cultivo de especies regionales en granjas...

Dr. Armando García Ortega 10ª Feria de Posgrados Mexicanos de Calidad Tuxtla Gutiérrez, Chiapas Mayo 12, 2009

Cultivo de especies regionalesen granjas marinas:

Dr. Armando García Ortega

Importancia de la investigación científica en nutrición y alimentación

de peces marinos

1

CIADUnidad Mazatlán


¿Que es la Acuacultura?

2

Dr. Armando García Ortega 10ª Feria de Posgrados Mexicanos de Calidad Tuxtla Gutiérrez, Chiapas Mayo 12, 2009 3


Fuente CONAPESCA, 2008

Producción de la acuacultura en México


MEXICO

ESTADOS UNIDOS

GUATEMALA

OCEANOPACIFICO

GOLFODE

MEXICOTrópico de Cáncer

Mar Caribe

Golfo de California

PACIFICOatún aleta azul (Thunnus orientalis)

atún aleta amarilla (Thunnus albacares)jurel cola amarilla (Seriola lalandi)

pargo lunarejo (Lutjanus guttatus)lenguado (Paralychthys californicus)

cabrilla arenera (Paralabrax maculatofasciatus)botete diana (Sphoeroides annulatus)

totoaba (Totoaba macdonaldi)cabrilla sardinera (Mycteroperca rosacea)

corvina blanca (Atractosion nobilis)huachinango del Pacífico (L. peru) pargo amarillo (L. argentiventris))

ATLANTICOcurvina (Sciaenops ocellatus)esmedregal (Rachycentron

canadum)pámpano (Trachinotus sp.)

huachinango (L. campechanus)boquinete (Lachnolaimus maximus) robalo (Centropomus undecimalis)


A pesar del gran potencial que existe en nuestro país para el cultivo de peces marinos, la

producción todavía es limitada.

Problemática relacionada (principalmente) a:

•Falta de conocimiento sobre la biología y tecnología de cultivo de las diversas especies.

•Poca inversión en proyectos de investigación y proyectos productivos.

•Carencia de especialistas.


¿Cuáles son los principales aspectos en la investigación para lograr el cultivo de peces marinos?

• Reproducción• Alimentación y Nutrición

• Enfermedades

• Genética


Investigación en Nutrición y Alimentación de Peces Marinos

• Requerimientos nutric ionales (proteína, lipídos, vitaminas, etc.)

• Fisiología digestiva (enzimas, ontogenia del tracto digestivo, etc.)

• Desarrollo de alimentos (reproductores, larvas, juveniles, engorda)

• Protocolos de alimentación

Técnicas de cultivo


Almentación y nutrición de larvas de peces

9


Botete dianar Sphoeroides annulatus

Tamaño del huevo: 0.7 mmLarva recién eclosionada: 1.9 mm


Eclosión DPE 11

DPE 16 DPE 22

Desarrollo larvario del pargo lunarejoLutjanus guttatus

11


Botete dianaDesarrollo del tracto digestivo

d-1: intestino e hígado inician sudesarrollo, seguidos por el páncreas.

d-4: (primera alimentación) saco vitelinoabsorbido, boca y ano abiertos.

d-28: diferenciación completa de órganos,sin evidencia de un estómago oglándulas gástricas.

Enzimas digestivas estudiadas:Proteasa acídica, proteasas alcalinas, tripsina.

Expresión del gen de tripsina fue detectada en huevos, sin embargo la actividad de tripsina se detectó primero en el d-2 con un pico de actividad en el d-24.

García-Gasca et al., 2006


García-Ortega, 2009

Microalgas (>100,000 cel/ml)Nannochloropsis e Isochrysis

Rotíferos enriquecidos con Protein Selcode 10 a 20 por ml

Artemia sin enriquecerde 0.5 a 4 por ml

Artemia enriquecida con Selcopor 24 h; de 1 a 5 por ml

Microdieta artificial Proton y Alfa (>55% proteína; en exceso)150-300 µm 200-400 µm 300-500 µm

Protocolo de alimentación para larvas debotete diana Sphoeroides annulatus

Días post-eclosión

31 mg

109 mg

3.1 mg

20 10 1714 22 28 4020

13


Video


Alta variabilidad individual en el tamaño de larvas de peces

DPE 21

15


Nutrición y alimentación de juveniles

16


Experimento con siete niveles de proteína:

- 30, 35, 40, 45, 50, 55 y 60% (ps)- tres replicados por tratamiento- 10 peces por tanque- peso inicial promedio: 140.3 g- alimentación a saciedad aparente dosveces al día durante 16 semanas

- crecimiento (peso y longitud) ysobrevivencia medidos cada dos semanas

- Temperatura = 26.9°C- Salinidad = 34.6 ppm

Pargo lunarejo Lutjanus guttatus

17


Video


Frecuencia de alimentación (veces al día)1 2 4 6

Peso final (g) 26.6cd 29.0a 28.1b 26.8c

Peso ganado (g) 5.6b 7.7a 7.1ab 5.4b

TCA 2.2b 1.7a 2.3b 3.0b

TEA 45.1b 60.5a 43.5bc 33.6c

TCE (% día) 0.56b 0.74a 0.70ab 0.54b

Sobrevivencia (%)* 93.3 88.3 93.3 91.7

Crecimiento, eficiencia en el uso del alimento y sobrevivencia de juveniles de botete diana (21.2 ± 0.7 g) a diferentes frecuencias de alimentación durante

seis semanas.

N=20 peces por tanque; tres réplicas por tratamiento; peso cada dos semanas; alimentación a saciedad aparente.

* No se encontraron diferencias significativas entre tratamientos (P>0.05)

TCA (tasa de conversión alimenticia) = alimento consumido (g)/peso ganado (g)TEA (tasa de eficiencia del alimento) = peso ganado (g)/alimento consumido X 100 TCE (tasa de crecimiento específico) = (ln peso final – ln peso inicial)/tiempo en días X 100

García-Ortega, 2009


Efecto de pigmentos carotenoides la coloración de los peces

20

0 mg/kg

50 mg/kg

100 mg/kg


Estándar Víscera botete 3.2 g

Músculo botete 34 g Víscera botete 34 g

TTX

TTX

TTX

Ochoa et al., 2006

Presencia de tetrodotoxina en extractos de botete cultivado

Concentración equivalente a menos de una unidad ratón


Oportunidades para estudiantes:

•Aprendizaje en centros de investigación

•Prácticas profesionales

•Servicio social

•Tesis licenciatura

•Estudios de maestría (becas institucionales o CONACYT)

•Estancias en México y el extranjero

•Oportunidades para estudios de doctorado


Gracias por su atención

cultivo de especies regionales en granjas...

Documents