informe de practicas pre-profesionales - cultivo de langostino de mar (litopenaeus vannamei) - angel...
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TUMBES - PERUTRANSCRIPT
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“AÑO DE LA INVERSION PARA EL DESARROLLO RURAL Y LA SEGURIDAD ALIMENTARIA”
UNIVERSIDAD NACIONAL JOSE FAUSTINO SANCHEZ CARRION FACULTAD DE INGENIERIA PESQUERA
ESCUELA PROFESIONAL ACADEMICA DE INGENIERIA PESQUERA INFORME DE PRACTICAS – PRE PROFESIONALES
TEMA
CULTIVO DE LANGOSTINO DE MAR
(Litopenaeus Vannamei)
LANGOSTINERA “BUVA CAMARON SAC” - TUMBES
PRESENTADO POR: ANGEL OMAR DIAZ TORRES
ASESOR:
ING: JUAN ZENÓN RESURRECCION HUERTAS
TUMBES – PERU
2013
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AGRADECIMIENTO
Padre… Jamás podré explicar, lo infinitamente agradecido que me encuentro
para contigo. Tu misericordia me transformó, y tu amor me restauró. Bendito sea
el día en el cual te hiciste real para mi vida!
Jesús… Por causa mía tu historia celestial se vio interrumpida. Nunca podré
explicar tanto amor que vio motivo en un pecador, por quien fuiste a morir en la
cruz. Una pausa en la eternidad hizo tu corazón, el cual cambio el destino de un
mortal al infinito. Jamás olvidare el sacrificio tuyo!
Espíritu Santo… Tu compañía durante estos años universitarios me fue
reconfortante, dulce y sincera. Siempre tienes las palabras que me hacen falta.
Jamás pensé llegar a conocer a alguien tan especial. De haberlo sabido tiempo
atrás, te hubiese entregado todo mi corazón. Jamás soñé que se pudiera vivir un
pedazo de cielo, aquí en la tierra. Gracias, nunca me dejes por favor!
Agradezco a mis Padres, Paulino y Maribel quienes se esforzaron por hacer de
mí una persona honorable. Sus oraciones, pudieron más que las falsas
expectativas de las personas. Gracias por proveerme de un dulce hogar.
Anthony, tu vida es un ejemplo digno de imitar.
Yan Marcos, fiel amigo bendigo el día en el cual te conocí.
Ana María, dulce amiga… Afectaste mi vida más de lo que te imaginas.
Agradezco a de manera especial a Don Felipe Burneo Temple y a Doña Ivy
Valdivieso Cerdeña por recibirme con los brazos abiertos en la empresa que
dirigen. Gracias por el buen trato.
Agradezco al Biólogo Pesquero Mario Arangurí, por compartirme sus
conocimientos durante el periodo de prácticas, fue grato aprender de usted
maestro. Gracias por la paciencia que me tuvo.
Agradezco al Ingº Juan Resurrección huertas por asesorarme durante el período
de prácticas de manera desinteresada.
ANGEL OMAR DIAZ TORRES
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RESUMEN
En el presente informe se narra en forma detallada, los conocimientos adquiridos
durante el desempeño de las prácticas pre-profesionales, desarrolladas en la
langostinera “BUVA CAMARON SAC”. Lo cual permitió reforzar los conocimientos
teóricos recibidos durante los años de formación académica.
La empresa se dedica al cultivo intensivo de langostino de mar (Litopenaeus
Vannamei).
Durante el lapso de los 90 días del desarrollo de las prácticas, se adquirió los
siguientes conocimientos:
- Se logró adquirir conocimientos en cuanto a los manejos de controles limnologicos
físicos y químicos.
- Se obtuvo dominio sobre los sistemas de alimentación del langostino, en sus
diferentes fases.
- Se logró adquirir conocimientos acerca de la metodología aplicada en la siembra de
postlarvas.
- Se Adquirió conocimientos sobre el manejo especializado y controlado de la crianza
de langostinos en sistemas de estanquerias.
- Se logró adquirir conocimiento sobre tratamiento de enfermedades.
- Se obtuvo conocimientos sobre las diferentes técnicas empleadas en la cosecha de
langostinos.
- Se alcanzo la debida instrucción en la formulación y solución de problemas que se
puedan presentar durante el cultivo.
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I. INTRODUCCION
En el mundo, la acuicultura ha crecido notablemente en los últimos 60 años,
pasando de menos de un millón de toneladas en la década de 1950, a 51.7
millones de toneladas en 2006 con un valor de 78,800 millones de USD. A pesar
de que la producción por pesca de captura dejó de crecer en la década de 1980, el
sector acuícola mundial ha mantenido una tasa de crecimiento medio anual de
8.7% (excluyendo a China, con un 6.5%) desde 1970 (FAO, 2009).
Según la FAO (2009), la acuicultura representa en la actualidad el 76% de la
producción mundial de peces de aleta de agua dulce y el 65% de la producción de
moluscos y peces diádromos. Su contribución al suministro mundial de crustáceos
ha crecido rápidamente en el último decenio y ha alcanzado el 42% de la
producción mundial en 2006 y, en ese mismo año, proporcionó el 70% de los
langostinos y gambas (penaeidos) producidos en todo el mundo.
El cultivo comercial tecnificado de langostino de mar (Litopenaeus vannamei) es
una actividad que el hom bre ha desarrollado en los últimos 25 años. Es la especie
de mayor importancia acuícola en las Américas. Esta especie pertenece a la
Familia Penaeidae, y se encuentra distribuida en las aguas costeras (litorales) del
Océano Pacífico, desde California hasta Perú.
La acuicultura de langostinos peneidos en el Perú se inició en la década del 70 en
el departamento de Tumbes, único con una porción de territorio con condiciones
climáticas apropiadas. Debido a lo atractivo de esta industria, rápidamente adquirió
un importante rol en la economía de esta región, y por muchos años en la principal
actividad de la acuicultura peruana.
Hacia fines de la década del 90 (años 96 y 97), se alcanza los mejores
rendimientos con producciones de 6,200 TM/año que representaron US $ 45
millones de exportación. Sin embargo, hacia el año 2000, se registran los menores
niveles de producción (560 TM) a consecuencia del virus de la mancha blanca,
evento que estuvo a punto de hacer colapsar esta industria no tradicional, en un
país netamente pesquero.
Pero debido a los proyectos gubernamentales, pero sobre todo al decidido impulso
de los empresarios peruanos, hoy en día esta industria está proyectada de manera
positiva a los años venideros.
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En el presente informe de Prácticas Pre – Profesionales, realizado en la
langostinera “BUVA CAMARON - SAC”, se detalla con objetividad todas las
actividades realizadas, con la finalidad de argumentar los conocimientos adquiridos
sobre el manejo especializado y controlado del langostino (Litopenaeus vannamei).
Y a su vez contrastar los conocimientos teóricos en el ejercicio de la práctica por
medio de la confrontación directa de estos, con los hechos y ocurrencias en el
mismo campo de acción, para lo cual ha sido de vital importancia la participación
en todas las actividades que a diario se realizan en la langostinera “BUVA
CAMARON - SAC”.
La langostinera, posee una infraestructura que sólo permite desarrollar el cultivo
del langostino desde la siembra de postlarvas hasta su comercialización, más no la
reproducción del mismo.
La práctica ha sido de mucho beneficio personal, puesto que los conocimientos
prácticos adquiridos han fortalecido mis conocimientos y mi aprendizaje teórico,
también me es necesario dar a conocer que las prácticas realizadas ampliaron mi
panorama, puesto que influencio en cierta medida mi perspectiva acerca del sector
pesquero.
Estoy seguro y convencido que el presente informe será de mucho beneficio, para
todos aquellos estudiantes que al igual que su servidor, deseen seguir ampliando
sus conocimientos.
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II. OBJETIVOS
2.1 Generales
- Adquirir conocimientos y participar, en el manejo especializado y controlado del
cultivo del langostino. Fortaleciendo los conocimientos teóricos en el ejercicio de
la práctica.
2.2 Específicos
- Adiestrase en el manejo de los controles limnológicos.
- Conocer las técnicas y métodos aplicados en la siembra de postlarvas.
- Adquirir conocimientos sobre el manejo especializado y controlado de la crianza
de langostinos en sistemas de estanquerías.
- Aprender y manipular los sistemas de alimentación del langostino en sus
diferentes fases: postlarvas, juveniles, adulto.
- Realizar el tratamiento y la profilaxis de las enfermedades.
- Adquirir conocimientos sobre las diferentes técnicas empleadas en la cosecha de
langostinos.
- Instruirse en la formulación y solución de problemas que se puedan presentar
durante el cultivo.
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III. MATERIALES Y METODOS
3.1 MATERIALES Y EQUIPOS
3.1.1 Material de Campo
Atarraya.
Baldes de plástico de 20 litros.
Bote de fibra de vidrio.
Comederos de 50 cm de diámetro.
3.1.2 Material de Laboratorio.
Probeta de 100 ml. de volúmen.
Peachimetro digital
Refractrómetro
Termómetro
Disco secchi.
3.1.3 Materiales de Almacén.
Machete
Driza (cabo)
Palas
Baldes de plásticos de 20 litros.
Motobomba
Madera
Mallas
Tinas
Cubo
Bandejas
Costale
Dinos
Comederos
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3.1.4 Materiales de Escritorio.
Libreta de apuntes.
Tablero
Lapicero.
Calculadora científica.
3.1.5 Insumos
Alimento balanceado – Nicovita.
Melaza.
Fertilizante.
Rotenona al 8%.
Hidroxido de Calcio
Nitrato de Sodio
3.1.6 Material biológico
Langostino de mar Litopenaeus vannamei.
3.3. BIOLOGIA Y BIOECOLOGIA DE LA ESPECIE
3.3.1. TAXONOMIA (Bibliografía C)
Clasificación Científica
Reino: Animalia
Filo: Arthropoda
Subfilo: Crustacea
Clase: Malacostraca
Orden: Decapoda
Suborden: Dendrobranchiata
Familia: Penaeidae
Género: Litopenaeus
Especie: L. vannamei
Nombre binomial
Litopenaeusvannamei (Boone, 1931)
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3.3.2 ANATOMIA Y MORFOLOGIA
3.3.2.1 ANATOMIA GENERAL (Bibliografía D)
El cuerpo de un langostino está dividido en dos partes, el caparazón,
que es el escudo sobre el cefalotórax y el abdomen. El caparazón es
conocido como la cabeza y el abdomen como la cola. El caparazón
contiene la cabeza y los órganos vitales, incluyendo el estómago.
La cresta en lo alto de la cabeza y el rostrum que en muchas especies
se extiende por delante de la cabeza son estructuras muy importantes
para distinguir especies. El abdomen está dividido en seis segmentos, el
último segmento termina en una estructura puntiaguda llamada telson.
(Anexo 1)
3.3.2.2 MORFOLOGIA EXTERNA (Bibliografía D)
Litopenaeus vannamei (Boone, 1031)
Una de las características de los crustáceos decápodos, y por lo tanto
de los langostinos, es que los 6 segmentos cefálicos y los 8 torácicos
están unidos en un solo bloque, protegido por un caparazón rígido, en el
que se encuentran 13 pares de apéndices: los 5 cefálicos (2 antena y 3
mandíbulas) y los 8 torácicos (3 maxilípedos y 5 pereiópodos).
En el cefalotórax encontramos los 2 ojos, pedunculados y móviles, el
rostro, bien desarrollado y con dientes en sus márgenes superior e
inferior, las 2 anténulas, con dos flagelos largos cada una, las 2
antenas, con su escafocerito bien desarrollado, las piezas bucales,
mandíbulas y maxilípedos (pediformes el 2º y 3º par) y los pereiópodos,
con el 1º y 2º par acabados en pinzas (más largo el 2º par y con una
pinza más robusta) y los otros 3 pares acabados en una uña. (Anexo 2)
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3.3.2.3 MORFOLOGIA INTERNA (Bibliografía D)
Los langostinos peneidos poseen un sistema circulatorio abierto con un
corazón muscular dorsal localizado en el cefalotórax. Se denomina
hemolinfa a la sangre y a las células de la sangre y hemocitos
respectivamente. (Anexo 3)
Los vasos sanguíneos (con válvulas) dejan el corazón y se ramifican
varias veces antes de que la hemolinfa llegue a los senos sanguíneos
ubicados por todo el cuerpo y donde el intercambio de gases se
produce. Después de pasar por las branquias la hemolinfa retorna al
corazón por medio de tres aberturas sin válvulas ubicadas en las
paredes del corazón.
Gran parte del cefalotórax está ocupado por el hepatopáncreas. Esta
glándula digestiva está formada por divertículos del intestino. Los
espacios entre los túbulos son senos de hemolinfa. La principal función
del hepatopáncreas es la absorción de nutrientes, almacenaje de lípidos
y producción de enzimas digestivas. Uno de los vasos sanguíneos que
dejan el corazón termina en el órgano linfoide, en donde la hemolinfa es
filtrada. Este órgano está localizado ventro-anteriormente al
hepatopáncreas.
Los hemocitos son producidos en el tejido hematopoyético. Este órgano
está disperso en el cefalotórax y mayormente presente alrededor del
estómago y en la base de los maxílipedos.
3.3.3 CICLO VITAL (Bibliografía 1) (Bibliografía 2)
El ciclo vital de un peneido típico como las especies que se hallan en
Ecuador, Brasil, costa atlántica de Estados Unidos y México; costa pacífica de
Perú,y Asia se muestra en el - Anexo 4.
La maduración y reproducción de estas especies se realiza en aguas
profundas, entre 15 y 60m; las hembras fecundadas ponen huevos en
cantidades variables de acuerdo con la especie (entre 10.000 y 1.000.000).
Al cabo de un tiempo, estos eclosionan en una serie de estadios
denominados postlarvas, cada uno de los cuales tiene características
morfológicas determinadas y diferentes requerimientos nutricionales.
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a. Desarrollo larvario
El siguiente cuadro muestra los distintos estadios larvales, forma de
alimentación y comportamiento. (Anexo 5)
Como se puede observar en el - Anexo 4, las postlarvas y/o juveniles
migran hacia la costa, a aguas menos profundas y de baja salininidad: por
ejemplo, zonas de manglar, esteros, lagunas, ricas en materia orgánica,
donde crecen hasta alcanzar estadios de adulto o pre-adulto migrando
luego a mar abierto para madurar y reproducirse.
El siguiente cuadro muestra los distintos estadios larvales y sus principales
características.
ESTADIO ALIMENTACION
PRINCIPAL
COMPORTAMIENTO
Huevo - Flota, tendencia a
depositarse en el fondo
Nauplius Sus propias reservas Locomoción por antenas,
planctónicas
Protozoea Filoplancton Planctónicas, natación por
apéndices cefálicos
Mysis Zooplancton Planctónicas, natación por
apéndices del tórax
Postlarvas Zooplancton y
posteriormente
alimentación omnívora
Los primeros estadios son
planctónicos, luego de
hábitos bentónicos,
natación por pleópodos
ESTADIO
PRINCIPALES CARACTERISTICAS
Huevo -
Nauplius Presenta un cuerpo periforme con tres apéndices.
Primeras antenas, segundas antenas y mandíbulas con
función natatoria. Presenta fototactismo positivo y,
dependiendo de la especie que se trate, comprende de 5
a 6 sub-estadíos, Miden desde 0,32mm de longitud en
nauplio I y hasta 0,58mm en nauplio VI
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b. MUDA (Bibliografía 1)
El hecho importante que relaciona la muda con el crecimiento es que
cuando el animal pierde su viejo esqueleto, inmediatamente comienza a
absorber agua aumentando su volumen con lo cual la nueva cutícula se
expande; luego el volumen ocupado por el agua es reemplazado por
tejidos y en esa forma el langostino crece.
El período de muda es crítico, porque el langostino se encuentra
desprotegido, es fácil presa de predadores, siendo ésta la etapa en la cual
se observa una mayor mortalidad.
Drach en 1939, determinó los estadios de muda de Crustáceos Decápodos
Braquiuros, sobre la base de cambios tegumentarios, extendiendo este
trabajo a todos los decápodos en 1944, dividiendo el ciclo en 4 estadios:
ESTADIOS CAMBIOS TEGUMENTARIOS
Post-muda Período de turgencia debido a la absorción de agua;
los animales no se alimentan.
Intermuda Período de actividad secretora de la epidermis,
crecimiento de los tejidos, el animal se alimenta.
Protozoea Presenta 3 subestadíos que se caracterizan por cambios
morfológicos y sus respectivas mudas. El cuerpo se divide
en dos partes principalmente: un caparazón con forma
hexagonal irregular y la porción posterior dividida en un
tórax con seis segmentos y un abdomen no segmentado.
Mysis El cuerpo se alarga y adquiere una apariencia similar a la
post-larva. Uno de los rasgos particulares del estadío de
mysis es la forma de nadar. Esta se produce en su mayor
parte con la cabeza, hacia abajo y avanzando hacia atrás,
con el abdomen hacia adelante.
Postlarvas El paso de misys a post-larva va acompañado de cambios
poco notorios. Lo más importante es la desaparición de
los exopoditos de los pereiópodos y el desarrollo de setas
en los pleópodos, que su vez se convierten en los
apéndides natatorias.
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Premuda Se inicia la reabsorción del antiguo exoesqueleto y
comienza a formarse una nueva cutícula, el animal no
se alimenta.
Exuviación o
ecdisis
Pérdida del viejo esqueleto.
En general los animales más pequeños tienen un ciclo de muda más breve
por acortamiento del período de intermuda. Este fenómeno ha sido
mencionado también para otras especies de langostinos peneidos y
relacionado no sólo con factores internos, sino también con factores
ambientales como la temperatura y el fotoperiodo.
c. MADURACION SEXUAL (Bibliografía 1)
Es el proceso por medio del cual machos y hembras de una especie
desarrollan sus órganos genitales. (Anexo 6). A continuación se
presentan los 6 estadios dados en los peneidos
Estadio I: Gónadas invisibles a través del exoesqueleto. Aspecto
filiforme, muy pequeñas comparadas con los demás órganos y
confinadas al abdomen, muy fláccidas y de color blanco translúcido.
Estadio II: Gónadas invisibles a través del exoesqueleto. Con aspecto
filiforme pero con un esbozo de desarrollo del lóbulo anterior,
transparentes y con muy poco cromatóforos.
Estadio III: Gónadas invisibles a través del exoesqueleto. Hay un
alargamiento importante, reconociéndose un lóbulo anterior con
lobulaciones digitiformes que cubren el hepatopáncreas y la región
abdominal más engrosada y bien diferenciada del intestino. Son
transparentes y con muchos cromatóforos.
Estadio IV: Ovarios visibles a través del exoesqueleto. Se diferencian
tres regiones: una anterior con dos lóbulos, media con varias
lobulaciones y posterior que se continúa hasta el telson. El color es
verde pálido.
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Estadio V: Ovarios visibles a través del tegumento. Color verde oliva
con cromatóforos. La región anterior compuesta por dos lóbulos
doblados en forma de gancho que llegan al extremo de la región
cefálica, la región media con 6 lobulaciones laterales digitiformes y una
región posterior abdominal que se extiende hasta el telson.
Estadio VI: Las mismas características externas del estadío V, pero la
consistencia es muy fláccida y cremosa, deshaciéndose al tratar de
removerlo. Color verde rojizo. Son los ovarios desovados.
3.3.4. DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA
Esta especie se encuentra distribuida desde el golfo de California,
atravesando las aguas costeras del Océano Pacífico, hasta Tumbes, Perú
3.3.5 PARAMETROS FISICOS – QUIMICOS (Bibliografía 1)
El langostino para reproducirse y desarrollarse adecuadamente necesita
aguas cuyos parámetros físicos y químicos fluctúen dentro los rangos
siguientes.
a) PARAMETROS FISICOS
-Temperatura: 25 – 35ºC.
-Transparencia: 30 – 45 cm
-Color: Verde Claro
b) PARAMETROS QUIMICOS
-Alcalinidad: >80,0 ppm
-Amonio: <0,10ppm
-pH: 7,0 – 8,0
-Oxígeno disuelto: >4,0 ppm
-Salinidad: 28 – 35 ‰
3.4 METODOS
La metodología empleada en las prácticas realizadas, fue de participación directa
en todas las labores que día a día se realiza en la langostinera “Buva Camarón –
SAC”. Técnicamente las actividades realizadas seguían un patrón normal
establecido en todo proceso de cultivo y/o crianza de recursos hidrobiológicos. A
excepción de la reproducción de postlarvas.
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1. Preparación de los estanques
2. Siembra del estanque
3. Manejo del alimento
4. Monitoreo Biométrico
5. Manejo de la calidad del agua
6. Monitoreo de la calidad de Agua – Control Limnológico
7. Limpieza y mantenimiento
8. Cosecha
3.4.1 ÁREA DE ESTUDIO (Bibliografía A)
La Langostinera "BUVA CAMARON SAC" se encuentra en ubicado en el
departamento de: Tumbes, Provincia: Tumbes, Distrito: Puerto Pizarro cerca de
los manglares del mismo.
• Latitud: 03° 29' 07.55" S
• Longitud: 80° 21' 57.25" W
La langostinera "BUVA CAMARON SAC" se encuentra a la altura del kilometro
1278 de la panamericana norte, carretera que comunica a la langostinera con la
localidad de Puerto Pizarro. Un kilometro antes de llegar a esta, se desvía hacia la
derecha por una carretera de tierra (como se indica en la figura con una línea de
color amarillo), luego se llega a un estero el cual se cruza a través de una canoa,
para luego llegar al campo por medio de un tractor.
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3.4.2 ACTIVIDADES REALIZADAS EN LA LANGOSTINERA “BUVA CAMARON SAC”
Durante el tiempo de las prácticas realizadas, se contó con la fortuna de poder
contemplar el ciclo completo de las operaciones de una granja langostinera.
Por lo cual, a continuación pretendo describirlo de manera sistemática, para poder
tener un panorama real y global del cultivo.
3.4.2.1 INFRAESTRUCTURA
El campo de la empresa “BUVA CAMARON - SAC” se encuentra
completamente cercado con alambres de púas.
El campo cuenta con un campamento en el cual se ubica: La cocina, el
comedor, las habitaciones (tanto para el personal obrero como para el
ingeniero) y un servicio higiénico respectivo.
La langostinera, también cuenta con un almacén para el alimento
balanceado y dos estaciones de bombeo.
Estaciones de bombeo. (Anexo 7)
Estación Numero de Bombas Diámetro (cm)
1 2 20 30
2 2 28 20
Entrando en detalle, el campo también cuenta con canales de
abastecimiento de agua para cada estanque respectivamente. Los
canales de alimentación para los estanques 1,2,3,4,5 son de concreto
armado. Los canales de alimentación para los estanques 6,7 son de
geomenbrana de PVC.
Los estanques son de tierra, realizados a tajo abierto, su distribución es
en paralelo. Cada estanque cuenta con una entrada y salida (monje) de
agua, ambos de concreto armado. Los estanques cuentan con diques
de 4 metros de ancho, los cuales permiten el paso de un tractor,
además de facilitar el desplazamiento de la gente, las labores de
evaluación y alimentación.
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Estanques (Anexo 8)
Estanque Ha Tipo de suelo
1 12,10 Grava
2 5,45 Grava
3 6,50 Grava
4 3,20 Grava
5 2,75 Grava
6 5,23 Arena
7 3,50 Arena
El campo no cuenta con un servicio de energía eléctrica. Es por ello que
los trabajos se realizan, solo mientras se tenga luz diurna, es decir; de
6:00 a.m. a 18.30 pm.
En lo que respecta al agua el campo no cuenta con un servicio
exclusivo. Pero si cuenta con instalaciones de agua dulce proveniente
de un poso subterraneo a 150 metros de profundidad aproximadamente,
ubicado cerca a la estación de bombeo.
3.4.3 PREPARACION DE ESTANQUES. (Bibliografía 3),
a) Drenado total
En primera instancia, el estanque debe ser drenado totalmente una vez
finalizada la cosecha. Una vez finalizado el drenaje, la compuerta de
entrada de agua es sellada. Así también la compuerta de salida de agua
(monje) procede a ser sellada herméticamente, esta acción se realiza
para evitar la entrada de agua durante las mareas altas.
b) Secado (Anexo 10)
Es necesario dejar reposar o restaurar el medio ambiente en la granja
langostinera, mediante la interrupción de la producción; durante la
estación seca (verano) se puede conseguir un secado total y en la
estación lluviosa un secado parcial dado las condiciones propias del
clima. Dentro del vacío sanitario los estanques son sometidos a un
período prudente de secado por la acción del sol y viento hasta que el
fondo desarrolle cuarteaduras. Esto contribuye al desarrollo de
langostinos sanos ya que favorece un equilibrio químico, físico y biológico
en el estanque.
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Esta estrategia conocida como vacío sanitario, tiene como objetivos:
El poder romper los ciclos de reinfección, eliminando así las fuentes
de una enfermedad en los estanques y reservorios.
Permite también realizar mejoras y reparaciones importantes en la
infraestructura de las granjas, así como acondicionar los fondos de
los estanques para crear un ambiente saludable para los langostinos
del siguiente ciclo.
Permite oxidar sustancias reducidas (sulfuros inorgánicos presentes
en el suelo del estanque).
Permite acelerar la descomposición de la materia orgánica a través
de las bacterias, para su respectiva mineralización.
Ayuda a desinfectar el fondo.
Notas:
* La descomposición de la materia orgánica durante el secado, es
mucho más rápida en la arena, no así el caso para la arcilla, grava.
*Durante el secado, sólo es necesario que haya cuarteaduras. Más
no es recomendable esperar que toda la humedad del suelo sea
eliminada por acción del sol. Puesto que mientras haya humedad,
habrá bacterias nitrificantes que descompondrán la materia
orgánica.
Pero si se llega a esperar hasta un secado total, en el cual no haya
humedad en el suelo, se eliminaría las bacterias nitrozomas y
nitrobacter lo cual tendría un efecto negativo cuando iniciamos el
cultivo nuevamente. Puesto que se tendría que esperar que haya
una nueva proliferación de los mismos, y mientras ocurre ello habrá
mayor cantidad de materia orgánica sin iniciar el proceso de
mineralización.
*La descomposición de la materia orgánica, se inicia desde la parte
inferior del suelo hacia la superior.
*Durante la etapa de secado, muchas veces por falta de
mantenimiento del estanque, los canales son rellenados por la
erosión del dique. Lo cual produce un estancamiento del agua no
evacuada. Si el nuevo ciclo de producción, no brinda el tiempo
necesario para esperar a la evaporización del agua estancada, se
procede a evacuarla con la ayuda de una motobomba.
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* En el caso de haya charcos de agua en el estanque, se procede a
agregar un biocida (barbasco o rotenona) para los peces existentes:
- La proporción es 6 puñados para 17 litros.
- El método consiste en cambiar el color del agua del charco, con
la solución preparada.
El efecto, de los biocidas es inmediato, pero si se diera el caso de
que al día siguiente se comenzara el llenado del estanque para la
siembra de postlarvas, se recomienda dejar que el biocida actué
durante 1 día, esto se hace con motivo de prevención.
c) Extracción de materiales extraños de los estanques.
En tanto se realiza el secado del suelo, se debe eliminar todo
material extraño dentro de los estanques (alambres, troncos,
metales, piedras, vidrio, palos, plásticos, sacos, etc.) debe recogerse
y ser manejado es sitios previamente establecidos para su reciclaje.
Estos materiales extraños, pueden afectar el buen desarrollo de las
actividades de producción, así como la integridad física de los
trabajadores. Por ejemplo: Durante los muestreos biométricos se
puede alterar la efectividad de las capturas con atarraya; pueden
ocasionar accidentes a los operarios o, se pueden convertir en
refugios de organismos que inciden en los resultados de producción.
d) Limpieza de estructuras y materiales empleados en el cultivo.
Se debe realizar la limpieza y desinfección de compuertas de entrada
y salida de agua, canales, tablas, marcos, mangas, drizas y boyas.
e) Evaluación de la condición del fondo de los estanques
Un análisis de suelo debe incluir información básica sobre:
Composición de materia orgánica (%)
pH
Nitrógeno
Fósforo
Sulfatos
Hierro
Carbonato de calcio
Carbonato magnesio
Carbonato de potasio.
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Los principales parámetros que determinan el estado o condición del
fondo de los estanques son:
-El porcentaje de materia orgánica
-El pH del fondo.
Si el suelo del estanque presenta condiciones ácidas (pH < 7), se
deberá aplicar preferiblemente cal agrícola para corregir la acidez
(subir el pH).
f) Manejo de sedimentos
El langostino pasa la mayor parte de su tiempo en el fondo del
estanque, por lo que es esencial para su salud que los suelos sean
mantenidos en buenas condiciones de manera permanente. Un gran
problema que se presenta en el cultivo es la acumulación de
sedimento suelto, ya sea de fuentes externas al lugar o del sitio
mismo.
Lo que se hace con el sedimento que se acumula en el fondo
después de varios ciclos de cultivo es usarlo para restaurar las
secciones transversales de los muros, mejorando así los taludes, la
altura y la corona.
Esta operación se hace con una buena compactación, para evitar
que este material contamine el estanque por erosión o
deslizamientos.
g) Arado del fondo de los estanques(Anexo 11)
El arado del fondo de los estanques es recomendable, cada uno o
dos años, según las condiciones propias que presenta cada
estanque.
Con el arado, se logra dar mejores condiciones al suelo para
garantizar un ambiente apropiado para el engorde del langostino
(aireación, mineralización, desinfección y oxidación).
Para lograr un resultado eficiente de la operación de arado del suelo,
este debe tener una adecuada humedad yaqué en suelos
extremadamente húmedos o excesivamente secos, no se logra un
rendimiento adecuado del equipo, ni del proceso de arado como tal.
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Para un adecuado arado del suelo, se deben utilizar equipos
agrícolas adecuados como la rastra o la semi-roma, ya que son más
eficientes para esta operación.
También es necesario agregar que durante la faena de arado de un
estanque, se debe aprovechar para incorporar cal u otros insumos
destinados al mejoramiento de las características del suelo. Esta
condición del suelo favorece la incorporación y acción de los insumos
que son aplicados durante la preparación; así también, ofrecerá un
fondo que facilitará algunas de las actividades fisiológicas del
langostino, tal como la muda.
h) Llenado del estanque
Esta operación consiste en colmar el estanque de agua, hasta el
nivel previamente establecido. Ejemplo:
- 0,50 cm; 0,70cm; 0,80cm; 0,90cm.
El proceso de llenado debe ser lento y con supervisión estricta para
garantizar:
Un filtrado puntual en las mangas (Mallas filtradoras, ubicadas
en la entrada de agua al estanque.) (Anexo 12)
Un filtrado puntual en los bolsos (Mallas filtradoras, ubicadas al
final de los ductos de las bombas)
Para ello se debe contar con un buen plan para contemplar el
momento y tiempo puntual de uso de cada filtro, revisión diaria y
proceso de mantenimiento y almacenaje de los residuos hallados.
h.1 Instalación de materiales.
Antes de iniciar el llenado del estanque, es necesario instalar:
a) Mallas filtradoras
Las mallas filtradoras cumplen la función de reducir la entrada de
organismos no deseables al cultivo, puesto que afectan los
rendimientos de la producción, debido a que los organismos que
ingresan pueden ser fuentes de:
Depredación
Competición
Contaminación con patógenos
22
b) Marcos filtradores
También es necesario instalar marcos filtradores en la
compuerta de salida del agua (monje), para evitar la fuga
accidental de las postlarvas. Puesto que al sembrar las
postlarvas, estas tienen un tamaño minúsculo. Estos marcos
filtradores, tienen que permanecer instalados los primeros 30
días.
h.2 Análisis Biológico
La fertilización del agua de los estanques, se realiza para buscar un
equilibrio iónico y bioquímico que favorezca el crecimiento de la
productividad natural (fitoplancton, fitobentos, zooplancton y
zoobentos).
Esto debido a que las los postlarvas durante los primeros días de su
cultivo, se alimentan de filoplancton (diatomeas).
Para ello, durante el llenado se debe hacer un análisis del agua:
a) Análisis de laboratorio.
Consiste en realizar un examen a las condiciones físico-química
del agua del estanque.
b) Análisis directo.
Consiste en observar el color del agua. Tomando en cuenta lo
siguiente:
b.1 Cuando el color del agua presenta una condición
transparente. Esta significa que no existe, productividad
natural (fitoplancton, fitobentos, zooplancton y zoobentos).
Por lo tanto; es necesario fertilizar.
b.2 Cuando el color del agua del estanque, presenta una
coloración verde claro. Significa que existe, productividad
natural (fitoplancton, fitobentos, zooplancton y zoobentos).
Por lo tanto; no es necesario fertilizar.
c) Análisis con Disco Secchi.
Consiste en realizar mediciones con la ayuda de un Disco Secchi,
para luego tomar una decisión mediante la siguiente tabla.
23
Profundidad (cm) Concentración de fitoplancton
Decisión
< 25 cm
Demasiada concentración de fitoplancton
No fertilizar, es peligroso.
25-30 cm Alta concentración de fitoplancton
No fertilizar.
30-45 cm La concentración de fitoplancton es buena.
No fertilizar.
45-60 cm El fitoplancton está escaso Eventualmente
> 60 cm El agua está demasiado clara. La productividad es
inadecuada.
Obligatorio
c.1 Aplicación de fertilizante
La proporción para fertilizar un estanque es la siguiente:
a. Se inicia con 25kg x Ha. (Para iniciar la productividad natural)
b. Se mantiene con 10-15 kgxHa. (Para mantener la proliferación
de la productividad natural.) Esta segunda operación se
realiza, hasta que las postlarvaspuedan mantener la
productividad natural del medio por sí mísmas, a través de
sus heces, carapachos, alimento balanceado no consumido,
etc.
Para fertilizar el agua se realiza lo siguiente:
Se mezcla en un recipiente el fertilizante con agua (del
estanque), hasta diluir el soluto.
Luego se procede a aplicar la solución al estanque, con la
ayuda de una canoa. Para ello se toma como guía las líneas
de los comederos.
Notas:
*Cuando el estanque es llenado con agua proveniente del
estero, no es necesario fertilizar. Puesto que existe
productividad natural; Debido a que otras langostineras
evacuan aguas cargadas de productividad natural hacia el
estero.
*Cuando el estanque es llenado con agua proveniente
directamente del mar, esta presenta una escaza productividad
natural. Por lo cual, si es necesario fertilizar. (Anexo 13)
24
h.3 Análisis Microbiológico
También es necesario realizar un análisis microbiológico del agua del
estanque, para determinar si es necesario aplicar melaza, probióticos
u otros insumos dirigidos a promover o corregir el crecimiento de
microorganismos relacionados con el desempeño de las postlarvas
del langostino. De esta manera, promover un equilibrio microbiano en
el estanque.
3.4.4 SIEMBRA DEL ESTANQUE
El proceso de siembra de los estanques, es definitivo para el éxito del cultivo,
por ello se debe considerar:
a. Fuente de la Postlarva
El éxito de una granja, está condicionada entre otros factores:
La disponibilidad de una fuente confiable de postlarvas.
Asegurar la obtención de larvas saludables y vigorosas.
La compra de postlarvas de dudosa salud y calidad, constituye un alto riesgo
tanto económico como ambiental, dado que la introducción a las granjas de
animales enfermos o portadores de agentes patógenos, facilita la
transmisión y diseminación de enfermedades infecciosas. Por ello es
necesario adquirir postlarvas, solamente de laboratorios que tengan
vigilancia sanitaria. Es interesante conocer que los laboratorios producen
postlarvasresistentes a enfermedades virales. Es por ello que no es
recomendable el uso de postlarvas silvestres. Puesto que estos pueden
trasmitir patógenos virales. (Bibliografía E)
Las postlarvasde buena calidad, deben estar libres de organismos
infecciosos tales como: (WSSV), (IMNV), (YHV), (TSV), (IHHNV), (PvNV)
(BP), (NHP) y presentar un buen estado de salud general. Además, deben
presentar un buen desarrollo branquial y tener un desarrollo morfológico
acorde con su edad (estadio vs. longitud en mm), así también presentar
fortaleza durante pruebas de estrés.
25
La empresa “BUVA CAMARON - SAC”, adquiere postlarvas del país vecino
Ecuador, debido a que los laboratorios de la zona, producen postlarvas de
mala calidad generando así un bajo porcentaje de sobrevivencia. La
langostinera trabaja con el laboratorio COSTAPAC LARVAS S.A. la cual
está ubicado en la provincia de Manabi, el pedido se realiza de acuerdo a la
salinidad que uno requiere, la empresa realiza pedidos con una salinidad de
35‰. Es importante añadir que el laboratorio, sólo aclimata las larvas a las
salinidades que el cliente requiere, más no así para el caso de la
temperatura. Es por ello que las postlarvas requieren un proceso de
aclimatación antes de ser dispuestos en los estanques.
Las larvas se compran "cubicadas", es decir, se tiene una medida exacta
para las ventas, que en el caso de langostinos, es siempre por cuarto de
libra.
El precio promedio de millar de postlarvas:
PL-5 es de USD$ 1.00
PL-6 es de USD$ 1.50
PL-45 es de USD$ 3.00
Cuando las postlarvas son importadas, tienen que contar con una
certificación sanitaria de su país de origen, que incluye los principales
agentes patógenos tales como:
Virus del Síndrome de la Mancha Blanca (WSSV),
Virusde la Mionecrosis Infecciosa (IMNV)
Virus del Síndrome de la Cabeza Amarilla (YHV)
Virus del Síndrome de Taura (TSV)
Virus de la Necrosis Infecciosa Hipodérmica y Hematopoyética(IHHNV)
Nodavirus del Penaeusvannamei(PvNV)
Baculoviruspenaei(BP)
Alfa Proteobacteriacausante de la Hepatopancreatitis Necrotizante
(NHP)
Vibrio penaeicida.
Antes de que las postlarvas puedan ingresar al país (Perú). Se envía una
muestra de las postlarvas hacia el laboratorio de IMARPE. La cual realiza
los exámenes respectivos para descartar la presencia de los agentes
patógenos (mencionados anteriormente), para así poder otorgar una
certificación sanitaria. Permitiendo de esta manera el ingreso de las
postlarvas al país.
26
b. Calidad de la Postlarvas. (Anexo 14)
Es necesario conocer la historia clínica de cada lote de postlarvas a
comprar. Para asegurar la calidad de las postlarvas, se debe:
Realizarse una evaluación microscópica y molecular.
Una revisión macroscópica para determinar tamaño, presencia de
deformidades.
Una revisión macroscópica para determinar la homogeneidad de tallas.
Una revisión macroscópica para determinar actividad, contenido y
movimiento intestinal.
Una revisión macroscópica para determinar la presencia de epibiontes.
Una revisión macroscópica para determinar la opacidad muscular,
desarrollo branquial, cambios de color y melanización de apéndices.
De igual manera, se debe hacer una prueba de estrés.
Procurar observar las postlarvas en la oscuridad, con el fin de detectar
posible bioluminiscencia.
3.4.4.1 OPERACIÓN DE SIEMBRA
Para lograr la cantidad de producción, se necesitan realizar los
cálculos de requerimiento de larvas y alimento básicamente; estos
cálculos, se realizan en función a la densidad de siembra por m2.
Durante el tiempo de las prácticas realizadas, se sembraron los
siguientes estanques:
Estanque (Numero)
Ha Densidad de Siembra (m2)
Post-Larvas
1 - - -
2 - - -
3 6,50 18,46 1 200 000
4 3,20 18,43 590 000
5 - - -
6 5,23 18,04 960 000
7 3,50 18,57 650 000
Ahora bien, debemos tener en cuenta que el llenado del estanque, se
tiene que realizar de 7 a 10 días antes de la siembra. Esto se realiza
con el fin estabilizar las condiciones del medio.
27
También es necesario confirmar con anticipación mediante
monitoreos periódicos de parámetros físico-químicos y biológicos,
que las condiciones del agua de los estanques son aceptables para
recibirlas postlarvas
Dentro del proceso, es fundamental conocer los periodos de siembra
porque están condicionados por las estaciones del año.
Periodos de Siembra. Al sembrar los estanques, es fundamental
tener en cuenta las estaciones del año. (Anexo 15)
Verano – (21 de diciembre - 20 de marzo)
Otoño – (20 de marzo - 21 de junio)
Invierno – (21 de junio - 22 de setiembre)
Primavera – (22 de setiembre - 21 de diciembre)
Puesto que cuando se da los “cambios de estaciones” hay
variaciones drásticas de temperaturas (subidas y bajadas).
Cuando se dan estos “cambios de estaciones”, los langostinos se
estresan debido a subidas y bajadas de temperaturas, lo cual
estimula que estos muden. Al mudar, estos se hacen más
susceptibles a las bacterias, gases tóxicos, canibalismo, etc.
Generando así una mayor tasa de mortandad, puesto que estos
cambios de temperaturas afectan más a los langostinos que tienen
un gramaje alto (10gr, 11gr, 12gr, 13gr, etc). Más no así para las
postlarvas o juveniles.
Ejemplo: Teniendo en cuenta que a los 112 días se cosecha, el
langostino de 14gr.
-Siembro un estanque el 1 de diciembre. Por lo cual las postlarvas
tendrán un peso aproximado de 1,1gr el 21 de diciembre. Fecha en la
cual hay un “cambio de estación” (primavera a verano).
Pero como mencionamos anteriormente, debido al encontrarse en la
etapa juvenil, este no se verá afectado por estos cambios drásticos
de temperatura.
…Continuando con el ejemplo…
-Aproximadamente el 23 de marzo, el langostino ya estaría en 14gr.
Dispuesto para ser cosechado. Pero sucede que unos días antes (20
de marzo) hubo un “cambio de estación” de verano a otoño.
28
Y precisamente como se encontraba en etapa adulta, si es afectado
por estos cambios de temperatura. Generando así una cierta tasa de
mortandad. Entonces como consecuencia al cosechar obtendremos
una biomasa menor de langostinos.
Solución: Este problema se corregiría, sembrando el 15 de
noviembre, y no un 1ero de diciembre. (Es decir, 15 días antes.) Si
fuere ello así, podríamos cosechar semanas antes, evitando así el
“cambio de estación”. Obteniendo de esta manera una mayor
biomasa de langostinos.
a. Preparación de Postlarvas para su transporte.
Las postlarvas, se prepara de la siguiente manera para su
transporte:(Anexo 16)
a. Bolsas de plástico (Doble) – Aprox 14 Litros de agua.
b. Se introduce Carbón activado*
c. Se introduce 4000 – 5000 Postlarvas.
d. Se infla la bolsa con oxígeno.
e. La bolsa, es amarrada con tiras de ule (ligas).
f. Se coloca la bolsa en una caja (40cm de altura x 30cm de
ancho).
*Carbón activado = Una partícula de carbón activo es
principalmente aire. Tiene miles de pequeños agujeros y
grietas a través de las cuales el agua puede circular. Cuando el
agua contiene una molécula orgánica, un contaminante, en
esos pasillos, se produce una fuerza de corto alcance entre la
molécula y el carbón activo y las moléculas se adherirán. Este
método se llama adsorción física. (Anexo 17)
b. Aclimatación de la Postlarvas.
El proceso de aclimatación se define como la gradual adaptación
de las postlarvas a las condiciones del nuevo estanque dónde
pasarán la siguiente etapa de su vida.
Las postlarvas de langostino constituyen uno de los insumos más
costosos en la producción de langostino de cultivo.
29
La manipulación y manejo de las postlarvas incluyendo su
cosecha, empaque en el laboratorio, transporte, recepción en
granja, aclimatación y siembra en los estanques, son sumamente
críticos para su supervivencia.
Durante el proceso de aclimatación, todos los esfuerzos del
personal técnico deben enfocarse en reducir al máximo el estrés y
la mortalidad de las postlarvas mientras estas se adaptan
gradualmente a las nuevas condiciones de calidad de agua de los
estanques.
Una aclimatación exitosa contribuye a asegurar el éxito económico
del ciclo de cultivo.
1. Para iniciar la aclimatación de las postlarvas, se procede a
preparar un cerco con unas varas de madera y nilón, esto con
el fin de que las bolsas con las postlarvas no sean arrastradas
por efecto de las olas del estanque.
2. El proceso de aclimatación típicamente se enfoca en las
posibles diferencias en la calidad del agua entre el transporte y
el estanque en dónde se sembrarán los animales en su destino
final. Los parámetros más importantes a tomar en cuenta en
este proceso son la temperatura, salinidad, pH y oxígeno del
agua.
3. Una vez, transportado las postlarvas desde los laboratorios
hacia la granja. Se procede a realizar una prueba directa.
Prueba directa:
Consiste en abrir una bolsa de postlarva e introducirlo en un
recipiente con agua, extraída del Estanque. Una vez realizado
ello, se espera la reacción de las postlarvas a las variaciones
de temperatura, durante un tiempo aproximado de 1 hora. Si
después de ese lapso de tiempo no se observa mortandad en
el recipientede las postlarvas, esto nos indica que se
adaptaron con éxito.
Una vez finalizada la prueba directa. Con resultados positivos
se procede a colocar las bolsas de las postlarvas en el
estanque. (Anexo 18)
30
E inmediatamente se procede a quitar la primera bolsa, a
todas. Después de haber quitado todas las bolsas, se esperara
un lapso de tiempo de 30 minutos. (Este tiempo, es necesario
para aclimatar a las postlarvas). Transcurrido los 30 minutos,
procedemos a desatar todas las bolsas, para liberar a las
potslarvas. (Anexo 19).
-Cada bolsa, contiene un aproximado de 4000 – 5000
postlarvas.
3.4.5 ALIMENTACION
La nutrición del langostino está basada en alimentos artificiales suministrados
por el granjero y, por una importante variedad de organismos (algas, pequeños
invertebrados bentónicos, etc.) y detritos orgánicos, que son parte de la
productividad natural y del ambiente marino.
Uno de los costos de producción más elevados en la acuacultura es el alimento
balanceado, el cual llega a representar el 60% o más de los costos totales; por
tal motivo, el conocimiento de los requerimientos nutrimentales del organismo
cultivado y alimentarlo de la mejor manera para que aproveche eficientemente
el alimento suministrado, puede marcar la diferencia entre el éxito o el fracaso
económico del cultivo.
3.4.5.1 ASPECTOS IMPORTANTES DEL ALIMENTO
a. Aspectos Nutricionales del Alimento(Bibliografía 4)
En la alimentación, durante el crecimiento del langostino el
componente de mayor importancia son las proteínas.
Aproximadamente de los 40 nutrientes esenciales presentes en el
alimento, todos los aminoácidos, 10 de las vitaminas y la mayoría
de los minerales son solubles en el agua y esto constituye un
problema. Para el pez que consume el alimento casi de una vez,
tal como salmón ytrucha, el problema no es tan serio, pero para
peces que comen lentamente y especialmente para langostinos,
puede ser un problema la lixiviación de los nutrientes del alimento.
31
Es peor aún en el langostino por la manera en que come. Los
langostinos son masticadores externos, lo que significa que
mastican el alimento fuera de su boca. Ellos rompen los pellets e
ingieren pequeñas partículas, pero no comen cada pizca: algunas
partículas se disuelven o se quedan en el fondo o flotando.
Los productores de alimento tratan coneste problema de varias
maneras:
*Primero, muelen los ingredientes a un tamaño muy pequeño para
dispersar nutrientes en los pellets. Si el langostino solo come una
pequeña esquina del pellet, esa esquina debe contener todos los
nutrientes esenciales en el alimento.
Pequeños tamaños de partícula en el pellet también previene que
el langostino agarre y escoja partículas para consumir.
Si el langostino prefiere las partículas de la harina de pescado
sobre las partículas de la mezcla de minerales en el pellet, la
molienda previene que coman todas las partículas de harina de
pescado y dejen las partículas de mineral y por ende deje de
consumir su requerimiento dietario de minerales.
*Segundo, los productores de alimento también usan aglutinantes
para incrementar la estabilidad en el agua.
Los aglutinantes usualmente no son ingredientes nutritivos, lo que
significa que ocupan espacio en la formulación del alimento y solo
contribuyen a la producción de sólidos fecales.
*Tercero, los fabricantes de alimento usan formas estables al agua
de algunos nutrientes, tales como productos encapsulados. Estos
productos pueden resistir la lixiviación, ser ingeridos, pero no
digeridos por el langostino.
El punto de este esfuerzo es incrementar la proporción de los
nutrientes en el pellet delalimento para langostinos que son
consumidos por el langostino y usados para crecimiento, para
hacerque el langostino sea parecido a la trucha en lo referente a
consumo y factores de conversión.
32
b. Requerimiento Proteico del Langostino. (Bibliografía 5)
A continuación se muestra un cuadro con los requerimientos de
los aminoácidos esenciales de las larvas en los estadios Zoea,
Misis y Postlarva.
c. Tipo, tamaño, y precio del alimento balanceado para
langostino de mar.
El langostino tiene requerimientos nutricionales específicos en
cada etapa de su cultivo y por ello es necesario que el alimento
proporcione el balance óptimo de nutrientes así como un
adecuado tamaño de partículas.
En la empresa langostinera “Buva Camarón - SAC” El alimento
utilizado para la dieta alimenticia es elaborado por ALICORP_
Nicovita ® (Anexo 20) La inclinación a esta marca por parte de
la empresa, se debe a la obtención (por experiencia) de
mejores resultados en relación a otras marcas. (Purina,
Expalsa, Alimentsa).
En la siguiente tabla, se observa los productos que ofrece
ALICORP_ Nicovita ® al mercado: Nicovita langostino de mar:
(Bibliografía F )
AMINOACIDO
Requerimiento estimado (% de proteína)
Zoea Misis Postlarva
I II I II I II
Histidina 2.65 2.28 3.04 3.05 2.79 2.34
Argininina 5.60 4.83 6.26 6.28 2.34 4.81
Treonina 2.72 2.34 3.03 3.04 4.82 2.34
Metionina 2.33 2.01 3.28 3.29 2.34 3.06
Triptófano 0.88 0.76 1.37 1.37 3.07 1.27
Valina 3.66 3.15 3.07 3.08 1.27 3.11
Fenilalanina 3.52 3.03 3.17 3.18 3.11 3.07
Isoleucina 2.63 4.27 2.32 2.32 3.08 2.66
Leucina 5.56 4.79 4.78 4.79 2.67 4.79
Lisina 5.42 4.70 4.69 4.70 4.80 4.70
33
d. El buen aprovechamiento del alimento depende de varios
aspectos.
Líneas parentales utilizadas: buena calidad de semilla.
Calidad del agua: la apetencia del langostino es
directamente proporcional a la calidad del agua.
Palatibilidad del alimento: aceptación del alimento por parte
del langostino.
Hidroestabilidad: el alimento no se desbarata al contacto
con el agua.
Tamaño del alimento: peletizado o extruido, alimento
flotante o de hundimiento lento.
Técnica de alimentación: tipo y forma de alimentar.
3.4.5.2 MANEJO DEL ALIMENTACION
a. Tasa de alimentación
Es la cantidad de alimento a suministrar a los langostinos en
el estanque.
Para ello debemos entender que un individuo cualquiera,
jamás podría consumir un 100% de su peso corporal. Esto
sería biológicamente imposible.
De la misma manera un langostino, necesita consumir sólo un
% de su peso corporal, más no el 100%.
PRODUCTO Proteína
(% Min)
Peso(gr) Calibre
(mm)
Etapa de Uso Precio (S/. x kg)
PRE-CRIA POLVO
40% PL 10 a 1 <0,25 Laboratorio, Raceway
PRE-CRIA GRANULAD
O
40% PL 10 a 1 0,30 – 0,80 Alimentación,
Raceway, Pre-cría
KR ½ 35% PL 10 a 1 0,50 – 1,00 Pre-cría, siembra
directa
KR1 35% 1 - 3 1,00 – 2,00 Pre-cría, siembra
directa, engorde inicial
1,98
KR2 35% 3 - 6 2,00 Engorde Inicial 2,14
ACA 23% 6 - Cosecha 2,50
Engorde
ACA 28% 6 - Cosecha 2,50 2,59
ACA 35% 6 - Cosecha 2,50
34
A continuación, presento una tabla referencial de
alimentación.
Peso del Langostino (gr.) % del Peso Corporal
1 5.57
2 5.28
3 5
4 4.83
5 4.6
6 4.5
7 4.37
8 4.25
9 4.12
10 4
11 3.7
12 3.4
13 3.9
14 2.8
15 2.5
16 2.34
17 2.18
18 2.02
19 1.86
20 1.7
21 1.6
Es necesario recordar, que esta tabla presentada es de
referencia. Puesto que cada Ingeniero o biólogo pesquero,
desarrolla su propia tasa de alimentación a través de la
experiencia.
Nota: En el capítulo “Ración Alimenticia”, se realizara
ejemplos del uso de la tabla presentada.
ALICORP_ Nicovita ®. Distribuye una tabla de alimentación
en sus productos de Alimento balanceado. A continuación
presento dicha tabla:
Peso del Langostino (gr.) % del Peso Corporal
6 – 10 4 – 2.5
10 – 15 5.5 – 1.7
15 – 20 1.7 – 1.6
Más de 20 1.6
35
b. Frecuencia y tiempo de alimentación
La frecuencia de alimentación, se refiere al número de veces
por día que se debe suministrar alimento a los langostinos.
En la langostinera “Buva Camarón - SAC”, el alimento
calculado para un día se divide en 2 raciones.
RACIONES PORCENTAJE TIEMPO
1º Ración 40% 8:00 am
2º Ración 60% 14:00 pm
b.1 Factores a tener en cuenta para la frecuencia de
alimentación:
1. Según la biología del langostino, el tiempo de
evacuación del sistema digestivo dura
aproximadamente 3 horas.
En una primera ración el langostino consume lo
suficiente hasta que su estómago esté lleno; después
de 30 minutos a una hora, éstos podrán volver a
comer por segunda vez, pero una menor cantidad,
debido a que su apetito ha sido saciado la primera vez
y su estómago aún conserva alimento en plena
digestión.
Por ello es importante calcular una ración que sea
consumida totalmente antes de las tres horas y así
evitar la sobrealimentación.
2. La frecuencia de alimentación del langostino marino
está directamente relacionada con la temperatura,
conforme sube la temperatura, sube el metabolismo
del langostino y éste necesita alimentarse con mayor
frecuencia debido al ritmo circadiano de actividad
enzimática digestiva.
3. Por otro lado, la productividad natural tiene su mayor
impacto en el primer mes de cultivo cuando el
langostino pequeño tiene una alta preferencia por el
plancton, bentos y detritus del fondo del estanque sin
poner mayor atención al alimento balanceado hasta
más o menos la segunda semana de cultivo.
36
4. El tamaño del langostino
Cuando son post-larvas o juveniles hay que
alimentarlo por las orillas, alimentándole pocas
veces.
Durante el engorde suele concentrarse en las
partes profundas, por ello se alimenta más veces.
5. La disponibilidad de mano de obra para alimentar.
Beneficios, según la frecuencia alimenticia:
1. Al alimentar más veces se evita la subalimentación y el
enanismo de los langostinos más pequeños.
2. Al alimentar más veces crecen con más uniformidad.
Perjuicios, según la frecuencia alimenticia.
1. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado
desperdicio de alimento.
2. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado
valor alto de la tasa o factor de conversión
alimenticia.
3. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado
problemas de calidad del agua.
4. Alimentar una sola vez podrá dar como resultado
lixiviación hacia el agua de nutrientes solubles.
(Vitaminas hidrosolubles.)
c. Métodos de alimentación
Todo productor reconoce que el manejo del alimento implica
cualquier método que mejore el crecimiento y la
supervivencia, con un bajo factor de conversión alimenticia.
En la empresa langostinera “Buva Camarón - SAC” Los
métodos utilizados son los siguientes:
37
1. Método de Boleo (Anexo 21)
Con la alimentación al boleo el alimento es ampliamente
distribuido sobre el estanque y todos los langostinos
cultivados pueden alimentarse adecuadamente, evitando el
estrés que se genera cuando compiten por entrar al
comedero, acentuándose más cada vez que aumenta la
biomasa.
Para realizarlo, es de suma importancia conocer cuál es la
biomasa existente, por lo que hay que realizar muestreos
poblacionales quincenales y de crecimiento semanal para
conocer el peso promedio del langostino y con estos datos,
guiarse por una tabla de alimentación ajustada a la
realidad y trayectoria de producción de la camaronera
(incluye datos de supervivencia estimada, el número de
días que dura una campaña de cultivo, productividad de
cada estanque, estación del año, etc.).
En el suministro al boleo, la única manera de ajustar es
mediante la observación de los resultados del muestreo de
crecimiento en peso semanal cuando el que maneja la
producción observa la falta de ganancia de peso.
Este método de alimentación se aplica durante las 2
primeras semanas después de la siembra.
En el “anexo 26” se presenta la trayectoria que debería
seguirse en el estanque para distribuir el alimento al boleo.
Consideraciones para el método de boleo:
La profundidad del estanque
Los canales interiores del monje.
Ubicación de zonas someras (30-50 cm. de
profundidad)
2. Método con comederos (Anexo 22,23,24)
Los comederos son bandejas circulares fabricadas de aros
de jebe, los cuales que pesan debido a que en su interior
se rellenan con arena húmeda, lo cual provoca que se
hunda. Estos están recubiertos por un paño sintético
(malla).
38
Con este método el alimento es distribuido de manera
equitativa, según la cantidad de comederos que se
encuentren en el estanque.
Este método de alimentación se aplica después de las 2
semanas de siembra. La cantidad de alimento a disponer
en cada comedero es hallado con a través de las tablas de
alimentación.
Cuando se usan comederos, el control del alimento está
basado en la observación de remanentes.
Consideraciones:
El número de comederos: El número de comederos
colocados por 1 ha es de 10 unidades.
Área de influencia por cada comedero:
Aproximadamente 500 – 700m2
Capacidad de carga: Desde 1kg – 1,5kg.
Medidas: 0,5m de diámetro.
Ejemplo: Si se tiene que suministrar 10 Kg./Ha/día.
Suponiendo que se utilizan 10 comederos por hectárea.
Si la cantidad de ración por comedero sobrepasa de lo
establecido (1,5kg). Necesariamente se tiene que
incrementar el número de comederos.
d. Formas de alimentación
Las formas de alimentación dependen directamente del
manejo, la edad y los hábitos de la especie.
En la empresa langostinera “Buva Camarón - SAC” Las
formas de alimentación son las siguientes:
RACIONES TIEMPO PORCENTAJE CANTIDAD BRUTA
RACION POR COMEDERO
1º Ración 8:00 am 40% 4kg 400gr
2º Ración 14:00 pm 60% 6kg 600gr
39
1. Etapa de PostLarva:(Anexo 25)
- Alimentación en “L”
El cual se realiza en dos orillas continuas del
estanque. Lo más recomendable es alimentar en la
orilla de salida (monje) y en uno de los dos lados.
Esta forma de alimentación se debe, a que los
langostinos durante la etapa de postlarvas no resisten
la presión generado en aguas con profundidades de
75cm.
Por lo tanto, estos tienden a permanecer en las orillas,
hasta tener el tamaño adecuado con el cual sea capaz
de soportar presiones más altas.
2. Etapa de Engorde: (Anexo 26)
-Alimentación en “Zic – Zac”
- Alimentación en “U”
- Alimentación en “X”
3.4.5.2 MUESTREO DE CRECIMIENTO
a. Obtención de la muestra
Se obtiene por el método aleatorio, que consiste en ingresar al
estanque a una distancia aproximada de 10 m del ingreso de
agua, donde los ejemplares se extraen con una atarraya, luego
son depositados en baldes plásticos con agua para el pesado
correspondiente. (Anexo 27, 28)
Es recomendable extraer 10 muestras/ha para observar la
distribución de la población en el estanque.
b. Pesado de los ejemplares
De los ejemplares obtenidos en cada sub-muestra sólo se
pesan 10 individuos (langostinos), sin embargo la muestra total
a pesa puede constar de 150 a 200 individuos, con lo cual se
obtiene una distribución de frecuencias casi normal. Hay 2 tipos
de pesaje:
40
1. Pesado Volumétrico:
Consiste en introducir un ejemplar lo más seco posible en una
probeta, luego se procede a observar el nivel de agua que sube
debido al peso del langostino. Por cada ml que se incrementa
este representa a 1gr.
Este tipo de pesado se realiza a ejemplares menores de 50 g
2. Pesado a Granel.
Consiste en colocar un ejemplar lo más seco posible en una
balanza analítica, luego el peso resultante es anotado.
Este tipo de pesado se realiza a ejemplares mayores de 50 g
Este procedimiento es repetido según el número de ejemplares
a pesar. Para luego obtener el promedio total.
A continuación, presento un ejemplo de un muestreo para la
determinación del peso promedio de los langostinos en un
estanque, realizado durante el período de las prácticas.
Peso (gr) Frecuencia N° Ejemplares Peso Total
6 lllllll - -
7 llllllll 7 49
8 lllllllllllllllllllllll 23 184
9 lllllllllllllllllllllllllllllllllllllllllllll 45 405
10 lllllllllllllllllllllllllllllllll 33 330
11 lllllllllllllllllllllllllllll 29 319
12 lllll - -
13 lll - -
137 1287
Peso promedio= 1287gr /137
Peso promedio= 9,37 gr
c. Incremento de peso
Es la diferencia del peso promedio obtenido en el muestreo
actual menos el peso promedio obtenido en el último muestreo:
P = Pa – Pu
41
Donde:
P= incremento en peso (g)
Pa= peso promedio actual (g)
Pu= peso promedio del último muestreo (g)
Ejemplo: Supongamos que durante la semana 11 la
población de langostino de un estanque determinado
tiene un peso promedio de 9,50 gr.
Y durante la semana 12 el langostino llega a obtener
un peso promedio de 10,54gr. ¿Cuál es el incremento?
P = Pa – Pu
AP= 10,54gr – 9,50gr
AP= 1,04gr
3.4.5.3.1 DIVERSOS CALCULOS
a. Cálculo de la Supervivencia.
Para hallar la supervivencia de los langostinos en un
estanque, hay diversos métodos:
1. Por el método del área
S = r/s . 100 %
Donde:
S= supervivencia (%)
r= densidad referencia (ind/m2)
s= densidad de siembra (ind/m2)
Ejercicio
Se tiene: r= 20m2, s= 25m2.Calcular el porcentaje
de sobrevivencia.
S = r/s . 100 %
S =15m2/25m2.100%
S =60%
42
La supervivencia es de 60%
La mortalidad es de 40%
El valor que se obtiene es referencial debido a que
la extracción con la atarraya no es muy eficiente por
el escape de los individuos cuando la canoa se
acerca al punto de muestreo y por el escape de
estos a través de la malla del arte.
2. Por el método de estimación
Se puede calcular en la siguiente fórmula:
S = 100 % - M .t
Dónde:
S= supervivencia (%)
M= tasa de mortalidad diaria (%/día)
t= tiempo de cultivo (días)
Para ello es necesario hallar primero la tasa de
mortalidad diaria:
M = (100 % - S)/T
Dónde:
M= tasa de mortalidad diaria (%/día)
S= supervivencia (%)
T= tiempo de cultivo (días)
M = (100 % - S)/T
M = (100 % - 60%)/112dias
M= 0,3571%
Entonces la tasa de mortalidad diaria es 0,3571%.
Una vez obtenido la tasa de mortalidad diaria,
procedemos a hallar el porcentaje de supervivencia,
para 35 días de cultivo.
43
S = 100 % - M .t
S = 100 % - 0,3571%. 35 días
S =87,5%
Entonces, el porcentaje de sobrevivencia es de
87,5%.
3. Por el consumo de alimento
En la siguiente relación:
S = 100 % .Qa/(%B/100 %) .P .Ns
Donde:
S= Supervivencia actual (%)
Qa= Cantidad de alimento consumido en el día (kg)
% B= Ración de alimento (% de la biomasa a
alimentar en el día)
P= Peso promedio del langostino (kg)
Ns= Número de individuos sembrados
Este es el método más preciso dado que toma en
cuenta el verdadero consumo del alimento por la
población existente en el estanque de cultivo. Para
ello es necesario que el control del consumo de
alimento por el método de comederos sea lo más
preciso posible. Ejercicio: Con los siguientes datos,
calcular el porcentaje de sobrevivencia actual.
Qa= 450kg
% B= 1,7%
P= 0,01075kg
Ns= 1 750 000
S = 100 % .Qa/(%B/100 %) .P .Ns
S=45000/752.5
S=59, 8%
S=100%.450kg/(3,7%/100%)0,01075kg.1750000
44
Entonces el porcentaje de supervivencia actual es
59,8%.
b. Cálculo de la Población
Se calcula por medio de una regla de tres, tomando
como referencia lo siguiente:
El número individuos sembrados.
El porcentaje de supervivencia actual.
Ejemplo:
1750 000 Langostinos 100%
X 59,8%.
X=1046500Langostinos
Entonces, la población de langostinos es de
1046500 individuos.
c. Cálculo de la Biomasa
La biomasa se calcula en la siguiente fórmula:
B = P .Nt
B= biomasa
P= peso promedio (kg)
Nt= número de individuos actuales
Ejemplo: Calcular la biomasa, teniendo los siguientes
datos:
P= 9805,705kg.
Nt= 1046500 individuos
B = P .Nt
B = 0,00937kg .1046500 individuos.
B = 9805,705kg.
Entonces, la biomasa de langostinos es de
9805,705kg.
45
d. Cálculo de la Densidad
De acuerdo a los individuos capturados se obtiene la
densidad de la población referencial, aplicando la
siguiente fórmula:
r = N/(Aat . m)
Dónde:
r= densidad referencial (ind/m2)
N= número de individuos extraídos
Aat= área efectiva de la atarraya (m2)
m= número lanzamientos de la atarraya.
Ejemplo: Teniendo los siguientes datos, realizar el
cálculo para la densidad referencial.
N= 340
Aat= 4m2
m= 8 lanzamientos
r = N/(Aat . m)
r = 340/(4m2.8)
r = 10,62 m2
La densidad referencial es de 10,62 langostinos por m2
3.4.5.3.2 CONVERSION ALIMENTICIA (Bibliografía 6)
La T.C.A se define como la cantidad de alimento suministrado
(en kilogramo) para obtener 1kg de carne de langostino.
1kg de Alimento balanceado = 1kg de carne.
Existen 2 tipos de T.C.A:
1. Tasa de conversión alimenticia real
Este término es usado cuando el alimento artificial es
solamente el único que está siendo suministrado a los
organismos; y que solamente puede ser medido cuando no
hay ningún otro alimento disponible para el animal.
46
2. Tasa de conversión alimenticia aparente
Este término es usado cuando existe aporte de alimento
natural incluso en estanques de sistemas intensivos,
debido a la presencia de productividad natural en el agua
estimulada por la fertilización o desechos de alimento, lo
que hace que varíe o no se pueda medir la tasa de
conversión alimenticia real.
La T.C.A es una medida del peso del alimento abastecido
en kg por la biomasa existente.
Ejemplo:
Teniendo los siguientes datos, calcular la T.C.A
Entonces:
La tasa de conversión alimenticia obtenida es de 1:1,12 la
cual nos indica que durante el tiempo del cultivo. El
langostino uso 1,12kg de Alimento para producir 1kg de
carne.
a. T.C.A Ideal
La T.C.A. debería ser entre 0.6 - 1.0 en langostino de
hasta 10 gramos.
La T.C.A. debería ser entre 1.0 - 1.3 en langostino por
encima de los 10 gramos.
Peso (gr) Edad (días
)
Población inicial
Población Final
Sobrevivencia (%)
Peso Total (kg)
Alimento Balanceado Acumulado
(kg)
14 117 1 200 000 984 928 82,08 13788,99 15390
T. C. A Peso del alimento suministrado (kg)
Bimoasa (kg)
T. C. A = Peso del alimento suministrado (kg)
Bimoasa (kg)
T. C. A = 15390kg
13788,99 kg
T. C. A = 1,12
47
b. Factores que hace variar la T.C.A
La densidad de siembra
Calidad del alimento
Tamaño del langostino cosechado.
Mortalidad repentina del langostino durante la fase
de cultivo, sin poder recuperar biomasa
posteriormente.
Subalimentación del langostino, quizás debido a
densidades mayores de lo programado y/o
competencia de alimento por otros organismos
(caracoles, peces, jaibas); que generalmente se
presenta cuando se alimenta una sola vez al día
con escaso número de comederos viéndose
reflejado en el crecimiento lento del langostino
Aporte de alimento suplementario junto con el
balanceado y/o gran producción de alimento
primario en el estanque;
Robo del langostino o pérdida del alimento antes de
suministrarlo al estanque.
c. Lectura de la T.C.A
Asumiendo que se alimenta con el método de
comederos.
-Si hallamos que la T.C.A. semanal es alta, esto nos
indicaría crecimiento lento o subalimentación.
-Si hallamos que la T.C.A. semanal es baja indica que el
langostino está haciendo buen uso del alimento.
3.4.5.3.3 RACION ALIMENTICIA
1- La ración para las postlarvas (durante las 2 primeras
semanas) es de:
1kg de alimento balanceado, al día por cada 300 000 postlarvas
2- La ración para los juveniles (después de las 2 primeras
semanas) es hallado a través de las tablas de alimentación.
48
Ahora bien, la manera de calcular y ajustar las raciones diarias
de alimento es principalmente con el uso de tablas de
alimentación. Estas tablas están basadas en cálculos para
alimentar un porcentaje del peso corporal promedio estimado
para los animales en el estanque o piscina.
Este porcentaje se va reduciendo a medida que los animales
aumentan de talla.
Este método es relativamente fácil de implementar y requiere de
poco esfuerzo, pero el potencial para cometer errores de
estimados es grande y frecuentemente resulta en
subalimentación o sobrealimentación, y en tasas de conversión
alimenticia altas, por ello el uso de las tablas dependen de la
pericia del ingeniero o biólogo.
A continuación presento, diversas tablas de alimentación:
Diversas tablas de alimentación:
Peso del
Langostino
(gr.)
% del Peso Corporal
Fuente
1
Fuente
2
Fuente
3
Fuente
4
Fuente
5
Fuente
6
Fuente
7
Fuente
8
Fuente
9
1 5.57 25.00 - 12.70 11.00 14.00 - 16.00 16.00
2 5.28 15.00 - 10.00 8.00 8.20 11.70 5.50 11.70
3 5.00 10.00 - 8.00 6.50 6.20 8.60 4.70 8.60
4 4.83 7.70 - 7.00 5.50 5.20 7.00 4.20 7.20
5 4.60 6.60 - 6.00 4.50 4.50 6.20 3.90 6.20
6 4.50 6.00 6.00 5.30 4.00 3.90 4.80 3.60 4.80
7 4.37 - 5.00 4.80 3.20 3.60 4.40 3.30 4.40
8 4.25 - 4.40 4.30 3.00 3.30 4.00 3.00 4.00
9 4.12 - 3.80 4.00 2.90 3.00 3.90 2.90 3.90
10 4.00 - 3.40 3.90 2.80 2.80 3.60 2.80 3.60
11 3.70 - 3.20 3.60 2.70 2.60 3.50 2.60 3.50
12 3.40 - 3.00 3.40 2.60 2.50 3.20 2.60 3.30
13 3.90 - 2.80 3.20 2.50 2.30 3.10 2.50 3.10
14 2.80 - 2.60 3.00 2.50 2.20 3.00 2.40 3.00
15 2.50 - 2.40 2.90 2.40 2.10 2.90 2.30 2.90
16 2.34 - 2.20 2.80 2.40 2.00 2.70 2.30 2.70
17 2.18 - 2.00 2.70 2.20 2.00 2.70 2.20 2.50
18 2.02 - 2.00 2.60 2.10 1.90 2.70 2.10 2.40
19 1.86 - 2.00 2.50 2.00 1.80 2.60 2.00 -
20 1.70 - 2.00 2.50 2.00 1.80 2.60 2.00 -
21 1.60 - 2.00 2.50 1.90 1.80 2.60 1.90 -
49
FUENTES:
1. Angel Diaz Torres.
2. Soya, s.a. (colombia), 40% proteina, > 7 pl/m2.
3. Soya, s.a. (colombia), 35% proteina, > 7 pl/m2.
4. Molinos champion, s.a. (ecuador).
5. Diamasa, s.a. (ecuador) piscina 10 ha, 10 Pl/m2
6. Nicovita, s.a. (perú), 30 pl/m2 (clifford 1992).
7. Purina, s.a. de c.v. (méxico), 8-18 pl/m2.
8. Villalón (1991), 12.5-18.5 pl/m2 (ecuador).
9. Zendejas (1994), juveniles (mexico), densidad no
especificada.
Ejemplo: Teniendo los siguientes datos, calcular la ración
alimenticia.
Peso= 2,70gr.
Edad= 35 días.
Población inicial= 1 750 000 individuos
Estanque= 12,1 ha
Densidad de Siembra=14,46 m2
Para poder hallar la ración alimenticia en las tablas, estas nos
exigen conocer la cantidad de biomasa existente en el estanque.
Para poder hallar la biomasa necesitamos calcular lo siguiente:
-Densidad actual.
-Supervivencia actual.
-Población
-Biomasa.
a. Calculo de Densidad
r = N/(Aat . m)
r =480/(4m2.10)
r = 12m2
50
b. Cálculo de Supervivencia actual.
Por el método del área
S = r/s . 100 %
S = 12m2/14,46 m2. 100 %
S = 82,9%
La supervivencia es de 82,9%
La mortalidad es de 17,1%
c. Cálculo de la población
1750 000 Langostinos 100%
X 82,9%.
X=1046500Langostinos
Entonces, la población de langostinos es de 1450 750
individuos.
d. Cálculo de la Biomasa
B = P .Nt
B = 0,00270kg .1450 750 individuos.
B = 3917,025kg.
Entonces, la biomasa de langostinos es de 3917,025kg.
Una vez obtenido la biomasa existente. Procedemos a
ubicarnos en la tabla y buscar el porcentaje de peso corporal
correspondiente al peso del langostino.
Recordando que tenemos un peso de 2,70gr.
Entonces de la tabla obtenemos que:
Para alimentar 1 individuo de langostino en un peso de 3gr,
necesitamos 5% de su peso corporal.
Peso del Langostino (gr.) % del Peso Corporal
1 5.57
2 5.28
3 5.00
51
De lo calculado anteriormente, conocemos que la “biomasa
actual” es de 3917,025kg, tomando este dato, procedemos a
calcular la ración diaria.
-Para 1 sólo individuo de langostino.
3gr 100%
X 5%
X=0,015gr.
-Para toda la biomasa de langostinos.
3917,025kg 100%
X 5%
X=195,85kg.
La ración alimenticia para el estanque de 12ha, con
1046500 langostinos, de 2,75 gramos de peso; Es
195,85kg.
Factores a tener en para determinar la ración alimentaria:
1. El tamaño del langostino
Este porcentaje en la tabla de conversión se va
reduciendo a medida que los animales aumentan de
talla.
2. Temperatura
La frecuencia de alimentación del langostino marino
está directamente relacionada con la temperatura,
conforme sube la temperatura, sube el metabolismo
del langostino y éste necesita alimentarse con mayor
frecuencia debido al ritmo circadiano de actividad
enzimática digestiva.
3. El pH.
Después de periodos de lluvias intensas causando
turbidez súbita o una caída en el pH, puede reducir el
apetito del langostino.
52
4. Acumulación de materia orgánica
-Si se reduce significativamente el área limpia del
fondo (debido al deterioro de la calidad del fondo) de
los estanques, entonces el número de langostinos en
los comederos puede incrementarse y el alimento
puede ser consumido más rápido.
-Si los comederos están sobre áreas sucias del fondo
del estanque, el número de langostinos que visitan
éstos será reducido.
-Si pasan muchas horas sin que el alimento sea
consumido, empezara el proceso de descomposición
y deterioro del fondo del estanque comprometiendo
la salud del langostino
5. El O2
-La muerte súbita de floraciones de plancton, lo cual
da como resultado consumo bajo de O2 hará que se
vea reduce el apetito del langostino.
-Después de periodos prolongados de exposición a
radiación solar baja los niveles bajos de O2, lo cual
puede reduce el apetito del langostino.
6. Disponibilidad de alimento natural.
Cuando la disponibilidad de alimento natural es alta,
la demanda por alimento balanceado es baja.
7. Los periodos largos sin recambio de agua, puede
reducir el apetito del langostino.
8. Actividad diurna o nocturna.
- Existe un mayor consumo de alimento por parte del
langostino de 1 a 8 gramos durante el día.
- Existe un mayor consumo de alimento por parte del
langostino mayor de 8 gramos durante la noche.
53
9. Si está en muda o enterrado: (Anexo 29)
Haciéndolo que el consumo disminuya al inicio de
este proceso y luego se incremente drásticamente
una vez que la población de langostino ha terminado
de mudar.
3.4.6. MANEJO DE CALIDAD DE AGUA
3.4.6.1MONITOREO DE LA CALIDAD DEL AGUA
El manejo de la calidad del agua es la base para una buena
producción y para protección de la calidad ambiental.
El deterioro de la calidad del agua en los estanques, puede afectar
severamente la salud de los langostinos al punto de poner en riesgo
la población entera. De ahí la necesidad de implementar un sistema
de monitoreo diario de los parámetros físicos y químicos de agua,
que permita anticipar y corregir el desarrollo de condiciones adversas
de calidad de agua, con el fin de restablecer las condiciones óptimas
en el sistema de cultivo.
Es técnicamente imposible pretender manejar la producción en una
granja, sin contar con equipos apropiados para el monitoreo de los
parámetros. Éstos incluyen por lo menos:
Oxímetro
pHmetro
Termómetros
Disco Secchi
Refractómetro
Microscopio
El monitoreo de la calidad del agua involucra:
a) Medición de los parámetros físico-químicos,
b) Elaborar y mantener cuidadosamente registros con los valores
obtenidos
c) Análisis e interpretación frecuente de los datos obtenidos
d) Aplicación de las conclusiones en función de una mejora en las
prácticas de cultivo.
54
1. Oxígeno disuelto
Es recomendable medir los niveles de oxígeno en el agua de los
estanques por la mañana hacia la salida del sol 6a.m. y por la
tarde a las 16:00 hrs.
Es importante hacer lecturas de OD en horas de la noche, en caso
en que las concentraciones de la tarde estén por debajo de 3
mg/L; de esta manera, se pueden implementar correctivos
necesarios para evitar episodios de hipoxia.
Para mantener consistencia en el monitoreo del oxígeno, es
recomendable medir en cada estanque siempre en el mismo
orden y a la misma hora y a la misma profundidad todos los días.
CONCENTRACIÓN DE OD
EFECTO
<1 - 2 mg/L
Mortal si la exposición dura más que unas horas
2 - 4 mg/L
Crecimiento será lento si labaja de oxígeno disuelto se prolonga
4 - 12 mg/L
Mejor condición para crecimiento adecuado
> 12 mg/L
Sobresaturación: riesgo de la“enfermedad de la burbuja de gas”;
puede ser indicativo de alta concentración demicro algas
2. pH
Es importante mantener un pH estable a un rango seguro porque
esto afecta el metabolismo y otros procesos fisiológicos de los
organismos de cultivo.
Puede crear estrés, aumentar la susceptibilidad a enfermedades,
disminuir los niveles de producción y causar un pobre crecimiento,
signos de un pH sub-óptimo produce mucosidad en las branquias,
comportamiento de natación inusual, aletas raídas, daños a los ojos
así como también pobre crecimiento del fitoplancton y del
zooplancton.
55
NIVELES DE PH
EFECTO
14 Letal
13 Letal
12 Letal
11 Letal
10 Poco crecimiento
9 Poco crecimiento
8 Nivel óptimo
7 Nivel óptimo
6 Poco crecimiento
5 No hay reproducción
4 Letal
3 Letal
2 Letal
1 Letal
3. Temperatura
La temperatura obviamente no puede ser controlada en un estanque.
Los animales acuáticos modifican la temperatura de sus cuerpos al
medioambiente y son sensibles a las variaciones de temperatura
rápidas.
Para cada especie hay un rango de condiciones de temperatura.
La temperatura de agua se mide directamente en el agua del
estanque usando un termómetro común.
Además de anotar el valor obtenido, también se debe anotar la
horade la medición. También es necesario asegurarse de usar
siempre el mismo termómetro para obtener mediciones consistentes.
TEMPERATURA EFECTO
<9°C Letal – Crecimiento Lento
25°C - 35°C Nivel óptimo
>36°C
Letal – Pérdida de peso, por alto
metabolismo.
4. Transparencia
La medición con disco Secchi consiste en la profundidad en
centímetros a la cual el disco deja de ser visible, cuando es
sumergido en el agua del estanque.
Usualmente existe una relación inversa entre la visibilidad del disco y
la abundancia de fitoplancton. A medida que el plancton aumenta la
visibilidad disminuye.
56
Al tomar decisiones de manejo con base en las lecturas de disco
Secchi, hay que asegurarse que la turbidez sea realmente producida
por fitoplancton y no por materiales suspendidos en la columna de
agua tales como arcillas, sedimentos o detritos orgánicos.
Usualmente la hora más adecuada para realizar esta medición es
entre las 9:00 y las 11:00 de la mañana.
PROFUNDIDAD (CM)
CONCENTRACIÓN DE FITOPLANCTON
< 25 cm
Si es turbio por fitoplancton, habrá problemas de concentración baja de oxígeno disuelto por la noche o antes de la salida del sol. Cuando la turbidez resulta por partículas suspendidas, la productividadserá baja
25-30 cm
Turbidez es alta y conviene bajar la concentración de fitoplancton
30-45 cm
Si la turbidez es por fitoplancton, el estanque está en buenas condiciones
45-60 cm El fitoplancton está escaso
> 60 cm
El agua está demasiado clara. La productividad es inadecuada y pueden crecer
plantas acuáticas en el fondo de los estanques
5. Salinidad
La salinidad representa la concentración total de iones inorgánicos
disueltos, o sales, en el agua.
Esto juega un rol significativo para el crecimiento de organismos de
cultivo a través de la osmoregulación de minerales de cuerpo en el
agua circundante.
Para una mejor supervivencia y crecimiento, un rango óptimo de
salinidad debe ser mantenido en el agua del estanque.
Si la salinidad es demasiado alta, los langostinos comenzarán a
perder agua al medioambiente.
Los langostinos jóvenes parecen tolerar una mayor fluctuación de
salinidad que los adultos.
Los cambios drásticos de salinidad pueden también alterar la
fauna del fitoplancton y sus densidades de población, y llevar a
inestabilidad del ecosistema.
57
Aspectos importantes del monitoreo de la calidad del agua:
Es necesario que la granja que cuente con un plan para el
monitoreo de los parámetros físicos, químicos y biológicos de los
estanques.
Es necesaria una rutina de calibración de los aparatos utilizados
para medir parámetros, con el propósito de garantizar certeza y
confiabilidad en los datos obtenidos.
Es necesario establecer puntos específicos para la medición de
los parámetros en cada estanque, con el fin de mantener
condiciones similares en el tiempo y que no se afecten los datos
obtenidos en los muestreos.
A continuación presento tablas de parámetros físicos–químicos.
Obtenido de mediciones realizadas durante las prácticas
realizadas.
ESTANQUE pH Temperatura
(°C)
Salinidad
(‰)
1 8,6 30,8 31
2 8,1 30,3 28
3 8,3 28,4 28
4 8,3 28,6 28
5 8,1 30 29
6 8,3 28 26
7 8,4 27 27
Hora: 9:30 am
Fecha: 15-03-2013
58
ESTANQUE pH Temperatura
(°C)
Salinidad
(‰)
1 8,8 31,7 32
2 8,4 32,5 33
3 8,6 31,6 27
4 8,5 31,8 27
5 8,4 32 30
6 8,6 32 25
7 9 33,6 25
Hora: 16:00 pm
Fecha: 15-03-2013
ESTANQUE pH Temperatura
(°C)
Salinidad
(‰)
1 8,4 28,9 33
2 7,7 28,6 28
3 8,5 28,4 28
4 8,5 28,3 28
5 8 29,1 30
6 8,5 26,2 26
7 8,4 27,4 27
Hora: 7:30 am
Fecha: 16-03-2013
STANQUE pH Temperatura
(°C)
Salinidad
(‰)
1 8,8 32 31
2 8,3 32,1 26
3 8,6 32,3 27
4 8,6 32,2 26
5 8,4 31,8 29
6 8,8 32 24
7 8,9 32,9 25
Hora: 15:30 pm
Fecha: 16-03-2013
59
3.4.6.2 AIREACION
La decisión para su uso, está marcada por la concentración de
oxígeno disuelto en el estanque, misma que es dependiente de la
densidad de población (biomasa), la concentración de fitoplancton y
la profundidad del estanque.
El sistema de cultivo de la langostinera “BUVA CAMARON - SAC” es
Semi-Intensivo, por lo que es necesario el uso de aireadores, para
poder asegurar la sobrevivencia de los langostinos.
El horario de encendido y apagado de aireadores está sujeto a los
niveles de oxígeno en el estanque.
Ejemplo:
Supongamos que la medición de los niveles de oxígeno durante la
noche es de 2 mg/L.
-Esto nos indica que durante la madrugada habrá problemas en el
estanque por falta de oxígeno.
Por lo cual es necesario encender los aireadores durante la
madrugada, para así mantener los tenores estables de oxígeno.
Número de aireadores por Hectárea:
1Ha =1hp
Para 1hectárea (Ha) se necesita, 1aireador con 1hp de 2 paletas.
(Anexo 30)
3.4.6.3 RECAMBIO DE AGUA DE LOS ESTANQUES
El recambio de agua es el principal método de dilución de los
compuestos potencialmente tóxicos en el agua del estanque y
permite la dilución de la floración de plancton. Aunque en algunos
sistemas se emplean tasas de recambio bajas o cero recambio.
La reducción en el volumen del recambio de agua en un estanque,
ayudará a reducir costos en combustible, mantenimiento de los
equipos de bombeo y cantidad de nutrientes en los efluentes.
60
El recambio de agua sólo se debe hacer cuando se verifique que va
a ser beneficioso para la producción, pues podría suceder que las
condiciones del aguade la toma sean inferiores a las de la granja. Es
necesario el recambio de agua cuando las variables físico-químicas
de las aguas de los estanques se encuentren por debajo de los
niveles mínimos aceptables.
Factores para realizar un recambio de agua:
a) El color del agua: El recambio de agua es requerido si el agua se
hace más transparente (> 80 cm) o más turbio (< 30 cm)
b) Variación de pH: El recambio de agua es requerido si el pH del
agua varía más de 1.5 en un día.
c) La presencia de burbujas en la superficie: El recambio de agua
es requerido si, aparece espuma estable sobre la superficie del
estanque.
e) Los sólidos suspendidos en el agua:
El recambio de agua es requerido si la cantidad de sólidos
suspendidos se incrementa (por observación)
f) Densa floración algal:
El recambio de agua es requerido si la densidad de la floración algal
es alta. La densa floración algal es indicador de un pH por encima de
9, por lo tanto la floración puede ser monitoreada efectivamente
midiendo el pH y la transparencia.
g) Oxígeno disuelto: El recambio de agua es requerido si la
cantidad de oxígeno disuelto es baja.
h) Amonio o sulfuro de hidrógeno. El recambio de agua es
requerido si la cantidad de Amonio o sulfuro de hidrógeno presentan
tenores altos.
1. Generalidades:
Aun teniendo agua de ingreso de buena calidad no debe ser
cambiada más del 30%. Puede ser cambiada hasta el 10%
drenando la cantidad apropiada del estanque y luego
rellenándolo. Si se necesita recambiar más del 10%, el
recambio adicional debe ser conducido sobre una base de flujo
continuo. Esto ayuda a reducir el estrés extendiendo el periodo
de recambio por un largo periodo y evitando las fluctuaciones
excesivas en calidad.
61
Si algún estanque en la granja presenta problemas de
enfermedades, éste debe ser manejado con cero recambios
agregando agua sólo para reponer niveles perdidos por
evaporación.
La reducción del recambio de agua ayuda a bajar el riesgo de
entrada de depredadores, la diseminación de enfermedades
desde otras granjas o del langostino silvestre y la pérdida de
productividad natural en el interior del ecosistema de la granja.
Durante el verano, se debe reponer el agua perdida por
evaporación, para evitar que suba demasiado la salinidad y que
descienda drásticamente el nivel de operación de los
estanques.
Se debe hacer reposición del agua perdida por filtración.
Graba – filtra 5cm diarios.
Arena – filtra 10cm diarios.
Los riesgos asociados con el recambio de agua pueden ser
reducidos manteniendo el agua en el reservorio por al menos
12 horas.
Existen diversas estrategias de cero recambios de agua y de
recambios bajos o limitados, que pueden ser usadas para controlar la
calidad de agua en los estanques.
Estas estrategias son:
Cero recambio– sistema cerrado y estático.
Bajo recambio – sistema cerrado y recirculación
Bajo recambio – sistema de circulación abierta.
Bajo recambio – recirculación parcial.
1. Cero recambio– sistema cerrado y estático:
Este se refiere a un sistema de cultivo en estanques
completamente cerrado donde el estanque se llena con agua
una vez y no se lleva a cabo ningún recambio durante el ciclo de
producción.
62
En estos estanques no se recambia nada de agua, y al terminar
el ciclo de producción los estanques se drenan a piscinas de
tratamiento donde se prepara y acondiciona el agua, y luego se
reusa durante el siguiente ciclo de producción.
2. Bajo recambio – sistema cerrado y recirculación:
Este se refiere a un método empleado comúnmente en Asia,
donde los estanques se llenan una vez con agua tratada, donde el
agua de recambio proviene de un reservorio central cuya agua ha
sido tratada para eliminar portadores y viriones. El agua de
descarga de los estanques es reciclada y tratada en una serie de
piscinas de tratamiento, y regresada al reservorio central. Algunas
granjas usan sistemas de filtración integrados, con baterías de
piscinas que contienen bivalvos filtradores, peces y macroalgas
para limpiar el agua de recirculación. Los recambios diarios en
estos sistemas son bajos, y la misma agua puede ser usada por 3-
4ciclos de producción antes de ser renovada de fuera. Estos
sistemas requieren de una aireación considerable.
3. Bajo recambio – sistema de circulación abierta.
Este se maneja con un recambio diario relativamente constante
pero muy reducido (1%-5%), donde el agua que entra es filtrada
pero no es tratada químicamente.
Esta estrategia es de alto riesgo porque conlleva un riesgo
permanente de introducción de WSSV a los estanques.
En la empresa “BUVA CAMARON - SAC”, se realiza este tipo de
estrategia de recambio de agua.
4. Bajo recambio – recirculación parcial.
Es aquel donde los estanques se llenan inicialmente con agua
filtrada y tratada, y donde se recircula la mayor parte del agua de
recambio, como se mencionó antes para el sistema de bajo
recambio, cerrado y con recirculación.
3.4.7 MANEJO DE ENFERMEDADES DE LANGOSTINOS
Uno de los aspectos de mayor relevancia en el cultivo de langostino es el
relacionado al cuidado de su salud.
63
La falta de evaluaciones frecuentes de la salud de los langostinos puede
facilitar la diseminación de enfermedades entre estanques de la misma granja y
de una granja a otra de la misma zona.
La pérdida casi total de una población de langostinos a causa de una infección,
pudiera incluso pasar desapercibida si no se realizan evaluaciones semanales
meticulosas del estado de salud de los langostinos.
Las enfermedades son introducidas a través:
Langostinos importados
Insectos
Organismos marinos
Aves
Aguas
Vehículos
Humanos
Entre otros agentes.
Muchas enfermedades se presentan después de períodos de estrés. Un dogma
general de la acuicultura es que el ataque de enfermedades epidémicas se
debe a prácticas de manejo deficientes, las cuales debilitan la resistencia de
animales cultivados. La prevención consiste en evitar las condiciones de estrés
en el cultivo, la introducción de enfermedades emergentes y la implementación
de BPM.
Las condiciones de estrés en el estanque pueden presentarse:
Por problemas crónicos de la calidad del agua.
Frecuente niveles bajos de OD.
Altas concentraciones de amonio no ionizado
Altas densidades de langostino.
Temperaturas extremas durante el manejo
Una dieta deficiente.
El monitoreo de la salud de los langostinos permite una temprana detección de
enfermedades. A la par del monitoreo también se debe diseñar e implementar
procedimientos que ayuden a controlar la propagación de la enfermedad
cuando esta se presente. (Anexo 31)
64
La clasificación de las principales enfermedades son las siguientes:
a. Enfermedades Virales
Virus de la necrosis hipodérmica y hematopoiética infecciosa
(Infectioushypodermic and hematopietic necrosis virus, IHHNV)
Virus del Síndrome de la Mancha Blanca (White spot
syndromevirus,WSSV)
Virus del Síndrome de Taura (Taurasyndrome virus, TSV)
Virus del síndrome de la cabeza amarilla (Yellow head syndrome virus,
YHV)
Virus de la mionecrosis infecciosa (Infectiousmyonecrosis virus, IMNV)
Mionecrosis infecciosa viral (IMNV)
Penaeusvannameinodavirus (PvNV)
b. Enfermedades Bacterianas
Vibriosis sistémica
Erosión bacteriana del caparazón
Síndrome de Zoea II
Enfermedad de luminiscencia
Necrosis del hepatopáncreas bacteriana (NHP-B)
c. Enfermedades por Parásitos
Gregarinas
Microsporidios
Haplosporidios
Epicomensales
Metazoarios
d. Enfermedades por hongos
Micosis
Fusariosis
3.4.7.1 MANEJO DURANTE LA COSECHA
Antes de iniciar la cosecha, se debe elaborar un plan donde quede
definido en cada paso:
Quiénes realizaran la actividad de la cosecha.
Cuándo se realizara la actividad de la cosecha
Cómo se realizara la actividad de la cosecha
65
Para proceder con la cosecha, los langostinos deben reunir ciertas
características, tales como:
Tamaño apropiado
Buen estado sanitario.
Características organolépticas apropiadas.
Textura adecuada. (Aproximadamente el 95% de la población total
tiene que presentar una textura “dura”)
La dureza del langostino, está influenciada por los periodos lunares.
Usualmente se realiza la operación de cosechado 3 antes o después,
de la luna llena y luna nueva. Debido a que durante estos periodos
lunares, el langostino alcanza la textura más adecuada.
Es recomendable, que antes de 15 días de la fecha de cosecha, se
realicen muestreos para determinar las características mencionadas. Es
decir; es necesario realizar un seguimiento al langostino antes de la
cosecha.
Cuando los langostinos cumplen con las condiciones adecuadas, es
necesario retirar la ración alimentación entre 24 y 48 horas antes de la
cosecha, para evitar que la repleción por alimento en descomposición
dentro del langostino luego de la cosecha, cause problemas en el
hepatopáncreas durante el procesamiento
Una vez determinado el día de cosecha, se procede a realizar limpieza
de los monjes, y los ductos de salida de agua.
Luego, se procede a instalar una bolsa de red (en los monjes) llamada
"manga" hecho con paño anchovetero de 10 m de longitud con su
marco respectivo el cual es denominado “cubo” (Anexo 32).
Después de haber sido instalados y dispuestos los equipos y
herramientas necesarias. Se procede a bajar el nivel del agua del
estanque con 1 ó 2 días de anticipación dependiendo del tamaño del
mismo.
Si la cantidad de agua que hay en el estanque pudiese ser evacuada
durante 1 sólo día. Se procede a bajar las ¾ partes del nivel del agua
durante el día, luego se espera hasta la noche. Para realizar la
operación de cosechado en el cual se bajara el nivel del agua restante,
evacuando de esta manera el agua junto con los langostinos.
66
Durante la noche debido a que los langostinos tienen un fototropismo
positivo, sólo es necesario colocar un foco en la estructura del monje
para atraerlos hacia esa zona. Y de esta manera por efecto de la
pendiente del estanque y la fuerza de la evacuación del agua, estos son
arrastrados. (Anexo 33). Es allí entonces, que la “manga” es utilizada
como bolsa receptora para los langostinos.
Cuando el cubo es llenado debido a la cantidad excesiva de
langostinos, se procede a trasladarlos con la ayuda de baldes
agujereados (para escurrir el agua) hacia los dinos (Anexo 34).
Los dinos son recipientes de aproximadamente de 1000 litros, en el cual
se prepara una cremolada previamente con agua y hielo, para
introducir a los langostinos, de manera que éstos mueran por choque
térmico. Luego estos son colocados en cajas de 25 kg con hielo y son
enviados en camiones frigoríficos a la planta de proceso.
Es necesario recordar que con este proceso se dará inicio a la cadena
de frío, la cual no debe ser interrumpida bajo ninguna circunstancia
hasta que el producto sea consumido.
*Una vez finalizado la operación de cosecha, el ciclo del cultivo vuelve a
iniciar con la etapa de “preparación de estanques”. Completando así un
círculo cerrado de producción.
67
IV. RESULTADOS
A continuación, presento un reporte de producción de la langostinera “BUVA CAMARON SAC”
Estanque Area
(Ha)
Peso
Promedio
(gr)
Incremento
Acumulado
Edad
(Días)
Población
Inicial
Población
Final
Peso
Planta
(kg)
Densidad
Inicial
(m2)
Densidad
Final (m2)
A.B.
Acumulado
(kg)
%
Sobrevivencia
T.C.A Rendimiento
(kg/Ha)
1 12.10 14.50 1.21 126 1 700 000 1110882 16107 14.05 9.18 19923 65.35 1.24 1331.22
2 5.45 14.50 1.21 116 865000 773696 11218 15.87 14.20 13388 89.44 1.19 2058.45
3 6.50 14.00 1.17 117 1200000 984928 13788 18.46 15.15 15390 82.08 1.12 2121.23
4 3.20 14.00 1.17 115 590000 391495 5480 18.44 12.33 7298 66.36 1.33 1712.50
5 2.75 14.50 1.21 118 435 000 337369 4891 15.82 12.27 7034 77.56 1.44 1778.54
6 5.23 13.50 1.13 114 960000 582578 7864 18.46 11.14 10857 60.69 1.38 1503.63
7 3.50 14.00 1.17 116 650000 399911 5598 18.57 11.43 6949 61.52 1.24 1599.42
Total 38.73 6 400 000 4 580 859 64946 80839
Promedio 14.18 1.16 17,09 12,24 71,85 1.27 1729.28
68
V. DISCUCIONES
Por medio de la observación y comprobación directa se evaluó lo siguiente:
En la bibliografía se recomienda fertilizar el agua una vez el estanque esta
colmado. Pero cuando un estanque es colmado, para iniciar el sembrado de
postlarvas, Un factor muy importante es conocer el origen del agua. Si este
proviene directamente del mar o de un estero. Puesto que cuando el agua
proviene del estero, no es necesario fertilizar, debido a la existencia de
productividad natural; esto se da porque otras langostineras evacuan aguas ya
cargadas de productividad natural hacia el estero. Pero no así para el agua
proveniente del mar, la cual es escasa en productividad natural.
En la bibliografía se recomienda realizar un secado total, después del drenado.
Pero durante la operación del secado, es necesario que sólo haya
cuarteaduras en el suelo. Más no es recomendable esperar a que toda la
humedad del suelo sea eliminada por acción del sol. Puesto que mientras haya
humedad, habrá bacterias nitrificantes que descompondrán la materia
orgánica. Pero si llegamos a esperar hasta un secado total, en el cual no haya
humedad en el suelo, eliminaremos las bacterias nitrozomas y nitrobacter y
esto tendría un efecto negativo cuando iniciamos el cultivo nuevamente. Puesto
que se tendría que esperar que haya una nueva proliferación de los mismos, y
mientras ocurre ello habrá mayor cantidad de materia orgánica sin mineralizar.
En la bibliografía, se recomienda seguir una tabla de alimentación para
suministrar el Alimento balanceado. Pero es necesario entender, que esto
significaría mecanizarse. Debido a que a veces, aun agregando la cantidad que
indica la tabla de alimentación los langostinos no suelen crecer. Por ello es
necesario recordar, que estas tablas son sólo de referencia. Puesto que cada
Ingeniero o biólogo pesquero, debe desarrollar su propia tasa de alimentación
a través de la experiencia.
Debido a que hay muchos factores a tener en cuenta al momento de
suministrar el alimento balanceado: El tamaño del langostino, Temperatura, pH,
Acumulación de materia orgánica, O2, Disponibilidad de Alimento natural,
Periodos largos sin recambio de agua, Actividad diurna o nocturna, Ciclo de
muda,etc.
69
En la bibliografía, se recomienda Alimentar a la postlarvas después de 15 -30
días, debido a que durante esta etapa consumen alimento que están
constituidos por organismos que forman el eslabón básico de la cadena
alimenticia. Y después de ello ya se inician con alimento balanceado. Pero esta
regla se basa sólo cuando el estanque tiene productividad natural abundante.
Pero si en un estanque no hay mucha productividad natural, la postlarva
consumen alimento balanceado tipo KR1 (Nicovita) tan sólo al décimo día. Esto
es debido precisamente a que existe escases de alimento natural, lo cual los
obliga a consumir el alimento balanceado.
VI. CONCLUSIONES
Durante el periodo de prácticas, se logró contrastar, los manejos de controles
limnologicos físicos y químicos.
Se logró adquirir conocimientos acerca de la metodología aplicada en la siembra
de postlarvas.
Se Adquirió conocimientos sobre el manejo especializado y controlado de la
crianza de langostinos en sistemas de estanquerías.
Se obtuvo dominio sobre los sistemas de alimentación del langostino, en sus
diferentes fases.
Se logró adquirir conocimiento sobre tratamiento de enfermedades.
Se obtuvo conocimientos sobre las diferentes técnicas empleadas en la cosecha
de langostinos.
La alcanzo la debida instrucción en la formulación y solución de problemas que se
puedan presentar durante el cultivo.
70
VII. RECOMENDACIONES
Es de vital importancia la adquisición de un Oxímetro. Para poder prevenir
anticipadamente los tenores bajos de oxígeno, y así poder evitar un porcentaje
elevado de mortandad. Lo cual repercute directamente en la rentabilidad de la
empresa.
Se debe incorporar un plan de arado de fondo de los estanques de manera
inmediata, para lograr mejores condiciones del suelo por medio de la
mineralización y oxidación. Para poder garantizar un ambiente apropiado para
el engorde del langostino. Logrando así un porcentaje elevado de
supervivencia. Beneficiando de esta manera a la empresa con una rentabilidad
mayor.
Es recomendable realizar un análisis de costos y presupuestos entre el uso
petróleo o el uso de un servicio de energía eléctrica, esto en relación a los años
con la que está proyectada la empresa a operar en el sector. Para de esta
manera evaluar cuál es el más beneficioso en relación a costos.
Es de vital importancia realizar de forma inmediata el mantenimiento los niveles
de las pendientes de los estanques, puesto que esto genera un mal drenado
del agua durante la cosecha. Ocasionando grandes masas de agua, los cuales:
Retienen una cantidad significativa de langostinos.
Evitan un secado de manera regular
Genera una cosecha ineficiente e incompleta
Provoca una mezcla con de langostino con el sedimento,
perjudicando la calidad, etc.
Es necesario el mantenimiento de los monjes, para evitar roturas en las
mismas y por consiguiente posibles pérdidas.
Adquirir un grupo electrógeno sustituto, para suplantar al principal, cuando esté
presente problemas. Con el fin de contar con un fluido eléctrico continuo para
los aireadores. Y así evitar la mortandad por escases de oxígeno, lo cual
afecta la rentabilidad del cultivo.
71
VIII. BIBLIOGRAFIA
1. Jorge Fenucci. 1988. Manual para la cria de camarones peneidos.1988. Cap
2. Brazil. Edición FAO
2. Maria Cruz RivearRodriguez. 1998. Efecto de la salinidad sobre el
crecimiento y sobrevivencia en postalarvas y juveniles de langostino
PenaeusVannamei.Pag. 5-10. Colombia. Tesis.
3. Jorge l. Fenucci, Cornelio Lara, Vielka Morales, Abelardo De Gracia y Oscar
García Suárez. 2010. Manual de buenas prácticas de manejo para el cultivo
del camarón blanco penaeus vannamei. Pag. 25-101. Panamá. Impresora
Nornos.
4. Boletín nicovita. 1999. Evolucion del alimento para camarones. Volumen 4.
Perú. Edición Tumpis.
5. Gerardo Cruz Reyes. 1997. Cuantificagion de aminoacidos de los estadios
larvarios del camaron penaeusvarnamáy estimacion de los requerimientos
de aminoacidos esenciales.
6. Boletín nicovita. 1997. Tasa o factor de conversión alimenticia en el cultivo
de camarón. Volumen 2. Perú. Edición Tumpis.
BIBLIOGRAFIA VIRTUAL
A. http://maps.google.es
B. http://www.ictioterm.es
C. http://es.wikipedia.org
D. http://www.acuariacolombia.org
E. http://www.fao.org
F. http://www.nicovita.com.pe
72
IX. ANEXOS
ANEXO 1 – ANATOMIA GENERAL ANEXO 2 - MORFOLOGIA EXTERNA
ANEXO 3 – MORFOLOGIA INTERNA ANEXO 4 – MORFOLOGIAA
73
ANEXO 5 – DESARROLLO LARVARIO ANEXO 6 – MADURACION SEXUAL
ANEXO 7 – ESTACIONES DE BOMBEO ANEXO 8 – ESTANQUES
74
ANEXO 9 – DISEÑO DE UN ESTANQUE
ANEXO 10 – SECADO DE FONDO ANEXO 11 – ARADO DE FONDO DE ESTANQUE
75
ANEXO 12 - MALLAS FILTRADORAS
ANEXO 13 - FERTILIZANTE
76
ANEXO 14–EVALUACIÓN DE LA CALIDAD DE LAS POSTLARVAS Y
PRUEBAS DE ESTRÉS
Evaluación microscópica y molecular de postlarvas
• El responsable del Centro de Producción Larval debe informar a la granja cuáles son
las características de la calidad del agua en que serán enviadas las postlarvas
(salinidad, temperatura, pH, etc.), para así preparar las unidades de aclimatación
• Algunos días antes de la compra, el técnico de la granja debe ir al Centro de
Producción Larval y supervisar el muestreo de las postlarvas para su posterior
evaluación en el laboratorio de diagnóstico
• Para aceptar o rechazar el envío de postlarvas, se debe evaluar el grado de actividad
de la larva, fototropismo, hilo fecal, presencia/ausencia de bioluminiscencia,
uniformidad de tallas y contenido intestinal, principalmente.
• Posteriormente se debe continuar con una evaluación bajo el microscopio para
determinar presencia o ausencia de vacuolas de grasa en el hepatopáncreas,
contenido intestinal, deformidades, mecanización de apéndices o branquias, presencia
de organismos epicomensales (epibiontes), síndrome de las bolitas blancas y BP
(Baculo viruspenaei), desarrollo branquial
• La detección molecular (mediante la Reacción en Cadena de la Polimerasa-PCR) de
agentes patógenos de importancia, es una medida mandatoria para terminar de
evaluar de manera completa, la calidad de un lote de postlarvas
• Antes de la compra de las postlarvas, el técnico de la granja responsable de la
adquisición de las mismas, debe conocer los resultados de los exámenes anteriores
quedar a total satisfacción con los mismos
• No todos los lotes de postlarvas son iguales, por lo que es necesario realizar los
análisis arriba mencionados a cada grupo de animales que se piensa adquirir para la
granja; los resultados de calidad de un lote, no aplicarán necesariamente a otro pues
se trata de poblaciones de postlarvas diferentes.
Evaluación macroscópica y microscópica de la calidad de las postlarvas.
Se debe tomar una muestra al azar de 20 postlarvas y evaluar las siguientes
características:
• Actividad. Al menos el 95% de las PL deben estar activas. Las postlarvas saludables,
nadan activamente en contra de la corriente generada por la aeración en el tanque de
aclimatación o manualmente.
• Presencia de deformidades. No se deben aceptar postlarvas con el rostrum deforme
o doblado, daños de apéndices causados por bacterias, problemas de muday pérdida
de apéndices etc. La presencia de cuerpos torcidos es evidencia del uso de diversos
77
medicamentos. El rostro y los apéndices deben ser de forma normal, sin erosiones ni
deformidades. No se deben aceptar postlarvas que presenten más de un 5% de
deformidades.
• Tamaño homogéneo. Las postlarvas más desarrolladas tienen una mayor resistencia
a enfermedades, desarrollo branquial completo y capacidad para tolerar cambios
relativamente bruscos de salinidad y temperatura. Las edades de siembra
recomendadas para L. vannamei es por lo general alrededor de PL-9 a PL-11
(postlarvas de nueve a once días). No es recomendable aceptar postlarvas mayores a
PL-11 ya que esto requerirá de bajar considerablemente las densidades de empaque
(# postlarvas por litro en cada bolsa) incrementando los costos de envío. De no
hacerlo, socorre el riesgo de sufrir altas mortalidades durante el envío.
• Contenido intestinal. La postlarvas con buena salud porro general se alimentan de
manera continua y agresiva deberían presentar el intestino lleno. Las postlarvas bajo
estrés usualmente dejan de comer.
• Movimiento intestinal (peristalsis): los movimientos rítmicos del cordón intestinal
indican un buen funcionamiento del sistema digestivo de los animales. De igual modo,
un color oscuro de la hepatopáncreas es un indicio de que las postlarvas se han
estado alimentando adecuadamente.
• Presencia de espibiones: las postlarvas saludables al ser observadas al microscopio
no presentan organismos adheridos al exoesqueleto. Las postlarvas que presentan
una cantidad abundante de epibiontes son un indicio de la existencia de pobres
condiciones de calidad de agua. Bajo estas condiciones las postlarvas usualmente no
mudan con regularidad y presentan un pobre estado de salud general. Se aconseja no
aceptar envíos de postlarvas que presenten más de un 5% de espibiones.
• Opacidad muscular. La presencia de langostinos con opacidad en su musculatura es
también indicio de estrés causado por condiciones ambientales pobres. Los envíos de
postlarva con más del 10% de los animales presentando esta condición se consideran
inaceptables.
• Desarrollo branquial: Un buen desarrollo branquial se observa cuando las lamelas o
filamentos branquiales de las postlarvas se ramifican como en forma de árbol de
navidad. Generalmente las postlarvas alcanzan este desarrollo entre los días 9 y 10 de
desarrollo de las postlarvas (PL-9 o PL-10); un buen desarrollo branquial permite a las
postlarvas el tolerar con mayor facilidad cambios rápidos de salinidad y otros
parámetros durante la aclimatación
• Cambios en el color y melanización. El color rojizo de las postlarvas puede ser
ocasionado por nutrición deficiente, manejo inapropiado, infecciones y estrés. La
mecanización (manchas de color oscuro) indica infecciones bacterianas. En animales
78
no saludables las células pigmentarias (cromatóforos) se expanden generando bandas
continuas de pigmento.
La inspección del estado de los cromatóforos debe hacerse a la brevedad
inmediatamente después de que las muestras han sido sacadas del agua, ya que los
cromatóforos tienden a expandirse aún en postlarvas saludables a causa del estrés
generado por la manipulación excesiva.
Pruebas de estrés.
La calidad de las postlarvas se puede evaluar mediante una prueba de estrés, la cual
mide la tolerancia de los animales ante un parámetro extremo conocido. Para realizar
estas pruebas unas 100-200 postlarvas son sometidas a un choque térmico, osmótico
y/o químico para luego determinar el número de postlarvas que sobreviven a la
prueba. Una prueba ampliamente usada es la de someter a los animales a una
reducción de temperatura de 10-12°C por 1-2 horas, o a salinidades de 0-5 partes por
mil durante 30 minutos. A continuación se detallan los procedimientos para la
realización de una de estas pruebas.
La prueba de estrés a baja salinidad consiste en lo siguiente:
• Preparar agua (500 mL) a salinidad de 5 partes por mil (ppt.)
• Tomar al azar 100 postlarvas del tanque de cultivo y se depositan en el recipiente
con agua a 5 partes por milde salinidad
• Esperar 30 minutos
• Llevar luego las postlarvas a la salinidad en que se encontraban originalmente
• Dejar transcurrir otros 30 minutos
• Contar las postlarvas vivas y muertas; el resultado se expresa en porcentaje
Para la evaluación de la prueba de estrés, se deben tomaren consideración los
siguientes valores de porcentaje de supervivencia:
• 90 a 100%: excelente
• 85%: aceptable
• 80%: regular
• < 80%: no aceptable
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ANEXO 15 – MESES DONDE HAY FLUCTUACIONES DE T(ºC) ANEXO 16 –PREPARACION DE POSTLARVA
ANEXO 17 – CARBON ACTIVADO ANEXO 18 –ACLIMATACION DE POSTLARVAS
80
ANEXO 19 – SEMBRADO DE POSTLARVA ANEXO 20 – ALIMENTO BALANCEADO - NICOVITA
ANEXO 21 – ALIMENTACION POR BOLEO ANEXO 22– ALIMENTACION POR COMEDERO
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ANEXO 23– ALIMENTACION POR COMEDERO ANEXO 24– ALIMENTACION POR COMEDERO
ANEXO 25– ALIMENTACION EN ETAPA POSTLARVA ANEXO 26–ALIMENTACION EN ETAPA DE ENGORDE
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ANEXO 27–OBTENCION DE MUESTRA
ANEXO 28–MUESTREO DE CRECIMIENTO
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ANEXO 29–CONSUMO DE ALIMENTO BALANCEADO DURANTE LA MUDA
MUDA: Un hecho comprobado es que dentro de un estanque de cultivo, siempre tendremos
langostinos en diferente estadio del ciclo de muda. Por lo tanto un porcentaje
importante de estos langostinos estarán en los estadios de:
-Premuda
-Muda
-Postmuda
En el cual no consumen alimento. Las tablas de ajuste de las raciones no consideran a
la muda dentro de sus cálculos y una parte del alimento que se está agregando al
estanque no está siendo consumido ni aprovechado por los langostinos. El costo de
esta sobrealimentación puede ser altísimo.
Ejemplo:
Consideremos que en un sistema de estanques el30% de la población se encuentra
en estadios de premuda tardía, muda y postmuda temprana (incapacitados para
comer); tenemos entonces que el 30% del alimento diario se está agregando sin razón
alguna; esa cantidad de alimento multiplicada por los días de alimentación y el número
de estanques representará una cantidad asombrosa de dinero que prácticamente se
estará aplicando sin necesidad alguna.
Es por ello, que es conocer el ciclo de muda y utilizarlo para optimizar el manejo de la
alimentación en elcultivo de langostino. -Se conoce reportes de reducción en el TCA
Técnica de cálculo de % de muda:
Han sido desarrolladas técnicas que permiten el cálculo de la cantidad de alimento a
ser agregado en el estanque con base en los estadios de muda de la población de
langostinos en cultivo, como a continuación se describen:
a. Muestreo de 100 animales cada dos días, en cinco puntos del estanque (cuatro a
los extremos y uno al centro)
b. Determinar los langostinos que se encuentran en postmuda precoz y premuda
tardía utilizando como referencia los patrones fenotípicos de la porción distal de los
urópodos bajo el microscopio.
c. Determinar la biomasa real a alimentar (en kg).
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Ejemplo:
-Biomasa total 4504 kg
-Porcentaje de muda= 15% (estadios B0, B1, D3, D4)
-Biomasa real a alimentar= 3828 kg.
Entonces el porcentaje de animales que no están en condiciones de comer (ayuno
fisiológico) es de 15%
d. Consultar las tablas de referencia para alimentación.
Para alimentar langostinos de 3gr, se requieren 5% de su peso corporal.
e. Alimentar según la biomasa real a nutrir.
Ejemplo:
-Biomasa total 4504 kg
-Porcentaje de muda= 15% (estadios B0, B1, D3, D4)
-Biomasa real a alimentar= 3828 kg.
-Para alimentar langostinos de 3gr, se requieren 4,5% de su peso corporal.
3828kg ------- 100% X -------------- 5% X=191,4 kg de alimento
Entonces, para alimentar 3828kg de biomasa de langostinos, se requiere =191,4 kg de
alimento.
(Sin tomar en cuenta la determinación de la muda se hubieran requerido 225,2kg).
f. Alimentar de acuerdo con los horarios establecidos con base en los ritmos
circadianos de actividad enzimática digestiva, son: 10 a.m., 6 p.m. y 2 a.m.
g. Determinación del TCA cada semana.
h. Como el comportamiento de los animales durante la muda es cíclico, se pueden
seguir dos ciclos completos de muda, (alrededor de 10 días en función del peso) y
después continuar dando la misma proporción de alimento por día hasta el cambio de
peso.
Es importante recordar que los patrones luz oscuridad son determinantes para
desencadenar la muda y son constantes y estables durante las diferentes estaciones
del año.
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ANEXO 30–AIREADORES DE 1 HP ANEXO 31 – ENFERMEDADES
ANEXO 32–OPERACIÓN DE COSECHA ANEXO 33–OPERACIÓN DE COSECHA
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ANEXO 34 – OPERACIÓN DE COSECHA