protocolo de parasitos en tilapia (terminado) (2)
Post on 11-Jan-2016
8 Views
Preview:
DESCRIPTION
TRANSCRIPT
1. Introducción
La acuacultura a nivel mundial es una de las actividades comerciales más extendidas
debido a su alta producción de peces; México no es la excepción y a nivel nacional
Veracruz es el primer productor de tilapia. Muchas enfermedades que afectan a los peces
cultivados son causadas por diferentes patógenos como hongos virus y bacterias pero uno
de los causantes de grandes pérdidas son los helmintos parásitos en particular los gusanos
monogeneos los cuales se pueden alojar en la piel y branquias de los peces, La tilapia es un
pez de origen africano que es altamente productivo en cultivo debido a varios atributos
fisiológicos de la especie como: tolerancia a variaciones de condiciones ambientales;
adaptación a amplios rangos de salinidad , oxigenación y sobrepoblación; tiene ciclos
reproductivos relativamente cortos; cría prolíficamente bajo condiciones de cultivo y
muestra alta resistencia a enfermedades e infecciones. (1)
1.1. Tilapia gris (Oreochromis aureus)
Oreochromis aureus es una especie de peces de la familia Cichlidae en el orden de los
Perciformes.
(2)
Figura: 1 ejemplar de tilapia gris (Oreochromis aureus)
Fuente: https://www.google.com.mx/search?
q=oreochromis+aureus&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=5sjmUt3EAqbq2gXz34GwAg
&ved=0CAcQ_AUoAQ&biw=1371&bih=738
1
1.2. Taxonomía y distribución
Reino: Animalia
Filo: Chordata
Clase: Actinopterygii
Orden: Perciformes
Familia: Cichlidae
Género: Oreochromis
Especie: O. aureus
Se encuentra en el valle del río Jordán, en el río Nilo, en el Chad, río Níger y el río Senegal.
Ha sido introducido en el oasis de Azraq (Jordania), los Estados Unidos, Sudamérica,
América Central y sureste de Asia. (3)
1.3. Organismos monogeneos
Los monogéneos (Monogenea) son una clase del filo Platelmintos compuesta por especies
parásitas, principalmente de peces y anfibios. Los monogeneos (gusanos planos) son
hermafroditas la parte anterior de su cuerpo contiene estructuras sensoriales apicales, una
boca, con o sin estructuras para succionar y unas tenazas o ganchos para sostenerse. Los
monogeneos son ectoparásitos que se adhieren a su hospedero (peces, anfibios y reptiles)
mediante un órgano especial localizado en el extremo posterior del cuerpo, llamado haptor
u opisthaptor, se pueden alojar en las branquias, piel y cavidad bucal. A pesar de que los
monogeneos tienen una amplia distribución alrededor del mundo son altamente específicos
y restringidos a una sola especie género o familia que sirve como hospedero. (4)
2
Figura 2: Ejemplar de un parasito monogeneo
Fuente: https://www.google.com.mx/search?
q=monogeneo&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=8-
XmUoP_EaOO2wXSo4CQDw&ved=0CAcQ_AUoAQ&biw=1371&bih=738
1.4. Ciclo biológico
El ciclo biológico es simple, directo y monoxeno (con un solo hospedador); se distinguen
tres fases esenciales, huevo, oncomiracidio y adulto. El adulto vierte los huevos al medio
acuático donde eclosionan en forma de oncomiracidio, que nada activamente en busca del
hospedador definitivo, al que penetran (en el caso de los peces) de forma pasiva a través de
la cámara branquial o fijándose primero en la piel y migrando luego a las branquias. En el
caso de especies que parasitan anfibios, las larvas oncomiracidio penetran por la cloaca y se
alojan en la vejiga urinaria. (5)
1.5. Taxonomía
Reino: Animalia
Filo: platyhelminthes
Clase: Monogenea
(6)
3
1.6. Características generales
Tienen el cuerpo alargado y plano y la mayoría son muy pequeños (30 μm a 2 cm). Tienen
un órgano característico de fijación en la región posterior, muy especializado, provisto de
espinas o ganchos esclerotizados y, en muchas especies, también de ventosas, conocido
como opisthaptor. En la región anterior poseen también órganos de fijación (prohaptor),
básicamente formaciones granulares, ventosas y glándulas cefálicas que segregan una
secreción pegajosa. La mayoría de especies, en estado larvario, tienen dos o cuatro ojos de
tipo rabdomérico, similares a los de los turbelarios y larvas de digéneos (trematodos) que
pueden perderse en el adulto. (7)
1.7. Biología de los monogeneos
Todos los monogéneos son hermafroditas, pero es muy frecuente la fecundación cruzada.
Se da el caso, único en el reino animal, de Diplozoon paradoxum en que los individuos
llegan a fusionarse por completo por sus conductos genitales. En algunas especies sin
vagina, la fecundación se produce por una especie de impregnación hipodérmica o el
esperma penetra por las heridas causadas por las espinas del pene. Los huevos tienen con
frecuencia un filamento pegajoso para fijarse al substrato o al hospedador. La mayoría son
ovíparos, pero algunas especies son ovovivíparas y en el momento de la puesta el huevo ya
contiene la larva infestante u oncomiracidio (denominada antiguamente giractiloide), típica
de monogéneos y que recuerda de modo superficial a un protozoo ciliado. Dicha larva hace
vida acuática libre hasta que se fija al hospedador. (8)
1.8. Inmunidad
Un factor determinante para el establecimiento de los parásitos es la inmunidad del pez,
contra ellos. Las células mucosas son la primera barrera contra muchos gyrodactylidos, se
ha demostrado que estas células contienen sustancias como complemento, proteasas,
lisozimas, y péptidos, entre otras que influyen sobre el parasito, además de anticuerpos
específicos contra los monogeneos, la tilapia (Oreochromis aureus) es susceptible a
4
infección por parte del monogeneo gyrodactylus derjavini y que la cantidad de células
mucosas aumentan al estar los peces infectados. La inmunidad contra los parásitos está
basada en una activación inicial de las células epiteliales y leucocitos de la epidermis del
hospedero, lo cual provoca que el parasito muera o escape a una zona del hospedero con
menos actividad inmune como la córnea del ojo en donde no hay células mucosas. (9)
1.9. Síntomas de monogeneos en el huésped
El curso de las enfermedades ocasionadas por monogeneos es variable dependiendo de la
intensidad de la infección. Las cargas parasitarias reducidas no producen signos clínicos
aparentes en los peces afectados, sin embargo el efecto de los parásitos se traduce en una
disminución de la tasa de fertilidad así como retardo en el crecimiento; por el contrario las
cargas parasitarias elevadas se caracterizan por una marcada pérdida de peso y mortalidades
elevadas, como también desgarramiento de las branquias observándolas estas pálidas así
como observar a los peces débiles. En casos severos se engrosan los bordes branquiales y
los opérculos se ven entreabiertos presentándose zonas necrosadas desgarre de tejidos y
destrucción mecánica del epitelio. (10)
1.10. Tratamiento y control de monogeneos
Para el control adecuado de los monogeneos es importante que el diagnostico se realice
oportunamente, debido al ciclo de vida tan rápido que tienen los parásitos. Para prevenir el
transporte de monogeneos de un estanque a otro se deben aislar los estanques infectados, no
usar el agua de estos para reabastecer otros ni adicionarle otros peces, así mismo se debe
evitar utilizar la misma red, transportados y otros enseres de pesca utilizados en estanques
infectados, si no han sido previamente desinfectados con formalina hipoclorito de calcio o
algún otro desinfectante. Al realizar cualquier tratamiento se deben tener presentes las
características fisicoquímicas del agua como temperatura, cantidad de oxígeno disuelto,
dureza, amoniaco y pH, puesto que la actividad de los fármacos está condicionada por la
calidad de esta. Cuando la estanqueria es vaciada es conveniente exponerla a los rayos
solares o bien desinfectarla con cal viva espolvoreada, para el control de los parásitos se
5
emplean varios productos mediante baños de inmersión cortos o permanentes, debiendo en
ambos casos tener cuidado repetir el tratamiento dos o tres veces con un intervalo entre uno
y otro de tres a cuatro días para eliminar la totalidad de parásitos que eclosionan
gradualmente. Los peces deben ser tratados en recipientes especiales que no reaccionen con
los fármacos, evitando así que se desencadenen compuestos tóxicos, las tinas de plástico,
recipientes de cristal o fibra de vidrio son las más recomendables. Los baños cortos de 30
minutos en solución de formalina al 33% y concentraciones de 20-25 ml en 100 l de agua
ofrecen buenos resultados en el control de estos parásitos sin embargo se debe tener
precaución al utilizar este producto el cual debe estar exento de paraformaldehido ya que
este es sumamente toxico para los peces . (11)
6
2. Antecedentes
El cultivo de peces es una actividad que se ha incrementado significativamente a nivel
mundial durante las últimas décadas. La producción mundial de peces se ha incrementado
de una manera sorprendente y gran parte de este incremento se debe a la acuacultura. La
cual ha tenido una tasa de crecimiento muy grande en comparación con la pesca y algunos
sectores de producción de alimentos de origen animal como los sistemas de producción de
carne. Se ha observado que la producción mundial de peces derivada de la acuacultura ha
crecido notablemente durante los últimos 50 años pasando de menos de un millón de
toneladas en la década de 1950 a 106 millones de toneladas en el año 2011. En México,
puede decirse que el cultivo de peces se inicia en la época prehispánica, cuando los indíge-
nas de la zona de Sinaloa y Nayarit hacían encierros en las lagunas costeras. Actualmente,
un gran porcentaje de las granjas acuícolas se localizan en las costas de esos mismos esta-
dos y de Sonora, y se van consolidando en otras entidades del país, tanto en la costa del Pa-
cífico como del Golfo de México. La mayoría aproximadamente 80% es propiedad del sec-
tor social y relativamente pequeña, su operación no se realiza en todos los ciclos de siem-
bra, los procesos de producción tienden a ser rústicos en sistemas extensivos o semi-intensi-
vos y con valores que oscilan, por ciclo, en una tonelada por hectárea. De este sector pro-
viene casi la mitad del pescado producido por cultivo. (12)
7
3. Planteamiento del problema
No obstante en la importancia económica de la acuacultura existen serias limitantes para
tener éxito total en esta actividad como por ejemplo ciertas enfermedades que son causadas
por virus bacterias y hongos, destacando entre ellas la parasitosis, que en afecciones severas
además de demeritar la calidad del producto son capaces de anular la rentabilidad del
cultivo, se ha estimado que por lo menos entre el 10-20% de las perdidas en acuacultura se
deben a ciertos tipos de enfermedades entre ellas el parasitismo de monogeneos en peces.
Dentro de los helmintos los monogeneos ocasionan considerables daños con altas
mortalidades en los diferentes sistemas de producción empleados en acuacultura. La tilapia
es el recurso pesquero más importante en las aguas dulces del país su producción anual
contribuye al 50% de la producción total que se obtiene por acuacultura, diferentes estudios
han demostrado que la temperatura del agua es el factor abiótico más importante para que
estos parásitos se desarrollen dentro del hospedero, estos gusanos se alojan principalmente
en las branquias del pez como también lo pueden hacer en la piel. Generalmente la relación
entre altas cargas parasitarias y la condición corporal de los peces es negativa, lo cual
indica que la salud de estos se ve afectada. Varios estudios han demostrado que los
monogeneos producen gran mortalidad en peces de importancia económica al provocar
daños severos en los cultivos, uno de los efectos que estos gusanos causan en los
hospederos es que las branquias se ponen pálidas, esto es indicador de anemia con el
consiguiente decremento en la condición corporal y aumento en la mortalidad del pez. De
no detectarse esto a tiempo se puede causar un serio problema y una gran mortalidad en el
cultivo de tilapia y por consiguiente una gran pérdida económica para el productor, debido
a todo esto nos planteamos la siguiente pregunta de investigación:
¿Existirá presencia de parásitos monogeneos que puedan dañar el cultivo de tilapia gris en
una granja acuícola de la cruz de elota en el estado de Sinaloa?
8
4. Justificación
El presente trabajo se realiza con la finalidad de saber si existe presencia de parásitos
monogeneos en el cultivo de tilapia gris en una granja acuícola de la cruz de elota en el
estado de Sinaloa que puedan afectar la rentabilidad del cultivo y en dado caso de presencia
de estos parásitos poder aplicar las medidas preventivas correspondientes para evitar la
mortalidad de la tilapia y así lograr obtener una producción rentable y exitosa y al mismo
tiempo evitar una gran pérdida económica para el productor, como se acaba de mencionar
anteriormente los principales beneficiados con este proyecto de investigación serán los
acuicultores de la región que se dedican a la producción de tilapia gris para que puedan
obtener un producto bueno y así venderlo en el mercado conforme a las normas de sanidad
y calidad, como segundos beneficiarios seria la sociedad que es la que consume este
producto como una fuente de alimentación.
9
5. Hipótesis
Se cree que las especies de tilapias cultivadas son las más susceptibles a ser los hospederos
de estos parásitos monogeneos
10
6. Objetivos
6.1. Objetivo general:
Confirmar la presencia de parásitos monogeneos en tilapia gris cultivada en una granja
acuícola de la cruz de elota Sinaloa.
6.2. Objetivos específicos:
1. Evaluar el grado de infección por parásitos monogeneos.
2. Estimar las pérdidas económicas que se podrían originar si se detecta presencia de
parasitosis en los peces cultivados.
11
7. Materiales y métodos
7.1. Tipo de estudio:
Se realizara un estudio experimental, descriptivo y observacional.
7.2 Universo de estudio:
El siguiente estudio se llevara a cabo en la localidad de la cruz de elota en el estado de
Sinaloa en la parte centro-sur del estado, cerca de la costa del Océano Pacífico, esta es
mejor conocida como la Bahía de Ceuta que se encuentra a tan solo 8 km . En la siguiente
ubicación 23°55′17″N 106°53′31″O cuenta con una población de 15,657 habitantes y su
altitud es de 20 msnm. El tiempo de estudio se realizara en los meses de enero a mayo del
año en curso, donde se llevaran a cabo una serie de muestreos en uno de los estanques de
tilapia gris de la región antes mencionada, donde se extraerán de los estanques una
determinada cantidad de individuos para así poder examinarlos previamente.
7.3 Criterios de inclusión y exclusión
Inclusión: Se tomaran en cuenta los individuos que se encuentren de buen tamaño para ser
examinados en el muestreo, otro de los criterios será revisar las branquias si estas se
encuentran pálidas el individuo será seleccionado para examinarlo posteriormente ya que
este síntoma es el principal indicador de parasitosis por monogeneos.
Exclusión: Serán excluidos del muestro los individuos que no presenten un tamaño
adecuado para ser examinados, además de revisar las branquias, si estas se encuentran de
un color natural se omitirá la examinación ya que esto quiere decir que hay alta
probabilidad que no presente ningún tipo de parasitosis.
12
7.4 Metodología
7.4.1 Metodología de campo:
a) Se acudirá a las instalaciones de la granja acuícola para realizar el muestreo en los
estanques de tilapia, las muestras se tomaran con una tarraya para después seleccionar a los
individuos que son aptos para examinar.
b) Se colectaran principalmente alrededor de 20 individuos que presenten las características
aptas para ser previamente examinados.
c) Los 20 individuos seleccionados de tilapia se colocaran en 4 bolsas grandes con 5
individuos en cada una de ellas, a estas se les aplicara por dentro agua del medio porque los
peces deben llegar con vida al laboratorio ya que los peces muertos en algunos casos no
funcionan para esta prueba, pues hay especies de monogeneos que suelen abandonar
rápidamente los cadáveres por eso es recomendable hacerlo con peces vivos. Después serán
introducidos en cubetas para asegurar que viajen en buenas condiciones y estos lleguen en
buena forma al laboratorio para ser examinados posteriormente.
7.4.2 Metodología de laboratorio:
a) Llegando al laboratorio se sacrificara a cada uno de los individuos (por punción en el
cerebro por ejemplo). Inmediatamente colocarlo en una caja de Petri con (poca) agua del
medio y Con una tijera de punta recta abrir la cavidad abdominal del hospedero, desde el
ano hasta la intersección branquial. Retirar el tracto digestivo completo, desde la región
oral – branquial, hasta el recto.
b) El diagnostico de laboratorio se efectuara mediante raspado de piel o cortando varios
filamentos branquiales según el caso, las muestras se colocan en un porta-objetos después
de esto se debe humedecer con agua del medio y colocar un cubre-objetos encima para así
presionarlo (técnica de squash) y pueda observarse mejor en el microscopio, también se
deben extraer las branquias (completas) ya que ahí se alojan comúnmente estos parásitos,
(puede que lleguen a ser visibles a simple vista ya que algunos llegan a medir hasta 2 cm).
13
c) se colocaran las láminas en el microscopio para ser observadas detenidamente y así saber
si hay presencia de parasitos en el tejido del pez, después revisar las branquias para ver si
ahí existe presencia parasitaria. (Anotar todos los datos en una libreta).
d) dependiendo de la cantidad de parasitos que se encuentren se determinara si hay una
presencia alta o baja de parasitismo en estos peces y así tomas las medidas necesarias para
garantizar la producción en esta granja acuícola.
7.4.3 Técnicas utilizadas en el estudio
Técnica “Squash”:
Se coloca el material entre 2 porta-objetos y se presiona con el dedo pulgar los dos
portaobjetos con fuerza para obtener la preparación por aplastamientos. Después se
puede observar directamente o previa fijación y coloración. Tipos de preparación de
las muestras biológicas: El material a estudiar debe de tener transparencia, grosor y
tamaño.
14
Actividades MESES ( SEMANAS)
ENERO
Semana
1 2 3 4
FEBRERO
semana
1 2 3 4
MARZO
Semana
1 2 3 4
ABRIL
Semana
1 2 3 4
MAYO
Semana
1 2 3 4
Inicio del proyecto
Planificación
Búsqueda de información
Muestreos en la granja acuícola
Análisis de las muestras en el laboratorio
Toma de datos
Pasar datos al proyecto
15
9 - Referencias bibliográficas
1- Coward, K. & N.R. Bromage. 2000. Reproductive physiology of female tilapia broodstock. Reviews in Fish Biology and Fisheries 10:1-25.
4- Paperna, I. 1996. Parasites, infections and diseases of fishes in Africa – An update CIFA Technical Paper. No. 31. Rome, FAO. 220p.
5- Smyth, J.D. & Halton, D.W. 1983. The phyisiology of treamatodes. 2da edition. Cambridge University Press. Cambridge, 446 p.
7- Altaba, C. R. et al., 1991. Invertebrats no artròpodes. Història Natural dels Països Catalans, 8. Enciclopèdia Catalana, S. A., Barcelona, 598 pp. ISBN 84-7739-177-7
8- Hickman, C. P., Ober, W. C. & Garrison, C. W., 2006. Principios integrales de zoología, 13ª edición. McGraw-Hill-Interamericana, Madrid (etc.), XVIII+1022 pp. ISBN 84-481-4528-3
9- Buchmann, K. 1999. Immune mechanisms in fish skin against monogeneans – a model. Folia Parasitologica. 46: 1-9.
10- Jones SR. The occurrence and mechanisms of innate immunity against parasites in fish. Dev comp immunol 2001; (8-9):841-852
11- Flores-Crespo J. Diagnosis y control de enfermedades parasitarias más frecuentes que afectan a los peces. En: Quiroz-Romero, H. editor. Diagnóstico y control de parásitos y el hombre. UNAM. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, México D.F. 1991:935-973.
12 - FAO. 2007. El estado mundial de la pesca y acuacultura – 2006. FAO. Roma.
16
10. Referencias electrónicas
2- http://es.wikipedia.org/wiki/Oreochromis_aureus
3- http://es.wikipedia.org/wiki/Oreochromis_aureus
6-http://es.wikipedia.org/wiki/Monogenea
17
top related