de datos nacionales y/o internacionales que le permitan inferir acerca de los procesos más relevantes que afectan a la biota con curiosidad y problematización.

Generar y proponer un experimento para monitorear la forma de sucesión ecológica, en el proceso de colonización natural comparando diferentes sustratos lo que le permitirá ensamblar a grupos de organismos bentónicos que interactúan en la zona litoral con compromiso, respeto y organización.

Explicar con visión objetiva acerca de la forma de análisis de datos generados en los estudios de la Oceanografía Biológica con espíritu de cooperación y disciplina.

Reforzar las bases necesarias para iniciar en alguna de las disciplinas de trabajo o investigación en Oceanografía Biológica con actitud propositiva.



Competencias a las que contribuye

Niveles de Desempeño

I. Integrar y evaluar los procesos oceanográficos a diferentes escalas espacio-temporales.

II. Describir y contrastar los patrones y conceptos de la producción biológica en el océano considerando el aspecto multidisciplinario y las relaciones entre elementos y procesos.

III. Experimentar una actitud responsable con respecto a la evaluación e interpretación de los diferentes procesos oceanográficos, basada en la ética y el respeto por el medio ambiente.

IV. Construir modelos conceptuales que relacionan de forma interdisciplinaria las características físicas, químicas, geológicas y biológicas del océano con los procesos biológicos que tienen lugar en el piso oceánico aplicando leyes, conceptos y técnicas, con veracidad, ética, solidaridad, responsabilidad y espíritu de grupo.



Ubicación dentro del mapa curricular



Programa del Sistema de Prácticas

Tema Práctica o prácticas programadas Ámbito de desarrollo Duración*

1. INTRODUCCIÓN

Comparación de un reporte científico Laboratorio de Ocean. 3 horascon un reporte técnico. Biológica y casa Investigación bibliográfica sobre un Laboratorio de Ocean. 3 horasrecurso acuicultural Biológica y casa

Descripción e interpretación de un Laboratorio de Ocean. 6 horastransecto cubierto por un crucero. Biológica y casa

2. SUBMAREAL

Crucero en Bahía de Todos los Santos. Barco de la SecretaríaDistribución del bentos en la Bahía de de Marina (SEMAR) 15 horasTodos los Santos. Estudio de Laboratorio de Ocean.epifauna e infauna. Biológica y casa

3. LITORAL

Asentamiento de organismos en la Zona litoral y Lab. de zona litoral. Oceanografía biológica 21 horas

7. [UNIDAD IV]

10. [UNIDAD V]

14. [UNIDAD VI]

18. [UNIDAD VII]

* Duración en horas para cada práctica, y semana del semestre en la que se realizará.


Contenido de Prácticas de Laboratorio de

OCEANOGRAFÍA BIOLÓGICA II

Responsable de la elaboración del manual de Oceanografía Biológica II

Elizabeth del Carmen Orellana Cepeda



Manual de Prácticas de Laboratorio de Oceanografía Biológica IIINTRODUCCIÓN Página 8

1. INTRODUCCIÓN Facultad de Ciencias Marinas de la Universidad Autónoma de Baja California

Responsable(s): Elizabeth del Carmen Orellana Cepeda



Número de alumnos por práctica: 12.

Propósito General de las Prácticas de INTRODUCCIÓN

Recabar información necesaria para estructurar una plática científicamente documentada. Construir gráficas para describir y explicar las tendencias de las variables oceanográficas que interactúan en el océano. Comparar y ensamblar la distribución y abundancia de los organismos sobre el fondo de la bahía y monitorear asentamiento en la zona litoral.

1.1. COMPARACIÓN DE UN REPORTE CIENTÍFICO CON UN REPORTE TÉCNICO.

1.1.1. Introducción

En el área disciplinaria, es necesario manejar los tipos de reportes que se necesiten, de los cuales los más importantes son: reporte científico y reporte técnico. Es necesario que a lo largo del semestre se trabaje uno u otro, sin dificultad.

1.1.2. ObjetivoComparar la estructura de un Reporte Científico con un Reporte Técnico.

1.1.3. Material

1.1.3.1. MaterialesManual de laboratorio.

1.1.3.2. EquipoUna computadora por alumno conectada a red.Un proyector.

Elizabeth del Carmen Orellana CepedaMariana Elvira Callejas JiménezRosario Jara Montaño Facultad de Ciencias Marinas de la UABC


1.1.4. Desarrollo Comparar en estructura y profundidad un reporte científico y uno técnico.

1.2. INVESTIGACIÓN BIBLIOGRÁFICA SOBRE UN RECURSO ACUICULTURAL A NIVEL GLOBAL.

1.2.1. IntroducciónEn todo trabajo de investigación, una vez que se conceptualiza la problemática y

planteado el problema que se pretende resolver, se proponen los objetivos generales. Para definir los objetivos específicos, es preciso realizar una investigación bibliográfica, necesaria para poder a punto el estado del conocimiento con respecto al tema que se va a estudiar y donde se ubica la pregunta que se quiere resolver y donde van a incidir los resultados que se obtendrán. La consulta de bases de información bibliográfica constituye una herramienta básica para generar un avance en el conocimiento y un aspecto fundamental para el desarrollo de la investigación. Por ello un estudiante de la Facultad de Ciencias Marinas debe demostrar que es competente en realizar estas consultas, obtener la información necesaria para entender donde incide la investigación que se va a realizar y seleccionar la información de buena calidad.

1.2.2. ObjetivosRecabar información de calidad sobre la importancia ecológica y económica de

algunos de los recursos acuiculturales presentes en México que pueden incidir en la alimentación o economía del hombre o sobre otros grupos biológicos con curiosidad y compromiso.


1.2.3. Material

1.2.3.1. MaterialesManual de laboratorio.



1.2.3.2. Instrumental1 Computadora individual conectada a la red de bibliotecas. 1 Proyector

1.2.4. Desarrollo

Realizar una investigación bibliográfica sobre la ecología de algún recurso bentónico utilizando las bases de datos disponibles en las bibliotecas de la Universidad Autónoma de Baja California (UABC) y o del Centro de Investigación Científica y de Educación Superior de Ensenada (CICESE).

En las actividades de la presente práctica, se deberán considerar los siguientes aspectos:

a) Seleccionar un recurso bentónico natural o sometido a prácticas acuiculturales.b) Establecer las palabras claves para la búsqueda. Una vez que éstas sean aprobadas por el

facilitador,c) Realizar la investigación en las bases de datos: ASFA, Biosis, Rogers o Melvin.d) Obtener el listado de 15 artículos con sus respectivos resúmenes. e) Los resúmenes deberán ser analizados para seleccionar aquellos de mayor interés con respecto

al problema a resolver y adjuntarlos al final del reporte.

Se presentará un “Reporte Técnico” individual que contendrá:

a) Nombre científico, nombre común del recurso y si es posible sus nombres en diferentes idiomas en otras regiones.

b) Importancia y distribución mundial del recurso.c) Metodología de cultivo en diferentes partes del mundo y regiones del país. d) Resultados ilustrados con tablas y gráficas de producción, que deben incluir comercialización y

precios.e) Conclusiones y bibliografía de la investigación.f) La bibliografía será con el formato de la Revista de Ciencias Marinas.

El reporte técnico deberá ser entregado en la siguiente semana de laboratorio.

1.2.5. Método de Evaluación

Rúbrica de Reporte Técnico.

1.2.6. Bibliografía

Carta Nacional Pesquera.

+ 15 referencias específicas del recurso acuicultural correspondiente.



1.3. DESCRIPCIÓN E INTERPRETACIÓN DE LOS DATOS OCEANOGRÁFICOS OBTENIDOS A PARTIR DE UN TRANSECTO CUBIERTO POR UN CRUCERO.


El California Cooperative Oceanic Investigaciones Pesca (CalCOFI) es una asociación única del Departamento Estatal de Pesca y Vida Silvestre, NOAA Fisheries Service y el Scripps Institution of Oceanography. La organización fue formada en 1949 para estudiar los aspectos ecológicos del colapso de la población de sardina fuera de California. Durante cincuenta años abarcó la zona marina frente a California, EEUU y a Baja California, México. Actualmente la atención se ha centrado en el estudio del medio marino frente a las costas de California, la gestión de sus recursos vivos, y el seguimiento de los indicadores de El Niño y el cambio climático. CalCOFI realiza

cruceros cada trimestre frente al Centro y Sur de California, USA (Fig. 1), así como IMECOCAL lo hace frente a la Baja California, México. En ambos se recolectan muestras y se miden variables para enriquecer el acervo sobre datos hidrológicos y biológicos en la estación y en proceso. Los datos recogidos en profundidades de hasta 500 m incluyen: temperatura, salinidad, oxígeno, fosfato, silicato, nitrato y nitrito, clorofila, transmisómetro, PAR, C14

productividad primaria, la biodiversidad fitoplancton, zooplancton biomasa, la biodiversidad y zooplancton (http://www.calcofi.org/).

Figura 1. Plan de estaciones de CalCOFI

(http://www.calcofi.org/).


http://www.calcofi.org/



1.3.2. Objetivos

Construir gráficas a partir de las bases de datos nacionales y/o internacionales que le permitan inferir acerca de los procesos más relevantes que afectan a la biota con curiosidad y problematización.


1.3.3. Material

1.3.3.1 Materiales Programa de graficado como

Ocean Data View.

1.3.3.2. Instrumental1 Computadora conectada a la red por cada alumno. 1 proyector

1.3.3.3 Reactivos

1.3.4. DesarrolloEn grupos de dos alumnos cada uno, se trabajará sobre los resultados obtenidos en un Crucero

CALCOFI en la ensenada de California.


Rúbrica de Reporte científico.


California Cooperative Oceanic Fisheries Investigation (CALCOFI) Reports





2. SUBMAREAL Facultad de Ciencias Marinas de la Universidad Autónoma de Baja California




Número de alumnos por práctica: 12

Propósito General de las Prácticas de SUBLITORAL

El propósito de este curso práctico de laboratorio y campo es despertar en el estudiante la curiosidad por el conocimiento de los conceptos fundamentales de la vida marina en el bentos, utilizando el método científico en el conocimiento y estudio de algunos de los procesos que interactúan en los organismos marinos que conforman la comunidad bentónica que interactúan en la zona costera, representando una importancia para el profesionista en las ciencias del mar.

2.1. CRUCERO OCEANOGRÁFICO


En Oceanografía biológica II, con el fin de monitorear el estado actual del bentos en el fondo de la bahía de Todos Santos y complementar los conocimientos adquiridos del piélagos en el curso anterior (Oceanografía Biológica I), se supone que las larvas encontradas en la columna de agua durante el crucero del semestre anterior, se asentaron y ahora se encuentran como adultos formando parte del bentos agrupado de acuerdo al tipo de sustrato de cada estación.

La bahía de Todos Santos es un cuerpo de agua con una superficie de 116 km 2, con una variedad de sedimentos que se estudian desde el siglo pasado. Está ubicada a 110 km de la frontera con Estados Unidos de América. El 80 % del fondo tiene menos de 50 m de profundidad y entre las islas que se encuentran al Oeste y Punta Banda, entra un cañon de 300 m de profundidad (Argote et al., 1991).



Los cruceros oceanográficos son prácticas propias del Oceanólogo, de manera que en este cruceros se aprovecharán las muestras de fondo que se extraen con draga en Oceanografía geológica para relacionar los organismos del bentos con su substrato.

2.1.2. Objetivos

Integrar y contrastar los patrones y conceptos de la producción biológica en el océano considerando el aspecto multidisciplinario y las relaciones entre elementos y procesos.

2.1.2.1. Contrastar el tipo de fondo del submareal con las poblaciones asociados en superficie (epifauna) como al interior (meiofauna).

2.1.2.2. Generar mapas de distribución y abundancia de los recursos bentónicos en Bahía de Todos los Santos.

2.1.3. Material

2.1.3.1. Materiales120 bolsas plásticas con cierre

1 plumón

1 hielera

1 estuche de disección con pinzas y regla por alumno

21 hojas de datos

5 tablas de identificación

1 tabla para hojas de datos

4 pares de guantes de latex

1 cámara fotográfica

4 pares de guantes de carnaza

1 piceta marcada para alcohol

1 rollo de papel secante

1 rollo de tela adhesiva

4 cajas plásticas

1 mascarilla por alumno

2 tamices de 0.5 m2



2.1.3.2. Instrumental 1 Draga Van Veen

1 geoposicionador

2.1.3.3. Reactivos10 litros de alcohol a 45%

2.1.4. Desarrollo

En el crucero oceanográfico a bordo de un barco de la Secretaría de Marina, se realizan tres transectos (A, B y C) con 7 estaciones cada uno, iniciando por el Noreste, los cuales se encuentran distribuidos en toda la bahía de Todos Santos como se muestra en la figura 2.

Figura 2. Ejemplo de ubicación de estaciones durante el crucero oceanográfico 2012-1.

Cada día se trabaja en siete estaciones oceanográficas iniciando el primer día en A1 y terminando en A7. El Segundo día se repite la operación desde B1 hasta B7 y el tercer día se trabaja en el transecto C, desde C1 hasta C7. En cada estación se anota: latitud, longitud, fecha, temperatura superficial del agua, profundidad de carta, profundidad a la que llegó la draga.

Para el monitoreo de meiofauna: una vez que se iza la draga Van Veen y se sube a cubierta sobre una gran charola, mientras los alumnos de oceanografía geológica extraen sus muestras de sedimentos, los alumnos de oceanografía biológica, anotan las observaciones sobre tipo de sedimento, color y olor. Luego con palitas especiales, recolectan 4 muestras bien Elizabeth del Carmen Orellana CepedaMariana Elvira Callejas JiménezRosario Jara Montaño Facultad de Ciencias Marinas de la UABC


identificadas (etiquetadas) para análisis posterior de meiofauna, de las cuales una queda natural y se guarda en frío, en tanto que las otras tres, se fijan en proporción 1:1 con alcohol a 45%. Todas bien identificadas (con el número de estación y fecha) se guardan en caja plástica.

Para el monitoreo de epifauna: el resto del material se enjuaga con manguera sobre un tamiz, para dejar al descubierto solamente organismos que se identifican con un nombre provisorio, se fotografían con una referencia (o clave) y se cuentan. Todo se anota en la hoja de datos y se guarda un ejemplar de cada especie en bolsa plástica etiquetada, el material biológico se cubre con alcohol al 50% y las bolsas son almacenadas y transportadas al laboratorio para su posterior análisis.

Al final de cada día, las muestras se traen al laboratorio de Oceanografía Biológica y se organizan y almacenan adecuadamente. Al final del tercer día, se trae todo el material y draga a la Facultad de Ciencias Marinas, se lava con agua dulce y se guarda. Las muestras se organizan de la siguiente manera:

a) Las muestras de epifauna, para uso común de todos los subgrupos de laboratorio se fijan con alcohol y se almacenan en una caja y

b) Las de meiofauna se separan por subgrupo de laboratorio en cajas separadas y debidamente etiquetadas, de manera que cada subgrupo tenga acceso al total de las estaciones muestreadas.


Llenado de hojas de campo que permitirán construir una tabla de datos de campo testimonio fotográfico completo que formarán parte del Reporte final que será de tipo Reporte científico.


Kozlov, E. N. 1996. Marine Invertebrates of Pacific Norwest. Univer. Washington Press, 539 págs.

Carlton, J. T. (Ed.) 2007. The Light and Smith Manual: intertidal invertebrates from central California to Oregon. University of California Press. 1001 págs.

Morris, R.; Abbott, D. y E. Haderlie. 1990. Intertidal invertebrates of California. Standford University Press. 690 págs.



2.2. EPIFAUNA


Los fondos arenosos presentan una variedad de moluscos y los rocosos permiten una alta diversidad. Los fondos lodosos abrigan una gran variedad de poblaciones, entre ellas, anélidos poliquetos que pueden ser indicadores de contaminación orgánica, de allí que en estas prácticas se propone estudiar la distribución y abundancia de las poblaciones bentónicas que lo componen y su relación con las larvas encontradas en el semestre anterior, las variables abióticas y procesos que las determinan.

2.2.2. Objetivo

2.2.2.1. Reconstruir la distribución del epibentos y la infauna a partir del estudio de los organismos encontrados en las muestras;

2.2.2.2. Construir las gráficas de distribución y abundancia de la epifauna de bahía Todos Santos con Ocean Data View (ODS) u otro programa que permita georreferenciar las estaciones e interpolar;

2.2.2.3. Relacionar los resultados al tipo de sustrato para interpretar y elaborar el reporte científico.

2.2.3. Material

2.2.3.1. Materiales18 muestras de epifauna

1 piceta por alumno con agua de mar filtrada

1 par de guantes de latex por alumno


1 estuche de disección por alumno con gotero, aguja, regla de referencia


1 caja de Petri

4 cajas de plástico



2.2.3.2. Instrumental1 Microscopio estereoscópico 1 computadora conectada

2.2.3.3. Reactivos2 lt de agua de mar 2 lt de alcohol al 45%

2.2.4. Desarrollo

En el laboratorio de oceanografía biológica se trabajará con la hoja de campo de cada estación, el documento fotográfico que se obtuvo en campo y las muestras con un ejemplar de cada especie para corregir los nombres provisorios que se le otorgó en el campo, para lo cual se deberá aplicar lo aprendido en Zoología Marina y ayuda de claves que se encuentran en la Biblioteca central de la UABC Ensenada y conectados a la red, podrán identificar los organismos encontrados y relacionarlos la localización, con el tipo de sedimento y otra variables oceanográficas asociadas.


Cada alumno deberá entregar analizados al menos los resultados de 3 ó 4 estaciones (una de cada transecto y diferente tipo de sustrato). Los resultados se compilarán en una Tabla con todos los datos y una vez que estén integrados con los de sus compañeros construirán las gráficas de abundancia y distribución de un recurso bentónico para formar Reporte científico.

2.2.6. BibliografíaKozlov, E. N. 1996. Marine Invertebrates of Pacific Norwest. University of Washington Press,

539 págs.Carlton, J. T. (Ed.) 2007. The Light and Smith Manual: intertidal invertebrates from central California to Oregon. University of california Press. 1001 págs.

Morris, R.; Abbott, D. y E. Haderlie. 1990. Intertidal invertebrates of California. Standford University Press. 690 págs.+ Todas las guías de identificación que los alumnos utilizaron en el curso de Zoología Marina.



2.3. MEIOFAUNA

2.3.1. IntroducciónLos recursos bentónicos presentan gran importancia como indicadores del estado de salud de los fondos marinos porque están interactuando contantemente con su medio. Así hay fondos con diferentes tipos de sustratos y diferentes grados de salud óxido-reducción en el caso de fondos móviles y abrigan fauna diferente, desapareciendo completamente las especies delicadas en fondos contaminados.

2.3.2. Objetivo

2.3.2.1. Reconstruir la distribución de la meiofauna a partir del estudio de los organismos encontrados en las muestras.

2.3.2.2. Construir las gráficas de distribución y abundancia de la meiofauna de bahía Todos Santos con Ocean Data View (ODS) u otro programa que permita georreferenciar las estaciones e interpolar].

2.3.2.3. Relacionar los resultados con la distribución de larvas del semestre anterior, las variables abióticas y el tipo de sustrato para interpretar elaborar el reporte científico.

2.3.3. Material

2.3.3.1. Materiales18 muestras de sedimento con infauna

1 piceta por alumno con agua de mar filtrada

1 par de guantes de látex por alumno

3 portaobjetos por alumno


1 estuche de disección con pinzas por alumno y regla con cm y pulgadas




2.3.3.2. Instrumental 1 microscopio compuesto por alumno

1 balanza

2.3.3.3. Reactivos3 lt de agua de mar 3 lt de alcohol al 45%.

2.3.4. Desarrollo

En el laboratorio de oceanografía biológica se organizarán en caja de plástico, las bolsas con muestra de meiofauna de cada estación, cuidando que cada subgrupo de laboratorio cuente con un conjunto de muestras completo y que no haya fuga de reactivo hacia la caja, Si falta alguna, se deberá subdividir una muestra original para completar.


Rúbrica de Reporte científico.


Kozlov, E. N. 1996. Marine Invertebrates of Pacific Norwest. University of Washington Press,

539 págs.

Carlton, J. T. (Ed.) 2007. The Light and Smith Manual: intertidal invertebrates from central California to Oregon. University of california Press. 1001 págs.


+ Todas las guías de identificación que los alumnos utilizaron en el curso de Zoología Marina.

Reporte de Laboratorio de zooplancton del Semestre anterior.


Manual de Prácticas de Laboratorio de Oceanografía biológica IILITORAL Página 22

3. LITORAL Facultad de Ciencias Marinas de la Universidad Autónoma de Baja California




Número de alumnos por práctica: 12

Propósito General de las Prácticas de Litoral

En esta práctica se propone que los alumnos diseñen un experimento de un experimento en que se estudiarán las primeras fases de la colonización de un sustrato que inicia generalmente con bacterias, hongos y materia orgánica coloidal, algunos autores han encontrado macroalgas y diatomeas bentónicas (Wood, 1950 en Arellano y Ruiz, 1985). Luego continuar con otras poblaciones, según el tipo de substrato, rugosidad, químicos que pueda tener la superficie, etc.

3.1. ASENTAMIENTO DE ORGANISMOS EN LA ZONA LITORAL

3.1.1. IntroducciónLa sucesión ecológica en el proceso de colonización natural se dará como consecuencia del

asentamiento de los organismos en un sustrato limpio expuesto un medio adecuado. Su estudio puede enfocarse como una observación y descripción del desarrollo del ecosistema que se instala y luego enfocarse en la interpretación de la trama trófica que se establece en el tiempo y espacio (Margalef, 1974 en Arellano y Ruiz, 1985).

En la Bahía de Todos Santos, Arellano y Ruiz (1985) encontraron que sustratos tales como cemento, madera y mármol, a los 30 días eran colonizados por briozoarios, seguidos de balanos y a los 60 días aparecieron los mejillones. Ellos concluyeron que macroscópicamente primero aparecieron los organismos coloniales y luego los individuales. La diversidad aumentó y alcanzó su valor máximo a los 45 días. La estructura de la comunidad no mostró relación con los factores hidrológicos y la disponibilidad larval influyó en la comunidad en formación. Las especies sésiles seleccionaron el sustrato.

3.1.2. Objetivo



Generar y proponer un experimento para monitorear la forma de sucesión ecológica, en el proceso de colonización natural comparando diferentes sustratos lo que le permitirá ensamblar a grupos de organismos bentónicos que interactúan en la zona litoral con compromiso, respeto y organización.

Explicar con visión objetiva acerca de la forma de análisis de datos generados en los estudios de la Oceanografía biológica con espíritu de cooperación y disciplina.


3.1.3. Material

3.1.3.1. Materiales1 calendario de mareas

2 substratos (conchas de abulón, ostión, mejillón o loseta, madera, cemento u otro) de aproximadamente 11 x 11 cm2.

1 cuadrícula subdividida en 100 para monitorear el % de cobertura.

2 tornillos por alumno instalados en el intermareal bajo con 2 tuercas, cada uno.

1 llave para las tuercas por sección de laboratorio.


3.1.3.2. Instrumental1 microscopio compuesto

1 microscopio estereoscópico

1 cámara fotográfica por cada dos alumnos

1 computadora conectada a la red para identificar las especies colonizadoras,

3.1.3.3. Reactivos2 lt de agua de mar filtrada y pasada por UV

3.1.4. DesarrolloLa práctica consiste en instalar en la zona litoral algunos objetos con diferentes características,

con el propósito de categorizar los organismos que se fijan y comparar como se desarrolla la



colonización en los diferentes materiales a lo largo de 9 semanas que se visitarán y/o extraerán en marea viva baja.

En esta práctica se utilizará material de madera y loseta (11 cm x 11cm). Estos materiales se fijarán a un tornillo que estará soldado en la roca de la zona litoral, frente a las instalaciones de la UABC.

La colocación de los materiales será cuando la marea se encuentre en condición de marea viva baja.

La participación será en equipos de 2 estudiantes. Cada equipo tendrá un material de madera y de loseta o conchas o lo que hayan elegido y colectará el material con base a las fechas indicadas al inicio del semestre. Cada dos semanas los alumnos revisarán su material en laboratorio mediante microscopio, a diferentes tiempos de permanencia del material en el mar, a 2, 4, 6, 8 y 9 semanas. Cada equipo revisará el material colectado, categorizando los grupos de organismos que se fijaron en el material y % de cobertura de cada taxa.

Los alumnos compararán las semejanzas y diferencias que aparecen en cada fechas entre los dos substratos en función del tiempo, tipo de sustrato y de la profundidad a que lo instaló.

Los alumnos entregarán un reporte científico a la semana 11. (El reporte incluirá los reportes parciales, fotográficos y bitácora como anexos) y podrán presentar sus resultados en conjunto en forma de cartel durante la Semana del Oceanólogo (Semestre impar) o en Congreso Estudiantil (Semestre par).


Ver las rúbricas correspondientes a Bitácora, Reporte fotográfico, Reporte científico.

3.1.6. BibliografíaArellano-García, M. y Ruíz- Guzmán. 1985. Comparación de la colonización de sustratos experimentales en el Puerto de Ensenada y el estero de Punta Banda (Primavera, 1983). Tésis Oceanólogo. Facultad de Ciencias Marinas, UABC, 77 págs.

Brusca, R. C. y Brusca, G. J. 1990. Invertebrates. Publ. Sinnaeur Assoc. Inc. Publish. Mass. 922 pp.Carlton, J. T. (Ed.) 2007. The Light and Smith Manual: intertidal invertebrates from central California to Oregon. University of California Press. 1001 págs.

Herbert, S. 1968. A guide to field identification sea shells or North America. 280 págs.Kozlov, E. N. 1996. Marine Invertebrates of Pacific Norwest. University of Washington Press,

539 págs.




+ Todas las guías de identificación que los alumnos utilizaron en el curso de Zoología Marina.


Manual de Prácticas de Laboratorio de Oceanografía biológica IIAnexos Página 26

Anexos

Normas Generales de Seguridad e Higiene1. El uso de bata es obligatorio.2. Antes de empezar el trabajo en el laboratorio tienes que familiarizarte con los elementos de

seguridad disponibles.3. Es necesario localizar las salidas principales y de emergencia por si se diese el caso de una

evacuación por fuego o por cualquier otro incidente, así como conocer la localización exacta de extintores, duchas de seguridad y duchas de ojos.

4. Es obligatorio usar gafas de seguridad siempre que se esté en el laboratorio.5. No usar lentes de contacto en el laboratorio, ya que en caso de accidente las salpicaduras de

productos químicos o sus vapores pueden pasar detrás de las lentes y provocar lesiones en los ojos antes de poder retirar las lentes. En estos casos es recomendable el uso de gafas graduadas o de gafas de seguridad cerradas.

6. Sí un producto químico te salpica los ojos, utiliza inmediatamente una ducha de ojos y lava completamente el ojo afectado durante 15 minutos sin interrupción. Actúa siempre con urgencia, en menos de 10 segundos. No dirijas una corriente de alta presión de agua de un grifo directamente al ojo porque podrías lesionarlo. Informa al encargado del laboratorio de lo que ha sucedido y si es necesario pide asistencia médica.

7. 7. El uso de bata (preferentemente de algodón) es obligatorio, ya que por mucho cuidado que se tenga al trabajar, las salpicaduras de productos químicos son inevitables.

8. Así mismo se recomienda llevar zapatos cerrados y no sandalias.9. No comer ni beber en el laboratorio, ya que hay la posibilidad de que los alimentos o bebidas se

hayan contaminado con productos químicos.10. Los recipientes del laboratorio nunca deben utilizarse para el consumo y conservación de alimentos

y bebidas; tampoco las neveras u otras instalaciones destinadas al empleo en los laboratorios.11. Lavarse siempre las manos después de hacer cualquier análisis y antes de salir del laboratorio.12. Procure quitarse la bata hasta que salga del laboratorio.13. Está prohibido fumar en el laboratorio por razones higiénicas y de seguridad.14. No inhales, pruebes o huelas productos químicos si no estás debidamente informado.15. Cerrar herméticamente los frascos de productos químicos después de utilizarlos.16. Para pipetear los líquidos utilice siempre una bombilla pipeteadora, no absorber directamente con

la boca.17. Cuando caliente tubos de ensaye hágalo siempre en la parte superior del líquido y con agitación

suave, nunca por el fondo del tubo, y debe estar inclinado y no apuntar hacia ninguna persona.18. No deben transportarse innecesariamente los reactivos de un sitio para otro del laboratorio. Sí

tuviese que hacerlo, tenga cuidado con las botellas, las cuales deben ser siempre transportadas cogiéndolas por el fondo, nunca por la boca de la botella.



19. El área de trabajo tiene que mantenerse siempre limpia y ordenada, sin libros, abrigos, bolsas, productos químicos vertidos.

20. La conducta en el laboratorio debe ser seria, sin bromas, sin correr, jugar, empujar, gritar, etc.21. No se puede hacer ningún experimento no autorizado.22. No utilices nunca un equipo o aparato sin conocer perfectamente su funcionamiento.23. No utilices material de cristal en mal estado ya que aumenta el riesgo de accidentes.24. El material y los aparatos utilizados tienen que dejarse siempre limpios y en perfecto estado de uso.25. Todos los productos químicos tienen que ser manejados con mucho cuidado de acuerdo con las

Hojas de Seguridad de cada una de las sustancias.26. No inhales los vapores de productos químicos y trabaja siempre en vitrinas extractoras,

especialmente cuando manipules productos tóxicos, irritantes, corrosivos o lacrimógenos.

Medidas Generales en Caso de Accidente

Plan general de emergencia Dar la alarma. Ponerse a salvo. Ayudar a las personas. Luchar contra el fuego. Avisar al responsable del departamento. Evacuación del edificio en caso necesario. Avisar a ambulancias, bomberos.

Fuego en el laboratorio Evacuar el laboratorio, por pequeño que sea el fuego, por la salida principal o por la salida de

emergencia, sí la principal está bloqueada. Avisar a todos los compañeros de trabajo sin que se extienda el pánico y conservando siempre la

calma. Sí el fuego es pequeño y localizado, apagarlo utilizando un extintor adecuado, arena cubriendo el

fuego con un recipiente de tamaño adecuado que lo ahogue. Retirar los productos químicos inflamables que estén cerca del fuego. No utilices nunca agua para

extinguir un fuego provocado por la inflamación de un disolvente. Para fuegos grandes aislar el fuego, utilizar los extintores adecuados, sí el fuego no se puede

controlar rápidamente accionar la alarma de fuego, avisar al servicio de extinción de incendios y evacuar el edificio.

Fuego en el cuerpo Sí se te incendia la ropa, pide inmediatamente ayuda. Estírate en el suelo y rueda sobre ti mismo para apagar las llamas. No corras ni intentes llegar a la ducha de seguridad si no es que está muy cerca de ti.



Es tu responsabilidad ayudar a alguien que se está quemando, cúbrele con una manta antifuego, condúcele hasta la ducha de seguridad, si está cerca, hazle rodar por el suelo, no utilices nunca un extintor sobre una persona.

Una vez apagado el fuego, mantén a la persona tendida, procurando que no coja frío y proporciónale asistencia médica.

Quemaduras Las pequeñas quemaduras producidas por material caliente, baños, placas, etc., se tratarán lavando

la zona afectada con agua fría durante 10-15 minutos. Las quemaduras más graves requieren atención médica inmediata. No utilices cremas y pomadas grasas en las quemaduras graves.

Cortes Los cortes producidos por la rotura de material de cristal son un riesgo común en el laboratorio. Las cortadas se tienen que lavar bien, con abundante agua corriente, durante 10 minutos como

mínimo. Sí la cortada es pequeña y deja de sangrar en poco tiempo, lávala con agua y jabón y tápala con una

venda. Sí la cortada es grande y no deja de sangrar, requiere de asistencia médica inmediata.

Derrame de productos químicos sobre la piel Los productos químicos que se hayan vertido sobre la piel han de ser lavados inmediatamente con

agua corriente abundantemente, como mínimo durante 15 minutos. Las duchas de seguridad instaladas en los laboratorios serán utilizadas en aquellos casos en que la

zona afectada del cuerpo sea grande y no sea suficiente el lavado en una pila. Es necesario sacar toda la ropa contaminada de la persona afectada lo antes posible mientras esté

bajo la ducha. Recuerda que la rapidez en el lavado es muy importante para reducir la gravedad y la extensión de

la herida. Proporcionar asistencia médica a la persona afectada.

Corrosiones en la piel por ácidos y álcalis Cuando ocurre una corrosión por ácidos, corta lo más rápidamente posible la ropa, lave con agua

abundantemente la zona afectada, neutralice la acidez con bicarbonato de sodio durante 15-20 minutos, sacar el exceso de pasta formada, seca y cubra la parte afectada con linimento óleo-calcáreo o parecido.

Cuando se produce una corrosión por álcalis, lave la zona afectada abundantemente con agua corriente y aclárala con una disolución de ácido acético al 1%, seca y cubre la zona afectada con una pomada de ácido tánico.



Corrosiones en los ojos En este caso el tiempo es esencial (menos de 10 segundos), cuanto antes se lave el ojo, menos grave

será el daño producido. Lava los dos ojos con agua corriente abundantemente durante 15 minutos como mínimo en una

ducha de ojos, y, si no hay, con un frasco de lavar los ojos. Es necesario mantener los ojos abiertos con la ayuda de los dedos para facilitar el lavado debajo de

los párpados. Es necesario recibir asistencia médica, por pequeña que parezca la lesión.

Ingestión de productos químicos Antes de cualquier actuación pide asistencia médica. Sí el paciente está inconsciente, ponerlo en posición lateral de seguridad, con la cabeza de lado, y

estirarle la lengua hacia fuera.



Rúbricas de evaluación

Rúbricas de evaluación de reporte técnico



UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE BAJA CALIFORNIA FACULTAD DE CIENCIAS MARINAS

*Documento: Debe escribirse en con las siguientes especificaciones: hoja tamaño carta, con márgenes superior e inferior de 2.5 cm e izquierdo y derecho de 3 cm, con letra tipo Arial de tamaño 12. **Tablas: El formato es libre, sólo deberá observarse que el tipo y tamaño de letra sea igual al utilizado en el texto del documento. E n casos excepcionales, se podrá utilizar un tamaño de letra menor a la del texto del documento pero que no sea menor de 8. Las tablas serán numeradas en forma consecutiva comenzando con 1. Figuras y fotografías: El texto deberá tener al menos 2 mm de altura y serán numeradas en forma consecutiva comenzando con 1 y de manera independiente de las tablas. A diferencia de las tablas, el número y descripción de la figura deberá colocarse inmediatamente después de la misma. Fórmulas: Estarán centradas y separadas del texto, la numeración será consecutiva comenzando con 1. El número de fórmula deberá encerrarse entre paréntesis y colocarse a la derecha de la fórmula lo más cercano posible al margen derecho.

Semestre 2013-1 Hoja 2/2

Facilitador: Rosario Jara Montañez Correo: [email protected]



Rúbricas de evaluación de reporte científico



Rúbricas de evaluación de presentación oral


Presenta los resultados de la misma manera que en la revista de Ciencias Marinas o Limnology and

Faltan por incluir algúnresultado obtenido, las


RÚBRICA DE EVALUACIÓN PARA EL LABORATORIO Y CAMPO DE OCEANOGRAFÍA BIOLÓGICA II “PRESENTACIÓN ORAL”

CRITERIOS DE EVALUACIÓN

EXCELENTE (100 %) BIEN (80 %) REGULAR (60 %)

INTRODUCCIÓN (5%)

Establece claramente el objetivo(s) de la práctica (objetivo general y particulares), indica y define el método(s) a aplicar para alcanzar los objetivos, conceptualiza la problemática a resolver.

El tema a tratar y el objetivo no son claros.

El tema a tratar y el objetivo no se mencionan.

METODOLOGÍA (5%)

Menciona el material utilizado, indica las etapas más importantes del procedimiento y los pasos que se deben realizar para cumplir cada etapa.

La descripción del procedimiento no es clara y/o el listado de material está incompleto.

Gran parte de la información está incompleta e incorrecta.

RESULTADOS, DISCUSIÓN,

CONCLUSIÓN (20%)

Describe los resultados obtenidos, elabora gráficos y tablas (si es el caso), discute el procedimiento y los resultados a la luz de lo esperado, explica si se ajusta el procedimiento o los pasos del mismo a los objetivos y el por qué, identifica y discute las fuentes de error para cada resultado obtenido, las limitaciones y las posibilidades de mejorar el método y proponer soluciones a las limitaciones de las técnicas o métodos empleados, cita la literatura revisada. En función de los objetivos, indica si los mismos han sido alcanzados y el grado de complejidad para obtenerlos, presenta los aspectos más relevantes de la práctica de manera puntual, señala objetivamente los errores observados y las limitantes de las técnicas y método empleado.

Faltan por incluir algún resultado obtenido, no presenta la descripción completa de lo observado, las tablas, gráficos. No son claros cuales fueron los aspectos relevantes de la práctica.

No describe los resultados obtenidos, no presenta tablas ni gráficos, no discute y la literatura consultada no se cita. No presenta los aspectos más relevantes de la práctica, la información es redundante.

PRESENTACIÓN (60%)

La exposición es interesante y amena, presenta soltura y confianza al hablar, utiliza efectivamente las diapositivas (presenta facilidad para leerlas y explicarlas), la información está organizada.

Hace falta confianza al exponer, no se apoya del todo en las diapositivas, la información no está completamente organizada.

La exposición no causa interés a los estudiantes, no preparó la exposición, no tiene seguridad de lo que presenta, no utiliza las diapositivas, la información está desorganizada.

Semestre 2013-1 Hoja 1/2

PREGUNTAS (10%)

Presenta habilidad para contestar preguntas, contesta correctamente, genera interés, realiza por lo menos una pregunta a sus compañeros cuando no le corresponde exponer.

Contesta correctamente más del 50% de las preguntas realizadas y de una manera clara y realiza por lo menos una pregunta a sus compañeros cuando no le corresponde exponer.

Contesta correctamente menos del 50% de las preguntas realizadas y no realiza preguntas a sus compañeros cuando no le corresponde exponer.

Rúbricas de evaluación de reporte fotográfico



Rúbricas de evaluación de bitácora


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