informe monitoreo hidrobiologico epoca de …

INFORME MONITOREO HIDROBIOLOGICO EPOCA SECA REFINERIA DE CARTAGENA

S.A – ECOPETROL S.A

OP-R-018 D. VR. 01.

INFORME MONITOREO HIDROBIOLOGICO EPOCA DE TRANSICION REFINERIA DE

CARTAGENA S.A – ECOPETROL S.A

MAYO 2018



OP-R-018 D. VR. 01.

TABLA DE CONTENIDO

1. RESUMEN _____________________________________________________ 5

2. INTRODUCCION ________________________________________________ 6

3. OBJETIVOS ____________________________________________________ 7

4. MARCO TEÓRICO _______________________________________________ 8

5. AREA DE ESTUDIO _____________________________________________ 12

6. METODOLOGIA ________________________________________________ 14

Fase De Campo __________________________________________________ 14

Fase De Laboratorio _______________________________________________ 18

7. DISCUSION Y ANALISIS DE RESULTADOS _________________________ 24

Comunidad Zooplanctónica _________________________________________ 25

Comunidad Perifiton _______________________________________________ 30

Comunidad Íctica _________________________________________________ 30

8. CONCLUSIONES _______________________________________________ 34

9. REGISTROS FOTOGRAFICOS __________________________________ 35

10. BIBLIOGRAFIA _______________________________________________ 37

11. ANEXOS ____________________________________________________ 41



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INDICE DE TABLAS

Tabla 1. Ubicación general del punto. ..................................................................... 13

Tabla 2. Metodologías empleadas en Campo ......................................................... 15

Tabla 3. Bibliografía empleada para análisis hidrobiológico. ................................... 20

Tabla 4. Metodologías empleadas en Laboratorio .................................................. 22

Tabla 5. Comunidades muestreadas. ..................................................................... 24

Tabla 6. Clasificación taxonómica Zooplancton – Refineria de Cartagena S.A ....... 27

Tabla 7. Clasificación taxonómica Perifiton – Refineria de Cartagena S.A .............. 29

Tabla 8. Descripción general de la Ictiofauna ......................................................... 30

Tabla 9. Clasificación taxonómica Ictiofauna – Refineria de Cartagena S.A ........... 32



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INDICE DE FIGURAS

Figura 1. Actividades Fase de campo ..................................................................... 14

Figura 2. Actividades Fase de Laboratorio. ............................................................. 19

Figura 3. Abundancia del Zooplancton .................................................................... 28

Figura 4. Riqueza del Zooplancton ......................................................................... 28

Figura 5. Abundancia del Perifiton .......................................................................... 28

Figura 6. Abundancia del Perifiton .......................................................................... 28



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1. RESUMEN

Se realizaron muestreos hidrobiológicos para caracterizar las comunidades del

Zooplancton, Perifiton, Organismos Bentonicos, Ictiofauna y Macrofitas en las

Estaciones E3, E5, E7 y E10 ubicadas en el área de influencia de la Refineria de

Cartagena S.A en el departamento de Bolivar. El presente estudio corresponde a la

época de transición (Abril, hasta Julio y se ejecuto los días 24 y 25 de Mayo de

2018).

En la comunidad bentonica no se reportaron organismos; esto posiblemente a la

corriente ya que es suficientemente fuerte para arrastrar los individuos en el

momento de la toma de muestras, al tipo de sustrato y a la hora en que se

desarrollo el monitoreo.

En la comunidad Perifitica se reportaron tres grupos principales conocidos como

diatomeas, algas verdes y cianobacterias. En total se registraron 6 morfoespecies

(Navicula sp., Oscillatoria sp., Nitzschia sp., Gyrosigma sp., Surirella sp. y Tabellaria

sp.,) de las cuales las diatomeas fueron las más comunes y abundantes en los

cuatro puntos muestreados. Las cianobacterias presentes en solo una estacion

tuvieron represenataciones bajas en términos de abundancia y riqueza.

En el Zooplancton se identifico una clase taxonómica (Maxillopoda), y dentro de

estos los comunmente denominados como copépodos (Calaniodea y Cyclopoida y

las Larvas Zoea y Nauplio); típicos de columnas de agua cercanas a las bahías y

predominantes en el plancton marino.

Finalmente, la Ictiofauna estuvo representada por ocho especies; todas

representativas de fondos; profundidades medias, estuarios y típicos de arrecifes

en estados juveniles.



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2. INTRODUCCION

En el presente documento se realiza el análisis del monitoreo hidrobiologico en la época de

TRANSICIÓN, correspondiente a comunidades hidrobiológicas (zooplancton,

macroinvertebrados bentónicos de fondos balandos, perifíton, macrófitas acuáticas e ictiofauna)

de cuatro (4) puntos de monitoreo localizados en el área de influencia de la Refinería de

Cartagena S.A.– Ecopetrol S.A. de la ciudad de Cartagena, departamento de Bolívar.

El monitoreo se realizó en la época de transicion el día 24 Y 25 de Mayo de 2018, por solicitud

de la empresa REFINERIA DE CARTAGENA S.A., con el fin de determinar el estado ambiental

de los sitios por medio de la caracterización bacteriológica y composición estructural de las

comunidades hidrobiológicas, en cada uno de los puntos monitoreados; para ello, se realizó la

toma de muestras directas en cada punto solicitado, las cuales posteriormente fueron llevadas

al laboratorio para su respectivo análisis. Una vez culminada esta etapa, se describieron las

características bioindicadoras de las especies.

La metodología de recolección, tipo de muestreo, registros de campo, cadenas de custodia,

almacenamiento, envío y demás procedimientos de garantía y control de calidad del trabajo en

campo y de laboratorio, se realizaron de acuerdo con los procedimientos establecidos en las

guías de metodología propuestas en las bibliografías de la APHA, AWWA y WPCF, en el

Standard Methods 22nd Edition (2012), el “U.S. EPA”, Villafañe y Reid (1995), Paggi y Paggi

(En: Lopretto y Tell, 1995), Maldonado-Ocampo et al., (2005) y Salinas & Agudelo (2000).

Adicionalmente, durante el monitoreo, IHA SAS., siguió las medidas de manejo socio-

ambiental, seguridad industrial y salud ocupacional pertinentes a la actividad utilizando un

programa de aseguramiento de la calidad en el muestreo y el análisis de campo para

correlacionar las condiciones del entorno con el comportamiento del recurso en un momento

dado.



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3. OBJETIVOS

Realizar la caracterización de las Comunidades hidrobiológicas (Zooplancton, Perifiton,

Bentos, e Ictiofauna), de acuerdo a los resultados obtenidos en abundancia de

individuos y riqueza de especies dispuestas en los puntos de muestreo establecido por

el Cliente (ECOPETROL S.A.),

Mencionar las morfo especies principales dentro de cada comunidad para poder

determinar las principales características en cuanto a bioindicación se refiere.

Presentar registró fotográfico extraido del análisis e identificación de las morfo especies

reportadas en cada una de las comunidades estudiadas de los puntos muestreados en

este proyecto.



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4. MARCO TEÓRICO

Los sistemas acuáticos, en términos generales, son ambientes que se encuentran en un estado

dinámico, es decir, que constantemente están sujetos a cambios en sus propiedades físicas,

químicas y biológicas (calidad del agua), dependiendo de las condiciones y actividades que se

estén llevando a cabo en sus alrededores por factores externos a ellos como antropogénicos,

climáticos y ambientales. Estas características afectan directa e indirectamente a la capacidad

que tiene el agua para lograr el sustento tanto del ser humano como de las comunidades

vegetales y animales a nivel macro y microscópico.

Plancton

El plancton es una comunidad acuática que se desarrolla en la columna de agua a merced de

las corrientes, se compone de microalgas (fitoplancton) y microinvertebrados (zooplancton)

(Ramírez y Viña, 1998). El fitoplancton en una definición completa es un ensamblaje de

organismos planctónicos principalmente fotoautotróficos. En los ríos está sometido al

movimiento pasivo por el viento y las corrientes que comúnmente se presentan en la superficie

del agua. Asimismo, es el principal encargado de la producción primaria y es muy diverso

(Ramírez y Viña, 1998; Roldan y Ramírez, 2008).

Por otra parte, el zooplancton se caracteriza por ser poco diverso en aguas continentales y está

conformado por todos los organismos microscópicos de origen animal que flotan libremente en

el agua, principalmente protozoos, rotíferos y microcrustáceos (Roldan y Ramírez, 2008). El

uso de la comunidad planctónica como bioindicador de los sistemas lóticos, es muy limitado,

debido a lo efímeros que son estos ecosistemas (Roldan y Ramírez, 2008).

La metodología utilizada en campo para la recolección del plancton, se basa en el

planteamiento expuesto en bibliografía especializada como el Standard Methods (10200B), y el

análisis que se realiza para su identificación en el laboratorio se basa en la propuesta de

Semina (1978), presentada en el Phytoplankton manual de la UNESCO y en la propuesta de

Paggi y Paggi (1995).

Perifiton

El término Perifiton hace referencia a un complejo grupo de microrganismos (algas, bacterias,

protozoos, hongos), que se encuentran embebidos dentro de una matriz polisacárida (Lock et



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al. 1984). Este concepto ha sido modificado en varias oportunidades y después de esto, se ha

establecido como significado general; Una comunidad que está compuesta básicamente por

algas que habitan sobre superficies libres sumergidas en sistemas acuáticos o por lo menos

que tengan una relación directa con la dinámica de ellos.

Esta comunidad también desempeña un papel muy importante dentro de un ecosistema debido

a que el Perifiton es capaz de producir metabolitos que son indispensables para la cadena

alimenticia porque establece y determina una tasa alta de reciclaje o remineralización de

nutrientes y porque estos microrganismos son usados como excelentes bioindicadores de la

calidad del agua, es decir de las propiedades del sistema.

Su desarrollo y composición estructural depende del tipo y rugosidad del sustrato, además del

estado trófico del agua, debido a que el Perifiton constituye una fuente importante de alimento

para la Ictiofauna y grupos de insectos, principalmente. También es necesario mencionar que

dentro de esta comunidad existen especies que son altamente resistentes a la degradación

orgánica y química, logrando desarrollarse tanto en sistemas oligotróficos como eutróficos

(Roldan y Ramírez, 1998), determinando así, una alta distribución espacial.

La metodología utilizada en campo para la recolección del Perifiton se basa en el planteamiento

expuesto por Rivera y Zapata (2009) y para el análisis que se realiza en el laboratorio se basa

en el modelo planteado por el Standard Methods (10300C - modificado).

Bentos

Los organismos pertenecientes al Micro y Macrobentos están catalogados como excelentes

bioindicadores para evaluar la calidad de un sistema hídrico debido a que es la única

comunidad que involucra a todos los organismos que habitan sobre y dentro del sustrato tanto

en sistemas dulceacuícolas como marinos y estuarinos. La estructura, morfología y desarrollo

de los organismos bentónicos varían de acuerdo a la composición del sustrato donde se

encuentren asentados, debido a que sus estructuras se adaptan y modifican de acuerdo al tipo

de alimento que se encuentre en el sitio (Brusca & Brusca, 2005). En sí cada Familia presenta

características únicas y diferenciadas que permiten que una especie habite o no en un lugar

determinado (Roldan y Ramírez, 2008).



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La metodología empleada en campo para la recolección del bentos se centra en el

planteamiento expuesto en el Standard Methods (10500B), y para su posterior análisis en el

laboratorio la planteada en la sección 105000C.

Ictiofauna

La comunidad Íctica (Peces), generalmente responde a condiciones propias del sistema, como

características geológicas (contenido de minerales y nutrientes en los suelos, sólidos, erosión),

tasa de renovación del agua (velocidad, caudal) y características morfométricas (forma,

relación área superficial: profundidad) (Ramírez y Viña, 1998). Además de condiciones

biológicas (comportamientos y reproducción de especies), la época del año y factores de origen

antropogénico que de una o de otra forma modifican o varían las condiciones naturales de un

ecosistema.

La Ictiofauna presenta un interés biológico importante que se traduce en un continuo esfuerzo

por ubicarlos y determinar sus relaciones naturales. Esta comunidad se convierte en una de las

más adecuadas para realizar estudios sistemáticos debido a que son organismos que

presentan una interesante y destacada abundancia en cualquier entorno acuático; además de

tener múltiples características que permiten realizar análisis taxonómicos y tratamientos

estadísticos (Lagler et al., 1984). Sin embargo, esto no los hace los mejores bioindicadores de

un sistema (lotico), debido a que los peces son organismos que poseen la facultad de

trasladarse fácil y eficazmente de un sitio a otro cuando el sistema presenta condiciones que no

son favorables y/o aptas para llevar a cabo sus procesos fisiológicos (Maldonado et al., 2005).

La metodología utilizada en campo para la recolección de la Ictiofauna se centra en el

planteamiento expuesto en el Standard Methods (10600D), y para su posterior análisis en el

laboratorio en la sección 10600D.

Bioindicación

El concepto de Bioindicación hace referencia a que cualquier organismo o microorganismo que

se considere como un proveedor de información acerca de las condiciones del medio en el que

se encuentra habitando, debido a que su establecimiento refleja e indica las adaptaciones

(Roldán, 2003), que éstos tienen que originar para que exista un equilibrio significativamente

bueno entre el sistema y ellos para lograr una simbiosis aceptable que les permita cumplir con

el ciclo vital. Es de esta forma como la bioindicación de un organismo emplea la presencia,

abundancia e incluso la ausencia para señalar algún tipo de proceso (físico, químico, biológico,



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ecológico), que se esté llevando a cabo en el sistema, teniendo en cuenta que cualquier clase

de evento que se desarrolle provocará un cambio indeterminado en las características iniciales

del organismo como tal (Pinilla, 2000), el cual se puede evidenciar de forma inmediata o incluso

años después de ocurrida la perturbación, eso depende de las condiciones del sistema y de la

fisiología que presente el organismo.

En términos generales, todo organismo es bioindicador del sistema donde se encuentre

habitando, pero solo algunos tienen la facultad de asimilar y exponer los procesos que se estén

llevando a cabo determinando así el estado real del ecosistema. Es así como los organismos

que verdaderamente son bioindicadores tienen la facultad de demostrar procesos (biológicos),

que los parámetros físicos y químicos no alcanzan a expresar (Pinilla, 2000).

También se debe tener presente que cuando las condiciones originales de un sistema cambian

paulatina o radicalmente, se altera ese equilibrio ecológico existente y es por medio de las

especies bioindicadoras que se logra determinar las reales causas que posiblemente origino

dicho evento. Sin embargo, cuando la alteración provocada es muy fuerte puede ocurrir la

extinción de los organismos presentes allí (Roldán y Ramírez, 2008).



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5. AREA DE ESTUDIO

A continuación, se expone la ubicación general de los puntos muestreados dentro del área de

influencia de la Refinería de Cartagena S.A (Tabla 1).

Imagen 1. Ubicación Geográfica.

Fuente: Google Earth. Modificado: Instituto de Higiene Ambiental S.A.S, 2018.



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Tabla 1. Ubicación general del punto.

REFERENCIA PANORAMICA PUNTOS DE MUESTREO

FECHA COORDENADAS

GEOGRAFICAS PLANAS

94835

E-03 24/05/2018 10:00AM

10°19´11,35´Ń 75°30´50,27´´ E

1633350,63 N 842648,79 E

94836

E-05 24/05/2018

3:00PM

10°20´15,48´Ń 75°30´53,92´´ E

1635322,11 N 842546,58 E

94837

E-7 25/05/2018 09:30AM

10°19´43,25´Ń 75°31´53,40´´ E

1634339,74 N 840731,94 E

94838

E-10 25/05/2018 02:30PM

10°17´39,30´Ń 75°31´52,24´´ E

1630530,07 N 840749,94 E

Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.



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6. METODOLOGIA

Fase De Campo

Una vez escogidos los sitios y puntos de muestreo se realizó una descripción

detallada de cada uno de ellos (Anexos – Cadenas de Custodia y Registros técnicos

de campo), posteriormente se procedió a la toma y recolecta de muestras de cada

una de las comunidades a evaluar y analizar empleando los métodos propuestos

para llevar a cabo estos procesos (Figura 1).

Figura 1. Actividades Fase de campo Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.



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En la siguiente tabla se exponen las metodologías que se emplearon en campo para

llevar a cabo la recolección de las muestras referentes a las comunidades

hidrobiológicas (Tabla 2).

Tabla 2. Metodologías empleadas en Campo

COMUNIDAD METODOLOGIA

Zooplancton 10200 B Standard Methods (2012)

Perifiton Rivera y Zapata (2009)

Bentos 10500 B Standard Methods (2012)

Ictiofauna 10600 B,C Standard Methods (2012)


Zooplancton

Estas comunidades se muestrearon por medio de redes especializadas (con una

malla con ojo de luz de 80 micras para zooplancton), que filtran los microorganismos

pertenecientes a éstas en un volumen de agua conocido y se depositan en un cono

terminal donde finalmente se obtiene la muestra deseada (Fotografía 1). La

metodología utilizada es la propuesta por el Standard Methods en el capítulo 10200

B (2012).

Fotografía 1. Muestreo del Plancton.


Una vez obtenida la muestra en el cono terminal de la red se procedió a realizar un

lavado cuidadoso de las ventanillas de éste con agua limpia y un frasco lavador,



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después se depositó la muestra en un frasco de plástico (o de vidrio), de 250 ml, se

tiñó con Lugol de Gram (3-5 gotas) y se preservó con solución Transeau (1:1).

Finalmente se rotuló, se registró en la cadena de custodia y se almacenó en una

nevera de icopor para su traslado al laboratorio.

Perifiton

La comunidad perifítica se muestreó sobre diferentes tipos de sustratos como rocas,

palos, troncos y hojas siempre y cuando se encontraran directamente asociados al

agua del sistema (mediana o completamente sumergidos en el), y mantuvieran

sobre su superficie una biopelícula algal. Para esto se emplearon cuadrantes de

acetato con un área conocida (7.82 cm2), se colocaron sobre los diferentes sustratos

y se raspó la superficie comprendida dentro del área del cuadrante con un cepillo

común de cerdas suaves. La metodología utilizada es la propuesta por Rivera y

Zapata (2009).

Posteriormente el material raspado se dispuso en un frasco de ámbar de vidrio o

plástico de 60 ml en donde previamente se llenó con un poco de agua limpia. Una

vez obtenida la muestra, se tiñó con Lugol de Gram (3-5 gotas), y se preservó con

solución Transeau (1:1). Finalmente se rotuló, se registró en la cadena de custodia y

se almacenó en nevera de icopor para su traslado al laboratorio.

Bentos

Para muestreo en cuerpos de agua profundos, la muestra es recolectada utilizando

una draga, la cual es llevada al fondo con ayuda de una cuerda y cerrada en el

fondo para recolectar el sedimento. (Fotografía 3).



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Fotografía 2. Muestreo del Bentos. Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.

Una vez obtenida la muestra se depositó en bolsas zip-lock y se preservó con

solución Transeau (aproximadamente de 50ml a 100 ml ) Y rosa de bengala (2ml).

Posteriormente se rotuló, se registró en la cadena de custodia y se almacenó en

neveras de icopor para su traslado al laboratorio. La metodología utilizada es la

propuesta por el capítulo 10500 B Standard Methods, 2012.

Ictiofauna (Peces)

La Ictiofauna generalmente se muestrea por medio de artes de pesca conocidos

como tramallo y redes de arrastre en cuerpos de agua grandes y profundos. En esta

ocasión, el muestreo se realizó empleando trasmallo de 500 mts de largo con cinco

paños cada uno de 100 mts (Fotografía 4). El método empleado se basó en

estandarizar los datos a tres horas de muestreo, realizando un total de 2 lances por

punto. La metodología se rige por la expuesta en el capítulo 10600 B,C del Standard

Methods, 2012.

Fotografía 3. Muestreo de Ictiofauna. Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.



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Una vez obtenidas las muestras los ejemplares se pueden o no anestesiar (con 3-5

gotas de esencia de clavo), dependiendo de la reacción del pez. Posteriormente se

miden (Longitud Total y Estándar), se fotografían lo mejor que se pueda desde

varios ángulos haciendo énfasis en las aletas y cabeza, si es posible se identifican

sino, se registran como morfoespecies. El pez o individuo se devuelve a su hábitat.

Si se desea capturar y colectar peces se debe solicitar previamente un permiso de

investigación científica a las autoridades competentes. Solo en este caso, se debe

recolectar un ejemplar por especie encontrada. Para esto se toma el (os) pez (es) y

se deposita (n) en un frasco de vidrio o de plástico (250 ml), o en una bolsa zip-lock,

se preserva (n) con solución Transeau agregando la cantidad necesaria hasta

cubrirlos totalmente. Posteriormente se rotula y se almacena en nevera de icopor

para su traslado al laboratorio. En caso de no capturar se puede realizar entrevistas

a lugareños o habitantes de la zona para poder conocer que especies se encuentran

en la región.

Fase De Laboratorio

Esta fase hace referencia al análisis e identificación de las muestras recolectadas en

campo exponiendo la clasificación taxonómica de cada una de las especies o

morfoespecies que se observen durante el desarrollo de esta interpretación. A

continuación, se expone un diagrama general de las principales actividades y

procesos que se realizan en esta etapa (Figura 2)



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Figura 2. Actividades Fase de Laboratorio. Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.

Para el análisis e identificación de especies de las comunidades hidrobiológicas, se

tomó como referencia bibliográfica textos, artículos, atlas ilustrados y páginas en

línea, registrados dentro de la base datos del laboratorio (Tabla 3).



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Tabla 3. Bibliografía empleada para análisis hidrobiológico.

COMUNIDAD AUTOR (ES)

Streble y Krauter (1987)

Whitford y Schumacher (1969)

Schumacher (1969)

Cox. Eileen J. (1996)

Diaz y Maidana (2005)

Parra et.al (1982)

ORGANISMOS Parra et.al (1982)

DEL Ramírez (2000)

FITOPLANCTON Mejia R. (2011)

PERIFITON Prygiel, J., Coste, M. (2000)

ZOOPLANCTON Guevara C, G. et al. (2003)

Suthers I, M. & Rissik D. (2009)

Ramires F. (1981)

Bao, R. et al. (1989)

Vidal (2010)

Alvarez et.al (2009)

Pinilla (2000)

Gonzalez de I, A. (1988)

Internet

Internet

Internet

Medio Ambiente, Andalucía (2010)

http://www.humboldt.org.co/

Atlas de Microorganismos Planctónicos Presentes en los Humedales Andaluces

Plankton - A Guide To Their Ecology And Monitoring For Water Quality

Atlas Digital del Fitoplancton

Integrated Taxonomy Information System (ITIS) www.itis.gov

El plancton de las Aguas Continentales

www.algaebase.org

BIBLIOGRAFIA ESPECIALIZADA PARA IDENTIFICACION - HIDROBIOLOGIA

TEXTOS - ARTICULOS - PAGINAS WEB

Atlas de Microorganismos de Agua Dulce

A manual of the fresh-water algae in North Carolina

Algae of the Susquehanna River Basin in New York

Identification of Freshwater Diatoms from Live Material

Atlas Del Zooplancton Del Atlantlco Sudoccidental - Cladocera

Comunidad de Invertebrados del Perifiton del Rio Combeima (Tolima, Colombia)

Diatomeas de los Salares Atacama y Punta Negra

Manual Taxonomico del Fitoplancton de Aguas Continentales I

Manual Taxonomico del Fitoplancton de Aguas Continentales II

Fitoplancton de Agua Dulce Bases Ecologicas, Taxonomicas y Sanitarias

Manual del Fitoplancton hallado en la Cienaga Grande de Sta. Marta y Cuerpos Aledaños

Guide Methodologique L´indice Biologique Diatomées

Diatomeas perifíticas y características limnológicas de un humedal urbano en la sabana de Bogotá

Las Diotomeas como Indicadores paleoecologicos en las costas de Galicia.

Indicadores Biologicos en Ecosistema Acuaticos Continentales de Colombia


Roldan (1988)

Diaz y Puyana (1994)

Lecroy (1991)

Lecroy (1995)

Lecroy (1997)

Epler (1996)

Oscoz J., Galicia D., Miranda R. (2009)

ORGANISMOS Heckman, C.W. (2006)

DEL Heckman, C.W. (2008)

BENTOS Oceguera & Pacheco (2012)

G.G.E. Scudder & R.A. Cannings (2006)

Concha D, L. et al. (2011)

Gaviria (1993)

Moreno y Torres (2000)

Prat et.al (2011)

Carrera y Fierro (2001)

Brusca y Brusca (2005)

Internet

Internet

Internet

Internet

http://bugguide.net

http://www.humboldt.org.co/

Integrated Taxonomy Information System (ITIS) www.itis.gov

Moluscos del Caribe Colombiano

An Ilustrated Identifation Guide to the Nearshore Marine & Estuarine Gammaridean 2


Clave Dicotómica Para La Identificación De Macroinvertebrados De La Cuenca Del Ebro

The Diptera Families of British Columbia

Macroinvertebrados de la Cuenca del Ebro: descripción de taxones y guía de identificación

Encyclopedia of South American Aquatic Insects: Odonata - Zygoptera

Registros de sanguijuelas de Costa Rica y clave para la identificación de Cylicobdella costaricae

Encyclopedia of South American Aquatic Insects: Odonata - Anisoptera

Guía para el Estudio de los Macroinvertebrados acuaticos (antioquia)


Identification Manual for the Water Beetles of Florida

Guía para la Identificacion Generica de Larvas de Quironomidos (diptera)

Guía para el Reconocimiento de Larvas de Chironomidae en los rios altoandinos de Ecuador y Peru

Los Macroinvertebrados Acuaticos como Indicadores de la Calidad del Agua

Invertebrados

Claves Para Las Especies Colombianas De Familias Naididae y Tubificidae (Oligochaeta, Annellda)

http://sunsite.ualberta.ca/Projects/Aquatic_Invertebrates/index.php





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Vida y Kótai (2006)

Mojica et.al (2012)

Alarcón (2012)

Mejia y Acero (2002)

Maldonado et.al (2005)

Fenix (2002)

Axelrod y Burgess (1992)

Axelrod (1998)

Internet

Lasso et.al (2004)

Villa - Navarro (2006)

Gregory y Maldonado (2006)

PECES Maldonado et.al (2006)

Lara et.al (2006)

Lasso C. A. y P. Sánchez-Duarte(2011)

Maldonado y Albert (2006)

Lasso et.al (2011)

Lasso et.al (2011)

Mojica, 2006

Zapata P, L.A. & Usma O, J.S. (2013)

Ortega, H. et al. (2012)

González F, G. (1999)

Taphorn B, D.C. (2003)

Urbano-Bonilla A. & Zamudio, J.E. (2008)

Nelson, J.S. (2006)

K.E. Carpenter (2003)

Ortega (2006)

WWF Colombia (2005)

Maldonado et.al (2008)

Rugeles, M.L. (2007)

Internet

Internet

Internet

Internet

Internet

Internet

Internet

Breitenstein (2004)

Ford (1980)

Mojica (1999)

Peces Ornamentales de Agua Dulce en el Norte de Sudamerica

Catalogo de los Recursos Pesqueros Continentales de Colombia

Biodivesidad de la Cuenca del Orinoco

Manual De Identificación Y Biología De Los Peces Characiformes De La Cuenca Del Río Apure En Venezuela

El Mundo de los Peces - Pequeño Manual Ilustrado

Mini Atlas de Peces de Acuario Marino

Catalogo de Peces Ornamentales Comerciales de Arauca

Fishes Of The World

Los Peces del Delta del Orinoco

Los Peces de Castilla y Leon

Peces del Piedemonte del Departamento del Casanare - Colombia

Lista Anotada de los Peces de Aguas Continentales del Peru

Guia de las Especies Migratorias de la Biodiversidad en Colombia - Peces

Listado de los Peces de la Cuenca del Rio Putumayo en el sector Colombo-Peruano

Checklist of the Freshwater Fishes of Colombia

Bonny Fishes - Guide to Orders and Families

Atlas De Peces De Acuario De Agua Dulce

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Peces de la cuenca del río Orinoco. Parte I: lista de especies y distribución por subcuencas

365 Peces

Libro Rojo de Peces Dulceacuicolas de Colombia

Peces de Agua Dulce en el Parque Nacional Natural Tayrona, Colombia.

Libro Rojo de Peces Marinos de Colombia

Peces de los Andes de Colombia

Peces del Alto Magdalena, Cuenca del rio Magdalena, Colombia

Peces de la Zona Hidrogeografica de la Amazonia, Colombia

Peces del Rio Atrato, Zona Hidrogeografica del Caribe, Colombia

Peces de la Cuenca alta del Rio Cauca, Colombia

Species Diversity og Gymnotiform Fishes in Colombia

Peces del Valle Medio del Rio Magdalena, Colombia

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Atlas Ilusrado del Acuario

Guias de la naturaleza peces de acuario

Lista Preliminar de las Especies de Peces Dulceacuicolas de Colombia




En la siguiente tabla se exponen las metodologías que se emplearon en el

laboratorio para llevar a cabo la identificación taxonómica de las especies y/o

morfoespecies pertenecientes a cada una de las comunidades hidrobiológicas

analizadas (Tabla 4).



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Tabla 4. Metodologías empleadas en Laboratorio

COMUNIDAD METODOLOGIA

Zooplancton Paggi y Paggi, 1995 En: Lopretto y Tell, 1995

Perifiton 10300C Standard Methods 2012; Semina, 1978 En: UNESCO,1978

Bentos 10500 C Standard Methods 2012

Ictiofauna 10600 D Standard Methods 2012

Macrofits 10400 D Standard Methods 2012


Zooplancton

Como se mencionó anteriormente, la metodología utilizada para el análisis e

identificación del fitoplancton en el laboratorio se basa en la propuesta de Semina

(1978), presentada en el Phytoplankton manual de la UNESCO y para el

zooplancton Paggi y Paggi (1995) En Lopretto, E.C & G. Tell (eds), expuesta en

Ecosistemas de aguas Continentales, Metodología para su estudio. II. (1995). Para

la taxonomía de cada especie identificada, se utiliza la base más completa y

actualizada en línea conocida como Integrated Taxonomic Information System

(ITIS).

Pasos generales

1. Homogenización de la muestra

2. Extracción de submuestras o alícuotas

3. Conteo e identificación de especies

4. Determinación del volumen de la muestra

5. Obtención y organización de resultados

Perifiton

La metodología utilizada para el análisis que se realiza en el laboratorio de la

comunidad Perifítica se basa en el modelo planteado por el Standard Methods

(10300C, 2012) y Semina, 1978 En: UNESCO,1978. Para la taxonomía de cada



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especie identificada, se utiliza la base más completa y actualizada en línea conocida

como Integrated Taxonomic Information System (ITIS).

Pasos generales

1. Homogenización de la muestra

2. Extracción de submuestras o alícuotas

3. Conteo e identificación de especies

4. Determinación del volumen de la muestra

5. Obtención de resultados

Bentos

La metodología utilizada en el análisis del bentos en el laboratorio se centra en el

planteamiento expuesto en el Standard Methods (10500C, 2012). Para la taxonomía

de cada especie identificada, se utiliza la base más completa y actualizada en línea

conocida como Integrated Taxonomic Information System (ITIS).

Pasos generales

1. Lavado de la Muestra

2. Tinción de la Muestra

3. Separación de Individuos

4. Observación e Identificación de especies.


Ictiofauna

La metodología utilizada para el análisis en el laboratorio para la identificación de los

peces (en caso de capturar especímenes), se centra en el planteamiento expuesto

en el Standard Methods (10600D, 2012). Para la taxonomía de cada especie

identificada, se utiliza la base más completa y actualizada en línea conocida como

Integrated Taxonomic Information System (ITIS).

Pasos generales

1. Observación del espécimen (es)

2. Identificación del individuo (s)




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7. DISCUSION Y ANALISIS DE RESULTADOS

Los reportes de los resultados finales provenientes del análisis en el laboratorio

(riqueza y abundancia), de todas las comunidades muestreadas y analizadas se

encuentran disponibles en los anexos (al final del documento).

La presente caracterización se basa en determinar la composición y abundancia de

las comunidades del Zooplancton, Perifiton, Bentos, macrofitas e Ictiofauna de los

cuatro puntos muestreados en este proyecto.

En la siguiente tabla (5) se exponen las comunidades que fueron muestreadas en

los puntos situados dentro del área de influencia de la Refineria de Cartagena S.A.

Tabla 5. Comunidades muestreadas.

Punto COMUNIDADES HIDROBIOLOGICAS

Zooplancton Perifiton Bentos Ictiofauna Macrofitos

E3

E5

E7

E10 Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.

Condiciones Generales

Los sistemas con características loticas hacen referencia a sistemas abiertos donde

sus aguas se encuentran en un movimiento continuo (corriente), viajando de un sitio

a otro en una sola dirección (Roldan, 2003). Generalmente estos cuerpos de agua

poseen sedimentos y diferentes tipos de materiales en suspensión lo que los hace

presentar un alto nivel de turbidez en sus aguas. Comúnmente, estos ambientes no

presentan condiciones que favorezcan a una tendencia hacia la eutrofia debido a

que existe una re-oxigenación del agua constante por no encontrarse estancada, sin

embargo, estas condiciones pueden variar si se interviene artificialmente y/o

naturalmente el sistema como tal.



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Comunidad Zooplanctónica

La comunidad de organismos que habitan en la columna de agua en el presente

monitoreo estuvo representada por organismos de la clase Maxillopoda (aportando

una densidad total de 0,04961 Ind/L), especialmente por individuos de las familias

Calanidae y Cyclopidae (Larva Zoea y Nauplio); en esta ultima con la presencia

únicamente en los puntos E5, E7 y E10.

Figura 2. Abundancia del Zooplancton


En cuanto a la abundancia se encontró que las familias mas representativas fueron

Calanidae y Cyclopidae siendo esta ultima la mas abundante en los puntos E3 YE5,

posiblemente este resultado se debe a la zona donde fueron monitoreados los

puntos ya que pueden ser ricos en nutrientes, se encargan de mantener el

ensamblamiento de la comunidad.



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Figura 4. Riqueza del Zooplancton


Este es el mayor grupo de pequeños crustaceas, ya que incluyen unas 8500

especies en su mayoría marinas, aunque algunas son dulceacuícolas o terrestres.

Son generalmente planctónicas, representando un eslabon de gran importancia en

las cadenas troficas marinas, ya que se alimentan de fitoplancton y son la base de la

alimentación de muchos peces; han sido bstante estudiados como reguladores de

de las poblaciones de fitoplancton al representar el principal constituyente del

zooplancton marino.

La clasificacion taxonòmica de los organismos identificados se muestra a

continuación: Tabla 6.

E3

PHYLUM CLASE ORDEN FAMILIA MORFOESPECIE

Arthropoda Maxillopoda Calanoida Calanidae Morfo 1

Arthropoda Maxillopoda Cyclopoida Cyclopidae Morfo 2

E5



Arthropoda Maxillopoda --- Larva Nauplio Morfo 3




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E7



Arthropoda Maxillopoda --- Larva Zoea Morfo 4


E10


Arthropoda Maxillopoda --- Larva Zoea Morfo 4


Tabla 6. Clasificación taxonómica Zooplancton – Refineria de Cartagena S.A Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.

Comunidad Perifítica

La comunidad de Microalgas perifiticas en estos puntos estuvo conformada por

organismos de las Clases Bacillariophyceae y Cyanophyceae, y seis Familias

(Naviculaceae, Oscillatoriaceae, Bacillariaceae, Pleurosigmataceae, Surirellaceae y

Tabellariaceae. Donde se registra una densidad total de 6891.8666Ind/cm2.

(Figura 3)



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Figura 5. Abundancia del Perifiton Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.

Con relación a la riqueza de especies los resultados más elevados se presenciaron

por parte de las diatomeas, el punto que presencio mas riqueza fue el E7 con las

Baillarioficieas; las verdeazules un taxa en el punto E3 (Figura 4).

Figura 6. Riqueza del Perifiton


Dentro de las Diatomeas se encuentra Surirella sp., quien es característica de aguas

limpias, aunque también pueden vivir en presencia de desechos ricos en fenoles,

ácido sulfhídrico, cobre o residuos de fábricas de papel (Ramirez, 2000).Nitzschia.,

indica un ambiente con tendencia a la oligotrofia, es propio de aguas someras y

litorales (Pinilla, 2000), y es un organismo que produce olor a geranio, cuando están

en pequeñas cantidades, y a tierra cuando sucede todo lo contrario (Ramírez,

2000). De otro lado Navicula sp., hace referencia a hábitats limpios, resistente a la

polución originada por residuos de fábricas de papel y fenol. La mayoría de estas

especies indican, generalmente, la presencia de alguna sustancia (acido, metales),

dentro del agua como cromo, fenol, aceite y ácido sulfhídrico. Otras indican una

salinidad alta y un pH bajo y otras más tienen la facultad de causar obstrucción a

filtros y/o tuberías (Ramírez, 2000).



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Finalmente, las algas verde azules con Oscillatoria sp quienes demuestran aguas

ricas en nutrientes, con concentracones elevadas de materia organica. En conjunto

los grupos reportados en esta comunidad se puede encontrar en todo tipo de

ecosistemas acuáticos bajo cualquier condición organoléptica, no obstante, su

presencia está altamente relacionada con cuerpos de agua eutróficos (Pinilla, 2000).

La calsificacion taxonómica de los organismos identificados se muestra a

continuación:

Tabla 7. Clasificación taxonómica Perifiton – Refineria de Cartagena S.A

E3

PHYLUM DIVISION CLASE ORDEN FAMILIA MORFOESPECIE

--- Ochrophyta Bacillariophyceae Naviculales Naviculaceae Navicula sp.

Cyanobacteria --- Cyanophyceae Nostocales Oscillatoriaceae Oscillatoria sp.

--- Ochrophyta Bacillariophyceae Bacillariales Bacillariaceae Nitzschia sp.

E5


--- Ochrophyta Bacillariophyceae Naviculales Pleurosigmataceae Gyrosigma sp.



--- Ochrophyta Bacillariophyceae Surirellales Surirellaceae Surirella sp.

E7


--- Ochrophyta Bacillariophyceae Naviculales Pleurosigmataceae Gyrosigma sp.

--- Ochrophyta Bacillariophyceae Tabellariales Tabellariaceae Tabellaria sp.




E10





--- Ochrophyta Bacillariophyceae Naviculales Naviculaceae Navicula sp. Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.



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Comunidad Bentónica

La comunidad de Macroinvertebrados bentonicos estuvo ausente, esto quizá debido

al tipo de sustrato, ya que, en arenas y sedimentos finos, la permanencia de esta es

mas limitada debido al poco agarre y adhicion contra el arrastre por el flujo de agua.

Quizá además se deba al tipo de disrtribucion que los organismos de esta

comunidad dentro de la Bahia.

La corriente de agua también es un factor importante ya que arrastran los individuos

de la zona por la fuerza que esta lleva, la corriente arrastra las partículas en

suspension obligando a la comunidad a despazarse y a buscar alimento en otros

lugares donde se pueda establecer y mantener la comunidad.

Comunidad Íctica

Los peces constituyen uno de los grupos más diversificados y abundantes de los

vertebrados. Son organismos acuáticos que poseen estructuras más complejas y

una serie de adaptaciones que les permiten vivir en todas partes del mundo.

Representan un recurso muy importante dentro de los cuerpos de agua, tanto por

sus interrelaciones ecológicas, como por poseer importancia comercial.

Dentro de los cuerpos de agua, esta comunidad representa un nivel superior dentro

de la cadena trófica. En Suramérica se estima que existen más de 3000 especies,

aunque el número definitivo parece ser mayor (Uribe, 1996).

Tabla 8. Descripción general de la Ictiofauna

Especie Descripción Fotografía

Mugil incilis

Nombre Común: Lisa

Habita aguas tropicales y templadas, en aguas costeras marinas y estuarios.

Tipicamente costero. Son detritívoros – planctivoro. Se distribuye en un rango

de profundidad de 0 a 125 m.

Sciades proops

Nombre Común: Bagre Piedrero

Habita principalmente en aguas salobres de los estuarios y lagunas,



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Especie Descripción Fotografía también en agua dulce y lagunas

hipersalinas.

Lutjanus synagris

Nombre Común: Pargo biajaiba

Habita alrededor de los arrecifes y en los fondos con vegetación, los juveniles

son de aguas someras.

Chaetodipterus faber

Nombre Común: Chabela

Habita en bahías y ensenadas con fondos arenosos o de escombros y

arrecifes; frecuentemente en grandes cardúmenes de cientos de adultos.

Argyrosomus regius

Nombre Común: Curbina

Habita sobre bahías con fondos blandos y aguas salobres, se encuentran desde

los 10 m de profundidad.

Caranx hippos

Nombre Común: Jurel

Habita sobre fondos blandos y pastos marinos, menos común alrededor de los arrecifes; en aguas salobres y entra en

agua dulce; los peces más grandes, principalmente en aguas profundas; los

juveniles en los estuarios y lechos de pastos marinos.

Haemulon steindachneri

Nombre Común: Ronco

Se caracterizan por habitar en zonas estuarinas, con fondos blandos



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Especie Descripción Fotografía especialmente en ecosistemas

arenosos. Su tamaño puede ser hasta de 30 cm de longitd.

Selene vomer

Nombre Común: Jorobado de penacho

Hábitos estrictamente marinos, demersal, en fondos duros y arenosos

someros; juveniles en estuarios y playas exteriores.


Tabla 9. Clasificación taxonómica Ictiofauna – Refineria de Cartagena S.A

E3

PHYLUM CLASE ORDEN FAMILIA MORFOESPECIE NOMBRE COMUN

Chordata Teleostei Perciformes Sciaenidae Argyrosomus regius Curbina

Chordata Teleostei Perciformes Carangidae Caranx hippos Jurel

Chordata Teleostei Perciformes Haemulidae Haemulon steindachneri ronco

Chordata Teleostei Perciformes Carangidae Selene vomer Jorobado

E5


Chordata Teleostei Mugiliformes Mugilidae Mugil incilis Liza

Chordata Teleostei Siluriformes Ariidae Sciades proops Bagre

Chordata Teleostei Perciformes Lutjanidae Lutjanus synagris Mojarra

Chordata Teleostei Perciformes Ephippidae Chaetodipterus faber Isabela


Chordata Teleostei Perciformes Carangidae Selene vomer Jorobado

E7






E10


Chordata Teleostei Mugiliformes Mugilidae Mugil incilis Liza

Chordata Teleostei Siluriformes Ariidae Sciades proops Bagre



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Chordata Teleostei Perciformes Carangidae Selene vomer Jorobado Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2018.



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8. CONCLUSIONES

Se realizo el análisis de abundacia y riqueza para las comunidaddes

correspondietes a Zooplancton, Perifiton, Ictiofauna, Bentos y Macrofitas; reportando

representatividad únicamente en en las tres primeras; con bajas densidades y

diversiddes tal como se muestra en el capitulo de discusión.

Dentro de la comunidad de Microalgas perifiticas, se evidencia alto predominio por

parte de las comúnmente denominadas Diatomeas, aunque es de resaltar la

presencia de Algas verdes y verde azules.

Para la comunidad de Zooplancton el predominio estuvo bajo la calse maxillopoda;

puntualmente en los denominaods copépodos; organismos típicos de columnas de

agua marinas.

La comunidad bentinoca y Macrofitas estuvo ausente en el presente monitoreo; esto

quizá debido al tipo de sustrato, corriente y época de la colecta.

Finalmente, la comunidad ictica estuvo representada por organismos propios de

bahías, arrecifes y de fondos tanto en épocas juveniles como en adultos.



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9. REGISTROS FOTOGRAFICOS – LABORATORIO

COMUNIDAD DEL

ZOOPLANCTON

Nauplio

Zoea

Cyclopidae

Calanidae



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COMUNIDAD DE

MICROALGAS

Navicula sp.

Oscillatoria sp.

Nitzschia sp.

Surirella sp.

Gyrosigma sp.

Tabellaria sp.



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11. ANEXOS

informe monitoreo hidrobiologico epoca de …

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