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FACULTAD DE CIENCIAS DE SALUD
DESCRIPCIÓN DE PARÁMETROS SANGUÍNEOS MEDIANTE HEMOGRAMAS EN Chelonia mydas EN EL CENTRO DE
REHABILITACIÓN DE FAUNA MARINA DEL PARQUE NACIONAL MACHALILLA, PUERTO LÓPEZ.
Autora
Gloria Pamela Noboa Marín
Año2019
FACULTAD DE CIENCIAS DE SALUD
DESCRIPCIÓN DE PARÁMETROS SANGUÍNEOS MEDIANTE
HEMOGRAMAS EN Chelonia mydas EN EL CENTRO DE REHABILITACIÓN
DE FAUNA MARINA DEL PARQUE NACIONAL MACHALILLA, PUERTO
LÓPEZ.
“Trabajo de Titulación presentado en conformidad con los requisitos
establecidos para optar por el título de Médico Veterinario Zootecnista”
Profesor Guía
MV. MSc. PhD. Alexander Genoy-Puerto
Autora
Gloria Pamela Noboa Marín
Año
2019
DECLARACIÓN DEL PROFESOR GUÍA
"Declaro haber dirigido el trabajo, Descripción de parámetros sanguíneos
mediante hemogramas en Chelonia mydas en el centro de rehabilitación de
fauna marina del parque nacional Machalilla, Puerto López, a través de
reuniones periódicas con el estudiante Gloria Pamela Noboa Marín, en el
semestre 2019-10, orientando sus conocimientos y competencias para un
eficiente desarrollo del tema escogido y dando cumplimiento a todas las
disposiciones vigentes que regulan los Trabajos de Titulación".
_________________________________________
MV. MSc. PhD. Alexander Genoy-Puerto Médico Veterinario C.I.:1757589278
DECLARACIÓN DEL PROFESOR CORRECTOR
"Declaro haber revisado este trabajo, Descripción de parámetros sanguíneos
mediante hemogramas en Chelonia mydas en el centro de rehabilitación de
fauna marina del parque nacional Machalilla, Puerto López, del estudiante
Gloria Pamela Noboa Marín, en el semestre 2019-10, dando cumplimiento a
todas las disposiciones vigentes que regulan los Trabajos de Titulación".
___________________________________
Luis Fabián Núñez Naranjo MVZ. MSc. PhD
C.I.: 171282025-5
DECLARACIÓN DEL AUTORÍA DEL ESTUDIANTE
“Declaro que este trabajo es original, de mi autoría, que se han citado las
fuentes correspondientes y que en su ejecución se respetaron las disposiciones
legales que protegen los derechos de autor vigentes.”
_____________________________
Gloria Pamela Noboa Marín C.I: 1720219276
AGRADECIMIENTOS
Quiero agradecer a mi familia
que siempre me apoyó, a los
Doctores que ayudaron a
formarme en el camino,
especialmente al Doctor
Fernando Paredes que fue quien
me abrió las puertas en
Veterinaria y realizo un enorme
aporte a mi formación, a los
maestros que me dieron las
bases y a mi tutor Alexander
Genoy Puerto por ayudarme en
la culminación de este camino,
que es el inicio de uno más
largo.
DEDICATORIA
Quiero dedicar este estudio a
mis padres, Gerardo Noboa y
Gloria Marín, que estuvieron
apoyándome en todo momento
de mi vida y a Greta, la cual me
motiva para ser cada vez mejor
en la profesión que elegí para
toda mi vida.
RESUMEN
A nivel internacional existen varios estudios hematológicos en tortugas marinas
sanas y en libertad que dan una idea de los valores normales a encontrar en
estos animales. Hay que tomar en cuenta que esto puede variar dependiendo
la ubicación geográfica, la especie y el estado general del animal. La tortuga
verde (Chelonia mydas) es una especie de tortuga marina que se encuentra en
peligro de extinción y que se puede encontrar en la línea costera de varios
países. En el Ecuador existe un centro de rescate y rehabilitación de fauna
marina donde llegan animales lesionados o enfermos que deben ser tratados
para luego ser reinsertados en su hábitat. Para esto es necesario contar con
una base de datos hematológicos que permita tener una mejor idea de lo que
se podría encontrar en animales no sanos. Este estudio tiene como objetivo
determinar patrones hematológicos de hematocrito, proteínas plasmáticas
totales y conteos celulares en tortugas Chelonia mydas lesionadas y alojadas
en el centro de rehabilitación de Puerto López – Ecuador. El hematocrito se
midió con capilares y cartillas de hematocrito; el mismo capilar se utilizó con un
refractómetro para medir las proteínas plasmáticas totales y los conteos de
glóbulos blancos, glóbulos rojos y trombocitos se realizaron con una cámara de
Neubauer. Para los diferenciales de leucocitos se utilizó tinción de Giemsa y un
análisis por microscopia de luz. En el estudio no se encontró diferencia
significativa entre machos y hembras para ninguno de los parámetros
hematológicos estudiados y se observó un leve aumento en el número de
eritrocitos, leucocitos, heterófilos, linfocitos, monocitos y trombocitos en
comparación con otros estudios en animales libres. El presente trabajo podría
servir como base para futuros trabajos en animales en cautiverio y los
parámetros recolectados de las tortugas podrían ser utilizados como una guía
dentro del centro de rehabilitación.
ABSTRACT
At the international level, there are several hematological studies on healthy
and free sea turtles that give an idea of the normal values to be found in these
animals. It must be considered that this may vary depending on the
geographical location, the species and the general condition of the animal. The
green turtle (Chelonia mydas) is a species of marine turtle that is in danger of
extinction and that can be found in the coastal line of several countries. Ecuador
has a center for the rescue and rehabilitation of marine fauna, where injured or
sick animals arrive to be treated and then reinserted into their habitat. For this, it
is necessary to have a hematological database that gives a better idea of what
could be found in unhealthy animals. The aim of this study is to determine the
hematological patterns of hematocrit, total plasma proteins and cell counts in
Chelonia mydas turtles that are housed in the rehabilitation center of Puerto
López - Ecuador. The hematocrit was measured with capillaries and hematocrit
card; The same capillary was used with a refractometer to measure the total
plasma proteins and the counts of white blood cells; red blood cells and
thrombocytes were made with a Neubauer chamber. For leukocyte differentials,
Giemsa staining and light microscopy analysis were used. In the study, no
significant difference was found between males and females for any of the
hematological parameters studied and a slight increase in the number of
erythrocytes, leukocytes, heterophils, lymphocytes, monocytes and
thrombocytes were observed in comparison with other studies in free animals.
The present work could serve as a basis for future work on animals in captivity
and the parameters collected from the turtles could be used as a guide within
the rehabilitation center.
ÍNDICE
1. CAPITULO I. INTRODUCCIÓN .................................................... 1
1.1 Objetivos ............................................................................................... 1
1.1.1 Objetivo general ................................................................................. 1
1.1.2 Objetivos Específicos ......................................................................... 2
1.2 Hipótesis ................................................................................................ 2
2. CAPITULO II. MARCO TEORICO ............................................... 3
2.1 Tortugas Marinas ................................................................................ 3
2.2 Clasificación taxonómica ................................................................... 3
2.3 Distribución geográfica ...................................................................... 4
2.4 Descripción física ................................................................................ 4
2.5 Hábitat ................................................................................................... 4
2.6 Comportamiento .................................................................................. 5
2.7 Reproducción ....................................................................................... 5
2.8 Alimentación ......................................................................................... 6
2.9 Depredadores ...................................................................................... 6
2.10 Contención física .............................................................................. 6
2.11 Hematología ...................................................................................... 7
2.11.1 Hematocrito (Hto) ........................................................................... 8
2.11.2 Proteínas plasmáticas totales (PTT) ............................................... 8
2.11.3 Conteo total de eritrocitos, leucocitos y trombocitos ....................... 9
2.11.4 Frotis sanguíneo, valoración morfológica y conteos diferenciales 10
2.12 Células sanguíneas en reptiles ................................................... 11
2.12.1 Eritrocitos ...................................................................................... 11
2.12.2 Leucocitos .................................................................................... 11
2.12.3 Trombocitos: ................................................................................. 14
3. CAPITULO III. MATERIALES Y METODOS ........................ 15
3.1 Ubicación ............................................................................................ 15
3.1.1 Ubicación geográfica ........................................................................ 15
3.2 Población y muestra ......................................................................... 15
3.2.1 Población ......................................................................................... 15
3.2.2 Muestra ............................................................................................ 15
3.2.3 Criterios de inclusión ........................................................................ 16
3.2.4 Criterios de exclusión ....................................................................... 16
3.3 Materiales ........................................................................................... 16
3.4 Metodología ........................................................................................ 16
3.4.1 Animales .......................................................................................... 16
3.4.2 Toma de muestras ........................................................................... 17
3.4.3 Procesamiento de muestras ............................................................. 19
3.4.4 Método estadístico ........................................................................... 23
4. CAPITULO IV: RESULTADOS Y DISCUCIÓN ................... 24
4.1 Morfología ........................................................................................... 24
4.1.1. Heterófilos ....................................................................................... 24
4.1.1 Eosinófilos ........................................................................................ 25
4.1.2 Basófilos ........................................................................................... 26
4.1.3. Monocitos ........................................................................................ 27
4.1.4. Linfocitos ......................................................................................... 28
4.1.4. Azurófilos ........................................................................................ 29
4.1.5. Parámetros significativos estadísticamente .................................... 29
4.1.6. Parámetros no significativos estadísticamente ............................... 30
4.2. Perfil hematológico .......................................................................... 31
4.2.4. Comparación entre hembras y machos ........................................... 33
4.2.5. Parámetros significativos estadísticamente .................................... 33
4.2.6. Parámetros no significativos estadísticamente ............................... 33
4.2.7. Comparación de resultados con otros estudios .............................. 35
4.3. Biometría ............................................................................................ 37
4.3.1. Parámetros significativos estadísticamente .................................... 38
4.3.2. Parámetros no significativos estadísticamente ............................... 38
4.4. Relación entre biometría y hematología ..................................... 38
4.4.1. Parámetros significativos estadísticamente en hembras ................. 38
4.4.3. Parámetros significativos estadísticamente en machos .................. 40
4.4.4. Parámetros no significativos estadísticamente en machos ............. 40
5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ....................... 42
5.1. Conclusiones..................................................................................... 42
6.2. Recomendaciones ........................................................................... 43
REFERENCIAS ....................................................................................... 44
ANEXOS ..................................................................................................... 48
1
1. CAPITULO I. INTRODUCCIÓN
La Chelonia mydas es una tortuga marina que se encuentra en peligro de
extinción. Es una especie que anida en algunas playas ecuatorianas. Estos
animales se encuentran generalmente en la línea costera y alrededor de islas
donde puede obtener su alimento. Es extraño encontrarlas en mar abierto (Sea
turtle conservancy, 2017).
La pesca, la contaminación de los mares y los humanos son sus principales
amenazas. El Ecuador cuenta con un centro de rescate de fauna marina que
recibe animales afectados por la intervención humana, los rehabilita y los
devuelve a su hábitat. A nivel nacional no se cuenta con estudios
hematológicos en tortugas marinas y los existentes a nivel internacional fueron
realizados en animales sanos y en libertad de varias especies de tortugas
marinas. Estos entregan información relevante sobre los valores hematológicos
que pueden ser esperados en animales saludables. Se debe tomar en cuenta
que los valores pueden variar según la especie, la edad, el estado de salud y la
ubicación geográfica donde se encuentren los animales.
Formar una base de datos hematológicos de animales enfermos o lesionados
puede servir como una guía de los valores que se pueden esperar en animales
varados y ser una ayuda para el centro al momento de decidir el tratamiento
adecuado para nuevos animales durante su rehabilitación.
1.1 Objetivos
1.1.1 Objetivo general
Crear un perfil hematológico de la población de Chelonia mydas
lesionadas del centro de rehabilitación de fauna marina del Parque
Nacional Machalilla, mediante técnicas hematológicas, que puedan
servir de referencia para los individuos que lleguen al centro.
2
1.1.2 Objetivos Específicos
Caracterizar los datos hematológicos obtenidos de las tortugas en
rehabilitación.
Comparar los valores obtenidos en este estudio con los valores
reportados en otros estudios de la misma especie.
Analizar si el sexo de los individuos tiene influencia en los valores
hematológicos en este estudio.
1.2 Hipótesis
HO: No existe variabilidad en los valores hematológicos asociados a
eventos de cronicidad por tiempos de cautiverio prolongados, fracturas y
cuerpos extraños.
H1: Existe variabilidad en los valores hematológicos asociados a
eventos de cronicidad por tiempos de cautiverio prolongados, fracturas y
cuerpos extraños.
3
2. CAPITULO II. MARCO TEORICO
2.1 Tortugas Marinas
Las tortugas marinas son reptiles marinos que cuentan con pulmones y habitan
en el trópico y subtrópico alrededor del mundo. En su exterior cuentan con un
caparazón y un plastrón. Poseen unas escamas grandes conocidas como
escudos que cubren su cuerpo y ayudan a diferenciar las distintas especies.
Existen siete especies de tortugas marinas y todas están en peligro de
extinción diferenciándose por la gravedad (Sea turtle conservancy, 2017).
Son animales que no cuentan con dientes, pero si con unos poderosos picos.
No tienen orejas, pero si tímpanos internos cubiertos por piel. Tienen aletas
grandes y fuertes. Estas tortugas viven toda su vida en el mar excepto por sus
estadios de vida iniciales, ya que las hembras anidan en la arena,
generalmente en su playa natal y las crías deben atravesarla para llegar al mar.
La época de anidaciones dependerá del lugar (Sea turtle conservancy, 2017).
2.2 Clasificación taxonómica
La Chelonia mydas se califica taxonómicamente de la siguiente manera (ITIS,
2008).
Reino: Animalia
Subreino: Bilateria
Infrareino: Deuterostomía
Filum: Cordata
Subfilum: Vertebrata
Infrafilum: Gnathostoma
Superclase: Tetrapoda
Clase: Reptilia
Orden: Testudines
4
Suborden: Cryptodira
Superfamilia: Chelonioidea
Familia: Cheloniidae
Subfamilia: Cheloniinae
Género: Chelonia
Especie: Chelonia mydas
2.3 Distribución geográfica
La Chelonia mydas se encuentra distribuida a nivel mundial en aguas tropicales
y subtropicales. Es una especie que realiza migraciones extensas ayudada
muchas veces por corrientes como la del Golfo. Las colonias más grandes se
encuentran en Costa Rica, Surinam, Reino Unido, Brasil, Hawái, Australia,
Florida (EE. UU.), Nicaragua y Uruguay (Monzón., Tomás., Narol y Marco,
2011)
2.4 Descripción física
La Chelonia mydas se distingue por su dorso verdoso o café oliva, aunque
puede variar desde un verde pálido, amarillo y oscuro. Tiene un caparazón
ancho y profundo con cuatro escudos delgados y yuxtapuestos que puede
llegar a medir 120 cm de largo. El plastrón tiene un tono amarillento con cuatro
escudos infra marginales sin poros. También posee escamas prefrontales en la
cabeza que es redonda. Su mandíbula inferior con borde filoso y aserrados,
aletas delanteras con una uña. Estos animales pueden pesar hasta 230 Kg
(Dick, 2005).
2.5 Hábitat
Se encuentran en tres hábitats diferentes según su ciclo de vida. Playas de
nidificación, sitios de convergencia en mar abierto y zonas de alimentación en
aguas poco profundas. Las áreas de nidación suelen ser islas, archipiélagos y
5
algunas playas continentales; mientras que las de alimentación son pastos
marinos, arrecifes coralinos, fondos rocosos y hábitats con una profundidad
máxima de 20 m. Las temperaturas suelen ser cálidas entre 16 ° y 30 ° C
(Monzón et al, 2011).
2.6 Comportamiento
Durante su primer día fuera del cascaron, pasan por un periodo de frenesí que
les permite llegar al mar lo más rápido posible para disminuir la probabilidad de
ser depredadas (Spotila., O'Connorm y Paladino, 2004). Al llegar al agua se
dirigen a las zonas de convergencia en mar abierto por 3 o 5 años hasta medir
20-40 cm de longitud curva de caparazón (LCC). Al tener la edad y el tamaño
necesario, los ejemplares juveniles se dirigen a aguas pocas profundas que
tengan una alta disponibilidad de recursos. En su mayoría van cerca de sus
playas natales, pero siempre hay un porcentaje de animales que migran hacia
otras costas (Monzón et al, 2011). Al alcanzar su madurez sexual, que se
estima ocurre entre los 20 y 50 años, van a sus áreas de anidación para
reproducirse durante unos meses y vuelven al mar para regresar a reproducirse
dentro de 2 a 3 años (Spotila et al, 2004).
2.7 Reproducción
La temporada reproductiva depende del área geográfica. La cópula la realizan,
cerca de la costa, bajo el agua. Los machos compiten entre ellos por las
hembras y estas pueden fertilizar varias ocasiones los huevos con el mismo
esperma. Al terminar de aparearse, las hembras se dirigen a la playa para
buscar un buen lugar en la arena para anidar, donde hacen un hoyo y
depositan un promedio de 123 huevos para luego cubrirlos y regresar al mar.
Las hembras se reproducen cada 2 a 3 años y reanidan un promedio de 3
veces por temporada y los machos viajan a las zonas de reproducción cada
año (Parque Nacional Arrecife Alacranes, 2011).
6
La mortalidad de huevos y neonatos puede llegar alcanzar el 90 % y se cree
que solo una de cada mil tortugas llega a reproducirse. Esta alta mortalidad se
contrarresta con la longevidad de la especie y su alta fertilidad. (Monzón et al,
2011).
Al igual que otros reptiles, la Chelonia mydas determina su sexo, según la
temperatura, al segundo tercio de incubación. Se sabe que por encima de los
32 ° C las crías serian hembras en su totalidad y por debajo de los 28 ° C
serían machos (Spotila et al, 2004).
2.8 Alimentación
Estos animales presentan cambios de dieta durante su desarrollo. Al inicio se
alimentan de residuos de vitelo. Los juveniles mantienen una dieta omnívora
mientras nadan por mar abierto, pero evitan las algas flotantes. Cuando
empiezan a migrar a aguas poco profundas, adquieren la capacidad de digerir
nutrientes vegetales y lentamente pasan a tener una alimentación herbívora
(Monzón et al, 2011).
2.9 Depredadores
Perros, gatos, cerdos, ratas, aves, lagartos y cangrejos, entre otros, son
depredadores de huevos y neonatos. Las tortugas jóvenes y adultas solo se
encuentran amenazadas por animales grandes como tiburones, orcas,
cocodrilos, jaguares, entre otros. Una de las mayores amenazas para esta
especie es el ser humano (Monzón et al, 2011).
2.10 Contención física
Los quelonios acuáticos deben contenerse con cuidado debido al riesgo de
mordedura por la conformación de sus picos. La forma más segura es
cogiéndolas de la parte dorsal. Generalmente se las toma de la parte cráneo-
7
central del escudo nucal y de la parte caudal del escudo supracaudal (Álvarez,
2018). Se puede observar la conformación del caparazón en la Figura 1.
Figura 1. Grafica de la conformación del caparazón de una tortuga marina.
Tomado de (Castro, 2016).
2.11 Hematología
La sangre da el 8 % del peso de los animales y está compuesta por glóbulos
rojos, glóbulos blancos, trombocitos, proteínas y vitaminas, entre otros, que se
encuentran en el plasma. La línea roja es la más numerosa, seguida por los
trombocitos. La línea blanca es la tercera en tamaño y sus células más
numerosas varían entre linfocitos y heterófilos. La sangre circula por todo el
cuerpo y entra en contacto con cada parte del cuerpo del animal para mantener
el equilibrio del medio interno (Gallo, 2014).
Es importante realizar estudios hematológicos porque sirven para el
diagnóstico de enfermedades que alteran los niveles de sus componentes. El
primer examen es el hemograma, el cual entrega una idea de la cantidad de
células que tiene la sangre y las diferencia entre eritrocitos, Heterófilos,
basófilos, eosinófilos, azurófilos, linfocitos, monocitos y trombocitos. Además,
da valores de hematocrito y proteínas plasmáticas totales (Gallo, 2014).
8
2.11.1 Hematocrito (Hto)
Para el Hematocrito (Hto) se necesita tomar el capilar, colocarlo y proceder a
introducirlo en el tubo con la muestra de sangre. Se debe observar que se llene
hasta la marca, se lo saca y se lo tapa. Con una gasa con alcohol, se limpia
suavemente los alrededores del capilar para quitar el exceso de sangre y
después se lo centrifuga durante 5 minutos a 12000 rpm en una maquina
específica para capilares. Al terminar se comparan los resultados con una
cartilla (Figura 2) para saber el Hto del animal (Universidad Autónoma del
Estado de México, 2013).
Figura 2. Cartilla de lectura de hematocrito. Tomado de (Universidad
Autónoma del Estado de México, 2013).
2.11.2 Proteínas plasmáticas totales (PTT)
El análisis para ver proteínas plasmáticas totales (PPT) es con refractómetro.
Se tiene que calibrar, antes de la lectura, aplicando una gota de solución buffer
y ajustando el tornillo (Universidad Autónoma del Estado de México, 2013).
Con el mismo capilar del hematocrito, se toma muestra de la parte del suero,
se lo coloca en el refractor y se observa apuntando hacia la luz (Yepes et al.
2011). Después de la lectura se realiza la limpieza con suero fisiológico y se
seca totalmente (Universidad Autónoma del Estado de México, 2013).
9
2.11.3 Conteo total de eritrocitos, leucocitos y trombocitos
2.11.3.1 Eritrocitos (GR)
El recuento se puede hacer mediante la cámara de hemocitométrica de
Neubauer (Figura 3) o la Neubauer modificada. En ambos se utilizará una gota
de la muestra diluida de 1.20 con el reactivo Nack Herrick (4 ml de reactivo por
20 µL de sangre) en la cámara de recuento y se dejará sedimentar durante
cinco minutos antes de contar. Se cuenta el cuadrado central y los cuatro
cuadrados de las esquinas de la cuadrícula (Martínez, Lavín y Cuenca, 2011).
Figura 3. Cámara de Neubauer. Tomado de (Martínez et al, 2011).
2.11.3.2 Leucocitos (GB)
El mismo procedimiento del Neubauer modificado se utiliza para contar los
leucocitos. Para obtener la cantidad por μl se tienen que contar los leucocitos
presentes en los 9 campos mayores de la cámara de Neubauer. Su principal
desventaja es la diferenciación de linfocitos con trombocitos (Martínez et al,
2011).
2.11.3.3 Trombocitos
Para los trombocitos se manejará el mismo procedimiento con una dilución
sanguínea de 1:200 y observando toda la cuadrícula central de ambos lados de
la cámara (Martínez et al, 2011).
10
2.11.4 Frotis sanguíneo, valoración morfológica y conteos diferenciales
2.11.4.1 Frotis sanguíneo
Para realizar el frotis se necesitan dos portaobjetos. Se coloca una gota de
sangre en el extremo del primero y con el segundo en 45° grados se toca la
sangre para que se extienda sobre el borde. Después de esto se desliza
delicada pero firmemente hacia el otro extremo del primer portaobjetos,
dejando una cubierta homogénea de sangre. Esto deberá secarse antes de
colocar la primera tinción y dejar reposar por 5 minutos. Pasado este tiempo se
lava con agua y se deja secar nuevamente antes de observarlo bajo el
microscopio (Meyer y Harvey, 2007). Guía grafica de cómo realizar un frotis en
la Figura 4.
Figura 4. Gráfico de frontis sanguíneo. Tomado de (Meyer et al, 2007).
2.11.4.2 Valoración morfológica y conteo diferencial
La valoración morfológica se hace sobre extensiones de sangre sin
anticoagulantes, inmediatamente después de la toma de sangre para evitar las
alteraciones. Secadas al aire y con tinción. Esto permite diferenciar de mejor
manera los leucocitos y trombocitos (Martínez et al, 2011).
Después se hace el recuento de leucocitos diferenciando su morfología de las
demás células sanguíneas. También se observan tamaños y cambios que
podrían sugerir una patología (Martínez et al, 2011).
11
2.12 Células sanguíneas en reptiles
2.12.1 Eritrocitos
Los eritrocitos (Figura 5) son ovalados y tienen un núcleo central, redondeado u
oval. Su cromatina es purpura y con bordes irregulares, su citoplasma es
uniforme y con una ligera tonalidad azul por efecto de la heparina (Ramírez.,
Martínez y Fuentes, 2012).
Figura 5. Eritrocitos. Tomado de (Brito, 2016).
2.12.2 Leucocitos
2.12.2.1 Heterófilos
Estas células se caracterizan por su forma redondeada u ovalada, con un
citoplasma incoloro que tiene gránulos eosinofílicos y un núcleo de color azul
purpura ubicado, generalmente, excéntricamente a un lado de la célula
(Ramírez et al, 2012). Vista de heterófilo Figura 6.
Figura 6. Heterófilo. Tomado de (Martínez et al, 2011).
12
2.12.2.2 Eosinófilos
Son células redondeadas con citoplasma liso y gránulos circulares de color
rojo. Un núcleo morado de forma ovalada que se encuentra en posición
excéntrica (Hernández, 2008). Vista de un eosinófilo Figura 7.
Figura 7. Eosinófilo. Tomado de (Ramírez et al, 2012).
2.12.2.3 Basófilos
Las células tienen gran cantidad de gránulos basófilos y su membrana
citoplasmática presenta baja afinidad a las tinciones. Su núcleo puede o no ser
lobulado, pero en la mayoría de los casos no se puede observar por la gran
cantidad de gránulos (Ramírez et al, 2012). Vista de un basófilo Figura 8.
Figura 8. Basófilo. Tomado de (Ramírez et al, 2012).
2.12.2.4 Azurófilos
La caracterización y categorización de esta célula ha sido controversial.
Algunos autores lo describen como un tipo de heterófilo, otros lo mencionan
13
como una especie de monocito y los últimos lo mencionan como una
clasificación propia. Se trata de una célula irregular, de menor tamaño a los
monocitos, con un núcleo arredondeado no segmentado y un citoplasma
basofílico con pocos gránulos de distintos tamaños. La literatura dice que es
poco común en quelonios y que su presencia se confirma mayoritariamente en
serpientes (Martínez et al, 2011).
2.12.2.5 Linfocitos
Son células redondas y pequeñas, con poco citoplasma basofílico y un núcleo
centrado, circular y morado (Martínez et al, 2011). Vista de un Linfocito en la
Figura 9.
Figura 9. Linfocito. Tomado de (Ramírez et al, 2012).
2.12.2.6 Monocitos
Fueron redondeados con bordes lisos, abundante citoplasma, de gran tamaño
y núcleo redondeado, azulado y excéntrico. Una gran presencia de estos
podría indicar un proceso infecciono crónico o la presencia de un estímulo al
sistema inmunológico del animal (Hernández, 2008). Vista de un monocito en la
Figura 10.
14
Figura 10. Monocito. Tomado de (Brito, 2016).
2.12.3 Trombocitos:
Los trombocitos tienen forma elíptica y un núcleo púrpura que se ubica
centralmente y ocupa mayor espacio que el citoplasma (Ramírez et al, 2012).
Vista de trombocitos en la Figura 11.
Figura 11. Trombocitos. Tomado de (Ramírez et al, 2012).
15
3. CAPITULO III. MATERIALES Y METODOS
3.1 Ubicación
El estudio fue realizado en el centro de rehabilitación de fauna marina del
Parque Nacional Machalilla y los laboratorios de investigación de la sede Queri
de la Universidad de las Américas.
3.1.1 Ubicación geográfica
El centro de rehabilitación de fauna marina se encuentra ubicado en la ciudad
de Puerto López en la provincia de Manabí, Ecuador. Las coordenadas de su
localización son: Latitud -1.558954 y Longitud -80.810934. Está a una altura
promedio de 200 metros sobre el nivel del mar.
La Universidad de las Américas se localiza en la ciudad de Quito en la
provincia de Pichincha, Ecuador. Las coordenadas de su ubicación son: Latitud
-0.2166667 7 y Longitud -78.5. A 25 kilómetros de la línea ecuatorial. Está a
una altura promedio de 2820 metros sobre el nivel del mar.
3.2 Población y muestra
3.2.1 Población
La población del estudio fueron las 32 tortugas marinas que se encontraron en
el centro de rehabilitación de fauna marina del Parque Nacional Machalilla de
Puerto López, al momento del estudio.
3.2.2 Muestra
El tamaño de la muestra fueron los 12 animales de la especie Chelonia mydas
que cumplieron con los criterios de inclusión. La muestra estuvo compuesta de
3 machos y 9 hembras.
16
3.2.3 Criterios de inclusión
Tortugas que se encontraron en el centro de rehabilitación durante el
estudio.
Animales considerados adultos jóvenes.
3.2.4 Criterios de exclusión
Tortugas que no se encontraron en el centro de rehabilitación durante el
estudio.
Animales jóvenes que no tuvieron el tamaño adecuado para extraer una
muestra.
3.3 Materiales
Los materiales usados en el presente estudio se encuentran listados en el
anexo A.
3.4 Metodología
Las técnicas y procedimientos realizados fueron supervisados por el Ph.D.
Alexander Genoy-Puerto con título de médico veterinario y con maestría y
doctorado en Ciencias con énfasis en Patología experimental y comparada de
animales silvestres.
La metodología utilizada se basó en la descrita por Martínez, Lavín y Cuenca
en el 2011 y Meyer y Harvey en el 2007.
3.4.1 Animales
El estudio se realizó en 12 animales adultos de la especie Chelonia mydas que
se encontraban en el centro de rehabilitación. La muestra estuvo compuesta de
3 machos y 9 hembras.
17
3.4.2 Toma de muestras
Para la toma de muestras se realizó primero la contención física de cada
animal por separado para poder tomar la muestra de sangre y procesarlas
posteriormente.
3.4.2.1 Contención física
Se tomó al animal desde la parte craneal del escudo nucal y de la parte caudal
del escudo supracaudal para pesarlo y llevarlo a la mesa de manejo. Una vez
ubicada, se procedió a exponer la parte dorsal del cuello tomando la cabeza del
animal desde su base y presionando hacia bajo. En las Figuras 12 y 13 se
puede observar como tomar a los animales del caparazón y como realizar la
exposición del cuello.
Figura 12. Contención Chelonia mydas.
18
Figura 13. Exposición de la parte dorsal del cuello.
3.4.2.2 Toma de muestra
Al tener expuesto el cuello se realizó una punción en la parte latero dorsal con
una jeringa de 5 ml con aguja calibre 21. Se extrajo 4 ml de sangre de la
yugular superficial y se colocaron en tubos VACUETTE de heparina sódica
(Greiner Bio-One, España) con capacidad para 4 ml. Vista de los tubos de
heparina sódica y de la toma de muestra en las Figuras 14 y 15.
Figura 14. Tubo para hematología de heparina sódica.
19
Figura 15. Toma de muestra de sangre de la yugular dorsal.
3.4.3 Procesamiento de muestras
3.4.3.1 Frotis sanguíneo
Se realizó inmediatamente después de la extracción de sangre de cada animal
y se utilizó la técnica de gota fina. Se inició limpiando las placas CITOPLUS
(OMNIBUS, Filipinas) con alcohol y se dejó secar. Al extraer la sangre se
colocó una pequeña gota a un lado del portaobjetos y se posicionó el otro en
un ángulo de 45° para que uno de sus extremos tocara la gota de sangre y se
extendiera a lo largo del filo mediante capilaridad. Seguidamente se esparció la
muestra a lo largo de la lámina. Se hicieron tres placas por animal y se dejaron
secar al ambiente.
3.4.3.2 Hematocrito
Se utilizó un capilar de Hto por cada muestra (CNWTC, China). Se colocó la
punta dentro del tubo de heparina sódica y cada uno se llenó dos tercios. Se
taparon los capilares con plastilina y se limpió el exceso de sangre con una
gasa. Las muestras se centrifugaron durante 5 minutos a 12000 rpm en la
microcentrífuga (Gemmy Industries, EE. UU.) que se puede observar en la
Figura 16. Al terminar se comparó cada capilar con los cartones de hematocrito
(Figura 17) para obtener los resultados.
20
Figura 16. Centrifugación de capilares para hematocrito.
Figura 17. Cartilla para leer hematocrito.
3.4.3.3 Proteínas plasmáticas totales
Antes de cada lectura, el refractómetro (Fisher Scientific International, Inc.,
Estados Unidos) fue calibrado colocando agua en el prisma y secado
totalmente con una gasa para que cualquier sustancia que pudiera encontrarse
ahí y modificar los resultados. Después de ser centrifugados, todos los
capilares se rompieron a nivel de la línea de glóbulos blancos. Se colocó el
plasma en el prisma y se observaron los resultados apuntando hacia la luz
(Figura 18).
21
Figura 18. Proteínas plasmáticas totales mediante refractómetro.
3.4.3.4 Conteos totales de eritrocitos, leucocitos y trombocitos
Para este procedimiento se utilizó la tinción de Natt and Herrick. Con la
micropipeta se tomó 20 µl de muestra de sangre con heparina sódica de cada
animal y se disolvió con 4 ml de la tinción anteriormente mencionada.
Posteriormente se colocó la mezcla en la cámara de Neubauer (Brand.,
Alemania) con cuidado de no sobrepasar los límites. Se posiciono el
cubreobjetos encima de la cámara y se dejó reposar durante cinco minutos
antes para observar en el microscopio (Figura 19).
Para el recuento de eritrocitos (GR) se utilizó el centro de la rejilla y se contaron
las células dentro de sus 5 x 16 cuadrados. Solo se tomaron en cuenta los
glóbulos rojos encontrados completamente dentro de los límites de los
cuadrados para una mejor interpretación. Los resultados se multiplicaron por
104 para la cantidad de células por µl y por 109 para la cantidad por litro, como
se presenta en este estudio.
Para el conteo de leucocitos (GB) y trombocitos se utilizaron los cuatro
cuadrantes de las esquinas y se realizó un barrido iniciando desde la esquina
izquierda. Solo se tomaron en cuenta las células encontradas completamente
dentro de los límites de los cuadrados para una mejor interpretación. Los
resultados se multiplicaron por 109 para obtener la cantidad de células por litro.
22
Figura 19. Conteos en cámara de Neubauer.
3.4.3.5 Valoración morfológica y conteos diferenciales de glóbulos
blancos
Para la tinción se utilizó una mezcla de 5 ml de Giemsa modificado (SIGMA-
ALDRICH, EE. UU.) en 50 ml de agua. Esta se colocó encima de cada frotis y
se esperó 10 minutos para lavarlas con agua destilada (Figuras 20 y 21). Una
vez retirado todo el exceso de tinción, se pusieron a secar las placas. Después
se colocó una goma transparente en uno de los filos laterales de cada
portaobjetos y encima se puso un cubreobjetos por placa. Esto se hizo para
evitar cualquier daño en la muestra.
Figura 20. Tinción de placas con Giemsa modificado.
Figura 21. Placas con tinción Giemsa modificado.
23
La valoración morfológica se realizó en el microscopio (Olympus, Japón) con la
ayuda del programa Cellsens dimension (Olympus, Japón) que nos permitió
hacer mediciones de los glóbulos blancos encontrados. Al mismo tiempo se
realizaron los conteos diferenciales. Para esto se hizo un barrido desde la parte
periférica de la placa y se contó cada célula encontrada hasta llegar a 100.
También se tomó en cuenta la cantidad de campos necesarios para obtener
esa cantidad de células.
3.4.4 Método estadístico
Para la estadística se utilizó el programa Minitab® versión 18 (Minitab Inc., EE.
UU.). Se dividió en estadística descriptiva, estadística no paramétrica y
estadística inferencial.
En la estadística descriptiva se sacaron medias, mínimos, máximos y
desviación estándar de cada parámetro de hembras y machos pertenecientes a
la muestra para enseñar los rangos obtenidos para cada sexo. Además, estos
rangos se compararon superficialmente con otros estudios para ver si existe
diferencia entre animales en cautiverio y animales en libertad. También se
observó si los datos presentaban una distribución normal o no para saber si se
utilizaba una prueba paramétrica o no paramétrica. Debido al tamaño de la
muestra y la diferencia existente entre los dos grupos, se utilizó la prueba de
Mann-Whitney para datos no paramétricos y se sacó el p valor para ver si
existía diferencia significativa entre los parámetros hematológicos y biométricos
de hembras y machos. Finalmente se usó la regresión lineal para ver si hay
relación positiva o negativa entre las biometrías de los animales con sus
parámetros hematológicos.
24
4. CAPITULO IV: RESULTADOS Y DISCUCIÓN
Los resultados del presente estudio y posteriormente, su correspondiente
discusión, se presentarán en cuatro partes. Morfología celular, perfil
hematológico, biometría física y relación entre la biometría y la hematología de
los animales.
4.1 Morfología
Este estudio pudo identificar cinco células sanguíneas de la línea blanca
divididas en dos grupos principales que son: células granulocíticas (heterófilos,
eosinófilos y basófilos) y mononucleares (monocitos y linfocitos). Las
características morfológicas de las células fueron claras evitando confusiones.
4.1.1. Heterófilos
Se observaron células redondeadas con un núcleo ovalado excéntrico, de color
basófilo, con gran cantidad de gránulos eosinofílicos que cubren el citoplasma.
El promedio general del tamaño de los heterófilos de la muestra fue de 15.66
µm de largo y 14.66 µm de ancho, en una vista de 20x. (Figura 22).
25
Figura 22. Microfotografías de heterófilo. A. Heterófilo, flecha negra (NP2) x20.
B. Ancho de un heterófilo (NP2) x20 (Line Profile). C. Largo de un heterófilo
(NP2) x20 (Line Profile). Coloración Giemsa modificado.
4.1.1 Eosinófilos
Se observaron células redondeadas con citoplasma incoloro, cantidad
moderada de gránulos basofílicos y núcleo ovalado periférico de color
basofílico. El promedio del tamaño de los eosinófilos de la muestra fue de
15.52 µm de largo y 15.33 µm de ancho, en una vista de 20x. (Figura 23).
A
B C
26
Figura 23. Microfotografías de eosinófilo. A. Eosinófilo, flecha negra (NP2) x20.
B. Ancho de un eosinófilo (NP2) x20 (Line Profile). C. Largo de un eosinófilo
(NP2) x20 (Line Profile). Coloración Giemsa modificado.
4.1.2 Basófilos
Se encontraron células redondeadas con gran cantidad de gránulos con
coloración basofílica y eosinofílica, que no permitieron observar el citoplasma ni
el núcleo. El promedio del tamaño de los basófilos de la muestra fue de 4 µm
de largo y 4.13 µm de ancho, en una vista de 20x. El tamaño de estas células
puede cambiar en un estudio con más animales, ya que en esta investigación
solo se observó en tres muestras (Figura 24).
A
B C
27
Figura 24. Microfotografías de basófilo. A. Basófilo, flecha negra (NP2) x20. B.
Ancho de un basófilo (NP2) x20 (Line Profile). C. Largo de un basófilo (NP2)
x20. Coloración Giemsa modificado.
4.1.3. Monocitos
Se hallaron células mononucleadas de un tamaño considerable y con
abundante citoplasma. El promedio del tamaño de los monocitos de la muestra
fue de 14.25 µm de largo y 13.70 de ancho, en una vista de 20x. (Figura 25).
A
B C
28
Figura 25. Microfotografías de monocito. A. Monocito, flecha negra (NP2) x20.
B. Ancho de un monocito (NP2) x20 (Line Profile). C. Largo de un monocito
(NP2) x20 (Line Profile). Coloración Giemsa modificado.
4.1.4. Linfocitos
Se observó células sin un citoplasma visible debido a que su núcleo ocupó la
mayor parte de la célula. El promedio del tamaño de los linfocitos de la muestra
fue de 8.62 µm de largo y 8.45 µm de ancho, en una vista de 20x. (Figura 26).
A
B C
29
Figura 26. Microfotografías de linfocito. A. Linfocito, flecha negra (NP2) x20. B.
Ancho de un linfocito (NP2) x20 (Line Profile). C. Largo de un linfocito (NP2)
x20 (Line Profile). Coloración Giemsa modificado.
4.1.4. Azurófilos
En este estudio no se observaron azurófilos por lo que no se pudo determinar
su morfología ni tamaño.
4.1.5. Parámetros significativos estadísticamente
No se encontró diferencia significativa entre machos y hembras en ninguna de
las células encontradas (p> 0.05).
A
B C
30
4.1.6. Parámetros no significativos estadísticamente
El ancho (p=0.782) y el largo de los heterófilos (p=0.355), el ancho (p=0.068) y
el largo de los eosinófilos (p=1.000), el ancho (p=0.853) y el largo de los
basófilos (p=0.853), el ancho (p=0.853) y el largo de los linfocitos (p=0.460), el
ancho (p=0.782) y el largo de los monocitos (p=0.355) no fueron
estadísticamente significativos. Se pueden observar en el Anexo C.
Estos datos muestran que estadísticamente las células de machos y hembras
no tienen una diferencia de tamaño que se considere importante. Durante los
conteos y las mediciones se pudo observar que las células más grandes fueron
los eosinófilos. Uno de los basófilos encontrados tuvo un tamaño considerable,
pero al ser una célula con un porcentaje mínimo en cantidad, no se puede
tomar en cuenta para hablar del tamaño de todos los basófilos. Los heterófilos
y monocitos tuvieron un tamaño parecido mientras que los linfocitos fueron las
células más pequeñas que se encontraron. Los tamaños encontrados se
pueden observar en la Tabla 1.
Tabla 1 Media, desviación estándar, mínimos y máximos del tamaño de las células encontradas en machos y hembras.
Media, desviación estándar, mínimos y máximos del tamaño de las células
encontradas en machos y hembras.
Nota: Þ Parámetros donde la muestra fue de 7 individuos.
31
4.2. Perfil hematológico
En el perfil hematológico se vio hematocrito, proteínas plasmáticas totales,
eritrocitos, trombocitos y leucocitos. Además, se vieron las proporciones de
heterófilos, eosinófilos, basófilos, monocitos y linfocitos por litro de sangre
(Tabla 2) en machos y hembras.
A nivel nacional no existen estudios en Chelonia mydas en cautiverio. Por esta
razón se vio si existe diferencia entre machos y hembras del estudio y se
comparó con estudios de animales de la misma especie en otros países y en
estado de libertad. Los estudios tomados en cuenta fueron: Normal
Haematology of Free-Living Green Sea Turtles (Chelonia mydas) from the
United Arab Emirates (Samour., Howlett., Silvanose., Hasbun y Al-Ghais,
1998)., Valores Hematológicos de la Tortuga Verde (Chelonia mydas) presente
en la Alta Guajira (Montilla., Hernández y Alvarado, 2006)., y Blood Gases,
Biochemistry, and Hematology of Galapagos Green Turtles (Chelonia Mydas)
(Lewbart., Hirschfeld., Denkinger., Vasco., Guevara., García., Muñoz y
Lohmann, 2014). Ver Tabla 2.
32
Tabla 2. Media, desviación estándar, mínimos y máximos de parámetros hematológicos en machos y hembras de Chelonia mydas y otros resultados en la misma especie.
Media, desviación estándar, mínimos y máximos de parámetros hematológicos en machos y hembras de Chelonia mydas y
otros resultados en la misma especie.
Nota: + (Lewbart., Hirschfeld., Denkinger., Vasco., Guevara., García., Muñoz y Lohmann, 2014). ++ (Samour., Howlett., Silvanose., Hasbun y Al-Ghais, 1998). +++ (Montilla., Hernández y Alvarado. 2006). ¥ Parámetros hematológicos donde la muestra fue de 13 individuos. Ǫ Parámetro hematológico donde la muestra fue de 12 individuos. (x10
9/L) Volumen celular por litro de
sangre.
33
4.2.4. Comparación entre hembras y machos
En un primer análisis se observó una elevación en la cantidad de eritrocitos,
leucocitos, heterófilos, linfocitos y monocitos de las hembras y que los
eosinófilos y trombocitos se encuentran en mayor cantidad en los machos.
Hasta el momento no hay literatura que pueda confirmar estos hallazgos y
sería recomendable seguir una línea de investigación que se centre en la
cantidad de células que tiene cada sexo y los motivos por los cuales esto
ocurre o no. En esta investigación la discrepancia observada podría deberse a
la diferencia en el número de animales muestreados en cada grupo.
4.2.5. Parámetros significativos estadísticamente
No se encontró diferencia significativa entre machos y hembras en ninguno de
los parámetros hematológicos (p> 0.05).
4.2.6. Parámetros no significativos estadísticamente
El hematocrito (p=1.000), las proteínas plasmáticas totales (p=0.712), los
conteos totales de eritrocitos (p=1.000) y leucocitos (p=0.096), los trombocitos
(p=0.079), los heterófilos (p=0.782), los eosinófilos (p=0.355), los basófilos
(p=0.853), los linfocitos (p=0.579) y los monocitos (p=0.196) no fueron
estadísticamente significativos. Se pueden observar en el Anexo C.
4.2.6.1. Hematocrito
El hematocrito es un parámetro que muestra la relación que existe entre el
volumen de glóbulos rojos y el volumen total de sangre. Ayuda a identificar
anemias y deshidrataciones. Un hematocrito elevado puede deberse a una
policitemia que sería un aumento real o por una deshidratación donde se vería
un aumento relativo. Una disminución del hematocrito diagnostica una anemia,
pero debe realizarse junto a un conteo eritrocitario y de ser posible una
determinación de hemoglobina para confirmar la existencia de una anemia y
34
clasificarla (Gallo, 2014). En la mayoría de los individuos pertenecientes a esta
muestra se pudo observar un hematocrito (Tabla 2) concordante con
deshidratación y los signos clínicos, como hundimiento de las orbitas, lo
apoyaron.
4.2.6.2. Proteínas plasmáticas totales
Las proteínas plasmáticas se sintetizan mediante la función hepática y por el
sistema inmune. Cumplen varias funciones como son: nutritiva, presión
osmótica, mantenimiento del equilibrio acido-base, enzimas, factores de
coagulación, hormonas y sustancias de transporte. La mayoría de las proteínas
son albúmina y globulina y en menor cantidad fibrinógeno (Latimer., Prasse y
Mahaffey, 2005). Una disminución en las proteínas plasmáticas totales puede
deberse a una sobrehidratación o deberse a una perdida aguda de sangre. Una
hiperproteinemia puede darse por una deshidratación o por linfomas e
infecciones. Se recomienda interpretar estos resultados junto a los del
hematocrito (Gallo, 2014). En el estudio se observó que los resultados de PTT
(Tabla 2) fueron homogéneos en el total de la muestra y concordaban con los
hematocritos de deshidratación.
4.2.6.3. Eritrocitos, leucocitos y trombocitos
Se realizan conteos celulares para obtener el volumen total de estas células en
sangre. Con esto se puede identificar si un animal presenta policitemia,
anemia, leucocitosis, leucocitopenia, trombocitosis o trombocitopenia y dar un
diagnóstico de su estado sanitario (Martínez et al, 2011). Esta información es
de gran importancia al momento de dar un diagnóstico acertado y un
tratamiento adecuado que se adapte a cada animal y a sus requerimientos
según las deficiencias que tenga. Para lograr dar un diagnóstico se debe
comparar con los valores considerados normales para la especie y ver si son
mayores, menores o iguales. En este caso se pudo observar un leve aumento
de varios parámetros (Tabla 2) mientras que los demás se encontraban dentro
de los rangos.
35
4.2.6.4. Heterófilos, eosinófilos, basófilos, linfocitos y monocitos
Se hacen conteos diferenciales de cada leucocito para ver en qué cantidad se
encuentra cada uno en la sangre. Con esto se puede tener una idea más
orientada de que problemas puede presentar un animal ya que existen
enfermedades en las que se observa mayor o menos presencia de algunas
células (Martínez et al, 2011). Esta información es importante ya que permite
llegar a un diagnóstico más orientado y se puede tener una idea de cómo debe
tratarse (Tabla 2).
4.2.7. Comparación de resultados con otros estudios
Para poder comparar los resultados de este estudio con otros, se debe tomar
en cuenta que los valores hematológicos pueden variar en función de la
especie, el sexo, la edad, el estado nutricional, el estado reproductivo, la
temporada y la hibernación (Rodríguez., Henao., Steinberg y Woodburn, 2018).
Comparando los resultados del presente estudio con los estudios de Samour et
al. (1998), Montilla et al. (2006) y Lewbart et al. (2014), se puede ver
eritropenia, leucocitosis, heterofilia, linfocitosis, monocitosis y trombocitosis
(Tabla 2). Se debe tomar en cuenta que este estudio es el único realizado en
animales en rehabilitación y, además, se contó con un número menor de
individuos en la muestra.
La anemia o eritrocitopenia puede deberse a una pérdida de sangre por un
trauma; una disminución de la producción de eritrocitos por una infección, una
enfermedad crónica, una mala dieta, una intoxicación, una neoplasia, una
destrucción de los glóbulos rojos o por una contaminación de la muestra de
sangre con linfa (Sykes y Klaphake, 2015). En este trabajo de investigación se
piensa que la disminución de glóbulos rojos pudo deberse a hemorragias
ocasionadas por las lesiones traumáticas que presentaban los individuos al
llegar al centro de rescate o a enfermedades crónicas que dificultaban su
reinserción a su hábitat natural.
36
Una leucocitosis esta comúnmente asociada a infecciones, situaciones de
estrés o inflamaciones generalizadas o focalizadas. Además, se puede
presentar en leucemias y linfosarcomas. Hay que tomar en cuenta que en un
proceso crónico sería más común encontrar una leucopenia debido al desgaste
de células blancas (Nardini., Leopardi y Bielli, 2013). Los individuos utilizados
para esta tesis presentaron una leucocitosis que pudo estar asociada a
infecciones, al estrés por cautiverio o inflamaciones por lesiones presentadas
por los animales.
Una heterofilia puede darse por los mismos motivos por los que se puede ver
una leucocitosis. Las principales causas son infecciones bacterianas,
inflamaciones, necrosis de tejidos o estrés (Redrobe y MacDonald, 1999). Para
observar la cronicidad o gravedad de la infección, se puede tomar en cuenta la
toxicidad de los heterófilos y ver si son maduros o inmaduros (Stacy., Alleman.,
Sayler, 2011). En el presente estudio se piensa que la heterofilia observada
pudo deberse a infecciones, inflamaciones o situaciones que provocaran estrés
en los individuos ya que, en su mayoría, los animales del centro de
rehabilitación tienen antecedentes de haber llegado por motivos como:
infecciones respiratorias, lesiones ocasionadas por anzuelos principalmente en
esófago y boca, fracturas en cráneo y caparazón por golpes de objetos
contundentes o filosos, etc.
La linfocitosis se asocia principalmente a neoplasias en médula ósea,
enfermedades autoinmunes e infecciones virales. Suelen ser las segundas
células de la línea blanca con más presencia, después de los heterófilos (Stacy
et al, 2011). En este estudio, la linfocitosis podría estar ocasionada por una
infección respiratoria ya que los animales muestreados presentaron signos
clínicos que pueden relacionarse con patologías de este sistema. Además, en
los exámenes complementarios (rayos X) realizados al ingreso al centro de
rehabilitación, no presentaron indicios que puedan correlacionarse con las otras
posibles causas de linfocitosis (neoplasias). Asimismo, una infección
respiratoria concuerda con la heterofilia presentada.
37
Los monocitos se convierten en macrófagos. Son similares a los linfocitos y se
encuentran en las reacciones inflamatorias, necrosis, infecciones virales,
bacterianas y parasitarias. Se los encuentra en gran cantidad cuando se da una
afección, de gran tamaño, a los tejidos. La mayoría de los monocitos en sangre
periférica se encuentran fagocitando (Stacy et al, 2011). En este ensayo se
piensa que la monocitosis puede estar relacionada a infecciones o reacciones
inflamatorias que encajan con el cuadro clínico presentado por los individuos
de la muestra.
La trombocitosis se da en hemorragias como parte del mecanismo de
coagulación. Estas células son liberadas desde la médula ósea o desde el bazo
cuando el organismo recibe la señal de que ha comenzado a perder sangre
para frenar esta perdida (Muro., Cuenca., Pastor., Viñas y Lavin, 1998). En la
presente investigación, la trombocitosis pudo ser ocasionada por las
hemorragias causadas por las lesiones presentadas por la mayoría de los
animales muestreados debido a las fracturas de cráneo, lesiones en aletas o
heridas en boca, esófago y estómago ocasionados por objetos extraños, entre
ellos los anzuelos.
Se considera que las infecciones, las inflamaciones y hemorragias ocasionadas
por lesiones y el estrés, producido por encontrarse en cautiverio y la
manipulación del ser humano, pueden ser los principales factores para los
cambios encontrados en los parámetros hematológicos en comparación con
otros estudios. También debe tomarse en cuenta que la metodología utilizada
en cada estudio y el tamaño de las muestras pueden ser un factor para la
diferencia en los rangos encontrados.
4.3. Biometría
Las biometrías fueron: peso, ancho de caparazón (ACC) y largo de caparazón
(LCC) en centímetros. Los parámetros se dividieron en dos grupos, machos y
hembras (Tabla 3).
38
4.3.1. Parámetros significativos estadísticamente
No se encontraron diferencias significativas en las biometrías de machos y
hembras en este estudio (p> 0,05).
4.3.2. Parámetros no significativos estadísticamente
El peso (p=1.000), el ACC (p=0.579) y el LCC (p=1.000) entre machos y
hembras no fueron estadísticamente significativos.
Tabla 3. Media, desviación estándar, mínimos y máximos de las biometrías de Chelonia mydas en machos y hembra de este estudio.
Media, desviación estándar, mínimos y máximos de las biometrías de Chelonia mydas en machos y hembra de este estudio.
Nota:ACC: Ancho de caparazón, LCC: Largo de caparazón
4.4. Relación entre biometría y hematología
En este estudio se realizaron regresiones lineales para ver si existe una
relación entre las biometrías tomadas y los parámetros hematológicos.
4.4.1. Parámetros significativos estadísticamente en hembras
Mediante una regresión lineal se encontró que los parámetros con una relación
significativa fueron Peso-Hto (p=0.005), Peso-Monocitos (p=0.010), ACC-PTT
(p=0.005), ACC-GB (p=0.002), LCC-PTT (p=0.004) y LCC-GB (p=0.001). Estos
resultados pueden deberse al tamaño de la muestra. Se pueden observar en el
Anexo C
Parámetros
Este estudio
Machos (n=3) Hembras (n=9)
Peso (Kg) 27.50±4.44 (22.50-31.00) 26.44±6.54 (15.50-35.00)
ACC (cm) 62.00±1.80 (60.00-63.50) 62.00±10.07 (41.00-76.00)
LCC (cm) 64.33±0.57 (64.00-65.00) 63.73±9.82 (42.00-77.00)
39
4.4.1.1. Peso-Hematocrito
La literatura menciona que animales con mayor peso suelen tener un consumo
de oxigeno mayor por lo cual pueden presentar un Hto mayor a comparación
con animales más pequeños de la misma especie (Labra, 2008). En el presente
estudio se pudo observar una correlación positiva entre el peso y el Hto, siendo
que animales con mayor hematocrito presentaron mayor peso.
4.4.1.2. Peso-Monocitos
Actualmente, no se encuentra literatura actualizada sobre la relación del peso y
el volumen de monocitos en el torrente sanguíneo. Esta información debe
tomarse en cuenta y mediante otros estudios se deberá confirmar o descartar
la relación.
4.4.1.3. Ancho de caparazón-Proteínas plasmáticas totales
No se halla bibliografía sobre la relación entre el ancho de caparazón y las
proteínas plasmáticas totales. Estos hallazgos tienen que ser considerados y
tomarse en cuenta y mediante otros estudios confirmar o descartar que esta
relación sea cierta.
4.4.1.4. Ancho de caparazón-Leucocitos
No se encontró información actual sobre la correlación entre el ancho de
caparazón y la cantidad de leucocitos. Este descubrimiento deberá ser tomado
en cuenta y mediante otras investigaciones confirmar o descartar la
dependencia existente entre estas dos variables.
4.4.1.5. Largo de caparazón-Proteínas plasmáticas totales
No se hay literatura sobre la relación entre el largo de caparazón y las
proteínas plasmáticas totales. Estos datos deben ser considerados y confirmar
o descartas una relación mediante otros estudios.
40
4.4.1.6. Largo de caparazón-Leucocitos
No se encuentran referencias actualizadas sobre la correlación entre el largo
de caparazón y la cantidad de leucocitos. Esta información debe tomarse en
cuenta y mediante otros trabajos confirmar o descartar la relación existente
entre estas dos variables.
4.4.2. Parámetros no significativos estadísticamente en hembras
Peso-PTT (p=0.106), Peso-GR (p=0.264), Peso-GB (p=0.207), Peso-
Trombocitos (p= 0.407), Peso-Heterófilos (p=0.424), Peso-Eosinófilos
(p=0.256), Peso-Basófilos (p=0.094), Peso-Linfocitos (p=0.062), ACC-Hto
(p=0.258), ACC-GR (p=0.219), ACC-Trombocitos (p=0.147), ACC-Heterófilos
(p=0.379), ACC-Eosinófilos (p=0.794), ACC-Basófilos (p=0.192), ACC-
Linfocitos (p=0.059), ACC-Monocitos (p=0.096), LCC-Hto (p=0.319), LCC-GR
(p=0.162), LCC-Trombocitos (p=0.163), LCC-Heterófilos (p=0.500), LCC-
Eosinófilos (p=0.565), LCC-Basófilos (p=0.125), LCC-Linfocitos (p=0.171),
LCC-Monocitos (p=0.160). Se pueden observar en el Anexo C.
4.4.3. Parámetros significativos estadísticamente en machos
No se encontró una relación significativa entre las biometrías y los parámetros
hematológicos de los machos. Esto puede estar relacionado al número de
animales muestreados.
4.4.4. Parámetros no significativos estadísticamente en machos
Peso-Hto (p=0.811), Peso-PTT (p=0.690), Peso-GR (p=0.502), Peso-GB
(p=0.229), Peso-Trombocitos (p=0.437), Peso-Heterófilos (p=0.599), Peso-
Eosinófilos (p=0.811), Peso-Basófilos (p=0.144), Peso-Linfocitos (p=0.856),
Peso-Monocitos (p=0.811), ACC-Hto (p=0.846), ACC-PTT (p=0.725), ACC-GR
(p=0.537), ACC-GB (p=0.263), ACC-Trombocitos (p=0.471), ACC-Heterófilos
41
(p=0.633), ACC-Eosinófilos (p=0.846), ACC-Basófilos (p=0.179), ACC-
Linfocitos (p=0.821), ACC-Monocitos (p=0.846), LCC-Hto (p=0.667), LCC-PTT
(p=0.546), LCC-GR (p=0.358), LCC-GB (p=0.084), LCC-Trombocitos
(p=0.293), LCC-Heterófilos (p=0.454), LCC-Eosinófilos (p=0.0.667), LCC-
Basófilos (p=Sin Valor), LCC-Linfocitos (p=1.000), LCC-Monocitos (p=0.667).
Se pueden observar en el Anexo C.
42
5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
5.1. Conclusiones
Al caracterizar cualitativa y cuantitativamente los valores hematológicos de las
tortugas Chelonia mydas en rehabilitación, se identificó cinco tipos de células
(heterófilos, eosinófilos, basófilos, monocitos y linfocitos) y sus volúmenes por
litro de sangre, respectivamente.
Los valores hematológicos de hembras y machos en este estudio, al ser
comparados con los valores obtenidos en otros estudios donde los individuos
se encontraban en libertad, mostraron que los animales analizados presentan
un leve aumento en varios parámetros hematológicos, que pueden deberse a
infecciones, procesos inflamatorios y estrés que encajan con los problemas
presentados por los individuos en rehabilitación.
Al analizar si el sexo afecta o no en los valores de las diferentes variables
hematológicas mediante la prueba de Mann-Whitney, se observó que no
existen diferencias significativas entre los parámetros sanguíneos de machos y
hembras, por lo tanto, en esta investigación, el sexo no es un factor influyente
en los volúmenes que presenta cada variable.
El presente estudio podría generar un indicativo del estado sanitario en el que
se encuentran estos animales en vida silvestre, las principales causas de sus
decesos y servir como una guía práctica para el manejo y tratamiento de
animales que no puedan subsistir por ellos mismos en la naturaleza y que
vayan a ser tratados para su futura reinserción.
43
6.2. Recomendaciones
Los valores obtenidos en este trabajo pueden servir de referencia, pero no
deben ser tomados como absolutos debido a la limitada cantidad de animales
disponibles. Por este motivo se recomienda realizar más estudios orientados a
determinar patrones hematológicos en Chelonia mydas en rehabilitación con un
mayor número de individuos para que puedan ser estadísticamente
significantes.
Además, se recomienda que en futuros estudios se tenga presente el tiempo
que los animales pasen en cautiverio y realizar dos tomas de sangre de cada
animal. La primera para ver cómo llega el animal y la segunda para ver cómo
se encuentra al momento de ser reinsertado en su hábitat. También sería
aconsejable aumentar variables dentro de los parámetros hematológicos a ser
analizados como hemoglobina, volumen corpuscular medio y toxicidad celular.
Por otro lado, se deben seguir optimizando las prácticas de manejo para
disminuir el estrés ocasionado en estos animales por su manipulación y tal vez
un equipo conformado por un número mayor de personas, cada una con un rol
especifico, pueda reducir el tiempo en el que el animal es manejado
directamente.
44
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48
ANEXOS
Anexo A: Materiales para la elaboración del presente estudio
• Reactivo Natt and Herrick
• Muestras de sangre
• Tubos VACUETTE de heparina sódica (Greiner Bio-One, España)
• Jeringuillas de 5 ml
• Agujas calibre 21
• Alcohol
• Agua
• Microscopio (Olympus, Japón)
• Cámara de Neubauer (Brand., Alemania)
• Guantes de látex
• Gasas
• Cooler
• Capilares de Hto (CNWTC, China)
• Refractómetro (Fisher Scientific International, Inc., Estados Unidos)
• Pipeta de 5 ml
• Micropipetas
• Puntas para micropipetas
• Microcentrífuga (Gemmy Industries, EE. UU.)
• Aceite de inmersión
• Portaobjetos CITOPLUS (OMNIBUS, Filipinas)
• Cubreobjetos
• Goma
• Tinción de Giemsa modificado (SIGMA-ALDRICH, EE. UU.)
• Programa Minitab® versión 18 (Minitab Inc., EE. UU.).
• Programa Cellsens dimension versión XV image processing (Olympus,
Japón)
Anexo B: Estadística descriptiva de machos y hembras (Media,
desviación estándar, mínimo y máximo)
Variable N N* Media
Error
estándar
de la
media Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3 Máximo
Peso Hembras 9 0 26,44 2,18 6,54 15,50 21,00 27,00 32,50 35,00
Peso Machos 3 6 27,50 2,57 4,44 22,50 22,50 29,00 31,00 31,00
ACC Hembras 9 0 62,00 3,36 10,07 41,00 57,25 63,00 67,75 76,00
ACC Machos 3 6 62,00 1,04 1,80 60,00 60,00 62,50 63,50 63,50
LCC Hembras 9 0 63,73 3,27 9,82 42,00 60,00 64,50 70,00 77,00
LCC Machos 3 6 64,333 0,333 0,577 64,000 64,000 64,000 65,000 65,000
Variable N N* Media
Error
estándar
de la
media Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3 Máximo
Hto Hembras 9 0 28,00 2,44 7,33 17,00 21,50 28,00 34,00 39,00
Hto Machos 3 6 28,33 1,67 2,89 25,00 25,00 30,00 30,00 30,00
PTT Hembras 9 0 7,511 0,512 1,536 5,200 6,750 7,200 8,150 10,800
PTT Machos 3 6 8,000 0,764 1,323 7,000 7,000 7,500 9,500 9,500
Variable N N* Media
Error
estándar
de la
media Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3 Máximo
GR Hembras 9 0 29,11 3,85 11,55 18,00 20,00 29,00 33,50 55,00
GR Machos 3 6 28,33 4,33 7,51 21,00 21,00 28,00 36,00 36,00
GB Hembras 9 0 16,89 1,44 4,31 8,00 14,50 17,00 20,00 23,00
GB Machos 3 6 10,67 2,19 3,79 8,00 8,00 9,00 15,00 15,00
Trombocitos Hembras 9 0 7,778 0,683 2,048 5,000 6,500 7,000 9,000 12,000
Trombocitos Machos 3 6 17,33 5,21 9,02 8,00 8,00 18,00 26,00 26,00
Variable N N* Media
Error
estándar
de la Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3
media
Heterófilos Hembras 9 0 58,67 1,31 3,94 53,00 56,00 58,00 62,50
Heterófilos Machos 3 6 58,667 0,882 1,528 57,000 57,000 59,000 60,000
Tamaño h largo Hembras 9 0 15,778 0,553 1,660 12,000 15,000 16,000 17,000
Tamaño h largo Machos 3 6 15,333 0,333 0,577 15,000 15,000 15,000 16,000
Tamaño h ancho Hembras 9 0 14,722 0,494 1,481 12,000 13,500 15,000 16,000
Tamaño h ancho Machos 3 6 14,500 0,764 1,323 13,500 13,500 14,000 16,000
Variable Máximo
Heterófilos Hembras 65,00
Heterófilos Machos 60,000
Tamaño h largo Hembras 17,500
Tamaño h largo Machos 16,000
Tamaño h ancho Hembras 16,000
Tamaño h ancho Machos 16,000
Variable N N* Media
Error
estándar
de la
media Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3
Eosinófilos Hembras 9 0 1,889 0,588 1,764 0,000 0,500 2,000 2,000
Eosinófilos Machos 3 6 3,00 1,00 1,73 2,00 2,00 2,00 5,00
Tamaño e largo Hembras 9 0 14,47 2,74 8,23 0,00 8,60 18,50 19,00
Tamaño e largo Machos 3 6 18,667 0,333 0,577 18,000 18,000 19,000 19,000
Tamaño e ancho Hembras 9 0 13,89 2,65 7,94 0,00 8,00 18,00 18,00
Tamaño e ancho Machos 3 6 19,667 0,333 0,577 19,000 19,000 20,000 20,000
Variable Máximo
Eosinófilos Hembras 6,000
Eosinófilos Machos 5,00
Tamaño e largo Hembras 19,50
Tamaño e largo Machos 19,000
Tamaño e ancho Hembras 20,00
Tamaño e ancho Machos 20,000
Variable N N* Media
Error
estándar Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3
de la
media
Basófilos Hembras 9 0 0,222 0,147 0,441 0,000 0,000 0,000 0,500
Basófilos Machos 3 6 0,333 0,333 0,577 0,000 0,000 0,000 1,000
Tamaño b largo Hembras 9 0 3,56 2,36 7,07 0,00 0,00 0,00 7,50
Tamaño b largo Machos 3 6 5,33 5,33 9,24 0,00 0,00 0,00 16,00
Tamaño b ancho Hembras 9 0 3,61 2,42 7,25 0,00 0,00 0,00 7,00
Tamaño b ancho Machos 3 6 5,67 5,67 9,81 0,00 0,00 0,00 17,00
Variable Máximo
Basófilos Hembras 1,000
Basófilos Machos 1,000
Tamaño b largo Hembras 17,00
Tamaño b largo Machos 16,00
Tamaño b ancho Hembras 18,50
Tamaño b ancho Machos 17,00
Variable N N* Media
Error
estándar
de la
media Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3
Linfocitos Hembras 9 0 26,56 1,55 4,64 20,00 23,00 27,00 30,00
Linfocitos Machos 3 6 28,00 1,15 2,00 26,00 26,00 28,00 30,00
Tamaño l largo Hembras 9 0 8,722 0,252 0,755 7,500 8,250 8,500 9,250
Tamaño l largo Machos 3 6 8,333 0,333 0,577 8,000 8,000 8,000 9,000
Tamaño l ancho Hembras 9 0 8,500 0,333 1,000 7,000 7,500 8,500 9,250
Tamaño l ancho Machos 3 6 8,333 0,441 0,764 7,500 7,500 8,500 9,000
Variable Máximo
Linfocitos Hembras 35,00
Linfocitos Machos 30,00
Tamaño l largo Hembras 10,000
Tamaño l largo Machos 9,000
Tamaño l ancho Hembras 10,000
Tamaño l ancho Machos 9,000
Variable N N* Media Error Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3
estándar
de la
media
Monocitos Hembras 9 0 12,667 0,943 2,828 8,000 11,000 12,000 14,500
Monocitos Machos 3 6 10,00 1,00 1,73 9,00 9,00 9,00 12,00
Tamaño m largo Hembras 9 0 14,556 0,523 1,570 11,000 14,000 14,500 16,000
Tamaño m largo Machos 3 6 13,33 1,20 2,08 11,00 11,00 14,00 15,00
Tamaño m ancho Hembras 9 0 13,667 0,607 1,820 10,000 12,750 14,000 15,250
Tamaño m ancho Machos 3 6 14,167 0,928 1,607 13,000 13,000 13,500 16,000
Variable Máximo
Monocitos Hembras 18,000
Monocitos Machos 12,00
Tamaño m largo Hembras 16,000
Tamaño m largo Machos 15,00
Tamaño m ancho Hembras 16,000
Tamaño m ancho Machos 16,000
Variable N N* Media
Error
estándar
de la
media Desv.Est. Mínimo Q1 Mediana Q3
Heterófilos totales Hembras 9 0 9,971 0,983 2,949 4,640 8,330 9,520 11,900
Heterófilos totales Machos 3 0 6,29 1,37 2,38 4,56 4,56 5,31 9,00
Eosinófilos totales Hembras 9 0 0,2944 0,0912 0,2735 0,0000 0,0800 0,2800 0,4000
Eosinófilos totales Machos 3 0 0,2933 0,0636 0,1102 0,1800 0,1800 0,3000 0,4000
Basófilos totales Hembras 9 0 0,0444 0,0298 0,0895 0,0000 0,0000 0,0000 0,0850
Basófilos totales Machos 3 0 0,0500 0,0500 0,0866 0,0000 0,0000 0,0000 0,1500
Linfocitos totales Hembras 9 0 4,390 0,340 1,019 2,320 3,915 4,600 5,035
Linfocitos totales Machos 3 0 2,993 0,629 1,090 2,080 2,080 2,700 4,200
Monocitos totales Hembras 9 0 2,189 0,296 0,888 0,880 1,505 2,210 2,960
Monocitos totales Machos 3 0 1,040 0,161 0,279 0,810 0,810 0,960 1,350
Variable Máximo
Heterófilos totales Hembras 14,950
Heterófilos totales Machos 9,00
Eosinófilos totales Hembras 0,9000
Eosinófilos totales Machos 0,4000
Basófilos totales Hembras 0,2300
Basófilos totales Machos 0,1500
Linfocitos totales Hembras 5,950
Linfocitos totales Machos 4,200
Monocitos totales Hembras 3,600
Monocitos totales Machos 1,350
Anexo C: Estadística no paramétrica (Método de Mann-Whitney)
Mann-Whitney: Hto Hembras; Hto Machos
Método
η₁: mediana de Hto Hembras
η₂: mediana de Hto Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Hto Hembras 9 28
Hto Machos 3 30
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,0000000 (-12; 9) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 58,50 1,000
Ajustado para empates 58,50 1,000
Mann-Whitney: PTT Hembras; PTT Machos
Método
η₁: mediana de PTT Hembras
η₂: mediana de PTT Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
PTT Hembras 9 7,2
PTT Machos 3 7,5
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,5 (-2,5; 1,5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 56,00 0,712
Ajustado para empates 56,00 0,710
Mann-Whitney: GR Hembras; GR Machos
Método
η₁: mediana de GR Hembras
η₂: mediana de GR Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
GR Hembras 9 29
GR Machos 3 28
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
0,0000000 (-15; 19) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 58,50 1,000
Ajustado para empates 58,50 1,000
Mann-Whitney: GB Hembras; GB Machos
Método
η₁: mediana de GB Hembras
η₂: mediana de GB Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
GB Hembras 9 17
GB Machos 3 9
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
7 (-1; 12) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 68,00 0,096
Ajustado para empates 68,00 0,094
Mann-Whitney: Trombocitos Hembras; Trombocitos Machos
Método
η₁: mediana de Trombocitos Hembras
η₂: mediana de Trombocitos Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Trombocitos Hembras 9 7
Trombocitos Machos 3 18
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-11 (-19; 1) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 48,50 0,079
Ajustado para empates 48,50 0,076
Mann-Whitney: Heterófilos Hembras; Heterófilos Machos
Método
η₁: mediana de Heterófilos Hembras
η₂: mediana de Heterófilos Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Heterófilos Hembras 9 58
Heterófilos Machos 3 59
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-1 (-4; 6) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 56,50 0,782
Ajustado para empates 56,50 0,780
Mann-Whitney: Tamaño h largo Hembras; Tamaño h largo Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño h largo Hembras
η₂: mediana de Tamaño h largo Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño h largo Hembras 9 16
Tamaño h largo Machos 3 15
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
1 (-3; 2) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 64,00 0,355
Ajustado para empates 64,00 0,342
Mann-Whitney: Tamaño h ancho Hembras; Tamaño h ancho
Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño h ancho Hembras
η₂: mediana de Tamaño h ancho Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño h ancho Hembras 9 15
Tamaño h ancho Machos 3 14
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
0,0000000 (-2; 2,5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 60,50 0,782
Ajustado para empates 60,50 0,773
Mann-Whitney: Eosinófilos Hembras; Eosinófilos Machos
Método
η₁: mediana de Eosinófilos Hembras
η₂: mediana de Eosinófilos Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Eosinófilos Hembras 7 2
Eosinófilos Machos 3 2
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
0,0000000 (-3; 4) 95,98%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 36,00 0,649
Ajustado para empates 36,00 0,575
Mann-Whitney: Tamaño e largo Hembras; Tamaño e largo Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño e largo Hembras
η₂: mediana de Tamaño e largo Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño e largo Hembras 7 19
Tamaño e largo Machos 3 19
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,0000000 (-1,8; 1) 95,98%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 38,50 1,000
Ajustado para empates 38,50 1,000
Mann-Whitney: Tamaño e ancho Hembras; Tamaño e ancho Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño e ancho Hembras
η₂: mediana de Tamaño e ancho Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño e ancho Hembras 7 18
Tamaño e ancho Machos 3 20
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-2 (-4; -0,0000000) 95,98%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 30,00 0,068
Ajustado para empates 30,00 0,057
Mann-Whitney: Basófilos Hembras; Basófilos Machos
Método
η₁: mediana de Basófilos Hembras
η₂: mediana de Basófilos Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Basófilos Hembras 9 0
Basófilos Machos 3 0
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
0,0000000 (-1; 1) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 57,00 0,853
Ajustado para empates 57,00 0,806
Mann-Whitney: Tamaño b largo Hembras; Tamaño b largo Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño b largo Hembras
η₂: mediana de Tamaño b largo Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño b largo Hembras 9 0
Tamaño b largo Machos 3 0
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,0000000 (-16; 15) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 57,00 0,853
Ajustado para empates 57,00 0,808
Mann-Whitney: Tamaño b ancho Hembras; Tamaño b ancho
Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño b ancho Hembras
η₂: mediana de Tamaño b ancho Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño b ancho Hembras 9 0
Tamaño b ancho Machos 3 0
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,0000000 (-17; 14) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 57,00 0,853
Ajustado para empates 57,00 0,808
Mann-Whitney: Linfocitos Hembras; Linfocitos Machos
Método
η₁: mediana de Linfocitos Hembras
η₂: mediana de Linfocitos Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Linfocitos Hembras 9 27
Linfocitos Machos 3 28
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-2 (-7; 5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 55,00 0,579
Ajustado para empates 55,00 0,578
Mann-Whitney: Tamaño l largo Hembras; Tamaño l largo Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño l largo Hembras
η₂: mediana de Tamaño l largo Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño l largo Hembras 9 8,5
Tamaño l largo Machos 3 8,0
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
0,5 (-0,5; 1,5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 63,00 0,460
Ajustado para empates 63,00 0,450
Mann-Whitney: Tamaño l ancho Hembras; Tamaño l ancho Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño l ancho Hembras
η₂: mediana de Tamaño l ancho Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño l ancho Hembras 9 8,5
Tamaño l ancho Machos 3 8,5
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,0000000 (-1,5; 1,5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 60,00 0,853
Ajustado para empates 60,00 0,850
Mann-Whitney: Monocitos Hembras; Monocitos Machos
Método
η₁: mediana de Monocitos Hembras
η₂: mediana de Monocitos Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Monocitos Hembras 9 12
Monocitos Machos 3 9
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
3 (-1; 6) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 66,00 0,196
Ajustado para empates 66,00 0,191
Mann-Whitney: Tamaño m largo Hembras; Tamaño m largo Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño m largo Hembras
η₂: mediana de Tamaño m largo Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño m largo Hembras 9 14,5
Tamaño m largo Machos 3 14,0
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
1 (-1; 5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 64,00 0,355
Ajustado para empates 64,00 0,346
Mann-Whitney: Tamaño m ancho Hembras; Tamaño m ancho
Machos
Método
η₁: mediana de Tamaño m ancho Hembras
η₂: mediana de Tamaño m ancho Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Tamaño m ancho Hembras 9 14,0
Tamaño m ancho Machos 3 13,5
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-0,5 (-3,5; 2,5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 56,50 0,782
Ajustado para empates 56,50 0,779
Mann-Whitney: Peso Hembras; Peso Machos
Método
η₁: mediana de Peso Hembras
η₂: mediana de Peso Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
Peso Hembras 9 27
Peso Machos 3 29
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
-1,5 (-12,5; 9) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Valor W Valor p
58,00 1,000
Mann-Whitney: ACC Hembras; ACC Machos
Método
η₁: mediana de ACC Hembras
η₂: mediana de ACC Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
ACC Hembras 9 63,0
ACC Machos 3 62,5
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
2 (-19; 12,5) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 62,00 0,579
Ajustado para empates 62,00 0,578
Mann-Whitney: LCC Hembras; LCC Machos
Método
η₁: mediana de LCC Hembras
η₂: mediana de LCC Machos
Diferencia: η₁ - η₂
Estadísticas descriptivas
Muestra N Mediana
LCC Hembras 9 64,5
LCC Machos 3 64,0
Estimación de la diferencia
Diferencia
IC para la
diferencia
Confianza
lograda
0,5 (-22; 12) 95,80%
Prueba
Hipótesis nula H₀: η₁ - η₂ = 0
Hipótesis alterna H₁: η₁ - η₂ ≠ 0
Método Valor W Valor p
No ajustado para empates 59,00 1,000
Ajustado para empates 59,00 1,000
Anexo D: Estadística inferencial (regresiones lineales)
Hembras Peso-Hto
Hto (%) Hembras = 3,275 + 0,9350 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 298,723 298,723 15,93 0,005
Error 7 131,277 18,754
Total 8 430,000
Hembras Peso-PTT
PTT (%) Hembras = 3,947 + 0,1348 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
40
35
30
25
20
322416
10,8
9,6
8,4
7,2
6,0
322416
60
50
40
30
20
322416
25
20
15
10
12
10
8
6
4
Hto (%) Hembras
Peso (Kg) Hembras
PTT (%) Hembras GR (x10^9/L) Hembras
GB (x10^9/L) Hembras Trombocitos (x10^9/L) Hembras
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 6,2071 6,20713 3,43 0,106
Error 7 12,6618 1,80882
Total 8 18,8689
Hembras Peso-GR
GR (x10^9/L) Hembras = 9,61 + 0,7376 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 185,92 185,917 1,48 0,264
Error 7 880,97 125,853
Total 8 1066,89
Hembras Peso-GB
GB (x10^9/L) Hembras = 8,768 + 0,3071 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 32,229 32,2289 1,93 0,207
Error 7 116,660 16,6657
Total 8 148,889
Hembras Peso-Trombocitos
Trombocitos (x10^9/L) Hembras = 5,155 + 0,0992 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 3,3608 3,36079 0,78 0,407
Error 7 30,1948 4,31354
Total 8 33,5556
Hembras Peso-Heterófilos
Heterófilos (%) Hembras = 53,80 + 0,1839 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 11,553 11,5533 0,72 0,424
Error 7 112,447 16,0638
Total 8 124,000
65
60
55
322416
6,0
4,5
3,0
1,5
0,0
322416
1,0
0,5
0,0
322416
36
32
28
24
20
18
15
12
9
Heterofilos (%) Hembras
Peso (Kg) Hembras
Eosinofilos (%) Hembras Basofilos (%) Hembras
Linfocitos (%) Hembras Monocitos (%) Hembras
Hembras Peso-Eosinófilos
Eosinófilos (%) Hembras = 4,911 - 0,1143 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 4,4637 4,46367 1,53 0,256
Error 7 20,4252 2,91789
Total 8 24,8889
Hembras Peso-Basófilos
Basófilos (%) Hembras = - 0,8311 + 0,03983 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,54214 0,542143 3,74 0,094
Error 7 1,01341 0,144773
Total 8 1,55556
Hembras Peso-Linfocitos
Linfocitos (%) Hembras = 38,61 - 0,4557 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 70,962 70,9623 4,91 0,062
Error 7 101,260 14,4657
Total 8 172,222
Hembras Peso-Monocitos
Monocitos (%) Hembras = 3,509 + 0,3463 Peso (Kg) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 40,9771 40,9771 12,46 0,010
Error 7 23,0229 3,2890
Total 8 64,0000
40
35
30
25
20
806040
10
8
6
4
806040
60
50
40
30
20
806040
25
20
15
10
12
10
8
6
4
Hto (%) Hembras
ACC (cm) Hembras
PTT (%) Hembras GR (x10^9/L) Hembras
GB (x10^9/L) Hembras Trombocitos (x10^9/L) Hembras
Hembras ACC-Hto
Hto (%) Hembras = 8,95 + 0,3072 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 76,497 76,4972 1,51 0,258
Error 7 353,503 50,5004
Total 8 430,000
Hembras ACC-PTT
PTT (%) Hembras = - 0,395 + 0,1275 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 13,1786 13,1786 16,21 0,005
Error 7 5,6903 0,8129
Total 8 18,8689
Hembras ACC-GR
GR (x10^9/L) Hembras = 61,43 - 0,5213 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 220,24 220,242 1,82 0,219
Error 7 846,65 120,950
Total 8 1066,89
Hembras ACC-GB
GB (x10^9/L) Hembras = - 6,251 + 0,3732 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 112,901 112,901 21,96 0,002
Error 7 35,988 5,141
Total 8 148,889
Hembras ACC-Trombocitos
Trombocitos (x10^9/L) Hembras = 1,161 + 0,1067 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 9,2316 9,23165 2,66 0,147
Error 7 24,3239 3,47484
Total 8 33,5556
Hembras ACC-Heterófilos
Heterófilos (%) Hembras = 50,56 + 0,1308 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 13,863 13,8630 0,88 0,379
Error 7 110,137 15,7339
Total 8 124,000
65
60
55
806040
6,0
4,5
3,0
1,5
0,0
806040
1,0
0,5
0,0
806040
36
32
28
24
20
18
15
12
9
Heterofilos (%) Hembras
ACC (cm) Hembras
Eosinofilos (%) Hembras Basofilos (%) Hembras
Linfocitos (%) Hembras Monocitos (%) Hembras
Hembras ACC-Eosinófilos
Eosinófilos (%) Hembras = 2,998 - 0,01789 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,2594 0,25941 0,07 0,794
Error 7 24,6295 3,51850
Total 8 24,8889
Hembras ACC-Basófilos
Basófilos (%) Hembras = - 1,078 + 0,02097 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,35657 0,356570 2,08 0,192
Error 7 1,19899 0,171284
Total 8 1,55556
Hembras ACC-Linfocitos
Linfocitos (%) Hembras = 45,11 - 0,2992 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 72,556 72,5555 5,10 0,059
Error 7 99,667 14,2381
Total 8 172,222
Hembras ACC-Monocitos
Monocitos (%) Hembras = 2,416 + 0,1653 ACC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 22,1542 22,1542 3,71 0,096
Error 7 41,8458 5,9780
Total 8 64,0000
40
35
30
25
20
806040
10
8
6
4
806040
60
50
40
30
20
806040
25
20
15
10
12
10
8
6
4
Hto (%) Hembras
LCC (cm) Hembras
PTT (%) Hembras GR (x10^9/L) Hembras
GB (x10^9/L) Hembras Trombocitos (x10^9/L) Hembras
Hembras LCC-Hto
Hto (%) Hembras = 10,11 + 0,2808 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 60,816 60,8156 1,15 0,319
Error 7 369,184 52,7406
Total 8 430,000
Hembras LCC-PTT
PTT (%) Hembras = - 0,901 + 0,1320 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 13,4380 13,4380 17,32 0,004
Error 7 5,4309 0,7758
Total 8 18,8689
Hembras LCC-GR
GR (x10^9/L) Hembras = 67,22 - 0,5979 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 275,77 275,765 2,44 0,162
Error 7 791,12 113,018
Total 8 1066,89
Hembras LCC-GB
GB (x10^9/L) Hembras = - 8,593 + 0,3998 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 123,316 123,316 33,76 0,001
Error 7 25,573 3,653
Total 8 148,889
Hembras LCC-Trombocitos
Trombocitos (x10^9/L) Hembras = 1,031 + 0,1059 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 8,6454 8,64545 2,43 0,163
Error 7 24,9101 3,55859
Total 8 33,5556
Hembras LCC-Heterófilos
Heterófilos (%) Hembras = 52,03 + 0,1041 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 8,359 8,3585 0,51 0,500
Error 7 115,641 16,5202
Total 8 124,000
65
60
55
806040
6,0
4,5
3,0
1,5
0,0
806040
1,0
0,5
0,0
-0,5
806040
36
32
28
24
20
18
15
12
9
Heterofilos (%) Hembras
LCC (cm) Hembras
Eosinofilos (%) Hembras Basofilos (%) Hembras
Linfocitos (%) Hembras Monocitos (%) Hembras
Hembras LCC-Eosinófilos
Eosinófilos (%) Hembras = 4,439 - 0,04001 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,2350 1,23503 0,37 0,565
Error 7 23,6539 3,37912
Total 8 24,8889
Hembras LCC-Basófilos
Basófilos (%) Hembras = - 1,350 + 0,02467 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,46960 0,469599 3,03 0,125
Error 7 1,08596 0,155137
Total 8 1,55556
Hembras LCC-Linfocitos
Linfocitos (%) Hembras = 41,59 - 0,2359 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 42,922 42,9222 2,32 0,171
Error 7 129,300 18,4714
Total 8 172,222
Hembras LCC-Monocitos
Monocitos (%) Hembras = 3,290 + 0,1471 LCC (cm) Hembras
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 16,6990 16,6990 2,47 0,160
Error 7 47,3010 6,7573
Total 8 64,0000
30,0
27,5
25,0
322824
9
8
7
322824
36
32
28
24
20
322824
16
14
12
10
8
25
20
15
10
Hto (%) Machos
Peso (Kg) Machos
PTT (%) Machos GR (x10^9/L) Machos
GB (x10^9/L) Machos Trombocitos (x10^9/L) Machos
Machos Peso-Hto
Hto (%) Machos = 33,55 - 0,1899 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,4241 1,4241 0,09 0,811
Error 1 15,2426 15,2426
Total 2 16,6667
Machos Peso-PTT
PTT (%) Machos = 4,171 + 0,1392 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,76582 0,76582 0,28 0,690
Error 1 2,73418 2,73418
Total 2 3,50000
Machos Peso-GR
GR (x10^9/L) Machos = - 4,39 + 1,190 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 55,924 55,9241 0,99 0,502
Error 1 56,743 56,7426
Total 2 112,667
Machos Peso-GB
GB (x10^9/L) Machos = 32,60 - 0,7975 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 25,1203 25,1203 7,08 0,229
Error 1 3,5464 3,5464
Total 2 28,6667
Machos Peso-Trombocitos
Trombocitos (x10^9/L) Machos = - 25,83 + 1,570 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 97,316 97,3165 1,49 0,437
Error 1 65,350 65,3502
Total 2 162,667
Machos Peso-Heterófilos
Heterófilos (%) Machos = 64,24 - 0,2025 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,62025 1,62025 0,53 0,599
Error 1 3,04641 3,04641
Total 2 4,66667
60
59
58
57
322824
5
4
3
2
322824
1,00
0,75
0,50
0,25
0,00
322824
30
29
28
27
26
12
11
10
9
Heterofilos (%) Machos
Peso (Kg) Machos
Eosinofilos (%) Machos Basofilos (%) Machos
Linfocitos (%) Machos Monocitos (%) Machos
Machos Peso-Eosinófilos
Eosinófilos (%) Machos = - 0,13 + 0,1139 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,51266 0,51266 0,09 0,811
Error 1 5,48734 5,48734
Total 2 6,00000
Machos Peso-Basófilos
Basófilos (%) Machos = 3,814 - 0,1266 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,632911 0,632911 18,75 0,144
Error 1 0,033755 0,033755
Total 2 0,666667
Machos Peso-Linfocitos
Linfocitos (%) Machos = 25,22 + 0,1013 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,40506 0,40506 0,05 0,856
Error 1 7,59494 7,59494
Total 2 8,00000
Machos Peso-Monocitos
Monocitos (%) Machos = 6,87 + 0,1139 Peso (Kg) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,51266 0,51266 0,09 0,811
Error 1 5,48734 5,48734
Total 2 6,00000
30,0
27,5
25,0
646260
9
8
7
646260
36
32
28
24
20
646260
16
14
12
10
8
25
20
15
10
Hto (%) Machos
ACC (cm) Machos
PTT (%) Machos GR (x10^9/L) Machos
GB (x10^9/L) Machos Trombocitos (x10^9/L) Machos
Machos ACC-Hto
Hto (%) Machos = 52,18 - 0,385 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,9615 0,9615 0,06 0,846
Error 1 15,7051 15,7051
Total 2 16,6667
Machos ACC-PTT
PTT (%) Machos = - 11,08 + 0,3077 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,61538 0,61538 0,21 0,725
Error 1 2,88462 2,88462
Total 2 3,50000
Machos ACC-GR
GR (x10^9/L) Machos = - 143,4 + 2,769 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 49,846 49,8462 0,79 0,537
Error 1 62,821 62,8205
Total 2 112,667
Machos ACC-GB
GB (x10^9/L) Machos = 129,9 - 1,923 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 24,0385 24,0385 5,19 0,263
Error 1 4,6282 4,6282
Total 2 28,6667
Machos ACC-Trombocitos
Trombocitos (x10^9/L) Machos = - 211,6 + 3,692 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 88,615 88,6154 1,20 0,471
Error 1 74,051 74,0513
Total 2 162,667
Machos ACC-Heterófilos
Heterófilos (%) Machos = 87,28 - 0,4615 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,38462 1,38462 0,42 0,633
Error 1 3,28205 3,28205
Total 2 4,66667
60
59
58
57
646260
5
4
3
2
646260
1,00
0,75
0,50
0,25
0,00
646260
30
29
28
27
26
12
11
10
9
Heterofilos (%) Machos
ACC (cm) Machos
Eosinofilos (%) Machos Basofilos (%) Machos
Linfocitos (%) Machos Monocitos (%) Machos
Machos ACC-Eosinófilos
Eosinófilos (%) Machos = - 11,31 + 0,2308 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,34615 0,34615 0,06 0,846
Error 1 5,65385 5,65385
Total 2 6,00000
Machos ACC-Basófilos
Basófilos (%) Machos = 19,41 - 0,3077 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,615385 0,615385 12,00 0,179
Error 1 0,051282 0,051282
Total 2 0,666667
Machos ACC-Linfocitos
Linfocitos (%) Machos = 8,92 + 0,308 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,61538 0,61538 0,08 0,821
Error 1 7,38462 7,38462
Total 2 8,00000
Machos ACC-Monocitos
Monocitos (%) Machos = - 4,31 + 0,2308 ACC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,34615 0,34615 0,06 0,846
Error 1 5,65385 5,65385
Total 2 6,00000
30,0
27,5
25,0
65,064,564,0
9
8
7
65,064,564,0
36
32
28
24
20
65,064,564,0
16
14
12
10
8
25
20
15
10
Hto (%) Machos
LCC (cm) Machos
PTT (%) Machos GR (x10^9/L) Machos
GB (x10^9/L) Machos Trombocitos (x10^9/L) Machos
Machos LCC-Hto
Hto (%) Machos = - 132,5 + 2,500 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 4,1667 4,1667 0,33 0,667
Error 1 12,5000 12,5000
Total 2 16,6667
Machos LCC-PTT
PTT (%) Machos = 104,5 - 1,500 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,5 1,5 0,75 0,546
Error 1 2,0 2,0
Total 2 3,5
Machos LCC-GR
GR (x10^9/L) Machos = 736,0 - 11,00 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 80,667 80,6667 2,52 0,358
Error 1 32,000 32,0000
Total 2 112,667
Machos LCC-GB
GB (x10^9/L) Machos = - 407,5 + 6,500 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 28,1667 28,1667 56,33 0,084
Error 1 0,5000 0,5000
Total 2 28,6667
Machos LCC-Trombocitos
Trombocitos (x10^9/L) Machos = 918,0 - 14,00 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 130,667 130,667 4,08 0,293
Error 1 32,000 32,000
Total 2 162,667
Machos LCC-Heterófilos
Heterófilos (%) Machos = - 70,0 + 2,000 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 2,66667 2,66667 1,33 0,454
Error 1 2,00000 2,00000
Total 2 4,66667
60
59
58
57
65,064,564,0
5
4
3
2
65,064,564,0
1,00
0,75
0,50
0,25
0,00
65,064,564,0
30
29
28
27
26
12
11
10
9
Heterofilos (%) Machos
LCC (cm) Machos
Eosinofilos (%) Machos Basofilos (%) Machos
Linfocitos (%) Machos Monocitos (%) Machos
Machos LCC-Eosinófilos
Eosinófilos (%) Machos = 99,5 - 1,500 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,5 1,5 0,33 0,667
Error 1 4,5 4,5
Total 2 6,0
Machos LCC-Basófilos
Basófilos (%) Machos = - 64,00 + 1,000 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0,666667 0,666667 * *
Error 1 0,000000 0,000000
Total 2 0,666667
Machos LCC-Linfocitos
Linfocitos (%) Machos = 28,0 - 0,000 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 0 0 0,00 1,000
Error 1 8 8
Total 2 8
Machos LCC-Monocitos
Monocitos (%) Machos = 106,5 - 1,500 LCC (cm) Machos
Análisis de Varianza
Fuente GL SC MC F P
Regresión 1 1,5 1,5 0,33 0,667
Error 1 4,5 4,5
Total 2 6,0