REPÚBLICA DE CUBA
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Instructivo Técnico
Fase de Aclimatización de Bananos y Viandas
Enero, 2018
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Indice
I-Introducción-----------------------------------------------------------------------------------------------------3
II- Fase IV Aclimatización o Endurecimiento Ex vitro ----------------------------------------------- -3 -6
II-1-Calidad de las vitroplantas para Aclimatizar ----------------------------------------------------------- 6
II-2-Sustratos para la siembra de vitroplanta------------------------------------------------------------- 7-8
II-2-a-Calidad del sustrato---------------------------------------------------------------------------------------9
II-3-Fertilización---------------------------------------------------------------------------------------------------9
II-4-Riego -----------------------------------------------------------------------------------------------------9-10
II-5- Luz --------------------------------------------------------------------------------------------------------- 10
II-6-Plantación--------------------------------------------------------------------------------------------- 11 - 12
II-7-Labores de agrotécnicas-----------------------------------------------------------------------------12 -15
II-8-Selección Negativa----------------------------------------------------------------------------------- 15- 17
II-9-Protección Fitosanitaria------------------------------------------------------------------------------ 17- 18
II-9-a-Plagas ---------------------------------------------------------------------------------------------- 18 - 21
II-9-b-Enfermedades ------------------------------------------------------------------------------------ 21 – 24
II-10-Duración del Ciclo Biológico---------------------------------------------------------------------------- 24
III-Comercialización-------------------------------------------------------------------------------------------25
IV-Referencias bibliográficas -------------------------------------------------------------------------------- 26
Nota: No es un Instructivo terminado, sino que debe ser enriquecido y perfeccionado en el tiempo, siempre teniendo en cuenta los criterios de los Institutos de Investigaciones, Especialistas de la Empresa Productora y Comercializadora de Semilla y Biofábricas.
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I- Introducción
La micropropagación en Cuba a escala comercial comenzó en el año 1987 con la
inaguración de la Biofábrica Villa Clara el 4 de septiembre, la primera de la red de
Biofábricas pertenecientes a la Empresa de Semillas,se inició la Micropropagación por vía
organogénesis, comenzando con plátanos y bananos luego se fueron incorporando otras
especies; También en los ultimos años se trabaja por la vía de la embriogénesis somática
con el apoyo del Instituto de Biotecnología de las Plantas(IBP).Las Biofábricas tienen el
dominio tecnológico y el capital humano para realizar el proceso de organogénesis de
forma completa, mientras en el caso de la embriogénesis el proceso es realizado en sus
primeras fases por el IBP, el cual entrega a las Biofábrica embriones maduros para ser
llevados a plantas enraizadas y luego aclimatizadas. La Micropropagación es el método
ideal para la produción de semilla agamica de categoria, pues en las Biofábricas
obtenemos semillas básicas de los diferentes cultivares micropropagados, lo que
repercute en el buen estado fisilógico y fitosanitario de las plantaciones en campo asi
como en el rendimiento potencial a obtener.
El IBP entrega a las Biofábricas embriones maduros para ser llevados a Germinación,
Crecimientos y de ahí a la fase de Aclimatización.Tanto las vitroplantas producidas por
organogénesis somática como por embriogénesis somática tienen que ser aclimatizadas
para llevarlas a las condiciones de campo.
El objetivo de este instructivo es dar las herramientas necesarias para lograr aclimatizar
vitroplantas de plátano, banano, malanga y otras viandas con la calidad requerida para
dar respuesta a los programas de desarrollo de nuestra agricultura.
II- Aclimatización o Endurecimiento ex vitro.
La fase de Aclimatización (comúnmente llamada fase de adaptación) es la etapa final del
proceso de la micropropagación de ahí que sea trascendental para la propagación
comercial de plantas. De su éxito dependerá en gran medida la eficiencia total del proceso
seguido durante la micropropagación in vitro.
Esta es la fase que garantiza la adaptación de la vitroplanta al medioambiente externo
antes de ser llevada a la condición de campo abierto. Para lograr un adecuado
desarrollo en esta etapa la vitroplanta no debe haber sufrido ningún estrés en la
fase anterior que comprometa su desarrollo en esta importante fase.
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Las plantas producidas en condiciones in vitro presentan la cutícula poco desarrollada,
debido a la alta humedad relativa presente en el recipiente de cultivo( 90 – 100 %), lo que
provoca una excesiva pérdida de agua post-trasplante, las hojas son delgadas, blandas y
fotosintéticamente poco activas, presentando pocas y pequeñas células de parénquima
empalizada, con baja eficiencia en el uso de la luz y con grandes espacios en el mesófilo;
los estomas no operan adecuadamente, siendo la causa de la mayor pérdida de agua
durante las primeras etapas posteriores al trasplante, a su vez, existe una deficiente
conducción vascular lo cual reduce drásticamente la conducción del agua. Las raíces son
poco funcionales, presentando una epidermis no suberificada con muy pocos pelos
radicales, las cuales generalmente mueren y deben ser nuevamente regeneradas.
Lo fundamental en esta etapa es que las plantas formen un buen sistema radical, debido
a que su nutrición dependerá durante mucho tiempo y en gran parte de la efectividad de
sus raíces. Este periodo es crucial en la vida de las plantas, para evitar que se produzcan
situaciones de estrés en plantas que inician su desarrollo, cuyos efectos podrían no ser
observables hasta que el individuo no alcance la fase adulta.
Diversas técnicas y procedimientos han sido aplicados a las plantas obtenidas in vitro
para lograr su aclimatización, dentro de las que podemos citar los umbráculos, casa de
cultivos con regulación de la intensidad luminosa (esta es la más adecuada porque se
puede variar la intensidad luminosa en la etapa final del proceso de Aclimatización); así
como diferentes tipos de riego, con regadera, manguera, microjet, Nebulizadores etc. Las
técnicas más eficaces en la aclimatización son las que van encaminadas a lograr
gradualmente menos humedad relativa, más luz, crecimiento autotrófico y un medio
séptico.
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Siembra en bandejas Siembra en bolsa Riego manual con manguera Riego con microjet terrestre Casa de cultivo con regulación de sombra Umbráculo sin regulación de sombra.
Casas de posturas que pueden ser empleadas en la aclimatización de vitroplantas, donde se puede regular la sombra con sarán como una alternativa más de este proceso.
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Dependiendo de las condiciones existentes en el campo donde se plantarán las
vitroplantas endurecidas, estas pueden recibir un manejo diferenciado durante esta fase.
Cuando el sistema de riego es por goteo se requerirá de una vitroplanta de mayor
tamaño, con raíces más profundas para que entren en contacto de inmediato con el agua
de riego, esto se logra con la bolsa de mayor tamaño, bolsa que mide 20 x 12 cm y
contiene 700 gramos de sustrato, utilizadas para plátanos y bananos. Cuando en campo
se utiliza otros sistemas de riego para plátano, bananos, malanga y otras especies de
raíces y tubérculos las vitroplantas se plantarán para aclimatizar en bolsas de 10 x 12 cm,
con 350 gramos de sustrato. Las bandejas solo se emplearán para las plantas
pequeñas que no cumplan con los parámetros de calidad ya sean provenientes de
organogénesis o embriogénesis somática y para plantas que se quieren recuperar
porque han sido rechazadas por contaminación del medio de cultivo en el proceso.
II-1-Calidad de las vitroplantas para Aclimatizar. Las vitroplantas para ser llevadas a la fase de aclimatización deben cumplir ciertos
parámetros de calidad como son:
-Número de hojas: De 2 a 3 hojas formadas para plátano, bananos, malanga, yuca. En el
caso de Ñame y boniato de 3 a 4.
-Altura de la planta: De 3 a 5 cm (desde la base hasta el punto de inserción de la última
hoja completamente desarrollada) en plátanos, bananos, ñame, yuca. Mientras que en
malanga es ≥ 1,5 cm.
-Número de raíces: Más de 3 raíces para todos los cultivares mencionados.
-Coloración y vigor: buen vigor y desarrollo, con coloración de verde a verde claro según
las características de los cultivares.
-Grosor del seudotallo: ≥ 0,4 cm en plátano, bananos, malanga. En yuca, boniato y ñame
es inferior.
Vitroplantas de banano con tamaño óptimo para
la Aclimatización.
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II-2-Sustratos para la “siembra” de vitroplantas.
Como sustrato durante la fase de aclimatización debe emplearse un producto que
presente como características fundamentales:
Una adecuada condición física que permita el intercambio de aire.
Contenido de materia orgánica inerte entre 35% - 80 %.
Buena capacidad de retención de agua.
Estar libre de agentes dañinos como nematodos, bacterias y hongos patógenos
para los cultivos que se pretenden adaptar (plátano, malanga, boniato, yuca, ñame,
etc.)
Libre de semillas de plantas de otras especies.
pH alrededor de la neutralidad.
Relación carbono / nitrógeno entre 14 y 20.
Entre los compuestos más adecuados para ser empleados como sustratos en la
aclimatización de vitroplantas se utilizan el compost elaborado a partir de residuos
derivados de la caña de azúcar (paja seca y cachaza), humus de lombriz, materia
orgánica proveniente de distintas fuentes (vacuno, equino, caprino, etc.) y con cierto
grado de descomposición donde el PH se encuentre cercano a la neutralidad; La fibra de
coco, paja de arroz y vermiculita(es un silicato de aluminio, hierro y magnesio)
se emplean para mezclas con los diferentes sustratos si la especie a endurecer lo
requiere( ñame y yuca). En caso de que estos compuestos sean mezclados con suelo en
proporciones variables este debe ser desinfestado con formol al 5 % y habérsele realizada
previamente el análisis de nemato fauna completa. La vermiculita no se puede incluir en el
sustrato en más de un 15 %, por encima de esto tiende a afectar la estructura física del
sustrato. Cuando se utiliza un sustrato de origen animal debe tenerse en cuenta que no
posea herbicidas residuales. La ceniza no es muy recomendable porque tiende a
compactar el sustrato. El humus de lombriz solo se emplea en mezcla con otros
componentes y no puede exceder del 40 al 50% en la composición del sustrato.
En la aclimatización de plátanos, bananos, malanga, yuca, ñame, boniato suele
emplearse con eficacia compost 100 %, en el caso de la yuca y ñame la mezcla con
vermiculita al 15% evita el exceso de humedad en el sustrato y la muerte de las
vitroplantas por pudriciones en los primeros 15 días.
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Sustrato tamizado
Para la “siembra” en bandejas es necesario tamizar el sustrato, ya que en bandeja solo se
debe sembrar las plantas que no cumplen los parámetros de calidad requeridos para
esta fase ya sean procedente de embriogénesis u organogénesis, o vitroplantas que se
quieren recuperar del material contaminado en la fase precedente a la aclimatización. En
la siembra en bolsa no se tamiza el sustrato y las vitroplantas se desarrollan sin dificultad,
solo debe eliminarse del sustrato los cuerpos extraños o materiales no degradables que
en ocasiones traen los mismos.
Sustrato de origen vacuno listo para llenar bolsas. Sin tamizar Siembra en bolsa.
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II-2-a-Calidad del sustrato Los parámetros de calidad del sustrato óptimos para la siembra de vitroplantas.
Indicadores Rangos óptimos
pH 6,2—7,2
% N 0,85--- 2.86
% P 1,87---2.26
% K O,30 – 0,79
% Ca 3 --- 3.68
% Mg 0,35—0,88
% M.O Mayor de 35
Relación C/N 14 -- 20
II-3-Fertilización. Se realiza mezclada con el sustrato, antes del llenado de la bolsa u otro recipiente
dispuesto para la plantación, con NPK a razón de 1.5 – 2.0 kg por cada m3 de sustrato en
dependencia de la calidad del sustrato, mezclándolo de forma homogénea para evitar
daños en las vitroplantas o desarrollo desigual de las mismas. Después de los 7-10 días
de plantada la vitroplanta se fertiliza con urea dos veces por semana a razón de 10g/l,
alternando con Bayfolan en dosis de 5ml/l de agua cada 15 días (Para plátanos, bananos,
raíces y tubérculos). La fertilización puede hacerse por fertirrigación o con mochila.
Siempre la aplicación del fertilizante deberá hacerse después del último riego. En días
muy soleados se debe dar un riego ligero para lavar las sales después de tres horas de
aplicada la urea.
II-4-Riego. El riego durante esta fase debe ser suficiente para mantener al 80 % la capacidad de
campo en el sustrato y entre 85 – 95 % de humedad relativa ambiental, prefiriéndose un
sistema de microaspersores para realizar el riego aéreo en malanga, yuca, boniato, ñame,
plátanos y bananos. En vitroplantas de plátano, banano y malanga etc. con sustrato
compuesto por compost 100% se realizan de dos a tres riegos diarios con una duración
de 3 a 5 minutos en los primeros diez días y a partir de los 10 días dos riegos diarios con
una duración de 10 minutos en dependencia de la época del año, la intensidad de la luz
(en días nublados puede ser un solo riego o en ocasiones ninguno).Cuando se emplea
cámara húmeda(yuca y ñame) los riegos son de 20 segundo cada media hora en los
primeros 10 días, luego se va aumentando el intervalo de riego y tiempo de riego hasta
llegar a 1 o 2 diarios dependiendo de las condiciones climáticas y humedad presente en el
sustrato.
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En sentido general la duración e intervalo de riego varían de acuerdo al sustrato
empleado; época del año (ya que en verano se necesitan los dos riegos al día); la
intensidad luminosa; precipitaciones; Tipo de área donde se estén aclimatizando las
vitroplantas (umbráculos, casas de cultivo, túneles etc.); Así como el cultivar en esta fase.
Lo que es realmente importante saber es que se debe mantener la humedad evitando
excesos que puedan traer pudriciones por enfermedades fungosas y muerte de las
vitroplantas.
II-5-Luz. La intensidad de la luz durante la aclimatización debe ser regulada. En las dos primeras
semanas a partir de la siembra, es aconsejable una reducción de la luz solar hasta un 30
%, entre 15 y 30 días posteriores la intensidad puede alcanzar el 70 % y a partir de los 30
días ya pueden recibir la luz solar directa sin limitaciones en especies de ciclo en
adaptación de 30 a 45 días como malanga, boniato, plátanos y bananos; en ciclos más
largos (yuca y ñame) esto varia porque exceden los 60 días. En sentido general se le
puede retirar el cobertor o sarán 15 días antes de la salida a campo abierto si contamos
con túneles o casas de cultivo, porque en umbráculo es imposible está labor, ya que
tenemos vitroplantas de diferentes fenologías, sufrirían quemaduras solares, además se
retarda el crecimiento y pueden ocurrir muertes en las. “siembra” más recientes.
Las áreas que tienen las Biofábricas para aclimatizar en estos momentos son umbráculos,
que no nos permite la regulación de la intensidad luminosa, por lo que empleamos sarán
que proporciona 70% de sombra con 30% de luz, esto hace que las plantas al llegar a las
condiciones de campo abierto sufran más e incluso si el riego no es muy eficiente tengan
un porciento de perdida en el trasplante que no debe exceder nunca del 10% y sea
necesario en ocasiones la resiembra en campo.
Umbráculo para la aclimatización de vitroplantas con reducción del 70% de la intensidad luminosa de forma permanente.
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II-6- “Siembra” o Plantación La “siembra” se realiza siguiendo en lo fundamental las medidas disciplinarias y
tecnológicas, para evitar malas manipulaciones y mezclas mecánicas, no se puede
manipular diferentes genotipos en una misma jornada de trabajo. Al sustrato debe
aplicársele varios riegos, entre una semana y 3 días antes de plantar para cerciorarnos
que esté totalmente húmedo y el hongo antagonista establecido en el lecho de
plantación, antes de la plantación se realiza un riego ligero. La vitroplanta procedente de
la fase III (Enraizamiento) producida por organogénesis o de la fase de crecimiento
cuando es micropropagada por embriogénesis debe de cumplir los parámetros de calidad
y no haber sufrido ningún estrés en la fase precedente, ya que esto repercute de forma
negativa en la sobrevivencia en la fase IV (Aclimatización).Para asegurarnos de causar el
menor daño posible por manipulación al material, el mismo no se debe lavar para retirar el
medio de cultivo de las raíces de las vitroplantas en el momento de iniciar la labor, pero
si es necesario un riego ligero al terminar la siembra para lavar los restos de medio de
cultivo que puedan quedar en el follaje de las mismas, lo cual provocaría quemaduras.
Las vitroplantas una vez salidas del área aséptica y extraídas de su recipiente no pueden
estar un tiempo mayor de 3 días en la fase de aclimatización sin ser plantadas en el caso
de la malanga, boniato, yuca, plátanos y bananos. El ñame debe ser plantado
inmediatamente que se extrae de su recipiente.
La “siembra” se realiza por tamaños para evitar desarrollo desigual de la población.
En el momento de realizar el acto de la "siembra” se toma especial cuidado para que no
caiga sustrato en la yema apical que pueda provocar pudriciones y muerte de la
vitroplanta, las raíces deben quedar dentro del sustrato, así como el pequeño cormo, pero
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el pseudotallo y las hojas deben quedar libre para evitar pudriciones, la profundidad de
plantación está en dependencia del cultivar y del tamaño de la planta, pero no debe
exceder de 1 cm.
Además del sustrato y del resto de las medidas a tener en cuenta, hay que considerar
que algunos cultivares a plantar requieren cámara húmeda por su fisiología, como la yuca
y el ñame.
Doble sarán usado como cámara húmeda como forma alternativa
Se realiza un conteo de población por los técnicos de control de la calidad a los 10 días
de la plantación y la mortalidad no debe exceder el 10% en ninguno de los cultivares
relacionados para que sea una plantación exitosa, se lleva un registro por operario para
esto, que recoge la cantidad sembrada, fecha, clon, lote y porciento de sobrevivencia, etc.
Todas las siembras deben tener un expediente que contengan todos los datos del
material plantado y se deben guardar por 2 años.
II-7-Labores Agrotécnicas. Se debe mantener un control de la aparición de malezas con un desyerbe semanal. La
Separación de plantas hermanas, comúnmente llamado deshije según lo requiera la
especie o clon plantado, a partir de los 15 días de la plantación en malanga; a los 21 en
plátanos y bananos, realizándolo semanal hasta el final del ciclo, que es de 30 a 40 días
en malanga; de 45 a 60 en plátanos y bananos en dependencia de la época del año (más
corto en verano y de mayor duración en invierno), esto hace que haya en ocasiones un
coeficiente de multiplicación en esta fase producto de que esas plantas en ocasiones no
se pueden separar por estar muy pequeñas, en otras ya vienen inducidas de la fase de
laboratorio pero apenas se observan. Este coeficiente es más abundante en el cultivo de
la malanga y dentro de esta el género Xanthosoma tiene más coeficiente de multiplicación
en esta fase que la Colocasia. En banano se presenta mayor coeficiente en el grupo
Cavendish que los FHIA, los plátanos viandas más que los del tipo Burro. En yuca,
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boniato y ñame se realiza el corte de esqueje para aumentar las cantidades de
vitroplantas en esta área, siempre y cuando las vitroplantas no pierdan calidad, se hace
cada 15 días, después de los 21 días, se cortan secciones de tallo de 1 o 2 yemas, sin
afectar la vitroplanta. Se pueden realizar de 1 a 2 cortes en el ciclo para que la vitroplanta
no pierda calidad. En el ñame no solo se obtiene la vitroplanta para la reproducción
también se obtienen bulbillos, aunque en un periodo más largo, pero más eficiente en la
siembra posterior.
“Deshije “de banano
El corte de esqueje en ñame, yuca y boniato es una técnica emplea en esta fase que
junto al “deshije” es nombrada Macropropagación, la cual aumentan el número de
plantas en el área sin perder su categoría.
Corte de esqueje en vitroplantas de boniato Corte de esquejes de vitroplantas de yuca
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Deshoje
Es una labor necesaria en los casos que se presenten Enfermedades fungosas para
disminuir fuente de inóculo, generalmente esta labor comienza después de los 21 días y
hasta el final del ciclo siempre que la vitroplanta lo necesite, se corta con tijera las hojas
en mal estado o partes de hoja, siempre tratando de dejar al menos dos hojas abiertas,
esto suele ocurrir mucho cuando el material ha cumplido su ciclo en esta fase y por
alguna razón no se ha llevado a campo, en plátanos y bananos generalmente; en el caso
de la malanga se decapita por encima de los 10 cm aproximadamente, sin afectar la zona
en crecimiento y en pocos días vuelve a emitir hojas nuevas.
Reagrupe
Es una labor necesaria independientemente del recipiente donde se planten las
vitroplantas, ya sea bolsas, bandejas u otro recipiente, esto está dado en lo fundamental
porque siempre quedan plantas por debajo del tamaño medio de la población y en el
momento de la comercialización no cumplen los parámetros de calidad por la
competencia que se establece entre ellas, por la densidad de plantación, pero en un
periodo de 10 a 15 días posteriores estas logran alcanzar los parámetros establecidos
para la salida a las condiciones de campo.
En el caso de bandejas este reagrupe se realiza con la ayuda de una palita creada para
esto, que puede ser plástica o de metal para tratar de no dañar el cepellón, en las bolsas
u otros recipientes esta labor se hace más sencilla, pues solamente hay que trasladar la
planta de lugar, en ocasiones en el mismo cantero o es llevada a otro perteneciente al
mismo clon y lote de siembra, de forma ordenada, donde puedan ser cuantificada.
Esta labor se realiza también en caso de mortalidad donde se recuperan las bolsas o
espacios vacíos, siempre después que se haya realizado el conteo de sobrevivencia que
se realiza a los 10 días posteriores a la siembra por el personal técnico de Control de la
Calidad.
Otra razón que justifica esta labor es por las plantas que se recuperan del material
producto de la contaminación ambiental o las plantas muy pequeñas provenientes de
embriogénesis somática o organogénesis que fueron plantadas inicialmente en bandejas
para luego ser trasladadas a bolsas. Las bolsas recuperadas de las plantaciones nuevas
pueden emplearse en la separación de plantas hermanas o cortes de esquejes de ese
mismo clon y lote. Las bandejas después de empleadas en una “siembra” para ser
utilizadas de nuevos deben de ser desinfestados con una solución de formol al 2% o
hipoclorito de sodio al 3%.
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Reagrupe necesario cuando
se cosechan plantas
pasadas del ciclo en esta
fase.
El último día de cada semana se dedica a realizar una limpieza general dentro del área,
limpiando pasillos con guataca y escoba, también los alrededores, realizando chapeas o
guataqueas, de esta forma el área se mantiene limpia, evitando la proliferación de plagas
y posibles accidentes de trabajo.
II-8-Selección negativa de plantas fuera de tipo o con síntomas
de virosis. Después de los 21 días se debe realizar semanalmente una revisión exhaustiva para
detectar plantas que no se ajusten fenotípicamente al patrón del clon. Cualquier planta
diferente debe ser eliminada. Entre las variaciones más frecuentes que pueden aparecer
en esta etapa se encuentran las del tipo variegadas (plantas con rayas blanco
amarillentas en las hojas y pseudotallo) y plantas enanas (plantas con muy pequeña
separación entre los pecíolos de las hojas).También podemos observar plantas con
alargamiento excesivo de los entrenudos o espacios entre peciolos visibles sobre las
demás, hojas alargadas de forma que se aprecia su diferencia con el resto de la
población, plantas que no definen el tallo principal, coloración no característica de la
planta que le dio origen, presencia de hojas arrugadas o encaracoladas, callosidades en
la hoja o tallo. Se debe eliminar plantas con sospecha o síntomas de virosis,
especialmente en la malanga. Algunos ejemplos de variaciones en esta Fase:
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Vitroplanta de banano con forma desigual en la forma de la hoja y arquitectura de la planta que le dio
origen.
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II-9-Protección fitosanitaria
El sustrato que se adquiere o formula debe ser analizado por el laboratorio de Sanidad
Vegetal para detectar la presencia de nematodos, hongos y bacterias fitopatógenos, de
ser posible por el laboratorio de suelo para determinar el contenido de elementos
minerales, M.O, PH, etc .No obstante es recomendable aplicar antes de la siembra como
método preventivo en mezcla con el sustrato Trichoderma harzianum a razón de 400g/m3
con concentración de esporas de 107 esporas por ml o en dosis recomendada por los
especialistas según la calidad del medio biológico. Cuando se emplea el hongo
Trichoderma harzianum el personal que trabaja o visita el área de aclimatización no
debe entrar a el área estéril en una misma sección de trabajo, ni con la misma ropa.
El sustrato a utilizar debe estar en el área con el tiempo suficiente para la toma de la
muestra para realizar los análisis, ya que el análisis de planta indicadora demora 35 días.
Cualquiera que sea el sustrato a emplear en la fase de aclimatización debe estar libre de
cualquier patógeno que puedan causar daños a las plantas. Dentro de estos patógenos
tenemos a los hongos comunes en el suelo: Phytophthora spp, Fusarium oxysporum
Schlecht, Pythium spp, Rhizoctonia solani Kühn, Sclerotium rolfsii Sacc,
Cladosporium sp, etc. Así como nematodos parásitos que afectan los diferentes cultivos,
algunos de ellos relacionamos a continuación:
Plátano: Pratylenchus coffeae.
Radopholus similis.
Helicotylenchus multicinetu
Meloidogyne sp.
Malanga : Meloidogyne sp.
Pratylenchus coffeae.
.
Ñame: Scutenollema bradys
Pratylenchus coffeae
Meloidogyne sp
Generalmente los invernáculos o casas de cultivo tienen una malla de protección que
limita la entrada de insectos dañinos, en ese caso sólo algunos gusanos masticadores
suelen ocasionar ligeras afectaciones a las vitroplantas en los primeros días posteriores a
la siembra. En las condiciones de los umbráculos las plagas se presentan con mayor
frecuencia, a continuación, referimos algunas de ellas:
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II-9.a-Plagas más comunes. Plagas Plátano y
Banano
Malanga Ñame Yuca Boniato
Tetranychus tumidus
(araña roja)
X X ------------ X X
Spodoptera spp X X X X X
Bemisia tabaci (Mosca
Blanca)
----------- X ------------- ----------------- ----------------
Insectos del orden
Mollusca (babosas)
X X X X X
Myzus persicae y Aphis
gossipii (pulgones)
------------- X --------------- --------------- -----------------
Tarophagus Colocasiae -------------- X ---------------- --------------- ----------------
Primavera de la yuca
(Erinnyis ello L.)
------- ------- ------- X ---------------
Araña roja
Aparece generalmente de enero a marzo. Presentándose con mayor frecuencia en el clon
FHIA-18 y en los clones del tipo vianda, en la malanga Camerun-14 en materiales que
están atrasados en su salida a campo, en el resto de las viandas se pueden presentar,
pero con menos frecuencia. Si contamos con el enemigo natural Phitoseiulus macropilis
(Bank) en su reproducción en condiciones artificiales debe liberarse el depredador con
una densidad promedio de 1 a 2 ácaros por hojas con una tasa de liberación del
depredador de: 1 depredador por 20 tetránicos.
-Control químico:
Azufre 80 PH 1,8 – 2,6 kg ia/ha-1
Mitigan CE 18.5 en dosis de 0,18 – 0,27 kg ia/ha-1.
Amitraz CE 20 en dosis de 0,1 – 0,2 kg ia/ha-1.
-Manejo adecuado del riego
-Eliminar plantas indeseables y hospedantes tanto dentro del área como en los
alrededores.
-Monitoreo constante.
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Spodoptera spp
Se presenta siempre en los primeros días de la plantación por lo que se recomienda hacer
una aplicación a los 10 días de plantado el cultivar con un producto de contacto, puede
ser un piretroide o del producto que dispongamos y en las dosis recomendadas, por
ejemplo:
-Bifensa CE a razón 0,3- 0,5 L PC/ha-1.
Daños provocados por spodoptera en banano.
Mosca Blanca (Bemisia Tabaci) Causante de Enfermedades Virales en el cultivo de la
malanga.
Medidas de Control:
- Monitoreo constante y control químico si aparece la plaga.
- Mantener un adecuado suministro de nutrientes.
- Adecuado manejo del riego.
- Mantener el área y sus alrededores libre de malezas.
Control químico:
- (Imidacloprid) PH 70 de 0,35 – 0,7 kg ia/ha-1.
- Dimetoato CE 40 de 0,4 – 0,6 kg ia/ha-1.
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Babosas
Aplicar caracolex en dosis de 10 g/m2, si no hay el producto en existencia entonces
elaborar cebos, barreras de hidrato de cal o de KCL y cura mecánica.
Pulgones
Son transmisores del DMV en el cultivo de la malanga, por lo que es muy importante
detectarlos en cuanto aparecen y darle rápido control.
Medidas de Control:
- Monitoreo constante y control químico si aparece la plaga.
- Mantener el área y sus alrededores libre de malezas.
Control químico:
- Relevo (ia/ha-1.PH 70 de 0,35 – 0,7 kg ia/ha-1.
- Dimetoato CE 40 de 0,4 – 0,6 kg ia/ha-1.
- Imidacloprid mezclado con piretroide controla los áfidos.
Tarophagus colocasiae
Esta plaga es originaria del Sureste de Asia y las Islas del Pacífico, es considerada la
plaga más importante que afecta al cultivo de la malanga del género Colocasia, por
transmitir de forma persistente los complejos virales.
A B
Colonias de T. colocasiae donde los individuos están agrupados en el centro de la región adaxial de la hoja
(A), Insectos agrupados en la base del pecíolo (B)
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Control químico:
-Movento OD 150 en dosis de 0.5 – 0.6 L del PC/ha-1
-Relevo (Imidacloprid) PH 70 de 0.35 – 0.7 kg ia/ha-1.
II-9. b-Enfermedades
Las enfermedades más comunes en esta fase están dadas por los excesos de humedad,
así como por el envejecimiento del material, las cuales son Phytophthora spp y
Mycosphaerella sp.
La Phytophthora suele presentarse en periodos lluviosos porque no se puede controlar
la humedad del sustrato en el caso de los umbráculos o en ocasiones se presenta por
excesos de humedad por mal manejo del riego, suele presentarse en plátanos, bananos y
demás raíces y tubérculos.
Medidas de control:
- Realizar el riego de forma eficiente para evitar excesos de humedad.
- Deshoje para disminuir fuente de inóculo.
- Aplicaciones de productos químicos tales como: Ridomil, Vincare, Positrón, Yaba,
etc. En dosis recomendadas por Sanidad Vegetal.
Planta de Banano con Phytophthora.
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Mycosphaerella sp. (Sigatoka) es común que se presente en vitroplantas de plátano y
Banano que ya han cumplido su ciclo en esta fase y se encuentra atrasada su salida a
campo o después del paso de un huracán donde los fuertes vientos traen las esporas del
hongo.
Medidas de control:
Aplicación preventiva de producto tales como: Zineb, Mancoceb en dosis de 15 - 20 g/L
de agua; Cuproflow a razón de 5 ml/L de agua con una frecuencia de 10 -15 días.
- Hacer cumplir la contratación de las producciones para evitar la proliferación de la
enfermedad por vitroplantas muy grandes y con su ciclo biológico cumplido en esta
fase, lo que provoca alta densidad en el área de plantación.
- Realizar deshoje para disminuir fuente de inóculo.
- Cuando se presente la enfermedad realizar aplicaciones de Amistar, Benomil, Tilt,
Bravo, aceite mineral etc, en dosis recomendadas y tratando de no aplicar el
mismo producto de forma reiterada para evitar fungo resistencia, para esto es
necesario realizar un ciclo de al menos 3 de estos productos y aplicarlos cada 15
días hasta tener total control de la enfermedad.
Aunque las dos enfermedades que referimos anteriormente son las más frecuentes,
vamos a referir a continuación otras enfermedades que pueden presentarse en los
principales cultivares en Aclimatización:
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Enfermedad o agente
causal
Plátano o
Banano
Malanga Ñame Boniato Yuca
Mycosphaerella sp X ---------- ------- --------- -----------
Phytophthora spp X X X X X
Fusarium oxysporum
Schlecht
X X X X X
Rhizoctonia solani X X X X X
Sclerotium rolfsii X X X X X
Cladosporium sp X X X X X
Pythium spp X X X X X
Xanthomona sp -------- X ----- --------- --------
Dasheen mosaic virus --------- X -------- -------- ---------
Antracnosis(Colletotrichum
gloeosporioides Penz.)
--------- --------- X --------- ----------
En los casos de hongos que se desarrollan en el suelo pueden combatirse de forma
preventiva con la aplicación del hongo antagonista Trichoderma en mezcla con el sustrato
como se explica anteriormente.
El Dasheen mosaic virus (DMV) se presenta en el malanga cuando no se controlan los
vectores capaces de propagar la enfermedad o la selección y diagnóstico del material de
partida no ha sido el correcto, de presentarse debe hacerse selección negativa.
Mosaico y plumilla producidos por el DMV. A: mosaico; B: plumilla.
El DMV provoca mosaico intenso, deformación de las hojas, aclarado internerval,
manchas amarrillas en forma de plumilla. La infección tiene lugar en un corto tiempo, el
virus es transferido por el áfido virulento a otra planta hospedante.
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Medidas de control:
- Un monitoreo constante de plagas que transmiten el virus.
- Estricto control de plagas para evitar la transmisión del virus.
- Selección negativa de plantas afectadas.
De presentarse alguna plaga nueva o enfermedad que no esté referida en este
documento debemos consultar los especialistas en Sanidad Vegetal para que
determinen su identificación y control.
Después de los 10 días de la siembra debe realizarse una aplicación quincenal de
fungicidas de forma preventiva y hasta el final del ciclo, tales como: Mancoceb, Zineb, etc
de forma alternada.
II-10- Duración del ciclo biológico en Fase de Aclimatización -Bananos y plátanos suelen estar en la fase de aclimatización para alcanzar los
parámetros de calidad óptimo para su salida a las condiciones de campo abierto en
verano 45 días y en invierno 60 días.
-Malanga en verano es de 30 días y en invierno es 40 días.
-Boniato en verano es de 30-35 días y en invierno de 40 a 45 días.
-yuca es de 60 días.
-Ñame entre 45 y 60 días para obtener vitroplantas y si lo que se desea obtener son
bulbillos este proceso demora entre 150 a 180 días en dependencia de la fecha de
plantación.
III-Comercialización Las vitroplantas cuando culminan su ciclo en esta fase deben tener el tamaño óptimo,
numero de hojas, grosor del pseudotallo, coloración adecuada, etc según el cultivar de se
trate. Son transportadas en cajas de madera o plásticas en el caso de la bolsa de 10 x 12
cm, colocándolas en forma de estiba una caja encima de otra; cuando se trata de
vitroplantas aclimatizadas en bolsas de 20 x12 cm deben de ir colocada en la cama del
camión una al lado de la otra de forma bien ordenada, sin dejar espacios entre ellas para
evitar que se caigan las vitroplantas y pierdan parte del sustrato o se dañen. La
transportacion debe ser en camión con cobertor.
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Los parámetros de calidad que se establecen para las vitroplantas aclimatizadas en
bolsas de polietileno de 12 x 20 cm o de 12 x 10 cm, con un contenido de sustrato de
700g y 350g respectivamente u otro recipiente son:
Altura entre 12 – 15 cm (desde la base hasta el punto de inserción de la última hoja
completamente desarrollada), en plátano y banano; de 10-12 en malanga y el resto
de las viandas.
Más de 3 hojas verdaderas desarrolladas para todos los cultivares.
Diámetro del pseudotallo superior a 1.0 – 1.5 cm en bananos, plátano y malanga;
para yuca ñame y boniato de 0,3 cm a 0,8 cm.
No presentar daños físicos por afectaciones mecánicas o por plagas y
enfermedades.
Color del follaje verde generalmente, en ocasiones con tonalidades dependiendo
del cultivar o clon aclimatizado.
Poseer un adecuado sistema radicular, más de 6 raíces, que estas no estén
necrosadas.
Vitroplántulas listas para ser llevada a las condiciones de campo. Bulbillos de ñame obtenidos en la fase de aclimatización listo para seguir
propagando.
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IV- Referencias bibliograficas
Agramonte,D; Terri,F. 1998.Aclimatización de Vitroplantas de bananos.Instituto de
Biotecnologia de las plantas.
Instituto de Biotecnologia de las Plantas. 2012.Instructivo Tecnico para la Microp`ropagacion
de Eucalipto sp. Subdireccion de Desarrollo Tecnologico.Santa Clara.Cuba. 23p.
Jiménez,E. ;Garcia,L.; Suarez,M.; Alvarado,Y. 1997. InstructivoTécnico para la
micropropagacion de la caña de azucar.Instituto de Biotecnologia de las Plantas.
Manual Integrado de plagas.Manual Práctico. 2006. Centro Nacional de Sanidad
Vegetal(CNSV).La Habana. Cuba.Entrepueblos. España. Gruppo di Volontariato
Civile(GVC). Italia. 339p
MINAG.2004.Instructivo para la Micropropagacion de Platanows y Bananos.Grupo
Empresarial de Cultivos Varios.Vicepresidencia de Tecnologia.
Orellana, P. 1994. Tecnologia para la propagacion in vitro e clones de Musa sp. Tesis de
Doctorado. Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central de las Villas. 104p
Pérez,J;Alvarado,Y;Goméz,R;Jiménez,E;Orellana,P.1998. Propagación y Mejora Genética
de Plantas por Biotecnología. p. 14- 80.