1. Introducción

La acuacultura a nivel mundial es una de las actividades comerciales más extendidas

debido a su alta producción de peces; México no es la excepción y a nivel nacional

Veracruz es el primer productor de tilapia. Muchas enfermedades que afectan a los peces

cultivados son causadas por diferentes patógenos como hongos virus y bacterias pero uno

de los causantes de grandes pérdidas son los helmintos parásitos en particular los gusanos

monogeneos los cuales se pueden alojar en la piel y branquias de los peces, La tilapia es un

pez de origen africano que es altamente productivo en cultivo debido a varios atributos

fisiológicos de la especie como: tolerancia a variaciones de condiciones ambientales;

adaptación a amplios rangos de salinidad , oxigenación y sobrepoblación; tiene ciclos

reproductivos relativamente cortos; cría prolíficamente bajo condiciones de cultivo y

muestra alta resistencia a enfermedades e infecciones. (1)

1.1. Tilapia gris (Oreochromis aureus)

Oreochromis aureus es una especie de peces de la familia Cichlidae en el orden de los

Perciformes.

(2)

Figura: 1 ejemplar de tilapia gris (Oreochromis aureus)

Fuente: https://www.google.com.mx/search?

q=oreochromis+aureus&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=5sjmUt3EAqbq2gXz34GwAg

&ved=0CAcQ_AUoAQ&biw=1371&bih=738

1

1.2. Taxonomía y distribución

Reino: Animalia

Filo: Chordata

Clase: Actinopterygii

Orden: Perciformes

Familia: Cichlidae

Género: Oreochromis

Especie: O. aureus

Se encuentra en el valle del río Jordán, en el río Nilo, en el Chad, río Níger y el río Senegal.

Ha sido introducido en el oasis de Azraq (Jordania), los Estados Unidos, Sudamérica,

América Central y sureste de Asia. (3)

1.3. Organismos monogeneos

Los monogéneos (Monogenea) son una clase del filo Platelmintos compuesta por especies

parásitas, principalmente de peces y anfibios. Los monogeneos (gusanos planos) son

hermafroditas la parte anterior de su cuerpo contiene estructuras sensoriales apicales, una

boca, con o sin estructuras para succionar y unas tenazas o ganchos para sostenerse. Los

monogeneos son ectoparásitos que se adhieren a su hospedero (peces, anfibios y reptiles)

mediante un órgano especial localizado en el extremo posterior del cuerpo, llamado haptor

u opisthaptor, se pueden alojar en las branquias, piel y cavidad bucal. A pesar de que los

monogeneos tienen una amplia distribución alrededor del mundo son altamente específicos

y restringidos a una sola especie género o familia que sirve como hospedero. (4)

2

Figura 2: Ejemplar de un parasito monogeneo

Fuente: https://www.google.com.mx/search?

q=monogeneo&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=8-

XmUoP_EaOO2wXSo4CQDw&ved=0CAcQ_AUoAQ&biw=1371&bih=738

1.4. Ciclo biológico

El ciclo biológico es simple, directo y monoxeno (con un solo hospedador); se distinguen

tres fases esenciales, huevo, oncomiracidio y adulto. El adulto vierte los huevos al medio

acuático donde eclosionan en forma de oncomiracidio, que nada activamente en busca del

hospedador definitivo, al que penetran (en el caso de los peces) de forma pasiva a través de

la cámara branquial o fijándose primero en la piel y migrando luego a las branquias. En el

caso de especies que parasitan anfibios, las larvas oncomiracidio penetran por la cloaca y se

alojan en la vejiga urinaria. (5)

1.5. Taxonomía

Reino: Animalia

Filo: platyhelminthes

Clase: Monogenea

(6)

3

1.6. Características generales

Tienen el cuerpo alargado y plano y la mayoría son muy pequeños (30 μm a 2 cm). Tienen

un órgano característico de fijación en la región posterior, muy especializado, provisto de

espinas o ganchos esclerotizados y, en muchas especies, también de ventosas, conocido

como opisthaptor. En la región anterior poseen también órganos de fijación (prohaptor),

básicamente formaciones granulares, ventosas y glándulas cefálicas que segregan una

secreción pegajosa. La mayoría de especies, en estado larvario, tienen dos o cuatro ojos de

tipo rabdomérico, similares a los de los turbelarios y larvas de digéneos (trematodos) que

pueden perderse en el adulto. (7)

1.7. Biología de los monogeneos

Todos los monogéneos son hermafroditas, pero es muy frecuente la fecundación cruzada.

Se da el caso, único en el reino animal, de Diplozoon paradoxum en que los individuos

llegan a fusionarse por completo por sus conductos genitales. En algunas especies sin

vagina, la fecundación se produce por una especie de impregnación hipodérmica o el

esperma penetra por las heridas causadas por las espinas del pene. Los huevos tienen con

frecuencia un filamento pegajoso para fijarse al substrato o al hospedador. La mayoría son

ovíparos, pero algunas especies son ovovivíparas y en el momento de la puesta el huevo ya

contiene la larva infestante u oncomiracidio (denominada antiguamente giractiloide), típica

de monogéneos y que recuerda de modo superficial a un protozoo ciliado. Dicha larva hace

vida acuática libre hasta que se fija al hospedador. (8)

1.8. Inmunidad

Un factor determinante para el establecimiento de los parásitos es la inmunidad del pez,

contra ellos. Las células mucosas son la primera barrera contra muchos gyrodactylidos, se

ha demostrado que estas células contienen sustancias como complemento, proteasas,

lisozimas, y péptidos, entre otras que influyen sobre el parasito, además de anticuerpos

específicos contra los monogeneos, la tilapia (Oreochromis aureus) es susceptible a

4

infección por parte del monogeneo gyrodactylus derjavini y que la cantidad de células

mucosas aumentan al estar los peces infectados. La inmunidad contra los parásitos está

basada en una activación inicial de las células epiteliales y leucocitos de la epidermis del

hospedero, lo cual provoca que el parasito muera o escape a una zona del hospedero con

menos actividad inmune como la córnea del ojo en donde no hay células mucosas. (9)

1.9. Síntomas de monogeneos en el huésped

El curso de las enfermedades ocasionadas por monogeneos es variable dependiendo de la

intensidad de la infección. Las cargas parasitarias reducidas no producen signos clínicos

aparentes en los peces afectados, sin embargo el efecto de los parásitos se traduce en una

disminución de la tasa de fertilidad así como retardo en el crecimiento; por el contrario las

cargas parasitarias elevadas se caracterizan por una marcada pérdida de peso y mortalidades

elevadas, como también desgarramiento de las branquias observándolas estas pálidas así

como observar a los peces débiles. En casos severos se engrosan los bordes branquiales y

los opérculos se ven entreabiertos presentándose zonas necrosadas desgarre de tejidos y

destrucción mecánica del epitelio. (10)

1.10. Tratamiento y control de monogeneos

Para el control adecuado de los monogeneos es importante que el diagnostico se realice

oportunamente, debido al ciclo de vida tan rápido que tienen los parásitos. Para prevenir el

transporte de monogeneos de un estanque a otro se deben aislar los estanques infectados, no

usar el agua de estos para reabastecer otros ni adicionarle otros peces, así mismo se debe

evitar utilizar la misma red, transportados y otros enseres de pesca utilizados en estanques

infectados, si no han sido previamente desinfectados con formalina hipoclorito de calcio o

algún otro desinfectante. Al realizar cualquier tratamiento se deben tener presentes las

características fisicoquímicas del agua como temperatura, cantidad de oxígeno disuelto,

dureza, amoniaco y pH, puesto que la actividad de los fármacos está condicionada por la

calidad de esta. Cuando la estanqueria es vaciada es conveniente exponerla a los rayos

solares o bien desinfectarla con cal viva espolvoreada, para el control de los parásitos se

5

emplean varios productos mediante baños de inmersión cortos o permanentes, debiendo en

ambos casos tener cuidado repetir el tratamiento dos o tres veces con un intervalo entre uno

y otro de tres a cuatro días para eliminar la totalidad de parásitos que eclosionan

gradualmente. Los peces deben ser tratados en recipientes especiales que no reaccionen con

los fármacos, evitando así que se desencadenen compuestos tóxicos, las tinas de plástico,

recipientes de cristal o fibra de vidrio son las más recomendables. Los baños cortos de 30

minutos en solución de formalina al 33% y concentraciones de 20-25 ml en 100 l de agua

ofrecen buenos resultados en el control de estos parásitos sin embargo se debe tener

precaución al utilizar este producto el cual debe estar exento de paraformaldehido ya que

este es sumamente toxico para los peces . (11)

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2. Antecedentes

El cultivo de peces es una actividad que se ha incrementado significativamente a nivel

mundial durante las últimas décadas. La producción mundial de peces se ha incrementado

de una manera sorprendente y gran parte de este incremento se debe a la acuacultura. La

cual ha tenido una tasa de crecimiento muy grande en comparación con la pesca y algunos

sectores de producción de alimentos de origen animal como los sistemas de producción de

carne. Se ha observado que la producción mundial de peces derivada de la acuacultura ha

crecido notablemente durante los últimos 50 años pasando de menos de un millón de

toneladas en la década de 1950 a 106 millones de toneladas en el año 2011. En México,

puede decirse que el cultivo de peces se inicia en la época prehispánica, cuando los indíge-

nas de la zona de Sinaloa y Nayarit hacían encierros en las lagunas costeras. Actualmente,

un gran porcentaje de las granjas acuícolas se localizan en las costas de esos mismos esta-

dos y de Sonora, y se van consolidando en otras entidades del país, tanto en la costa del Pa-

cífico como del Golfo de México. La mayoría aproximadamente 80% es propiedad del sec-

tor social y relativamente pequeña, su operación no se realiza en todos los ciclos de siem-

bra, los procesos de producción tienden a ser rústicos en sistemas extensivos o semi-intensi-

vos y con valores que oscilan, por ciclo, en una tonelada por hectárea. De este sector pro-

viene casi la mitad del pescado producido por cultivo. (12)

7

3. Planteamiento del problema

No obstante en la importancia económica de la acuacultura existen serias limitantes para

tener éxito total en esta actividad como por ejemplo ciertas enfermedades que son causadas

por virus bacterias y hongos, destacando entre ellas la parasitosis, que en afecciones severas

además de demeritar la calidad del producto son capaces de anular la rentabilidad del

cultivo, se ha estimado que por lo menos entre el 10-20% de las perdidas en acuacultura se

deben a ciertos tipos de enfermedades entre ellas el parasitismo de monogeneos en peces.

Dentro de los helmintos los monogeneos ocasionan considerables daños con altas

mortalidades en los diferentes sistemas de producción empleados en acuacultura. La tilapia

es el recurso pesquero más importante en las aguas dulces del país su producción anual

contribuye al 50% de la producción total que se obtiene por acuacultura, diferentes estudios

han demostrado que la temperatura del agua es el factor abiótico más importante para que

estos parásitos se desarrollen dentro del hospedero, estos gusanos se alojan principalmente

en las branquias del pez como también lo pueden hacer en la piel. Generalmente la relación

entre altas cargas parasitarias y la condición corporal de los peces es negativa, lo cual

indica que la salud de estos se ve afectada. Varios estudios han demostrado que los

monogeneos producen gran mortalidad en peces de importancia económica al provocar

daños severos en los cultivos, uno de los efectos que estos gusanos causan en los

hospederos es que las branquias se ponen pálidas, esto es indicador de anemia con el

consiguiente decremento en la condición corporal y aumento en la mortalidad del pez. De

no detectarse esto a tiempo se puede causar un serio problema y una gran mortalidad en el

cultivo de tilapia y por consiguiente una gran pérdida económica para el productor, debido

a todo esto nos planteamos la siguiente pregunta de investigación:

¿Existirá presencia de parásitos monogeneos que puedan dañar el cultivo de tilapia gris en

una granja acuícola de la cruz de elota en el estado de Sinaloa?

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4. Justificación

El presente trabajo se realiza con la finalidad de saber si existe presencia de parásitos

monogeneos en el cultivo de tilapia gris en una granja acuícola de la cruz de elota en el

estado de Sinaloa que puedan afectar la rentabilidad del cultivo y en dado caso de presencia

de estos parásitos poder aplicar las medidas preventivas correspondientes para evitar la

mortalidad de la tilapia y así lograr obtener una producción rentable y exitosa y al mismo

tiempo evitar una gran pérdida económica para el productor, como se acaba de mencionar

anteriormente los principales beneficiados con este proyecto de investigación serán los

acuicultores de la región que se dedican a la producción de tilapia gris para que puedan

obtener un producto bueno y así venderlo en el mercado conforme a las normas de sanidad

y calidad, como segundos beneficiarios seria la sociedad que es la que consume este

producto como una fuente de alimentación.

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5. Hipótesis

Se cree que las especies de tilapias cultivadas son las más susceptibles a ser los hospederos

de estos parásitos monogeneos

10

6. Objetivos

6.1. Objetivo general:

Confirmar la presencia de parásitos monogeneos en tilapia gris cultivada en una granja

acuícola de la cruz de elota Sinaloa.

6.2. Objetivos específicos:

1. Evaluar el grado de infección por parásitos monogeneos.

2. Estimar las pérdidas económicas que se podrían originar si se detecta presencia de

parasitosis en los peces cultivados.

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7. Materiales y métodos

7.1. Tipo de estudio:

Se realizara un estudio experimental, descriptivo y observacional.

7.2 Universo de estudio:

El siguiente estudio se llevara a cabo en la localidad de la cruz de elota en el estado de

Sinaloa en la parte centro-sur del estado, cerca de la costa del Océano Pacífico, esta es

mejor conocida como la Bahía de Ceuta que se encuentra a tan solo 8 km . En la siguiente

ubicación 23°55′17″N 106°53′31″O cuenta con una población de 15,657 habitantes y su

altitud es de 20 msnm. El tiempo de estudio se realizara en los meses de enero a mayo del

año en curso, donde se llevaran a cabo una serie de muestreos en uno de los estanques de

tilapia gris de la región antes mencionada, donde se extraerán de los estanques una

determinada cantidad de individuos para así poder examinarlos previamente.

7.3 Criterios de inclusión y exclusión

Inclusión: Se tomaran en cuenta los individuos que se encuentren de buen tamaño para ser

examinados en el muestreo, otro de los criterios será revisar las branquias si estas se

encuentran pálidas el individuo será seleccionado para examinarlo posteriormente ya que

este síntoma es el principal indicador de parasitosis por monogeneos.

Exclusión: Serán excluidos del muestro los individuos que no presenten un tamaño

adecuado para ser examinados, además de revisar las branquias, si estas se encuentran de

un color natural se omitirá la examinación ya que esto quiere decir que hay alta

probabilidad que no presente ningún tipo de parasitosis.

12

7.4 Metodología

7.4.1 Metodología de campo:

a) Se acudirá a las instalaciones de la granja acuícola para realizar el muestreo en los

estanques de tilapia, las muestras se tomaran con una tarraya para después seleccionar a los

individuos que son aptos para examinar.

b) Se colectaran principalmente alrededor de 20 individuos que presenten las características

aptas para ser previamente examinados.

c) Los 20 individuos seleccionados de tilapia se colocaran en 4 bolsas grandes con 5

individuos en cada una de ellas, a estas se les aplicara por dentro agua del medio porque los

peces deben llegar con vida al laboratorio ya que los peces muertos en algunos casos no

funcionan para esta prueba, pues hay especies de monogeneos que suelen abandonar

rápidamente los cadáveres por eso es recomendable hacerlo con peces vivos. Después serán

introducidos en cubetas para asegurar que viajen en buenas condiciones y estos lleguen en

buena forma al laboratorio para ser examinados posteriormente.

7.4.2 Metodología de laboratorio:

a) Llegando al laboratorio se sacrificara a cada uno de los individuos (por punción en el

cerebro por ejemplo). Inmediatamente colocarlo en una caja de Petri con (poca) agua del

medio y Con una tijera de punta recta abrir la cavidad abdominal del hospedero, desde el

ano hasta la intersección branquial. Retirar el tracto digestivo completo, desde la región

oral – branquial, hasta el recto.

b) El diagnostico de laboratorio se efectuara mediante raspado de piel o cortando varios

filamentos branquiales según el caso, las muestras se colocan en un porta-objetos después

de esto se debe humedecer con agua del medio y colocar un cubre-objetos encima para así

presionarlo (técnica de squash) y pueda observarse mejor en el microscopio, también se

deben extraer las branquias (completas) ya que ahí se alojan comúnmente estos parásitos,

(puede que lleguen a ser visibles a simple vista ya que algunos llegan a medir hasta 2 cm).

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c) se colocaran las láminas en el microscopio para ser observadas detenidamente y así saber

si hay presencia de parasitos en el tejido del pez, después revisar las branquias para ver si

ahí existe presencia parasitaria. (Anotar todos los datos en una libreta).

d) dependiendo de la cantidad de parasitos que se encuentren se determinara si hay una

presencia alta o baja de parasitismo en estos peces y así tomas las medidas necesarias para

garantizar la producción en esta granja acuícola.

7.4.3 Técnicas utilizadas en el estudio

Técnica “Squash”:

Se coloca el material entre 2 porta-objetos y se presiona con el dedo pulgar los dos

portaobjetos con fuerza para obtener la preparación por aplastamientos. Después se

puede observar directamente o previa fijación y coloración. Tipos de preparación de

las muestras biológicas: El material a estudiar debe de tener transparencia, grosor y

tamaño.

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Actividades MESES ( SEMANAS)

ENERO

Semana

1 2 3 4

FEBRERO

semana

1 2 3 4

MARZO

Semana

1 2 3 4

ABRIL

Semana

1 2 3 4

MAYO

Semana

1 2 3 4

Inicio del proyecto

Planificación

Búsqueda de información

Muestreos en la granja acuícola

Análisis de las muestras en el laboratorio

Toma de datos

Pasar datos al proyecto

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9 - Referencias bibliográficas

1- Coward, K. & N.R. Bromage. 2000. Reproductive physiology of female tilapia broodstock. Reviews in Fish Biology and Fisheries 10:1-25.

4- Paperna, I. 1996. Parasites, infections and diseases of fishes in Africa – An update CIFA Technical Paper. No. 31. Rome, FAO. 220p.

5- Smyth, J.D. & Halton, D.W. 1983. The phyisiology of treamatodes. 2da edition. Cambridge University Press. Cambridge, 446 p.

7- Altaba, C. R. et al., 1991. Invertebrats no artròpodes. Història Natural dels Països Catalans, 8. Enciclopèdia Catalana, S. A., Barcelona, 598 pp. ISBN 84-7739-177-7

8- Hickman, C. P., Ober, W. C. & Garrison, C. W., 2006. Principios integrales de zoología, 13ª edición. McGraw-Hill-Interamericana, Madrid (etc.), XVIII+1022 pp. ISBN 84-481-4528-3

9- Buchmann, K. 1999. Immune mechanisms in fish skin against monogeneans – a model. Folia Parasitologica. 46: 1-9.

10- Jones SR. The occurrence and mechanisms of innate immunity against parasites in fish. Dev comp immunol 2001; (8-9):841-852

11- Flores-Crespo J. Diagnosis y control de enfermedades parasitarias más frecuentes que afectan a los peces. En: Quiroz-Romero, H. editor. Diagnóstico y control de parásitos y el hombre. UNAM. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, México D.F. 1991:935-973.

12 - FAO. 2007. El estado mundial de la pesca y acuacultura – 2006. FAO. Roma.

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10. Referencias electrónicas

2- http://es.wikipedia.org/wiki/Oreochromis_aureus

3- http://es.wikipedia.org/wiki/Oreochromis_aureus

6-http://es.wikipedia.org/wiki/Monogenea

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