ECOLOGÍAALIMENTICIAYSALUDDEPSITÁCIDOSENMADREDEDIOS,

PERÚ

InformeanualparaSERNANP

AutorizaciónNo001-2010-SERNANP-DGANP-JEFAutorizaciónNo001-2010-SERNANP-DGANP-PNBS

DonaldJ.Brightsmith,Ph.DDirectordeInvestigaciones

ResearchAssistantProfessor-TexasA&MUniversityDBrightsmith@cvm.tamu.edu

GustavoMartinezSovero,Blgo.

JefedecampoUniversidadNacionalPedroRuizGallo

gusmarso@yahoo.es

GeorgeOláh,Zoólogo,Ms.UniversidadNacionaldeAustralia

gyolah@yahoo.com

GabrielaVigoTrauco,Blga.UniversidaddeTexasA&Mparrots@cvm.tamu.edu

SharmanHoppes,DVMTexasA&MUniversity

FacultaddeMedicinayCirugíadeanimalesmenores

DoraSusanibar,Blgo.Bióloga

InvestigadorAsociadodelCentrodeOrnitologíayBiodiversidad,Lima

LizzieOrtizCam,M.V.ZCoordinadora

UniversidadPeruanaCayetanoHeredializzieortizcam@gmail.com

Lima,JULIOde2011

2

RESUMENEJECUTIVOElpresenteeselinformeanualdelProyectoGuacamayodeTambopata,correspondientealas autorizaciones Nº 001-2010-SERNANP-DGANP-JEF y No 001-2010-SERNANP-DGANP-PNBS,otorgadaporelServicioNacionaldeÁreasNaturalesProtegidas,conelfinderealizareltrabajodeinvestigaciónEcologíaReproductivayusodeCollpasdeGuacamayosenMadrede Dios. El trabajo de campo se lleva a cabo dentro de la Reserva Nacional Tambopata,teniendo como base de operaciones al albergue turístico y centro de investigaciónTambopataResearchCenter(TRC).Enelpresente informe,sedetallan–porcapítulos-diversostemasde investigaciónquesehangeneradodebidoa lagran importanciayvalorde lospsitácidosenel área, como: losestudiossobrelospatronesfenológicosysurelaciónconelperíododeanidamiento,eléxitoreproductivosegúnlaspreferenciasdeltipodenidos,laimportanciadelreconocimientodeespeciesvegetalesenelárea,yresultadosdeestudiosveterinarios.Todoellohaconllevadoadiferentesresultadosqueseasemejanunodelotroenque,elProyectoGuacamayosiguesiendounaherramientaimportante,nosóloparalaconservacióndelospsitácidos,sino-enunaspectomuchomásamplio-incluyendoeltemasociológico,culturalyambientalista.EXECUTIVESUMMARYThis is the annual report of the Tambopata Macaw Project corresponding to theauthorizations N º 001-2010-SERNANP-DGANP-JEF and N º 001-2010-SERNANP-DGANP-PNBS,awardedbytheServicioNacionaldeÁreasProtegidas,withtheordertoconducttheresearch “Reproductive Ecology andmacaw’s clay lick use in Madre de Dios”. The fieldworkwas carried outwithin the TambopataNational Reserve, based at the tourist lodgeoperationsandresearchcenterTambopataResearchCenter(TRC).In this report, aredetailed -bychapters-various research topics thathavebeengeneratedduetotheimportanceandvalueoftheparrotsinthearea,suchasstudiesonphenologicalpatternsand theirrelation to theperiodofnesting, reproductivesuccessaccording to thepreferencesof the typeofnest, the importanceofrecognitionofplantspecies in thearea,andsomeresultsofveterinarystudies.Thishasledtodifferentresultsthatresembleeachother in that theMacawProject is still an important toolnotonly for the conservationofparrots, but-in a much more extensive, including the sociological, cultural andenvironmentalistissues.

3

CONTENIDO

RESUMENEJECUTIVO 2

EXECUTIVESUMMERY 2

INTRODUCCIÓN 4

MARCOTEÓRICO 5

Áreadeestudio 6

CapítuloI:Relaciónentrelospatronesfenológicosyelperiododeanidamientodepsitácidosenlaselvaperuana 7

CapítuloII:PruebasparadetectarSalmonellaspp.enlorosliberados,lorossilvestresyenavesdomésticasenlastierrasbajasdePerú 12

CapítuloIII:PreferenciasdeusodenidosdelGuacamayoEscarlata(Aramacao)enelsurestedelPerú 13

Capítulo IV: Caracterización molecular de la microbiota cloacal de loros silvestres y encautiverio

16

CapítuloV:IdentificacióndeespeciesdeplantasenelTambopataResearch

Center,Perú 17

Listademuestrasextraídas 29

AGRADECIMIENTOS 29

BIBLIOGRAFÍA 30

4

INTRODUCCIÓN

El presente es el informe anual del Proyecto Guacamayo, correspondiente a lasautorizacionesNº001-2010-SERNANP-DGANP-JEFyNo001-2010-SERNANP-DGANP-PNBS,otorgada por el ServicioNacional de ÁreasNaturales Protegidas, con el fin de realizar eltrabajodeinvestigaciónEcologíaReproductivayusodeCollpasdeGuacamayosenMadredeDios. El trabajo de campo se lleva a cabo dentro de la Reserva Nacional Tambopata,teniendo como base de operaciones al albergue turístico y centro de investigaciónTambopataResearchCenter(TRC).

ElProyectoGuacamayocumpliósudécimoprimerañodeestudiosdepsitácidosenTRC

ennoviembrede2010,bajoladireccióndelDr.DonaldBrightsmith.Atravésdeuntrabajode larga trayectoria, el ProyectoGuacamayo ha logrado recolectar una variedad de datossobre temas como: éxito reproductivo, crecimiento de polluellos, uso de collpas,concurrencia de psitácidos a la collpas, composición de grupos familiares, dieta, forrajeo,disponibilidad de alimento, sobrevivencia de guacamayos criados artificialmente,abundanciadepsitácidosenelbosque,telemetríasatelital,comportamientodeAramacaoen el nido, entre otros; con el objetivo de brindar información que ayude a entender laecologíay lahistorianaturaldedichasaves.Estoes consideradodegran importancia, yaque los psitácidos son aves muy amenazadas y consideradas como un valioso recursoturístico.

Al igual que en años anteriores, a través de este documento se presentan los logros

obtenidos.

Al iniciodeeste informesepresentan losantecedentesysebrindaunavisióngeneraldelconocimientocientíficoquesetienesobrelospsitácidos.Enelprimercapítulo,«Relaciónentrelospatronesfenológicosyelperiododeanidamientodepsitácidosenlaselvaperuana», se describe la relación entre la disponibilidad de recursos vegetales y losperiodosdeanidamientodePionusmenstruusyAramacao.

El el siguiente capítulo titulado,«Pruebas para detectar Salmonella spp. en lorosliberados,lorossilvestresyenavesdomésticasenlastierrasbajasdePerú»,muestralosresultadosdelanálisisveterinariosdelorosdeTambopata,detectandoSalmonellaspp.

En el Capítulo III «Preferencias de uso de nidos del Guacamayo Escarlata (Ara

macao)enelsurestedelPerú»describelacapacidaddelguacamayoescarlataparaelegiruna cavidad en un árbol para anidar; lo cual también tiene gran importancia comoherramientaenlatomadedecisionesenelmanejodelpaisaje.

El Capítulo IV, « Caracterización molecular de la microbiota cloacal de lorossilvestres y en cautiverio »,detalla los analises comparativos de salud entre individuossilvestresvs.encautiverio.

EnelCapítuloV,«IdentificacióndeespeciesdeplantasenelTambopataResearchCenter, Perú», se muestra una lista de especies de plantas que han sido identificadasdurante el trabajo de fenología realizado durante nuestros estudios. Este trabajo ha sidorealizadoporsolicituddemiembrosdeAIDERpara lapreparacióndelPlanMaestrode laReservaNacionalTambopata.

5

MARCOTEÓRICO

Los psitácidos son notoriamente difíciles de estudiar en vida silvestre (Beissinger ySnyder 1992). Debido a su falta de comportamiento territorial, sus vocalizaciones, sumovilizaciónatravésdelargasdistanciasysutendenciaapermanecereneldosel,muchosestudios ornitológicos generales no incluyen el muestreo adecuado de psitácidos(CasagrandeyBeissinger1997,Marsden1999,Maselloetal.2006)yporendesonescasoslos estudios detallados de la comunidad de psitácidos (Roth 1984,Marsden and Fielding1999,Marsdenetal.2000).Apesardeello,lainformaciónacercadesuhistorianaturalesimportanteparaelentendimientoylaconservacióndeestafamiliatanamenazada(BennettyOwens1997,Collar1997,Snyderetal.2000,MaselloyQuillfeldt2002).

Las tierras bajas de la amazonía oriental poseen algunas de las comunidades aviaresmásdiversas en elmundo (Gentry1988), albergando amásde20 especiesdepsitácidos(guacamayos,lorosyperiquitos),(Terborghetal.1984,Terborghetal.1990,Montambault2002, Brightsmith 2004). Las densidades de psitácidos en esta región pueden llegar amillares de loros congregados diariamente en las riveras de los ríos a comer arcilla(Emmons 1984, Nycander et al. 1995, Burger y Gochfeld 2003, Brightsmith 2004).Aparentemente, laarcillaconsumidaenestascollpasrepresentaunaimportantefuentedesodio y puede proteger a las aves de las toxinas presentes en la dieta (Emmons y Stark1979,Gilardietal.1999,Brightsmith2004,BrightsmithyAramburú2004).

Los psitácidos se alimentan predominantemente de semillas, frutos maduros einmaduros,yflores,suplementadosocasionalmenteconcortezasyotrosinsumos(Forshaw1989, Renton 2006). A diferencia demuchas otras aves, los psitácidos del NuevoMundoparecen no ser capaces de modificar su dieta de tal modo que sea predominantementeinsectívora, razón por la que están íntimamente ligados a los patrones de floración yproduccióndefrutosenelbosque.

Mientrasquelasfluctuacionesdelclimaenlostrópicosesnotablementemenorqueenzonastempladas,seconocequelafloraciónyproduccióndefrutosvaríaestacionalmenteencada lugar en el que han sido estudiadas (Frankie et al. 1974, Croat 1975, Lugo y Frangi1993,vanSchaiketal.1993,ZhangyWang1995,AdleryKielpinski2000).Pocasespeciesvegetalesflorecenyproducenfrutosalolargodetodoelaño,loquesignificaqueparalospsitácidos hay diferentes fuentes de alimento disponibles en diferentes épocas del año.Asimismo,laabundanciatotaldealimentofluctúaenrespuestaalospatronesestacionalesde precipitación (van Schaik et al. 1993). Estas variaciones anuales de disponibilidad dealimento tienen efectos importantes en los ciclos de vida anuales de los psitácidos. Porejemplo,lacarenciadealimentopuedeconllevaraquealgunosotodoslosmiembrosdeunaespecie se transladen hacia otras áreas en busca de recursos alimenticios (Powell et al.1999, Renton 2001). La estación de anidamiento y el éxito reproductivo pueden tambiénestarligadosalospatronesdefloraciónyproduccióndefrutos(SanzyRodríquez-Ferraro2006).

6

ÁreadeestudioTodos los estudios fueron llevados a cabo en el albergue y centro de investigación

Tambopata Research Center (TRC) 13° 07ʹ S, 69° 36ʹ W, en la frontera entre la ReservaNacionalTambopata(275000ha)yelParqueNacionalBahuaja-Sonene(537000ha)eneldepartamentodeMadredeDios,alsurestedelPerú.

El lugar se encuentra en el límite entre bosque húmedo tropical y bosque húmedosubtropical, a 250 m.s.n.m. y con una precipitación anual de 3200 mm (Tosi 1960,Brightsmith2004).Laestaciónsecaseextiendeentrelosmesesdeabrilyoctubre,conunaprecipitaciónmensualpromediode90a250mm(Brightsmith2004).

El centro de investigación está localizado en un pequeño claro (<1 ha) rodeado por

bosque inundable maduro, un bosque inundable sucesional, un aguajal y una restinga(Fosteretal.1994).Unlargoparchedebambú(Guaduasarcocarpa:Poaceae)cubreeláreainmediatamenteadyacentealacollpas,elmismoqueflorecióysesecóentrelosaños2001y2002(Fosteretal.1994,GriscomyAshton2003).

Eláreapresentapoblacionesdeguacamayosgrandes(Araararauna,A.chloropterusyA.

macao) y depredadores grandes (Harpia harpyja,Morphnus guianensis, Spizatus tyrannus,SpizatusornatusySpizasturmelanoleuca).Ladensidaddepsitácidosenestaregiónpuedealcanzarmillares de loros congregadosdiariamente en las riveras de los ríospara comerarcilla (Emmons 1984; Nycander, Blanco et al. 1995; Burger and Gochfeld 2003;Brightsmith2004).

Lacollpaesunbancodearcilla,de500mdelongitudy25a30mdealto,alolargodel

margen occidental del río Alto Tambopata aproximadamente a 1 km del centro deinvestigación. El barranco está formado por la erosión causada por el río Tambopata(RäsänenySalo1990,Fosteretal.1994,RäsänenyLinna1995).Lossuelosdelacollpasonricosenarcillaconaltacapacidaddeintercambiocatiónicoyaltosnivelesdesodio(Gilardietal.1999,DJBdatosnopublicados).

7

CAPÍTULOI:RELACIÓNENTRELOSPATRONESFENOLÓGICOSYELPERIODODEANIDAMIENTODEPSITÁCIDOSENLASELVAPERUANAGustavoMartinez,Biólogo;DonaldBrightsmith,Ph.D.Edición:LizzieOrtiz

INTRODUCCIÓNLas aves de los bosques tropicales son muy sensibles a los cambios de ritmos

estacionales(precipitación,luz,comida,etc.),siendoestosritmosfactoresdeterminantesenelperiododeanidamiento,etapaqueseconsideracríticaenlavidadelasaves.Unadelasvariaciones estacionales es la disponibilidad de los recursos vegetales cuya escasés oabundancia influye en el periodo de anidamiento de las diferentes especies de psitácidosque anidan en el sur este de la selva peruana (Brightsmith 2005). La gráfica 1 indica lasdiferenciasenlasépocasdeanidamientoentre15especiesdiferentesdepsitácidos.

Gráfica1.Curvaanualdeanidamientodepsitácidosenelsurestedelaselvaperuana.

La disponibilidad de recursos se realiza mediante la medición de los patrones

fenológicosofenofases(botón,flor,frutoverdeyfrutomaduro)quenospermiteestimarelgrado de relación existente entre comida y etapa de anidamiento de psitácidos. Dichoestudio demedición ayuda a entender el dinamismo del bosque, en relación a cómo losfactores abióticos o bióticos influyen directa o indirectamente sobre la disponibilidad derecursos vegetales y de como esta disponibilidad influye en los diferentes periodos deanidamiento.

8

OBJETIVOS

1. Determinarlospatronesfenológicos.

2. Determinar la disponibilidad de recursos vegetales en el bosque del TambopataResearchCenter(TRC)ysurelaciónconPionusmenstruusyAramacao

3. Estimar la relaciónentre ladisponibilidadde recursosvegetalesy losperiodosdeanidamientodePionusmenstruusyAramacao

METODOLOGÍA

En este trabajo usaremos las etapas de Pionus menstruus y Ara macao debido a lasgrandesdiferenciasen susépocasdeanidamiento.Losdatos fenológicos correspondenalperiodojuniodel2010amayodel2011realizadoselCentrodeInvestigacióndeTambopata(TambopataResearchCenter,1307S,6936E;250mdeelevación)localizadoenlaReservaNacionalTambopata.Seevaluaron57familiasagrupadosen160génerosconuntotal1320individuosdeloscuales11familiascon17génerosagrupadosen301individuossonparaPionusmestruus,y24familiascon51génerosagrupados811individuosparaAramacao.Setrabajó con 20 parcelas distribuidas en diferentes hábitats: Bajío, Aguajal, Tierra Firme yBosqueSucesional,enlaquesemarcaronindividuosconDAP>10.

La evaluación fenológica fue mensual en la que busca determinar la ausencia opresenciadelospatronesfenológicos(botón,flor,frutoverdeyfrutomaduro),mediandoelusodeescalafenológicacuyosvaloresvande1a5dependiendodelacantidaddeunidadesencontradas en cada uno de los patrones fenológicos. Se analizará la producción deindividuos que corresponden aquellos que presentan fenofases con valoresmayores a 0,paraestimarlaproducciónmensualodisponibilidadmensualexpresadaenporcentajes,asícomoparalosindividuosconsumidosporPionusmenstruusyAramacao.

RESULTADOS

Sepudieronestablecerperiodosdedisponibilidad:unoaltoquevadesdesetiembrea

enerocuyo iniciosedaenelmesde junioyunaépocabajade febreroaagosto, según loindicalagráfica2.

Grafica 2.- Curva Disponibilidad de recursos vegetales, en relación a la producción

mensualjunio2010–mayo2011

9

Durantelos11mesesdeevaluaciónseobtuvo14,754registrosdeloscualessolo4588registros tuvieron disponibilidad. La temporada alta de disponibilidad corresponde alperiodocomprendidoentresetiembredel2010convalorde39,67%yenerodel2011con35,99%.Elmesdemayordisponibilidadseregistraenoctubrecon41.98%deproducción(vertabla1).

TABLA 1.- Disponibilidad de recursos vegetales para psitácidos en el Centro de

InvestigacióndeTambopataexpresadaenporcentajedeproducción(%Produc.), (*)eselnúmero total de individuos monitoreados por mes y (**) número de individuos conproducciónpormes.

MesyAnoN

Ind.(*)Ind.

Prod.(**) %Prod.Jun10 1289 310 24,05Jul10 1077 308 28,60Ago10 1077 324 30,08Set10 1288 511 39,67Oct10 1079 453 41,98Nov10 1133 461 40,69Dic10 1282 473 36,90Ene11 1281 461 35,99Feb11 1277 348 27,25Mar11 1320 296 22,42Abr11 1321 320 24,22May11 1321 323 24,45

ParaAramacaoel periodode anidamiento se dadurante la época alta e inicios de la

época baja, empezando con la puesta de huevos durante elmes de noviembre, pudiendoadelantarseparaelmesdeoctubre.Laetapadevuelosedaafinesdemarzoymediadosdeabril (Tabla 2). Se obtuvo 9503 registro en donde la época alta de disponibilidad

EPOCAALTA

10

correspondealosmesesdesetiembrecon39,83%aenerocon36,31%.Elmesconmayordisponibilidadesoctubrecon41,80%deproducción(Gráfica2).

El periodo de anidamiento de Pionus menstruus se inicia en junio con los últimospolluelos volando en oct – nov a pesar que el pico de disponibilidad de comida para laespecieesdeagostoadiciembre.

Se obtuvo 3507 registros en donde la época alta de disponibilidad corresponde a losmeses de julio con 40.30% a diciembre con 43.52%. Elmes conmayor disponibilidad esagostocon52.09%deproducción(Gráfica3).

Tabla2.-MesesdeanidamientodePionusmenstruusyAramacaosegúnBrightsmith2005.(x)indicanperiododeanidamiento,(O)posibleperiododeanidamiento

Especies JUN JUL AUG SEP OCT NOV DEC JAN FEB MAR APR MAYPionusmestruus X X X X X X Aramacao O X X X X X O

Grafica3- Relaciónde la épocade anidamiento y disponibilidadde recursosparaPionusmenstruusyAramacaoduranteJunio2010–Mayo2011

11

DISCUSIÓNYCONCLUSIONES

El patrón fenológico encontrado muestra que la época de mayor disponibilidad defrutos, floresybotonesenelbosquecorrespondeal finalde la época secay losprimerosmesesdelaépocalluviosa.Estepatróndedisponibilidaddecomidaserelacionamuybienconelnúmerodeespeciesdepsitácidosanidandoenlazona.Estosugierequealniveldelacomunidad en general, el anidamientode lospsitácidos está ligado a la disponibilidaddecomidaenelbosque.

A pesar de este relación al nivel de la comunidad de psitácidos en general, no se haencontradopicosdedisponibilidaddecomidamuydiferentesparalasdosespeciesdelorosestudiadosconmayordetalle(AramacaoyPionusmenstruus).Lasdosespeciestienenpicosdedisponibilidaddecomidaenaproximadamente lasmismasépocas,con laexcepcióndeagostoquetienemáscomidaparaPionusmenstruusqueparaAramacao.ParecequePionusmenstruus inicia su época reproductiva cuando la disponibilidad de comida en el bosqueempiezaaincrementarysuspolluelosvuelancuandoaúnhaymuchacomidaenelbosque.Encomparación,Aramacaoempiezaaanidardurantelaestaciónaltadedisponibilidaddecomida.Además,adiferenciadePionus,lospolluelosdeAramacaovuelanenlaépocamásbajadedisponibilidaddecomida.

LITERATURACITADA

Brightsmith,D.J.2005.ParrotnestinginsoutheasternPeru:seasonalpatternsandkeystonetrees.WilsonBull117:296-305.

12

CAPÍTULOII:PRUEBAS PARA DETECTAR SALMONELLA SPP. EN LOROSLIBERADOS, LOROS SILVESTRES Y EN AVES DOMÉSTICAS EN LASTIERRASBAJASDEPERÚOscarButron,DVMyDonaldBrightsmith,Ph.D.Edición:DoraSusanibar

Las poblaciones de animales silvestres se enfrentan a las amenazas de los agentes

patógenosdeanimalesliberadosintencionalmenteencautiverioylosanimalesdomésticosqueacompañanalosasentamientoshumanos.Dediciembrede2004hastaagostode2005,hemosrealizadounestudiodeguacamayosylorosquevivenenvidasilvestreenlaReservaNacional de Tambopata, en la Amazonía Peruana y aves semicautivas domésticas en losasentamientos humanos adyacentes a la reserva. En 1992-1993, los grandes guacamayos(Araspp.)queeranserológicamentepositivosparaSalmonellapullorumfueronliberadosenesta reserva, que alberga densas poblaciones de loros y guacamayos de vida silvestre. Serecogieronhisoposcloacalesdeavesy64fueroncultivadasparaSalmonellaspp.atravésdemétodosde laboratorioestándar.Todas las35psitácidosprobados fueronnegativosparaSalmonella spp., mientras que el 31% de 29 aves domésticas fueron cultivo positivo.Nuestroshallazgossugierenquelasavesqueacompañanalosasentamientoshumanosenesta región llevan y derramen Salmonella spp. que podrían poner en peligro a laspoblacionesdeavessilvestresenlosalrededoresdelareserva.

13

CAPITULOIII:PREFERENCIAS DE USO DE NIDOS DEL GUACAMAYO ESCARLATA(Aramacao)ENELSURESTEDELPERÚGeorgeOláh,Zoólogo;GabrielaVigo,Bióloga;DonaldBrightsmith,Ph.DEdición:LizzieOrtiz,MVZ.

RESUMENEl saber identificar la capacidad del guacamayo escarlata (Ara macao) para elegir unacavidadenunárbolparaanidar, tienegran importancia comoherramientaen la tomadedecisionesenelmanejodelpaisaje,loquefavoreceaestaespecie,yaqueladisponibilidaddecavidadesesunodelosprincipalesfactoresparaaseguraryacrecentarlaspoblacionesdeestaespecie.Acontinuación,sedescribenlaspreferenciasdeestaespecieenunperiodode11añosen laregióndeTambopataalsurestedePerú.Seanalizaron14característicasfísicas (diámetro interno, orientación, altura, etc.), 12 ambientales (hábitat, especie delárbol, distancia a la colpa, etc.) y 21 indicadores de éxito reproductivo (porcentaje dehuevos eclosionados y sobrevivencia de pichones hasta el vuelo) con intensidad demonitoreo de 67 cavidades, que incluyen 31 naturales, 12 artificiales demadera y 26 dePVC.Seutilizaronestadísticasdemodelaciónmixta(GLMMsiglaseningles)determinandolos factores y características que hacían que una cavidad tuviera éxito como nido deguacamayoescarlata.Eltamañopromediodeoviposturafue2.8±0.9(N=170),latasadeeclosiónfue49±14%(rango30–73%,N=11años)siendosignificativamentemásbajaenañosenlosquelosinvestigadoresrevisaronlosnidosconmásfrecuencia,estosugierequeel monitoreo durante la incubación ocasionó una reducción en la tasa de eclosión. Lapreferenciadecavidadesfueronaquellasendondenacieronpolluelos(13vs.4casos)yenlas que los polluelos volaron exitosamente (68 vs. 10 casos) en la estación reproductivainmediataanterior.Laposicióndelnidoyeldiámetrointernotambiéninfluenciaronenlaspreferencias de uso. Los resultados confirman, que el éxito reproductivo se debe a lapreferenciadeciertascaracterísticasdelascavidadesparaanidaciónyqueestapreferencialograeléxitodesobrevivenciadealmenosunpollueloportemporadareproductiva.

INTRODUCCIÓNPara la conservación del guacamayo escarlata (Ara macao), el ave característica de lacuenca Amazónica, es muy importante primero entender su historia natural en vidasilvestre.Elsucesodeanidamientoesunelementocrucialdesuecología, loqueinfluyeeltamaño de la población y la sobrevivencia de la especie en larga escala. Los guacamayosgrandessolosereproducenunavezporaño,yalgunasespeciesavecessoloponenhuevoscada 2 o 3 años. El mayor factor limitado del suceso del anidamiento del guacamayoescarlataesencontrarnidosóptimosenlosarbolesemergentesdelaselvatropical.

14

Saberidentificarlacapacidaddelguacamayoescarlataparaelegirunacavidadenunárbolparaanidar,tambiéntienegranimportanciacomoherramientaenlatomadedecisionesenelmanejodelpaisaje,loquefavoreceaestaespecieyaqueladisponibilidaddecavidadesesuno de los factores de importancia para asegurar y acrecentar las poblaciones de estaespecie.METODOLOGÍAEl Centro Investigación de Tambopata (TRC) se ubica en la Amazonia Peruana en elDepartamento Madre de Dios, Perú, en la frontera de dos áreas protegidas (ReservaNacional Tambopata y Parque Nacional Bahuaja-Sonene) bordado de una selva tropicalintacta. El Proyecto Guacamayo estudia los Psitácidos en este lugar, tomando datos deanidamientohace12años.AlrededordeTRCcontamosnidosnaturalesyartificialesparaguacamayos grandes, que proporcionan un experimento perfecto para estudiar laspreferenciasdeestasavescuandoeligenunnido.Teniendodatosdeeclosión,monitoreodelos nidos, medidas, tipos, hábitat, distancia de los nidos y árboles, nuestro objetivo fueaveriguarlosfactoresmásimportantesquecaracterizanelsucesodeunnido.Utilizamos estadísticas de modelación mixta (GLMM siglas en ingles: Generalized LinearMixedModel) para analizar nuestros datos a través de 12 temporadas, determinando losfactoresycaracterísticasquehacíanqueunacavidadtuvieraéxitocomonidodeguacamayoescarlata.Analizamos 14 características físicas (diámetro interno, orientación, altura, etc.), 12ambientales(hábitat,especiedelárbol,distanciaa lacolpa,etc.)y21indicadoresdeéxitoreproductivo (porcentaje de huevos eclosionados y sobrevivencia de pichones hasta elvuelo) con intensidad de monitoreo de 67 cavidades, que incluyen 31 naturales, 12artificialesdemaderay26dePVC.RESULTADOSEntre varios, nuestros resultados mostraron por ejemplo que los guacamayos escarlatasdan preferencia a los nidos donde el año anterior nacieron o volaron polluelos, y por elcontrario,noprefirieronaquellosquenoteníanactividadodondesepresentaroneventosdedepredación.Tambiénprefirieron losnidosverticalesque loshorizontales, y losnidoscon diámetromás grande. Parece que losmonitoreos de nidos -a través de ascensión encuerdas- durante los últimos 10 días de la incubación, tuvieron los mayores efectosnegativosparaeléxitodelnacimientooquelospolluelosvuelen.Eltamañopromediodeoviposturafue2.8±0.9(N=170),latasadeeclosiónfue49±14%(rango 30 – 73%,N=11 años) siendo significativamentemás baja en años en los que losinvestigadores revisaron los nidos con más frecuencia, esto sugiere que el monitoreodurante la incubación ocasionó una reducción en la tasa de eclosión. La preferencia decavidades fueron aquellas en donde nacieron polluelos (13 vs. 4 casos) y en las que lospolluelos volaron exitosamente (68 vs. 10 casos) en la estación reproductiva inmediataanterior (Grafico 1.). Los resultados confirman, que el éxito reproductivo se debe a lapreferenciadeciertascaracterísticasdelascavidadesparaanidaciónyqueestapreferencialograeléxitodesobrevivenciadealmenosunpollueloportemporadareproductiva.

15

Grafico 1. Resultados en la estación reproductiva inmediata anterior (códigos de losresultados: 0=Sin actividad o Sin huevos, 1=Nacieron polluelos, 2=Volaron polluelos,3=Depredación, 4=Adquisición, 5=Huevos infértiles o rotos, 7=Nido se cayó,8=Desconocido)

DISCUSIÓNYCONCLUSIONESNuestros resultadosmostraron,que losnidos artificiales (tantodePVC comodemadera)tienensimilaréxitoreproductivocomo losnidosnaturales.Estocompruebaque losnidosartificalessonbuenasherramientasparareemplezar losnidosnaturalesenlugaresdondeyanoexsistencavidadesnaturalesporlatalaselectivadelosárbolesemergentes.Los guacamayos mostraron una preferencia alta para los nidos que tuvieron éxito en latemporada anterior. Para estos nidos preferidos hay más competencia en el inicio de latemporadadereprodución.Siunnidotienevolantesenunaño,estoindicaqueelnidovaaserpreferidoenlapróximatemporadatambién.Parece que el número de huevos puestos en la misma temporada influye el éxitoreproductivo, es decir mientras más huevos ponen es más probable que van a volarpolluelosdelmismonido.LITERATURACITADABrightsmith, D. J. (2005). Parrot nesting in southeastern Peru: seasonal patterns and

keystonetrees.WilsonBulletin117:296-305.Brightsmith,D., Stronza,A., etal. (2008).Ecotourism,conservationbiology,andvolunteer

tourism:Amutuallybeneficial triumvirate.BiologicalConservation 141(11):2832-2842.

Hesse, A. J. and Duffield, G. E. (2000). The status and conservation of the Blue-ThroatedMacawAraglaucogularis.BirdConservationInternational10:255-275.

16

CAPÍTULOIV:CARACTERIZACIÓNMOLECULARDELAMICROBIOTACLOACALDELOROSSILVESTRESYENCAUTIVERIOPanagiotisG.Xenoulis,PatriciaL.Gray,DonaldBrightsmith,BlakePalculict,SharmanHoppes,JörgM.Steiner,IanTizard,JanS.SuchodolskiEdición:DoraSusanibar

La microbiota gastrointestinal desempeña una funcion fundamental en la salud y la

enfermedad. Sólo datos limitados están disponibles acerca de la composición de lamicrobiotaintestinaldecautivoanimalesencomparaciónconlosdelosanimalessalvajes.Elobjetivodelpresenteestudio fuecaracterizar lamicrobiotacloacalde lorossilvestresyencautiverioquefueronaparentementesanos.

Untotalde16loros,8salvajesy8encautiverios,pertenecientesa3especiesdiferentes,se utilizaron en este estudio. Elmaterial cloacal se recogiómediantehisopado cloacal. SeextrajoelADNylosgenes16SrRNAfueronamplificadosutilizandocebadoresuniversalesbacterianas.Construidos16SrRNAbibliotecasdeclonesdegenessecompararonentrelosgrupos.

Fueronanalizadastotalof518clones,y49unidadestaxonómicasoperacionalesfueronidentificado. Las unidades taxonómicas operacionales fueron clasificados en 4bacterialphyla: Firmicutes (72,9%), Proteobacteria (14,9%), Actinobateria (12%), yBacteroidetes (0,2%). Diversidad bacteriana fue significativamente menor en las avessilvestresqueenavescautivas.AnálisisdecomponentesprincipalesbasadoenlamétricadedistanciaUnifracindicóquelamicrobiotacloacalfuediferenteentreloslorossilvestresyencautiverio.Staphylococcussaprophyticusfuesignificativamentemásabundantesenlasavessilvestres, mientras que Escherichia coli fue significativamente más abundante en avescautivas.Enconclusión, los lorossilvestresyencautiverioparecentenerdiferenciasen lacomposicióndesumicrobiotabacterianacloacal.Laimportanciaclínicadeestasdiferenciasquedapordeterminar.

17

CAPÍTULOV:IDENTIFICACIÓN DE ESPECIES DE PLANTAS EN EL TAMBOPATARESEARCHCENTER,PERÚGustavoMartinez,BiólogoEdición:LizzieOrtiz

INTRODUCCIÓN

El Proyecto Guacamayo de Tambopata monitorea 20 parcelas mensualmente para

producción fenológico. Las parcelas se encuentran distribuidas en cinco por cada hábitatdentro del sistemade trochas deTambopataResearch Center (TRC) y son:Bajío,el cualestácaracterizadoporinundacionesperiódicascausadasporlluviasoporcrecientesdelrio.DentrodeelseencuentranlosgénerosOtoba,Guarea,Iriartea,Virola,Cecropia,Pourouma,Swartzia.Aguajal, caracterizado por la vegetación predominante deMauritia flexuosa, esposible encontrar otro tipo de vegetación como Pseudobombax, Protium, Axanagorea,Euterpe, Iriartea, Luehopsis. Bosque sucesional, presenta vegetación y se encuentra enconstantecambiodebidoa lasucesiónvegetal.Secaracterizapor lapresenciadeespeciespioneras tales como Triplaris, Erythrina, Ficus, Pourouma, etc. Tierra firme, donde sepueden encontrar grandes árboles comoHymenaea, Eschweilera, Mabea, Cordia, Dialium,Guatteria,etc.

Enestebrevereporteseproveeunalistadeplantasidentificadasenestos20parcelas.EstereportehasidopedidoporlacomitéqueestadesarollandoelnuevoPlanMaestrodelaReservaNacionalTambopata.

METODOLOGÍA

. En cada parcela monitoreada se buscaron individuos con un DAP>10. El DAP fue

medidodependiendodelaubicaciónylaestructuradelindividuo.Desdediciembrede2010alafechaestánsiendomonitoreadaslas20parcelas,locualpermiteestablecerunarelaciónentre la disponibilidad de recursos y el periodo de anidamiento de psitácidos en elTambopata Research Center. En total el numero de arboles monitoreados es 1320individuos.

Para hallar eventos de forrajeo, la metodología utilizada se realiza mediante una

actividadquedenominamosForragingwalk(caminatasdeforrajeo),endondeserecorrenlas trochasdeTRCcon la finalidadde tomarregistrode lasespeciesdeplantasqueestánsirviendodealimentoparalospsitácidos,asícomodeterminarquéparteesconsumidaporellos,como:botón,flor,frutoverde,frutomaduro.Estainformaciónesdegranvaloryaquenosbrindadatossobreladietadelospsitácidosenvidasilvestre.

RESULTADOSYDISCUSIÓNDe los 1320 arboles monitoreados, se representan 57 familias agrupadas en 160

géneros y 399 especies. Las 3 familias conmayor abundancia dentro de las 20 parcelas

18

evaluadas son: Arecaceae con 303 individuos, Euphorbiaceae con 117 individuos yFabaceaecon96individuos.

Sehanobtenido56eventosdepsitácidosconsumiendopartesdeplantas. Entreellos,lasfamiliasconmayorregistrodeeventosson:Fabáceas,conunregistrode12individuos,Arecaceas con 6 registros y Moráceas con 5 registros; así como otras familias que hantenidounregistromenorde3avistamientos.

Al comparar losdatosobtenidosacercade las familiasdeplantasprovenientesde losregistrosdeforrajeoconlasfamiliasquesemonitoreaenlasparcelas–esdecir:Fabáceas,Arecaceas, Moráceas, así como otras de menor proporción- se puede entender ladisponibilidad del bosque con las diferentes especies de psitácidos que se desarrollan enTRC.Acontinuación,sepresentalalistadeplantasidentificadasdesdediciembrede2010hastaelmomento,lascualesseencuentranalrededordeTRC:

Familia Genero EspecieNde

individuosAnacardiaceae Spondias venulosa 1Anacardiaceae Tapirira obtusa 2Annonaceae Guatteria sp. 1Annonaceae Oxandra acuminata 1Annonaceae Rollinia pittieri 2Annonaceae Rollinia sp. 1Annonaceae Ruizodendron ovale 2Annonaceae Unonopsis floribunda 6Annonaceae Unonopsis matthewsii 2Annonaceae Xylopia angustifolia 1Apocynaceae Aspidosperma nitidum 2Apocynaceae Himatanthus sucuuba 2Araliaceae Dendropanax arboreus 1Arecaceae Astrocaryum murumuru 5Arecaceae Euterpe precatoria 1Arecaceae Iriartea deltoidea 110Arecaceae Oenocarpus mapora 1Arecaceae Socratea exorrhiza 2Bombacaceae Pseudobombax septenatum 5Burseraceae Protium amazonicum 4Burseraceae Protium sp. 1Caricaceae Jacaratia digitata 3Cecropiaceae Cecropia sciadophylla 1Cecropiaceae Pourouma cecropiifolia 2Cecropiaceae Pourouma cucura 2Cecropiaceae Pourouma guianensis 1Cecropiaceae Pourouma minor 4

19

Cecropiaceae Pourouma sp. 1Celastraceae Maytenus ebenifolia 1Celastraceae Maytenus magnifolia 1Celastraceae Maytenus sp. 1Chrysobalanaceae Hirtella lightioides 1Chrysobalanaceae Licania briteniana 1Combretaceae Buchenavia macrophylla 1Combretaceae Terminalia oblonga 1Elaeocarpaceae Sloanea fragans 1Elaeocarpaceae Sloanea sinemariensis 3Elaeocarpaceae Sloanea sp. 1Euphorbiaceae Hura crepitans 1Euphorbiaceae Mabea maynensis 2Euphorbiaceae Richeria grandis 1Euphorbiaceae Sapium marmieri 3Fabaceae Dipteryx alata 1Fabaceae Erythrina ulei 2Fabaceae Inga chartacea 1Fabaceae Inga edulis 2Fabaceae Inga lallensis 1Fabaceae Inga ruiziana 2Fabaceae Lecointea peruviana 1Fabaceae Pterocarpus rohrii 1Fabaceae Swartzia arborescens 3Fabaceae Swartzia sp. 4Flacourtiaceae Casearia arborea 1Icacinaceae Calatola venezuelana 1Lauraceae Endlicheria formosa 4Lauraceae Nectandra reticulata 2Lauraceae Pleurothyrium parviflorum 3Lecythidaceae Eschweilera coriacea 3Lecythidaceae Gustavia longifolia 1Lecythidaceae Gustavia sp. 1Malvaceae Matisia ochrocalyx 2Malvaceae Matisia rhombifolia 6Malvaceae Matisia sp. 1Meliaceae Cabralea canjerana 1Meliaceae Guarea gomma 6Meliaceae Guarea guidonia 13Meliaceae Guarea kunthiana 5Meliaceae Guarea macrophylla 9

20

Meliaceae Guarea sp. 2Meliaceae Trichilia elegans 2Meliaceae Trichilia pleeana 4Meliaceae Trichilia rubra 2Meliaceae Trichilia solitudinis 8Moraceae Brosimum alicastrum 2Moraceae Brosimum guianense 1Moraceae Brosimum lactecens 1Moraceae Clarisia biflora 2Moraceae Ficus maxima 2Moraceae Maquira guianensis 1Moraceae Perebea guianensis 1Moraceae Poulsemia armata 3Moraceae Pseudolmedia laevis 4Moraceae Pseudolmedia sp. 1Moraceae Sorocea pileata 9Myristicaceae Iryanthera sp. 1Myristicaceae Otoba glycicarpa 3Myristicaceae Otoba parvifolia 42Myristicaceae Otoba sp. 1Myristicaceae Virola flexuosa 3Myristicaceae Virola sp. 1Myrtaceae Eugenia feijoi 1Nictaginaceae Guapira sp. 2Nictaginaceae Neea chlorantha 3Nictaginaceae Neea macrophylla 1Nictaginaceae Neea oppositifolia 1Olacaceae Minquartia guianensis 1Opiliaceae Agonandra brasiliensis 1Phytolacaceae Gallesia integrifolia 1Polygonaceae Triplaris poeppegiana 1Rubiaceae Faramea sp. 1Rubiaceae Warscewiczia coccinea 1Sapindaceae Allophylus pilosus 1Sapindaceae Allophylus scrobiculatus 1Sapindaceae Talisia ceracina 1Sapotaceae Pouteria durlandii 1Sapotaceae Pouteria gengilocarpa 1Sapotaceae Pouteria macrophylla 1Sapotaceae Pouteria procera 1Sapotaceae Pouteria reticulata 1

21

Sapotaceae Pouteria tarapotensis 1Sapotaceae Pouteria torta 4Sapotaceae Pouteria trilocularis 1Simaroubaceae Picramnia latifolia 1Siparunaceae Siparuna decipiens 1Staphylaceae Staphylea occidentalis 1Sterculiaceae Sterculia apetala 1Sterculiaceae Theobroma cacao 3Sterculiaceae Theobroma speciosum 1Tiliaceae Apeiba aspera 4Trigonaceae Trigonia duckei 1Ulmaceae Celtis schippii 5Violaceae Rinorea viridifolia 3

Indet.1 sp. 1Anacardiaceae Tapirira obtusa 1Annonaceae Axanagorea brevites 3Annonaceae Pseudoxandra polifleba 1Apocynaceae Aspidosperma nitidum 1Arecaceae Attalea phalerata 1Arecaceae Euterpe precatoria 35Arecaceae Iriartea deltoidea 2Arecaceae Mauritia flexuosa 60Arecaceae Oenocarpus bataua 3Burseraceae Protium neglectum 3Capparidaceae Capparis macrophylla 2Cecropiaceae Pourouma cucura 1Cecropiaceae Pourouma mollis 1Chrysobalanaceae Licania coriacea 4Elaeocarpaceae Sloanea fragans 1Euphorbiaceae Alchornea triplinervis 1Euphorbiaceae Hevea brasiliensis 2Euphorbiaceae Hyeronima oblonga 3Euphorbiaceae Mabea maynensis 1Euphorbiaceae Nealchornea yapurensis 1Euphorbiaceae Senefeldera inclinata 1Fabaceae Inga pezizifera 1Fabaceae semialada 1Fabaceae Pterocarpus rohrii 1Fabaceae Zigia corymbosa 1Guttiferaceae Marila laxiflora 1Hippocrataceae Cheiloclinium cognatum 1

22

Lauraceae Nectandra pulverulenta 1Lecythidaceae Eschweilera coriacea 1Linaceae Roucheria punctatum 2Malpighiaceae Byrsonima poepiggi 1Malvaceae Eriotheca globosa 1Malvaceae Lueheopsis rosea 16Melastomataceae Miconia aurea 1Melastomataceae Miconia triplinervis 2Meliaceae Cabralea canjerana 1Meliaceae Guarea xylopioides 1Meliaceae Trichilia poeppigii 1Moraceae Brosimum guianense 1Moraceae Ficus citrifolia 1Myristicaceae Iryanthera juruensis 3Myristicaceae Virola sebifera 1Sapotaceae Manilkara bidentata 1Sapotaceae Pouteria procera 2Simaroubaceae Simara paraensis 1Tiliaceae Apeiba aspera 1Anacardiaceae Spondias mombin 2Annonaceae Guatteria acutissima 4Annonaceae Guatteria boliviana 3Annonaceae Porcelia nitidifolia 10Annonaceae Rollinia pittieri 2Apocynaceae Tabernaemontana heterophylla 3Apocynaceae Tabernaemontana sp. 1Araliaceae Schefflera morototoni 1Arecaceae Astrocaryum murumuru 19Arecaceae Bactris gasipaes 1Arecaceae Socratea exorrhiza 41Bignonaceae Jacaranda copaia 2Bombacaceae Pseudobombax septenatum 1Boraginaceae Cordia alliodora 4Burseraceae Protium amazonicum 3Capparidaceae Capparis macrophylla 1Cecropiaceae Cecropia distachya 1Cecropiaceae Pourouma minor 24Cecropiaceae Pourouma sp. 1Combretaceae Terminalia oblonga 6Elaeocarpaceae Sloanea guianensis 1Euphorbiaceae Alchornea triplinervis 2

23

Euphorbiaceae Hura crepitans 1Euphorbiaceae Mabea maynensis 1Euphorbiaceae Sapium aereum 13Euphorbiaceae Sapium eglandulosum 1Euphorbiaceae Sapium glandulosum 1Euphorbiaceae Sapium ixiamasense 3Euphorbiaceae Sapium marmieri 7Fabaceae Acacia loretensis 4Fabaceae Andira inermis 1Fabaceae Erythrina ulei 24Fabaceae 1Fabaceae Inga alata 1Fabaceae Inga aliena 1Fabaceae Inga cinnamamea 1Fabaceae Inga edulis 1Fabaceae Pterocarpus rohrii 1Fabaceae Zigia corymbosa 1Flacourtiaceae Casearia decandra 3Flacourtiaceae Casearia ulmifolia 2Lauraceae Endlicheria formosa 3Lauraceae Nectandra longifolia 1Lauraceae Nectandra reticulata 4Lauraceae Pleurothyrium poepiggi 3Malvaceae Ceiba pentandra 1Malvaceae Ceiba sp. 1Malvaceae Matisia rhombifolia 2Melastomataceae Miconia calvecens 1Meliaceae Guarea guidonia 6Meliaceae Trichilia septentrionalis 1Moraceae Clarisia biflora 4Moraceae Clarisia racemosa 1Moraceae Ficus aspera 1Moraceae Ficus insipida 9Moraceae Ficus maxima 2Moraceae Maclura tingtoria 1Myristicaceae Otoba parvifolia 3Myristicaceae Virola calophylla 17Myristicaceae Virola sebifera 3Myrtaceae Eugenia uniflora 1Piperaceae Piper pseudoarboreum 1Piperaceae Piper sp. 1

24

Polygonaceae Triplaris americana 33Rubiaceae Alibertia sp. 3Rubiaceae Macrocnemum roseum 1Rutaceae Zanthoxylum kellermanii 1Sapindaceae Allophylus scrobiculatus 2Sapindaceae Talisia mollis 1Sterculiaceae Guazuma ulmifolia 4Sterculiaceae Sterculia apetala 1Urticaceae Urera caracasana 5Verbernaceae Citharexylum poepiggi 1

Indet.1 Anacardiaceae Astronium graveolens 1Annonaceae Cremastosperma sp. 3Annonaceae Guatteria tomentosa 1Annonaceae Guatteria guenteri 1Annonaceae Oxandra sp. 1Annonaceae Rollinia pittieri 1Annonaceae Rollinia sp. 2Apocynaceae Aspidosperma nitidum 2Apocynaceae Aspidosperma rigidum 3Apocynaceae Aspidosperma vargasii 1Apocynaceae Himatanthus sucuuba 5Apocynaceae Tabernaemontana heterophylla 1Apocynaceae Tabernaemontana psychotrifolia 7Apocynaceae Tabernaemontana sp. 1Araliaceae Dendropanax arboreus 4Araliaceae Schefflera morototoni 4Arecaceae Bactris gasipaes 1Arecaceae Iriartea deltoidea 6Arecaceae Socratea exorrhiza 15Bignonaceae Jacaranda copaia 1Bignonaceae Jacaranda copaiasubsp.spectabilis 1Bignonaceae Sparattosperma leucanthum 3Bombacaceae Bombacoccix sp. 1Bombacaceae Huberodendron swietenioides 6Bombacaceae Pseudobombax septenatum 4Boraginaceae Cordia ucayalina 3Burseraceae Protium sp. 1Burseraceae Tetragastris panamensis 4Burseraceae Tetragastris sp. 1Burseraceae Trattinnickia aspera 1

25

Burseraceae Trattinnickia rhoifoliavar.lancifolia 1Cecropiaceae Cecropia sciadophylla 1Cecropiaceae Pourouma cucura 4Cecropiaceae Pourouma guianensis 8Cecropiaceae Pourouma minor 8Cecropiaceae Pourouma mollis 2Cecropiaceae Pourouma sp. 3Cecropiaceae Pourouma tomentosa 3Chrysobalanaceae Hirtella excelsa 3Chrysobalanaceae Licania briteniana 1Chrysobalanaceae Licania tambopatensis 1Chrysobalanaceae Licania triandra 1Combretaceae Buchenavia macrophylla 1Ebenaceae Diospyros poeppigiana 1Elaeocarpaceae Sloanea terniflora 2Euphorbiaceae Alchornea triplinervis 1Euphorbiaceae Conceveiba ritidocarpa 1Euphorbiaceae Croton lechleri 1Euphorbiaceae Drypetes gentryi 1Euphorbiaceae Glycidendron amazonicum 1Euphorbiaceae Hevea brasiliensis 8Euphorbiaceae Mabea maynensis 22Euphorbiaceae Mabea sp. 1Euphorbiaceae Nealchornea yapurensis 7Euphorbiaceae Pausandra trianae 1Euphorbiaceae Sapium ixiamasense 1Euphorbiaceae Senefeldera inclinata 27Fabaceae Cedrelinga catenaeformis 1Fabaceae Copaifera reticulata 3Fabaceae Dialium guianense 2Fabaceae Dipteryx micrantha 1Fabaceae Enterolobium schomburgkii 1Fabaceae Erythrina ulei 5Fabaceae Hymenaea courbaril 1Fabaceae Hymenaea sp. 1Fabaceae Inga alba 1Fabaceae Inga auristellae 1Fabaceae Inga coriacea 1Fabaceae Inga edulis 1Fabaceae Inga puctatum 1Fabaceae Inga sapindoides 1

26

Fabaceae Inga sp. 2Fabaceae Inga stipularis 1Fabaceae Lonchocarpus neuroescapha 1Fabaceae Lonchocarpus sp. 5Fabaceae Pterocarpus rohrii 1Fabaceae Swartzia sp. 3Fabaceae Swartzia tomentifera 1Fabaceae Tachigali vazquezii 1Fabaceae Vatairea fusca 1Fabaceae Zigia corymbosa 1Flacourtiaceae Casearia ulmifolia 4Lauraceae Endlicheria formosa 1Lauraceae Endlicheria williamsii 2Lauraceae Nectandra reticulata 1Lauraceae Ocotea camphomoroia 4Lauraceae Ocotea longifolia 1Lauraceae Ocotea tessmanni 1Lauraceae Pleurothyrium Lauraceae Pleurothyrium parviflorum 1Lauraceae Rodostemonodaphne kunthiana 1Lecythidaceae Cariniana integrifolia 2Lecythidaceae Couratari guianensis 1Lecythidaceae Eschweilera andina 9Lecythidaceae Eschweilera coriacea 3Lecythidaceae Grias neuberthii 1Malvaceae Matisia malacocalyx 16Malvaceae Matisia sp. 1Melastomataceae Miconia bubalina 1Melastomataceae Miconia triplinervis 1Meliaceae Cabralea canjerana 3Meliaceae Cabralea canjeranasubsp.canjerana 2Meliaceae Cedrela fissilis 2Meliaceae Guarea ecuadoriensis 1Meliaceae Guarea gomma 4Meliaceae Guarea kunthiana 1Meliaceae Guarea macrophylla 1Meliaceae Trichilia poeppigii 1Moraceae Brosimum acutifoliumsubsp.obovatum 1Moraceae Brosimum rubescens 2Moraceae Clarisia biflora 1Moraceae Helicostylis tomentosa 2

27

Moraceae Perebea mollis 1Moraceae Perebea mollissubsp.Lecithogalacta 1Moraceae Perebea tessmannii 4Moraceae Pseudolmedia laevigata 2Moraceae Pseudolmedia laevis 2Moraceae Pseudolmedia macrophylla 6Moraceae Pseudolmedia sp. 1Myristicaceae Iryanthera olacoides 7Myristicaceae Virola calophylla 1Myristicaceae Virola sebifera 4Myrtaceae Eugenia sp. 1Myrtaceae Myrcia sp. 1Nictaginaceae Guapira sp. 7Nictaginaceae Neea oppositifolia 2Nictaginaceae Neea sp. 1Olacaceae Aptandra tubecina 1Olacaceae Minquartia guianensis 4Opiliaceae Agonandra brasiliensis 2Polygonaceae Coccoloba colombiana 1Rubiaceae Amaioua corymbosa 1Rubiaceae Capirona decorticans 2Rubiaceae Rariteva sp. 1Rutaceae Metrodorea flavida 3Sabiaceae Meliosma loretoyacuensis 1Sapotaceae Ecclinusa lanceolata 2Sapotaceae Manilkara bidentata 1Sapotaceae Micropholis egensis 5Sapotaceae Pouteria paridum 1Sapotaceae Pouteria parydi 2Sapotaceae Pouteria procera 4Sapotaceae Pouteria sp. 1Sapotaceae Pouteria tarapotensis 2Sapotaceae Pouteria torta 1Simaroubaceae Simara paraensis 1Siparunaceae Siparuna crassifolia 1Siparunaceae Siparuna decipiens 1Siparunaceae Siparuna sp. 1Sterculiaceae Theobroma speciosum 2Violaceae Leonia crassa 2Violaceae Rinoreocarpus sp. 1Violaceae Rinoreocarpus ulei 3

28

Vitaceae Vitex simulosa 1Vitaceae Vitex triflora 1Vochysiaceae Qualea grandiflora 1

29

Listademuestrasextraídas

30

AGRADECIMIENTOS

ElProyectoGuacamayoagradeceatodoslosasistentesquebrindaronsuapoyoalolargodeladuracióndelaAutorizaciónNo030-2009-SERNANP-DGANP-JEFylaautorizaciónNo006-2009-SERNANP-DGANP-PNBS, especialmente a los ayudantes voluntarios listados en elAnexo 1, quienes gracias a sus largas horas de trabajo, su gran esfuerzo y dedicaciónayudaronarecopilarunavastacantidaddedatosimportantesparaelavancedelaciencia.Asítambién,elProyectodeseaagradeceraCrisselVargas,porsueficientetrabajo.

SeagradecetambiénalSchubotExoticBirdHealthCenterdeTexasA&MUniversity,el

Earthwatch Institute,Wildlife Protection Foundation, Rainforest Expeditions, Janice BoyddeAmigosdelasAvesUSAyParrotConservationFundquienesfinanciannuestrotrabajo.Seagradecealgrupodecolaboradoresdeltrabajodetelemetría:RobinBjork,DavidWaugh,Greg Matuzak, Roan McNab, Rony García, Fundación Loro Parque, Wildlife ConservationSociety,TelonicsyNorthstarScienceandTechnology.

IgualmenteagradecemosprofundamentealpersonaldeSERNANP-PuertoMaldonado

porsuapoyoenelpresenteestudio.

31

BIBLIOGRAFÍAAbramson,J.,B.L.Spear,andJ.B.Thomsen.1995.TheLargeMacaws:TheirCare,Breeding

andConservation.RaintreePublications,Ft.Bragg,CA.Adler,G.H., andK.A.Kielpinski. 2000.Reproductivephenologyof a tropical canopy tree,

Spondiasmombin.Biotropica32:686-692.Arms,K.,P.Fenney,andR.C.Lederhouse.1974.Sodium:stimulusforpuddlingbehaviorby

tigerswallowtailbutterflies,Papilioglaucus.Science185.Beissinger, S. R., and N. F. R. Snyder. 1992. New World Parrots In Crisis. Smithsonian

InstitutionPress,Washington,D.C.Bennett,P.M.,andI.P.F.Owens.1997.Variationinextinctionriskamongbirds:chanceor

evolutionary predisposition? Proceedings of the Royal Society of London B.264:401-408.

Renton,K.(2002)."Seasonalvariationinoccurrenceofmacawsalongarainforestriver."JournalofFieldOrnithology73(1):15-19.

Birdlife International. 2006. Data zone. Accessed: 15 August 2006.http://www.birdlife.org/datazone/species/index.html

Bjork, R. 2004. Delineating patterns and process in tropical lowlands: Mealy Parrotmigration dynamics as a guide for regional conservation planning. Ph.D. OregonStateUniversity.

Brightsmith,D. J.2004.Effectsofweatheronaviangeophagy inTambopata,Peru.WilsonBulletin116:134-145.

Brightsmith,D.J.2005.ParrotnestinginsoutheasternPeru:seasonalpatternsandkeystonetrees.WilsonBulletin117:296-305.

Brightsmith, D. J., and R. Aramburú. 2004. Avian geophagy and soil characteristics insoutheasternPeru.Biotropica36:534-543.

Brightsmith, D. J., J. Hilburn, A. Del Campo, J. Boyd,M. Frisius, R. Frisius, D. Janik, and F.Guillén.2005.Theuseofhand-raisedPsittacinesforreintroduction:acasestudyofscarlet macaws (Ara macao) in Peru and Costa Rica. Biological Conservation121:465-472.

Brightsmith,D.J.2006.Thepsittacineyear:whatdrivesannualcyclesinTambopata'sparrots?Pages44-53.ProceedingsoftheVIInternationalParrotConvention,PuertodelaCruz,Tenerife,Spain.

Brightsmith,D.J.,andJ.Boyd.2006.TestingsatellitetelemetrytagsforpsittacinesinTambopata,Peru.Page12.SchubotExoticAvianHealthCenter,TexasA&MUniversity,CollegeStation,Texas.

Burger,J.,andM.Gochfeld.2003.ParrotbehaviorataRioManu(Peru)claylick:temporalpatterns,associations,andantipredatorresponses.ActaEthologica6:23-34.

Casagrande, D. G., and S. R. Beissinger. 1997. Evaluation of four methods for estimatingparrotpopulationsize.Condor99:445-457.

Clubb, K. J., D. Skidmore, R. M. Shubot, and L. S. Clubb. 1992. Growth Rates of HandfedPsittacine Chicks.in R. M. Shubot, K. J. Clubb, and S. L. Clubb, editors. PsitacineAviculture-Perspective,tecniquesandResearch.AviculturalBredingandResearchCenter,Florida.

Collar,N.J.1997.FamilyPsittacidae.Pages280-479 in J.d.Hoyo,A.Elliott,andJ.Sargatal,editors.HandbookoftheBirdsoftheWorld.LynxEdicions,Barcelona,Spain.

Croat,T.B.1975.PhenologicalbehavioronBarroColoradoIsland.Biotropica7:270-277.Dunning,J.B.1993.CRChandbookofavianbodymasses.CRCPress,London.

32

Emmons, L. H. 1984. Geographic variation in densities and diversities of non-flyingmammalsinAmazonia.Biotropica16:210-222.

Emmons, L. H., andN.M. Stark. 1979. Elemental composition of a naturalmineral lick inAmazonia.Biotropica11:311-313.

Forshaw,J.M.1989.Parrotsoftheworld.Thirdedition.LandsdowneEditions,Melbourne,Australia.

Foster, R. B., T. Parker, A, A. H. Gentry, L. H. Emmons, A. Chicchón, T. Schulenberg, L.Rodríguez,G.Larnas,H.Ortega,J.Icochea,W.Wust,M.Romo,C.J.Alban,O.Phillips,C. Reynel, A. Kratter, P. K. Donahue, and L. J. Barkley. 1994. The Tambopata-Candamo Reserved Zone of southeastern Peru: a biological assessment. RAPworkingpapers6.,ConservationInternational,Washington,D.C.

Frankie,G.W.,H.G.Baker,andP.A.Opler.1974.Comparitivephenlogicalstudiesoftreesintropical wet and dry forests in the lowlands of Costa Rica. Journal of Ecology62:881-919.

Forshaw,J.M.(1989).ParrotsoftheWorld.Melbourne,Australia,LandsdowneEditions.Gentry, A.H. 1988. Tree species richness of upperAmazonian forests. Proceedings of the

NationalAcademyofScience.USA85:156-159.Gilardi,J.D.,S.S.Duffey,C.A.Munn,andL.A.Tell.1999.Biochemicalfunctionsofgeophagy

in parrots: detoxification of dietary toxins and cytoprotective effects. Journal ofChemicalEcology25:897-922.

Griscom, B. W., and P. M. S. Ashton. 2003. Bamboo control of forest succession: GuaduasarcocarpainsoutheasternPeru.ForestEcologyandManagement175:445-454.

Holdo, R.M., J. P. Dudley, and L. R.McDowell. 2002. Geophagy in the African elephant inrelationtoavailabilityofdietarysodium.JounalofMammalogy83:652-664.

Iñigo-Elias,E.E.(1996).EcologyandbreedingbiologyoftheScarletMacaw(Aramacao)intheUsumacintadrainagebasinofMexicoandGuatemala.Gainesville,FL,UniversityofFlorida:117.

Juniper,T. andM.Parr (1998).Parrots: a guide toparrotsof theworld.NewHaven,YaleUniversityPress.

Karubian, J., J.Fabara,D.Yunes, J.P. Jorgenson,D.Romo,andT.B.Smith.2005.Temporaland spatial patterns of macaw abundance in the Ecuadorian Amazon. Condor107:617-626.

Lack,D.1968.Ecologicaladaptationsforbreedinginbirds.Methuen,London.Lugo,A.E.,andJ.L.Frangi.1993.FruitfallintheLuquilloExperimentalForest,PuertoRico.

Biotropica25:73-84.Marsden,S.J.1999.Estimationofparrotandhornbilldensitiesusingapointcountdistance

samplingmethod.Ibis141:377-390.Marsden,S.J.,andA.Fielding.1999.HabitatassociationsofparrotsontheWallaceanislands

ofBuru,Seram,andSumba.JournalofBiogeography26:439-446.Marsden,S.J.,M.Whiffin,L.Sadgrove,andP.G.Jr.2000.Parrotpopulationsandhabitatuse

in and around two Brazilian Atlantic forest reserves. Biological Conservation96:209-217.

Masello, J. F., M. L. Pagnossin, C. Sommer, and P. Quillfeldt. 2006. Population size,provisioningfrequency,flocksizeandforagingrangeatthelargestknowncolonyofPsittaciformes:theBurrowingParrotsofthenorth-easternPatagoniancoastalcliffs.Emu106:69-79.

Masello, J.F.,andP.Quillfeldt.2002.Chickgrowthandbreedingsuccessof theburrowingparrot.Condor104:574-586.

33

MatuzakandBrightsmith.2007.RoostingofYellow-napedParrotsinCostaRica:estimatingthe size and recruitment of threatened populations. J. Field Ornithol. 78(2): 159-169.

Montambault,J.R.2002.InformesdelasevaluacionesbiológicasdePampasdelHeath,Perú,AltoMadidi,Bolivia,yPando,Bolivia.,ConservationInternational.,Washington,D.C.

Munn,C.A.(1991)."Tropicalcanopynettingandshooting linesovertall trees." JournalofFieldOrnithology62:454-463.

Myers,M.C.,andC.Vaughan.2004.MovementandbehaviorofScarletMacaws(Aramacao)during thepost-fledgingdependenceperiod: implications for insituversusexsitumanagement.BiologicalConservation118:441-420.

Nettleship, D. N. 1972. Breeding success of the Common Puffin (Fratercula arctica L.) ondifferenthabitats atGreat Island,Newfoundland.Ecologicalmonographys42:239-268.

Nycander, E., D. H. Blanco, K. M. Holle, A. d. Campo, C. A. Munn, J. I. Moscoso, and D. G.Ricalde.1995.ManuandTambopata:nestingsuccessandtechniquesforincreasingreproduction inwildmacaws insoutheasternPeru.Pages423-443 in J.Abramson,B.L.Spear,andJ.B.Thomsen,editors.The largemacaws: theircare,breedingandconservation.RaintreePublications,Ft.Bragg,CA.

O´Connor,R.J.(1984).Thegrowthanddevelopmentofbirds.NewYork:Wiley.Phillips, A., and L. S. Clubb. 2002. Psittacine Neonatal Development.in R. M. Shubot, K. J.

Clubb, and S. L. Clubb, editors. Psitacine Aviculture - Perspective, tecniques andResearch.AviculturalBredingandResearchCenter,Floris.

Powell, G., P. Wright, U. Aleman, C. Guindon, S. Palminteri, and R. Bjork. 1999. Researchfindings and conservation recommendations for the Great Green Macaw (Araambigua) in Costa Rica. Accessed:http://www.lapaverde.or.cr/lapa/lapa_resultados_en.htm

Powell, G. V. N., and R. Bjork. 1995. Implications of intratropical migration on reservedesign: a case study using Pharomachrus mocinno. Conservation Biology 9:354 -362.

Powell, G. V. N., and R. Bjork. 2004. Habitat linkages and the conservation of tropicalbiodiversity as indicated by seasonal migrations of Three-Wattled Bellbirds.ConservationBiology18:500-509.

Räsänen, M. W., and A. M. Linna. 1995. Late Miocene tidal deposits in the Amazonianforelandbasin.Science269:386-390.

Räsänen,M.W.,andJ.S.Salo.1990.EvolutionofthewesternAmazonlowlandrelief:impactofAndeanforelanddynamics.TerraNova2:320-332.

Renton,K.2001.Lilac-crownedparrotdietandfoodresourceavailability:resourcetrackingbyaparrotseedpredator.Condor103:62-69.

Renton, K. 2002. Seasonal variation in occurrence of macaws along a rainforest river.JournalofFieldOrnithology73:15-19.

Renton, K. 2006. Diet of adult and nestling Scarlet Macaws in Southwest Belize, CentralAmerica.Biotropica38:280-283.

Rickels,R.(1973)."PatternsofgrowthinbirdsII.Growthrateandmodeofdevelopment."Ibis115:177-201.Ricklefs,R.E. (1967). "Agraphicalmethodsof fittingequaciontogrowthcurves".Ecology

48(6):978-983.Ricklefs,R.E.(1968)."Patternsofgrowthinbirds."TheIbis110(4):419-451.Riveros, J. C. (1999). Crecimiento y desarrollo postnatal del Pinguino del Humbolt

Spheniscushumboldti (Meyen,1834).BiologiaLima,UniversidadNacionalAgrariaLaMolina.Biologo:72.

34

Roth,P.1984.RepartiçãodohabitatentrepsitacídeossimpátricosnosuldaAmazônia.ActaAmazonica14:175-221.

Salcedo, J. C. R. (1999). Crecimiento y desarrollo postnatal del Pinguino del HumboltSpheniscus humboldti (Meyen,1834). Biología Lima, UniversidadNacional AgrariaLaMolina.Biologo:72.

Sanz,V.,andA.Rodríquez-Ferraro.2006.ReproductiveparametersandproductivityoftheYellow-shouldered Parrot on Margarita Isalnd, Venezuela: a long-term study.Condor108:178-192.

Smedley,S.R.,andT.Eisner.1996.Sodium:amalemoth'sgifttoitsoffspring.ProceedingsoftheNationalAcademyofScience.USA93:809-813.

Snyder, N. F. R., P. Mc Gowan, J. Gilardi, and A. Grajal. 2000. Parrots. Status survey andconservationactionplan2000-2004.IUCN,Gland,SwitzerlandandCambridge,UK.

Terborgh, J., J.W. Fitzpatrick, and L. H. Emmons. 1984. Annotated checklist of birds andmammals species of Cocha Cashu Biological Station, Manu National Park, Peru.Fieldiana(Zoology,NewSeries)21:1-29.

Terborgh, J., S. K. Robinson, T. A. P. III, C. A.Munn, andN. Pierpont. 1990. Structure andorganization of an Amazonian forest bird community. Ecological Monographs60:213-238.

Tosi, J. A. 1960. Zonas de vida natural en el Perú. Memoria explicativa. sobre el mapaecológico del Perú. Instituto Interamericano de las Ciencias Agricolas de laOrganizacióndelosEstadosAmericanos.

van Schaik, C. P., J. Terborgh, and S. J. Wright. 1993. The phenology of tropical forests:adaptive significance and consequences forprimary consumers.AnnualReviewofEcologyandSystematics24:353-377.

Wiley, A. S., and S. H. Katz. 1998. Geophagy in pregnancy: a test of a hypothesis. CurrentAnthropology39:532-545.

Wiedenfeld, D. A. (1994). "A new subspecies of Scarlet Macaw and its status andconservation".OrnitologiaNeotropical5:99-104.

Williams, M. (2001). Variacion en parametros de crecimiento en pollos de carne condiferentesdensidadesenergeticasenladieta.Nutricion.LimaUniversidadNacionalAgrariaLaMolina.

Zhang, S. Y., and L. X. Wang. 1995. Comparison of three fruit census methods in FrenchGuiana.JournalofTropicalEcology11:281-294.