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EVALUACIÓN DE METODOLOGÍAS PARA EL ANÁLISIS
MICROBIOLÓGICO DE BIOPELÍCULAS PRESENTES EN
REACTORES DE BIODISCOS
EVALUACIÓN DE LA EFICIENCIA DE LA REMOCIÓN DE LA MATERIA ORGÁNICA
EMPLEANDO BIODISCOS EN UN AGUA RESIDUAL SINTÉTICA
A ESCALA DE LABORATORIO
INFORME FINAL
María Elena González D
Institución Universitaria Colegio Mayor de Antioquia
Grupos de investigación: Biociencias-
Ambiente, Hábitat y Sostenibilidad
Semilleros de Investigación SIFACS y SICA
GRUPO INTERDISCIPLINARIO
María Elena González D, Joan Amir Arroyave R, Jesús María López R, Juliet Zapata C, Valentina Palacio C, Alejandro Arango
C, Viviana Ramírez Díaz y Mariana Cañas Arboleda
Tomado de: http://www.imta.gob.mx
Tomado de: http://www.espanol.rfi.fr
Tomado de: http://www.petrolnews.net
Industrial Doméstica
Salud
PROBLEMÁTICA AMBIENTAL
INTRODUCCIÓN
Los actuales modelos de consumo y el aumento de la población contribuyen al incremento de la contaminación ambiental.
Estas aguas deben ser tratadas antes de ser vertidas en los cuerpos de agua para disminuir enfermedades infecciosas así como la
contaminación ambiental.
INTRODUCCIÓN
Un riesgo actual: Uso de las aguas residuales para riego facilitando la transmisión de enfermedades causadas por nematodos intestinales, virus y bacterias fecales, contaminando el agua y los alimentos.
Las ETA constituyen el problema de Salud Publica más extendido en el mundo; según el Programa Conjunto OMS/ UNICEF: por lo menos el 11% de la población mundial (783 millones de personas no tienen acceso a agua potable y miles de millones, no reciben servicios de saneamiento).
OBJETIVO GENERAL
Evaluar diferentes metodologías para el análisis microbiológico del potencial de formación de biopelícula y los microorganismos responsables de la degradación de materia orgánica en reactores de biodiscos.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
•Evaluar la capacidad de formación de biopelicula en los microoganismos presentes en el agua residual con el fin de favorecer la biodegradación de la materia orgánica.
•Estandarizar diferentes metodologías para el análisis microbiológico de biopelículas presentes en reactores de biodiscos.
•Identificar los principales grupos de microorganismos responsables de la formación de biopelícula empleando técnicas microbiológicas.
JUSTIFICACIÓN
El tratamiento de aguas residuales tiene como objetivo minimizar el impacto en la salud y el impacto ambiental al verter los contaminantes a los cuerpos de agua receptores.
Busca principalmente la reducción de la DBO (demanda biológica de oxígeno), sólidos suspendidos y organismos patógenos; estos contaminantes son removidos por procesos físicos, químicos y biológicos.
JUSTIFICACIÓN
El tratamiento de aguas residuales es importante para proteger la salud pública, la economía y el ambiente; se aprovecha la actividad de los microorganismos empleando biodiscos.
Tratamiento de agua residuales
Métodos físicos
Osmosis
Filtración
Adsorción
Métodos químicos
Oxidación
Electrolisis
Ozonización
Métodos biológicos
Microorganismos
Enzimas
TRATAMIENTOS BIOLÓGICOS
http://www.google.com.co/imgres?q=biodiscos+tratamiento
+de+aguas+residuales&um=1&hl=es&client=firefox-
a&rls=org.mozilla:es-
ES:official&biw=1024&bih=629&tbm=isch&tbnid=ZaeisX5p
1sputM
http://www.reocities.com/jdelosri/
http://www.h-gac.com/community/water/ossf/OSSF-
Treatment-Systems_Gravel-less-Pipe-S.pdf
http://ingenieriapro.blogspot.com/2008/05/lagunas-
de-oxidacin.html
http://www.bvsde.ops-oms.org/bvsacg/guialcalde/2sas/2-
4sas.htm
Planta convencional
Biodiscos
Tanque o pozo séptico
Laguna de oxidación Humedales
Rejillas
Remoción
material grueso
Desarenador Tanque
igualación bombeo Medidor
flujo
Sedimentación
primaria
Flotación
Coagulación
química
Tanques
imhoff
Biodiscos
Zanjas de
oxidación
Laguna
oxidación
Filtros
percoladores
Lodos
activados Sedimentador
secundario
Influente
Tratamientos preliminares
Tratamientos
primarios
Tratamientossecundarios
Remoción Nitrógeno
Remoción Fósforo
Concentración Digestión Deshidratación Incineración Disposición final
Relleno sanitario
Fertilizante
Lo
do
s
Eflu
en
te c
larific
ad
o
Tratamientos terciarios
Niveles de Tratamiento
de las Aguas Residuales
Efluente
PROCESOS BIOLÓGICOS DE TRATAMIENTO
DE AGUAS RESIDUALES
•Se dividen en procesos aerobios, anaerobios, facultativos, anóxicos, combinados y de lagunaje.
•Procesos aerobios (biodiscos): Sistema de cultivo fijo donde los microorganismos presentes en el agua residual se adhieren a un soporte sólido formando una biopelícula capaz de estabilizar la materia orgánica adherida a ella.
•Se emplea en el tratamiento de aguas residuales industriales y domésticas de cargas medias y bajas.
BIOPELÍCULA O BIOFILM
Tomado de:
http://scielo.isciii.es/scielo.php?pid=s113
8-
123x2005000400005&script=sci_arttext
Tomado de:http://www.dicyt.com/viewItem.php?itemId=16116
Tomado de:
http://es.mongabay.com/rainfor
ests/0602.htm
Una comunidad microbiana de
células adheridas irreversiblemente
a un substrato o interface, o unas
con otras, encerradas en una matriz
de sustancias poliméricas
extracelulares que ellas han
producido
BIOPELÍCULAS INDESEABLES
• Enfermedades: Caries dental y enfermedad periodontal, neumonía en pacientes con fibrosis quística, cistitis crónica, endocarditis infecciosa, osteomielitis, prostatitis crónica, sepsis por catéteres, lentes de contacto
• Ambiental: Sistemas de conducción de aguas, deterioro de maquinaria y equipos en embalses y estructuras (puentes, fachadas)
• Industrial: Alteran la calidad de los alimentos
BIOPELÍCULAS Y UTILIDAD AMBIENTAL
Los microorganismos en una biopelícula juegan un papel muy
importante en el reciclaje de nutrientes de diversos ambientes y
la biodegradación de contaminantes ambientales (materia
orgánica) por lo que pueden ser utilizados en el tratamiento
biológico de aguas residuales
COMPOSICIÓN
• 97% de agua
• Microorganismos: bacterias, hongos, algas y protozoos
• Exopolisacáridos (EPS)
• Polisacáridos, proteínas y ácidos nucléicos (SPE)
• Productos de lisis bacteriana
• Cristales de sales minerales, sedimentos
• Producción de EPS depende:
• Sustrato y factores ambientales
• Superficie hidrofóbica y áspera del material
• Canales: Flujo del líquido (transporte, difusión de nutrientes y oxígeno) y remoción de desechos
Formación biofilm (Estructuras específicas y factores biológicos)
Ciclo vital: 3 etapas e interacciones con el medio
a. Adhesión inicial: fimbrias, flagelos o pilli
b. Crecimiento: formación de microcolonias y producción de EPS
c. Separación o desprendimiento: fuerzas externas o procesos activos
Moléculas señalizadoras (AHL) del quorum sensing
Tomado de:
http://www.novaaqua.com.ar/index.php
?op=biofilm
• Porcentaje de área
sumergida: 40%
• Diámetro de los discos: 28
cm
• Etapas reactor: 4 etapas (12
discos por etapa)(5,1 m2)
• Velocidad de Rotación: 9
RPM
• Carga orgánica (g
DQO/m2/d)
• Carga hidráulica (m3/m2/d)
DESARROLLO DEL BIOREACTOR
METODOLOGÍA MONTAJE DEL REACTOR
Cubeta plástica con 4 litros de agua residual
doméstica.
Introducir un disco rugoso en
acrílico
Inyectar oxígeno
Alimentar con leche 2 veces por semana
TOMA DE MUESTRAS Y SIEMBRA
Tomar muestra con hisopo de algodón
estéril
Depositar en erlenmeyer con 50ml
de solución salina estéril
Agitación: 20 minutos a 80 rpm .
Realizar diluciones seriadas desde 10-1
hasta 10-9
Sembrar diluciones en agar LB (Luria
Bertani) 100µl, dos cajas por dilución, 4
diluciones por muestra.
Incubar a 37°C por dos días y realizar el recuento UFC.
Proceder al aislamiento de colonias
Sembrar en agar sangre, medios
selectivos y diferenciales
CARACTERIZACIÓN DE LAS COLONIAS
Pruebas bioquímicas: TSI,
LIA, MR- VP, Úrea, citrato, bilis esculina, caldo
nitrato, SIM
Siembra medios de cultivo
selectivos (EMB o Mc Conkey,
Mossel, Trypticase de
soya y Cetrimide)
Coloración Gram: morfología y agrupación
(filancia)
Características macroscópicas y microscópicas de
las colonias
OTRAS PRUEBAS
•Medio OF (oxidación- fermentación)
• Crecimiento en atmósfera aerobia y anaerobia
• Oxidasa y catalasa
ADHESIÓN A PLACAS DE POLIESTIRENO: CRISTAL VIOLETA Y SAFRANINA
Sembrar colonias en caldo LB, incubar 48
horas a 37°C
Inocular por duplicado 100µl del cultivo en
microplacas de poliestireno e
incubar a 37°C durante la
noche
Decantar el medio y añadir a cada pozo 125µl de solución de cristal violeta al 0.25% en etanol
Dejar actuar por 5
minutos y enjuagar
Colonias positivas: halo azul violeta y
reportar por +++
Para la técnica con
safranina al 0.5%,
se realiza el mismo
procedimiento y se
deja actuar por 1
minuto
CRECIMIENTO EN AGAR ROJO CONGO
Sembrar colonias en agar rojo congo e incubar a 37°C
por 48 horas
Prueba positiva: colonias negras,
lustrosas
.
RESULTADOS
•Se evidenció mediante microscopía, observación en fresco y coloraciones una sucesión de microorganismos a medida que madura la biopelícula.
•Se encontraron resultados positivos por el método del agar Rojo Congo para varios de los microorganismos evaluados; esta técnica se combinó con la adhesión en placa y se identificaron aislados mediante pruebas bioquímicas y micrométodos.
RESULTADOS
Técnica Protozoos y algas Bacterias
Preparación
en fresco
Trichostrongylus, amebas
tecadas: Archella, Ciliados:
(Tetrahymena), nematodos de
vida libre, algas, larvas y quistes
de protozoos
Bacilos y cocobacilos, bacterias
filamentosas
Tinción con
Lugol
Larvas y protozoos de vida libre,
amebas tecadas y algas
Bacilos y cocobacilos
Coloración de
Gram
N/A Cocos Gram positivos, bacilos Gram
positivos, algunos esporulados,
bacilos Gram negativos, cocobacilos
Gram negativos
Tabla 1. Microorganismos observados por microscopía
RESULTADOS
RESULTADOS
Microorganismo Técnica empleada Referencia
Bacillus cereus,
Pseudomonas sp,
Staphylococcus
coagulasa negativo,
Aeromonas sp, protozoos
de vida libre, algas y
bacterias filamentosas
Combinados González et al.
Tabla 2. Microorganismos identificados por métodos combinados.
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
Se evidenció la capacidad de formación de biopelícula en algunos
microorganismos por los métodos evaluados.
Banco de cepas con el fin de emplear microorganismos de interés
ambiental en procesos biotecnológicos.
Es necesario mirar el funcionamiento del reactor como un todo
teniendo en cuenta variables fisicoquímicas y microbiológicas.
Se hace necesario el estudio de la ecología microbiana de
biopeliculas para tener conocimiento de lo que sucede al interior del
reactor de la mano de parámetros fisicoquímicos (desmitificar caja
negra).
Debido a la composición de las aguas residuales y su ecología
microbiana, se recomienda estandarizar cada método de acuerdo
con las necesidades de cada laboratorio, los recursos disponibles y
la experiencia de los investigadores.
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
FORMACIÓN
Formación de recurso
humano (trabajo de
grado o maestría)
No. y nivel
9 Estudiantes: 4 estudiantes
de biotecnología, 3 de
ingeniería ambiental, 1 de
citohistotecnología y 1
estudiante de la
Especialización en
Microbiología Ambiental
PROYECTOS •Digestión anaerobia (laboratorio acondicionado)
•Algas
•Biodiscos
•Bacterias lipolíticas
•Humedales
AFM MICROSCOPÍA DE FUERZA ATÓMICA
AFM
Modo de Contacto
Modo Tapping
BARRIDO DE UNA LÍNEA
Durante el barrido se forma una imagen de la
variación de la interacción de la punta con la
muestra en función de la posición en la superficie
MATERIAL PARA BIODISCO A PARTIR DE MEMORIAS RAM RECICLADAS
RESULTADOS
040613
040613
Los autores agradecen al Tecnoparque Sena. Medellín por toda su colaboración en la capacitación, facilitación del equipo AFM, y de las instalaciones .
AGRADECIMIENTOS
Arroyave R., J. A., Garcés G., L. F. y Cruz C., A. F. Comparación de
tecnologías de oxidación (TAO´s) para la degradación del pesticida
Mertect. NOVA – Publicación Científica en Ciencias Biomédicas. ISSN
1794 – 2470. Vol. 9 No. 15 (Enero – Junio) 2011. 35 – 40 pag.
González D., M.E., Arroyave R., J. A., Mejía T., J. Arias G., S.P., Osorio
B., J.M. y Restrepo M., G.J. Degradación del colorante Rojo Punzó por
medio de lodos anaerobios. NOVA – Publicación Científica en Ciencias
Biomédicas. ISSN 1794 – 2470. Vol. 8 No. 14 (Julio – Diciembre) 2010.
229 – 236 pag.
Mariana, N. S., Salman, S. A., Neela, V. y Zamberi, S. Evaluation of
modified Congo red agar for detection of biofilm produced by clinical
isolates of methicillin–resistance Staphylococcus aureus. African Journal
of Microbiology Research (2009). Vol. 3(6) pp. 330-338
BIBLIOGRAFÍA
Meng-Ying, L.I. et al. Evaluation of Biological Characteristics of
Bacteria Contributing to Biofilm Formation. Pedosphere
(2009)19(5): 554–561
Progresos sobre el agua potable y saneamiento. Programa
Conjunto OMS/UNICEF para el Monitoreo del Abastecimiento
de Agua y Saneamiento. Informe 2012.
Guía para la atención de brotes de eta (enfermedades
transmitidas por alimentos) Bogotá D.C. Versión octubre 06 de
2011.
BIBLIOGRAFÍA
MUCHAS GRACIAS
“La solución a todos los problemas está en la educación”. Dalai Lama
maria1.gonzalez@colmayor.edu.co
Gracias por su atención GC-FR-008
Fecha Publicación: 23-Octubre-2012
Fuente: cambioclimaticoucv.blogspot.com
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