diagnostico veterinario

CONTEXTO ACTUAL DE DIAGNOSTICO VETERINARIO

El mercado globalizado ofrece oportunidades a los países productores de alimento pero a la vez implica r iesgo por el intenso intercambio de mercancías, que pueden transmit ir organismos patógenos y/o contaminantes que constituyen en peligro para la salud pública y animal.

Implementación de todos los avances tecnológicos que permitan la identif icación rápida de los agentes bacterianos y/o virales. (PCR, RT-PCR, Ingieneria Genética).

Establecimiento a nivel de laboratorio del sistema de aseguramiento de la calidad de los procedimientos y servicios de diagnóstico veterinario garantizando así un servicio ef iciente y preciso a los usuarios

MISION DEL GRUPO DIAGNOSTICO VETRINARIO

La misión de Grupo de Diagnostico Veterinario y los Centros de Diagnostico Veterinario es la de reconocer e identif icar las enfermedades endémicas y exóticas de los animales en el país con métodos y procedimientos diagnósticos e investigación aplicada de laboratorios y de campo, para que se posibil i ten las acciones de lucha contra estas enfermedades y así disminuir las perdidas económicas de este sector de la economía y contribuir a la seguridad alimentaría de Colombia.

1. FIEBRE AFTOSA2. ESTOMATITIS

VESICULAR3. BRUCELOSIS4. TUBERCULOSIS5. RABIA SILVESTRE6. ENCEFALITIS EQUINA7. PESTE PORCINA

CLASICA8. NEWCASTLE

ENFERMEDADES DE CONTROL OFICIAL

1. ENCEFALOPATIA ESPONGIFORME BOVINA – EEB.

2. INFLUENA AVIAR.3. ENCEFALITIS DEL NILO

OCCIDENTAL – VWN.4. SEUDORABIA O

AUJESZKY.5. PESTE PORCINA

AFRICANA

ENFERMEDADES EXOTICAS EN EL PAIS

TOMA, CONSERVACIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS PARA DIAGNÓSTICO

VETERINARIO.

Toda información diagnóstica que el laboratorio pueda proporcionar, depende de:

Cuidado fueron tomadas Tiempo de recolección,

conservación Selección muestra Criterio técnico se ha tomado

muestra Eficiencia personal laboratorio.

Consideraciones Generales Para Toma y Envió de Muestras:

Representativa proceso infección Cantidad suficiente Antes administración

medicamentos Material estéril, asepsia toma Medios transporte adecuado Solicitar diagnostico mayor

brevedad, no más 24 horas, conservante sea confiable.

Identificación muestra:

Marcador resistente agua Recipientes, espacios

identificar Cinta / esparadrapo, rodee

Fco Número / nombre animal Tipo muestra Nombre propietario Nombre finca, granja, hato Fecha toma

Conservación muestra:

Refrigeración (hielo/ seco, sal)

Congelación (hielo seco) Formol bufferado 10% Glicerina bufferada Solución salina estéril Tioglicolato

Transporte muestras:

Termo icopor, proporcional al tamaño o número muestras a enviar.

Evite envases/recipientes, contacto directo hielo. Refrigerante (gel)

Cuando utilice bolsas refrigerantes envuelva los tubos en papel periódico, colóquelos bolsa plástica.

Transporte muestras refrigeradas:

Termo rotulado exterior Historia (sobre), péguelo

tapa LABORATORIO VETERINARIO

Avenida El Dorado No. 42-42Teléfono 2692100 – Valledupar

URGENTE

MATERIAL BIOLOGICO

Transporte Muestras NO refrigeradas:

Muestra, llegue menos 4 horas

Muestra no requiere refrigeración

- Temperatura ambiente

- Lugar fresco - No rayos directos

sol - Evitar vibraciones

Materiales toma muestras:

Material es determinante, se altere

Mercado consiguen elementos:

- esterilidad - conservación - fácil manejo campo - comodidad transporte

Materiales toma muestras:

Tubos al vacío con anticoagulante

Tubos al vacío sin anticoagulante

Agujas Escobillones o hisopos /

Culterete Frascos plásticos, tamaños Bolsas plásticas Jeringas desechables

Materiales toma muestras:

Manejo de Muestras de Sangre:

Tubos Vacutainer:

Tapón rojo : sangre coagulada - 3.0, 5.0, 7.0 y 10.0 ml. - vidrio / plástico neutro protegido silicona (hemólisis, retracción) - gel activador coagulación / gel separar coagulo del suero sin necesidad usar otro tubo.

Alternativa:

Reutilizar tubos, lavarlos d/gente

neutro, enjuagar agua destilada,

secar calor / autoclavar. No usar, requiere análisis minerales.

Tubos Vacutainer:

Tapón lila: EDTA, 3.0 a 10.0 ml - Mejor conserva morfología

- Mayor uso - Cuadro hemático y

he/parasitos

Tubos Vacutainer:

Tapón azul claro: Citrato de Sodio, capacidades 3.0 a 10.0 ml. Usan pruebas coagulación y no se recomienda para cuadro hemático y hemoparásitos por la baja capacidad, conservar la morfología celular.

Tubos Vacutainer:

Tapón verde: heparina, Usan para pruebas inmunológicas detección antígenos, gases sanguíneos. No se recomiendan para cuadro hemático por la baja capacidad conservadora.

Agujas:

Tubos Vacutainer, calibre 20 G, color amarillo, 21 G color verde, 22 G color negro con longitudes de 1 a 1 1/2 pulgada (especies animales, acuerdo vaso sanguíneo a puncionar).

Agujas:

Agujas hipodérmicas estériles y desechables. Se consiguen longitud (de 1/2 a 1 1/2 pulgadas) y calibres (18 a 30 G) son 18, 19, 20 y 21 usadas.

Precauciones uso Vacutainer:

Asegurar anticoagulante, debe llenar

tubo hasta no exista vacío Invertir el tubo suavemente

varias veces, mezcle contenidos.

No usar vencidos (3 años), asegurar vacío.

Hemólisis:

Interferencia diagnóstica No use tubo/agujas húmedas Permita tubo se llene 2/3 partes Homogenizar invirtiendo 5-10

veces Evitar rayos solares Agitación

Escobillones/hisopos:

Estériles Irreemplazables cuando se

quiere tomar muestras para: cultivo bacteriológico: secreciones, abscesos, frotis para citología exfoliativa.

Escobillones o hisopos secos:

Tubos estériles, aplicación similar anteriores, carecer humedad - medio de cultivo, poca capacidad conservar viables microorganismos, refrigerados. Cuando muestra observa seca, SSF estéril, evitar muerte bacteriana por desecación.

Frascos boca ancha:

Seguridad, tapa hermética, material plástico / vidrio, tamaños.

Útiles toma y manejo muestras: materia fecal, orina e histopatología.

Algunas ofrecen material estéril útiles estudios bacteriológicos.

Frascos capacidad de 30 a 500 ml, manejar cualquier muestra.

Bolsas plásticas: (Nazco, Whirl Pak)

Estériles selle alambrado, Útiles: muestras de leche, tejidos para bacteriología y muestras de agua.

Se consiguen en diferentes capacidades .

Sangre con anticoagulante:

Cuadro hemático / hemoparásitos (EDTA-lila)

Investigación factores coagulación

(azul – citrato de sodio) Determinación algunos

antígenos y examen de filarias (verde – heparina)5 ML

Refrigerar a 4ºC

CUADRO HEMATICO (Hemograma):

% Hematocrito (VPC)

Determinación hemoglobina

Conteo total glóbulos rojos

Conteo total glóbulos blancos

Conteo diferencial glóbulos blancos

Examen hemoparásitos

Examen hemoparásitos:

Frotis sanguíneo: - Observación

parásitos - % parasitemia - Morfología

celular Prueba de Woo / Knott

Impresiones tejidos

(cerebro, bazo, riñón)

Conservación frotis:

Fijarlos alcohol metilico (congel.)

Proteger: rayaduras, polvo, sol

Identificar Transportar dos en dos.

Sangre sin anticoagulante:

Tubo tapa roja, suero sanguíneo

Detección Acs, Química Hemólisis: tubos / agujas

húmedas envases vidrio no neutro,

detergen- te, rayos solares, Tº no

adecuadas, transvasar ( presión embolo).

5 ml - refrigeración

Muestras materia fecal:

coccidias, fasciola, proto- zoarios, broncopulmonares,

bacte rias enteropatogenas, detectar

Ag (rotavirus, coronavirus),

detectar

sangre oculta, evaluar enzimas

digestivas.

Estudio parasitologico:

Bovinos, equinos, ovicaprinos Tomada recto; guante palpación, bolsa plástica, recipiente boca ancha. 20 – 30 gr. McMaster (coccidias) Baerman (broncopulmonares) Dennis (Fasciola)

Coprocultivo (especies):

Enterobacterias patógenas Ideal Culturette, hisopo 1-2

ml Hisopo recto rótelo frotis

mucosa, llevelo tubo sistema Refrigeración Seguridad, 3 Coprocultivo

(seriado) c/ 24 horas.

Muestras exudados: (cultivo bacteriológico)

Asepsia, material estéril, jeringa

Punción, más 0.5 ml Transporte: jeringa, transferir

tubo (roja), Culturette

(aero/anaerobias) Refrigeración

SEMEN

• Evaluación de semen congelado para determinar porcentaje de motilidad, recuento de espermatozoides vivos por dosis y/o estudio microbiológico.

• Las muestras deben venir en el termo con nitrógeno líquido para tomar las pajillas directamente en el laboratorio.

Raspado piel:

Ectoparásitos: bisturí raspe piel sangrado zona, recipientes

copro- lógicos, 2 / 3 gotas SSF estéril Hongos: bisturí raspado zona

tubo seco estéril. Cultivo bacteriológico: ectopa- rasitos, hisopo superficie

sangrante, refrigeración.

Raspado piel:

Lesiones abscesos, foliculitis,

punciones aguja – punta bisturí,

tomar material purulento hisopo.

Refrigeración

Cultivo bacteriológico/ Aislamiento viral:

Éxito, oportuno toma, asepsia,

conservación y transporte. Cortes 5 cms. Bolsas

plásticas Nazco/tipo Whirl pak,

intestino atados extremos. Refrigeración,

congelación(AV)

Congelado –70°C

Formol 10%

REMISIÓN DE LA MUESTRA:

ALGUNAS SEROLOGIAS :

Adición del antígeno sobre el suero

(unión antígeno-anticuerpo)

Lectura

Gracias por atención