diseño de un sistema a nivel piloto para la remoción de
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Universidad de La Salle Universidad de La Salle
Ciencia Unisalle Ciencia Unisalle
Ingeniería Ambiental y Sanitaria Facultad de Ingeniería
1-1-2008
Diseño de un sistema a nivel piloto para la remoción de Diseño de un sistema a nivel piloto para la remoción de
detergentes aniónicos de una solución preparada con detergentes aniónicos de una solución preparada con
características de una lavandería tipo con el fin de reducir la características de una lavandería tipo con el fin de reducir la
concentración letal media (CL50-48) para Daphnia pulex concentración letal media (CL50-48) para Daphnia pulex
Nicolás David Casallas Universidad de La Salle, Bogotá
Kelly Andrea Ibañez Acosta Universidad de La Salle, Bogotá
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Citación recomendada Citación recomendada Casallas, N. D., & Ibañez Acosta, K. A. (2008). Diseño de un sistema a nivel piloto para la remoción de detergentes aniónicos de una solución preparada con características de una lavandería tipo con el fin de reducir la concentración letal media (CL50-48) para Daphnia pulex. Retrieved from https://ciencia.lasalle.edu.co/ing_ambiental_sanitaria/237
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DISEÑO DE UN SISTEMA A NIVEL PILOTO PARA LA REMOCIÓN DE DETERGENTES ANIONICOS DE UNA SOLUCIÓN PREPARADA CON
CARACTERISTICAS DE UNA LAVANDERIA TIPO CON EL FIN DE REDUCIR LA CONCENTRACION LETAL MEDIA (CL50-48) PARA Daphnia
Pulex
NICOLAS DAVID CASALLAS KELLY ANDREA IBAÑEZ ACOSTA
Tesis de Grado para Optar Título de
Ingenieros Ambientales y Sanitarios.
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
FACULTAD DE INGENIERIA AMBIENTAL Y SANITARIA BOGOTA D. C
2008
DISEÑO DE UN SISTEMA A NIVEL PILOTO PARA LA REMOCIÓN DE DETERGENTES ANIONICOS DE UNA SOLUCIÓN PREPARADA CON
CARACTERISTICAS DE UNA LAVANDERIA TIPO CON EL FIN DE REDUCIR LA CONCENTRACION LETAL MEDIA (CL50-48) PARA Daphnia
Pulex
NICOLAS DAVID CASALLAS
KELLY ANDREA IBAÑEZ ACOSTA
Tesis de Grado para Optar Título de Ingenieros Ambientales y Sanitarios.
Director:
PEDRO MIGUEL ESCOBAR MALAVER
Químico Industrial Lic. Química y Biología.
MSc. En Alta Gestión, Consultoría y Verificación Medio Ambiental
MSc. En Residuos Urbanos e Industriales.
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
FACULTAD DE INGENIERIA AMBIENTAL Y SANITARIA BOGOTA D. C
2008
Nota de Aceptación
_______________________________
Firma del Director
______________________________
Firma del Jurado
______________________________
______________________________
A Dios, por acompañarme siempre y por darme la oportunidad
De tener tantas cosas buenas en mi vida.
A mis padres, las personas más maravillosas que tengo por su continuo
esfuerzo y apoyo, y por la paciencia infinita que han tenido
A mis tías y mis abuelitos por estar siempre ahí
Ayudándome cuando lo necesite,
A mi compañero Nicolás, por su dedicación y entrega a este proyecto.
A mis amigas, principalmente a Eli y Mile porque se que sin su compañía nada
de esto habría sido posible,
A Milo y Henry, a los que quiero con todo mi corazón porque se convirtieron
en mis Ángeles de la Guarda
Gracias a todos me hicieron mucho más fácil el camino,
Siempre les estaré agradecida por todo lo que han hecho por mí.
KELLY ANDREA
AGRADECIMIENTOS
Los Autores Expresan sus Agradecimientos a:
Pedro Miguel Escobar Malaver Profesor de la Universidad de la Salle y
Director del presente trabajo de grado, por su paciencia, colaboración y aportes
durante el proceso investigativo.
Oscar Fernando Contento Ingeniero Químico y laboratorista de Ingeniería
Ambiental y Sanitaria, por su ayuda y paciencia durante el proceso investigativo
y experimental.
Ingeniero Roberto Balda Profesor de la Facultad de Ingeniería Ambiental y
Sanitaria, por su asesoría en diferentes ocasiones.
Sandra Milena Hincapié y Eliana Gamboa Por su apoyo incondicional y
colaboración durante todo el proceso de desarrollo del proyecto.
TABLA DE CONTENIDO
Pág
RESUMEN 4
INTRODUCCIÓN 6
1.OBJETIVOS 8
1.1 OBJETIVO GENERAL 8
1.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS 8
2. MARCO TEÓRICO 9
2.1 ECOSISTEMAS ACUÁTICOS 9
2.2 ECOTOXICOLOGÍA 14
2.2.1 Concentración y dosis. 14
2.2.2 Toxicodinámica. 15
2.2.3 Factores que modifican la respuesta a los agentes tóxicos. 16
2.2.4 Vías de exposición. 17
2.2.5 Efectos de las sustancias tóxicas en el ambiente. 19
2.3 DAPHNIAS O PULGAS DE AGUA 21
2.3.1 Daphnia Pulex 21
2.3.1.1 Alimentación y Nutrición. 22
2.3.1.2 Reproducción. 23
2.3.1.3 Morfología 24
2.3.1.4 Sistema Circulatorio. 25
2.3.1.5 Importancia Ecológica. 26
2.4 DETERGENTES 27
2.4.1 Propiedades de los detergentes. 29
2.4.2 Tipos de detergentes. 30
2.4.3 Detergentes Sintéticos. 32
2.4.3.1 Surfactantes aniónicos. 33
2.4.3.2 Como limpian los detergentes. 35
2.4.3.3 factores que influyen en los detergentes 35
2.4.3.3.1 Temperatura 35
2.4.3.3.2 pH 35
2.4.3.4 Orígen de los vertimientos de los detergentes. 36
2.4.3.5 Descripción del proceso productivo 38
2.4.4 Contaminación por detergentes. 39
2.5 BIOENSAYOS 44
2.5.1 Bioensayos de acuerdo a la naturaleza 44
2.5.2 Bioensayos de acuerdo a la técnica 45
3. MARCO LEGAL 47
4. METODOLOGIA 48
4.1 Fase 1: Diseño experimental 48
4.2 Fase 2: Iniciación del cultivo con Daphnia Pulex 50
4.3 Fase 3: Preparación de Agua Reconstituida 51
4.4 Fase 4: Preparación del Medio Bristol y cultivo Algas Verdes 54
4.5 Conteo de algas. 59
4.6 Fase 5: Mantenimiento de los Cultivos Daphnia Pulex. 61
4.7 Fase 6: Ensayos de Toxicidad 65
4.7.1 Preparación de soluciones. 67
4.7.2 Obtención del índice toxicológico. 72
5 ANALISIS DE RESULTADOS 74
5.1 daphnia pulex (cultivo y mantenimiento). 74
5.2 Ensayos de toxicidad. 75
5.2.1 Pruebas de sensibilidad con dicromato de potasio. 75
5.2.2 Pruebas toxicológicas con detergentes. 82
5.3 Obtención de la carga tóxica – Índice toxicológico 110
5.3.1 Indice Toxicológico 110
6 TRATAMIENTO DEL VERTIMIENTO A NIVEL PILOTO. 113
6.1 Planteamiento de alternativas. 113
6.2 Elección de la alternativa a implementar. 118
6.2.1 OObbtteenncciióónn ddee llaa ccaarrggaa ttóóxxiiccaa ee íínnddiiccee ttooxxiiccoollóóggiiccoo
vveerrttiimmiieennttoo ttrraattaaddoo..
135
7. EFICIENCIA DEL TRATAMIENTO EFECTUADO EN EL
LABORATORIO.
137
8. ALTERNATIVA PARA EL MANEJO DE RESIDUOS
PROVENIENTE DEL TRATAMIENTO DE REMOCIÓN DEL
DETERGENTE.
141
9. CONCLUSIONES 147
10. RECOMENDACIONES. 150
9. BIBLIOGRAFIA 153
10. ANEXOS 156
LISTA DE TABLAS
TABLA 1. Factores que Modifican la Respuesta a los Agentes
Tóxicos
17
TABLA 2. Comportamiento de Algunos Detergentes. 37
TABLA 3. Condiciones para la supervivencia de Daphnia Pulex 4
TABLA 4. Reactivos para preparar agua reconstituida para 20 L
de agua.
50
TABLA 5. Parámetros de cumplimiento agua reconstituida. 51
TABLA 6. Preparación del Medio Bristol. 54
TABLA 7. Concentraciones Utilizadas para realizar Pruebas de
Toxicidad
68
TABLA 8. Resultados Medición Parámetros muestras de
lavanderías
70
TABLA 9. Resultados Caracterización del Vertimiento 71
TABLA 10. Rangos de Índices Toxicológicos 73
TABLA 11. Rangos Pruebas Preliminares Dicromato de Potasio. 76
TABLA 12. Rangos de Pruebas Definitivas Dicromato de Potasio. 77
TABLA 13. Carta de control de prueba de sensibilidad definitiva
con Daphnia Pulex
79
Tabla 14. Comparación resultados de sensibilidad con
Dicromato de Potasio
81
TABLA 15. Rango de Pruebas Preliminares Rotex. 83
TABLA 16. Rango de Pruebas definitivas Rotex. 83
TABLA 17. Carta de control de prueba definitiva Rotex con
Daphnia Pulex
86
TABLA 18. Rango de Pruebas Detergente Dersa. 88
TABLA 19. Carta de control de prueba Detergente Dersa con
Daphnia Pulex
90
TABLA 20. Rango de Pruebas Detergente Fab. Total. 91
TABLA 21. Carta de control de prueba Detergente Fab Total con
Daphnia Pulex
94
TABLA 22. Rango de Pruebas Detergente Ariel Oxiazul. 95
TABLA 23. Carta de control de prueba Detergente Ariel Oxiazul
con Daphnia Pulex
98
TABLA 24. Rango de Pruebas Preliminares Componente Activo
(LAS).
100
TABLA 25. Rango de Pruebas Definitivas Componente Activo
(LAS).
100
TABLA 26. Carta de control de prueba componente activo (las)
con daphnia pulex
103
TABLA 27. Comparación resultados de cl50-48 con (las). 104
TABLA 28. Valores de cl50-48 para los detergentes y su
componente activo
105
TABLA 29. Rango de Pruebas solución preparada. 106
TABLA 30. Carta de control de prueba solución preparada con
Daphnia Pulex sin tratar.
108
TABLA 31. Resultados Cálculo de Filtro de Arena a Nivel Piloto. 123
TABLA 32. Resultado Cálculos Filtro Carbón Activado a Nivel
Piloto.
126
TABLA 33. caracterización de solución preparada tratada 128
TABLA 34. Rango de Pruebas Preliminares Componente Activo
(LAS).
128
TABLA 35. Carta de control de prueba solución preparada con
Daphnia Pulex .
130
TABLA 36. Eficiencia de tratamiento de sistema piloto. 136
LISTA DE FIGURAS
Pág
Figura 1. Rutas que sigue un toxico en el organismo 16
Figura 2. Morfología Daphnia Pulex 25
Figura 3. Diagrama proceso productivo detergentes sintéticos. 38
Figura 4. Cambios Producto de la Eutrofización. 40
Figura 5. Test de ensayo.. 48
Figura 6. Preparación del agua reconstituida para 40L. 52
Figura 7. Preparación del medio Bristol 57
Figura 8.: Conteo de algas. 60
Figura 9.: Mantenimiento del cultivo 63
Figura 10.: Clasificación del índice toxicológico solución
preparada sin tratar.
111
Figura 11. Clasificación del índice toxicológico para solución
preparada después del tratamiento.
135
LISTA DE ANEXOS
ANEXO A. PRUEBAS DE TOXICIDAD
ANEXO B. ANOVA PARA PRUEBAS DE TOXICIDAD
ANEXO C. FICHA DE SEGURIDAD ROTEX
ANEXO D. HOJA DE DATOS ROTEX
ANEXO E. DIAGRAMA GENERAL METODOLOGIA
ANEXO F. CONTROL DE NATALIDAD
ANEXO G. DETERGENTE DERSA
ANEXO H. DETERGENTE FAB TOTAL
ANEXO I. DETERGENTE ARIEL OXIAZUL
ANEXO J. COMPONENTE ACTIVO LAS
ANEXO K. PLANOS SISTEMA DE TRATAMIENTO
ANEXO L. CARBON ACTIVADO
GLOSARIO
Bioensayo: Proceso experimental mediante el cual se determinan las
características y la fuerza de una sustancia potencialmente tóxica o de un
desecho metabólito, a través del estudio de sus efectos sobre organismos
cuidadosamente escogidos y bajo condiciones específicas de laboratorio.
Carbón Activado: El carbón activado es un término general que denomina a
toda una gama de productos derivados de materiales carbonosos. Es un
material que tiene un área superficial excepcionalmente alta, medida por
adsorción de nitrógeno, y se caracteriza por una cantidad grande de
microporos (poros menores que 2 nanómetros). El proceso de activación actúa
eficientemente al mejorar y aumentar la porosidad y el área superficial.
Concentración Letal (CL 50): Es la concentración, obtenida por estadística, de
una sustancia de la que puede esperarse que produzca la muerte, durante la
exposición o en un plazo definido después de ésta, del 50% de los animales
expuestos a dicha sustancia durante un periodo determinado. El valor de la
CL50 se expresa en peso de sustancia por unidad de volumen de aire normal
(miligramos por litro, mg/L).
Daphnia Pulex: Pulga de agua, nombre común que se aplica a diminutos
crustáceos de agua dulce que se mueven por el agua por medio de saltos
rápidos y bruscos.
Detergente: término aplicado a compuestos cuya disolución actúa como
agente limpiador de la suciedad y de sustancias en superficies contaminadas.
Lauril Alquil Sulfato (LAS): Es un agente surfactante aniónico empleado en
una variedad de formulaciones farmacéuticas. Es un detergente y agente
humectante, efectivo en soluciones ácidas y alcalinas y en aguas duras. Es
usado en shampoos medicados, como limpiador de la piel y en dentífricos.
Tensión Superficial: fenómeno por el cual la superficie de un líquido tiende a
comportarse como si fuera una delgada película elástica. Este efecto permite a
algunos insectos, como el zapatero (Hydrometra stagnorum), desplazarse por
la superficie del agua sin hundirse. La tensión superficial (una manifestación de
las fuerzas intermoleculares en los líquidos), junto a las fuerzas que se dan
entre los líquidos y las superficies sólidas que entran en contacto con ellos, da
lugar a la capilaridad, por ejemplo.
Tensoactivos: son sustancias que influyen por medio de la tensión superficial
en la superficie de contacto entre dos fases (p.ej., dos líquidos insolubles uno
en otro). Cuando se utilizan en la tecnología doméstica se denominan como
emulgentes o emulsionantes; esto es, sustancias que permiten conseguir o
mantener una emulsión.
Toxicología: disciplina que estudia los efectos nocivos de los agentes
químicos y de los agentes físicos (agentes tóxicos) en los sistemas biológicos y
que establece, además, la magnitud del daño en función de la exposición de
los organismos vivos a dichos agentes. Se ocupa de la naturaleza y de los
mecanismos de las lesiones y de la evaluación de los diversos cambios
biológicos producidos por los agentes nocivos.
Vertimiento: Entiéndase por vertimiento líquido cualquier descarga líquida
hecha a un cuerpo de agua o a un alcantarillado.
Xenobiótico: Se aplica a los compuestos cuya estructura química en la
naturaleza es poco frecuente o inexistente debido a que son compuestos
sintetizados por el hombre en el laboratorio. La mayoría han aparecido en el
medio ambiente durante los últimos 100 años.
RESUMEN
Con el desarrollo de este proyecto, se pretendió hacer un aporte a la solución
de un problema actual tan importante como lo es la contaminación de los
cuerpos de agua, a causa de las muchas sustancias tóxicas que diariamente
son arrojadas por industrias y que generan la muerte de los organismos que allí
habitan.
Se determinó por medio de bioensayos, la concentración letal media CL50-48 de
detergente aniónico ROTEX, su componente activo LAS (Lauril Alquil Sulfato) y
detergentes comerciales (FAB TOTAL, ARIEL, DERSA). Se evalúo una
solución preparada con características de una lavandería tipo y se determinó la
CL50-48 en concentración %(v/v) de una muestra cruda y de una muestra tratada
con un sistema de filtración integrado por un filtro de arena y un filtro de carbón
activado bituminoso. La determinación de la concentración letal media se
realizó mediante pruebas toxicológicas empleando Daphnia Pulex como
organismo indicador.
Se tomaron cinco concentraciones, un control negativo (blanco o agua
reconstituida) y se hicieron cuatro réplicas por cada prueba. Los datos de CL50-
48 fueron analizados por el programa método de unidades probabilísticas
(Probit), el cual evalúa la relación concentración respuesta de un contaminante
sobre un organismo con límites de confiabilidad del 95%.
Se evalúo la eficiencia del sistema de filtración con pruebas antes y después
del tratamiento, logrando una remoción superior al 70% para detergentes y se
plantearon alternativas para los residuos provenientes de la unidad con el fin de
mitigar impactos.
Palabras Claves: Daphnia Pulex, detergente aniónicos, Lauril Alquil Sulfato,
agua reconstituida, filtro, vertimiento, concentración letal media.
ABSTRAC
With the development of this project, was intended as a contribution to the
solution of a problem today as important as what is the pollution of water
bodies, because of the many toxic substances that are daily and thrown by
industries that generate death the organisms that live there
Average CL50-48 of anionic detergents is being work I am determined the lethal
concentration (TOTAL FAB, ARIEL, DERSA, ROTEX) and its component
assets (Lauril Alquil Sulphate), I evaluate the pouring of the Laundry of the Club
the Walnut and I determine the CL50-48 in concentration % (v/v) of a crude
sample and a sample dealt with a system of filtration integrated by a sand filter
and a activated-carbon filter bituminous. The determination of the lethal
concentration mediates I am realised by means of toxicological tests using
Daphnia Pulex like indicating organism of test. Five concentrations were taken,
a negative control (white or reconstituted water) and became four replic by each
test. The CL50-48 data were analyzed by the program method of probabilistic
units (Probit), which evaluates the relation concentration answer of a polluting
one on an organism with you limit of trustworthiness of 95%.
I before evaluate the efficiency of the system of filtration with tests and after the
treatment as well as one occurred alternatives for the residues that the unit of
propose removal leaves.
Key Words: Daphnia Pulex, anionic detergents, Lauril Alquil Sulfato,
reconstituted water, filter, pouring, hald lethal concentration.
INTRODUCCION
La demanda actual en el uso y fabricación de detergentes, a nivel doméstico e
industrial, ocasiona que ecosistemas como los acuáticos se vean cada día más
expuestos a la contaminación, ya que son los principales puntos de descarga
de vertimientos y desechos producidos por las diferentes actividades humanas.
Con el paso de los años, debido al deterioro ambiental que ha venido sufriendo
nuestro planeta, se han venido evidenciando cada vez más, un sinnúmero de
esfuerzos por desarrollar estrategias o mecanismos que permitan no solo
evaluar los daños sino que también propongan soluciones que contribuyan al
mejoramiento ambiental.
Los estudios toxicológicos constituyen uno de los elementos de juicio más
acertados para la evaluación del riesgo potencial producido por contaminantes
presentes en el ambiente (Centro de Estudios y Gestión Ambiental, Instituto de
Investigación Pesquera, Chile).
Es por esta razón, que en los últimos años se ha incrementado el empleo de
Bioensayos como herramienta de análisis de sustancias de diversos orígenes,
ya que garantizan la obtención de datos confiables que pueden ser
estandarizados a condiciones específicas.
El presente proyecto de grado, pretende analizar más a fondo, las
consecuencias que para el ambiente trae el uso de detergentes, así como
también las descargas de vertimientos con cantidades considerables de los
mismos, en los cuerpos y ecosistemas acuáticos, teniendo en cuenta que el
Ambiente es un sistema abierto donde cualquier agente externo puede generar
alteraciones importantes y cambiar su funcionamiento.
De igual manera plantear recomendaciones y medidas que contribuyan así sea
en pequeña medida a mitigar las condiciones desfavorables que puedan
generarse a partir de las acciones desmedidas de los seres humanos en
materia de manejo de este tipo de sustancias.
1. OBJETIVOS
1.1 OBJETIVO GENERAL
Diseñar un sistema a nivel piloto para la remoción de detergentes aniónicos
de una solución preparada con características de una lavandería tipo con el fin
de reducir la concentración letal media (cl50-48) para daphnia pulex
1.2 OBJETIVOS ESPECIFICOS
Realizar pruebas de sensibilidad con Dicromato de Potasio (K2Cr2O7) con
Daphnia Pulex.
Realizar pruebas de toxicidad con un detergente aniónico industrial y con
detergentes comerciales determinando la concentración letal media en
Daphnia Pulex en 48 horas.
Evaluar la eficiencia del sistema de remoción propuesto por medio de una
comparación de los resultados obtenidos en los ensayos antes del tratamiento
y después del mismo.
Proponer una alternativa de manejo para el residuo proveniente del tratamiento
de remoción del detergente.
2. MARCO TEORICO
2.1 ECOSISTEMAS ACUATICOS
Los ecosistemas acuáticos pueden considerarse entre los más importantes de
la naturaleza y su existencia depende totalmente del régimen que tengan. Así,
las principales adaptaciones de los animales y vegetales estarán directamente
relacionadas con las características físicas del agua, con la que están
permanentemente en contacto los organismos que viven en este medio.
En los sistemas acuáticos (ver foto1) las microalgas constituyen el primer
eslabón de la cadena trófica. En su condición de productor primario, el
fitoplancton permite la entrada de energía al ecosistema, regula el régimen
gaseoso y tiene acción depuradora, por lo que se considera uno de los
indicadores más importantes de las alteraciones del medio marino (Loza,
1994). Los ensayos con algas han sido reconocidos por las autoridades
reguladoras como relevantes y sensibles, considerándose indicadores
primarios de contaminación (Fargašová, 1997).
Foto 1: Sistema Acuático. Fuente:
http://images.google.com.co/imgres?imgurl=http://www.uniquindio.edu.co/uniquindio/facultades/educacion/Lic_Biologia/elpostigo/ecosistemas-acuaticos_archivos/
Colombia, por su privilegiada situación geográfica, tiene abundantes reservas
y cursos de agua que se encuentran dispersos a lo largo y ancho de su
territorio. En las cordilleras central y oriental abundan los diferentes
ecosistemas acuáticos que cumplen una función esencial en la conservación
de la flora y fauna y en su mayoría son el nacimiento de ríos que son de vital
importancia para los pobladores. Los ecosistemas acuáticos se dividen en dos
grupos: los de agua dulce (ríos, lagos, humedales), y los ecosistemas marinos
(mares, estuarios. Los ecosistemas de agua dulce se pueden clasificar en dos:
de aguas quietas o lénticos (lago, estanque, pantano, charcas), y de aguas
corrientes o lóticos (manantial, arroyo, río).
LAGOS: por definición son una extensión de agua bordeada de tierra por todas
partes (ver foto 2). No son elementos permanentes del paisaje, por lo que están
destinados a desaparecer, debido a la acumulación de sedimentos. La mayoría
de estos tienen su origen en eventos naturales, ya sea en procesos tectónicos,
volcánicos, glaciaciones, cambios geomorfológicos, por la combinación de
todos ellos, han evolucionado a partir de fiordos que paulatinamente se
convirtieron en agua dulce.
Foto 2. Vista general de un Lago
http://images.google.com.co/imgres?imgurl=http://www.uniquindio.edu.co/uniquindio/facultades/educacion/Lic_Biologia/elpostigo/ecosistemas-acuaticos_archivos/
RIOS: Presentan numerosos orígenes al igual que los lagos. En regiones
volcánicas, la deposición de lava puede formar canales en los cuales se
encausa el agua proveniente de las lluvias o deshielo; también por la
excavación provocada por la fuerza de la corriente sobre el terreno. La
conformación física del río es la de una red de tramos que van convergiendo a
los cauces principales (ver foto 3), de acuerdo con el aumento progresivo de
confluencias y caudales. Acerca del agua dulce de los ríos, es preciso tener en
cuenta que presenta una enorme variedad de composición. Como esta
composición química depende, en primer lugar, de lo que el agua pueda
disolver del suelo por el que discurre, o de los lugares a donde se dirige, es el
suelo lo que determina la composición química del agua. Si el suelo es pobre
en sales y minerales solubles, también el agua será pobre en sales y
minerales. Y, a la inversa, si el suelo es rico en materias químicas solubles,
gran parte de su riqueza la cederá al agua, con lo cual ésta contendrá muchas
más sales minerales. Eso es determinante para los tipos de vida animal y
vegetal que allí se pueda desarrollar.
Foto 3. Vista de un Rio
Tomado de:http://www.recorrecordoba.com.ar/wp-content
HUMEDALES: son los ecosistemas más productivos del mundo y desempeñan
diversas funciones como control de inundaciones, puesto que actúan como
esponjas almacenando y liberando lentamente el agua de lluvia; protección
contra tormentas; recarga y descarga de acuíferos; control de erosión;
retención de sedimentos y nutrientes. Los humedales son sistemas altamente
dinámicos sujetos a una amplia gama de factores naturales que determinan su
modificación en el tiempo, aún en ausencia de perturbación. (Ver foto 4)
Foto 4.Humedal
Tomado de: http://img154.imageshack.us/img154/9921
MARES: Son una masa de agua salada (ver foto 5). Cubren el 70% de la
superficie terrestre (3600 millones de Km 2). La vida en ellos es regida por
factores físicos como: oleaje, mareas, corrientes, salinidad, temperatura,
presión, e intensidad luminosa que determinan en gran medida la composición
de las comunidades,
las cuales a su vez ejercen una considerable influencia en la composición de
los sedimentos del fondo y en los gases disueltos en el agua y la atmósfera.
La salinidad de los mares varia entre 3.2% en los mares polares y un 3.8% en
los mares tropicales.
Foto 5. Vista general Del Mar. Tomado de: http://www.biosferamexico.org/geomosaico/wp-content
ESTUARIOS: Se refiere a un cuerpo de agua semicerrado (ver foto 6), como
una desembocadura de río o una bahía costera, donde las salinidades
intermedias entre la del mar y la del agua dulce, y donde la acción de las
mareas es un importante regulador físico y un subsidio de energía. Se
encuentran entre los sistemas acuáticos naturales más fértiles.
Foto 6. Vista general de un estuario Tomado de: http://aupec.univalle.edu.co/informes
2.2 Ecotoxicología
La Toxicología puede definirse, como la disciplina que estudia los efectos
nocivos de los agentes químicos y de los agentes físicos (agentes tóxicos) en
los sistemas biológicos y que establece, además, la magnitud del daño en
función de la exposición de los organismos vivos a dichos agentes. Se ocupa
de la naturaleza y de los mecanismos de las lesiones y de la evaluación de los
diversos cambios biológicos producidos por los agentes nocivos. (Wikipedia).
El efecto causado por un tóxico dependerá de su toxicidad inherente
(capacidad de causar algún efecto nocivo sobre un organismo vivo), del grado
de exposición, que a su vez dependerá de la cantidad que ingrese, de cuánto
pase a los distintos compartimientos del ecosistema y de su persistencia.
La ecotoxicidad es la resultante de todo el estrés tóxico que actúa sobre el
ambiente. El principio de la Ecotoxicología es que los organismos vivos son
herramientas esenciales para la evaluación de la calidad ambiental, puesto que
ellos son los que están expuestos a los efectos combinados de la ecotoxicidad.
El uso de los métodos de evaluación biológica para detectar compuestos
potencialmente dañinos comenzó a desarrollarse en los años ‟70. (COILLIE.,
1985.)
2.2.1 Concentración y Dosis
La cuestión de determinar la toxicidad de una determinada sustancia es
importante para poder determinar la cantidad o concentración de esa sustancia
a la que un organismo puede ser expuesto. Algunas sustancias tienen con
pequeñas cantidades un efecto positivo sobre el cuerpo y se vuelven peligrosas
cuando se toman en mayor concentración.
La Dosis Letal (DL) se define como la cantidad de la sustancia tóxica que
causa la muerte a la totalidad de la población expuesta. Así mismo, la Dosis
Letal cincuenta (DL50) se considera como la cantidad del tóxico que al ser
administrada una sola vez, en un periodo de tiempo específico produce la
mortalidad del 50% de los organismos involucrados en el estudios, se expresa
en miligramos de la sustancia por el kilogramo del animal. (mg/kg)
La concentración Letal cincuenta (CL 50) es la cantidad de una sustancia tóxica
que es administrada al medio y que causa la muerte al 50% de la población en
determinado tiempo y se expresa en miligramos sobre litro. (mg/L)
2.2.2 Toxicodinámica
En el medio ambiente la biota esta continuamente expuesta a una gran
cantidad de sustancias con las que interacciona en todos los procesos
naturales, algunos agentes tóxicos se encuentran en continuo contacto con los
organismos, pero algunos de ellos por diversas razones han creado cierta
tolerancia hacia los mismos.
Para que un tóxico ambiental genere daño, es necesaria en primera medida
una exposición hacia este y por otra parte debe vencer las defensas del
organismo que son las que van a impedir la entrada a los tejidos. En pocas
palabras, las defensas son mecanismos de resistencia que imposibilitan la
movilidad y difusión del tóxico hacia determinados tejidos.
El efecto que produzca una dosis, depende directamente de la cantidad activa
del tóxico que ingrese y permanezca en un determinado lugar. (Ver figura 1)
Figura 1. Fuente: PEÑA, Carlos Andrés. Rutas que sigue un toxico en el organismo
2.2.3 Factores que Modifican la Respuesta a los Agentes Tóxicos
La interacción entre el agente tóxico, el organismo que entra en contacto con el
(receptor) y el ambiente modulan la respuesta del agente. No son iguales los
efectos de un agente en un niño que en adulto, ni en un hombre que en una
mujer. A continuación se describen los factores de la respuesta tóxica
relacionados con cada componente del conjunto interactivo: „agente-receptor-
ambiente. (Ver tabla 1)
FACTORES DEPENDIENTES DEL RECEPTOR
FACTORES DEPENDIENTES DEL
AMBIENTE
FACTORES DEL AGENTE
° Estructura genética
° Estado nutricional
° Temperatura
° Presión
° Estructura y
composición química
TABLA 1. Factores que Modifican la Respuesta a los Agentes Tóxicos Fuente: Los Autores
2.2.4 Vías de exposición
Dentro de los aspectos fundamentales que inciden en el efecto que un tóxico
pueda generar en los organismos se encuentra la vía de exposición, así como
la duración, frecuencia y magnitud.
Una vez el contaminante este presente en el medio, este puede entrar en
contacto con los seres humanos de diferentes formas, entre las que
encontramos la inhalación, ingestión y contacto dérmico.
1. La vía de inhalación incluye:
Inhalación de polvo, que se origina del suelo contaminado
Inhalación de vapor emanado del suelo
Inhalación de aire, que contiene productos químicos evaporados del
agua durante la lluvia.
2. La vía de ingestión incluye:
Ingestión diaria de líquidos por los seres humanos
° Estado de salud
° Sexo
° Edad
° Raza
° Estado emocional
° Estado fisiológico:
embarazo
° Tamaño de la partícula
° Cantidad y
concentración
Ingestión directa de tierra y polvo, sobre todo por los niños
Inhalación de partículas y vapores
Absorción indirecta a través de cultivos alimenticios provenientes de un
suelo contaminado
Absorción indirecta a través de la carne y derivados lácteos del ganado
bovino, porcino y aves de corral alimentados con productos cultivados
en suelo contaminado
Absorción indirecta a través de peces y mariscos, provenientes de aguas
superficiales que reciben aguas subterráneas y escorrentías
contaminadas (comprende todas las fuentes de contaminación
terrestres.
3. La vía dérmica incluye:
Niños que juegan con tierra contaminada
Excavaciones en tierra contaminada hechas por adultos
Absorción dérmica de contaminantes a través del abastecimiento
doméstico de agua.
2.2.5 Efectos de las Sustancias Tóxicas en el Ambiente
El recorrido que hacen los contaminantes desde la fuente de generación hasta
los organismos, por medio de diferentes procesos influyen en el ambiente y
generan cambios o alteraciones en el mismo.
TOXICOS EN EL AGUA
Debido a que muchos de los contaminantes se disuelven en el agua, el
movimiento de la misma a través de los múltiples procesos que conforman el
ciclo hidrológico, hace más fácil el transporte de los contaminantes hacia el
ambiente. A demás es de suma importancia recordar, que en muchas
ocasiones el agua puede convertirse en un reactor químico, que puede llegar a
acelerar ciertas reacciones, convirtiéndolas en tóxicos potenciales.
Así, entre las consideraciones más importantes a tener en cuenta cuando se
evalúan los niveles de exposición y contaminación del agua están:
• Los contaminantes se disuelven en el agua (como lo hacen los ácidos) o
flotan sobre la superficie (como lo hacen muchos productos del petróleo
• Algunos contaminantes pueden cambiar fácilmente a fase de vapor.
• El flujo del agua.
• Procesos químicos del agua (como la ionización)
- Temperatura
- Tipos de organismos en el agua
- Niveles de oxígeno
- Acidez de la agua
• La contaminación de organismos acuáticos por el agente tóxico y el
movimiento de este a otros organismos.
Entre otras cosas, es necesario tener en cuenta que las sustancias tóxicas no
solamente pueden afectar a las fuentes de agua superficial, sino que también a
las subterráneas por procesos como la infiltración. En estos casos, el estudio y
determinación de los estados de contaminación se hace un poco más complejo
por la dificultad para llegar a ellas y por lo mismo para tomar muestras, lo que
hace que en algunas circunstancias los resultados obtenidos son inexactos.
2.3 DAPHNIAS O PULGAS DE AGUA
“Pulgas de agua, es el nombre popular que se les da a estos pequeños
crustáceos de agua dulce y que deben su calificativo de pulgas a su peculiar
modo de nadar, dando pequeños saltos dentro del agua. Este peculiar método
de locomoción es probablemente el responsable de su atractivo como alimento,
más que cualquier otra cosa. Por muchos años las pulgas de agua han sido
consideradas como el mejor alimento para algunos peces tropicales.
Las Daphnias son en su mayoría habitantes y residentes de aguas dulces,
existen algunas pocas variedades que habitan en aguas salobres y otras más
raras que residen en aguas marinas.” 1
2.3.1 Daphnia Pulex
“La Daphnia Pulex es un micro crustáceo planctónico, pertenecientes al orden
Cladóceros, que vive en las aguas dulces En épocas favorables se reproducen
por partenogénesis originando sólo hembras que incrementan de forma rápida
la población Una de sus formas típicas mide menos de 0,25 cm de longitud.
Tiene forma globular, es de color rojizo y está envuelta en una cubierta
transparente de dos valvas. En la cabeza presenta unas antenas plumosas
ramificadas que usa para nadar. La pulga de agua se reproduce con rapidez y,
por tanto, es útil en experimentos sobre genética y como alimento para peces”
2.
____________________
1 Tomado de : http://www.perros-purasangre.com.mx/pps19/DAPHNIA0PULEX.html
2 Tomando de http://www.cib.uaem.mx/agebiol/Invertebrados1_archivos diap # 22.
La clasificación taxonómica de la Daphnia Pulex es la siguiente:
Reino Animalia
Filo Arthropoda
Subfilo Crustácea
Clase Branchiopoda
Subclase Phyllopoda
Orden Diplostraca
Suborden Cladocera
Clasificación Taxonómica. Fuente: LATREILE, 1829. Disponible en Internet: http://es.wikipedia.org/wiki/Clad%C3%B3ceros
2.3.1.1 Alimentación y Nutrición “Comúnmente son organismos fitófagos, es decir se alimentan por filtración. El
aparato filtrador de la Daphnia esta formado por apéndices especializados
toráxicos para la captura de partículas de alimento. Cinco extremidades
toráxicas actúan como una bomba de succión. El tercer y cuarto par de
extremidades se encargan de filtrar las partículas del agua. El tamaño de las
partículas que ingieren esta en el rango de 0.5 y 50 μm. Su dieta se compone
principalmente de plancton o detritos, y a su vez de bacterias por lo cual se
pueden cultivar en laboratorio.
El principal problema es que al ser crustáceos de filtración no selectiva filtran
todo lo que está en el agua por lo que si el agua está llena de partículas
flotantes interferirán con la filtración de comida.” 3
________________________
3 Tomado de: ACUAGARDEN, revista online. Disponible en Internet:
http://aquagarden.iespana.es/articulodaphnia.htm
2.3.1.2 Reproducción “La Daphnia tiene dos maneras distintas de reproducción que dependen de las
condiciones ambientales del lugar donde habiten: Una asexual y otra sexual. La
primera se produce por partenogénesis y, según la edad y el tipo de
alimentación de la pulga, puede llegar a dar entre 5-6 hasta los 100 ejemplares.
En la reproducción sexual la hembra produce óvulos que luego de ser
fertilizados por el macho y que se alojan en el epifio (saco que soporta los
huevos) y estos son llamados epifios. La producción de estos huevos se debe a
la sabiduría de la Naturaleza que de esta manera se asegura la subsistencia de
la especie cuando las condiciones de vida no son favorables. Estos pueden ser
mantenidos por más de 50 años.
Los huevos se producen en grupos de 2 a varios cientos de ellos y una sola
hembra es capaz de poner varios grupos de huevos en cada proceso de muda.
El número de huevos partenogenéticos puede variar de 1 a 300 y depende
enormemente del tamaño de la hembra y la comida que ingiera. El desarrollo
embrionario de los individuos del suborden cladócero se da antes de eclosionar
(apertura del folículo maduro), por lo que las larvas son miniaturas de los
adultos. Pero algunas veces la larva se mantiene más tiempo en el interior y no
se libera hasta más tarde. Estas variaciones están ligadas a factores
ambientales.
La aparición de machos suele acontecer cuando hay cambios en la
temperatura o cuando hay escasez de comida debido a un aumento de la
población” 4
_________________________
4 Tomado de: Ancystrus online, Argentina. Disponible en Internet:
http://www.ancystrus.com.ar/articulos/daphnia.htm
2.3.1.3 Morfología
Este tipo de organismos (Daphnia Pulex) están caracterizados por poseer un
cuerpo ovalado y comprimido lateralmente, a diferencia de todos los
crustáceos, en ellos no se diferencian segmentos.
La hembra es un poco más grande que el macho; cuentan con un caparazón
de quitina que es transparente lo que permite observar más fácilmente su
estructura, varios apéndices con numerosas setas. Una cavidad embriónica
con huevos y embriones situados en la parte dorsal, entre el carapacho y el
dorso del cuerpo. Para la identificación de especies son importantes los
apéndices toráxicos en la forma y número de espinas y setas. (Ver figura 2)
FIGURA 2. Fuente: VOLMER, 1951. Tomado de Internet: La producción de alimento vivo y su. importancia en la acuacultura.
http://www.fao.org/docrep/field/003/AB473S/AB473S06.htm
1. Anténula 12. Cámara embrionaria
2. Antena 13. Embrión
3. Músculos de las antenas 14. Procesos abdominales
4. Ojos compuestos 15. Postabdomen
5. Ganglio óptico 16. Ano
6. Músculo del ojo 17. Huevo toráxico
7. Cerebro 18. Saco respiratorio
8. Procesos hepáticos 19. Seta filtradora
9. Intestino 20. Carapacho
10. Corazón 21. Glándula maxilar
11. Ovario 22. Primer par de apéndices
23. Mandíbula
2.3.1.4 Sistema Circulatorio
El sistema circulatorio de los crustáceos presenta diferentes variaciones.
Pueden encontrarse o no en forma tubular, como es el caso de los cladóceros,
a los cuales pertenece la Daphnia Pulex. En general la Daphnia presenta un
vaso sanguíneo corto, que transporta la sangre desde el corazón a la parte
anterior, el vaso no presenta ramificaciones y la sangre pasa a través de senos
y no de venas. En los Branchipodos se ha llegado a encontrar hemoglobina en
huevos, tejido nervioso y músculos. Las Daphnias que se encuentran en aguas
estancadas presentan un color rosado debido a la hemoglobina, mientras que
las que se encuentran en aguas aireadas son de un color claro. 5
_____________ 5 Tomado de: ESPINDOLA, Cecilia. Prácticas de Biología de Organismos Multicelulares.
Editorial Pontificia Universidad Javeriana.
2.3.1.5 Importancia Ecológica
Debido a su amplia distribución, su importancia ecológica y su sensibilidad a
ambientes intervenidos, se les considera especies indicadoras de condiciones
ambientales adversas. Además, por ser organismos de fácil mantenimiento
bajo condiciones de laboratorio, normalmente se utilizan en pruebas de
toxicidad acuáticas.
Por otra parte, es un organismo importante dentro de la red trófica ya que sirve
de alimento para peces y otros organismos de mayor tamaño, por esta razón
sufrir afectación por contacto con contaminantes o agentes externos implicaría
un cambio y una alteración en el equilibrio del ecosistema, que podría en
algunos casos afectar incluso la salud humana.
2.4 DETERGENTES
Los detergentes son productos que se usan para la limpieza y están formados
básicamente por un agente tensoactivo que actúa modificando la tensión
superficial disminuyendo la fuerza de adhesión de las partículas (suciedad) a
una superficie; por fosfatos que tienen un efecto ablandador del agua y floculan
y emulsionan a las partículas de mugre, y algún otro componente que actúe
como solubilizante, blanqueador, bactericida, perfumes, abrillantadores ópticos
(tinturas que dan a la ropa el aspecto de limpieza), etc.
Los detergentes sintéticos contienen sustancias surfactantes que ayudan en la
penetración, remojo, emulsificación, dispersión, solubilización y formación de
espuma. Todo esto ocurre en las interfases sólido-líquido y líquido-líquido. (Ver
foto 7)
Foto 7. Clases de Detergentes.
Fuente: http://aestoaspiramos.net/detergentes/imagenes/detergente_1600px.jpg
Así mismo, permiten variar la tensión superficial del agua y se caracterizan por
disolver la suciedad o las impurezas presentes en un cuerpo sin llegar a
desgastarlo o destruirlo lentamente; también disuelve las grasas o la materia
orgánica producto de la tensoactividad.
La mayoría de los detergentes son compuestos de sodio del sulfonato de
benceno sustituido, denominados Sulfatos Lineales de Alquilos (LAS). Otros
son compuestos de alquilbenceno Sulfatos de Cadena Ramificada (ABS), que
se degradan mas lentamente que los (LAS).
Su estructura está compuesta por dos partes: una Hidrófila (afinidad con el
agua) y otra Lipofílica (afinidad con aceites), lo que permite formar puentes de
agua y aceite, ayudando a remover la suciedad. 6
Según su formulación, los detergentes además pueden contener Compuestos
ácido base (que le dan el pH, haciéndolos ácidos, neutros o alcalinos),
Estabilizantes, Quelantes, Enzimas, Blanqueadores, Colorantes, Perfumes,
Solventes, Secuestrantes, Desinfectantes, Espesantes. Los detergentes tienen
la ventaja, sobre los jabones, de formar sulfatos de calcio y de magnesio
solubles en agua, por lo que no forman coágulos al usarlos con aguas duras.
Además como el ácido correspondiente de los sulfatos ácidos de alquilo es
fuerte, sus sales (detergentes) son neutras en agua.
El principal agente tensoactivo que se usa en los detergentes es un derivado
del alquilbencensulfonato como, por ejemplo, el dodecilbencensulfonato de
sodio (C12H25-C6H4-SO3Na) el cual puede hacer al detergente duro (no
biodegradable, contaminante persistente) o blando (biodegradable,
contaminante biodegradable), dependiendo del tipo de ramificaciones que
tenga.
_____________________________
6 Tomado de: www.enfermeraspabellonyesterilizacion.cl/trabajos/detergentes.pdf disponible en
Internet.
Una gran cantidad de detergentes son arilalquilsulfonatos de sodio que tienen
como fórmula general, R-C6H4-SO3Na, es decir, son sales de ácidos
sulfónicos aromáticos con una cadena alquílica larga. Si la cadena es
ramificada no pueden ser degradados por los microorganismos, por lo que se
dice que son persistentes, y causan grandes problemas de contaminación del
agua de lagos, ríos y depósitos subterráneos. Los arilalquilsulfonatos que
tienen cadenas lineales son biodegradables.
2.4.1 Propiedades de los Detergentes
Los detergentes se caracterizan principalmente por:
Tensoactividad: Es la disminución de la tensión superficial del agua
que permite mayor penetración del agente de limpieza dentro de la
suciedad, y así mismo abarcar una mayor superficie.
Humectación: Se entiende como la capacidad de mojar más, es decir
una misma gota de agua es capaz de abarcar una mayor superficie de
contacto.
Penetración: Como la palabra lo indica, es la capacidad de penetrar o
introducirse en las superficies porosas sucias o en la suciedad.
Emulsión: Es la dispersión o suspensión de finas partículas de uno o
más líquidos en otro líquido. Por ejemplo el aceite o grasa en agua.
Suspensión: Consiste en dejar la suciedad o partículas de suciedad en
solución, evitando que estas se vuelvan a redepositar. Mientras la
tensión superficial permite una mayor penetración de agua sobre la
superficie, el detergente rompe la suciedad en pequeñas partículas
(dispersión) luego la mantiene en suspensión lo que provoca que pueda ser
removida fácilmente.
2.4.2 Tipos de Detergentes 7
Los detergentes son clasificados en tres tipos:
1. Aniónicos: Son detergentes simples similares a los detergentes comunes
usados en el domicilio. Son aceptables para el trabajo de limpieza de
superficies sin embargo no tiene la habilidad de los agentes catiónicos para
matar bacterias. Además los cambios de pH impactan en su efectividad. Estos
detergentes frecuentemente producen espuma la cual deja un residuo en la
superficie que puede causar, con el tiempo, manchas en la misma que deben
ser removidas. Los detergentes aniónicos frecuentemente son usados para
disminuir la tensión superficial y emulsificar.
2. Catiónicos: Son usados en germicidas y fungicidas. Ellos tienen algunas de
las propiedades de los aniónicos. Estos detergentes no son compatibles con
los aniónicos y están formulados con detergentes no iónicos para conseguir
una formulación detergente desinfectante. Ingresan en este grupo: cetrimida,
cloruro de cetilpiridinio.
_____________________________ 7 Tomado de:
http://www.codeinep.com.ar/control/cdeiactualmedioambientelimpiezasuperficies.htm
3. No iónicos: Tienen la mayor propiedad de detergencia y son muy estables en
aguas ácidas o duras. No son germicidas y tienen baja espuma. No dejan
manchas en superficies y no requieren enjuague.
Los detergentes están combinados con desinfectantes para atacar y destruir
las bacterias. La suciedad sobre las superficies provee protección a los
microorganismos los cuales son generalmente encontrados en grupos.
Un buen detergente remueve la suciedad quitando a los microorganismos su
protección y rompiendo los grupos de bacterias, que permiten al desinfectante
tener un contacto directo con las mismas e incrementar la tasa de destrucción.
Por esta razón siempre es mejor un buen detergente y un pobre desinfectante
que un pobre detergente y un buen desinfectante.
Detergentes Naturales
Muchos de los detergentes que utilizamos a diario para la limpieza
de nuestros hogares contienen químicos tóxicos que pueden ser
dañinos tanto para nuestros bebes como para el medioambiente.
Sin embargo, existen muchas alternativas naturales seguras para
la limpieza de nuestro hogar. Algunos de ellos son:
Jugo de Limón: El jugo de limón se puede usar para desodorizar,
eliminar manchas en el aluminio, en la ropa y en la porcelana.
También se puede usar para limpiar los cristales, pero con
cuidado de que no le de la luz, pues de lo contrario mancha.
Bórax: El bórax es un efectivo desodorizador que previene el
crecimiento de hongos, a la vez que aumenta el poder de los
detergentes de lavar, y ayuda a remover las manchas de la ropa.7
2.4.3 Detergentes Sintéticos
Aunque la mayoría de los detergentes sintéticos son considerados
potencialmente contaminantes, debido a la poca capacidad degradable que
tienen, con el paso de los años la tecnología en cuanto a fabricación ha
mejorado y en este momento se cuenta con detergentes sintéticos altamente
degradables.
Los detergentes contienen varios tipos de ingredientes tales como los
surfactantes que disminuyen la tensión superficial del agua. La composición de
los detergentes es mejorada cada vez más debido a las condiciones de su
medio ambiente.
Algunos detergentes sintéticos causan contaminación del agua debido a que
sus agentes surfactantes no destruyen las bacterias en el suelo o en las
plantas de tratamiento de aguas residuales. Se han desarrollado y
estandarizado pruebas para establecer el requerimiento biodegradable de
muchos detergentes.
_________________
7 Tomado de: http://www.lacted.com/0507detergentesnaturales.html
2.4.3.1 Surfactantes aniónicos
Son los más importantes; en 1969 la producción mundial fue próxima a un
millón de toneladas. Los materiales de mayor importancia industrial contienen
cadenas de hidrocarburos saturados unidos directa o indirectamente a grupos
sulfonato o sulfato, las mayores aplicaciones están en el lavado doméstico de
ropa y en los productos de fregado de platos.
Alquilbencenosulfonatos de cadena ramificada (ABS),
biológicamente duros
Los primeros surfactantes aniónicos sintéticos que se explotaron
comercialmente en gran escala se basaron en alquilbencenos. El
dodecilbencenosulfonato sódico es un buen surfactante con excelentes
propiedades de formación de espuma y como se deriva de materias primas
económicas y fácilmente disponibles, llenó aparentemente todos los requisitos
técnicos y económicos de un surfactante sintético. Como su sal cálcica es
mucho más soluble que el jabón cálcico requiere un desendurecedor para ser
efectivo cuando se utiliza para el lavado de ropa en agua dura.
Sin embargo, estos materiales son biológicamente duros, es decir, se degradan
biológicamente con bastante lentitud debido al grupo alquilo altamente
ramificado, basado en propileno tetrámero. Esto quiere decir que una
proporción significativa de ABS sódico que va a los desagües domésticos
sobrevive al tratamiento de aguas residuales y se descarga a los ríos y lagos.
Con ello se originan espumas desagradables durante el tratamiento de aguas
residuales y en los ríos.
Estas espumas fueron no sólo indeseables desde el punto de vista estético,
sino que interfirieron en el tratamiento de aguas residuales de forma severa y
también inhibieron la captación normal del oxígeno de las aguas naturales. En
consecuencia, estos surfactantes biológicamente duros tenían que ser
eliminados en áreas densamente pobladas.
Alquilbencenosulfonatos de cadena lineal (LAS), biológicamente
suaves:
Éstos se biodegradan mucho más rápidamente, es decir, son biológicamente
"suaves". En el principio de la década de 1960 se desarrolló y comercializó un
conjunto de rutas para los alquilbencenos de cadena recta; los materiales duros
basados en propileno tetrámero han sido ya reemplazados por
alquilbencenosulfonatos suaves en la mayoría de los principales mercados
mundiales. Éstos de cadena recta son surfactantes sintéticos, económicos,
eficientes y con muchos los de mayores éxitos hasta la fecha.
Las propiedades de los alquilbencenosulfonatos sódicos de cadena recta
dependen de la longitud de cadena del grupo alquilo y de la posición del anillo
bencénico en la cadena alquílica.
2.4.3.2 Como limpian los detergentes.
La razón fundamental para usar detergentes en el lavado, es que ellos tiene la
habilidad de transformar una molécula que repele el agua en una molécula que
tenga la afinidad con ella, debido a la fuerte tendencia de las cadenas
hidrofobicas de las moléculas del detergente a alejarse lo mas posible de los
alrededores del agua, haciendo que estas cadenas se unan a cualquier
superficie hidrofobica que encuentren: al mismo tiempo la parte hidrófila del
detergente se orienta hacia el agua, resultando de esto que lo que
anteriormente era repelido por el agua, sea ahora afín con ella.
2.4.3.3 Factores que influyen en los detergentes
2.4.3.3.1 Temperatura
La suciedad, al igual que casi todas las sustancias, se disuelven mas
rápidamente en agua a altas temperaturas que en agua fría; los constituyentes
insolubles de la suciedad, son mas fácilmente suspendidos o emulsificados a
altas temperaturas.
Muchas grasas y aceites son sólidos o semi-sólidos a temperatura ordinaria y
liquidas a altas temperaturas por tanto, es más fácil formar las emulsiones.
Los detergentes que tienen cadena de 12 carbonos trabajan mejor a bajas
temperaturas y los de cadenas largas, lo hacen mejor a altas temperaturas. La
mayoría de los detergentes trabajan mejor en un rango de temperatura
comprendido entre los 37 y 60ºC.
2.4.3.3.2 El pH
La acción limpiadora de los detergentes es afectada por la acidez o alcalinidad
de las soluciones.
El uso de jabones esta limitado a soluciones alcalinas por las reacciones ya
conocidas que ocurren en medio acido. Ellos trabajan mejor en cercanías de
pH =10.5.
Los detergentes pueden ser usados en soluciones con pH menor que 7, pero
casi todos lavan mejor en el rango alcalino, siendo el optimo en las cercanías
de pH =10.5
Como los detergentes sintéticos generalmente son neutros, se debe añadir al
baño de lavado sustancias alcalinas, siendo las mas usadas los carbonatos
que poseen cierto poder detergente.
2.4.3.4 Origen de los vertimientos de detergentes.
Los detergentes vertidos en los medios receptores (quebradas, ríos, lagos, etc.)
por medio de los afluentes, tiene diversos orígenes:
Un origen urbano, resultante de las manipulaciones domesticas de lavado de
ropa, baño, limpieza y preparación de los alimentos, y lavado de la loza. Casi
todos los desechos contienen jabones y detergentes sintéticos que
generalmente tienen agentes espumantes, y que son de uso común en las
labores domesticas.
Un origen industrial, resultante de la fabricación de los anteriores productos, o
de su empleo intensivo en ciertos sectores (lavanderías, industrias textiles,
industrias del cuero).
Un origen agrícola, debido al arrastre por las aguas fluviales, de los
coadyuvantes que entran en la composición de formulaciones para diversos
usos (insecticidas, fungicidas)
Comportamiento fisiológico de algunos tipos de detergentes. (Ver tabla 2)
ESTRUCTURA QUÍMICA
TIPO FISICOQUÍMICO
COMPORTAMIENTO
FISIOLÓGICO
Sulfatos de alquilo Anión activo. Fácilmente biodegradable.
Sulfatos alquiloarilicos con
cadena lateral recta
Anión activo. Difícilmente biodegradable.
Sulfanatos alquiloarilicos
de cadena lateral
ramificada con carbono
cuaternario.
Anión activo. Muy difícilmente
biodegradable.
Amonio terciario o sales de
piritina.
Cation activo. Toxico, bacteriocida.
Tabla 2. Comportamiento de Algunos Detergentes. Fuente: (MEINCK)
La toxicidad de los detergentes respecto a los peces y crustáceos en general,
radica esencialmente en sus propiedades físicas, pues la disminución de la
tensión superficial del agua tiene por consecuencia, la fuerte viscosidad en las
branquias, piel y caparazón, disturbios en el equilibrio natural y finalmente la
muerte.
2.4.3.5 Descripción del Proceso Productivo de Detergentes Sintéticos
FIGURA 3. DIAGRAMA PROCESO PRODUCTIVO DETERGENTES SINTETICOS. Tomado de:
http://turnkey.taiwantrade.com.tw/showpage.asp?subid=152&fdname=CHEMICAL+PRODUCTS&pagename=Planta+de+produccion+de+detergentes+sinteticos
En La Figura 3 se muestra, en términos generales las diferentes etapas que se
cumplen durante el proceso productivo de fabricación de los detergentes
sintéticos en cada una de sus presentaciones.
Composición
Las componentes principales de los detergentes actuales son las siguientes:
Tensioactivos o surfactantes: son la sustancia detergente propiamente dicha.
Según las propiedades químicas, se clasifican en aniónicos, catiónicos, no
iónicos y anfóteros (cada tipo tiene propiedades limpiadoras diferentes).
Potenciadores o constructores: retienen el calcio y el magnesio que pueda
haber en el agua, y evitan que la suciedad se vuelva a depositar en el tejido. Se
dice que el agua es dura si contiene mucho calcio o magnesio.
Enzimas: rompen las moléculas de las manchas proteínicas (huevo, leche,
sangre), para que el agua se las pueda llevar.
Blanqueadores: dejan la ropa más blanca y eliminan las manchas más
difíciles.
Abrillantadores ópticos: son sustancias fluorescentes que no se van al
aclarar la ropa. Reflejan los rayos ultravioletas del sol, de manera que la ropa
parece más blanca de lo que es (de hecho, le dan un tono azulado o verdoso,
según la marca). En la ropa de color, los colores quedan más vivos.
Perfumes: dan olor a la ropa.
Relleno: no tiene ninguna función limpiadora, sólo se pone para aumentar el
volumen del detergente. Dependiendo de la fórmula, puede representar desde
un 5% hasta un 45% del total de materia. Los detergentes concentrados no
llevan.
2.4.4 Contaminación por Detergentes
La mayoría de detergentes llevan fosfato para evitar que las partículas de
suciedad vuelvan a la ropa. Esta sustancia tiene un gran impacto ambiental, ya
que la presencia de los fosfatos en las aguas provoca la proliferación de algas
y estas crecen y se reproducen sin control.
Cuando estas mueren, las bacterias las descomponen en un proceso que
consume gran cantidad de oxígeno disuelto en el agua, el cual es necesario
para la vida acuática en general. Al agotarse el oxígeno los otros seres
acuáticos también mueren y como resultado de esto, los ríos y lagos quedan
contaminados. (Ver foto 8)
Foto 8. Cuerpo de Agua con presencia de espumas.
Fuente: http:// iualmunecar.blogia.com/upload/
Los principales problemas causados por detergentes son:
Eutrofización
La eutrofización es un proceso natural de envejecimiento de agua estancada o
de corriente lenta con exceso de nutrientes y que acumula en el fondo materia
vegetal en descomposición. Las plantas se apoderan del lago hasta convertirlo
en pantano y luego se seca. Los problemas se inician cuando el hombre
contamina lagos y ríos con exceso de nutrientes que generan la aceleración del
proceso de eutroficación, que ocasiona el crecimiento acelerado de algas, la
muerte de peces y demás flora y fauna acuática, generando condiciones
anaeróbicas.
Algunos de los cambios que ocurren con la eutroficación:
CAMBIOS BIOLÓGICOS
CAMBIOS FÍSICOS
CAMBIOS QUÍMICOS
FIGURA 4. Cambios Producto de la Eutrofización. Fuente: http://www.sagan-gea.org/hojared/CAgua.html
Aumenta considerablemente el fitoplancton.
Las algas verdeazules se desarrollan espectacularmente mientras que las
de otros tipos desaparecen.
Aumenta la actividad bacteriana.
Los animales acuáticos enferman y mueren.
Los restos de plantas y animales muertos se acumulan en los fondos,
frenando la circulación del agua.
El agua se torna parda y maloliente. Cambia de color: rojo, verde, amarillo
o pardo.
El oxígeno disuelto baja de alrededor de 9 mg/l a 4 mg/l lo cual afecta
negativamente y de inmediato a los organismos. Cuando el nivel baja a 2 mg/l todos los animales han muerto.
Hay una significativa elevación de la DBO.
La concentración de compuestos nitrogenados, fosfatados se
incrementa, así como la de otros elementos químicos
El uso de los compuestos tensoactivos en el agua, al ser arrojados a los lagos
y ríos provoca la disminución de la solubilidad del oxígeno disuelto en la misma
con lo cual se dificulta la vida acuática.
Los detergentes hechos a base de fosfatos provocan un efecto destructor en el
medio ambiente porque aceleran el proceso de eutroficación o eutrofización de
las aguas de lagos y ríos. Como el uso de detergentes fosfatados ha generado
problemas muy graves en el agua, algunos países han prohibido el uso de
detergentes de este tipo.
El poder contaminante de los detergentes se manifiesta en los vegetales
acuáticos inhibiendo el proceso de la fotosíntesis originando la muerte de la
flora y la fauna acuáticas. A los peces les produce lesiones en las branquias,
dificultándoles la respiración y provocándoles la muerte.
La cantidad de algas que una cierta extensión de agua, como un lago, puede
soportar depende de los elementos nutritivos inorgánicos que proporcione y la
acumulación de estos elementos depende de la cantidad de sales que
arrastren las diferentes corrientes de agua al lago. Las algas crecen
rápidamente cuando la cantidad de elementos nutritivos es abundante y
pueden llegar a cubrir la superficie del agua con gruesas capas, y a medida
que algunas algas mueren se convierten en alimento de las bacterias.
Como las bacterias consumen oxígeno para descomponer a las algas,
provocan que la disminución de oxígeno llegue a un nivel que es incapaz de
soportar otras formas de vida, que es indispensable para que no desaparezca
el ecosistema
Espuma
En las plantas de tratamiento de agua provoca problemas de operación, afecta
la sedimentación primaria ya que engloba partículas haciendo que la
sedimentación sea más lenta, dificulta la dilución de oxígeno atmosférico en
agua y recubre las superficies de trabajo con sedimentos que contienen altas
concentraciones de surfactantes, grasas, proteínas y lodos.
Efectos de enzimas activas
Como se mencionó anteriormente, algunos detergentes contienen enzimas, las
cuales atacan sustratos orgánicos específicos. El problema se presenta al usar
exceso de estos detergentes, con lo cual se desechan enzimas activas al
drenaje, las cuales al llegar a los cuerpos de agua provocarán daños en los
seres vivos presentes en éstos, por acción directa sobre ellos o sobre los
nutrientes que componen su dieta alimenticia. 8
___________________________ 8 Ibíd., Tabla 2
2.5 BIOENSAYOS
Los Bioensayos de toxicidad son herramientas altamente utilizadas en la
actualidad que permiten medir la toxicidad de alguna sustancia, o de efluentes,
sometiendo deliberadamente a algún ser vivo a distintas concentraciones.
Por otro lado, facilitan un primer acercamiento a los posibles impactos que
genera un tóxico aislado o una mezcla de ellos, principalmente cuando se
considera una batería de ensayos con organismos de un nicho ecológico en
especial. (Scarone, Sandra).
2.5.1 De acuerdo a su naturaleza se clasifican en:
Bioensayos agudos: cuantifican las concentraciones letales de un xenobiótico
a una especie en particular. El valor calculado se denomina concentración letal
media (CL50) y corresponde a la concentración de un xenobiótico que causa la
muerte al 50 % de la población experimental al cabo de un tiempo determinado,
generalmente en 48 o 96 horas.
Bioensayos crónicos. estiman la concentración – efecto media (CE50) de la
sustancia de prueba que causa un efecto al 50 % de la población experimental,
al cabo de un tiempo determinado, es decir, un efecto que no provoque la
muerte. (Rodríguez y Esclapés, 1995). Entre las respuestas a medir en los
bioensayos crónicos se destacan: cambios en el comportamiento, inhibición de
la capacidad de fertilización, disminución de la reproductividad, etc.
2.5.2 De acuerdo a su técnica se clasifican en:
Estáticos: Consiste en colocar en cámaras de prueba o montajes las
soluciones que se vayan a utilizar en el ensayo y los organismos que se
van a examinar. En estos ensayos, las soluciones son siempre las
mismas.
Semi-estáticos: En ellos se renueva periódicamente el medio de
ensayo (ejemplo: Una vez cada 24 horas).
De Flujo Continuo: Son aquellos en los que existe una renovación
continua del ensayo.
Los Bioensayos de toxicidad con agentes contaminantes en organismos vivos
bajo condiciones de laboratorio, se han incrementado en estos últimos tiempos
debido a la brevedad con que se obtiene la información sobre las dosis letales
y subletales (CL50) que afectan negativamente organismos vivos en los
ambientes marinos, estuarinos y dulceacuícolas (Villamar, 1996).
A causa de la complejidad del medio ambiente acuático y de las comunidades
biológicas que lo integran es difícil establecer el grado de deterioro que afecta a
las especies o comunidades acuáticas. Por esta razón es conveniente realizar
bioensayos utilizando organismos vivos en condiciones controladas de
laboratorio.
Sin embargo, el objetivo primordial de un bioensayo es reflejar la realidad de
cómo afectaría a los organismos vivos en su medio natural y para ello es
recomendable paralelamente investigar continuamente las comunidades en su
propio hábitat (Villamar, 1996).
3. MARCO LEGAL
Con el paso de los años, y debido a la problemática actual mundial en materia
de ambiente, la legislación se ha venido incrementando con el fin de proteger y
conservar los recursos naturales, especialmente aquellos que son más
vulnerables y propensos al deterioro, entre los cuales encontramos los cuerpos
de agua dulces.
La legislación Colombiana en el Decreto 1541 de 1994 contempla una serie de
sustancias de interés sanitario, que permite regular la descarga de las mismas
en un valor de concentración determinado. Dentro de esas sustancias no
aparece registrado valores de tensoactivos.
Sin embargo de acuerdo a la resolución 1596 de 2001 en materia de
vertimientos líquidos, establece que 20(mg/l) corresponde al máximo valor
permisible para el parámetro tensoactivos (SAAM), como rango optimo para
verter en la red matriz de alcantarillado público y/o cuerpos de agua.
A continuación se mostraran los valores permisibles de Tensoactivos, de
acuerdo a la legislación vigente en otros países para comparar con los
establecidos en Colombia:
Nicaragua 10 mg / L
Ecuador 0.5 mg / L
España 2- 20 mg / L
Colombia 20 mg / L
4. METODOLOGÍA
En la metodología se describe la forma como se realizó el proyecto de
investigación, la cual se divide en 6 fases las cuales son: el diseño
experimental, la iniciación del cultivo de Daphnia pulex, como se preparó el
agua reconstituida, como se desarrolló el medio Bristol y el conteo de algas,
como se efectúo el mantenimiento del cultivo, pruebas de sensibilidad, las
pruebas de toxicidad preliminar y definitiva.
Fase 1: Diseño experimental
En esta investigación se controlaron y midieron las siguientes variables:
Variable independiente: La variable que se manejo en las pruebas de
toxicidad fue la concentración de la sustancia prueba o de interés como lo fue
los detergentes (FAB, ARIEL, DERSA, ROTEX) y el componente activo el cual
es el (LAS) así como el porcentaje de dilución del vertimiento.
Variable dependiente: La variable que se manejo fue la obtención de la
concentración letal media de detergentes aniónicos en un tiempo de 48 horas
de exposición por el ciclo de vida del organismo prueba (30-60 días), dado que
este resultado depende de los efectos que el toxico le ocasiona a los
organismos prueba.
Constantes: El numero de organismos utilizados (20 neonatos de Daphnia
pulex por cada concentración), tiempo de exposición al toxico (48 horas) y los
parámetros fisicoquímicos requeridos durante el mantenimiento de los
organismos y durante las pruebas de toxicológicas (pH, dureza, temperatura y
oxigeno disuelto)
En este diseño inicialmente se realizaron pruebas preliminares, utilizando
rangos de concentración 20, 40, 60, 80, 100 mg/l de cada uno de los
detergentes anteriormente nombrados. Se determinó este rango consultando la
normatividad (resolución 1596 de 2001) donde la concentración máxima
permisible para los detergentes es de 20mg/l. posteriormente con los datos de
los rangos obtenidos en el ensayo preliminar, se realizaron las pruebas
definitivas.
Tanto las pruebas preliminares como las definitivas, se utilizaron 5 organismos
por recipiente, de acuerdo con lo establecido en los protocolos propuestos por
CETESB. Así, se usaron baterías de cinco concentraciones más el blanco o
control negativo y cuatro replicas por ensayo con un total de 24 recipientes por
prueba toxicológica (ver Esquema 1), 120 organismos por montaje y 20
organismos por concentración.
FIGURA 5. Test de ensayo.
Fuente: los autores.
4.2 Fase 2: Iniciación del cultivo con Daphnia Pulex
Las Daphnias Pulex son organismos que habitan generalmente en aguas
dulces; la especie objeto de investigación fué obtenida del Humedal de
Guaymaral en el primer semestre del año 2008, ubicado en la Ciudad de
Blanco C1 C2 C3 C4 C5
R1
R2
R3
R4
REPLICAS.
R
E
P
L
I
C
A
S
5 neonatos en cada copa
Bogotá por la Autopista Norte. Con las especies obtenidas a partir de una
muestra de agua tomada de dicho lugar, se inicio el cultivo en el laboratorio.
Las algas Scenedesmus acutus utilizadas como alimento fueron donadas por el
Laboratorio de Microbiología de la Pontifica Universidad Javeriana.
El proceso de adaptación de las Daphnias en el Laboratorio, debe realizarse
con mucha precaución, ya que es necesario garantizar al máximo que las
condiciones ambientales en que se va a llevar a cabo el cultivo sean lo mas
parecidas posibles a las del hábitat original, para que los organismos se
desarrollen de manera satisfactoria (ver tabla 3).
Condiciones Valor.
Luz 700 luxes
Fotoperiodo 16 horas luz, 8 de oscuridad
Alimentación 3 veces por semana
Cantidad de algas 3 millones de algas día/Daphnia Pulex
Dureza 40-47 mg/L CaCO3
Temperatura 19 - 21°C
pH 6.5 – 7.5 unidades
Tabla 3. Condiciones para la supervivencia de Daphnia Pulex
Fuente: los autores
4.3 Fase 3: Preparación de Agua Reconstituida
Es el agua preparada en el laboratorio, utilizada como medio de cultivo para las
Daphnias Pulex y para realizar las pruebas de toxicidad. (Ver foto 9)
Foto 9. Reactivos preparación agua reconstituída.
Fuente: Los Autores
Los reactivos utilizados para su preparación y las cantidades de los mismos se
presentan a continuación: (ver tabla 4)
Reactivos Cantidad gr/L
Cloruro de Calcio (CaCl2) 75 ml
Sulfato de magnesio heptahidratado
(MgSO4 . 7 H2O)
30 ml
Cloruro de potasio (KCl) 38 ml
Bicarbonato de sodio (NaHCO3) 100 ml
TABLA 4. Reactivos para preparar agua reconstituida para 20 L de agua. Fuente: Los autores.
El procedimiento para la preparación es muy sencillo:
Se llenó el acuario con 20 Litros de agua destilada y se agregaron los
reactivos en las cantidades mencionadas anteriormente. (Ver foto 10)
Paso a seguir, se completó el volumen del acuario a 40 litros y se dejó
aireando. Pasadas 24 horas, se procede a hacer la medición de los
parámetros de pH, dureza, oxígeno disuelto y temperatura (Ver Tabla 5),
para verificar que el agua cumpla con las medidas y de esta manera
puede ser utilizada.
Parámetro Valor
pH 6.5 – 7.5 Unidades
Dureza 40 – 47 mg/L CaCO3
Oxígeno Disuelto 5.5 – 8 mg/L OD
Temperatura 18 – 22 ºC
TABLA 5. Parámetros de cumplimiento agua reconstituida. Fuente: Los Autores
Si por algún motivo las condiciones del agua al ser medidas 24 horas
después de su preparación no son las indicadas, se puede hacer el
ajuste aplicando mas agua destilada, ácido clorhídrico o sulfato de
magnesio según sea el caso.
Foto 10. Acuario Agua reconstituida. Fuente: Los Autores
Figura 6. Preparación del agua reconstituida para 40L.
Fuente: Los Autores
4.4 Fase 4: Preparación del Medio Bristol y cultivo Algas Verdes
El Medio Bristol es un conjunto de soluciones (ver foto 11) estandarizadas
compuestas por diferentes nutrientes que hacen posible la reproducción de las
algas verdes (Scenedesmus Acutus). Dichas soluciones deben permanecer
refrigeradas a una Temperatura de 4ºC.
El Medio Bristol se prepara con el fin de lograr la reproducción de las algas
verdes a nivel laboratorio, a través de fotosíntesis con ayuda de lámparas
luminiscentes(700 luxes).. Una vez el proceso se ha llevado a cabo
exitosamente, se procede a centrifugar las mismas y a administrarse de
acuerdo con las cantidades obtenidas.
PREPARACIÓN
AGUA
RECONSTITUIDA
Agua Destilada
20L en acuario
Completar a 40L
con agua
destilada
Medir parametros
fisicoquimicos
Prueba de
Viabilidad
Lectura con un 90%
de organismos vivos
Según tabla 5
24 h despues
T ºC
O.D.
pH
Dureza
Aireación
constante
Adicionar
Adicionar
CaCl2 MgSO4 7H2O KCl NaHCO3
Foto 11. Reactivos preparación medio Bristol. Fuente: Los Autores
A continuación se presentan los reactivos y las cantidades en que deben
proporcionarse para la preparación del Medio Bristol: (ver tabla 6)
No.
COMPUESTO
STOCK
ml de stock para 1L
agua destilada
1 NaNO3 25.0 gr./L 10
2 CaCl2 2H2O 2.5 gr. /L 10
3 MgSO4 7H2O 7.5 gr. /L 10
4 K2HPO4 7.5 gr. /L 10
5 NaCl 2.5 gr. /L 10
6 KH2PO4 17.5 gr. /L 10
7
KOH 15.5 gr. / 500 ml
1
EDTA 25.0 gr. / 500 ml
8
FeSO4 7H2O 2.49 gr. / 500 ml
1
H2SO4 0.05 ml / 500 ml
9 H3BO3 5.71 gr. / 500 ml 1
SOLUCIÓN DE ELEMENTOS TRAZA
10 ZnSO4 7H2O 4.41 gr. / 500 ml
1 ml del stock
combinado
11 MnCl2 4H2O 0.72 gr. / 500 ml
12 MoO3 0.355 gr. / 500 ml
13 CuSO4 5H2O 0.785 gr. / 500 ml
14 CoCl2 6H2O 0.174 gr. / 500 ml
TABLA 6. Preparación del Medio Bristol. Fuente: Determinación de la toxicidad aguda de los detergentes mediante sistemas estáticos, utilizando Daphnia Magna. Universidad de
la Salle.1993
A partir de la preparación del Medio Bristol, se lleva a cabo el siguiente
procedimiento:
Se lleva la solución a un Beacker de 2000 ml, y se cubre con papel kraff
para después ubicarlo en la Autoclave a 121ºC y 15 Libras de Presión,
por 2 horas (ver foto 12) para esterilizar el medio.
Foto 12. Esterilizado medio Bristol. Fuente: Los Autores
Una vez haya transcurrido ese tiempo, se saca el medio de la Autoclave
y se deja enfriar, este proceso puede tardar unas horas, en algunas
ocasiones se dejaba cubierto de un día para otro.
Cuando se haya enfriado en su totalidad, se procede a agregar 10 ml de
las algas ya preparas de la semana anterior. Para de esta manera hacer
el montaje en una probeta de 2000 ml que se cubrirá con un tapón y que
se dejara expuesta a la lámpara luminiscente para llevar a cabo el
proceso de fotosíntesis, en un promedio de 8 a 12 días. El medio debe
permanecer aireado.
Cuando haya transcurrido ese tiempo, el medio debió tomar una
coloración verde esmeralda (ver foto 13), lo que indica que ya esta lista
para centrifugar.
Foto 13. Medio Bristol Algas Verdes
Fuente: Los Autores
Así, que se filtra para retirar los sólidos y se distribuye el medio en los
tubos de ensayo y se introducen en la centrifuga (ver foto14), por un
tiempo de 12 minutos a 2500 rpm. Esto para provocar que las algas se
sedimenten, retirar el sobrenadante y de esta manera con ayuda de una
pipeta obtener las algas ya listas.
Foto 14. Centrífuga Fuente: Los Autores
De las algas obtenidas, se toma una muestra que se revisara con ayuda
del microscopio y la cámara de Cámara Neubauer, con el fin de realizar
el conteo de algas presentes y de esta forma sacar los cálculos que nos
indiquen la cantidad de algas que se debe proporcionar a cada cultivo.
Foto 15. Microscopio lectura de Algas Fuente: Los Autores
Figura 7. Preparación del medio Bristol.
PREPARACIÓN
MEDIO BRISTOL
Beaker de 2000ml con
1500ml de agua destilada
Completar en una probeta
de 2000ml con agua
destilada
Esterilizar en
Autoclave
Recipiente de 2L
+ 2 ml de alga
concentrada
Trasvasar a Beaker de
500ml luego a tubos
de ensayo
Centrifuga
DINAC II
Extraer el concentrado
con la pipeta Pasteur
Almacenar,
refrigerar y rotular
con fecha
Conteo de
algas
Adicionar reactivos
Trasvasar a un beaker Durante 15 min a
121ºC y 15 lb de
presion
Dejar enfriar
Tapar, oxigenar e
iluminar constante
por 15 dias
Llevar a
Durante 15 min a 2500rpm
Fuente: Los Autores
4.5 Conteo de Algas
Para llevar a cabo el conteo de las albas obtenidas anteriormente, es necesario
utilizar una herramienta conocida como Cámara de Neubauer, un instrumento
que permite hacer conteo de células en un medio de cultivo líquido. Consta de
dos placas de vidrio, entre las cuales se puede alojar un volumen conocido de
líquido. Una de las placas posee una grilla de dimensiones conocidas y que es
visible al microscopio óptico.
El primer paso es tomar 0.1 ml del concentrado de algas resultantes del
proceso de centrifugado, y diluirlo en 2.9 ml de agua destilada. De esa dilución
obtenida, tomamos con una pipeta pasteur 0.1 ml y se dispone en la cámara
por las secciones señaladas en la misma, manteniendo siempre la precaución
de que la muestra no ingrese por los canales de la misma. Después se ubica la
cámara en el microscopio y se ubica con el objetivo de 4x, lo que se observara
será una cuadricula como la que se muestra en la siguiente figura.
Fuente: protocolo LB03
El conteo de las algas presentes se realizará solamente en los cuadros
indicados, es decir las diagonales, y es importante aclarar que las células
ubicadas en las líneas divisorias se deben descartar. Se determina la cantidad
de células que existen en un 1 ml, partiendo que la cámara tiene una
capacidad de 1 x 10-4 ml, de la siguiente manera:
X Células = No Células
1 x 10 -4 ml 1 ml
El valor obtenido, se multiplica por el factor de dilución y así se obtiene el valor
real de células presentes en 1 ml.
Y con la siguiente fórmula encontramos la cantidad de algas que se debe
suministrar a una pecera con 20 Daphnias:
V = (A X B)
C
Donde:
V: Volumen concentrado de algas
A: # de Daphnias por acuario
B: Dosis óptima recomendada (4.5 x 106 células Daphnia / día)
C: Concentración (número de células/ml) de la suspensión de algas descritas
y halladas anteriormente 9.
______________________
9. DIAZ BÁEZ, María Consuelo, PICA GRANADOS Yolanda, RONCO Alicia. Ensayos toxicológicos y métodos de evaluación de calidad de aguas: conteo con la cámara de Neubauer. Canada. 2004. P 90.
Figura 8.: Conteo de algas.
Fuente: autores.
4.6 Fase 5: Mantenimiento de los Cultivos Daphnia Pulex.
Los cultivos se manejaron en 4 peceras semanales de 4L de capacidad,
cada una con 20 Daphnias, de esta manera por cada mes, se estaría
contando con 16 peceras que dan un total de 320 organismos
mensuales. El proceso de cultivo, si bien es relativamente sencillo,
requiere de total cuidado porque el más mínimo error contribuiría a la
muerte de las Daphnias. Los pasos a seguir son:
Inicialmente se debe comprobar, si el agua reconstituida, que será el
hábitat de las Daphnias, efectivamente cumple con los requisitos que
permitan la supervivencia de las mismas; esto se lleva a cabo realizando
CONTEO DE
ALGAS
Cámara
NEUBAUER
Colocar una gota
en la camara con
la pipeta pasteurDilución de 30
Agitar concentrado
de alga
Microscopio
Ubicar cuadricula
5 lecturas
diagonales
Cálculos para cantidad
de alimento
Limpiar con agua
destilada y paño suave
Enfocar 40x
Realizar
una pequeña siembra con 10 organismos en vasos plásticos, y al cabo de
24 horas se revisa la tasa de supervivencia, es decir si el 90% de las
Daphnias continúan vivas, significa que el agua ciertamente es apta para el
cultivo, de lo contrario es necesario desecharla y volver a prepararla. Este
proceso se denomina Test de Viabilidad.
Como se había dicho anteriormente, cada pecera contenía 20 Daphnias
en 2 litros de agua reconstituida, se debe realizar limpieza diaria, es
decir separar Daphnias adultas (madres) de neonatos (ver foto 16), y
filtrar el agua, con el fin de remover los restos del alimento que se
pueden acumular. Cada 8 días se cambia el 70% del agua.
Es necesario mantener siempre en cada pecera las 20 Daphnias
Adultas, en caso tal que al momento de realizar el conteo se observe
reducción en la población, con ayuda de las reservas que quedaron del
día del cultivo, se completa a la cantidad requerida.
Para el lavado de las peceras, es importante que al momento de
realizarlo, no se utilice ningún tipo de jabón, ni detergente, etc., ya que
de no ser removido en su totalidad, puede depositarse en algunos
Sectores de la pecera y causar daños e incluso la muerte de los
organismos. Por esta razón el lavado consta simplemente, de un
enjuague con agua destilada y posteriormente una purga con agua
reconstituida.
Foto 16. Separación de neonatos.
Fuente: Los Autores
El alimento se suministra de acuerdo a los cálculos obtenidos a partir del
conteo de algas,3 veces por semana, teniendo en cuenta que dicha
cantidad es suficiente para dos días, lo que quiere decir que se
proporciona alimento los lunes, miércoles y viernes.
Las peceras deben estar ubicadas, en un lugar fresco libre de cualquier
tipo de contaminante entre 19 y 21ºC y deben permanecer cubiertas (ver
foto 17), para evitar que agentes externos afecten las condiciones
óptimas de desarrollo de los organismos.
Otro aspecto importante a tener en cuenta es la luz, ya que este tipo de
organismos manejan foto periodos de 16 horas de luz y 8 horas de
oscuridad, por esta razón es necesario contar con un temporizador que
conectado a las lámparas luminiscentes permita controlar dichos
tiempos.
Foto 17. Ubicación de Peceras.
Fuente: Los Autores
Figura 9.: Mantenimiento del cultivo.
Fuente: autores.
4.7 Fase 6: Ensayos de Toxicidad
MANTENIMIENTO DE
CULTIVO Daphnia pulex
MANTENIMIENTO LIMPIEZA RECOLECCIÓN Y
MANIPULACION DE
ORGANISMOS
4 Peceras 20
organismos
T 20ºC 16 h
luz/ 8 h
oscuridad
tapadas
Nueva siembra
c/8-12 dias.
Hasta 4
semanas
Realizar
pruebas de
sensibilidad
Con agua
destilada
Separar D. pulex
en recipientes
plasticos
c/8 dias cambio 1/2
de agua dura
reconstituida nueva
Extraer
neonatos
Colocarlos en
recipientes
Plásticos
Condiciones de
mantenimiento
inicial
2L agua dura
condiciones de cultivo
se estabiliza cultivo
agua dura nueva
Ubicar peceras
Lavar
Para llevar a cabo las pruebas de toxicidad con Daphnia Pulex, se siguieron las
indicaciones presentadas en los protocolos de la Universidad de la Salle para
Daphnia Pulex, suministrados por el profesor Pedro Miguel Escobar.
Inicialmente, es necesario realizar pruebas con Dicromato de Potasio (K2Cr2O7)
para verificar la sensibilidad de los organismos frente a esta sustancia de
referencia.
Las condiciones para realizar las pruebas tanto preliminares como las del
contaminante respectivo son las mismas:
Se requieren neonatos con edad de máximo 24 horas, esto debido a
que entre mayor edad tengan mas resistentes son al contaminante.
24 copas blancas de 1Oz las cuales se distribuirán para las 5
concentraciones y el blanco cada una con 4 repeticiones (ver foto 18), la
sustancia que se agregara en el blanco, es agua reconstituida con una
dureza de 40 – 47 mg CaCO3 / L. A cada copa se le agregara 10 ml de
la concentración respectiva
Es necesario hacer las mediciones de pH y oxígeno disuelto a las
soluciones por cada concentración aleatoriamente, al iniciar y al finalizar
la prueba, para así comprobar que la muerte de los organismos
efectivamente se debe a la presencia del contaminante y no a
alteraciones en las condiciones del medio.
Blanco C1 C2 C3 C4 C5
R1 R2 R3 R4 R5 R6
Foto 18. Pruebas de Toxicidad Fuente: Los Autores
En cada copa se disponen 5 neonatos, una vez contengan tanto las
soluciones como los organismos, se ubican en los recipientes y estos a
su vez se cubren con papel kraft y se introducen en las bolsas negras
bien cerradas (ver foto 19) para que de esta manera las Daphnias se
impregnen del toxico al buscar la luz, con un rotulo donde se indique la
fecha de realización de la prueba, la hora y la solución utilizada para
llevar un control.
Foto 19. Mantenimiento de pruebas Fuente: Los Autores
Pasadas 48 horas, se procede a efectuar las lecturas de las pruebas,
donde se revisara una a una cada copa y se contaran la cantidad de
organismos muertos, para después introducir dichos resultados en el
Probit y encontrar el valor de la concentración letal media.
4.7.1 Preparación de Soluciones
Para Pruebas con Dicromato de Potasio (K2Cr2O7).
Se parte de una solución patrón de 1000 ppm (1 gr. K2Cr2O7 / 1 L agua
Destilada), a partir de la cual se realizan las diferentes diluciones para
conseguir las concentraciones deseadas que se emplearan para el desarrollo
de las pruebas. Lo anterior lo desarrollamos con ayuda de la siguiente fórmula:
V1C1 = V2C2
Donde:
V1 = Volumen a preparar (capacidad del balón 250 ml)
C1 = Concentración a la que se desea llegar
V2 = Volumen a Calcular
C2 = Concentración Solución Patrón
Despejando la fórmula, quedaría así:
V2 = C1 V1
C2
De tal manera que si por ejemplo se deseara preparar la dilución para una
concentración de 0.5 ppm:
V2 = 0.5 ppm x 250 ml
1000ppm
V2 = 0.125 ml
Este Valor lo que indica, es que de la solución patrón se deben tomar 0.125 ml
y llevarlos al balón de 250ml y completar con agua reconstituida de 40-47 mg
CaCO3 / L a la capacidad total del mismo.
Para las pruebas con Dicromato de Potasio, se utilizaron las siguientes
concentraciones: Blanco, 0.05 ppm, 0.1ppm, 0.2 ppm, 0.3 ppm, 0.5 ppm.
El procedimiento se repite para cada concentración a trabajar pero debido a
que el valor de los rangos establecidos es muy pequeño, para las siguientes
concentraciones en lugar de remitirse a la solución patrón, tomamos la anterior.
Es decir, para la concentración de 0.3, el volumen que se obtenga a partir de la
formula no se tomará de la solución patrón, sino de la solución de 0.5 ppm y así
sucesivamente.
Para Pruebas con Detergentes y Componente Activo
Para llevar a cabo estas pruebas, se utilizó como detergente principal uno de
Tipo Industrial de nombre Rotex, utilizado en algunas lavanderías (ver anexo
C) y su componente activo el LAS (Lauril Alquil Sulfato).
A su vez, se desarrollaron pruebas con tres detergentes comerciales: Ariel, Fab
y Dersa; con el fin de comparar el comportamiento de los organismos entre las
tres marcas.(Ver Tabla 7). Para estos detergentes, fue imposible encontrar
tanto las fichas técnicas como las hojas de seguridad, así que en los anexos se
presenta la información que aparece en cada una de las bolsas plásticas
respectivamente.
El procedimiento de preparación de las diluciones es exactamente el mismo
que para las del Dicromato de Potasio, es decir a partir de la formula, solo que
para este caso como los valores del rango de concentraciones son más altos,
siempre tomaremos de referencia la solución patrón.
Las concentraciones utilizadas fueron:
SUSTANCIAS mg/L mg/L mg/L mg/L mg/L mg/L
DERSA Blanco 20 40 60 80 100
FAB Blanco 20 40 60 80 100
ARIEL OXIAZUL Blanco 20 40 60 80 100
ROTEX Blanco 100 200 300 400 500
LAS Blanco 20 40 60 80 100
TABLA 7. Concentraciones Utilizadas para realizar Pruebas de Toxicidad Fuente: Los Autores
Adicionalmente, se tomaron muestras de 4 lavanderías diferentes, a las cuales
se les realizó la respectiva medición de parámetros como DQO, grasas y
aceites, SAAM y pH, con el fin de comparar dichos resultados con los
obtenidos en la caracterización de la solución preparada.
Los muestreos llevados a cabo en dichas lavanderías fueron compuestos con
una duración de 3 horas cada uno, ya que el ciclo de descarga en cada una de
ellas esta alrededor de 30 a 40 min. A continuación se presentan, los datos
obtenidos :
Nombre de empresa Caudal
(m3 /mes) DQO
(mg/L)
Aceites y Grasas (mg/L)
SAAM (mg/L)
Lavandería los Almenares 57.6 1700 86 0.9
Lavandería Renovador 50.4 1800 171 3.3
Lavandería el Portal 64.8 1500 215 4.6
Lavandería Ibiza 36 1000 37 2.6
TABLA 8. Resultados Medición Parámetros muestras de lavanderías . Fuente: Los Autores
De acuerdo a la información estipulada en la tabla 8, se puede observar que los
valores de SAAM para cada lavandería se encuentran alrededor de 0.9 y 4.6
mg/L, valores que dan cumplimiento a la resolución 1596 del 2001. Asi mismo,
se evidencia que los valores de DQO son bastante altos, lo que también podría
ocasionar la muerte de los organismos y no necesariamente el detergente
como tal.
Foto 21. Desagüe de Lavanderías tipo. Fuente: Los Autores
Como se menciono anteriormente, a nivel laboratorio se realizo la
caracterización de la solución preparada, con el fin de analizar los principales
parámetros de interés para esta investigación; Los resultados obtenidos se
muestran a continuación
PARAMETRO VALOR
Caudal Total 0.03m3/h
Turbidez 172 NTU
Grasas y Aceites 51mg/l
DQO 1000mg/l
Sólidos Sedimentables 0mg/l
DBO 11.9mg/l
SAAM 5.0mg/l
pH 9.18
Temperatura 29°C
Dureza 17 mg CaCO3 / L
Sólidos Totales 508mg/l
TABLA 9. Resultados Caracterización del Vertimiento. Fuente: Los Autores
Para realizar las pruebas de toxicidad con la muestra preparada, se debe tener
en cuenta que las soluciones a diferencia del detergente puro, el dicromato y la
sustancia pura, se realizan en porcentaje a volumen, con concentraciones que
van de 0 al 100%, diluidas en agua reconstituida de 40-47 mg CaCO3 / L. Se
preparan en pipetas volumétricas de 250 ml y se envasan y refrigeran. Así
mismo es necesario acondicionar los parámetros del vertimiento, para de esta
manera asegurar que los microorganismos se mueren al entrar en contacto con
el mismo y no por cambio en las condiciones habituales en las que se
encuentran, es decir hay q realizar la medición de pH, oxígeno disuelto y
controlar la cantidad de sólidos presentes en la muestra de agua.
El procedimiento para llevar a cabo las pruebas, es exactamente el mismo que
se tuvo en cuenta anteriormente con las otras sustancias y de la misma manera
los resultados se obtendrán pasadas 48 horas de realizado el test, momento en
el cual se realizará el conteo de organismos muertos por cada replica.
4.7.2 Obtención del Índice Toxicológico
Para calcular el Índice Toxicológico se tiene en cuenta, el valor de la
concentración letal media (CL 50) del vertimiento y la carga tóxica del efluente;
Para encontrar el valor de la Carga Tóxica se recurre a la siguiente fórmula:
Carga Tóxica (UT) = 100
CL 50
X Q
Con el cálculo y transformación logarítmica en base 10 de la carga tóxica se
obtuvo el Índice Toxicológico de la siguiente manera:
IT = Log (1+UT)
Con el que se clasificó el vertimiento, basado en los rangos establecidos en la
tesis “Implementación de un sistema de alerta de riesgo toxicológico utilizando
Daphnia Pulex para la evaluación de muestras Ambientales”, realizada por
Pedro Miguel Escobar, los cuales se presentan en la Tabla 10.
Rangos Carga Tóxica
1 – 1.99 Despreciable
2 – 2.99 Reducida
3 – 3.99 Moderada
4 – 4.99 Considerable
>5 Elevada
TABLA 10. Rangos de Índices Toxicológicos. Fuente: ESCOBAR, Malaver Pedro Miguel. Implementación de un sistema de alerta de riesgo toxicológico utilizando Daphnia Pulex
para la evaluación de muestras ambientales. 1997
En el Anexo E. se puede observar el diagrama general de la metodología, con
cada una de las fases que la componen.
5. ANALISIS DE RESULTADOS
De acuerdo a la metodología y a los objetivos planteados en la investigación, a
continuación se realizará el análisis de cada una de las fases que componen
dicha metodología y que permitieron el desarrollo del proyecto.
5.1 Daphnia Pulex ( Cultivo y Mantenimiento)
A lo largo del tiempo transcurrido desde el momento en que inicio el proyecto
hasta su finalización, en términos generales se puede afirmar que la tasa de
reproduccion y el ciclo de vida de los organismos mantuvo condiciones
estables, pero es importante aclarar que hacia el mes de abril debido a razones
desconocidas, se presento una disminución considerable en la población, pero
gracias a la reacción oportuna se logro estabilizar nuevamente el cultivo.
Todos estos valores correspondientes a tasa reproductiva, se recopilaron en
una hoja de control (Anexo F) donde se registro la reproducción de Daphnia
Pulex en el mes de junio, julio y agosto, haciendo un promedio durante el
tiempo de ejecución del proyecto y observando la época donde las mismas
tiene su mayor periodo de reproducción y la etapa donde su ciclo reproductivo
disminuye.
Un factor importante para el desarrollo de los organismos es la Temperatura, la
cual siempre se conservo en los rangos óptimos para Daphnia Pulex (19 –
21ºC), y al momento de hacer las pruebas con el vertimiento fue un parámetro
de control para garantizar la eficiencia de los resultados.
En lo que al alimento respecta, en algunas ocasiones se presentaron
problemas por la cantidad y calidad del mismo, ya que los reactivos utilizados
para preparar el medio bristol estaba llegando al final de su vida util, razón por
la cual se observo una disminución en la producción de neonatos por pecera;
para solucionar este impase se recurrio a comprar nuevamente los reactivos y
preparar el medio.
Entre la tercera y la cuarta semana, los cultivos empezaban a presentar
cambios en el color tanto del agua como de los organismos, esto indicaba que
el ciclo de vida de los mismos estaba llegando a su etapa final y que era
necesario renovar el cultivo correspondiente a esa fecha. Es importante
recordar que por mes debian existir en total 16 peceras producto de 4 cultivos
por semana.
5.2 Ensayos de Toxicidad
Las Pruebas respectivas de toxicidad, se llevaron a cabo con diferentes
sustancias de interés para el objetivo principal de esta investigación. Se
analizarán respectivamente cada una de ellas.
5.2.1 Pruebas de Sensibilidad con Dicromato de Potasio
Para efectuar las pruebas con esta sustancia de referencia, se utilizaron
soluciones con diferentes concentraciones en las cuales se expusieron los
organismos. Los valores de dichas concentraciones se muestran a
continuación: (ver tabla 11)
Las pruebas de Dicromato de Potasio, se hacen con el fin de medir qué tan
precisos y consistentes son los resultados obtenidos en las pruebas de
toxicidad en el laboratorio.
Inicialmente se realizaron 5 pruebas preliminares que ayudaron a identificar el
rango base para iniciar y posteriormente ir abriendolo hasta encontrar el valor
donde la mitad de la población muere a causa de la sustancia en un término de
48 horas. Los rangos utilizados en las pruebas preliminares, se encuentran en
la siguiente tabla:
TABLA 11. Rangos Pruebas Preliminares Dicromato de Potasio. Fuente: Los Autores
De acuerdo a los valores obtenidos y expresados en la tabla anterior, se
encontró que los valores pertenecían al rango que esta ente 0.01 ppm donde el
porcentaje de muerte fue del 0% a 1 ppm, concentración en la que el 100% de
los organismos expuestos murió.
A partir de estos datos se realizaron las 20 pruebas definitivas, con
concentraciones intermedias entre el rango dicho anteriormente; los valores
finalmente utilizados fueron (ver tabla 12):
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0/20 00
0.1 ppm 3 2 4 2 5.0 7.4 11/20 55
0.2 ppm 5 4 5 5 19/20 95
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 12. Rangos de Pruebas Definitivas Dicromato de Potasio. Fuente: Los Autores
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.001 ppm 0 0 0 0 0/20 0
0.01 ppm 0 0 0 0 0/20 0
0.1 ppm 3 3 4 3 4.9 7.3 13/20 65
1 ppm 5 5 5 5 20/20 100
10 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Con base en esa tabla se puede observar que en la concentración de 0.05 ppm
existe un 0% de mortalidad, mientras que en 0.5 ppm el porcentaje es del
100%.
Análisis de varianza de las pruebas definitivas con Dicromato de Potasio.
Para la determinación del análisis de varianza se tomo la prueba definitiva de
sensibilidad, y se elaboro una tabla donde se compara los valores para
determinar si una prueba es o no significativa y se puede tomar como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0 0
0.1 ppm 3 2 4 2 11 2,75
0.2 ppm 5 4 5 5 19 4,75
0.3 ppm 5 5 5 5 20 5
0.5 ppm 5 5 5 5 20 5
Total 70 17,5
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 116,333333 5 23,2666667 119,657143 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 119,833333 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
119.657143 > 2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
TABLA 13. Carta de control de prueba de sensibilidad definitiva con Daphnia Pulex Fuente: Los Autores
Análisis Probit
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
10/06/08 0.0808 0.0663 0.0961
10/06/08 0.0900 0.0746 0.1061
11/06/08 0.0899 0.0759 0.1055
16/06/08 0.0816 0.0693 0.0955
16/06/08 0.0867 0.0721 0.1024
16/06/08 0.0759 0.0670 0.0875
16/06/08 0.0733 0.0623 0.0859
17/06/08 0.0779 0.0625 0.0934
17/06/08 0.1000 0.0852 0.1174
17/06/08 0.0816 0.0693 0.0955
19/06/08 0.0900 0.0746 0.1061
19/06/08 0.0808 0.0663 0.0961
21/06/08 0.0899 0.0759 0.1055
24/06/08 0.0759 0.0670 0.0875
24/06/08 0.0733 0.0623 0.0859
24/06/08 0.0867 0.0721 0.1024
24/06/08 0.0816 0.0693 0.0955
25/06/08 0.0816 0.0693 0.0955
25/06/08 0.1000 0.0852 0.1174
25/06/08 0.0779 0.0625 0.0934
PROMEDIO 0.0837 0.0704 0.0985
Para determinar la Concentración Letal Media del Tóxico, se utilizo el programa
estadístico Probit, el cual permite encontrar la proporción de población u otros
elementos que resultarán afectados a consecuencia del accidente en un punto
dado. Consiste en asociar la probabilidad de un daño, con unas determinadas
unidades. De esta manera, se halla el límite inferior y el límite superior de cada
prueba realizada, con un límite de confianza del 95%. Los Valores se muestran
a continuación: (Tabla 13).
En la gráfica N° 1 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 10 datos representativos,
así como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
GRAFICA 1. Concentración Letal Media para Dicromato de Potasio. Fuente: Los Autores
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con Dicromato de Potasio realizados en las prácticas de laboratorio, se observó
que los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes, con un límite
inferior de 0.0704 ppm hasta un límite superior de 0.0988 ppm y un promedio
de 0.0837 ppm que fue la Concentración Letal Media definitiva de Dicromato de
Potasio para Daphnia Pulex.
A continuación se muestra la Tabla 14, donde se presentan los resultados de
sensibilidad obtenidos en investigaciones anteriores y así como los
encontrados en la presente. El comparativo de la concentración letal media
para el Dicromáto de potasio muestra similitud en los resultados, si se tiene en
cuenta que el tiempo de diferencia entre el primer valor que fue el encontrado
por Escobar en 1997 (0.1175 mg/L) y último valor que es el arrojado por esta
investigación (0.083 mg/L) es de diez años.
El valor de la CL 50-48 del segundo registro, muestra desfase en comparación
con los otros valores, lo anterior, debido a que las condiciones de laboratorio no
garantizaban un lugar óptimo para el cultivo.
AAññoo
mmgg//LL
LLíímmiittee ssuuppeerriioorr
mmgg//LL
LLíímmiittee
iinnffeerriioorr mmgg//LL RREEFFEERREENNCCIIAA
1997 0.1175 0.1969 0.0381 ESCOBAR, 1997
2007 0.394 0.563 0.221 BERNAL Y ROJAS, 2007
2007 0.097 0.121 0.068 OROZCO Y TORO, 2007
22000088 00..008899 00..112277 00..006699 ZZAAMMBBRRAANNOO YY
BBEELLTTRRÁÁNN,,22000088
22000088 00..008833
0.0988 0.0704 IIBBAAÑÑEEZZ YY CCAASSAALLLLAASS,, 22000088
AAññoo CCLL5500--2244
mmgg//LL
LLíímmiittee ssuuppeerriioorr
mmgg//LL
LLíímmiittee
iinnffeerriioorr mmgg//LL RREEFFEERREENNCCIIAA
22000044 00..114455 0.197 0.092 SSiillvvaa,, TTeerrrreejjoonn,, BBaayy,, LLaarrrraaiinn,,
22000044 CChhiillee
Tabla 14. Comparación resultados de sensibilidad con Dicromato de Potasio Fuente: Los Autores
5.2.2 Pruebas Toxicológicas con Detergentes
Uno de los objetivos específicos del proyecto es hallar la concentración letal
media de detergentes industriales aniónicos, para esto fue necesario realizar
las pruebas de toxicidad con organismos de ecosistemas acuáticos (Daphnia
Pulex) aplicando diferentes concentraciones de dichas sustancias. El
vertimiento como ya se nombro anteriormente fue recolectado de las
Lavanderías del Club el Nogal; y a su vez, se llevaron a cabo pruebas con
detergentes comerciales para observar las diferentes reacciones y poder
comparar.
Pruebas con Detergente Rotex
Rotex es un detergente de tipo Industrial, utilizado en algunas lavanderias, para
la limpieza de todo tipo de prendas allí manejadas. De acuerdo a la información
suministrada en la Ficha Técnica y la Hoja de Seguridad (Anexos C Y D), este
detergente es Biodegradable.
Prueba Preliminar
Al Igual que en el caso del dicromato de potasio, aquí también fue necesario
realizar pruebas preliminares para poder encontrar el rango finalmente
utilizado. Es importante comentar, que encontrar ese rango preliminar fue
bastante complicado, ya que inicialmente se empezó a trabajar con
concentraciones pequeñas en las cuales, no se obtuvo ningún resultado ya que
la población sobrevivía, razón por la cual fue necesario manejar
concentraciones mucho mas grandes. Estos valores se presentan a
continuación:
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
100 ppm 0 0 0 0 0/20 0
200 ppm 0 0 0 0 0/20 0
300 ppm 0 0 0 0 0/20 0
400 ppm 1 0 2 0 3/20 15
500 ppm 4 5 5 5 5.1 7.5 19/20 95
TABLA 15. Rango de Pruebas Preliminares Rotex. Fuente: Los Autores
De acuerdo a los valores mostrados en la tabla anterior, podemos evidenciar
que las concentraciones a partir de las cuales la población presentaba muerte
por contacto con el detergente se encontraban en el rango de 400 ppm a 500
ppm. A partir de este rango, se buscarían los valores intermedios que
ayudarían a encontrar la CL 50-48 definitiva.
Prueba Definitiva
Las concentraciones definitivas para determinar la CL 50-48 son:
Concentración
No. de Organismos
Medidas Finales
No Observado Muertes
% Mortalidad
Nominal Muertos No Total Organismos Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
420 ppm 3 3 4 4 5.0 7.5 14/20 70
440ppm 5 5 5 5 20/20 100
460 ppm 5 5 5 5 20/20 100
480 ppm 5 5 5 5 20/20 100
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 16. Rango de Pruebas definitivas Rotex. Fuente: Los Autores
Se determinó de acuerdo a los resultados que en la concentración de 420 ppm,
el 70% de los organismos presentaban muerte por contacto con el tóxico, lo
que indicaba que el valor de la CL 50-48 esta entre 400 y 420 ppm. De 440 a
500 ppm el porcentaje de afectación es del 100 %. Como se puede observar
las concentraciones trabajadas son bastante altas comparadas con las
anteriormente utilizadas.
Análisis de varianza
Para la determinación del análisis de varianza se tomó la prueba definitiva con
el detergente Rotex, y se elaboró una tabla donde se comparó los valores para
determinar si una prueba es o no significativa y se puede tomar como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
420 ppm 3 3 4 4 14 3,5
440 ppm 5 5 5 5 20 5
460 ppm 5 5 5 5 20 5
480 ppm 5 5 5 5 20 5
500 ppm 5 5 5 5 20 5
Total 94 23,5
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 80,8333333 5 16,1666667 291 2,77
Dentro de Grupos
1 18 0,05555556
Total 81,8333333 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
291 > 2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media de detergente Rotex fue determinada por medio
del programa estadístico Probit, hallando el límite inferior y el límite superior de
cada prueba de toxicidad realizada, con un límite de confianza de 95%, los
valores de la concentración letal al igual que los valores del promedio se
muestra a continuación (Tabla 17).
FECHA CL50-48 (ppm) LIMITE INFERIOR
(ppm)
LÍMITE SUPERIOR (ppm)
12/08/08 436.7612 417.6573 456.3428
12/06/08 418.3445 384.4860 461.6338
12/08/08 451.6116 433.6407 471.1613
13/08/08 356.5385 335.3700 380.4907
13/08/08 369.5433 342.1886 395.7033
20/08/08 407.6354 357.4919 417.5167
20/08/08 407.6354 357.4919 417.5167
20/08/08 412.8508 391.1614 420.2210
20/08/08 410.5080 379.6422 418.9188
20/08/08 410.5080 379.6422 418.9188
PROMEDIO 408.1936 377.8772 425.8423
TABLA 17. Carta de control de prueba definitiva Rotex con Daphnia Pulex Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 10 pruebas de toxicidad con el detergente Rotex se
determino que la concentración letal media del mismo es de 408.1936 ppm, a
esta concentración la mitad de los organismos expuestos al contamínate
mueren.
GRAFICA 2. Concentración Letal Media para Detergente Rotex. Fuente: Los Autores
En la gráfica N° 2 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 10 datos representativos,
así como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con detergente Rotex realizados en las prácticas de laboratorio, se observó que
los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes, con un límite
inferior de 377.8772 ppm hasta un límite superior de 425.8423 ppm y un
promedio de 408.1936 ppm que fue la Concentración Letal Media definitiva de
detergente Rotex para Daphnia Pulex.
Pruebas con Detergentes Comerciales
Para el caso de los detergentes comerciales, no fue necesario realizar pruebas
preliminares, ya que con las concentraciones iniciales se encontraron los
valores de la Concentración Letal Media. También es importante aclarar, que
para este tipo de detergentes no se cuenta con ningún registro de hoja de
seguridad ni de ficha de datos, en los anexos se presenta brevemente la
descripción de cada uno de ellos de acuerdo a la información contenida en el
empaque.
Pruebas con detergente Dersa
Dersa es un detergente comercial muy utilizado en nuestros hogares sus
principales características se pueden observar en el Anexo G
Después de realizadas las respectivas pruebas con el detergente Dersa, se
obtuvo el valor de la CL 50-48, los datos se presentan a continuación:
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40ppm 0 0 0 0 0/20 0
60 ppm 2 2 3 3 10/20 50
80 ppm 4 4 3 4 5.0 7.2 15/20 75
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 18. Rango de Pruebas Detergente Dersa. Fuente: Los Autores
Se determinó que la concentración donde la mitad de los organismos
expuestos Daphnia Pulex mueren por la exposición al detergente Dersa es 60
ppm y el rango se encuentra entre 40 ppm donde sobreviven el 100% de los
organismos expuestos y 100 ppm donde muere el 100 % de la población
expuesta.
Análisis de varianza.
Para la determinación del análisis de varianza se tomó la prueba definitiva con
el detergente Dersa, y se elaboró una tabla donde se comparo los valores para
determinar si una prueba es o no significativa y se puede tomar como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
20 ppm 0 0 0 0 0 0
40 ppm 0 0 0 0 0 0
60 ppm 2 2 3 3 10 2,5
80 ppm 4 4 3 4 15 3,75
100 ppm 5 5 5 5 20 5
Total 45 11,25
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 96,875 5 19,375 199,285714 2,77
Dentro de Grupos
1,75 18 0,09722222
Total 98,625 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
199.285 > 2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media de detergente Dersa fue determinada por medio
del programa estadístico Probit, hallando el límite inferior y el límite superior de
cada prueba de toxicidad realizada, con un límite de confianza de 95%, los
valores de la concentración letal al igual que los valores del promedio se
muestra a continuación:
FECHA CL50-48 (ppm)
LIMITE INFERIOR
(ppm)
LÍMITE SUPERIOR (ppm)
05/08/2008 62,340 56,706 68,212
05/08/2008 60,425 54,999 66,028
05/08/2008 60,088 53,929 65,877
04/08/2008 64,386 58,579 70,503
02/08/2008 42,541 32,118 51,716
PROMEDIO 57,956 51,266 64,467
TABLA 19. Carta de control de prueba Detergente Dersa con Daphnia Pulex Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 5 pruebas de toxicidad con el detergente Dersa se
determino que la concentración letal media del mismo es de 57.9560 ppm, a
esta concentración la mitad de los organismos expuestos al contamínate
mueren.
GRAFICA 3. Concentración Letal Media para Detergente Dersa. Fuente: Los Autores
En la gráfica N° 3 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 5 datos representativos, así
como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con detergente comercial Dersa realizados en las prácticas de laboratorio, se
observó que los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes, con
un límite inferior de 51,266 ppm hasta un límite superior de 64,467 ppm y un
promedio de 57,956 ppm que fue la Concentración Letal Media definitiva de
detergente Dersa para Daphnia Pulex.
Prueba con Detergente Fab Total
Fab Total es un detergente comercial muy utilizado en nuestros hogares sus
principales características se pueden observar en el Anexo H
Despues de realizadas las pruebas respectivas, las concentraciones y
resultados se muestran a continuación en la tabla 20:
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40ppm 3 2 2 3 10/20 50
60 ppm 4 4 4 5 4.7 7.3 18/20 90
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 20. Rango de Pruebas Detergente Fab. Total. Fuente: Los Autores
Se determinó que la concentración donde la mitad de los organismos
expuestos Daphnia Pulex mueren por la exposición al detergente FAB TOTAL
es 40 ppm y el rango se encuentra entre 20 ppm donde sobreviven el 100% de
los organismos expuestos y 80 ppm donde muere el 100 % de la población
expuesta.
Análisis de varianza.
Para la determinación del análisis de varianza se tomo la prueba definitiva con
el detergente FAB TOTAL, y se elaboro una tabla donde se compara los
valores para determinar si una prueba es o no significativa y se puede tomar
como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
20 ppm 0 0 0 0 0 0
40 ppm 3 2 2 3 10 2,5
60 ppm 4 4 5 5 18 4,5
80 ppm 5 5 5 5 20 5
100 ppm 5 5 5 5 20 5
Total 68 17
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 113,333333 5 22,6666667 204 2,77
Dentro de Grupos
2 18 0,11111111
Total 115,333333 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
204 > 2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media de detergente FAB TOTAL fue determinada por
medio del programa estadístico Probit, hallando el límite inferior y el límite
superior de cada prueba de toxicidad realizada, con un límite de confianza de
95%, los valores de la concentración letal al igual que los valores del promedio
se muestran a continuación de la tabla N° 21
FECHA CL50-48 (ppm)
LIMITE INFERIOR
(ppm)
LÍMITE SUPERIOR (ppm)
23/07/2008 56,336 52,175 60,430
22/07/2008 35,699 30,189 40,795
23/07/2008 44,059 38,383 49,215
23/07/2008 33,764 28,435 38,605
23/07/2008 40,606 35,127 45,487
PROMEDIO 42,093 36,862 46,906
TABLA 21. Carta de control de prueba Detergente Fab Total con Daphnia Pulex Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 5 pruebas de toxicidad con el detergente FAB TOTAL
se determinó que la concentración letal media del mismo es de 42.0929 ppm, a
esta concentración la mitad de los organismos expuestos al contamínate
mueren.
GRAFICA 4. Concentración Letal Media para Detergente Fab Total. Fuente: Los Autores
En la gráfica N° 4 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 5 datos representativos, así
como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con detergente comercial Fab Total realizados en las prácticas de laboratorio,
se observó que los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes,
con un límite inferior de 36,862 ppm hasta un límite superior de 46,906 ppm y
un promedio de 42,093 ppm que fue la Concentración Letal Media definitiva de
detergente Fab Total para Daphnia Pulex.
Pruebas con Detergente ARIEL OXIAZUL.
Ariel Oxiazul es un detergente comercial muy utilizado en nuestros hogares sus
principales características se pueden observar en el Anexo I
Despues de realizadas las pruebas respectivas, las concentraciones y
resultados se muestran a continuación:
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40ppm 4 5 5 4 18/20 90
60 ppm 5 5 5 5 5.3 7.3 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 22. Rango de Pruebas Detergente Ariel Oxiazul. Fuente: Los Autores
Se determino que la concentración donde la mitad de los organismos
expuestos Daphnia Pulex mueren por la exposición al detergente es 40 ppm y
el rango se encuentra entre 20 ppm donde sobreviven el 100% de los
organismos expuestos y 60 ppm donde muere el 100 % de la población
expuesta.
Análisis de varianza
Para la determinación del análisis de varianza se tomo la prueba definitiva con
el detergente ARIEL OXIAZUL, y se elaboro una tabla donde se compara los
valores para determinar si una prueba es o no significativa y se puede tomar
como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
20 ppm 0 0 0 0 0 0
40 ppm 4 5 5 4 18 4,5
60 ppm 5 5 5 5 20 5
80 ppm 5 5 5 5 20 5
100 ppm 5 5 5 5 20 5
Total 78 19,5
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 127,5 5 25,5 459 2,77
Dentro de Grupos
1 18 0,05555556
Total 128,5 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
459 > 2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media de detergente ARIEL OXIAZUL fue determinada
por medio del programa estadístico Probit, hallando el límite inferior y el límite
superior de cada prueba de toxicidad realizada, con un límite de confianza de
95%, los valores de la concentración letal al igual que los valores del promedio
se muestran a continuación de la tabla N° 23
FECHA CL50-48 (ppm)
LIMITE INFERIOR
(ppm)
LÍMITE SUPERIOR (ppm)
04/08/2008 30,924 27,277 34,933
02/08/2008 27,849 24,146 31,250
31/07/2008 28,693 25,613 32,809
06/08/2008 28,693 25,613 32,809
06/08/2008 30,924 27,277 34,933
PROMEDIO 29,417 25,985 33,347
TABLA 23. Carta de control de prueba Detergente Ariel Oxiazul con Daphnia Pulex Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 5 pruebas de toxicidad con el detergente ARIEL
OXIAZUL se determino que la concentración letal media del mismo es de
29.4165 ppm, a esta concentración la mitad de los organismos expuestos al
contamínate mueren. A continuación se representan los datos obtenidos, en la
gráfica correspondiente:
GRAFICA 5. Concentración Letal Media para Detergente Ariel Oxiazul. Fuente: Los Autores
En la gráfica N° 5 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 5 datos representativos, así
como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con detergente comercial Fab Total realizados en las prácticas de laborator io,
se observó que los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes,
con un límite inferior de 25,985 ppm hasta un límite superior de 33,347 ppm y
un promedio de 29,417 ppm que fue la Concentración Letal Media definitiva de
detergente Ariel Oxiazul para Daphnia Pulex.
En términos generales, podemos observar que las concentraciones letales en
detergentes comerciales son mucho mas pequeñas que en el caso del
detergente industrial Rotex utilizado en el Club el Nogal.
Pruebas con componente activo (Lauril Alquil Sulfato)
El Lauril Alquil Sulfato es el componente activo para la mayor parte de los
detergentes biodegradables que existen en el mercado, sus principales
características se observan en el Anexo J. Es importante aclarar, que esta
sustancia fue suministrada por el Laboratorio de la CAR, ya que
comercialmente es muy difícil de conseguir.
Prueba preliminar
Para lograr establecer la CL50-48 de toxicidad al (LAS) en los organismos
expuestos fue necesario empezar por pruebas preliminares que indiquen con
que rango se puede empezar a trabajar, se establece un rango mas pequeño.
Para lograr determinar la concentración exacta donde la mitad de los
organismos expuestos Daphnia Pulex viven, en un termino de 48 horas, el
rango inicial y los valores de los mismos se presentan a continuación en la
tabla.Nº 24
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 5 5 5 5 5.0 7.3 20/20 100
40ppm 5 5 5 5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 24. Rango de Pruebas Preliminares Componente Activo (LAS). Fuente: Los Autores
Después de realizar varias pruebas preliminares con el Lauril Alquil Sulfato se
escogió el valor entre 1 ppm donde se muere el 0% y 20 ppm donde se muere
el 100% de los organismos expuestos (neonatos Daphnia Pulex)
Prueba definitiva.
Para la realización de las pruebas definitivas se establecieron rangos que van
de 1 a 20 ppm.
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
1 ppm 0 0 0 0 0/20 0
5 ppm 0 0 0 0 0/20 0
10 ppm 0 0 0 0 0/20 0
15 ppm 3 3 2 3 5.1 7.5 11/20 55
20 ppm 5 4 5 5 19/20 95
TABLA 25. Rango de Pruebas Definitivas Componente Activo (LAS). Fuente: Los Autores
Se determinó que la concentración donde la mitad de los organismos
expuestos Daphnia Pulex mueren por la exposición al componente activo (LAS)
es 15 ppm y el rango se encuentra entre 10 ppm donde sobreviven el 100% de
los organismos expuestos y 20 ppm donde muere el 100 % de la población
expuesta.
La Daphnia Pulex es muy sensible al componente activo (LAS) y las
concentraciones deben ser bajas para hallar la CL50-48.
Análisis de varianza de las pruebas definitivas con componente activo (LAS).
Para la determinación del análisis de varianza se tomo la prueba definitiva de
toxicidad, y se elaboro una tabla donde se compara los valores para determinar
si una prueba es o no significativa y se puede tomar como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
1 ppm 0 0 0 0 0 0
5 ppm 0 0 0 0 0 0
10 ppm 0 0 0 0 0 0
15 ppm 3 3 2 3 11 2,75
20 ppm 5 4 5 5 19 4,75
Total 30 7,5
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 83 5 16,6 199,2 2,77
Dentro de Grupos
1,5 18 0,08333333
Total 84,5 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
199.2 > 2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media del componente activo de detergente Lauril Alquil
Sulfato fue determinada por medio del programa estadístico Probit, hallando el
límite inferior y el límite superior de cada prueba de toxicidad realizada, con un
límite de confianza de 95%, los valores de la concentración letal al igual que los
valores del promedio se muestra a continuación de la tabla N° 26
FECHA CL50-48 (ppm)
LIMITE INFERIOR
(ppm)
LÍMITE SUPERIOR (ppm)
21/08/2008 14,537 13,393 15,810
21/06/2008 14,714 13,462 16,175
21/08/2008 15,333 14,097 16,757
23/08/2008 15,234 13,879 16,899
23/08/2008 14,537 13,393 15,810
28/08/2008 15,195 14,412 15,977
28/08/2008 15,434 14,661 16,214
29/08/2008 15,101 14,321 15,874
29/08/2008 14,974 14,189 15,748
29/08/2008 15,308 14,506 16,128
PROMEDIO 15,036 14,031 16,139
TABLA 26. Carta de control de prueba Componente Activo (LAS) con Daphnia Pulex Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 10 pruebas definitivas de toxicidad con el
componente activo Lauril Alquil Sulfato se determino que la concentración letal
media del mismo es de 15.0364 ppm, a esta concentración la mitad de los
organismos expuestos al contamínate muere
GRAFICA 6. Concentración Letal Media para Componente Activo (LAS). Fuente: Los Autores
En la gráfica N° 6 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 10 datos representativos,
así como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con el componente activo (LAS) realizados en las prácticas de laboratorio, se
observó que los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes, con
un límite inferior de 14,031 ppm hasta un límite superior de 16,139 ppm y un
promedio de 15,036 ppm que fue la Concentración Letal Media definitiva del
componente activo (LAS) para Daphnia Pulex.
A continuación se muestra la tabla 27 de comparación de resultados obtenidos
anteriormente con los hallados en esta investigación.
El comparativo de la concentración letal media para el componente activo de
los detergentes (LAS) muestra similitud en los resultados, si se tiene en cuenta
que el tiempo de diferencia entre el primer y último valor es de diez años.
AAññoo
mmgg//LL
LLíímmiittee ssuuppeerriioorr
mmgg//LL
LLíímmiittee
iinnffeerriioorr mmgg//LL RREEFFEERREENNCCIIAA
1997 18.62 22.90 15.14 ESCOBAR, 1997 (Daphnia
Magna)
2008 15,036 16,139 14,031 IBAÑEZ Y CASALLAS, 2008
Daphnia Pulex
Tabla 27. Comparación resultados de CL50-48 con (LAS). Fuente: Los Autores
A partir de la comparación arrojada por las dos tesis se puede determinar que
la especie Daphnia Pulex es mas sensible que la especie Daphnia Magna al
componente activo de los detergentes (LAS).
En la tabla Nº 28 se muestra los valores de CL50-48 obtenidos a partir de las
pruebas toxicológicas correspondientes a cada uno de los detergentes, con sus
límites inferiores y superiores, respectivamente.
Sustancia CL50-48 (ppm) LIMITE INFERIOR
(ppm)
LÍMITE SUPERIOR
(ppm)
Detergente Rotex 408.1936 377.8772 425.8423
Detergente Dersa 57,956 51,266 64,467
Detergente Fab
Total 42,093 36,862 46,906
Detergente Ariel
Oxiazul 29,417 25,985 33,347
Lauril Alquil
Sulfato (LAS) 15,036 14,031 16,139
Tabla 28. Valores de CL50-48 para los detergentes y su componente activo Fuente: autores
De acuerdo a la anterior tabla, la escala de valores de la concentración letal
media para detergentes de la mas alta a la mas baja se distribuye de la
siguiente manera, Ariel Oxiazul con un valor de 29.417 ppm, Fab Total con un
valor de 42.093 ppm, Dersa 57.956, Rotex 408.1936ppm.
Prueba de toxicidad con la solución preparada sin tratar.
Luego de haber realizado varias pruebas de toxicidad se obtuvo el valor de la
CL50-48, Para el vertimiento.
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 % 1 2 2 1 6/20 30
40 % 3 3 2 3 5.3 7.5 11/20 55
60 % 4 4 5 5 18/20 90
80 % 5 5 5 5 20/20 100
100 % 5 5 5 5 20/20 100
TABLA 29. Rango de Pruebas Vertimiento Lavandería Club el Nogal Fuente: Los Autores
Se determinó que la concentración donde la mitad de los organismos
expuestos Daphnia Pulex mueren por la exposición al vertimiento es 40 % y el
rango se encuentra entre blanco donde sobreviven el 100% de los organismos
expuestos y 80 % donde muere el 100 % de la población expuesta.
La Daphnia Pulex es moderadamente sensible a la solución preparada y las
concentraciones deben ser bajas para hallar la CL50-48.
Análisis de varianza
Para la determinación del análisis de varianza se tomo la prueba definitiva con
la solución preparada, y se elaboro una tabla donde se compara los valores
para determinar si una prueba es o no significativa y se puede tomar como
hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
20% 1 1 3 2 7 1,75
40% 3 2 2 3 10 2,5
60% 4 5 5 5 19 4,75
80% 5 5 5 5 20 5
100% 5 5 5 5 20 5
Total 76 19
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 86,8333333 5 17,3666667 69,4666667 2,77
Dentro de Grupos
4,5 18 0,25
Total 91,3333333 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
69.46 >2.77
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media del vertimiento de la lavandería fue determinada
por medio del programa estadístico Probit, hallando el límite inferior y el límite
superior de cada prueba de toxicidad realizada, con un límite de confianza de
95%, los valores de la concentración letal al igual que los valores del promedio
se muestran a continuación de la tabla N° 30.
FECHA CL50-48
(% v/v) LIMITE
INFERIOR (% v/v)
LÍMITE SUPERIOR
(% v/v)
05/09/2008 29,209 21,977 35,353
05/09/2008 27,647 20,742 33,498
04/09/2008 30,254 23,245 36,312
04/09/2008 27,473 19,535 33,989
04/09/2008 31,202 24,106 37,255
PROMEDIO 29,157 21,921 35,281
TABLA 30. Carta de control de prueba solución preparada con Daphnia Pulex sin tratar, Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 5 pruebas definitivas de toxicidad con la muestra
preparada se determino que la concentración letal media del mismo es de
29.1570 %, a esta concentración la mitad de los organismos expuestos al
contamínate mueren.
GRAFICA 7. Concentración Letal Media para solución preparada. Fuente: Los Autores
En la gráfica N° 7 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 5 datos representativos, así
como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con la solución preparada, realizados en las prácticas de laboratorio, se
observó que los valores arrojados por el Probit se mantuvieron constantes, con
un límite inferior de 21,92 % v/v hasta un límite superior de 35,281% v/v y un
promedio de 29,157 % v/v que fue la Concentración Letal Media definitiva de la
solución preparada sin haber sido tratada para Daphnia Pulex.
55..33 OOBBTTEENNCCIIÓÓNN DDEE LLAA CCAARRGGAA TTÓÓXXIICCAA EE ÍÍNNDDIICCEE TTOOXXIICCOOLLÓÓGGIICCOO
VVEERRTTIIMMIIEENNTTOO CCRRUUDDOO..
Para clasificar la industria según su descarga a cuerpos de aguas fue
necesario tener en cuenta el valor de la CL50-48 de la solución preparada y el
caudal utilizado en el diseño de la unidad.
5.3.1 Índice toxicológico detergente
CL 50-48 solución preparada = 29.1570% volumen de la muestra
Q = 21.6 m3 / mes
Carga Tóxica (UT) = 100
29.1570%
Carga Toxica (UT) = 82.57 UT
Una vez hallada la carga tóxica de la solución preparada se determino el
índice toxicológico del mismo con la siguiente formula:
IT = Log (1 + 82.57 UT) = 1.92
El índice toxicológico para Detergentes se halla dentro del rango de 1-1.99, lo
que quiere decir que la muestra de la solución preparada con características de
una lavandería, Contiene una carga tóxica despreciable según la tabla Nº 11.
X 21.6 m3 / mes
Figura 10.: Clasificación del índice toxicológico de la solución preparada.
Fuente: los autores
Es importante tener en cuenta, que el Indice Toxicológico hallado anteriormente
es catalogado como despreciable, debido a que el caudal utilizado fue
asumido por tratarse de una solución preparada y su valor es mínimo si lo
comparamos con el trabajado en términos reales por una lavandería comercial.
El valor del caudal y del Indice Toxicológico son directamente proporcionales.
Por esta razón, a continuación se presentan los cálculos del Indice
toxicológicos con el valor del caudal trabajado por una de las lavanderías
donde se llevo a cabo el muestreo.
ÍNDICE TOXICOLÓGICO LAVANDERÍA EL PORTAL
CL 50-48 Vertimiento= 29.1570% volumen de la muestra
Q = 64.8 m3 / mes
INDICE TOXICOLOGICO DE UNA
SOLUCION COMPUESTA CON
CARACTERISTICAS DE UNA
LAVANDERIA
2
3
4
5
6
0
1
2
3
4
5
6
7
1
CARGA TOXICA
RA
NG
OS
Despreciable
Reducida
Moderada
Considerable
Elevada
Indice toxicologico
de una solución compuesta
sin tratar
Carga Tóxica (UT) = 100
29.1570%
Carga Toxica (UT) = 222.24 UT
Una vez hallada la carga tóxica del vertimiento se determino el índice
toxicológico del mismo con la siguiente formula:
IT = Log (1 + 222.24 UT) = 2.34
El índice toxicológico para Detergentes se halla dentro del rango de 2-2.99, lo
que quiere decir que la muestra de vertimiento de la lavandería el portal,
Contiene una carga tóxica reducida según la tabla Nº 11.
Como se observa en el anterior ejemplo al ser los caudales de las empresas
altos de la misma manera la carga toxica e índice toxicológico serán altos, esto
hace que las empresas según su caudal y Cl50-48 puedan llegar a ser
clasificadas con cargas toxicas elevadas e impactaran en gran medida al
ambienta.
6. TRATAMIENTO DE LA SOLUCION PREPARADA CON
CARACTERISTICAS DE UNA LAVANDERIA TIPO
6.1 Planteamiento de Alternativas.
En la actualidad, existen diferentes alternativas tecnológicas que permiten la
remoción de tensoactivos en aguas residuales. Para llevar a cabo la selección
de la metodología más apropiada para efectos de esta investigación, a
X 64.8 m3 / mes
continuación se expondrán algunos tratamientos indicando ventajas y
desventajas de los mismos.
Fuente: los autores
Tratamientos biológicos.
Tratamientos biológicos aeróbicos.
El proceso básico de tratamiento aeróbico es el proporcionar un medio de alto
contenido de oxígeno para que los organismos puedan degradar la porción
orgánica de los desechos a dióxido de carbono y agua en presencia del
oxígeno.
Los sistemas aeróbicos son similares a los sistemas sépticos en cuanto a que
los dos usan procesos naturales para el tratamiento del agua residual. Pero a
diferencia del tratamiento séptico (anaeróbico), los procesos aeróbicos de
tratamiento requieren oxígeno. Las unidades de tratamiento aeróbico, por esto,
usan un mecanismo de inyección y circulación de aire dentro del tanque de
tratamiento. Dado que los sistemas aeróbicos usan procesos de tasas más
rápidas, estos pueden lograr una mejor calidad del efluente.
Los tratamientos biológicos aeróbicos, resultan adecuados cuando se tratan
tensoactivos biodegradables. Debido a la incorporación mecánica de oxígeno
TRATAMIENTOS PARA REMOCIÓN DE TENSOACTIVOS
BIOLÓGICO QUÍMICO FÍSICO
Tratamiento Aeróbico Bioremediación Oxidación Adsorción Coagulación
(aire), se ve favorecida la formación de espumas, fenómeno que puede
regularse por el empleo de antiespumantes (generalmente a base de siliconas)
o incrementando la población de microorganismos en la cámara de aireación
(baja relación alimento /microorganismos). En general este tipo de tratamiento
resulta hasta concentraciones máximas de tensoactivos de 25 a 30 mg/L.
Costo inicial entre U$2500 a U$9000
Costo de mantenimiento y operación: U$30 mes
Biorremediación.
La biorremediación es el uso de seres vivos para restaurar ambientes
contaminados. Es un concepto que no se debe de confundir con depuración. La
depuración es la eliminación, ya sea por métodos físico/químicos o biológicos,
de un contaminante antes de que éste alcance el medio ambiente. Cuando la
contaminación ya se ha producido, se precisa restaurar el ecosistema
contaminado, para lo que se pueden utilizar diversas estrategias. Una de ellas
es la biorremediación.
El proceso de biorremediacion Se ocupa de la utilización de bacterias y
enzimas para producir cambios en los contaminantes que afectan al medio
ambiente (agua, suelo y aire) generando compuestos de menor o ningún
impacto ambiental. Estos cambios en los contaminantes de las aguas
residuales provocan una disminución de olores desagradables y aumenta la
vida útil de su cuerpo receptor. Todo mediante la manipulación con productos
orgánicos para el tratamiento de aguas residuales con lo cual se aumenta la
velocidad de cambio o degradación de los contaminantes. Específicamente
para la bioremediación de tensoactivos la bacteria más usada es la
pseudomona s.p.
La importancia de los trastornos causados por los tensoactivos, reside en su
resistencia a la biodegradación. Si bien todos los tensoactivos se degradan por
un ataque biológico, el grado de descomposición depende de su estructura
química, de ahí que se hace necesario tener un pretratamiento antes del
biológico para romper las ramificaciones que se encuentran en los compuestos
de los tensoactivos y así no retardar los procesos posteriores de
bioremediación.
Tratamiento químico.
Oxidación.
Un oxidante es un compuesto químico que oxida a otra sustancia en
reacciones electroquímicas o redox. En estas reacciones, el compuesto
oxidante se reduce. Hay sustancias que pueden donar electrones; son
sustancias reducidas que en las condiciones adecuadas se pueden oxidar, y
por lo tanto transformarse en formas oxidadas.
Los agentes oxidantes más comúnmente usados además del oxígeno son:
Cloro, Ozono, Peróxido de Hidrógeno y Permanganato de Potasio, pero en
general existe gran variedad de oxidantes. Estas sustancias oxidan los
contaminantes para transformarlos en otros más biodegradables y/o de más
fácil remoción o adsorción. La oxidación puede ser mejorada, con control de pH
y el uso de catalizadores.
Oxidación por ozono.
La oxidación por ozono es ampliamente utilizada en el tratamiento de las
aguas, tanto potables como residuales. Permite la eliminación de compuestos
tanto orgánicos como inorgánicos, reduciéndose el TOC, olor, color, sabor y
turbidez de las aguas, así como compuestos refractarios (sustancias tóxicas y
compuestos farmacéuticos).
El ozono descompone gran parte de los tensoactivos biodegradables y no
biodegradables, transformándolos en estructuras más simples de
biodegradación.
Estudios realizados sobre concentraciones de tensoactivos de alta
concentración (hasta 50 mg/L, expresadas como SRAO) han demostrado su
alta efectividad y rápida acción en tasas que variaban entre 1 a 2,5 g de O3 / g
SRAO según el pH de la solución.
Así, su aplicabilidad dependerá del tipo de vertimiento a tratar, entendiendo que
siempre debe emplearse en combinación con otro proceso (fisicoquímico y/o
biológico), necesarios para reducir el resto de los contaminantes presentes en
un vertimiento.
Costo inicial: $1´000.000
Costo de mantenimiento y operación: $350.000 mes
Tratamientos físicos.
Adsorción.
El carbón activado es el mejor adsorbente de uso general para
remoción/reducción de muchos compuestos orgánicos y aún algunos
inorgánicos del agua y de aguas residuales.
La adsorción es un proceso por el cual moléculas de impurezas se
adhieren a la superficie del carbón activado. La adherencia es gobernada
por una atracción electro-química. El carbón activado es preparado a
partir de diversos materiales, tales como, carbón, madera, cáscaras de
nueces, turba y petróleo. El carbón se transforma en "activado" cuando es
calentado a altas temperaturas (800 a 100oC) en la ausencia de oxigeno.
El resultado es la creación de millones de poros microscópicos en la
superficie del carbón.
El proceso de adsorción trabaja como un imán para mantener las
impurezas en la superficie del carbón activado. Esto es una acción
diferente de aquella que actúa como una esponja en el proceso de
absorción, en el cual un gas o líquido es succionado hasta el centro del
cuerpo poroso y allí mantenido.
Los compuestos de tensoactivos, entre otros compuestos (fenoles), se pueden
adsorber sobre una serie de materiales como carbón activado, resinas
poliméricas sintéticas y biopolímeros. Una vez el contaminante se encuentre
adsorbido se debe realizar algún tipo de tratamiento para reutilizar el
adsorbente y obtener el tensoactivo a mayor concentración. Sus principales
desventajas son los costos derivados de la regeneración o disposición final, la
tendencia a formar obstrucciones hidráulicas y la necesidad de adicionar
material para compensar las pérdidas. Los adsorbentes poliméricos sintéticos,
poseen una alta selectividad y mayor resistencia mecánica pero tienen un costo
muy elevado.
Costo inicial: $1´300.000
Costo de mantenimiento y operación: $100.000 mes
6.2 Elección de la alternativa a implementar.
La alternativa a implementar se escogió a partir de la matriz de evaluación
realizada para cada tratamiento, donde se determinan las ventajas y
desventajas, los costos y la viabilidad de cada uno de los sistemas
recomendados.
La matriz se muestra a continuación, y los valores de los costos son estimados
y fueron suministrados por el Ingeniero Javier Oramas, quien de acuerdo a su
experiencia, proporciono un precio aproximado de implementación y
mantenimiento.
ADSORCION
VENTAJAS Su capacidad para trabajar eficazmente a
concentraciones bajas de contaminante.
Flexibilidad frente a las variaciones de caudal y
concentración.
La posibilidad de regenerar el adsorbente y la
posibilidad de recuperar sustancias retenidas cuando
ello resulte de interés económico.
DESVENTAJAS Puede generarse proliferación de algunos
microorganismos en el lecho de carbón.
En algunos casos, cuando el contaminante es muy
soluble, puede presentarse problemas de adsorción
por parte del carbón.
Si la muestra contiene cantidades considerables de
sólidos es necesario implementar una unidad anterior
a esta para evitar la colmatación del filtro.
VIABILIDAD Debido a su diseño compacto, es fácil de instalar en
espacios pequeños y sus costos de mantenimiento y
operación no son muy altos.
COSTOS Costo inicial: $1´300.000
Costo de mantenimiento y operación: $100.000 mes
OXIDACION POR OZONO
VENTAJAS Facilidad de producción de ozono desde aire u
oxígeno por descargas eléctricas
Facilidad de reacción con compuestos orgánicos e
inorgánicos debido a su alta reactividad y potencial
de reducción.
El ozono reduce el TOC, color, olor y turbidez del
agua tratada.
Es uno de los desinfectantes químicos más
eficientes, ya que requiere un tiempo de contacto
pequeño
DESVENTAJAS El ozono es altamente corrosivo y tóxico.
El coste inicial del equipamiento es alto, y los
generadores requieren mucha energía.
Se forman DBPs en presencia de bromo, aldehídos,
cetonas, etc.
Son necesarios filtros activados para la eliminación
de carbono orgánico biodegradable
VIABILIDAD Su manejo se presenta muy complejo, y los costos de
montaje y operación son muy elevados.
COSTOS Costo inicial: $12.000.000
Costo de mantenimiento y operación: $130.000 mes
BIORREMEDIACION
VENTAJAS El sistema utiliza los tensoactivos como fuente de
carbono y de energía, transformándolos en biomasa,
gas carbónico y otros compuestos.
Es eficaz en la remoción de detergentes anicónicos
debido a que estos tienen estructuras químicas
lineales, lo que hace más fácil su degradación.
Disminuye la presencia de olores desagradables en
el cuerpo receptor.
DESVENTAJAS Es ineficaz cuando se trabaja con detergentes
cationicos, debido a que estos tienen propiedades
desinfectantes.
La única bacteria que se puede utilizar para degradar
los tensoactivos es la pseudomona s. p.
Su velocidad de biodegradación en los detergentes
depende de su tipo de estructura química.
Es necesario que al sistema biológico le anteceda un
sistema de pretratamiento para así romper las
ramificaciones que puedan llegar a tener los
tensoactivos.
VIABILIDAD Se torna un poco complicado el mantenimiento de
este tipo de sistemas por involucrar organismos.
COSTOS El precio de Implementación y mantenimiento varia
dependiendo del sistema a implementar y de los
organismos a utilizar.
Después de analizar las diferentes alternativas de tratamiento de remoción de
tensoactivos, se eligió el filtro de carbón activado, ya que es un sistema que se
acomoda mejor al espacio destinado para su implementación, los costos en
montaje y mantenimiento son muchísimo mas económicos; adicional el carbón
activado por su capacidad de adsorción, genera una mejor eficiencia en el
proceso de remoción.
El filtro de carbón activado bituminoso se caracteriza por ser de
funcionamiento semicontinuo, de lecho profundo mixto, con dirección de flujo
descendente por gravedad de baja tasa. La ubicación del lecho filtrante
siempre se da, por el lecho mas fino en este caso va el carbón activado, hasta
el lecho con mas diámetro, la grava. Este diseño esta apoyado por una unidad
previa de tratamiento que garantice las condiciones para la eficiencia esperada
del filtro.
Se hizo necesario incluir el diseño de un filtro de arena de lecho profundo mixto
con dirección de flujo descendente por gravedad que retiene partículas más
pequeñas que no fueron removidas, para evitar colmatación en el lecho filtrante
del filtro de carbón activado bituminoso. (Ver Anexo L).
Características de carbón activado bituminoso utilizado en el filtro.
Características CAGR
Origen Mineral Bituminoso
Activación Física
Densidad aparente (g/ml) 0.47
Índice de yodo (mg/g) 900
Área superficial (m2/g) 1.050
Para la elaboración del Filtro de Carbón Activado, se solicito a préstamo un
filtro de arena que se encontraba en la planta piloto de la Universidad, con el fin
de utilizar solamente el acrílico que funciona como cobertura. El préstamo fue
realizado por la Ing. Rosalina González.
CALCULO DEL FILTRO A NIVEL PILOTO DE ARENA
Velocidad en tubería
Caudal
Carga Hidráulica
Rango Arena a se utilizo
Área filtro
Diámetro filtro
Altura filtro
Densidad de la arena
1600
Densidad grava
Altura de la grava
Rango a se utilizo
Altura vacía del filtro
Altura de la arena
Volumen de arena
Volumen de grava
Masa de arena
Masa de grava
Parámetro Valor Unidades
Caudal 0,02991
Carga hidráulica 15
Área filtro 0,001994
Diámetro filtro 0,0503
Altura filtro 1
Densidad de la arena 1600
Densidad grava 1700
Altura de la grava 0,2
Altura vacía del filtro 0,333
Altura de la arena 0,47
Volumen de la arena 0,00093718
Volumen de la grava 0,0003988
Masa de la arena 1,49088
Masa de la grava 0,67796 TABLA 31. Resultados Cálculo de Filtro de Arena a Nivel Piloto.
Fuente: Los Autores
CALCULO DEL FILTRO A NIVEL PILOTO DE CARBÓN ACTIVADO
BITUMINOSO
Caudal
Carga Hidráulica
Rango Arena a se utilizo
Área
Diámetro
Altura filtro
Densidad de carbón activado bituminoso
470
Densidad grava
Altura de la grava
Rango a se utilizo
Altura vacía del filtro
Altura de carbón activado bituminoso
Volumen de Carbón activado bituminoso
Volumen de grava
Masa de carbón activado bituminoso
Masa de grava
Parámetro Valor Unidades
Caudal 0,02991
Carga hidráulica 3
Área filtro 0,00997
Diámetro filtro 0,1126
Altura filtro 1
Densidad de carbón activado bituminoso 470
Densidad grava 1700
Altura de la grava 0,2
Altura vacía del filtro 0,333 Altura de carbón activado bituminoso 0,47 Volumen de carbón activado bituminoso 0,0046859
Volumen de la grava 0,001994 Masa de carbón activado bituminoso 2,202373
Masa de la grava 3,3898 TABLA 32. Resultado Cálculos Filtro Carbón Activado a Nivel Piloto.
Fuente: Los Autores
Foto 22. Filtro de arena y filtro de carbón activado Fuente: Los Autores
Una vez el sistema de tratamiento, fue instalado y puesto en marcha, se hizo
pasara a través de el, la solución preparada con características de una
lavandería tipo; acto seguido, se procedió a realizar nuevamente la
caracterización de la muestra, con el fin de evaluar la eficiencia de remoción
del sistema y conocer los valores de cada parámetro después del tratamiento.
Los Resultados arrojados se consignan (Ver tabla 37) a continuación:
PARAMETRO VALOR
Caudal Total 0,02991 m3/h
Turbidez 13.4 NTU
Sólidos Sedimentables 0 mg/ L
DBO 9 mg / L
SAAM 1.3 mg / L
pH 6.7
Temperatura 20 ºC
Dureza 14 mg CaCO3 / L
Sólidos Totales 85 mg / L
Grasas y Aceites 16 mg / L
DQO 140 mg / L
Tabla 33: caracterización de vertimiento tratado Fuente: los autores
Una vez el vertimiento pasó por el sistema de tratamiento, se llevaron a cabo
las pruebas de toxicidad con la muestra, para demostrar el cambio en la CL
(50-48) con respecto al valor resultante de la primera prueba con el vertimiento
puro.
Prueba de toxicidad con la solución preparada tratada.
Una vez el vertimiento pasó por el sistema de tratamiento, se llevaron a cabo
las pruebas de toxicidad con la muestra, para demostrar el cambio en la CL
(50-48) con respecto al valor resultante de la primera prueba con el vertimiento
puro.
Concentración
Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales
No Observado Muertes
No Total Organismos
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0 0
20 % 0 0 0 0 0 0
40 % 0 0 0 0 0 0
60 % 0 0 2 1 0.15 15
80 % 2 2 1 3 5.1 7.4 0.4 40
100 % 4 5 4 5 0.9 90
TABLA 34. Rango de Pruebas Preliminares Componente Activo (LAS). Fuente: Los Autores
Se determino que la concentración donde la mitad de los organismos
expuestos Daphnia Pulex mueren por la exposición al vertimiento es 100 (v/v)
% y el rango se encuentra entre blanco donde sobreviven el 100% de los
Organismos expuestos y 100 (v/v) % donde muere el 90 % de la población
expuesta. (Ver tabla 38)
Análisis de varianza
Para la determinación del análisis de varianza se tomo la prueba definitiva con
el vertimiento tratado de la lavandería, y se elaboro una tabla donde se
compara los valores para determinar si una prueba es o no significativa y se
puede tomar como hipótesis.
Concentración Nominal
No. de replicas Total Promedio
R1 R2 R3 R4
Blanco 0 0 0 0 0 0
20% 0 0 0 0 0 0
40% 0 0 0 0 0 0
60% 0 0 0 0 0 0
80% 0 2 1 1 4 1
100% 4 5 5 5 19 4.75
Total 23 5.75
Tratamientos 6
Observaciones 4
Total 24
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de cuadrados
F Calculado F Teórico
Entre grupos 72,2083333 5 14,4416667 94,5272727 2,77
Dentro de Grupos
2.75 18 0,15277778
Total 74,9583333 23
Ho: Las diferentes concentraciones producen el mismo efecto en todos los
organismos
H1: Las diferentes concentraciones producen un diferente efecto en todos los
organismos.
Fc > Ft: se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alterna,
concluyendo que las diferentes concentraciones producen efectos distintos en
los organismos prueba.
Análisis Probit.
La concentración letal media del vertimiento tratado de la lavandería fue
determinada por medio del programa estadístico Probit, hallando el límite
inferior y el límite superior de cada prueba de toxicidad realizada, con un límite
de confianza de 95%, los valores de la concentración letal al igual que los
valores del promedio se muestran a continuación de la tabla N° 39
FECHA CL50-48
(%v/v) LIMITE
INFERIOR (%v/v)
LÍMITE SUPERIOR
(%v/v)
06/11/08 86.3742 82.3174 90.4727
06/11/08 83.1733 78.2419 88.5310
06/11/08 79.8592 74.3811 85.3951
06/11/08 86.3742 82.3174 90.4727
06/11/08 86.3376 81.6543 91.2412
PROMEDIO 84.4237 79.7824 89.2225
TABLA 35. Carta de control de prueba solución preparada con Daphnia Pulex tratado, Fuente: Los Autores
Luego de haber realizado 5 pruebas definitivas de toxicidad con el vertimiento
tratado se determino que la concentración letal media del mismo es de 84.4237
% v/v, a esta concentración la mitad de los organismos expuestos al
contamínate mueren.
grafica 8. concentración letal media para solución preparada. fuente: los autores
En la gráfica N° 8 se observa la distribución de la sensibilidad obtenidas
durante el periodo de práctica en el laboratorio con 5 datos representativos, así
como el promedio con sus respectivos límites de confianza.
De acuerdo con los resultados alcanzados a partir de los ensayos de toxicidad
con la solución preparada de la lavandería una vez realizado el tratamiento
realizados en las prácticas de laboratorio, se observó que los valores arrojados
por el Probit se mantuvieron constantes, con un límite inferior de 79.7824% v/v
hasta un límite superior de 89.2225 % v/v y un promedio de 84.4237 % v/v que
fue la Concentración Letal Media definitiva de la solución preparada para
Daphnia Pulex.
66..22 OOBBTTEENNCCIIÓÓNN DDEE LLAA CCAARRGGAA TTÓÓXXIICCAA EE ÍÍNNDDIICCEE TTOOXXIICCOOLLÓÓGGIICCOO
VVEERRTTIIMMIIEENNTTOO TTRRAATTAADDOO..
Para clasificar la industria según su descarga a cuerpos de aguas fue
necesario tener en cuenta el valor de la CL50-48 de la solución preparada tratada
y el caudal trabajado para la unidad piloto.
6.2.1 Índice toxicológico detergente
CL 50-48 solución preparada = 84.4237 % volumen de la muestra
Q = 21.6 m3 / mes
Carga Tóxica (UT) = 100
84.4237%
Carga Toxica (UT) = 25.58 UT
Una vez hallada la carga tóxica de la solución preparada se determino el
índice toxicológico del mismo con la siguiente formula:
IT = Log (1 + 25.58 UT) = 1.42
X 21.6 m3 / mes
El índice toxicológico para Detergentes se halla dentro del rango de 0.1-1.99,
lo que quiere decir que la solución preparada con características de la
lavandería se considera con carga tóxica despreciable según la tabla Nº 11.
Figura 11. Clasificación del índice toxicológico de la solución preparada con
características de una lavandería después del tratamiento.. Fuente: los autores
INDICE TOXICOLOGICO DE UNA
SOLUCION COMPUESTA CON
CARACTERISTICAS DE UNA
LAVANDERIA
2
3
4
5
6
0
1
2
3
4
5
6
7
1
CARGA TOXICA
RA
NG
OS
Despreciable
Reducida
Moderada
Considerable
Elevada
Indice toxicologico
de una solución compuesta
tratada
7. EFICIENCIA DEL TRATAMIENTO EFECTUADO EN EL LABORATORIO.
Una vez la solución preparada pasa por el sistema de tratamiento se
registraron los siguientes cambios en los parámetros medidos en la
caracterización inicial. Dichos valores se muestran en la tabla 40.
Eficiencia del sistema de filtración a nivel piloto.
Parámetro Vertimiento crudo
Vertimiento tratado
Unidades % de eficiencia
.
Según res.
1074/97
Turbidez 172 13.4 NTU 92.20 -
Grasas y Aceites 51 16 mg/L 68.62 100
Sólidos Sedimentables
0 0 mg/L - 2.0
DQO 1000 140 mg/L 86 2000
DBO5 11.9 9 mg/L - 1000
SAAM 5.0 1.3 mg/L 74 20
pH 9.18 6.70 unidades 27 5-9
Dureza 17 14 mg
CaCO3/L 17.6 -
Sólidos Totales. 508 85 mg/L 83.2 800
Índice toxicológico 1.65 0.403 - 75.57 -
Tabla 36: eficiencia de tratamiento de sistema piloto. Fuente: autores
De los resultados obtenidos a partir de esta medición se analiza:
Turbidez: se obtuvo una eficiencia en la remoción de 92.20%. debido a que la
función principal del filtro de arena era la remoción de los sólidos que estaban
presentes en la muestra, por esta razón una vez que el vertimiento pasó por el
lecho de arena fina, las partículas quedaban retenidas a este, disminuyéndose
su cantidad y evitando así la colmatación del filtro de carbón activado
bituminoso. (Ver foto 23)
Foto 23. Antes y después de tratamiento Fuente: Los Autores
Grasas y Aceites: la concentración de grasas y aceites pasó de un valor de
51mg/L a 16 mg/L esto debido a la propiedad adsorbente que tiene el carbón
activado bituminoso. Cumpliendo de esta manera con el valor máximo
permisible 100mg/L estipulado en la resolución 1074/97.
DQO: La concentración de DQO disminuyo de un valor de 1000mg/L a 140mg/l
debido a la remoción de la cantidad de materia orgánica, que estaba presente
en la solución preparada, por acción de la adsorción del carbón activado
bituminoso. Cumpliendo de esta manera con el valor máximo permisible
2000mg/L estipulado en la resolución 1074/97.
DBO5: La variación de la concentración de DBO fue mínima, paso de un valor
de 11.9mg/L a 9 mg/L, debido a que la cantidad de materia orgánica
biodegradables que fue adsorbida por el carbón activado. Cumpliendo de esta
manera con el valor máximo permisible 1000mg/L estipulado en la resolución
1074/97.
Dureza: No presentó una variación considerable, ya que de 17mg/L CaCO3
pasó a 14mg/L; basados en estos datos podemos concluir que el agua es
blanda, y por esta razón el sistema de tratamiento no generó un cambio
representativo sobre su concentración.
Sólidos totales: La disminución de los sólidos tuvo una eficiencia de 83.2%
debido a la presencia del filtro de arena dentro del sistema de tratamiento;
como se dijo anteriormente era necesario contar con esta unidad para
garantizar que el filtro de carbón activado no sufriera colmataciones por exceso
de partículas. Cumpliendo de esta manera con el valor máximo permisible
800mg/L estipulado en la resolución 1074/97.
pH: Una de las principales ventajas que tienen los filtros de arena y de carbón
activado, es la capacidad disminuir el pH de la solución preparada; el valor
pasó de 11.9mg/L a 9 mg/L con una eficiencia de 27%. Cumpliendo de esta
manera con el valor máximo 5-9 unidades permisible estipulado en la
resolución 1074/97.
SAAM: La remoción de SAAM fue representativa (ver foto 24), debido a que el
carbón activado bituminoso, por su capacidad adsorbente es eficaz en la
remoción de tensoactivos, el valor paso de 5mg/L a 1.3 mg/L con una
eficiencia de 74%, de esta manera se comprueba que el sistema de filtración
funciono adecuadamente con el objetivo de reducir dichos valores, Cumpliendo
de esta manera con el valor máximo permisible de 20 mg/L estipulado en la
resolución 1596/2001.
Foto 24. Prueba (SAAM) Fuente: Los Autores
Índice Toxicológico: Debido a la eficiencia del sistema de filtración utilizado, el
índice toxicológico disminuyó de un valor de 1.92 a 1.42, lo que comprueba
que la unidad implementada funciono correctamente.
De acuerdo a los resultados obtenidos, se demuestra q ue la solución
preparada cumple con la normatividad vigente.
8. ALTERNATIVA PARA EL MANEJO DE RESIDUOS PROVENIENTE DEL
TRATAMIENTO DE REMOCIÓN DEL DETERGENTE.
A continuación se presentan las diferentes opciones de manejo para cada
residuo generado, a partir del tratamiento.
Carbón activado Agotado
La vida útil de carbón activado bituminoso va de 3 a 6 meses dependiendo su
uso, el carbón activado se agota luego de este tiempo y pierde sus propiedades
de adsorción. Las opciones de manejo son:
Reactivación de carbón activado granular
Es posible reactivar carbones agotados por diversos métodos, entre los cuales,
el más común es el térmico. De esta manera, se somete el carbón a altas
temperaturas en presencia de acido fosfórico. Con la reactivación, se evita la
necesidad de disponer del carbón agotado (como residuo industrial) y se puede
ahorrar hasta un 50% en la sustitución del carbón activado.
Neutralización
La neutralización involucra la combinación de un medio contaminado con un
ácido o una base para ajustar el pH a niveles aceptables, que generalmente
están entre 6 y 9. Los productos de la reacción son agua, sales y sólidos
precipitados por las reacciones de solubilidad que dependen del pH.
Este procedimiento se lleva a cabo antes de realizar la disposición final del
carbón activado.
Disposición Final
Una vez el carbón ha sido desactivado, este puede llevar a disposición final en
relleno sanitario, para el caso del presente documento no se haría necesaria la
ubicación en celda de seguridad, ya que este no contiene sustancias
consideradas como peligrosas.
Arena Fina
La arena dentro de un filtro tiende a colmatarse, debido a la cantidad de sólidos
que retiene al pasar el agua. Esta arena de acuerdo a su uso puede durar
funcionando en un filtro entre 2-4 meses tiempo en el cual se hace necesario el
remplazo de la misma. Las alternativas para manejo son:
Neutralización
De la misma manera que para el carbón activado, antes de realizar un
aprovechamiento de la arena o su disposición final en el relleno sanitario, se
hace necesario neutralizarla para evitar generar impactos al ambiente por la
presencia de sustancias contaminantes.
Aprovechamiento (reuso/reciclaje)
Dependiendo de su contenido de contaminantes, se pueden aprovechar para
otros fines, como:
Material para la construcción de carreteras, relleno y nivelación de
superficies.
Las arenas gastadas de la fundición pueden utilizarse como relleno en la
construcción de carreteras, así como de canales del sistema de drenaje. Antes
de emplearlas de esta forma, debe garantizarse a través de un análisis, que la
arena no contenga porcentajes inadmisibles de contaminantes, como por
ejemplo fenoles, hidrocarburos aromáticos policíclicos (HAP), furanos u otros.
Aditivos para mezclas asfálticas.
El empleo de arenas gastadas como aditivo en mezclas asfálticas aún se está
discutiendo. Sobre todo, porque puede aumentarse sustancialmente el
contenido de hidrocarburos aromáticos policíclicos (HAP) del material
bituminoso, a través de la mezcla con arena gastada, que también contienen
este tipo de hidrocarburos.
Materia prima en la industria cementera.
Aquellas arenas gastadas en la fundición que constan de arena de cuarzo y
que no estén aglutinadas por silicato de potasio/sodio, pueden utilizarse como
proveedor de dióxido de silicio. Si se emplea arena gastada de la fundición que
esté contaminada por aglutinantes orgánicos, debe garantizarse que los gases
de emisión que se generen durante la calcinación, serán sometidos a un lavado
para eliminar los contaminantes conforme a las normas vigentes.
Materia prima en la fabricación de ladrillos.
Las arenas gastadas de la fundición que sean de grano fino, pueden emplearse
para adelgazar el alto contenido de arcillas. En este caso, las arenas gastadas
en la fundición deben estar libres de partes metálicas9
Grava
La grava a diferencia de la arena y el carbón activado no pierde sus
propiedades una vez terminado el proceso de filtración, debido a que su
principal función dentro de un filtro es de lecho base o medio de soporte. Una
vez utilizada la grava se puede:
Aprovechamiento
La grava puede ser reutilizada como material de construcción, ya que como se
dijo anteriormente su función dentro del filtro es simplemente como medio de
soporte, por esta razón sus propiedades no varían al entrar en contacto con la
muestra objeto de trabajo.
Disposición Final
Esta puede llevarse a disposición final en relleno sanitario, para el caso del
presente documento no se haría necesaria la ubicación en celda de seguridad,
ya que esta no contiene sustancias consideradas como peligrosas.
_______________
Tomado de: http://www.cepis.org.pe/eswww/fulltext/publica/resipeli/resica06.html
Agua Tratada
El agua que sale luego del tratamiento cumple con la normatividad colombiana
según la resolución 1591 de 2001 la cual en materia de vertimientos líquidos,
establece que 20(mg/l) corresponde al máximo valor permisible para el
parámetro tensoactivos (SAAM). La mejor opción para manejo y
aprovechamiento del agua tratada es:
Reuso
De acuerdo a lo mencionado anteriormente, el agua proveniente del
tratamiento puede ser reutilizada para el lavado de baños, de esta manera se
reducirían costos por medio de la implementación de un plan de producción
más limpia y uso eficiente del agua. Es importante aclarar, que debido a las
sustancias que contiene el agua esta no puede ser utilizada para consumo
humano.
Como es de conocimiento, una de las etapas más importantes dentro de la
gestión integral de residuos, la constituye la disposición final, ya que de esta
dependen en gran medida los futuros impactos que puedan o no generarse
tanto para el ambiente como para los seres vivos.
De acuerdo a lo expresado anteriormente, y a la naturaleza del vertimiento
utilizado se puede observar que los residuos generados durante el transcurso
del sistema de tratamiento, no pueden considerarse como peligrosos.
Sin embargo, es necesario realizar un manejo adecuado de los mismos, para
evitar la generación de alteraciones ambientales producidas por la exposición
de dichos residuos al ambiente. En términos generales, los materiales deben
neutralizarse inicialmente, para luego ser conducidos al relleno sanitario que
sería su destino final.
Respecto al agua tratada obtenida a partir de la última etapa de la unidad, por
las características que posee, se hace imposible utilizarla como agua de
consumo o de riego, o para algún tipo de actividad que involucre contacto
directo con seres humanos, por esta razón se puede reutilizar para las
actividades de limpieza de baños o pisos. Como ya se había mencionado, el
agua después del tratamiento, cumple con la normatividad vigente Resolución
1074/97.
9. CONCLUSIONES
Mediante pruebas con Dicromato de Potasio se determinó la sensibilidad
de la especie Daphnia Pulex con un valor de 0.0838mg/L dichos
resultados no tienen una gran variación lo que indica que la especie
genera una respuesta confiable frente a una sustancia toxica.
Se encontró la concentración letal media CL50-48, del detergente FAB
Total sobre Daphnia Pulex (CL50-48=42.093mg/L) obteniendo como
resultado la base para determinar el rango de toxicidad, indicando los
limites de tolerancia (limite inferior= 36.862mg/L , limite
superior=46.906mg/l)
La concentración letal media CL50-48, del detergente Ariel Oxiazul
sobre Daphnia Pulex es de CL50-48=29.417mg/L, obteniendo como
resultado la base para determinar el rango de toxicidad, indicando los
limites de tolerancia (limite inferior=25.985mg/L , limite
superior=33.347mg/L)
La concentración letal media CL50-48, del detergente Dersa sobre
Daphnia Pulex es de CL50-48=57.956mg/L obteniendo como resultado
la base para determinar el rango de toxicidad, indicando los limites de
tolerancia (limite inferior=51.266mg/L , limite superior=64.467mg/L)
Se determinó la concentración letal media CL50-48, del detergente
Rotex sobre Daphnia Pulex (CL50-48=408.194mg/L) obteniendo como
resultado la base para determinar el rango de toxicidad, indicando los
limites de tolerancia (limite inferior= 377.877mg/L, limite
superior=425.842mg/L)
La concentración letal media CL50-48, del componente activo para los
detergentes anionicos LAS (Lauril Alquil Sulfato) sobre Daphnia Pulex
(CL50-48=15.036mg/L) obteniendo como resultado la base para
determinar el rango de toxicidad, indicando los limites de tolerancia
(limite inferior=14.031 , limite superior=16.139mg/l)
Se efectúo el análisis con la muestra de la solución preparada,
obteniendo como resultado 29.157%(v/v) de CL50-48 , indicando los
limites de tolerancia mediante el programa probit dando como resultado
limites de confiabilidad del 95%, donde se obtuvo (limite inferior= 21.921
% v/v, limite superior=35.281% v/v)
Se calculó el índice toxicológico para la Lavandería tipo dando como
resultado 1.92 de carga toxica catalogada como despreciable.
En la mayoría de los análisis de varianza para cada uno de los test de
toxicidad, se rechaza la hipótesis nula, se presenta que las diferentes
concentraciones producen un efecto diferente en todos los organismos.
Se realizó el diseño de un sistema para remover la concentración de
detergentes aniónicos en la solución preparada con características de la
lavandería tipo, el cual consta de un tanque de igualación, un filtro de
arena y un filtro de carbón activado bituminoso.
Se comprobó la reducción de la concentración de detergentes aniónicos
presentes en la solución preparada con características de una
lavandería tipo con una eficiencia del 73%, al utilizar el diseño piloto.
Se demostró que luego de realizar el tratamiento, la eficiencia de este en
parámetros fisicoquímicos fue superior al 70%en remoción de
detergentes; además se comprobó, comparando la CL50-48 del
vertimiento crudo con la del vertimiento tratado, aumento la CL50-48 de
29.157%(v/v) a CL50-48 de 84.423%(v/v).
Los bioensayos de toxicidad es una herramienta efectiva en la
evaluación de la calidad ambiental de vertimientos industriales, estos
métodos biológicos y fisicoquímicos de evaluación dan una respuesta
efectiva a los contaminantes disueltos en el agua.
10. RECOMENDACIONES
Es necesario tener en cuenta los parámetros físico-químicos de la muestra
ambiental además de las pruebas toxicológicas del mismo, para obtener el
diseño más óptimo en el tratamiento.
Es conveniente controlar factores externos frente a la realización de
pruebas, esto con el fin de que agentes ajenos a la investigación, modifiquen
o alteren el resultado esperado, o que los resultados obtenidos sean poco
confiables.
Es necesario en el momento de preparar las soluciones de las sustancias
puras tener en cuenta el peso molecular del mismo para garantizar los
resultados en las pruebas toxicológicas.
Los sistemas de tratamiento diseñados y los comúnmente usados tienen
eficiencias efectivas para cierto tipo de sustancias, sin embargo es
conveniente no generalizar este resultado a todos los vertimientos, ya las
eficiencias dependen directamente de los contaminantes, el tipo de industria
y el proceso productivo
Si se desea solo evaluar la afectación de una zona y un problema en
particular se debe elaborar un bioensayo con especies presentes en ese
medio y con los elementos más similares al sitio afectado, ya que las
respuestas en los ecosistemas no son siempre iguales.
Todas las sustancias químicas que son liberadas al medio provenientes de
actividades humanas deberían estar reguladas por leyes que utilicen los
datos resultantes de los bioensayos.
Es importante seguir llevando a cabo pruebas de toxicidad con organismos
nativos de la región, utilizando varias sustancias de interés sanitario en un
mismo ensayo, tomándose mas niveles de la cadena trófica, obteniendo así
la mayor cantidad de referencias que puedan complementar los datos físico –
químicos, para que posteriormente sean aplicados en la creación de normas
estatales mas restrictivas en el control de vertimientos y protección de la
fauna y flora, asociados con los ecosistemas acuáticos.
Se requiere determinar la concentración letal media de este tóxico en toda la
cadena trófica presente en ecosistemas acuáticos.
Se debe garantizar que el laboratorio sea de uso exclusivo para bioensayos,
ya que cualquier cambio en el ambiente puede causar alteraciones en los
cultivos así como en los resultados de los experimentos.
Se debe llevar de manera estricta los protocolos para la realización de
bioensayos.
Los reactivos que se utilicen durante el proceso de bioensayo, deben ser
reactivos analíticos y de marca reconocida, para garantizar que las
soluciones sean de calidad y que no varíen los resultados por fallas de
reactivos.
El material debe ser lavado sin jabón, con abundante agua y de uso
exclusivo para cada sustancia a manejar. Así se garantiza que no existirá
contaminación por sustancias ajenas en los cultivos, algas y agua
reconstituida.
Seria importante determinar si las sales que contienen las soluciones que se
adicionan al medio bristol, podrían causar algún daño o alteración a los
organismos por ser suministradas en cantidades considerables.
11. BIBLIOGRAFIA
ROMERO Rojas, Carlos Alberto. Acuipurificación de Aguas. Escuela
Colombiana de Ingeniería. Bogotá. 1997
ESCOBAR Malaver, Pedro Miguel. Determinación de la Toxicidad aguda
de los detergentes mediante sistemas estáticos, utilizando Daphnia
Magna. Universidad de la Salle. Facultad de Ciencias de la Educación.
Departamento de Química y Biología. 1993
SILVA, Jeannette. Calibración del Bioensayo de Toxicidad aguda con
Daphnia Pulex, usando un tóxico de referencia. Chile. 2003
MILLER G, Tyler. Ecología y Medio Ambiente. Editorial Iberoamérica.
México. 1994
DIAZ, Marcos. Efectos de los contaminantes tóxicos en el ambiente.
Ensayos de Toxicidad y su aplicación en el control de la contaminación
ambiental. Universidad Nacional de Colombia. 1996
Decreto 1541 de 1994
Resolución 1596 de 2001
Resolución 1074 de 1997
MORENO, Jaime. Remoción de fenoles, detergentes y coliformes
presentes en aguas residuales por medio de irradiación. Universidad
Autónoma de México. Facultad de Química. México.1992
CALVO Seoaenz, Mariano. Ingeniería del Medio ambiente. Mundi
prensa. Segunda Edición. 1999
ROMERO Rojas, Jairo A. Tratamiento de aguas residuales. Teoría y
principios de diseño. Editorial Escuela Colombiana de Ingenieros.
Colombia. 2002
MONCADA Fuentes, Juan Esteban. Evaluación a nivel Laboratorio de un
sistema de remoción fotocatalítica de tensoactivos aniónicos.
Universidad de la Salle. Facultad de Ingeniería Ambiental y Sanitaria.
Bogotá. 2006
CHAPARRO Velandia, Doris Angélica. Evaluación de aplicación de sales
de sulfato como tratamiento para reducir la concentración de
tensoactivos en aguas residuales industriales. Universidad de la Salle.
Facultad de Ingeniería Ambiental y Sanitaria. Bogotá. 2002
CASTILLO Morales, Gabriela. Ensayos Toxicológicos y métodos de
evaluación de calidad de aguas: estandarización, intercalación,
resultados y aplicaciones. México. 2004
OROZCO Holguín, Juliana. Determinación de la Concentración letal
media (CL50) del cromo y el cobre por medio de bioensayos de toxicidad
Acuática sobre Daphnia Pulex. Universidad de la Salle. Facultad de
Ingeniería Ambiental y Sanitaria. Bogotá. 2007
CIDD. 1998. Manual de Procedimiento para la Ejecución de bioensayos
de Toxicidad en el agua. Centro Internacional de Investigaciones para el
Desarrollo. Montevideo-Uruguay.
FAO. 1981. Manual de Métodos de Investigación del Medio Ambiente
Acuático. Parte 4ª. Bases para la elección de Ensayos Biológicos para
evaluar la contaminación marina. FAO, Doc. Tec. Pesca. (164): 34pp.
http://www.monografias.com/trabajos12/neon/neon.shtml
http://www.inpesca.cl/medio%20ambiente/publicaciones/bio-sp.pdf
http://www.acuari.com/ayuda/alimentacion/daphnia/
http://es.wikipedia.org/wiki/detergente
http://www.opcions.org/cast/articulos/detergentes.html
ANEXOS
ANEXO A.
PRUEBAS DE
TOXICIDAD
DICROMATO DE POTASIO
Prueba de sensibilidad realizada el 10 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 10 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 11 de junio de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 1 1 0 0 2/20 10
0.1 ppm 3 2 4 2 5.1 7.4 11/20 55
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0/20 0
0.1 ppm 3 3 4 3 4.9 7.3 13/20 65
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 1 0 0 0 1/20 5
0.1 ppm 3 4 3 2 4.8 7.4 12/20 60
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 2 0 0 0 2/20 10
0.1 ppm 4 3 3 2 5.0 7.2 12/20 60
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 0 0 1 0 1/20 5
0.1 ppm 4 4 4 3 5.2 7.4 15/20 75
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
0.05 ppm 0 0 0 0 0/20 0
0.1 ppm 4 5 5 3 4.8 7.3 17/20 85
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 3 1 0 0 4/20 20
0.1 ppm 3 3 4 3 5.1 7.2 13/20 65
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0/20 00
0.1 ppm 3 2 4 2 5.0 7.4 11/20 55
0.2 ppm 5 4 5 5 19/20 95
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
. % Mortalidad Obtenido
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 1 0 1 0 2/20 10
0.1 ppm 4 5 5 3 4.9 7.3 17/20 85
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 0 0 2 1 3/20 15
0.1 ppm 3 5 4 4 5.1 7.2 16/20 80
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
0.05 ppm 0 0 1 0 1/20 5
0.1 ppm 4 3 4 4 5.1 7.4 15/20 75
0.2 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.3 ppm 5 5 5 5 20/20 100
0.5 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de sensibilidad realizada el 19 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 19 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 21 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 1 1 0 0.1 10
0.1 ppm 2 4 2 3 5.3 7.2 0.55 55
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0.0 0
0.1 ppm 4 3 3 3 5.0 7.1 0.65 65
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 0 1 0 0.05 5
0.1 ppm 3 1 4 4 5.0 7.1 0.6 60
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0.0 0
0.1 ppm 2 5 5 5 5.3 6.8 0.85 85
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 2 0 0 0.1 10
0.1 ppm 4 5 3 5 4.7 7.2 0.85 85
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 1 1 0 0.1 10
0.1 ppm 2 5 3 2 5.1 7.4 0.6 60
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 25 de junio de 2008
Prueba de sensibilidad realizada el 25 de junio de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 0 1 0 0.05 5
0.1 ppm 4 2 4 5 4.7 7.1 0.75 75
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 1 0 0 0.05 5
0.1 ppm 3 5 2 5 4.8 7.1 0.75 75
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 0 0 0 0.0 00
0.1 ppm 3 2 3 3 5.3 7.2 0.55 55
0.2 ppm 5 4 5 5 0.95 95
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
Prueba de sensibilidad realizada el 25 de junio de 2008
Carta de control de prueba de sensibilidad definitiva con Daphnia Pulex
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
0.05 ppm 0 0 2 2 0.2 20
0.1 ppm 5 2 1 5 4.9 7.2 0.65 65
0.2 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.3 ppm 5 5 5 5 1.0 100
0.5 ppm 5 5 5 5 1.0 100
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
10/06/08 0.0808 0.0663 0.0961
10/06/08 0.0900 0.0746 0.1061
11/06/08 0.0899 0.0759 0.1055 16/06/08 0.0816 0.0693 0.0955
16/06/08 0.0867 0.0721 0.1024 16/06/08 0.0759 0.0670 0.0875
16/06/08 0.0733 0.0623 0.0859
17/06/08 0.0779 0.0625 0.0934 17/06/08 0.1000 0.0852 0.1174
17/06/08 0.0816 0.0693 0.0955 19/06/08 0.0900 0.0746 0.1061
19/06/08 0.0808 0.0663 0.0961 21/06/08 0.0899 0.0759 0.1055
24/06/08 0.0759 0.0670 0.0875 24/06/08 0.0733 0.0623 0.0859
24/06/08 0.0867 0.0721 0.1024 24/06/08 0.0816 0.0693 0.0955
25/06/08 0.0816 0.0693 0.0955 25/06/08 0.1000 0.0852 0.1174
25/06/08 0.0779 0.0625 0.0934 PROMEDIO 0.0837 0.0704 0.0985
DETERGENTE DERSA
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 02 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 04 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 05 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 0 0 0 0 0/20 0
60 ppm 2 2 2 3 9/20 45
80 ppm 4 3 3 4 5.5 7.3 14/20 70
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 2 2/20 10
40 ppm 1 1 0 1 3/20 15
60 ppm 4 5 5 5 5.2 7.5 19/20 95
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 0 1 0 0 1/20 5
60 ppm 3 3 2 3 11/20 55
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 05 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 05 de agosto de 2008
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de sustancia pura del detergente DERSA con Daphnia Pulex
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
05/08/08 62.3404 56.7056 68.2119 05/08/08 60.4250 54.9992 66.0284
05/08/08 60.0880 53.9294 65.8768 04/08/08 64.3857 58.5786 70.5027
02/08/08 42.5409 32.1176 51.7159 PROMEDIO 57.9560 51.2660 64.4671
80 ppm 4 5 3 4 5.2 7.3 16/20 80
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 0 0 0 0 0/20 0
60 ppm 2 2 3 3 10/20 50
80 ppm 4 4 3 4 5.0 7.2 15/20 75
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 0 0 0 0 0/20 5
60 ppm 3 3 3 2 11/20 55
80 ppm 4 5 4 3 5.2 7.5 16/20 80
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
DETERGENTE FAB TOTAL
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 1 0 1 0 2/20 10
40 ppm 4 3 3 2 4.9 7.2 12/20 60
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 3 2 2 3 10/20 50
60 ppm 4 4 5 5 4.7 7.3 18/20 90
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 2 1 3 2 8/20 40
60 ppm 5 3 4 4 4.9 7.4 16/20 80
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 22 de julio de 2008
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de sustancia pura del detergente FAB TOTAL con Daphnia Pulex
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 1 0 0 1/20 5
40 ppm 4 3 2 3 5.1 7.3 12/20 60
60 ppm 5 4 5 5 19/20 95
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 0 0 0 0 0/20 0
60 ppm 4 3 3 3 5.1 7.4 13/20 65
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR 23/07/08 56.3355 52.1754 60.4299
22/07/08 35.6993 30.1888 40.7954 23/07/08 44.0592 38.3831 49.2149
23/07/08 33.7644 28.4347 38.6048 23/07/08 40.6064 35.1269 45.4865
PROMEDIO 42.0929 36.8617 46.9063
DETERGENTE ARIEL OXIAZUL
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 06 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 06 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 31 de julio de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 5 5 5 4 5.2 7.2 19/20 95
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 4 4 5 5 5.3 7.2 18/20 90
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 02 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 04 de agosto de 2008
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de sustancia pura del detergente ARIEL OXIAZUL con Daphnia Pulex
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 4 5 5 5 5.0 7.5 19/20 95
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 0 0/20 0
40 ppm 4 5 5 4 5.3 7.3 18/20 90
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 0 0 0 1 1/20 5
40 ppm 5 5 5 5 5.1 7.5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
04/08/08 30.9238 27.2767 34.9330 02/08/08 27.8485 24.1457 31.2496
31/07/08 28.6933 25.6126 32.8087 06/08/08 28.6933 25.6126 32.8087
06/08/08 30.9238 27.2767 34.9330 PROMEDIO 29.4165 25.9848 33.3466
DETERGENTE ROTEX
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 13 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 13 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
100 ppm 0 0 0 0 0/20 0
200 ppm 0 0 0 0 0/20 0
300 ppm 0 1 0 2 3/20 15
400 ppm 2 3 3 4 5.5 7.4 12/20 60
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 12 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 12 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 12 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
100 ppm 0 0 0 0 0/20 0
200 ppm 0 0 0 0 0/20 0
300 ppm 0 0 0 0 0/20 0
400 ppm 4 3 4 5 5.2 7.5 16/20 80
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
100 ppm 0 0 0 0 0/20 0
200 ppm 0 0 0 0 0/20 0
300 ppm 0 0 0 0 0/20 0
400 ppm 1 0 0 0 1/20 5
500 ppm 5 5 4 4 5.1 7.4 18/20 90
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
100 ppm 0 0 0 0 0/20 0
200 ppm 0 0 0 0 0/20 0
300 ppm 0 0 0 0 0/20 0
400 ppm 1 0 2 0 3/20 15
500 ppm 4 5 5 5 5.1 7.5 19/20 95
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
100 ppm 0 0 0 0 0/20 0
200 ppm 0 0 0 0 0/20 0
300 ppm 2 1 0 0 3/20 15
400 ppm 1 1 1 1 4/20 20
500 ppm 5 5 4 4 5.1 7.5 18/20 90
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
420 ppm 3 4 4 4 5.3 7.4 15/20 75
440 ppm 5 5 5 5 20/20 100
460 ppm 5 5 5 5 20/20 100
480 ppm 5 5 5 5 20/20 100
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
420 ppm 4 4 4 3 5.2 7.4 15/20 75
440 ppm 5 5 5 5 20/20 100
460 ppm 5 5 5 5 20/20 100
480 ppm 5 5 5 5 20/20 100
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
420 ppm 3 3 4 4 5.0 7.5 14/20 70
440 ppm 5 5 5 5 20/20 100
460 ppm 5 5 5 5 20/20 100
480 ppm 5 5 5 5 20/20 100
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
420 ppm 5 4 3 4 5.1 7.6 16/20 80
440 ppm 5 5 5 5 20/20 100
460 ppm 5 5 5 5 20/20 100
480 ppm 5 5 5 5 20/20 100
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
420 ppm 4 4 5 3 5.1 7.4 16/20 80
440 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de sustancia pura del detergente ROTEX con
Daphnia Pulex
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
12/08/08 436.7612 417.6573 456.3428 12/06/08 418.3445 384.4860 461.6338
12/08/08 451.6116 433.6407 471.1613 13/08/08 356.5385 335.3700 380.4907
13/08/08 369.5433 342.1886 395.7033 20/08/08 407.6354 357.4919 417.5167
20/08/08 407.6354 357.4919 417.5167 20/08/08 412.8508 391.1614 420.2210
20/08/08 410.5080 379.6422 418.9188 20/08/08 410.5080 379.6422 418.9188
PROMEDIO 408.1936 377.8772 425.8423
460 ppm 5 5 5 5 20/20 100
480 ppm 5 5 5 5 20/20 100
500 ppm 5 5 5 5 20/20 100
COMPONENTE ACTIVO (LAS)
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 5 5 5 5 5.0 7.3 20/20 100
40 ppm 5 5 5 5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 5 5 5 5 4.9 7.3 20/20 100
40 ppm 5 5 5 5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 5 5 5 5 5.0 7.5 20/20 100
40 ppm 5 5 5 5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 23 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 5 5 5 5 5.0 7.4 20/20 100
40 ppm 5 5 5 5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20 ppm 5 5 5 5 5.1 7.5 20/20 100
40 ppm 5 5 5 5 20/20 100
60 ppm 5 5 5 5 20/20 100
80 ppm 5 5 5 5 20/20 100
100 ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
1 ppm 0 0 0 0 0/20 0
5 ppm 0 0 0 0 0/20 0
10 ppm 0 0 0 0 0/20 0
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 23 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 21 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 21 de agosto de 2008
15 ppm 3 3 3 2 5.2 7.3 11/20 55
20 ppm 5 4 4 5 18/20 90
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
1 ppm 0 0 0 0 0/20 0
5 ppm 0 0 0 0 0/20 0
10 ppm 0 0 0 0 0/20 0
15 ppm 2 3 2 4 5.1 7.3 11/20 55
20 ppm 5 5 4 5 19/20 95
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
1 ppm 0 0 0 0 0/20 0
5 ppm 0 0 0 0 0/20 0
10 ppm 0 0 0 0 0/20 0
15 ppm 3 3 2 3 5.1 7.5 11/20 55
20 ppm 5 4 5 5 19/20 95
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
1 ppm 0 0 0 0 0/20 0
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 21 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 28 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 28 de agosto de 2008
5 ppm 0 0 0 0 0/20 0
10 ppm 0 0 0 0 0/20 0
15 ppm 2 3 3 2 5.3 7.5 10/20 50
20 ppm 5 4 4 4 17/20 95
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
1 ppm 0 0 0 0 0/20 0
5 ppm 0 0 0 0 0/20 0
10 ppm 0 0 0 0 0/20 0
15 ppm 3 3 1 2 5.4 7.5 9/20 45
20 ppm 4 5 5 4 18/20 90
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
10ppm 0 0 0 0 0/20 0
13ppm 1 0 2 1 4/20 20
15ppm 3 2 3 1 9/20 45
17ppm 4 3 3 4 5.2 7.3 14/20 70
20ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 29 de agosto de 2008
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 29 de agosto de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
10ppm 0 0 0 0 0/20 0
13ppm 0 1 1 1 3/20 15
15ppm 2 2 2 3 9/20 45
17ppm 3 4 2 4 5.4 7.4 13/20 65
20ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
10ppm 0 0 0 0 0/20 0
13ppm 0 1 0 2 3/20 15
15ppm 3 3 3 3 12/20 60
17ppm 4 3 3 3 5.1 7.3 13/20 65
20ppm 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
10ppm 0 0 0 0 0/20 0
13ppm 1 1 2 0 4/20 20
15ppm 3 3 3 2 11/20 55
17ppm 4 3 3 4 5.2 7.5 14/20 70
20ppm 5 5 5 5 20/20 100
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 29 de agosto de 2008
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de sustancia pura del detergente Lauril Alquil Sulfato con Daphnia Pulex
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
21/08/08 14.5366 13.3928 15.8098 21/06/08 14.7138 13.4618 16.1753
21/08/08 15.3331 14.0968 16.7571 23/08/08 15.2336 13.8789 16.8987
23/08/08 14.5366 13.3928 15.8098 28/08/08 15.1947 14.4124 15.9769
28/08/08 15.4337 14.6612 16.2141 29/08/08 15.1006 14.3214 15.8742
29/08/08 14.9735 14.1892 15.7479 29/08/08 15.3080 14.5059 16.1283
PROMEDIO 15.0364 14.0313 16.1392
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
10ppm 0 0 0 0 0/20 0
13ppm 1 1 1 1 4/20 20
15ppm 3 2 2 2 9/20 45
17ppm 3 4 2 4 5.4 7.5 13/20 65
20ppm 5 5 5 5 20/20 100
SOLUCION PREPARADA LAVANDERIA TIPO
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 05 de septiembre de 2008
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 5 de septiembre de 2008
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 4 de septiembre de 2008
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20% 1 1 3 2 7/20 35
40% 3 2 2 3 10/20 50
60% 4 5 5 5 5.3 7.5 19/20 95
80% 5 5 5 5 20/20 100
100% 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20% 1 2 2 2 7/20 35
40% 4 3 2 3 5.3 7.5 12/20 60
60% 5 5 4 5 19/20 95
80% 5 5 5 5 20/20 100
100% 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20% 1 2 2 1 6/20 30
40% 3 3 2 3 5.3 7.5 11/20 55
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 4 de septiembre de 2008
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 4 de septiembre de 2008
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de solución preparada lavandería tipo con Daphnia Pulex
60% 4 4 5 5 18/20 90
80% 5 5 5 5 20/20 100
100% 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20% 2 1 3 1 7/20 35
40% 3 3 3 3 5.3 7.5 12/20 60
60% 5 5 5 5 20/20 100
80% 5 5 5 5 20/20 100
100% 5 5 5 5 20/20 100
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0/20 0
20% 2 1 1 1 5/20 25
40% 2 3 3 3 5.3 7.5 11/20 55
60% 5 5 5 5 20/20 100
80% 5 5 5 5 20/20 100
100% 5 5 5 5 20/20 100
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR 05/09/08 29.2091 21.9767 35.3527
05/09/08 27.6474 20.7423 33.4976 04/09/08 30.2539 23.2449 36.3115
SOLUCION PREPARADA TRATADO
Prueba de solución preparada tratada realizada el 6 de Noviembre de 2008
Prueba de solución preparada tratada realizada el 6 de Noviembre de 2008
Prueba de solución preparada tratada realizada el 6 de Noviembre de 2008
04/09/08 27.4730 19.5354 33.9885
04/09/08 31.2018 24.1061 37.2549 PROMEDIO 29.1570 21.9210 35.2810
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
20% 0 0 0 0 0.0 0
40% 0 0 0 0 0.0 0
60% 0 0 0 0 0.0 0
80% 0 2 1 1 4.9 7.3 0.2 20
100% 4 5 5 5 0.95 95
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
20% 0 0 0 0 0.0 0
40% 0 0 0 0 0.0 0
60% 0 0 2 1 0.15 15
80% 2 2 1 3 5.1 7.4 0.4 40
100% 4 5 4 5 0.9 90
Prueba de solución preparada tratada realizada el 6 de Noviembre de 2008
Prueba de solución preparada tratada realizada el 6 de Noviembre de 2008
Promedio de la CL50-48 para prueba definitiva de solución preparada tratada con Daphnia
Pulex
FECHA CL50-48 LIMITE INFERIOR LÍMITE SUPERIOR
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
20% 0 0 0 0 0.0 0
40% 0 0 0 0 0.0 0
60% 0 0 1 0 0.05 5
80% 3 2 2 2 4.8 7.4 0.45 45
100% 4 5 5 5 0.95 95
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
20% 0 0 0 0 0.0 0
40% 0 0 0 0 0.0 0
60% 0 0 0 0 0.0 0
80% 1 0 2 1 5.2 7.4 0.20 20
100% 5 5 5 4 0.95 90
Concentración Nominal
No. de Organismos
Muertos
Medidas Finales organismosdeTotalNo
muertesdeobservadoNo
.
.
% Mortalidad Obtenido
1 2 3 4 OD pH
Blanco 0 0 0 0 0.0 0
20% 0 0 0 0 0.0 0
40% 0 0 0 0 0.0 0
60% 0 0 0 0 0.0 0
80% 3 1 1 0 5.0 7.2 0.25 25
100% 5 5 4 4 0.9 90
06/11/08 86.3742 82.3174 90.4727
06/11/08 83.1733 78.2419 88.5310 06/11/08 79.8592 74.3811 85.3951
06/11/08 86.3742 82.3174 90.4727 06/11/08 86.3376 81.6543 91.2412
PROMEDIO 84.4237 79.7824 89.2225
ANEXO B.
ANOVA PARA
PRUEBAS DE
TOXICIDAD
Prueba de sensibilidad realizada el 10 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 120,208333 5 24,0416667
577 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 120,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 10 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 109,208333 5 21,8416667
104,84 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 112,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 11 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 114,208333 5 22,8416667
149,509091 2,77
Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 116,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 115,833333 5 23,1666667
278 2,77
Dentro de Grupos
1,5 18 0,08333333
Total 117,333333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 108,833333 5 21,7666667
78,36 2,77
Dentro de Grupos
5 18 0,27777778
Total 113,833333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 125,208333 5 25,0416667
163,909091 2,77
Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 127,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 16 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 113,208333 5 22,6416667
108,68 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 116,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 99,2083333 5 19,8416667
52,9111111 2,77
Dentro de Grupos
6,75 18 0,375
Total 105,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 116,333333 5 23,2666667
119,657143 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 119,833333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 115,833333 5 23,1666667
278 2,77
Dentro de Grupos
1,5 18 0,08333333
Total 117,333333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 17 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 106,208333 5 21,2416667
80,4947368 2,77
Dentro de Grupos
4,75 18 0,26388889
Total 110,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 19 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 109,208333 5 21,8416667
104,84 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 112,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 19 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 120,208333 5 24,0416667
577 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 120,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 21 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 109,208333 5 21,8416667
104,84 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 112,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 108,833333 5 21,7666667
78,36 2,77
Dentro de Grupos
5 18 0,27777778
Total 113,833333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 125,208333 5 25,0416667
163,909091 2,77
Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 127,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 108,833333 5 21,7666667
78,36 2,77
Dentro de Grupos
5 18 0,27777778
Total 113,833333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 24 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 115,833333 5 23,1666667
278 2,77
Dentro de Grupos
1,5 18 0,08333333
Total 117,333333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 25 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 116,333333 5 23,2666667 119,657143 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 119,833333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 25 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 106,208333 5 21,2416667
80,4947368 2,77
Dentro de Grupos
4,75 18 0,26388889
Total 110,958333 23
Prueba de sensibilidad realizada el 25 de junio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 99,2083333 5 19,8416667
52,9111111 2,77
Dentro de Grupos
6,75 18 0,375
Total 105,958333 23
DETERGENTE DERSA
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 02 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 122,833333 5 24,5666667
98,2666667 2,77
Dentro de Grupos
4,5 18 0,25
Total 127,333333 23
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 04 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 92,2083333 5 18,4416667
189,685714 2,77
Dentro de Grupos
1,75 18 0,09722222
Total 93,9583333 23
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 05 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 98,5 5 19,7
101,314286 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 102 23
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 05 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 102,208333 5 20,4416667
133,8 2,77
Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 104,958333 23
Prueba de CL50-48 con DERSA realizada el 05 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 96,875 5 19,375
199,285714 2,77
Dentro de Grupos
1,75 18 0,09722222
Total 98,625 23
DETERGENTE FAB TOTAL
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 113,333333 5 22,6666667
204 2,77
Dentro de Grupos
2 18 0,11111111
Total 115,333333 23
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 108,833333 5 21,7666667
130,6 2,77
Dentro de Grupos
3 18 0,16666667
Total 111,833333 23
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 109,333333 5 21,8666667
98,4 2,77
Dentro de Grupos
4 18 0,22222222
Total 113,333333 23
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 22 de julio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 110,5 5 22,1
113,657143 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 114 23
Prueba de CL50-48 con FAB TOTAL realizada el 23 de julio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 125,208333 5 25,0416667
601 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 125,958333 23
DETERGENTE ARIEL OXIAZUL
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 06 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 127,5 5 25,5
459 2,77
Dentro de Grupos
1 18 0,05555556
Total 128,5 23
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 06 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 130,208333 5 26,0416667
625 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 130,958333 23
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 31 de julio de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 126,875 5 25,375
609 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 127,625 23
Prueba de CL50-48 con ARIEL OXIAZUL realizada el 02 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 127,5 5 25,5
459 2,77
Dentro de Grupos
1 18 0,05555556
Total 128,5 23
DETERGENTE ROTEX
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 13 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 87,2083333 5 17,4416667
66,0947368 2,77
Dentro de Grupos
4,75 18 0,26388889
Total 91,9583333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 13 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 110 5 22
198 2,77
Dentro de Grupos
2 18 0,11111111
Total 112 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 12 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 66,2083333 5 13,2416667
136,2 2,77
Dentro de Grupos
1,75 18 0,09722222
Total 67,9583333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 12 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 61,2083333 5 12,2416667
58,76 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 64,9583333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 12 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 72,3333333 5 14,4666667
74,4 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 75,8333333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
F Calculado
F Teórico
variaciones cuadrados
Entre grupos 80,2083333 5 16,0416667
385 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 80,9583333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 80,2083333 5 16,0416667
385 2,77
Dentro de Grupos
0,75 18 0,04166667
Total 80,9583333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 80,8333333 5 16,1666667
291 2,77
Dentro de Grupos
1 18 0,05555556
Total 81,8333333 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 80 5 16
144 2,77
Dentro de Grupos
2 18 0,11111111
Total 82 23
Prueba de CL50-48 con ROTEX realizada el 20 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 80 5 16
144 2,77
Dentro de Grupos
2 18 0,11111111
Total 82 23
COMPONENTE ACTIVO (LAS)
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83,3333333 5 16,6666667
0 2,77
Dentro de Grupos
0 18 0
Total 83,3333333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83,3333333 5 16,6666667
0 2,77
Dentro de Grupos
0 18 0
Total 83,3333333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83,3333333 5 16,6666667 0 2,77
Dentro de Grupos
0 18 0
Total 83,3333333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83,3333333 5 16,6666667
0 2,77
Dentro de Grupos
0 18 0
Total 83,3333333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 14 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83,3333333 5 16,6666667
0 2,77
Dentro de Grupos
0 18 0
Total 83,3333333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 23 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 76,2083333 5 15,2416667
156,771429 2,77
Dentro de Grupos
1,75 18 0,09722222
Total 77,9583333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 23 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
F Calculado
F Teórico
variaciones cuadrados
Entre grupos 83 5 16,6
85,3714286 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 86,5 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 21 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83 5 16,6
199,2 2,77
Dentro de Grupos
1,5 18 0,08333333
Total 84,5 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 21 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 66,875 5 13,375
137,571429 2,77
Dentro de Grupos
1,75 18 0,09722222
Total 68,625 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 21 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 70,875 5 14,175
68,04 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 74,625 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 28 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 81,2083333 5 16,2416667
50,8434783 2,77
Dentro de Grupos
5,75 18 0,31944444
Total 86,9583333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 28 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 80,375 5 16,075
68,0823529 2,77
Dentro de Grupos
4,25 18 0,23611111
Total 84,625 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 29 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 84,5 5 16,9
86,9142857 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 88 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 29 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 83,2083333 5 16,6416667
79,88 2,77
Dentro de Grupos
3,75 18 0,20833333
Total 86,9583333 23
Prueba de CL50-48 con LAS realizada el 29 de agosto de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 78,3333333 5 15,6666667
80,5714286 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 81,8333333 23
SOLUCION PREPARADA LAVANDERIA TIPO
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 05 de septiembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 86,8333333 5 17,3666667
69,4666667 2,77
Dentro de Grupos
4,5 18 0,25
Total 91,3333333 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 5 de septiembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 85 5 17
87,4285714 2,77
Dentro de Grupos
3,5 18 0,19444444
Total 88,5 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 4 de septiembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 85,875 5 17,175
112,418182 2,77
Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 88,625 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 4 de septiembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 88,2083333 5 17,6416667
115,472727 2,77
Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 90,9583333 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada lavandería tipo realizada el 4 de septiembre de
2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos 95,8333333 5 19,1666667
230 2,77
Dentro de Grupos
1,5 18 0,08333333
Total 97,3333333 23
SOLUCION PREPARADA TRATADA
Prueba de CL50-48 con solución preparada tratada lavandería tipo realizada el 06 de noviembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos
72,2083333 5 14,4416667
94,5272727 2,77 Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 74,9583333 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada tratada lavandería tipo realizada el 06 de noviembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos
64,2083333 5 12,8416667
40,2 2,77 Dentro de Grupos
5,75 18 0,31944444
Total 69,9583333 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada tratada lavandería tipo realizada el 06 de noviembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos
75,7083333 5 15,1416667 121,133333 2,77
Dentro de Grupos
2,25 18 0,125
Total 77,9583333 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada tratada lavandería tipo realizada el 06 de noviembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos
72,2083333 5 14,4416667
94,5272727 2,77 Dentro de Grupos
2,75 18 0,15277778
Total 74,9583333 23
Prueba de CL50-48 con solución preparada tratada lavandería tipo realizada el 06 de noviembre de 2008
ANALISIS DE VARIANZA
Origen de las
variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de
cuadrados
F Calculado
F Teórico
Entre grupos
65,2083333 5 13,0416667
40,826087 2,77 Dentro de Grupos
5,75 18 0,31944444
Total 70,9583333 23
ANEXO C.
FICHA DE SEGURIDAD
ROTEX
Hoja de Datos de Seguridad de Materiales
ROTEX Fecha: Mayo 2007
Reemplaza: Febrero de2002 ============================================================
====================== 1.- Identificación del producto y de la empresa ============================================================
====================== Nombre del producto: ROTEX Otras designaciones: N/A
Descripción: Polvo Blanco Usos: Detergente secuestrante para ropa Fabricante: Quimica Rocha
===========================================================================
2.- Composición o Ingredientes ===========================================================================
Nombre químico: Tenso activo anionico Fórmula química: C12 H25 C6 H5
Peso molecular: 246 g/mol
Número de CAS: N/A Contenido: 40%
=========================================================================== 3.- Identificación de peligros
=========================================================================== Precaución: Manipular con elementos de protección adecuada.
Carcinogénesis: N/A Resumen de riesgos:
A. La Inhalación puede causar molestias en nariz y provocar
estornudos B. Ingestión sumamente tóxico y puede ser fatal si se ingiere C. El contacto con los ojos puede causar molestia temporal e
irritación D. El contacto prolongado con la piel puede ser ligeramente irritante
Órganos afectados: Piel y garganta Forma de entrada: Ingestión e inhalación Síntomas agravados por exposición prolongada: resequedad en la piel,
irritación en garganta. Efectos agudos: N/A Efectos crónicos: N/A
============================================================
============== 4.- Medidas de primeros auxilios ============================================================
===============Ojos: Lavarse con agua abundante por 15 minutos, mientras mantiene los párpados abiertos Piel: Lavarse la parte expuesta con agua sin usar jabón
Inhalación: Retirarse a un lugar al aire libre Ingestión: No inducir al vomito, si lo hay de forma natural enjuagar bien la boca, tomar abundante agua para diluir el material, acudir al medico
Nota para el médico: N/A
5.- Medidas de extinción
Punto de inflamación: N/A
Temperatura de auto ignición: N/A LEL: N/A
UEL: N/A
Medios de extinción: N/A Riesgos poco usuales de incendio o explosión: N/A Procedimientos especiales de lucha contra incendio: N/A
===========================================================================
6.- Medidas de fugas accidentales ===========================================================================
Derrames y fugas: Recoger el producto que no tuvo contacto con el suelo. Métodos de limpieza: lavar con abundante agua
===========================================================================
1
0
0
7.- Manipuleo y Almacenamiento ============================================================
=============== Manipuleo: Implementos de protección personal
Almacenamiento: Lugar fresco y seco ============================================================
===============
8.- Control de exposición /Protección personal
Protección personal: Aplicar las prácticas de higiene industrial Protección Ojos: Lentes Especiales Protección para la Piel: Ropa protectora normal
Protección respiratoria: Mascarilla ============================================================
=============== 9.- Propiedades físicas y químicas ============================================================
=============== Aspecto y olor: Polvo blanco, olor limón.
Punto de ebullición: N/A Punto de fusión: N/A Peso específico: N/A
Solubilidad en agua: 100%
Otras solubilidades: N/A Presión de vapor: N/A
Densidad: Líquido: N/A
Densidad de vapor: N/A PH (solución 0,5%): 11,5-12
Viscosidad, a 20 ºC: N/A ============================================================
=============== 10.- Estabilidad y reactividad ============================================================
=============== Estabilidad: Establece en condiciones normales
Polimerización: N/A Incompatibilidad química: Ácidos fuertes Condiciones a evitar: Luz solar directa y humedad en almacenamiento.
Productos de descomposición: N/A
=========================================================================== 11.- Información toxicológica N/A
==========================================================================
=========================================================================== 12.- Información ecológica
=========================================================================== Movilidad en el medio ambiente: El Producto es rápidamente degradado
biológicamente, sin afectar la vida microbiana ni las aguas residuales. ============================================================
=============== 13.- Consideraciones sobre disposición ============================================================
=============== Disposición: N/A
=========================================================================== 14.- Información de transporte
=========================================================================== No hay restricciones
===========================================================================
15.- Información regulatoria ===========================================================================
No sometido a reglamentación
16.- Información adicional N/A
ANEXO D.
HOJA DE DATOS
ROTEX
ROTEX
PRODUCTO DE ALTA CALIDAD
Detergente industrial en polvo diseñado especialmente para uso en lavado de ropas institucional, industrial y hospitalario. En aguas (blandas, duras, ferruginosas salinas etc.).
Características Técnicas:
Compuesto sintético de tenso activo y reforzadores alcalinos, ablandadores de agua y agentes de suspensión que le confieren al producto excelentes condiciones de trabajo y seguridad.
Dosificación :
3 - 6 gr. por kilo de ropa.
Propiedades físicas:
Aspecto : Polvo blanco
PH: 11 en solución al 1%.
Presentación: Sacos de 25 Kg.
Degradabilidad : 100%
Ventajas :
Espuma controlada, lo cual permite una acción mecánica más efectiva y agiliza los enjuagues.
Es seguro en todo tipo de textiles, incluyendo el poliéster y otras mezclas sintéticas.
Efectiva acción disolvente, que elimina las manchas de grasas y aceites
Da un blanco reluciente y los colores más vivos.
Observación: Almacenar en lugar seco.
ANEXO E.
DIAGRAMA GENERAL
METODOLOGIA
ANEXO F.
CONTROL DE
NATALIDAD
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
06/06/2008 16/06/2008
1 15 9
2 18 14
3 12 11
4 20 18
TOTAL 52
06/06/2008 17/06/2008
1 15 14
2 18 21
3 12 26
4 20 38
TOTAL 99
06/06/2008 18/06/2008
1 15 58
2 18 67
3 12 45
4 20 73
TOTAL 243
06/06/2008 19/06/2008
1 15 56
2 18 61
3 12 45
4 20 75
TOTAL 237
06/06/2008 20/06/2008
1 15 47
2 18 38
3 12 32
4 20 62
TOTAL 179
06/06/2008 23/06/2008
1 12 112
2 17 125
3 10 86
4 18 136
TOTAL 459
06/06/2008 24/07/2008
1 12 35
2 17 48
3 10 26
4 18 57
TOTAL 166
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
06/06/2008 25/06/2008
1 12 42
2 17 59
3 10 29
4 18 56
TOTAL 186
06/06/2008 26/06/2008
1 12 36
2 17 43
3 10 8
4 18 37
TOTAL 124
06/06/2008 27/06/2008
1 12 26
2 17 38
3 10 19
4 18 42
TOTAL 125
06/06/2008 01/07/2008
1 10 95
2 17 115
3 9 52
4 15 118
TOTAL 380
06/06/2008 02/07/2008
1 10 26
2 17 42
3 9 27
4 15 58
TOTAL 153
06/06/2008 03/07/2008
1 10 32
2 17 53
3 9 32
4 15 41
TOTAL 158
06/06/2008 04/07/2008
1 10 36
2 17 48
3 9 21
4 15 32
TOTAL 137
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
06/06/2008 07/07/2008
1 10 68
2 15 106
3 7 31
4 14 96
TOTAL 301
06/06/2008 08/07/2008
1 10 26
2 15 47
3 7 16
4 14 29
TOTAL 118
06/06/2008 09/07/2008
1 10 26
2 15 41
3 7 16
4 14 36
TOTAL 119
06/06/2008 10/07/2008
1 10 26
2 15 35
3 7 8
4 14 34
TOTAL 103
06/06/2008 11/07/2008
1 10 16
2 15 9
3 7 8
4 14 26
TOTAL 59
06/06/2008 14/07/2008
1 8 62
2 14 105
3 0 0
4 11 76
TOTAL 243
06/06/2008 15/07/2008 1 8 24
2 14 32
3 0 0
4 11 25
TOTAL 81
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
06/06/2008 16/07/2008
1 8 14
2 14 36
3 0 0
4 11 25
TOTAL 75
06/06/2008 17/07/2008
1 8 16
2 14 8
3 0 0
4 11 29
TOTAL 53
06/06/2008 18/07/2008
1 8 6
2 14 8
3 0 0
4 11 26
TOTAL 40
06/06/2008 21/07/2008
1 4 15
2 11 24
3 0 0
4 7 18
TOTAL 57
06/06/2008 22/07/2008
1 4 2
2 11 14
3 0 0
4 7 11
TOTAL 27
06/06/2008 23/07/2008
1 4 0
2 11 6
3 0 0
4 7 11
TOTAL 17
06/06/2008 24/07/2008
1 4 3
2 11 8
3 0 0
4 7 6
TOTAL 17
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
20/06/2008 30/06/2008
1 19 14
2 17 21
3 20 26
4 19 38
TOTAL 99
20/06/2008 01/07/2008
1 19 29
2 17 35
3 20 31
4 19 35
TOTAL 130
20/06/2008 02/07/2008
1 19 36
2 17 42
3 20 47
4 19 39
TOTAL 164
20/06/2008 03/07/2008
1 19 38
2 17 46
3 20 63
4 19 58
TOTAL 205
20/06/2008 04/07/2008
1 19 63
2 17 55
3 20 62
4 19 49
TOTAL 229
20/06/2008 07/07/2008 1 18 132
2 14 112
3 17 127
4 15 116
TOTAL 487
20/06/2008 08/07/2008
1 18 52
2 14 43
3 17 53
4 15 47
TOTAL 195
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
20/06/2008 09/07/2008
1 18 48
2 14 38
3 17 59
4 15 37
TOTAL 182
20/06/2008 10/07/2008
1 18 72
2 14 55
3 17 71
4 15 57
TOTAL 255
20/06/2008 11/07/2008
1 18 67
2 14 53
3 17 63
4 15 68
TOTAL 251
20/06/2008 14/07/2008
1 16 132
2 13 114
3 17 116
4 12 93
TOTAL 455
20/06/2008 15/07/2008
1 16 57
2 13 35
3 17 53
4 12 37
TOTAL 182
20/06/2008 16/07/2008
1 16 43
2 13 32
3 17 47
4 12 29
TOTAL 151
20/06/2008 17/07/2008
1 16 27
2 13 39
3 17 41
4 12 29
TOTAL 136
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
20/06/2008 18/07/2008
1 16 39
2 13 34
3 17 54
4 12 33
TOTAL 160
20/06/2008 21/07/2008
1 14 98
2 7 49
3 11 79
4 9 64
TOTAL 290
20/06/2008 22/07/2008
1 14 43
2 11 32
3 17 53
4 12 38
TOTAL 166
20/06/2008 23/07/2008
1 14 47
2 11 27
3 17 43
4 12 32
TOTAL 149
20/06/2008 24/07/2008
1 14 35
2 11 27
3 17 53
4 12 33
TOTAL 148
20/06/2008 25/07/2008
1 14 32
2 11 25
3 17 47
4 12 39
TOTAL 143
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
20/06/2008 28/07/2008
1 11 64
2 9 48
3 13 76
4 7 24
TOTAL 212
20/06/2008 29/07/2008
1 11 25
2 9 14
3 13 38
4 7 14
TOTAL 91
20/06/2008 30/07/2008
1 11 32
2 9 24
3 13 35
4 7 18
TOTAL 109
20/06/2008 31/07/2008
1 11 36
2 0 0
3 13 47
4 7 15
TOTAL 98
20/06/2008 01/08/2008
1 11 26
2 0 0
3 13 38
4 7 4
TOTAL 68
20/06/2008 04/08/2008
1 8 9
2 0 0
3 7 3
4 3 1
TOTAL 13
20/06/2008 05/08/2008
1 8 11
2 0 0
3 5 3
4 2 0
TOTAL 14
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
20/06/2008 06/08/2008
1 6 4
2 0 0
3 4 2
4 0 0
TOTAL 6
27/06/2008 07/07/2008
1 18 4
2 15 9
3 20 15
4 13 18
TOTAL 46
27/06/2008 08/07/2008
1 18 18
2 15 29
3 20 14
4 13 23
TOTAL 84
27/06/2008 09/07/2008
1 18 39
2 15 29
3 20 41
4 13 25
TOTAL 134
27/06/2008 10/07/2008
1 18 52
2 15 47
3 20 44
4 13 39
TOTAL 182
27/06/2008 11/07/2008
1 18 35
2 15 27
3 20 48
4 13 36
TOTAL 146
27/06/2008 14/07/2008
1 15 105
2 15 96
3 19 127
4 10 74
TOTAL 402
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
27/06/2008 15/07/2008
1 15 25
2 15 29
3 19 36
4 10 17
TOTAL 107
27/06/2008 16/07/2008
1 15 39
2 15 26
3 19 47
4 10 17
TOTAL 129
27/06/2008 17/07/2008
1 15 15
2 15 6
3 19 18
4 10 9
TOTAL 48
27/06/2008 18/07/2008 1 15 19
2 15 11
3 19 25
4 10 14
TOTAL 69
27/06/2008 21/07/2008
1 13 74
2 15 58
3 15 69
4 7 38
TOTAL 239
27/06/2008 22/07/2008
1 13 36
2 15 45
3 15 42
4 7 14
TOTAL 137
27/06/2008 23/07/2008
1 13 42
2 15 34
3 15 47
4 7 19
TOTAL 142
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
27/06/2008 24/07/2008
1 13 28
2 15 56
3 15 47
4 7 25
TOTAL 156
27/06/2008 25/07/2008
1 13 47
2 15 32
3 15 28
4 7 4
TOTAL 111
27/06/2008 28/07/2008
1 10 56
2 13 62
3 14 74
4 3 9
TOTAL 201
27/06/2008 29/07/2008
1 10 25
2 13 39
3 14 26
4 3 8
TOTAL 98
27/06/2008 30/07/2008
1 10 14
2 13 19
3 14 27
4 3 11
TOTAL 71
27/06/2008 31/07/2008
1 10 24
2 13 17
3 14 29
4 3 4
TOTAL 74
27/06/2008 01/08/2008
1 10 21
2 13 15
3 14 8
4 3 7
TOTAL 51
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
27/06/2008 04/08/2008
1 8 47
2 13 88
3 11 74
4 0 0
TOTAL 209
27/06/2008 05/08/2008
1 8 19
2 13 25
3 11 21
4 0 0
TOTAL 65
27/06/2008 06/08/2008 1 8 11
2 13 8
3 11 16
4 0 0
TOTAL 35
27/06/2008 07/08/2008
1 8 11
2 13 17
3 11 14
4 0 0
TOTAL 42
27/06/2008 08/08/2008
1 8 14
2 13 19
3 11 21
4 0 0
TOTAL 54
27/06/2008 11/08/2008
1 4 19
2 7 4
3 6 26
4 0 0
TOTAL 49
27/06/2008 12/08/2008
1 4 6
2 7 3
3 6 0
4 0 0
TOTAL 9
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
27/06/2008 13/08/2008
1 4 2
2 7 4
3 6 0
4 0 0
TOTAL 6
04/07/2008 14/07/2008
1 20 8
2 17 3
3 15 11
4 20 12
TOTAL 34
04/07/2008 15/07/2008
1 20 14
2 17 17
3 15 25
4 20 18
TOTAL 74
04/07/2008 16/07/2008
1 20 26
2 17 18
3 15 27
4 20 19
TOTAL 90
04/07/2008 17/07/2008
1 17 28
2 14 36
3 15 37
4 20 18
TOTAL 119
04/07/2008 18/07/2008
1 17 22
2 14 29
3 15 38
4 20 27
TOTAL 116
04/07/2008 21/07/2008
1 16 89
2 14 111
3 11 95
4 17 127
TOTAL 422
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
04/07/2008 22/07/2008
1 16 39
2 14 28
3 11 15
4 17 25
TOTAL 107
04/07/2008 23/07/2008
1 16 18
2 14 23
3 11 41
4 17 36
TOTAL 118
04/07/2008 24/07/2008
1 16 35
2 14 24
3 11 19
4 17 26
TOTAL 104
04/07/2008 25/07/2008
1 16 26
2 14 14
3 11 19
4 17 31
TOTAL 90
04/07/2008 28/07/2008
1 15 74
2 12 95
3 8 63
4 11 84
TOTAL 316
04/07/2008 29/07/2008
1 15 25
2 12 29
3 8 11
4 11 25
TOTAL 90
04/07/2008 30/07/2008
1 15 39
2 12 28
3 8 15
4 11 17
TOTAL 99
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
04/07/2008 31/07/2008
1 15 29
2 12 38
3 8 14
4 11 31
TOTAL 112
04/07/2008 01/08/2008 1 15 36
2 12 29
3 8 19
4 11 21
TOTAL 105
04/07/2008 04/08/2008
1 11 68
2 9 47
3 8 49
4 6 41
TOTAL 137
04/07/2008 05/08/2008
1 11 29
2 9 22
3 8 17
4 6 11
TOTAL 79
04/07/2008 06/08/2008
1 11 24
2 9 21
3 8 23
4 6 15
TOTAL 83
04/07/2008 07/08/2008
1 11 21
2 9 6
3 8 0
4 6 14
TOTAL 41
04/07/2008 08/08/2008
1 11 8
2 9 14
3 8 9
4 6 2
TOTAL 33
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
04/07/2008 11/08/2008
1 8 48
2 9 29
3 0 0
4 2 7
TOTAL 84
04/07/2008 12/08/2008
1 8 17
2 9 21
3 0 0
4 2 0
TOTAL 38
04/07/2008 13/08/2008
1 8 11
2 9 4
3 0 0
4 2 1
TOTAL 16
04/07/2008 14/08/2008
1 8 12
2 9 6
3 0 0
4 2 4
TOTAL 22
04/07/2008 15/08/2008
1 8 19
2 9 14
3 0 0
4 2 7
TOTAL 40
04/07/2008 18/08/2008
1 5 11
2 6 13
3 0 0
4 0 0
TOTAL 24
04/07/2008 19/08/2008
1 5 8
2 6 4
3 0 0
4 0 0
TOTAL 12
FECHA DE SIEMBRA FECHA DE CONTROL PECERA N° MAMAS NEONATOS
04/07/2008 20/08/2008 1 5 3
2 6 0
3 0 0
4 0 0
TOTAL 3
ANEXO G.
DERSA
DETERGENTE DERSA
Es un detergente de tipo comercial que esta compuesto principalmente de:
Alquil sulfonato de sodio, fosfato de sodio, sulfato de sodio, silicato de sodio,
carboximetil Celulosa, colorante, blanqueador óptico y perfume, es de tipo
biodegradable.
ANEXO H.
FAB TOTAL
DETERGENTE FAB
Es un detergente de tipo comercial que esta compuesto principalmente de:
abrillantadores ópticos, tensoactivos aniónicos, tensoactivos catiónicos,
fosfatos, carbonatos, perfume, enzimas, silicatos y poliacrilatos, es de tipo
biodegradable.
ANEXO I.
ARIEL OXIAZUL
DETERGENTE ARIEL OXIAZUL
Es un detergente de tipo comercial que esta compuesto principalmente de:
dodecilbenceno sulfato de sodio, agentes antiredepositantes, perfume,
enzimas, abrillantadores ópticos, supresores de espuma y colorantes, su
biodegradabilidad es de más del 90%.
ANEXO J.
COMPONENTE
ACTIVO (LAS)
LAURIL ALQUIL SULFATO (LAS)
Sustancia activa:
Las sustancias activas al azul de metileno (SAAM) ocasionan la transferencia
del azul de metileno, un tinte catiónico, de una solución acuosa a un liquido
orgánico inmiscible en equilibrio. Esto ocurre mediante la formación de un par
iónico del anión del MBAS y el catión del azul de metileno. La intensidad del
color azul resultante en la fase orgánica es una medida del SAAM. Los
surfactantes aniónicos están entre los más importantes de las muchas
sustancias naturales y sintéticas, que muestran actividad al azul de metileno.
El método SAAM es usado en la estimación del contenido de surfactantes
aniónicos en aguas residuales, pero siempre debe estar presente en mente, la
posible presencia de otros tipos de SAAM.
ANEXO K.
PLANOS UNIDAD DE
TRATAMIENTO