CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 1

Tema 8. Efectos fenotípicos de las mutaciones

Ganancia y Pérdida de función de un gen. Fenotipos recesivos y pérdida de

función. Fenotipos dominantes por ganancia de función. Haploinsuficiencia

y efecto dominante-negativo. Alteraciones de la impronta genómica.

Ganancia y Pérdida de función de un gen

Cuando un gen está mutado por cualquiera de los mecanismos que hemos visto en el capítulo anterior,

pueden suceder fundamentalmente dos cosas: (a) que esa mutación se silenciosa, no tenga ningún

efecto pernicioso ni provoque ningún fenotipo anómalo; ó (b) que esa mutación provoque la aparición

de un fenotipo aberrante que conduzca al desarrollo de una enfermedad. En este segundo caso, que es

el que nos ocupa en esta asignatura, es importante darse cuenta de que la alteración de un gen puede

provocar un fenotipo anormal mediante dos mecanismos, fundamentalmente: la pérdida de función ó la

ganancia de función. La pérdida de función de un gen equivale a su ausencia total, ya que el gen no

codifica la proteína respectiva. En general, esto da lugar a fenotipos que se heredan de manera

recesiva, ya que es necesario que estén mutados los dos alelos para que se manifieste el fenotipo. Sin

embargo, en aquellos casos en los que hay un efecto de dosis génica, en los que se producen fenotipos

dominantes por un fenómeno llamado haploinsuficiencia, la pérdida de función genera fenotipos de

herencia dominante. En el caso de las mutaciones que provocan una ganancia de función, los

fenotipos resultantes son generalmente de herencia dominante, porque la mutación facilita que el gen

escape a los mecanismos que regulan su expresión, o bien crea una nueva función que tiene un efecto

dominante negativo. Como regla general, podemos decir que cuando las mutaciones puntuales en un

gen producen el mismo fenotipo que las deleciones de todo el gen, lo más probable es que esas

mutaciones provoquen una pérdida de función; en cambio, las mutaciones que operan a través de una

ganancia de función suelen provocar fenotipos distintos a los que genera la deleción o disrupción de ese

gen. A continuación veremos un poco más a fondo cada una de estas dos situaciones.

Fenotipos recesivos y pérdida de función

Un gen puede perder su función de varias maneras:

Mutaciones en el propio gen: cualquier tipo de mutación que interrumpa la capacidad codificante

del gen hará que se pierda su función. Como hemos visto en el capítulo precedente, puede tratarse

de mutaciones puntuales, deleciones o inserciones que interrumpen el marco de lectura, así como

alteraciones de las secuencias de ayuste (splicing). También podemos incluir aquellas mutaciones

que no afectan a la secuencia del transcrito (ARNm) sino a su estabilidad, de forma que el mensajero

se degrada rápidamente y no llega a traducirse en la proteína correspondiente.

Mutaciones que afectan a los elementos que regulan la expresión génica. Un gen puede dejar

de expresarse por mutaciones que afectan al promotor, bien por mutaciones que alteran las

secuencias de unión a factores de transcripción o bien provocando su metilación. Otro mecanismo

que disminuye la expresión génica es el que se conoce como efectos de posición, es decir, una

reordenación cromosómica que mueve un gen de su posición original a otra región del genoma que

está silenciada (una región de heterocromatina, por ejemplo). En ocasiones, esto hace que el gen

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deje de expresarse. Hay varios ejemplos de enfermedades humanas producidas por este mecanismo,

como la Aniridia (por alteraciones del gen PAX6) o la Displasia Campomélica (alteraciones del gen

SOX9), enfermedades en las que muchas veces se observan translocaciones que no interrumpen

directamente los genes respectivos, sino que los separan de su contexto genómico habitual y los

colocan en una región de cromatina silenciada.

Fenotipos dominantes por ganancia de función

Los mecanismos por los que las mutaciones pueden originar una ganancia de función que se manifieste

en un fenotipo dominante son variados, pero podemos señalar tres:

Una mutación que altera la proteína de forma que ésta adquiere una nueva función. El mejor

ejemplo es el alelo "Pittsburgh" de alfa-1 antitripsina, un enzima con actividad anti-elastasa.

Habitualmente, los alelos mutantes de alfa-1 antitripsina producen una pérdida de función, con la

consiguiente disminución de la actividad enzimática y el desarrollo de una enfermedad denominada

enfisema pulmonar. En cambio, el alelo "Pittsburgh" está debido a una mutación que cambia la

metionina en posición 358 a una arginina (M358R). Esto hace que el enzima adquiera una actividad

anti-trombina que antes no tenía, dando lugar a un trastorno de la coagulación en vez de provocar

enfisema pulmonar. Las mutaciones con ganancia de función son muy frecuentes en cáncer, siendo

uno de los principales mecanismos de activación de oncogenes. Por ejemplo, la fusión de los genes

BCR y ABL, en pacientes con leucemia mieloide crónica, es el resultado de una translocación

(9;22) en la que el gen ABL —una tirosina-quinasa— pierde su región reguladora y queda fusionado

con la región 5' del gen BCR, que se expresa en células progenitoras hematopoyéticas. Esto provoca

un nuevo gen de fusión que conduce a una expresión constitutiva y des-regulada de la tirosina-

kinasa ABL en células de la serie mieloide en la médula ósea, lo que lleva el desarrollo de la

leucemia.

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Figura 8.1 estructura de los genes BCR y ABL, indicando los exones y las

regiones en las que se agrupan los puntos de rotura que originan la

translocación (9;22) que aparece en individuos con leucemia mieloide

crónica. La translocación da lugar a un cromosoma derivado llamado

Cromosoma Philadelphia (Ph1), que contiene la parte 5' del gen BCR

fusionada con la región 3' del gen ABL (el diagrama inferior de la

figura). Dicho cromosoma produce proteínas de fusión en las que la

actividad tirosina-quinasa de ABL está desregulada, ya que se expresa a

partir del promotor del gen BCR. La imagen está tomada de la página

Web del International Inmunogenetics Information System.

Figura 8.2 Ensayo de FISH: en las células que llevan la translocación hay

una fusión de la señal verde (del gen BCR) y la señal roja (del gen ABL),

dando como resultado una señal amarilla que indica la presencia de la

translocación. En ambos núcleos (con fluorescencia azul debida a la

tinción con DAPI), aparece una señal verde (correspondiente al

cromosoma 22 normal), una señal roja (correspondiente al cromosoma

9 normal) y una señal amarilla que corresponde al cromosoma

Philadelphia con la translocación.

Ganancia de función también por la sobre-expresión de un gen, como resultado de duplicaciones

o amplificaciones génicas: un segmento genómico que se copia varias veces, de forma que los genes

contenidos en ese segmento estarán en un número de copias muy superior al normal. Este también

es un mecanismo frecuente en distintos tipos de cáncer. Por ejemplo, el oncogén C-MYC está

amplificado en varios tumores (sobre todo en neuroblastomas), C-ERBB2 en tumores de mama, etc.

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Aunque estas amplificaciones pueden verse en un cariotipo convencional como regiones de tinción

homogénea (Homogenous Staining Regions, HSR), o también como "Dobles Diminutos" (cromosomas

minúsculos), la técnica de FISH las detecta con mucha mayor sensibilidad y permite además contar

el número de veces que el gen se ha amplificado.

Figura 8.3 Ensayo de FISH para la detección del número de copias del gen

ERBB2 en cortes de parafina de tumores de mama. Como se ve en esta

imagen, algunos tumores tienen una amplificación del gen (muchas

señales verdes por cada núcleo). Esto tiene importancia clínica, porque los

tumores de mama con amplificación de ERBB2 responden a un fármaco

llamado Herceptin, mientras que los tumores de mama sin amplificación de

ERBB2 no responden a este fármaco.

Haploinsuficiencia y efecto dominante-negativo

Aunque la pérdida de función de un gen suele desencadenar fenotipos recesivos, a veces se obtienen

fenotipos con herencia dominante. Esto sucede en aquellos casos en los que la disminución de la dosis

génica al 50% de lo que es habitual ya es capaz de provocar el fenotipo patológico. Como es sabido,

los genes autosómicos y el cromosoma X en mujeres están en doble dosis génica (hay dos alelos para

cada gen), lo que hace que en circunstancias normales se produzcan unos niveles determinados de

producto proteico. Habitualmente, la pérdida de uno de los alelos no tiene ningún efecto patológico:

aunque sólo se produce la mitad de proteína de lo que sería normal, la cantidad producida por el alelo

normal es suficiente para realizar la función respectiva. Sin embargo, en algunos casos la simple

disminución de la dosis génica a la mitad, por la inactivación de uno de los alelos mediante cualquier

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mecanismo mutacional de los que se han estudiado, provoca el desarrollo del fenotipo patológico.

Cuando esto sucede, se habla de enfermedades causadas por haploinsuficiencia o insuficiencia

haploide, que lógicamente se heredan con un patrón dominante.

Figura 8.4 Haploinsuficiencia. En condiciones normales, una mutación con

pérdida de función sólo produce efectos fenotípicos cuando ambos alelos

están mutados (genotipo aa, umbral inferior). En ocasiones, cuando el

umbral necesario para la correcta funcionalidad de la proteína es más alto

(umbral superior en la gráfica de la derecha), la mutación de un solo alelo

(Aa) es suficiente para provocar la enfermedad.

Aunque hay bastantes enfermedades humanas causadas por haploinsuficiencia, un buen ejemplo es el

Síndrome de Turner (45,X0), en el que basta la pérdida de una copia de los genes implicados para

que se desarrollen las características fenotípicas propias de esta enfermedad. En concreto, se ha visto

que uno los genes responsables de esta enfermedad (SHOX) se localiza en la región pseudoautosómica

del cromosoma X y habitualmente escapa a la inactivación del cromosoma X, por lo que en condiciones

normales está presente en doble dosis génica. Cuando se pierde una copia de este gen (por la ausencia

de uno de los cromosomas X), la única copia que queda no es suficiente para llevar a cabo

correctamente su función y esto parece ser la causa de la talla corta de las mujeres con Síndrome de

Turner.

Otro modo por el que mutaciones con pérdida de función pueden dar lugar a fenotipos de herencia

dominante es el efecto dominante-negativo. Consiste en que ciertos tipos de genes codifican

moléculas que funcionan como dímeros o forman parte de complejos multiméricos, de modo que basta

la mutación en uno de los alelos del gen para que las moléculas proteicas mutantes desestabilicen

totalmente los complejos de los que forman parte. Hay dos ejemplos típicos que ilustran muy bien

este fenómeno:

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A. Enfermedades que afectan a los genes que codifican alguna de las cadenas de colágeno. La

molécula de pro-colágeno es un trímero formado por distintos tipos de cadenas, cuya combinación da

lugar a los diferentes tipos de colágeno que existen. De modo general, una mutación en el gen de una

de las cadenas provocará la desestabilización de todo el complejo trimérico, por lo que basta la mutación

en un solo alelo para que se desarrolle la enfermedad. En estos casos, puede darse la circunstancia de

que una mutación puede tener distinta gravedad en función del número de moléculas mutantes y

nativas que se generan.

Figura 8.5 El video ilustra la diferencia entre mutaciones con pérdida de

función y mutaciones con ganancia de función en un mismo gen, utilizando

el ejemplo del procolágeno tipo I. Cada molécula de colágeno tipo I es un

trímero formado por dos cadenas alfa-1 (codificadas por el gen COL1A1) y

por una cadena alfa-2 (codificada por el gen COL1A2). En circunstancias

normales, se mantiene un equilibrio tal que el locus COL1A1 produce el

doble de cadenas que el locus COL1A2, con lo que se forma el procolágeno

I sin problemas.

Una mutación con ganancia de función en uno de los alelos del gen COL1A1 provocará que la mitad de

las cadenas alfa-1 sean anormales, de manera que la mayoría de los trímeros estarán alterados y la

cantidad de procolágeno I normal será muy baja (de hecho, muy inferior al 50%). Esto causa una

enfermedad llamada Osteogénesis Imperfecta tipo I. En cambio, una mutación que anule uno de los

alelos del gen COL1A1 (pérdida de función) creará una situación en la que el número total de cadenas

alfa-1 será la mitad del normal. El resultado final es la formación de trímeros de procolágeno I normales,

pero en número equivalente al 50% de las personas sanas. Esto provoca una osteogénesis imperfecta

mucho más leve que en el caso anterior.

B. Receptores de las vías de transducción de señales: constituyen otro gran grupo de proteínas

que suelen dar lugar a fenotipos de herencia dominante, habitualmente por un efecto dominante

negativo de las moléculas mutadas. A continuación se señalan dos de los ejemplos más ilustrativos:

Los genes que codifican receptores para el factor de crecimiento fibroblástico (FGF). Tras la

unión del ligando extracelular al receptor, unión mediada por heparan-sulfato de la matriz

extracelular, los receptores forman homo- o heterodímeros, se transfosforilan en el dominio quinasa

intracelular y a continuación fosforilan proteínas intracelulares implicadas en diversas vías de

transducción de señales. Las mutaciones que afectan a los genes de estos receptores (FGFR1,

FGFR2 y FGFR3) causan varios síndromes de craniosinostosis y estatura baja cuyas bases

moleculares están comenzando a comprenderse. Por ejemplo, la Acondroplasia (la causa más

frecuente de estatura baja) es una enfermedad de herencia autosómica dominante debida a

mutaciones en el gen del receptor del Factor de Crecimiento Fibroblástico-3 (FGF3). Este receptor

forma un homodímero que se activa en respuesta a su ligando natural. En cambio, en los pacientes

con acondroplasia se encuentran mutaciones en uno de los alelos del gen, de forma que la molécula

mutada conduce a la dimerización del receptor incluso en ausencia de ligando. Como resultado, se

obtiene una activación constitutiva de la cascada de señales iniciada por el receptor, que en último

término provoca el cierre prematuro del cartílago de crecimiento de los huesos largos y la baja talla

característica de esta enfermedad. La mutación más frecuente en casos de acondroplasia es la

mutación G380R del gen FGFR3, que afecta al dominio transmembrana del receptor.

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Curiosamente, mutaciones en otras regiones de este mismo gen causan fenotipos similares pero no

idénticos, como por ejemplo la displasia tanatofórica (micromelia e hipoplasia de costillas con

fallo respiratorio). Estas enfermedades son de herencia dominante por el efecto dominante

negativo de estas mutaciones, que hace que con una sola molécula mutada ya que se produzca la

activación constitutiva del receptor en ausencia de ligando. Respecto a mutaciones en otros genes

que codifican receptores de FGF (FGFR1 y FGFR2), también causan enfermedades con alteraciones

de huesos y cartílagos, como el Síndrome de Crouzon (craniosinostosis, bien aislada o bien

asociada con otros defectos esqueléticos), el Síndrome de Pfeiffer (pulgares y primer dedo del pie

anchos con anquilosis interfalángica), el Síndrome de Jackson-Weiss (lo anterior más

coalescencia tarso-metatarsiana) y el Síndrome de Apert (sindactilia severa).

Mutaciones que afectan al gen RET. Este gen codifica un receptor tirosina-quinasa, cuyo ligando

es el GDNF (Glial cell line-Derived Neurotrophic Factor). Las mutaciones de RET son muy

interesantes, ya que muestran cómo un mismo gen puede sufrir mutaciones que provocan

pérdida o ganancia de función, dando lugar a fenotipos diferentes. En el caso concreto de RET,

algunas mutaciones con cambio de sentido afectan a aminoácidos del dominio extracelular o del

dominio quinasa, y provocan la activación del receptor de manera independiente de ligando. Estas

mutaciones carcinoma medular de tiroides familiar u otros cuadros de cáncer familiar

denominados MEN2 (Multiple Endocrine Neoplasia), que son de herencia dominante porque un solo

alelo mutado desencadena la enfermedad por un efecto dominante negativo. Por el contrario,

algunas mutaciones de RET que llevan a la pérdida de función (mutaciones sin sentido, cambios del

marco de lectura, deleciones, etc) provocan la ausencia de las moléculas del receptor codificadas

por el alelo mutado, con el resultado de que la intensidad de la señalización de esta vía se ve

disminuida. Esto provoca un déficit en la migración de precursores neurales al tubo digestivo

durante el desarrollo embrionario, lo que da lugar a la Enfermedad de Hirschsprung (megacolon

agangliónico: ausencia congénita de los plexos submucosos y mientérico del colon distal). Esta

enfermedad se hereda con un patrón dominante, aunque también se han identificado mutaciones en

otros genes que causan la misma enfermedad con herencia recesiva, como el gen EDNRB del

receptor para endotelina B (receptor de proteinas G) ó también el gen de su ligando EDN3

(endotelina 3).

Figura 8.6 Este video muestra la familia de receptores tirosina-quinasa,

que ilustra los efectos de distintas mutaciones activadoras (con

ganancia de función) e inactivadoras (con pérdida de función) en un

mismo gen, y el efecto dominante negativo de las mutaciones

activadoras. Varios receptores de esta familia, como FGFR3 ó RET, dan

lugar a fenotipos dominantes.

Alteraciones de la impronta genómica

El imprinting o impronta genómica es la marca epigenética que define una región genómica como

materna ó paterna en el cigoto. La existencia de este fenómeno se descubrió al crear embriones de

ratón por transferencia nuclear: cambiando un pronúcleo masculino por un segundo pronúcleo femenino

se obtiene un ginogenonte; reemplazando el pronúcleo femenino por un segundo pronúcleo masculino se

obtiene un androgenonte. En teoría, estos embriones (excepto los androgenontes YY) deberían ser

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 8

viables, pero en cambio se observó que estas modificaciones son letales en el periodo embrionario, y

que esa letalidad tiene dos formas diferentes: los ginogenontes muestran un embrión normal con falta

de desarrollo de tejidos extraembrionarios, mientras que los androgenontes muestran más

alteraciones en el embrión que en tejidos extraembrionarios. En humanos, las concepciones

uniparentales androgenéticas, que se originan raramente por la pérdida de los cromosomas maternos

poco después de la fertilización, se manifiestan en una estructura que se conoce como mola

hidatidiforme completa. Por el contrario, los oocitos que se dividen por partenogénesis sólo contienen

material materno, y dan lugar a quistes dermoides. Estos hallazgos se explican actualmente por la

existencia en el genoma de genes "improntados" (sometidos al fenómeno de la impronta), en los que

de algún modo se reconoce el origen parental de cada alelo y se produce el silenciamiento selectivo de

uno de ellos: en unos casos siempre se silencia el materno, en otros genes siempre se silencia el alelo

paterno. Por tanto, cuando el núcleo del cigoto sólo contiene material de uno de los progenitores, pero

no una mezcla de ambos, los embriones resultantes son inviables. Esto sugiere la existencia de una

asimetría de los genomas materno y paterno, en cuanto a que ambos genomas tienen silenciados

distintos grupos de genes. Esta asimetría es necesaria para el correcto desarrollo embrionario.

Dado que ambos alelos de los genes sometidos a imprinting son idénticos y capaces de interaccionar con

los mismos factores de transcripción, el mecanismo que silencia uno de ellos de manera estable y

heredable debe ser un mecanismo epigenético, que haga posible que el imprinting pueda borrarse

durante la gametogénesis y re-establecerse tras la fecundación. La metilación, como mecanismo

silenciador de la expresión génica, cumple la mayor parte de estos requisitos, y hay bastantes líneas de

evidencia que apoyan el papel de la metilación en el fenómeno de imprinting: 1) todos los genes

improntados descritos hasta el momento -excepto uno- muestran regiones con metilación diferencial

(abreviadas DMR en inglés, regiones que están metiladas en uno de los alelos pero no en el otro), cuyos

patrones de metilación se establecen durante la gametogénesis y se mantienen gracias a la metilación

específica de ADN hemi-metilado; 2) los embriones de ratón dnmt1-/- (que carece de ADN-

metiltransferasa-1) muestran expresión bi-alélica de genes improntados, es decir, en ausencia de la

metilasa de mantenimiento se re-expresa el alelo que estaba silenciado; 3) se ha descrito el caso de una

mujer con mutaciones en el gen DNMT3L (que codifica una metilasa) que tiene infertilidad porque los

embriones fallecen al implantarse en el útero; y 4) no se ha encontrado un fenómeno similar al

imprinting en especies incapaces de llevar a cabo metilación.

Igualmente, se ha comprobado que los genes sometidos a imprinting también se replican de manera

asincrónica: por FISH se suelen ver dos señales de hibridación correspondientes a las dos cromátides

que se forman durante la fase S del ciclo celular, pero en genes improntados se ve un cromosoma con

dos señales y el otro cromosoma homólogo con una sola señal. Esto sugiere que el alelo específicamente

silenciado se replica más tarde.

Existen varios modelos para explicar cómo la metilación diferencial da lugar a las diferencias de

expresión entre alelos paterno y materno, y cómo se regulan genes vecinos que tienen patrones de

imprinting opuestos. Parece claro que en algunos casos es muy importante la proteína CTCF (CTC-

binding factor) una proteína que se une a la las regiones de metilación diferencial (DMR) únicamente

cuando éstas no están metiladas. Por ejemplo, se ha visto que la regulación de los genes Igf2 y H19 en

ratón (que tienen patrones de imprinting opuestos) se lleva a cabo por este mecanismo, ya que CTCF

actúa como aislador (insulator) del promotor de Igf2 de unos potenciadores lejanos.

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Figura 8.7 Tres modelos de regulación de los genes que están sometidos a

imprinting. En la figura superior vemos el caso más sencillo en que una

Región de Metilación Diferencial (DMR), representada como un rectángulo

naranja, regula la expresión de un único gen: si la DMR está metilada

(círculo azul), el gen está silenciado y no se expresa. En el medio se

representa otro modo de co-regulación de dos genes: uno de ellos se

expresa en un alelo pero está silenciado en el otro alelo (línea terminada

en punto). El otro gen del cluster tiene el patrón de expresión recíproco,

debido a la metilación de una DMR en uno de los genes, cuya expresión

interfiere con la expresión del otro ya que sus regiones codificantes se

solapan: cuando el gen de la izquierda se transcribe, esto interfiere con la

transcripción del gen de la derecha, que queda por tanto silenciado. El

tercer modo de co-regulación de genes con impronta recíproca se debe a la

unión de "aisladores" ó elementos "frontera" a una DMR. Por ejemplo, en

la figura inferior se representa uno de estos elementos (óvalo azul), que

únicamente puede unirse a una DMR cuando no está metilada (alelo 1), de

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 10

modo que el aislador bloquea la acción de un potenciador lejano

(rectángulo azul) sobre el gen de la izquierda; por tanto este gen está

silenciado, mientras que el gen de la derecha se expresa. En cambio, la

metilación de la DMR (alelo 2) silencia la expresión del gen de la derecha

pero además impide la unión del aislador; como consecuencia, el

potenciado puede ahora actuar sobre el promotr del gen de la izquierda y

hacer que éste se exprese.

La importancia de la proteína CTCF se ha puesto de manifiesto gracias a un hallazgo sorprendente, al

conseguir ratones partenogenéticos viables cuando se deleciona de su genoma el gen H19 y la

región de metilación diferencial a la que se une CTCF. Inicialmente, un ratón partenogenético lleva

dos copias del genoma materno, por lo que tendrá expresión bialélica del gen H19 y silenciamiento de

ambos alelos de Igf2, de ahí que sean inviables. La deleción de una de las copias del H19 reestablece la

expresión monoalélica de este gen, pero todavía hay silenciamiento total de Igf2e inviabilidad

embrionaria. En cambio, si además se deleciona la región de metilación diferencial a la que se une CTCF,

ahora los potenciadores pueden promover la expresión de Igf2 en este cromosoma, con lo que se

reestablece la expresión monoalélica de Igf2. El resultado final es la expresión monoalélica de H19 de

uno de los cromosomas y la expresión monoalélica de Igf2 del cromosoma homólogo, que es la situación

normal. Esto ilustra la importancia que tiene la impronta genómica en el desarrollo embrionario, y

sugiere que la ineficacia de los procesos de clonación de mamíferos probablemente se deba a que

los núcleos somáticos utilizados para la transferencia nuclear no tienen los patrones de imprinting

necesarios para la viabilidad embrionaria.

Figura 8.8 El video muestra la importancia del fenómeno del imprinting en

el desarrollo embrionario. Los genes Igf2 y H19 forman un cluster de

impronta recíproca en ratón, de forma que Igf2 se expresa sólo en el

cromosoma paterno y H19 se expresa sólo en el cromosoma materno. La

regulación de este cluster se lleva a cabo por un factor aislador llamado

CTCF, que se une a una región de metilación diferencial (el último modelo

explicado en la figura anterior). Como muestra el video, ratones obtenidos

por partenogénesis, que llevan dos copias del genoma materno, son

inviables porque Igf2 está silenciado en ambos cromosomas. En cambio, la

deleción de la región de metilación diferencial en uno de los cromosomas

hace que se recupere la expresión monoalélica de ambos genes y que los

embriones de estos ratones sean viables.

En cada ciclo reproductivo, los patrones de imprinting han de establecerse de nuevo, puesto que lo que

en una meiosis fue material de origen paterno (transmisión de un varón a su hija, por ejemplo) en la

siguiente meiosis pasará a ser marcado como materno (cuando esa hija tenga descendencia). Para

poder cambiar el imprinting es necesario borrar toda la información previa sobre cuál de los alelos debe

silenciarse. Como el genoma está muy desmetilado en los gametos, el cambio en los patrones de

imprinting debe de tener lugar durante la gametogénesis. Con los datos actuales, la hipótesis más

aceptada para explicar el borrado y re-establecimiento de los patrones de metilación durante la

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 11

gametogénesis es la existencia de proteínas capaces de unirse a las DMR no-metiladas (y así protegerlas

de la metilación), junto con otros factores que se unen a las DMR metiladas y ayudan a mantener el

estado silenciado. Se piensa que sólo una de las líneas germinales (masculina ó femenina) es

capaz de producir los factores que protegen de la metilación a las regiones no-metiladas. Así,

estas regiones se mantendrán des-metiladas en la línea germinal que produzca estos factores. Por el

contrario, estas regiones se metilarán y silenciarán en la línea germinal que no los produce. Por lo que

respecta a la identidad de dichos factores, los candidatos ideales son las proteínas que se unen

específicamente a regiones metiladas (MeCP2, HDAC, etc) ó a regiones no metiladas (CTCF, factores de

transcripción que se unen a CpGs no metilados, etc).

La impronta es, por tanto, un mecanismo fisiológico normal. Sin embargo, algunas alteraciones

genéticas que afectan a regiones sometidas a imprinting pueden dar lugar a enfermedades. Este es el

caso de la llamada disomía uniparental, situación en la que ambas copias de de un cromosoma o de

una región cromosómica proceden del mismo progenitor. Si esa región contiene genes “improntados”, el

resultado puede ser la presencia de dos copias “silenciadas” de un gen, con lo que el efecto viene a ser

similar a una deleción homocigótica de ese locus. Hoy en día conocemos una larga lista de enfermedades

y tumores humanos debidos a disomía uniparental de loci sometidos a impronta. Además, se han

detectado regiones improntadas en los cromosomas 11, 15, 7 y 14, y actualmente se conocen unos 30

genes improntados en ratón y humanos.

Los loci sometidos a impronta tienden a aparecer agrupados en determinadas regiones cromosómicas,

de manera que —dentro de cada uno de estos grupos o clusters— unos genes muestran expresión

materna y otros genes muestran expresión paterna. Esto se ilustra con el ejemplo de dos enfermedades

llamadas Síndrome de Prader-Willi y Síndrome de Angelman, originados por alteraciones en el

grupo de genes improntados que se encuentran en 15q11-q13. Todos los genes improntados en esta

región muestran expresión específica del alelo paterno excepto el gen UBE3A, que muestra

expresión materna en cerebro. Parece que la expresión de UBE3A depende de la expresión de un

transcrito antisentido que comienza 6,5 kb en dirección 3’ del codón de parada de UBE3A y que

alcanza hasta la mitad 3’ de UBE3A, de manera que en la mayoría de los tejidos somáticos este

transcrito no se expresa y por tanto la expresión de UBE3A en estos tejidos es bialélica. Por el contrario,

el transcrito antisentido se expresa en células de Purkinje, neuronas del hipocampo y células mitrales

olfatorias, silenciando el alelo paterno y originando el imprinting de UBE3A en estos tejidos.

Por estudios en pacientes con microdeleciones, sabemos que el centro de imprinting de esta región es

bipartito y cubre en total unas 100 kb. Dentro de esta región, el centro de imprinting para Angelman

cubre 1,15 kb, mientras que el centro de imprinting Prader-Willi es más distal y cubre unas 4,3 kb

(incluyendo el promotor y el exón 1 del gen SNRPN). Se postula que durante la gametogénesis estos

centros fijan los patrones de expresión de toda esta región, de forma que en la oogénesis se activa el

centro de imprinting AS —que, a su vez, bloquea la función del centro de imprinting PW. Como

resultado, los gametos femeninos sólo expresan el gen UBE3A. En cambio, en la espermatogénesis el

centro AS estaría bloqueado, de manera que el centro de imprinting PW es ahora activo y promueve la

expresión de todos los genes de expresión paterna, incluído el gen antisentido que bloquea la expresión

de UBE3A. De este modo se crean los epigenotipos paterno y materno que se mantendrán durante el

desarrollo embrionario y en células somáticas adultas.

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 12

Figura 8.9 se muestra un esquema de la organización de este cluster, con

los genes de expresión paterna en rojo y los genes de expresión materna

(UBE3A) en amarillo. El centro de imprinting, localizado en la región 5' del

gen SNRPN, se representa como dos óvalos verdes. En el cromosoma

paterno, el centro de imprinting de Prader-Willi favorece la expresión de

los genes en rojo, incluído el gen "Antisense", cuya expresión impide la

transcripción de UBE3A. En el cromosoma materno, el centro de imprinting

de Angelman inhibe la función del centro de imprinting de Prader-Willi,

silenciando los genes en rojo y permitiendo la expresión de UBE3A.

El Síndrome de Prader-Willi, cuya incidencia estimada es de 1/25.000, se caracteriza por disminución

de la actividad fetal, obesidad, hipotonía muscular, retraso mental, hipogonadismo hipogonadotrófico,

manos y pies pequeños, hipopigmentación, baja estatura y rasgos dismórficos. Se debe a la falta de

expresión de los genes específicos del cromosoma paterno dentro de esta región. Por el contrario, el

Síndrome de Angelman tiene una incidencia de 1/15.000 nacimientos y está caracterizado por un

fenotipo distinto al de Prader-Willi: retraso mental severo, temblor, ataxia, marcha anormal, tendencia a

la risa, transtornos del sueño y convulsiones. Está provocado por la falta de expresión del gen UBE3A,

que se expresa específicamente en el cromosoma materno. Las alteraciones de la impronta de todos

estos genes pueden tener lugar por varios mecanismos:

1) Deleciones grandes de la región: producirán Síndrome de Prader-Willi (SPW) si la deleción afecta al

cromosoma paterno, ó Síndrome de Angelman (AS) si la deleción afecta al cromosoma materno.

Constituyen la principal causa de estas enfermedades (70% de todos los casos).

2) Disomía uniparental (UPD), debida a no-disyunción durante una de las meiosis parentales. En

efecto, la no-disyunción puede originar gametos disómicos o nulisómicos, que originan cigotos

trisómicos o monosómicos. En estas circunstancias, la disomía uniparental puede ser resultado tanto

de la recuperación de un cigoto trisómico por pérdida de uno de los cromosomas, como de la

duplicación completa de un cromosoma para recuperar un cigoto monosómico. En este último caso

vemos una isodisomía (ambos cromosomas provienen de la duplicación de un mismo cromosoma

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 13

parental), mientras que un 70% de los casos de reducción de cigotos trisómicos dan lugar a

heterodisomía (presencia de los dos cromosomas del mismo progenitor). La presencia de dos

cromosomas 15 paternos da lugar a un 2% de los casos de Síndrome de Angelman, mientras que el

25% de los casos de Síndrome de Prader-Willi se deben a la presencia de dos cromosomas 15

maternos.

3) Mutaciones puntuales en los genes responsables. En el Síndrome de Angelman se detectan

mutaciones en el gen UBE3A (que codifica la E6 ubiquitin-ligasa) hasta en un 20% de los enfermos.

En el caso del Síndrome de Prader-Willi, en cambio, la búsqueda de un gen candidato no ha dado

resultados, aunque el principal gen implicado es SNRPN. En el caso concreto de este gen (SNRPN),

se ha visto que existe otra secuencia codificante en dirección 5’ (SNURF por "SNRPN Upstream

Reading Frame") de manera que, de hecho, ambos forman un único gen bicistrónico: un solo

transcrito del que se traducen dos proteínas. Con los datos actuales, hay que considerar el

Síndrome de Prader-Willi como un síndrome de microdeleción causado por la pérdida de varios

genes contiguos.

4) Mutaciones o microdeleciones que afectan a los centros de imprinting, de manera que no se

podrán re-establecer los patrones durante la gametogénesis en el caso de que haya

transmisión de un sexo al opuesto (madre-hijo ó padre-hija). El resultado funcional en el

cigoto es idéntico a lo que sucede en la disomía uniparental: ambos alelos llevan el mismo patrón de

imprinting. Este tipo de alteraciones son responsables de un 5% de los casos de Síndrome de

Prader-Willi o de Síndrome de Angelman. El ejemplo típico es el de la abuela paterna portadora de

una mutación en el centro de imprinting del cromosoma 15 que lleva marcado como materno. Al

transmitir este cromosoma a un hijo varón, el cromosoma mutado pasará a su hijo marcado como

materno, por lo que no es necesario reestablecer el imprinting y el hijo será normal (llevará un

cromosoma marcado como paterno y otro como materno). En la siguiente generación, en cambio,

este individuo varón deberá pasar su cromosoma 15 marcado como paterno, por lo que la marca

que lo identificaba como materno deberá ser borrada durante la espermatogénesis y sustituida por

la marca que lo identifique como paterno. En este individuo dicho cambio será imposible, debido a la

mutación en el centro de imprinting de su cromosoma 15 materno, por lo que su descendencia

llevará dos cromosomas con epigenotipo materno y desarrollará Síndrome de Prader-Willi. Lo mismo

puede suceder para el Síndrome de Angelman, cuando la mutación del centro de imprinting afecta al

cromosoma paterno.

El diagnóstico genético en estas dos enfermedades va dirigido a la detección de deleciones, de disomía

uniparental o de alteraciones en el centro de imprinting, y se realiza por los siguentes procedimientos:

Cariotipo convencional. Es insuficiente para detectar la microdeleción típica, pero es útil en el

probando y en los padres para detectar posibles translocaciones, ya que un pequeño porcentaje de

las deleciones son fruto de translocaciones no equilibradas (casi siempre de novo). También

detectará translocaciones equilibradas de novo o heredadas, aunque estos casos son excepcionales.

FISH: detecta todas las deleciones, usando sondas frente al gen SNRPN en combinación con una

sonda centromérica del cromosoma 15. La mayoría de las deleciones son intersticiales, siendo la más

frecuente una pequeña deleción de unas 4 Mb de tamaño.

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 14

Figura 8.10 Imagen de FISH para la detección de la microdeleción que

causa el Síndrome de Prader-Willi.

Detección de Disomía Uniparental: se usan microsatélites del cromosoma 15 para determinar el

origen parental de cada cromosoma. Lógicamente, es necesario descartar primero la presencia de

deleción, y además este procedimiento viene limitado por la necesidad de obtener muestras del

probando y de ambos progenitores, así como por la posible falsa paternidad.

Figura 8.11 Análisis de microsatélites del cromosoma 15 para detectar

disomía uniparental en el diagnóstico del Síndrome de Prader-Willi.

Análisis de metilación: puede hacerse bien por Southern blot tras digestión del ADN genómico con

enzimas de restricción sensibles a metilación, o por PCR específica de metilación (MS-PCR). Si el

exón 1 de SNRPN y el centro de imprinting adyacente están metilados en los dinucleótidos CpG, esto

indica un patrón materno; si no están metilados, podemos excluir el silenciamiento de SNRPN y los

demás genes de expresión paterna. Es un análisis que no requiere muestras de los progenitores, y

permite confirmar la existencia de Síndrome de Prader-Willi cuando se observa sólo el patrón de

metilación materno. Tiene la ventaja de que si el análisis es normal (es decir, si se observan dos

Heterodisomía materna (PWS) Isodisomía materna (PWS)

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 15

patrones distintos de metilación, correspondientes a los cromosomas paterno y materno), esto

automáticamente excluye la presencia de deleción o de disomía uniparental. Cuando esta prueba es

anormal (patrón únicamente materno) y no se detecta deleción ni disomía uniparental, esto sugiere

la existencia de alteraciones en el centro de imprinting.

En el caso concreto del Síndrome de Angelman también es necesario buscar mutaciones en

UBE3A: aunque esto sólo supone un 20% de los pacientes, su detección es de gran importancia por

el aumento dramático en el riesgo de recurrencia de la enfermedad en la misma familia. Se estima

que hasta un tercio de los pacientes que tienen estudios de metilación normales tienen mutaciones

en UBE3A, por lo que la estrategia diagnóstica recomendada es comenzar con estudios de metilación

y después buscar mutaciones de UBE3A en aquellos sujetos con resultados de metilación normales.

Teniendo en cuenta lo anterior, se ha diseñado un árbol de decisión para optimizar la estrategia

diagnóstica en el caso de los síndrome de Prader-Willi y Angelman, de manera que se diagnostique el

mayor número de casos con el menor número de pruebas. En general, cuando los estudios de

metilación son anormales (patrón únicamente materno en el caso del Prader-Willi o patrón

únicamente paterno en el caso del Angelman), podemos continuar investigando la causa de la

enfermedad haciendo FISH para detectar la deleción característica, ya que ésta es la causa

más habitual de estas enfermedades. Si el FISH es normal, se pueden realizar estudios de

microsatélites para confirmar la presencia de disomía uniparental.

Figura 8.12 La estrategia diagnóstica más aceptada para el estudio del

Síndrome de Prader-Willi y del Sindrome de Angelman comienza con los

estudios de metilación de la región correspondiente al centro de

imprinting. Si se detecta un patrón de metilación paterno y otro materno,

esto automáticamente descarta la deleción y la disomía uniparental. En el

caso del Prader-Willi, esto supone que no hay que realizar más estudios,

mientras que en el caso del Angelman habría que buscar mutaciones en el

gen UBE3A, que causan la enfermedad en un 20% de los casos.

CAPÍTULO 8: EFECTOS FENOTÍPICOS DE LAS MUTACIONES 16

En el Síndrome de Prader-Willi el riesgo de recurrencia (un segundo individuo enfermo en la misma

familia) es prácticamente cero en los casos de deleción y de disomía uniparental que no están asociados

a reordenaciones cromosómicas. De todas formas, a efectos de consejo genético se considera un riesgo

de recurrencia del 1%, ya que en una muestra amplia de pacientes se detectó un riesgo de

recurrencia en hermanos de probandos del 1,6% (aunque esto incluía todas las posibles causas). El

mayor riesgo de recurrencia se produce en los casos familiares que están debidos a alteraciones en el

centro de imprinting. En estos casos, el riesgo de recurrencia es del 50% ya que volverá a suceder

siempre que el padre transmita el cromosoma 15 que lleva la mutación. En el Síndrome de Angelman, el

riesgo de recurrencia también se considera habitualmente del 1%, excepto en los casos de mutaciones

del centro de imprinting y de mutaciones en UBE3A, en las que el riesgo de heredar el cromosoma

materno mutado es del 50% (si el cromosoma mutado se hereda del padre no hay enfermedad porque

en ese cromosoma el gen UBE3A no se expresaría en cualquier caso).