examen general de heces
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EXAMEN GENERAL DE HECES
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El adulto normal defeca a intervalos que varíanentre:
3 veces/ día 3 veces/ semana
El patrón mas común es el 1 vez/ día un volumende 100 a 200 gr. de heces.
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Las 2/3 partes de peso de la materia fecal lo constituyen:
Bacterias Celulosa Secreciones intestinales Células exfoliadas del epitelio intestinal
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CONSISTE EN:
Examen Directo: Microscópico y macroscópico.
Parasicológico parcial para la demostración de parásitos comunes
Se puede ampliar para estudios mas completos (bacteriológicos, virológicos, inmunológicos, químicos)
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OBTENCIÓN DE LA MUESTRA:
1. Se deben obtener en recipientes limpios y secos de material no absorbente.
2. La muestra debe ser suficiente y representativa de una deposición.
3. Debe hacerse directamente al recipiente o en una bolsa plástica, si no se puede utilizar el método de Hoffman.
4. Muestras obtenidas por hisopado rectal no es recomendable. Única indicación: siembra inmediata de cultivo bacteriológico en caso de diarrea aguda.
5. Puede obtenerse a cualquier hora del día y deber ser llevada con prontitud al laboratorio.
6. Deben obtenerse en forma natural, el uso de laxantes con base de magnesio, bismuto o aceite mineral es perjudicial.
7. Es recomendable hacer examen seriado: por lo menos 3 muestras periodicidad: intervalos de 2 o 3 días. Una sola muestra detecta 30-50% de parásitos.
8. Evitar uso de: antibióticos, antiácidos, Bario y compuestos Anti diarreicos. Esperar 7 días después de administrados.
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COLORACIONES:
Tipos:
Húmedas (examen en fresco): los microorganismos se suspenden en un liquido.
Permiteo Observar movimientoso Observar la morfología
Seca (coloración o tinción)o Simple: morfología celularo Diferencial: Estructuras celulares
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DETECCIÓN DE GRASALa cantidad de grasa en las heces depende de: La cantidad de grasas en la dieta Funcionamiento del proceso de la digestión Absorción del aparato digestivo
En los adultos normales se excreta de 1-7 gr/día
Causas de la mala absorción Deficiencia de lipasa pancreático Disminución de sales biliares Resección intestinal o enfermedad del íleon terminal Aumento del transito intestinal Emulsificacion inadecuada de grasas Alteración del pH duodenal Enfermedad que afectan mucosa y linfáticos intestinales.
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MÉTODOS PARA EL ESTUDIO DE LÍPIDOS
Microscópicos cualitativos mediante el uso de colorantes como el sudan III y Oil Red O.
Complejos utilizando luz infrarroja.
Cuantitativos.
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SANGRE OCULTA Es un estudio no invasivo que detecta la presencia de
sangre oculta en heces.
Existen dos tipos: Frotis de guayaco Desechable con reactivo
Frotis de guayaco se base en la oxidación de un compuesto
fenolito contenido en la resina, a una estructura quinonica.
La oxidación fenolica del guayaco en presencia de hemoglobina da un color azul.
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Falsos positivos: Presencia de alimentos que contienen per oxidasas como frutas frescas y carnes.
Falsos negativos: agentes oxidantes (acido ascórbico), atraso de varios días para efectuar examen, deshidratación de las muestras.
Resultados positivos nos pueden hacer pensar en: Ca de colon Pólipos en colon Esofagitis Gastritis Hemorroides Enfermedad intestinal inflamatoria Ulcera péptica Varices esofágicas Infecciones intestinales.
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COPROCULTIVO
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SE DEBE SOLICITAR LOS EXÁMENES MAS DEMOSTRATIVOS SEGÚN EL CUADRO CLÍNICO, CONOCIENDO LA EPIDEMIOLOGIA LOCAL. SOLO SI HAY PRESENCIA DE LEUCOCITOS EN EXAMEN EN FRESCO.
Se incuban los cultivos aeróbicamente.
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se pueden encontrar :
Klebsiella-enterobacter, E. Coli, citrobacter, proteus.
Los agentes establecidos que se buscan:
E. Coli. Salmonella Shigella Vibrio Entamoeba Giardia Raro: estafilococos coagulasa positiva
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MÉTODOS PARA SALMONELLA Y SHIGELLA
Agar eosina azul de metileno Agar endo Agar McConkey Agar Desoxicolato
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PROCEDIMIENTOSCLASIFICACIÓN DEL EXAMEN COPROPARASITOLÓGICO
Por el tipo de procesamiento de la muestra1. Directo: macro y micro2. Por: a. flotacion b.
sedimentacion c. Termotropismo d. Dilucion e. Cultivo f.
Aclaracion g. TincionColorantes 3. Húmedos 4. Fijos: temp y perm.
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EXPRESIÓN NUMÉRICA
CUALITATIVOS:
A. FRESCOB. CENTRIFUGACIÓN (WILLIS)C. SEDIMENTACIÓN (RITCHIE) CUANTITATIVOS:
A. CONCENTRACIÓN DE FERREIRAB. DILUCIÓN DE STOLL.
MOMENTO DE REALIZACIÓN
1. INMEDIATO O EN FRESCO2. MEDIATO O PRESERVADO.
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Especialidades a. Tamizado b. Graham c. Baermand. Harada Morie. Coloración Khon f. Biopsia de Tejidos g. Microscopia Electrónica
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HECES FRESCAS
Examen directo Kato Katz Baerman Harada Mori
•Conteo de huevos•Huevos de helmintos•Larvas nematodos•Trofozoitos de protozoos•Quistes •Ooquistes de apicomplexas•Leucocitos , Eritrocitos•Cristales de Charcott Layden
•Conteo de huevos•Huevos de Taenia•Ooquistes de Isospora belli
•Extracción de larvas de Strongyloides
•Diferenciación de larvas de nematodos
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EXAMEN PARASITOLÓGICO
La selección de los métodos para demostrar infecciones parasitarias depende de:
Propósito del estudio. La condición de la muestra fresca o fijada. Para enterobius: Método de Graham (cinta adhesiva transparente para
recuperar huevos) Humedecer un hisopo con vaselina estéril y recubrirlo
con parafina.
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Para Strongyoides: Método Baerman (concentracion de larvas
usando vaso cervecero, gasa y pascón). Cultivo en Agar peptonado con extracto de
carne Para angyostrongylus costarricenses: Examen serológico e histológico Huevos de uncinarias: Metodo Harada Mori (papel-filtro -gradilla-
agua-heces)
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Huevos de Trichuris Trichuria y Áscaris: Método de Kato Katz (paleta-portaobjetos –
celofán-y templete)
En muchos casos no es posible que la muestra sea examinada inmediatamente se recomienda el uso de fijadores como:
1. PVA (alcohol polivinilico)2. SAF (solución de formalina –ac. Acético –
acetato de Na.3. Formalina 5 al 10%
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EXISTEN OTROS MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN:
SHEATER, SULFATO DE ZINC, FORMOL-ETER, ETC.
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Algunos parásitos y su forma encontrada en las heces
•Entamoeba histolityca-dispar Trofozoito y quiste
•Giardia intestinal (G. Lamblia) Trofozoito y quiste
•Balantidium coli Trofozoito y quiste
•Isospora belli Ooquiste
•Taenia solium huevo, segmento, occ scolex
•Ascaris lumbricoides huevo
•Enterobius vermicularis adulto, occ. Huevo
•Strongyloides stercolaris larva
•Trichuris trichuria huevo