guía fisio1 2009 corre

45
GUÍA DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO ASIGNATURA: FISIOLOGÍA I 1

Upload: salvapablo

Post on 29-Jun-2015

1.505 views

Category:

Documents


2 download

TRANSCRIPT

Page 1: Guía Fisio1 2009 CORRE

GUÍA DE PRÁCTICAS

DE LABORATORIO

ASIGNATURA:

FISIOLOGÍA I

Cochabamba-Bolivia

2011

1

Page 2: Guía Fisio1 2009 CORRE

Índice

Practica 1 disección del sapo y función celular……………………..…..pág. 6

Practica 2 mecanismos de transporte y permeabilidad celular………pág. 10

Practica 3 fisiología cardiovascular……………………………………….pág. 14

Practica 4 electrocardiografía……………………………………………….pág. 16

Practica 5 presión arterial……………………………………………………pág. 20

Practica 6 auscultación cardiaca…………………………………………...pág. 23

Practica 7 función renal………………………………………………………pág. 25

Practica 8 punción venosa…………………………………………………..pág. 29

Practica 9 grupo y factor sanguíneo………………………………………pág. 31

Practica 10 hemostasia………………………………………………………pág. 33

2

Page 3: Guía Fisio1 2009 CORRE

Introducción:

La presente guía práctica tiene como propósito definido, el orientar paso a paso tanto a docentes como estudiantes en la construcción conjunta de un proceso enseñanza aprendizaje eficaz para el logro del desarrollo de las competencias básicas tanto cognitivas como procedimentales con un enfoque clínico que caracterizan la carrera médica.

Las tendencias y las nuevas exigencias a las que estamos asistiendo en el marco de la enseñanza superior, nos exigen establecer sistemas de docencia coherentes que se centren en el aprendizaje del estudiante y lo optimicen. En este aspecto, en la materia de Fisiología hemos diseñado y puesto en marcha un método de aprendizaje basado en incentivar la motivación de los estudiantes con la utilización de una variada metodología docente que incluye su participación activa, con el objetivo de reforzar y consolidar su aprendizaje, con la resolución de casos clínicos desde el punto de vista fisiológico, además se incorpora una nueva modalidad didáctica para la capacitación de estudiantes de ciencias médicas con el uso de la estrategia de audiovisuales (AV), software interactivo que corresponde a las nuevas tecnologías de información y comunicación modernas (TICs) . Muchas practicas tienen sitios web para ser visitados para un mejor entendimiento y correlacion.

Justificación:

La fisiología clásicamente ha sido un puente entre las ciencias básicas y clínicas. Además la fisiología combina y reúne el conocimiento de distintas disciplinas básicas como la bioquímica, biofísica, anatomía, biomatematica y deberíamos agregar la biología molecular, la genética que se deben proyectar al ámbito medico clínico.

Por otra parte las ciencias fisiológicas como disciplina esencialmente experimental debe ensenarse como tal. Debe por tanto prever la realización de actividades prácticas con enfoque clinico que formen al estudiante en el conocimiento de los diferentes procedimientos de los que se desprenden los datos que soportan la información actualmente aceptada.

3

Page 4: Guía Fisio1 2009 CORRE

Objetivos generales:

El desarrollo de la materia que aquí se introduce, contribuirá al desarrollo de las siguientes COMPETENCIAS TRANSVERSALES personales (toma de decisiones, compromiso ético, y razonamiento crítico), sistémicas (adaptación a nuevas situaciones, resolución de problemas, iniciativa y espíritu emprendedor, creatividad, motivación por la calidad y aprendizaje autónomo), instrumentales (comunicación multimedia, capacidad de organización y planificación, de análisis y síntesis, de gestión de la información y conocimientos de informática relativos al ámbito de estudio).

Objetivos específicos:

Adquirir una comprensión, completa e integrada de los mecanismos de funcionamiento del cuerpo humano en estado de salud.

Aplicar los conocimientos teóricos a la resolución de problemas fisiológicos y clínicos que se plantean como problemas o como demostraciones prácticas.

Formular hipótesis sobre aplicaciones prácticas de pruebas funcionales

Interpretación y discusión de los resultados obtenidos en el trabajo. Para practico de forma oral y escrita.

Aspectos preliminares sobre el trabajo en laboratorio:

Presentación de informes y/o trabajos: La validez del o los trabajos y su evaluación satisfactoria dependen de que cumpla con los siguientes requisitos:

1. El trabajo debe tener calidad de estudio en el que se abordará un tema o problema científico con sustento en los procesos de acopio de información, organización, análisis crítico y reflexivo, interpretación y síntesis de referencias y otros insumos pertinentes al o los temas seleccionados.

2. Sobre la presentación: la extensión del trabajo no debe ser menor a 1 página ni exceder en ningún caso las 6. El trabajo se organizará en 3 partes principales:

a. La página preliminar: comprende el título que debe contener el nombre de la universidad, la facultad, el semestre que se cursa, el título y/o tema del trabajo, el nombre del estudiante y del docente, el lugar y fecha de presentación fuera de la cual no se aceptará ningún trabajo.

b. El texto: puede ser compuesto según sea el caso de un resumen, una síntesis, un organizador previo, etc. sea cual sea su modalidad debe ser una revisión más o menos profunda del tema, bien organizado, claro, un verdadero aporte de trabajo intelectual que será defendido y presentado al resto del grupo. El estudiante deberá establecer con la asesoría del docente el esquema más adecuado a su caso. Resúmenes o descargas de

4

Page 5: Guía Fisio1 2009 CORRE

internet en las que no se haya trabajado no tienen validez. En la redacción y defensa del trabajo se deberá emplear adecuadamente toda la terminología que corresponde al campo médico, evitando en lo posible el uso de expresiones poco usuales o ambiguas.

c. Anexos y bibliografía de referencia: Se utilizará para presentar la información y los datos tomados de otros autores diferentes de Arthur Guyton y así identificar las fuentes de referencia.

3. Del mecanografiado y la impresión: El papel a utilizarse debe ser bond blanco, tamaño carta. El texto se escribirá con letra de tipo fuente Arial tamaño 10 a 12 puntos, los títulos utilizarán la misma fuente en negrillas, todo asegurando la legibilidad, para el realce de la información se usará cursiva. Los márgenes serán de 2.5cm a cada lado y se escribirá con espacio interlineal e 1.5.

EVALUACION:

EXAMEN PREVIO: Se tomara previo a la realización de las practicas tendrá un valor de 10 puntos en total al final de cada parcial.

TRABAJO DE LABORATORIO: El trabajo de laboratorio será evaluado diariamente, individualmente en base a las competencias y tendrá un valor total por cada parcial de 3 puntos.

CUESTIONARIOS Y TRABAJOS ESCRITOS: Sera presentado de acuerdo a formato anteriormente descrito, completos, con un valor en total por cada parcial de 2 puntos.

EXAMEN PARCIAL PRÁCTICO:

El examen parcial practico se tomara antes del examen teórico respectivo con un valor de 15 puntos por parcial.

TOTAL NOTA PRÁCTICA:

Exámenes previos: 10 puntos

Trabajo de laboratorio competencias: 3 puntos

Trabajos escritos: 2 puntos

Examen parcial práctico: 15 puntos

TOTAL: 30 PUNTOS

5

Page 6: Guía Fisio1 2009 CORRE

Práctica 1

Disección del sapo y Función celular Conocimiento teórico requerido1:

Durante la realización de esta practica se utilizara fármacos como la epinefrina, la atropina, el soletrol K, el estudiante deberá estudiar entorno a los efectos y las acciones de estos fármacos, principalmente en el corazón, también el estudiante pondrá en practica su habilidades de diseccion, investigara en torno a las drogas simpaticomiméticos, simpaticolíticos, parasimpaticomimeticas y parasimpaticoliticas. Lo último se investigara en cualquier libro de farmacología. Finalmente el estudiante realizara anatomía comparada.

Objetivos

1.- Aplicar sus conocimientos de técnicas de disección.

2.- Distinguir y reconocer los cambios que se producen con la administración de los diferentes fármacos mientras se produce el experimento.

3.- Realizar la comparación de la anatomía del batracio y el cuerpo humano.

4.- Demostrar la circulación sanguínea a nivel de los capilares peritoneales.

5.- Reconocer y demostrar los cambios de volumen del glóbulo rojo en soluciones hipotónicas, isotónicas, hipertónicas.

6.- Diferenciar las clases de soluciones y compararlas con la osmolaridad plasmática.

7.- Demostrar el fenómeno de quimiotactismo lesionando el mesenterio del batracio.

8.- Realizar el correcto manejo del microscopio.

Competencias

1 Capítulos 9,10,60 Guyton. farmacología Katzung

6

Page 7: Guía Fisio1 2009 CORRE

Fomentamos la comunicación, el trabajo multidisciplinario, la capacidad de aprender y la motivación.

Desarrollamos un comportamiento ético basado en el respeto a los seres vivos, la vida y a los colegas.

Se estudian los mecanismos fisiológicos dentro del contexto o escenario presente en ese momento.

Material, reactivos y equipo:

1. Sapo o Rana grande.2. Cuadro de plastoformo de 40 cm x 40 cm.3. Equipo de disección.4. Jabón antiséptico.5. Guantes.6. Éter.7. Campana.8. Alfileres.9. Solución de cloruro potásico (soletrol K)10. 1 ampolla de adrenalina.11. 1 ampolla de atropina.12. Jeringa de 5ml.13. 3 Jeringa de insulina.14. Sol. Fisiológica 100 ml 15. Sol. Hipertónica de glucosa al 50 % o 33%16. Una ampolla de agua destilada.17. Portaobjetos y cubreobjetos 6

Técnica:

Luego de colocar al animal bajo la campana se introducirá un algodón empapado en éter, luego de observarse al animal irritable este se pondrá adormecido, momento en el que un estudiante sujetará al sapo con la mano izquierda de la parte media de su cuerpo en el aire, con la mano derecha inclinará la cabeza del mismo ligeramente hacia abajo exponiendo de esta manera la última vértebra cervical del animal la cual se palpa como más sobresaliente en la parte posterior cerca a la unión de la cabeza con el cuerpo. Luego otro estudiante introducirá en dicho punto en un ángulo que coincida con el canal medular del sapo, una aguja directamente en el conducto raquídeo para destruir la médula espinal, si se tuvo éxito en el procedimiento el animal manifestará una contracción espástica inicial de las extremidades posteriores lo cual las alargará, posteriormente habrá flacidez y parálisis de las mismas junto a relajación de los esfínteres.

A continuación se procederá a colocar al animal sobre la tabla de plastoformo en decúbito dorsal sujetando sus extremidades con alfileres de modo que su superficie ventral quede mirando hacia arriba, luego se levantará la piel del abdomen con la pinza anatómica a nivel del 1/3 inferior y se practicará un corte horizontal en la línea media, a partir del cual se prolongará el mismo hasta el apéndice xifoides, a este nivel se seccionará la pared

7

Page 8: Guía Fisio1 2009 CORRE

hacia ambos lados del esternón dirigiendo la incisión hacia afuera y hacia arriba hasta llegar a ambas clavículas las cuales se seccionarán y se doblará sobre ellas la parrilla costal y el esternón, lo cual expondrá los pulmones y los órganos de flotación del animal cubriendo al corazón, se procederá a separar delicadamente estos elementos anatómicos del corazón, el cual se verá en medio unido a los grandes vasos y cubierto por el pericardio. Con mucho cuidado se debe practicar una pequeña incisión en dicha envoltura desde la punta a la base del corazón dibulsionando delicadamente hasta separar el pericardio del corazón entonces notar los cambios alternantes de color que presentan las estructuras. Seguidamente se procederá a administrar los diferentes medicamentos por la vena central que se observa en la disección por el siguiente orden: (antes se controla la frecuencia cardiaca del batracio).

1.- 0,3 a 0,5 ml de epinefrina y se observa el efecto por unos 10 min.

2.- 0,3 a 0,5 ml de atropina y se observa el efecto por 10 min.

3.- 0,3 a 0,5 ml de soletrol k y se observa el efecto.

Seguidamente se secciona mesenterio del batracio y se observa al microscopio previo colocar unas gotas de solución fisiológica.

Por otra parte se extrae sangre del batracio se prepara 4 laminas de microscopio con cubreobjetos, 1 con solución fisiología, 2 con solución de dextrosa, 3 con solución fisiología, y un extendido de sangre normal.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Ilustraciones descriptivas, construccionales y / o funcionales. Videos y animación de los fenómenos que implican el experimento. Preguntas intercaladas. Práctica guiada disección del sapo.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Elaborar:

Un cuadro de la estructura del sistema nervioso autónomo su efecto sobre diferentes órganos, sus respectivos neurotransmisores.

Un cuadro de los diferentes fármacos utilizados en el experimento y su efecto sobre el corazón.

Un cuadro sobre la composición del líquido intra y extracelular. Dibujar los cambios vistos en el microscopio por cada experimento.

Cuestionario:

1. Como esta estructurado el SNA?.2. ¿Qué neurotransmisores y receptores son componentes del simpático?3. ¿Qué neurotransmisores y receptores son componentes del parasimpático?4. ¿Cómo el sistema nervioso autónomo afecta la función cardiaca?5. ¿Cuál es la acción de la epinefrina y la atropina?

8

Page 9: Guía Fisio1 2009 CORRE

6. Explique los efectos de la hiperkalemia e hipokalemia en el corazón?7. Explique los efectos de la hiper e hipocalcemia en el corazón?8. Que es el éter, investigue su utilidad y estructura química.9. Que es quimiotaxis.10. Indique el grosor de los capilares, el tamaño de los poros capilares.11. Que es difusión neta?12. Que cambios observo en los hematíes durante los experimentos ?

Evaluación

Se realizara una prueba escrita cognitiva (examen previo).

Instrumentos

Presentación de cuestionario.

9

Page 10: Guía Fisio1 2009 CORRE

Práctica 2

Mecanismos de transporte de membrana

Y permeabilidad celularConocimiento teórico requerido2:

Cada célula de tu organismo está rodeada de una membrana plasmática que la separa del liquido intersticial, la función principal de la membrana plasmática es permitir el intercambio selectivo de moléculas entre la célula y el liquido intersticial, de modo que la célula pueda tomar las sustancias que necesita mientras elimina las que no necesita. Entre estas sustancias se incluyen gases, tales como el oxigeno y dióxido de carbono, iones y moléculas mas grandes tales como la glucosa, aminoácidos, ácidos grasos, y vitaminas.

Las moléculas se mueven a través de la membrana plasmática pasiva o activamente. En el transporte activo las moléculas se mueven a través de la membrana consumiendo energía celular (ATP). En el transporte pasivo pasan las moléculas a través de la membrana celular sin gasto de energía. Los ejemplos son difusión simple, osmosis y difusión facilitada.

La difusión simple es un movimiento espontaneo de moléculas siguiendo la segunda ley de la termodinámica.

Osmosis es la difusión de agua a través de la membrana celular.

La difusión facilitada es movimiento de moléculas a través de la membrana celular con ayuda de proteínas especializadas de transporte.

Calculo teórico de la osmolaridad plasmática: Osm. P= 2[Na (mEq/L) + K (mEq/L)] + [urea (mg/dl) 2,8] + [glucosa mg/dl / 18]. 2.1

2 Capítulo 4 Guyton.2.1 Capítulo 2 Best & Taylor

10

Page 11: Guía Fisio1 2009 CORRE

Las soluciones de reposición: una solución de dextrosa al 5%, posee 5 g de glucosa por cada 100 ml de de agua, o dicho de otro modo, 50 g de glucosa por cada litro. Teniendo en cuenta que el peso molecular de la glucosa es de 180, un mol de glucosa es igual a 180 g . Por tal razón un litro de DA al 5% posee 0,27 moles de glucosa o 270 mmol. De glucosa como la glucosa no es disociable la osmolaridad es solo 270 mOsm. Ya que la osmolaridad plasmática es de aproximadamente 290 mOsm. Se observa que la solución de DA 5% es casi isoosmolar al plasma. 2.1

Fisiología clínica 2.2

Descripción de caso:

En su examen físico anual un muchacho de 14 anos de edad indica síntomas de micción frecuente y sed intensa. Una prueba de glucocinta en orina muestra concentración elevada de glucosa que revela diabetes mellitus de tipo I cuyo tratamiento es con insulina inyectable hasta que los niveles de glucosa sean normales.

Explicación del caso : Aunque la diabetes mellitus tipo I es una enfermedad compleja, este análisis se limita al síntoma de micción frecuente y glucosuria. En condiciones normales los riñones controlan la glucosa de la siguiente manera. La glucosa de la sangre se filtra en los capilares glomerulares.las células epiteliales que revisten el túbulo proximal reabsorben toda la glucosa de modo que nada se excreta por orina. El mecanismo celular para la reabsorción de glucosa es el cotransportador sodio-glucosa situado en la membrana luminal de los túbulos proximales. Puesto que existe un numero finito de cotransportadores de glucosa en los túbulos. Una vez que estos sitios de unión están totalmente ocupados ocurre saturación del transportador ( transporte máximo).

Como la insulina en este paciente se produce en escasa cantidad por las células beta del páncreas. Se requiere insulina para la captación de glucosa por el hígado, musculo, y otras células. En ausencia de insulina la concentración de la glucosa en sangre aumenta (lo que también aumenta la osmolaridad plasmática) la glucosa no es captada por las células esto hace que se filtre mas glucosa por los glomérulos, lo que excede la capacidad del cotransportador, este es saturado entonces se elimina glucosa por orina.

Objetivos

1.- Entender la función de permeabilidad selectiva de la membrana plasmática.

2.- Describir los diversos mecanismos por los cuales las moléculas pueden cruzar pasivamente la membrana plasmática.

3.- Describir los diversos mecanismos por los cuales las moléculas pueden cruzar activamente la membrana plasmática.

4.- Entender las diferencias entre los dos tipos de transporte activo y pasivo.

11

Page 12: Guía Fisio1 2009 CORRE

5.- Definir que es osmosis, difusión neta y osmolaridad.

6.- Definir que es solución hipotónica, hipertónica, isotónica y compararlas con la

osmolaridad plasmática.

Competencia

Calcula la osmolaridad plasmática de un paciente.

Conoce las soluciones de reposición mas comunes utilizadas hospitalariamente calcular su osmolaridad y seleccionarlas de acuerdo a este parametro.

Materiales

1.- Video y/o software sobre mecanismos de transporte, permeabilidad de la membrana celular, y proteínas de transporte.

2.- Soluciones parenterales de uso clínico (etiquetas de su composición).

3.- Calculadora.

Técnica

Los estudiantes investigaran previamente sobre los mecanismos de transporte, después de observar el software y/o los videos se procederá a realizar una pequeña explicación de cada mecanismo por los mismos estudiantes.

Cada estudiante deberá calcular la osmolaridad de las soluciones parenterales y compararlas con la del plasma sanguíneo. ( de acuerdo a ejemplo que se realiza en el libro).

2.2 Capítulo 1 Fisiología Linda Costanzo

Cada estudiante planteara una hipótesis sobre la utilidad clínica de esta practica, también cada estudiante, explicara los cambios que se producen en las células en las diferentes soluciones.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición breve de cada mecanismo de forma dialogada con los estudiantes. Ilustraciones descriptivas, construccionales y / o funcionales. Videos, animación y/o software de los fenómenos que implican el experimento. Preguntas intercaladas.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Elaborar:

Organizador Gráfico en forma de cuadro sinóptico simple para los diferentes mecanismos de transporte, las sustancias que se transportan, los iones que intervienen.

12

Page 13: Guía Fisio1 2009 CORRE

Cuadro sobre los efectos de las soluciones hipo – iso - hipertónicas en el volumen de los líquidos intra y extracelular.

Estudio de caso o caso clínico sobre los efectos de la hiper – hiponatremia, Kalemia y Calcemia en el potencial de membrana en el ser humano.

Calcular las osmolaridades de las diferentes soluciones de uso clínico.

CUESTIONARIO

1.- Indique las diferencias entre transporte activo y pasivo.

2.- Explique las diferentes proteínas y/o canales de transporte que tienen las membranas celulares.

3.- Defina difusión neta y osmosis.

4.- Explique qué es una sustancia liposoluble e hidrosoluble, además que es hidrofilico e hidrofobico.

5.- Que es un anion, que es un catión y cuáles son estos en los sistemas biológicos

6.- Cual es la principal función de la bomba de sodio y potasio?

7.- Que sustancias de cotransportan y contratransportan en las células?

8.- A que se refiere el termino arrastre por disolvente?

9.- Cual será la importancia clínica de la bomba de sodio y potasio y su función?

10.- Que cambios ocurre en las células en soluciones: hipotónicas, hipertónicas, isotónicas?

13

Page 14: Guía Fisio1 2009 CORRE

Practica 3

Fisiología cardiovascularConocimiento teórico requerido3:

Los fenómenos que se producen desde el comienzo de un latido hasta el comienzo del siguiente se conoce como ciclo cardiaco y es iniciado por un potencial de acción en el nódulo sinusal que se encuentra en la pared supero lateral de la aurícula derecha. El impulso que viene desde las aurículas hacia los ventrículos tiene un retraso de 0.1 segundos lo que permite que las aurículas actúen como bombas de cebado para los ventrículos. El ciclo cardiaco incluye la diástole o relajación ventricular y la sístole o contracción ventricular.

El ciclo cardiaco es la repetición secuencial de tres fenómenos básicos: contracción, relajación y llenado. 3.1

Visite los siguientes sitios: www.interactivephysiology.com/demo/systems/buildframes.html?cardio/cardcycl/01

www.torren-guasp.com

Fisiología clínica

Problema: Un hombre presenta un gasto cardiaco de 5,5 litros por minuto. En este paciente se estima que el diámetro de la aorta es de 20 mm y el área total de la superficie de sus capilares sistémicos de 2500 cm2 ¿Cuál es la velocidad del flujo sanguíneo en la aorta respecto de la velocidad del flujo sanguíneo en los capilares?

Solución: Para comparar la velocidad del flujo sanguíneo en la aorta con la velocidad en los capilares se requiere dos valores para cada tipo de vaso sanguíneo: el flujo sanguíneo total Q y el área de sección transversal total ( cm2). El flujo total a cada nivel es el mismo e igual al gasto cardiaco. El área total de sección transversal de los capilares esta dada en el problema y el área de sección transversal en la aorta se debe calcular a partir de su radio, que es de 10 mm. A=π r2 = A= 3,14 x (10 mm)2 = 3,14 cm2

Vel. Capilares= Q/A = 5.5 Lx min. /2500 cm2 = 5500 cm3xmin/2500cm2 2.2 cm/min

Vel. Aorta= Q/A = 5500cm3xmin. / 3.14 cm2 = 1752 cm/ min

3 Capítulo 9 Guyton. Capítulos 13, 14,15 Best & Taylor

14

Page 15: Guía Fisio1 2009 CORRE

Objetivos:

1. Interpretar cada una de las curvas de presión del ciclo cardiaco.2. Relacionar las curvas y volúmenes del ciclo cardiaco con cada una de sus fases

(sístole y diástole).3. Describir en orden todos los acontecimientos que ocurren durante el ciclo

cardiaco.

Competencias:

Asocia los diferentes elementos del ECG con el ciclo cardiaco.

Reconoce las estructuras cardiacas en un ecocardiograma 2D puede detectar anormalidades, tanto de contracción como valvulares.

Conoce los valores en sístole y diástole de las presiones cavitarias.

Ubica en un grafico presión-volumen ventricular las partes del ciclocardiaco.

Material, reactivos y equipo:

Dibujo en papel milimetrado de la figura 9.5 e ilustraciones, diapositivas, acetatos, mapas conceptuales.

Software de fisiología cardiaca.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Ilustraciones descriptivas y / o funcionales. Señalizaciones. Discusión guiada.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Elaborar:

Organizador previo expositivo y comparativo y/o una ilustración descriptiva (del ciclo cardiaco, cambios de volumen y presión en las diferentes cámaras cardiacas y sobre la electrofisiología del corazón)

Cuestionario:

1. Defina ciclo cardiaco.2. ¿Dónde inicia y termina el ciclo cardiaco?3. ¿Indique relaciones y diferencias entre las curvas de presión de ambos

ventrículos?4. Explique a que se deben las ondas de presión auricular.

15

Page 16: Guía Fisio1 2009 CORRE

5. Explique la relación que tiene la onda P del EKG con las diferentes curvas del ciclo cardiaco.

6. ¿Por qué se cierran las válvulas auriculo-ventriculares?7. ¿A qué se debe el cierre de las distintas válvulas cardiacas?8. Defina y explique a que se deben los diferentes volúmenes cardiacos.9. ¿Qué es precarga y poscarga?

Práctica 4

ElectrocardiogramaConocimiento teórico requerido4:

El electrocardiograma (ECG/EKG, del alemán Elektrokardiogramm) es el gráfico que se obtiene con el electrocardiógrafo para medir la actividad eléctrica del corazón en forma de cinta gráfica continua. Es el instrumento principal de la electrofisiología cardiaca y tiene una función relevante en el cribado y diagnostico de las enfermedades cardiovasculares, alteraciones metabólicas y la predisposición a una muerte súbita cardiaca. El nombre electrocardiograma está compuesto por electro que implica la actividad eléctrica, cardio del griego corazón y grama, también del griego, que significa escritura.El electrocardiograma tiene la ventaja de ser un procedimiento médico con resultados disponibles inmediatamente, no es invasiva y es económica. En la escritura, se ha preferido el uso de EKG en vez de ECG por lo fácil que resulta confundir la c con una e del EEG(electroencefalograma).

Usos:

El EKG tiene una amplia gama de usos:

Determinar si el corazón funciona normalmente o sufre de anomalías (p. ej.: latidos extra o saltos – arritmia cardiaca).

Detectar coronariopatias (durante o después de un ataque cardíaco). Se puede utilizar para detectar alteraciones electrolíticas de potasio, sodio, calcio,

magnesio u otros. Permitir la detección de anormalidades de conducción (bloqueo auriculo-

ventricular, bloqueos de rama). Mostrar la condición física de un paciente durante un test de esfuerzo. Suministrar información sobre las condiciones físicas del corazón (p. ej.: hipertrofia

ventricular izquierda)

Colocación de las derivaciones

El EKG se estructura en la medición del potencial eléctrico entre varios puntos corporales. Las derivaciones I, II y III se miden sobre los miembros: la I va del brazo derecho al izquierdo, la II del brazo derecho a la pierna izquierda y la III del brazo izquierdo a la pierna izquierda. A partir de esto se obtiene el punto imaginario V, localizado en el centro del pecho, por encima del corazón. Las otras nueve derivaciones provienen del potencial

4 Capítulos 11 y 12 Guyton. Capítulo 19 Best & Taylor

16

Page 17: Guía Fisio1 2009 CORRE

entre este punto y las tres derivaciones de los miembros (aVR, aVL y aVF) y las seis derivaciones precordiales (V1-6).

V1: 4º espacio intercostal derecho, línea paraesternal derecha. V2: 4º espacio intercostal izquierdo, línea paraesternal izquierda V3: equidistante de V2 y V4. V4: 5º espacio intercostal izquierdo, línea medio clavicular. V5: 5º espacio intercostal izquierdo, línea anterior axilar. V6: 5º espacio intercostal izquierdo, línea axilar media.

Por lo tanto, hay doce derivaciones en total. Cada una de las cuales registra información de partes concretas del corazón:

Las derivaciones inferiores (III y aVF) detectan la actividad eléctrica desde el punto superior de la región inferior (pared) del corazón. Esta es la cúspide del ventrículo izquierdo.

Las derivaciones laterales (I, II, aVL, V5 y V6) detectan la actividad eléctrica desde el punto superior de la pared lateral del corazón, que es la pared lateral del ventrículo izquierdo.

Las derivaciones anteriores, V1 a V6 representan la pared anterior del corazón o la pared frontal del ventrículo izquierdo.

aVR raramente se utiliza para la información diagnóstica, pero indica si los electrodos se han colocado correctamente en el paciente.

La comprensión de las direcciones o vectores normales y anormales de la despolarización y repolarización comporta una importante información diagnóstica. El ventrículo derecho posee muy poca masa muscular, por lo que solamente imprime una pequeña marca en el EKG haciendo más difícil diagnosticar los cambios en éste que los producidos en el ventrículo izquierdo.Los electrodos miden la actividad eléctrica media generada por la suma total de la capacidad cardiaca en un momento concreto. Por ejemplo, durante la sístole auricular normal, la suma de la actividad eléctrica produce un vector eléctrico que se dirige del nódulo SA (sinusal) hacia el nódulo AV (auriculoventricular) y se extiende desde el atrio derecho al izquierdo (puesto que el nódulo SA reside en el atrio derecho). Esto se convierte en la onda P en el EKG, la cual es recta en I, II, III, AVL y aVF (ya que la actividad eléctrica general se dirige hacia esas derivaciones), e invertida en aVR (dado que se aleja de esa derivación)

Fisiología clínicaDescripción de caso: Una mujer de 72 años de edad con hipertensión es tratada con propanolol un agente bloqueador adrenérgico Beta. A presentado varios episodios de confusión y sincope (desmayo). Una electrocardiograma muestra bradicardia sinusal; ondas P regulares normales seguidas de complejos QRS, sin embargo la frecuencia de las ondas P esta reducida a 45 por minuto. El médico reduce gradualmente la dosis de propanolol y cambia la medicación antihipertensiva después se realiza un nuevo EKG y la frecuencia de las ondas P es de 80 por minuto.

Explicación casoLa frecuencia cardiaca esta determinada por la frecuencia de las ondas P. durante el tratamiento con propanol la frecuencia era de solo 45 por minuto. La presencia de las

17

Page 18: Guía Fisio1 2009 CORRE

ondas P indica que el corazón se activa a través del nodo sinusal, que es el marcapaso normal. No obstante como la paciente recibia propanolol un bloqueador Beta adrenérgico reduce la despolarización en la fase 4 del nodo sinusal y por tanto la frecuencia de disparo de los potenciales de acción de las células nodales.

Tratamiento: bradicardia sinusal por efecto terapéutico de propanolol, interrumpir el propanolol y la frecuencia cardiaca vuelve a la normalidad.

Objetivos:

1. Realizar toma de EKG.2. Relacionar los conocimientos previos en la comprensión de los trazos electro

cardiográficos.3. Aplicar el conocimiento adquirido en la lectura e interpretación del

electrocardiograma.

Competencias:

Utiliza la siguiente sistematica para el análisis del EKG:

a) Determina la presencia o no de ritmo sinusal.b) Determina la frecuencia cardiaca.c) Determina la duración del intervalo P-R.d) Determina el eje eléctrico cardiaco.e) Mide el ancho de QRS y su morfología.f) Reconoce la morfología del segmento ST.g) Reconoce un electrocardiograma normal y lo diferencia de un patológico.

Material, reactivos y equipo:

Electrocardiógrafo. Electrodos de extremidades y precordiales. Papel electro cardiográfico. Gel conductor. Sujeto de experimentación. Software de electrocardiografía.

Técnica:

Un estudiante será el sujeto de experimentación, el cual se colocará en decúbito dorsal y se procederá a colocar los distintos electrodos en las regiones señaladas líneas arriba, cuidando de usar el gel correctamente y de no llevar nada metálico puesto para que no interfiera con el registro.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Ilustraciones descriptivas y / o funcionales. Señalizaciones. Práctica guiada de lecturas de electrocardiogramas.

18

Page 19: Guía Fisio1 2009 CORRE

Practica guiada de obtención del EKG.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Elaborar:

Presentación e interpretación de EKG.

Cuestionario:

1. ¿Qué representa el intervalo Q-T?2. ¿Cuál es la velocidad estándar de desplazamiento del papel del

electrocardiógrafo?3. ¿Cómo se obtiene el eje eléctrico del complejo QRS?4. ¿Qué efecto tiene el masaje del seno carotideo sobre la frecuencia cardiaca?5. ¿Por qué la onda “S” es normalmente negativa en DI?6. ¿Qué duración tienen cada una de las ondas del EKG?7. ¿Qué factores pueden desviar el eje eléctrico del corazón?

19

Page 20: Guía Fisio1 2009 CORRE

Práctica 5

Presión arterialConocimiento teórico requerido5:

“Paciente de sexo (x), en reposo de (x) minutos, posición sentado (o decúbito), se procede a la toma de la presión arterial por el método auscultatorio de Korotkoff para lo cual se toma el brazo izquierdo (o derecho), se lo desnuda y coloca sobre una superficie plana entre 45 a 90 grados con la superficie a la altura del corazón; luego se ubica la arteria humeral que pasa por la carta interna del brazo a nivel del borde interno del músculo bíceps, una vez ubicada la arteria se sigue su trayecto hasta el pliegue del codo, lugar en el que se pondrá la membrana del diafragma. Ahora se toma el brazalete y se coloca el manguito de presión sobre el trayecto de la arteria humeral, el brazalete debe estar a 3cm sobre el pliegue o debajo de la V deltoidea. Luego se posicionan las olivas hacia adentro, adelante y abajo y se coloca la membrana del diafragma en el pliegue del codo cerca del tendón de inserción del bíceps lugar por donde pasa la arteria humeral y se procede a insuflar el manguito 20 a 30 mmHg sobre la presión máxima, luego se des insufla lentamente de modo que la aguja del manómetro descienda a una velocidad de 2-3 mmHg por segundo y el primer ruido es la presión sistólica o máxima y la última la mínima o diastólica.

El relatorio del método palpatorio es:

“Paciente de sexo (x), en reposo de (x) minutos, posición sentado (o decúbito), se procede a la toma de la presión arterial por el método Palpatorio de Rivva rocci para lo cual se toma el brazo izquierdo (o derecho), se lo desnuda y coloca sobre una superficie plana entre 45 a 90 grados con la superficie a la altura del corazón; luego se ubica la arteria humeral que pasa por la cara interna del brazo a nivel del borde interno del músculo bíceps. Ahora se toma el brazalete y se coloca el manguito de presión sobre el trayecto de la arteria humeral, el brazalete debe estar a 3cm sobre el pliegue o debajo de la V deltoidea. Luego se ubica la arteria radial en el canal radial, se la palpa y se procede a insuflar el manguito 20 a 30 mmhg sobre la presión máxima o hasta que la sensación de onda de pulso en la mano del explorador desaparezca, luego se desinsufla lentamente de modo que la aguja del manómetro descienda a una velocidad de 2-3 mmhg por segundo y la primera onda de pulso sentida es la presión sistólica o máxima.

Fisiología clínica

Caso: mujer de 65 anos de edad refiere “no sentirse bien” y disminución de la orina. La presión diastólica esta elevada a 115 mmHg , además presenta borborigmos abdominales (ruidos). Es ingresada al hospital para tratar su hipertensión.

Las pruebas de laboratorio revelan: TFG muy disminuida 30ml/min se sospecha de enfermedad vascular renal. La angiografía renal muestra 90% de obstrucción de estenosis arterial renal derecha, la actividad de la renina plasmática esta elevada especialmente la

5 Capítulos 9, 14, 15, 17, 18,19, 26,27 Guyton. Capítulo 16 Best & Taylor

20

Page 21: Guía Fisio1 2009 CORRE

concentración de la vena renal derecha, se intenta una angioplastia derecha sin éxito y la mujer es tratada con captopril inhibidor de la ECA.

Explicación del caso: la mujer padece estenosis de la arteria renal derecha que reduce el flujo sanguíneo al riñón derecho los ruidos abdominales se auscultan debido al flujo de la sangre por la arteria estenosada que es turbulento. ( el numero de Reynolds esta aumentado. Como resultado la TFG esta disminuida.

El riñon derecho “piensa” que la presión arterial es baja (por el bajo flujo) y que se requiere aldosterona como resultado secreta renina lo que activa a la angiotensina I y luego a la angiotensina II que promueve la secreción de aldosterona. La angiotensina II produce vasoconstricción y eleva la RVP, la aldosterona aumenta la reabsorción de Na+ lo que aumenta el volumen del LEC y el Volumen sanguíneo lo que aumenta la presión diastólica.

Tratamiento: El dilatar la arteria renal no fue exitoso entonces se recurrió a los ECA que interrumpen el sistema renina-angiotensina-aldosterona evitando que la angiotensina I se convierta en angiotensina II inhibiendo la enzima y de manera que no se forme aldosterona.

Objetivos:

1. Describir los métodos para la toma de presión arterial.2. Explicar los cambios en la presión arterial que ocurren por la exposición al frio, al

ejercicio físico y a la posición.3. Medir la presión arterial.4. Explicar todos los factores que determinan e influyen en la presión arterial sistólica

y diastólica

Competencias:

Comprende la fisiopatología de la hipertensión arterial sobre la base de la fisiología del sistema vascular y los mecanismos de regulación de la presión sanguínea.

Calcula la presión arterial media conociendo los valores de la presión sistólica y diastólica.

Registra correctamente la presión arterial con esfingomanometro y estetoscopio.

Material, reactivos y equipo:

Esfingomanómetro. Estetoscopio. Agua y cubos de hielo. Balde o cubeta.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Ilustraciones descriptivas y / o funcionales. Señalizaciones.

21

Page 22: Guía Fisio1 2009 CORRE

Preguntas intercaladas. Actividad focal introductoria. Resolución de problemas. Práctica guiada. Discusión guiada.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Realizar y/o responder:

Toma y evaluación de la presión arterial con las diferentes técnicas. Describir las fases de la escala de Korotkow. Citar todas las partes del esfigmomanómetro.

Cuestionario:

1. ¿Qué es la presión arterial?2. ¿A qué se llama presión arterial media?3. ¿Cuándo se dice que hay hipertensión?4. Describa los mecanismos rápidos del control de la presión5. ¿Qué papel juega el riñón en el control de la presión arterial?6. ¿A qué se llama presión diferencial?7. ¿A partir de que se forma la angiotensina I?8. ¿Qué función cumple la renina?9. ¿Dónde se transforma la angiotensina I en II?10. ¿Qué es la reacción de Cushing?11. ¿Dónde se secreta y qué función cumple la aldosterona?12. ¿Cómo funcionan los barorreceptores y quimiorreceptores?13. ¿Qué factores cardiovasculares determinan la presión arterial?14. ¿Qué factores ambientales, etc. pueden influir en la presión arterial?15. ¿Cuáles son las causas de la presión sistólica y diastólica?16. ¿Por qué es importante la presión arterial para los tejidos?

Práctica 622

Page 23: Guía Fisio1 2009 CORRE

Auscultación cardiacaConocimiento teórico requerido6:

Auscultación cardiaca:

La auscultación es el procedimiento exploratorio que permite escuchar los ruidos que proceden de dentro el organismo, probablemente es uno de los más importantes en la evaluación clínica funcional de la actividad cardiaca. Los ruidos cardiacos (toda manifestación audible de la actividad del corazón) pueden ser percibidos con la ayuda del fonendoscopio cuyo extremo explorado debe contar con una campana y un diafragma, el diámetro de ambos debe ser el mayor posible, por otro lado la audibilidad será mejor cuanto menor sea la longitud de los tubos conductores (es recomendable que no pase de 30 a 40 cm y que él diámetro interno no sea mayor de 0.5cm), y quizás en lo posible se componga de dos tubos de goma uno para cada auricular.

Para una buena auscultación, el sujeto debe permanecer recostado, en decúbito supino, bien relajado, con el pecho descubierto, en un ambiente cálido y tranquilo de modo que se disminuyan las interferencias que podrían producir otros ruidos y se procederá a aplicar la membrana del estetoscopio en los siguientes focos de auscultación:

1. Mitral: En la punta del corazón.2. Tricuspideo: A la izquierda de la base del apéndice xifoides.3. Pulmonar: 2do espacio intercostal a la izquierda del esternón.4. Aórtico: 2do espacio intercostal a la derecha del esternón.5. Aórtico accesorio: 3er espacio intercostal a la izquierda del esternón.6. Mesocardico: En un punto que sea más o menos equidistante a los anteriores.

A más de estos focos clásicos una auscultación minuciosa debe extenderse por todo el precordio. Es aconsejable comenzar la auscultación por la punta, luego pasar al foco aórtico, de aquí al pulmonar, aórtico accesorio, mesocardico y finalmente el tricuspideo, luego es útil volver a la punta y desde aquí ir auscultando centímetro a centímetro por toda la región precordial (Dr. Luis Paredes).

Para información adicional visite:

http://depts.washington.edu/physdx/heart/demo.html

Objetivos:

1. Identificar con precisión los focos de auscultación.2. Diferenciar los tonos cardiacos.

Competencias:

6 Capítulos 9, 10, 11, 20, 21 y 23 Guyton. Capítulo 14 Best & Taylor

23

Page 24: Guía Fisio1 2009 CORRE

Ausculta los cuatro focos cardiacos y reconoce el primero del segundo.

Correlaciona los ruidos y soplos con las fases del ciclo cardiaco.

Material, reactivos y equipo:

Una camilla. Estetoscopio. Sujeto de experimentación. Software de auscultación cardiaca.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Tormenta de ideas. Ilustración descriptiva y funcional. Práctica guiada.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Realizar:

Auscultación cardiaca.

Cuestionario:

1. Describa las características del 1er y 2do tonos cardiacos.2. Indique en qué momento del ciclo cardiaco ocurren los siguientes soplos:

Estenosis aórtica. Estenosis pulmonar. Estenosis tricuspídea. Estenosis mitral. Persistencia del conducto arterioso. Insuficiencia aórtica. Insuficiencia mitral.

3. ¿A qué se llama frémito?4. ¿Qué válvulas se dañan con mayor frecuencia en la fiebre reumática y porqué?5. ¿En qué puntos de la pared torácica se proyectan los diferentes focos cardiacos y

porqué?6. ¿Cuáles son las partes de un estetoscopio?7. ¿Qué sonidos se perciben mejor con el diafragma y con la campana y porqué?8. ¿Cuáles son y a que se deben los diferentes ruidos cardiacos?

Práctica 7

Función renal

24

Page 25: Guía Fisio1 2009 CORRE

Conocimiento teórico requerido7:

La principal función renal es mantener un adecuado medio interno, para lograrlo debe controlar con bastante precisión el volumen y la composición del plasma; como resultado de esta actividad reguladora el riñón excreta lo que se conoce como orina. Desde el punto de vista estructural y funcional el riñón está constituido por 1 millón de nefronas que son la unidad funcional renal compuesta por 2 partes principales: el glomérulo y el túbulo renal. El glomérulo funciona como un filtro de todas las sustancias que necesitan ser aclaradas del plasma y los túbulos son ligares donde se intercambian diversos electrolitos por diferentes mecanismos de transporte. De modo que la orina resultado de tres procesos que ocurren en la nefrona: filtración, reabsorción y secreción.

Fisiología clínica

Caso: paciente mujer con sed y micciones excesivas durante el día orina cada hora y en la noche unas 5 veces. Se le indica el estudio de prueba de tolerancia a la glucosa tras la prueba la glucosa aumenta de 200 a 800 mg/dl. Tras otro estudio se estima que la tasa de filtración glomerular de la mujer es de 120 ml/min. El medico concluye que la mujer tiene una diabetes de tipo I y no por mecanismos de transporte de la glucosa en el riñón.

Explicación de caso: Existe la siguiente explicación en esta paciente ya que la carga filtrada por el riñón excede la capacidad de reabsorción.

La micción excesiva se debe a la presencia de glucosa no reabsorbida en el liquido tubular, la glucosa actua como diurético osmótico e incrementa la producción de orina, la sed excesiva se da en parte por la micción excesiva pero mas por la elevada concentración de glucosa en el plasma que estimula el centro de la sed.

Tratamiento: insulina

Objetivos:

1. Observar los cambios de la densidad de la orina por la ingesta de agua destilada y otras sustancias.

2. Emplear tiras reactivas e interpretar los resultados.3. Comparar los cambios en la diuresis en reposo y ejercicio.

Competencias

Calcula la cantidad de agua de diferentes compartimientos según genero y edad.

Calcula la osmolaridad plasmática sobre la base del ionograma plasmático. (ver formula en practica 2).

Evalúa la función renal en un paciente normal y detecta las alteraciones mas comunes.

Evalúa el tamaño renal en una ecografía, como parte de la evaluación en la patología renal.

Realiza un esquema de una nefrona y reconoce sus diferentes segmentos.7 Capítulos 25, 26, 27, 28, 29 y 30 Guyton. Capítulos 24, 25, 26, 27, 28 Best & Taylor

25

Page 26: Guía Fisio1 2009 CORRE

Material, reactivos y equipo:

Urodensimetro. Cintas reactivas. 2 litros de agua potable por grupo. 2 litros de agua destilada. Sal común 9 cucharillas. ½ litro de solución de bicarbonato de sodio al 0.4%. 100ml de whisky, vodka, ron u otra bebida con elevado contenido alcohólico. Vasos desechables. Vasos de precipitado graduados. Probetas graduadas de 100ml de capacidad. Tiras reactivas para orina. 4 Gradillas para tubos de ensayo. 7 tubos de ensayo por grupo. Radiografias y ecografías renales

Técnica:

Los sujetos de experimentación deben estar con 2 a 3hrs. De ayuno antes de llevar a cabo la práctica. El 1er sujeto debe ingerir 10ml de agua potable por kilogramo/peso, el 2do 5ml de agua kilogramo/peso más 9 cucharillas de sal común. El 3er sujeto ingiere 5ml de disolución de bicarbonato de sodio al 0.4% por Kg/p. El 4to debe tomar 10ml de agua por Kg/p más 70ml de whisky. El 5to debe realizar ejercicio intenso durante 20 minutos. El 7mo no ingiere ningún líquido es el sujeto control. Se deben excluir de esta práctica a cualquier sujeto que adolezca de problemas renales, cardiacos y/o sienta algún malestar durante la prueba. Antes de iniciar la práctica todos los sujetos de experimentación deben evacuar la vejiga, siendo esta la primera muestra o de control sobre la cual se harán las distintas determinaciones. Luego de tomar las distintas soluciones se tomarán muestras de orina cada 25 minutos. En cada muestra de orina se deberá determinar con las tiras reactivas los siguientes parámetros:

Nombre: 1……………………………………………………………………………… Grupo:………….... Fecha:…………………… 2……………………………………………………………………………….Hora de última micción antes de la prueba: 1.…………………………….. 2……………………………..Disolución ingerida:1.………………………………………………….. Cantidad: 1.………………… Peso: 1.……………… 2………………………………………………….. 2………………… 2………………

Ítems Nº muestra

Hr. Vol. Flujo/min

Hallazgo

Nº muestra

Hr. Vol. Fujo/min

Hallazgo

E. Químico E. Químico

26

Page 27: Guía Fisio1 2009 CORRE

UrobilinógenoGlucosa

Bilirrubina

Cetonas

P. específico

Sangre

PH

Proteínas

Nitritos

E. microscópico E. microscópicoLeucocitos

Cristales

Cilindros

E. físico: E. físicoColor

Olor

Aspecto

Vol. Total

ClNa Total

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Exposición más ponencia. Discusión guiada. Preguntas intercaladas. Resolución de problemas. Práctica guiada.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Realizar:

Dibujar todas las partes de una nefrona y el aparato yuxtaglomerular e indicar la función en la formación de orina de cada una de las partes.

Estudio de caso y/o caso clínico. Interpretación del trasfondo fisiológico del parcial de orina obtenido en práctica.

Cuestionario:

1. ¿Cuál es la unidad anatómica y funcional del riñón?2. ¿De qué depende la excreción de una sustancia en la orina?3. ¿Dónde se produce y almacena la ADH?4. ¿Cómo se regula y donde se produce la aldosterona?5. Mencione los estímulos que producen la secreción de aldosterona.

27

Page 28: Guía Fisio1 2009 CORRE

6. ¿Explique de que manera el riñón regula el equilibrio ácido base?7. ¿Cuáles son los rangos de variación de la densidad urinaria y del pH?8. Explique la dinámica de la función renal.9. ¿Cuánto es el volumen de orina que se forma por minuto?10. ¿A qué se llama índice de filtración glomerular y cuanto es su valor normal?11. ¿A qué se llama aclaración plasmática?12. ¿Qué cosas son necesarias para que el riñón se capaz de formar orina

concentrada?

Práctica 8

Punción venosa y arterialConocimiento teórico requerido8:8 Capítulos 32 al 36 Guyton.

28

Page 29: Guía Fisio1 2009 CORRE

punción venosa (Sistema al vacío).

1. Verificar que los elementos por utilizar estén listos, y que el paciente se sienta cómodo.

2. Se retira el estuche protector de la aguja y éste se enrosca al dispositivo para extracción de sangre al vacío.

3. Colocar la ligadura cuatro dedos por encima de la flexión del codo o 10 cm por encima de éste y pedir al paciente que abra y cierre la mano varias veces, para favorecer la dilatación de las venas.

4. Una vez escogida la vena, desinfectarla con una pieza de algodón embebido en etanol al 70%.

5. Se coloca la aguja en dirección paralela a la vena, se perfora la piel haciendo avanzar la aguja entre 0,5 cm y 1 cm en el tejido subcutáneo, se inserta el tubo al vacío por la parte posterior y no preocuparse por

6. La cantidad de sangre extraída ya que el mismo sonido del vacío avisará que la extracción terminó.

7. Si pincho y no sale sangre puede ser debido a: Pinchar al lado de la vena pero no la vena Pinchar superficialmente Pinchar la vena pero atravesada

Llenar los tubos al vacío hasta el nivel marcado; es imprescindible que estén llenos justo hasta la señal.

8. Retirar la ligadura tirando del extremo doblado. 9. Colocar un pedazo de algodón seco sobre la parte donde se encuentra oculta la

aguja. Sacar la aguja con un movimiento rápido y depositarla en el recipiente de metal con desinfectante.

10. Pedir al paciente que presione firmemente el algodón durante 3 minutos, con el brazo extendido. No se recomienda que se flexione el brazo a causa del riesgo que se forme un hematoma.

Mezclar por inmersión suave la sangre (cuando el tubo colector tiene anticoagulante).

Objetivos:

1. Emplear las técnicas de punción venosa.2. Explicar los cuidados que se deben tener al realizar una punción venosa.3. Reconocer los sitios donde se pueden efectuar una punción venosa.4. Aplicar las técnicas y cuidados para la administración de soluciones intravenosas.5. Aprender a realizar venopunción, extendidos de sangre y determinar valores

hematométricos.

Competencias:

Aplica y desarrolla correctamente la técnica de punción venosa.

Material, reactivos y equipo:

29

Page 30: Guía Fisio1 2009 CORRE

Alcohol al 70%. Algodón estéril. Jeringa de 5 ml. Palillos. Guantes. Gafas protectoras. Cura adhesiva. Ligadura o torniquete de 25 a 30 cm de largo.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Señalización Ilustraciones descriptivas y / o funcionales. Práctica guiada.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Realizar:

Práctica guiada venopunción y determinación de valores hematométricos.

Cuestionario:

1. ¿De qué partes del cuerpo se recomienda la toma de muestra de sangre capilar?2. ¿Qué es la embolia gaseosa?3. Señale las indicaciones de punción arterial.4. Señale los cuidados que se debe tener con la muestra de sangre arterial hasta su

traslado al laboratorio.5. ¿Qué es una equimosis?6. ¿Qué es la hemofilia?7. ¿Qué es la trombocitopenia?

Práctica 9

Grupo y factor sanguíneoConocimiento teórico requerido9:

9 Capítulos del 32 al 36 Guyton. Capítulo 21 Best & Taylor

30

Page 31: Guía Fisio1 2009 CORRE

La incompatibilidad sanguínea ya fue observada años atrás al ver el deceso de muchas personas a quienes se les trasfundía y en 1900 Karl Landsteiner descubrió la causa de estas reacciones posttransfusionales, a la que llamó de incompatibilidad sanguínea debido a la presencia de antígenos de superficie (aglutinógenos) y anticuerpos (aglutininas) en el plasma de ambos sujetos que participaban de dicha operación. De esta forma se llego a establecer una clasificación de los eritrocitos humanos en 4 grupos clásicos que integran el sistema ABO (Oab – Ab – Ba – ABo). Posteriormente se descubrió otro sistema conocido como Rh que está determinado por tres pares de antígenos (C.c.D.d.E.e). El carácter Rh negativo se debe a la ausencia del antígeno D y el Rh positivo lo posee.

Objetivos:

1. Identificar el grupo sanguíneo por el método de tipificación sanguínea.2. Demostrar el grupo predominante, así como el factor Rh en el grupo de estudio.

Competencia:

Elige correctamente el hemocomponente adecuado tras una hemorragia que requiere transfusión.

Indica las pruebas pretransfusionales correctas para evitar accidentes hemolíticos.

Material, reactivos y equipo:

Alcohol al 70%. Algodón estéril. Gasas estériles. Jeringa de 5 ml. Tubos de hemólisis con anticoagulante. Gradilla para tubos de ensayo. Suero anti-A. Suero anti-B. Suero anti-D. Palillos. Guantes. Gafas protectoras. Cura adhesiva. Ligadura o torniquete de 25 a 30 cm de largo.

Técnica:

Con la sangre obtenida sea por punción venosa o por sangre capilar, se debe colocar 1 gota en 3 porta objetos, se debe añadir a cada gota de sangre una gota de antisuero A, B, D, mezclar luego con los palillos (usar diferente palillo para cada gota) de fosforo y observar moviendo el porta objetos en cuál de ellos se produce aglutinación, según los resultados obtenidos se clasificará el grupo sanguíneo y el factor.

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

31

Page 32: Guía Fisio1 2009 CORRE

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Señalización Ilustraciones descriptivas y / o funcionales. Práctica guiada. Ilustración descriptiva y funcional.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Realizar:

Práctica guiada.

Cuestionario:

1. ¿Cuál es el predomino de grupo sanguíneo según la raza?2. ¿Qué son los aglutinógenos y las aglutininas?3. ¿Qué tipo de aglutinógenos y aglutininas tiene cada grupo sanguíneo?4. ¿Qué grupos sanguíneos se conocen como donador y receptor universales y por

qué?5. ¿Qué es la eritroblastosis fetal y por qué se produce?6. ¿Dónde y quien forma a las aglutininas?7. ¿Qué tipo de sangre se recomienda para la transfusión a un niño con

eritroblastosis fetal y por qué?8. ¿A qué se llama Kernicterus?9. ¿En qué consisten las pruebas cruzadas?

Práctica 10

HemostasiaCoagulación sanguínea

Conocimiento teórico requerido10:

10 Capítulos del 32 al 36 Guyton. Capítulo 23 Best & Taylor

32

Page 33: Guía Fisio1 2009 CORRE

La coagulación de la sangre es el resultado de la compleja interacción de una serie de reacciones enzimáticas que se suceden de manera coordinada siguiendo una determinada secuencia. En última instancia la coagulación sanguínea pretende lograr la hemostasia o detenido de la hemorragia. El proceso de la coagulación comprende las siguientes etapas:

1. liberación de tromboplastina.2. Formación de la trombina.3. Conversión del fibrinógeno en fibrina.4. Polimerización de la fibrina.5. Retracción del coágulo.

Se debe recordar la coagulación puede ser iniciado por una o dos vías conocidas como vía intrínseca y clásica de la coagulación sanguínea.

Objetivos:

1. Medir el tiempo en que la sangre se coagula in vitro.2. Observar los efectos de la temperatura sobre el tiempo de coagulación.3. Explicar las vías de coagulación sanguínea.

Competencias:

Debe interrogar a todo paciente en plan quirúrgico sobre la utilización de aspirina y saber cuantos días antes de la cirugía debe suspenderse para evitar el riesgo de sangrado excesivo.

Conocer los fármacos antiagregantes plaquetarios y su mecanismo de acción.

Material, reactivos y equipo:

Alcohol al 70%. Algodón estéril. Gasas estériles. Jeringa de 5 ml. Tubos de hemólisis sin anticoagulante. Gradilla para tubos de ensayo. Suero anti-A. Suero anti-B. Suero anti-D. Palillos. Guantes. Gafas protectoras. Cura adhesiva. Ligadura o torniquete de 25 a 30 cm de largo. Hielo. Deposito para hielo y para agua caliente. Cronometro.

Técnica:

33

Page 34: Guía Fisio1 2009 CORRE

El método para la extracción de sangre es el miso que el estudiado para la punción venosa. Luego de colocar la sangre en los tubos de hemolisis sin anticoagulante se debe observar y tomar el tiempo en el que la sangré tarda en coagular a distintos niveles de temperatura (a temperatura ambiente, a 45ºC y en contacto con el hielo).

Metodología didáctica (llevado a cabo y/o dirigido por el docente):

Evaluación escrita inicial. Exposición más ponencia. Señalización Ilustraciones descriptivas y / o funcionales. Práctica guiada. Ilustración descriptiva y funcional.

Tareas de aprendizaje (realizado por el estudiante):

Elaborar:

Organizador previo expositivo en forma de mapa de redes conceptuales sobre las vías de coagulación.

Cuestionario:

1. ¿Cuáles son los valores normales de: Hb, Hto. Eritrocitos, leucocitos, plaquetas, VES, TC, TP?

2. Cite las diferencias entre granulocitos y agranulocitos.3. ¿Qué es hematocrito?4. Cite los tipos de anemia más importante y sus diferencias.5. Cite los componentes de la sangre.6. ¿Qué es la velocidad de eritrocedimentación y cuál es su importancia?7. Cite las diferencias más importantes entre las vías intrínseca y extrínseca de la

coagulación.8. ¿Cuáles son los acontecimientos de la hemostasia?9. ¿Qué es la trombocitopenia y la hemofilia?10. ¿A que se llama coagulación intravascular diseminada?11. ¿Qué funciones cumple la trombina y la antitrombina III?12. ¿Qué factores de la coagulación requieren para su síntesis de vitamina K?13. ¿En qué situaciones clínicas se debe emplear el activador de plasminogeno

tisular?

34