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www.exopol.com • [email protected] ABRIL 2005

Aleida Villa Espinosa, Rafael Baselga, Ana Fernández, Elena Gracia, Iñaki Albizu

ANTIBIOGRAMAS EN DISENTERIA


DETERMINACION DE SENSIBILIDAD

Difusión en agar con discos

Se utiliza para determinar la sensibilidad de bacterias aerobias de crecimiento rápido y, en condiciones estándar, el diámetro del halo de inhibición es inversamente proporcional a la Concentración Mínima Inhibitoria (MIC). Los resultados son orientativos, es cualitativa y no es válida para Brachyspiras.

Antibiograma en agar Mueller Hinton incubado a 37º C 18 h. Los discos contienen diferentes concentraciones de antibióticos que difunden al medio impidiendo el crecimiento bacteriano.

Prueba de las diluciones (MIC)

La MIC es la menor concentración de antibiótico en la que no hay crecimiento. La forma adecuada de expresar la MIC es refiriéndose al 50% (MIC50) y al 90% (MIC90) de las cepas ensayadas (mínimo 50 cepas) y es la concentración a partir de la cual el 50% (o el 90%) de las cepas no crecen. Pone de manifiesto el grado de resistencia de la población, la sensibilidad de cada especie y de cada cepa.

Para determinar la sensibilidad a los antibióticos se utiliza:


Sensible: Cuando el microorganismo infectante se inhibe por las concentraciones que un antibiótico alcanza en los tejidos administrado a las dosis usuales. Un microorganismo es considerado sensible si la MIC de este es inferior a la mitad de la concentración media alcanzada en la sangre, o es inferior a la cuarta parte de la cifra media de las concentraciones máximas.

Medianamente sensible: Si el microorganismo sólo es inhibido por las concentraciones que el antibiótico alcanza en la sangre o en los tejidos cuando se administra la mayor dosis posible del mismo

Resistente: Si el microorganismo no resulta afectado por las concentraciones que normalmente se alcanzan en el organismo, y son toleradas por él.

CRITERIOS DE UTILIZACION DE LOS ANTIBIOTICOS

Los antibióticos a los que las bacterias son medianamente sensibles, no se deben utilizar, a no ser: (1) que normalmente alcancen mayor concentración en el foco de infección, o (2) que no se disponga de otro agente antimicrobiano, en cuyo caso se deben administrar las mayores dosis posibles.

Estos conceptos establecen una relación entre la concentración que los distintos fármacos alcanzan en los tejidos y la MIC, la cual constituye el parámetro de referencia para determinar la sensibilidad.

1

3

2


Factores dependientes de las bacterias:Es posible "in vivo" las bacterias sean más sensibles porque pierdan factores de virulencia.

Factores dependientes del hospedador: Es posible que las bacterias sensibles no resulten afectadas debido a su localización intracelular, su fase metabólica, presencia de pus, o productos de necrosis, etc.

Factores dependientes del fármaco:Se incluyen: la administración de dosis insuficientes, la utilización de una vía de administración incorrecta, el empleo de un fármaco no apropiado, la inactivación del fármaco, tanto in vivo como in vitro y la escasa penetración del fármaco en los tejidos, debida a la existencia de barreras fisiológicas o de extensas zonas de necrosis.

RESULTADO CLINICO

Los resultados pueden ser no válidos para pronosticar el resultado clínico:

a

c

b


*(Burch, D.G.S., http://www.octagon-services.co.uk/articles/ileitis.pdf)

Tilosina

Lincomicina

Tiamullina

Valnemulina

Clortetraciclina

Espectinomicina

Apramicina

Neomicina

Sulfamidas/Trimetropin

Amoxicilina

Penicilina

B. Bueno, M. Malo, mod. Moderado

ANTIMICROBIANO

L. Intra-cellularis.

B. Hyody-senteriae

B.Pilosicoli

C. Perfrin-gens E. coli

Salmonella sp. Yersinia

B

B

B

B

B

B

M

mod

M

M

M

M

mod

B

B

M

M

M

M

M

M

M

mod.

B

B

B

M

M

M

M

M

M

M

B

B

B

B

M

M

M

M

mod

B

B

M

M

M

M

M

mod

B

B

B

mod

M

M

M

M

M

mod

mod

B

B

B

M

M

M

M

M

M

mod

mod

B

B

B

mod

M

ANTIBIOTICOS SELECCIONADOS PARA EL CONTROL DE LOS PROCESOS DIGESTIVOS EN CEBO*


*(Burch, D.G.S., http://www.octagon-services.co.uk/articles/ileitis.pdf)

Lincomicina 110 ppm

Lincomicina 220 ppm

Tiamulina 110 ppm

Tiamulina 220 ppm

Valnemulina 75 ppm

Valnemulina 200 ppm

Tilosina 100 ppm

Clortetraciclina

Espectinomicina

Apramicina

Neomicina

Moderada (50%)

Alta (>90%)

Alta (>90%)

Baja (<20%)

Baja (<20%)

Baja (<20%)

Baja (<20%)

Baja (<20%)

48

25

-

-

-

-

-

-

35

101

2.8

8

1.7

5.2

50

-

-

-

-

ABSORCIÓN APROXIMADA

CONCENTRACIÓN EN ILEON (µG/ML)

CONCENTRACIÓN EN COLON (µG/ML)ANTIMICROBIANO

ABSORCION RELATIVA, O CONCENTRACIONES INTESTINALES DE VARIOS ANTIBIÓTICOS*


ESQUEMA DE TRABAJO CON BRACHYSPIRAS

Esquema de trabajo para determinar la sensibilidad de Brachyspira sp. a los agentes antimicrobianos utilizando la prueba de las diluciones y lectura en Citometría de Flujo.

En las placas de ensayo de 96 pocillos de un ml de capacidad se ponen los medios de crecimiento (1 ml; BHI con 10% de Suero Fetal Bovino) donde se multiplicarán las Brachyspiras.

En otras microplacas de 96 pocillos se preparan las 8 diferentes concentraciones decrecientes (1/2) de cada antibiótico (Lincomicina, Tiamulina, Tilosina, Valnemulina).


Las diluciones dobles de los antibióticos se realizan pasando consecutivamente 150µl con una pipeta multicanal a otro pocillo con 150µl del medio de crecimiento sin antibiótico. La placa con las diferentes concentraciones de antibiótico queda lista. En cada placa se dejan pozos control con medio sin antibiótico para los controles de pureza y la evaluación del crecimiento de la población a 0 y 48 h.

Los antibióticos concentrados se añaden a las microplacas donde se prepararan las diluciones de los antibióticos.


Las diluciones de antibiótico preparadas se traspasan a las placas de ensayo.

Las cepas se preparan a partir de un cultivo de 48 horas a 42ºC en agar Columbia.

En cada pocillo de las placas de ensayo tenemos una concentración y un antibiótico diferente, tal y como se van a ensayar.


Se deposita 1,5 ml de BHI sin suero sobre las placas con los cultivos antes de recoger las bacterias con el asa sobre las áreas de hemólisis.

La suspensión bacteriana se mezcla bien y se distribuye en los microtubos de las placas de ensayo.


Las placas de ensayo se incuban en anaerobiosis para permitir el crecimiento de las Brachyspiras.

Se confirma la pureza del inóculo a partir de uno de los microtubos de control.

Para realizar la lectura objetiva de los pocillos, las bacterias que se han multiplicado se diluyen en PBS antes de contarlas en el citómetro. Un citómetro cuenta el número de bacterias presentes en un vólumen determinado al hacerlas pasar por un microcapilar.


El citómetro lee cada una de las bacterias presentes en el medio de crecimiento (cada punto es una bacteria) y además de contarlas para estimar su concentración, utilizando Ioduro de Propidio como marcador estima su viabilidad.

La lectura de los datos se realiza en un citómetro de flujo de un modo totalmente objetivo, comparando el crecimiento y viabilidad de las bacterias en cada uno de los pocillos (un pocillo por cepa y dilución de antibiótico) y su viabilidad con el crecimiento y viabilidad promedio que se obtiene en los pocillos control.


Aislamiento: Brachyspira hyodysenteriae

Antibiograma: Se utilizó un método cuantitativo de microdilución en caldo BHI enriquecido con el 10% de Suero Fetal Bovino y se analizo por Citometría de Flujo después de 48 horas de incubación a 42ºC frente a un panel de 4 antibióticos y 8 diluciones de cada uno de ellos.

Punto de corte: El punto de corte estimado corresponde al 50% de inhibición del crecimiento contra el control de la misma cepa sin antibiótico.

ANTIBIOGRAMA FRENTE A BRACHYSPIRAS

Lincomicina

Tiamulina

Tilosina

Valnemulina

1

64

4

256

4

2

32

2

128

2

3

16

1

64

1

4

8

0,5

32

0,5

5

4

0,3

16

0,3

6

2

0

8

0

7

1

0,1

4

0,1

8

0,5

0

2

0

CONCENTRACIONES ENSAYADAS EXPRESADAS EN µG/ML:MIC Br. hydodysenteriae

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

1 2 3 4 5 6 7 8

Concentración de antibióticos

ATB A

ATB B

ATB C

ATB D


SENSIBILIDAD IN VITRO:

Sensibilidad Clínica: Valor obtenido en la menor concentración por debajo del punto de corte (50% de inhibición) multiplicado por 3. Este valor se compara con las concentraciones que se alcanzan en intestino.

SENSIBILIDAD CLÍNICA:

CONCLUSIONES: La cepa estudiada no presenta ninguna resistencia frente a ATB B y el ATB D, mientras que tanto frente a la ATB A como frente a ATB C podemos sospechar que estamos muy cerca del límite de sensibilidad clínica.

RESULTADOS

ATB A

ATB B

ATB C

ATB D

Sensible

Sensible

Sensible

Sensible

ANTIBIÓTICO

A

B

C

D

16

<0.031

32

<0.031

34,51

2,16

N.D.

1,68

Valor punto de corte

Concentración en intestino

Todos los antibióticos son capaces de inhibir el crecimiento de las bacterias en alguna de las concentraciones ensayadas

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