valores sanguineos de caninos de la ciudad de cajamarca

1

UNIVERSIDAD NACIONAL DE CAJAMARCA

FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS

ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA

“Valores hematológicos de referencia en caninos

(Canis lupus familiaris) de la Ciudad de Cajamarca – 2012”

T E S I S

Para optar el Título Profesional de

MÉDICO VETERINARIO

Presentada por la bachiller:

BEATRIZ MILAGROS SÁNCHEZ RODRÍGUEZ

Asesor:

M.V. M. Sc. Fernando Alberto Oblitas Guayán

Cajamarca – Perú 2013

2

Dedicatoria:

A Dios, por darme la oportunidad de cumplir la anhelada meta de ser

Médico Veterinario.

A la paciencia y el apoyo constante de mis padres, Santos Rodríguez y

Teodoro Sánchez en todas las decisiones que he tomado.

A mi hermanita, por su paciencia.

A ti.

3

Agradecimientos

Un especial agradecimiento al Dr. Fernando Oblitas Guayán por su guía constante

en la realización de esta Tesis, desde su formulación como proyecto hasta su

culminación.

A todas las mascotas y sus propietarios que colaboraron para que este trabajo de

investigación se realice.

A mis amigas que se permitieron un tiempo en sus laborares para ayudarme en el

trabajo de laboratorio.

Milly

4

RESUMEN

Se realizó en la provincia y distrito de Cajamarca a 2650 msnm, entre los

meses de setiembre a diciembre del año 2012; donde se muestrearon 120

canes clínicamente sanos, los cuales fueron separados en hembras y

machos que a su vez se subdividieron en 4 subgrupos por edades

(cachorros, jóvenes, adultos y geriátricos), obteniendo de ellos 3 ml de

sangre recolectados mediante venopunción cefálica por sistema al vacio en

tubos con EDTA, con el objetivo de establecer valores hematológicos

referenciales. Los resultados de los valores sanguíneos son, sin distinción de

sexo y sin diferenciar edad; número de eritrocitos (5,0 - 8,6 ×106/µl),

hematocrito (40 - 58%), dosaje de hemoglobina (14,5 - 23,5 gr/dl), índices

hematimétricos: VCM (59,7 - 85,9 fl), HCM (21,4 - 34,8 pg.), CHCM (31,1 -

46,3 g/dl), leucocitos (6,4 - 11,2 ×103/µl); los recuentos de las formas

celulares de leucocitos en valores diferenciales de neutrófilos segmentados

(62 - 71%), neutrófilos abastonados (0 - 4%), eosinófilos (1 - 5%), monocitos

(0 - 3%), linfocitos (23 - 32%) y basófilos (0 - 0%); para los valores absolutos,

neutrófilos segmentados (4,3 – 7,5 ×103/µl), neutrófilos abastonados (0 - 0,3

×103/µl), eosinófilos (0 – 0,4 ×103/µl), monocitos (0 – 0,3 ×103/µl), linfocitos

(1,6 - 3,2 ×103/µl) y basófilos (0,0 - 0,0 ×103/µl). Velocidad de sedimentación

(0,3 - 2,7 mm/h) y plaquetas (130 - 200 ×105/µl). Los resultados obtenidos en

serie roja, serie blanca, velocidad de sedimentación, número de plaquetas

son diferentes a los reportados por Gómez (1988).

Palabras claves: Cajamarca, eritrocitos, leucocitos.

5

ABSTRACT

This research was taken in Cajamarca city located on 2650 asl, between the

months September to December 2012; where was take 120 clinically healthy

dogs, were separated in males and females, and subdivided each one in 4

groups by age: puppies, young, adult and geriatrics, colleting 3 ml of blood

from cephalic vein using vacutainer system with EDTA tubes, to establisher

normal ranges and made references limits to blood values for Cajamarca city,

including parameters of reference, for both sex and four ages. The results for

erythrocytes (5,0 - 8,6 ×106/µl), hematocrit (40 - 58%), hemoglobin (14,5 -

23,5 gr/dl), MCV (59,7 - 85,9 fl), MCH (21,4 – 34,8 pg), MCHC (31,1–46,3

g/dl), leukocytes (6,4 – 11,2×103/µl), leukocytes shape: segmenter

neutrophils (62 - 71%), band neutrophils (0 - 4%), eosinophils (1 - 5%),

monocytes (0 - 3%), lymphocytes (23 - 32%) y basophils (0 - 0%); absolutes

values: segmenter neutrophils (4.3 - 7.5 × 103/µl), band neutrophils (0 - 0.3

×103/µl), eosinophils (0 - 0.4 ×103/µl), monocytes (0 – 0,3 ×103/µl),

lymphocytes (1,6 – 3,2 × 103/µl) y basophils (0,0 – 0,0 ×103/µl). Erythrocyte

sedimentation rate (0,3 – 2,7 mm/h) and platelets (130 – 200 ×103/µl). The

results obtained for erythrocytes, leukocytes, erythrocyte sedimentation rate

and platelets are different to the reported by Gómez (1988).

Keywords: Cajamarca, erythrocytes, leukocytes.

6

ÍNDICE

DEDICATORIA

AGRADECIMIENTO

RESUMEN

ABSTRACT

CAPITULO I Página

INTRODUCCIÓN 1

OBJETIVOS 3

1. Objetivo General 3

2. Objetivos específico 3

HIPÓTESIS 3

CAPITULO II 4

MARCO TEÓRICO 4

1. Eritrocitos 4

1.1 Morfología. 5

1.2 Metabolismo de los eritrocitos 7

1.2.1 Reticulocitos: 8

1.3 Eritropoyesis 8

1.4 Destrucción eritrocitaria 10

2. Volumen globular aglomerado o hematocrito (VGA) 10

2.1 Microhematocrito 11

3. Hemoglobina 12

4. Valores corpusculares medios: 13

4.1 Concentración media de hemoglobina corpuscular

(CMHC)

13

4.2 Hemoglobina corpuscular media (HCM) 14

4.3 Volumen corpuscular medio (VCM) 14

5. Leucocitos 14

5.1 Neutrófilos 16

5.1.1 Función 16

5.1.2 Morfología 17

5.1.3 Variaciones de la morfología normal 17

7

a. Neutrófilos en banda. 17

b. Cantidad 18

5.2 Linfocitos 18

5.3 Monocitos 19

6.3.1 Función 20


5.4 Eosinófilos 21

6.4.1 Función 21

6.4.2 Cantidad 21


5.5 Basófilos 22

6.5.1 Función 23

6.5.2 Cantidad 23


6. Plaquetas 23

7. Velocidad de sedimentación 25

8. Cuadros de valores de referencia 27

8.1 Valores de Referencia para Cajamarca 27

Tabla N° 01 27

Tabla N° 02 28

Tabla N° 03 29

Tabla N° 04 30

Tabla N° 05 31

Tabla N° 06 31

8.2 Valores de Referencia de otros autores: 32

Tabla N° 07 32

Tabla N° 08 33

Tabla N° 09 34

Tabla N° 10 35

Tabla N° 11 35

CAPITULO III 36

MATERIALES Y MÉTODOS 36

1. Localización 36

1.1 Datos Meteorológicos. 36

8

2. Materiales 37

2.1 Material biológico 37

2.2 Material de campo 37

2.3 Material de escritorio 37

2.4 Material de laboratorio 37

2.5 Reactivos 38

3. Metodología 38

3.1 Selección de muestras: 38

3.2 Obtención de muestras: 39

3.3 Del Número de Muestras 39

3.4 Parámetros hematológicos por analizar. 39

3.5 Análisis estadístico: 40

CAPITULO IV

RESULTADOS 41

CAPITULO V

DISCUSIÓN 68

CAPITULO VI

CONCLUSIONES 78

CAPITULO VII

BIBLIOGRAFÍA 82

ANEXOS 85

1

CAPITULO I

INTRODUCCIÓN

La hematología veterinaria se ha convertido en los últimos años en una

ciencia que interesa cada día más a los médicos veterinarios en nuestro

país. Esto se debe por una parte al interés de los profesionales veterinarios

por aprender, y poder valerse de una herramienta diagnóstica tan práctica

como es la hematología y su aplicación en la patología clínica. Es el

hemograma, el examen complementario más solicitado por los veterinarios

como método de ayuda para resolver casos clínicos, realizar prequirúrgicos,

monitorear quimioterapias, entre otros.

Gómez (1988), reporta un estudio cuyo objetivo principal era establecer los

valores de referencia para caninos según el sexo (50 hembras y 50 machos)

sin distinción de edad en la ciudad de Cajamarca. Esta información ha

venido siendo usada por los profesionales Médicos Veterinarios durante sus

prácticas clínicas y en el diagnóstico de diferentes alteraciones en los

caninos de la ciudad de Cajamarca.

La presente investigación, pretende proporcionar una herramienta de ayuda

actualizada a los Médicos Veterinarios dedicados a la práctica de animales

de compañía, en el campo de la Hematología Veterinaria, haciéndose para

este fin un nuevo estudio hematológico en los caninos de la ciudad de

Cajamarca y usando métodos estudiados tradicionales, entendiéndose por

análisis tradicional a los métodos manuales que usan cámaras de conteo

como la Neubauer y pipetas de dilución. Donde los valores de referencia

2

hematológicos obtenidos en caninos de diferentes edades y sexo en el

detallado de la siguiente investigación difieren de los obtenidos en la

investigación hecha en el año 1988, los cuales presentan elevados

coeficientes de variación.

3

OBJETIVOS

Objetivo General

Determinar los valores hematológicos de referencia en caninos (Canis

lupus familiaris) de la ciudad de Cajamarca – 2012.

Objetivos Específicos

Determinar los valores de referencia hematológicos: recuento de

eritrocitos, hemoglobina, hematocrito, índices eritrocitarios: volumen

corpuscular medio (VCM), hemoglobina corpuscular media (HCM),

concentración de hemoglobina corpuscular media (CHCM), recuento

de leucocitos, fórmula leucocitaria relativa y absoluta, velocidad de

sedimentación y recuento de plaquetas, de acuerdo al sexo de los

caninos.

Determinar los valores de referencia hematológicos: recuento de

eritrocitos, hemoglobina, hematocrito, índices eritrocitarios: volumen

corpuscular medio (VCM), hemoglobina corpuscular media (HCM),

concentración de hemoglobina corpuscular media (CHCM), recuento

de leucocitos, fórmula leucocitaria relativa y absoluta, velocidad de

sedimentación y recuento de plaquetas, de acuerdo a la edad,

tomando en cuenta la clasificación dada por De Lima (2001):

Cachorros (3 meses – 1 año), jóvenes (1 año – 3 años) , adultos (3 –

7 años) y geriátricos (7 años – más).

HIPÓTESIS

Los valores de referencia hematológicos obtenidos en caninos de diferentes

edades y sexo en el presente proyecto son diferentes a los obtenidos en la

investigación hecha en el año 1988, los cuales presentan elevados

coeficientes de variación.

4

CAPITULO II

MARCO TEÓRICO

1. Eritrocitos

Su función es transportar oxigeno, la cual está mediada por la presencia

de hemoglobina dentro de ésta. Cuya membrana, citoesqueleto y

proceso metabólico asegura la supervivencia de la célula, contra la

presión de la circulación (Latimer, Mahaffey y Prasse, 2003).

Los eritrocitos también disponen de vías metabólicas (comunicación de la

monofosfato hexosa y metahemoglobina reductasa) que protegen a la

hemoglobina de la oxidación. La oxidación de la hemoglobina da lugar a la

metahemoglobina y/o formación de corpúsculos de Heinz (Rebar, 2000).

A medida que la célula envejece, disminuye la actividad glucolítica y la

célula se hace esférica. Los eritrocitos maduros pueden no tener

completa dotación de hemoglobina y teñirse ligeramente por deficiencia

de hierro o de proteínas (hipocromía) (Medway, 1973).

El eritrocito puede contener cuerpos Howell-Jolly, que son fragmentos de

ADN nuclear redondos, picnóticos, intensamente basófilos y se producen

en la cariorrexis de extrusión de los fragmentos. Se ven con frecuencia

en caninos, cerdos y gatos (Medway, 1973).

El número de eritrocitos circulantes se ve afectado por cambios en el

volumen plasmático, ritmo de eliminación o pérdida de eritrocitos,

5

contracción esplénica, secreción de eritropoyetina (EPO), y ritmo de

producción de la médula ósea (Rebar, 2000).

Entre los factores que afectan al recuento eritrocitario, así como la

concentración de hemoglobina y de otros constituyentes hemáticos, están:

la edad, el sexo, el ejercicio, estado nutricional, lactación, gestación,

volumen sanguíneo, estadio del ciclo estral, raza (en los caninos de raza

Akita los eritrocitos son siempre microcíticos), horas del día, temperatura

ambiente, altitud y factores climáticos. (Kirk, 1997; García, 1995)

El método más empleado es el recuento en cámara cuenta glóbulos o de

Neubauer, éste método tiene como limitación un alto porcentaje de error

(±8%), producido por variaciones de pipetas, cámaras y la distribución de

los eritrocitos en ella (Wittwer y Böhmwald, 1987).

1.1 Morfología.

Los eritrocitos tienen forma de disco bicóncavo con una marcada

zona central pálida y un tamaño de 6,0–7,0 µm (Latimer et al., 2003).

Los eritrocitos de los caninos sanos son de alrededor de 7µm de

diámetro (ligeramente más grandes que los felinos que tienen de 5,5

a 6 µm de diámetro) (Cowell, 2009).

Los eritrocitos maduros en los mamíferos no contienen ADN ni ARN.

Se compone de 65% de agua, 33% de hemoglobina y contiene

enzimas, coenzimas, carbohidratos, y diversos minerales como son:

P, S, Zn, K, Sr, Mn, Al, Ag, U, Na, Ca, Mg, Co, HCO3, PO4, además

de ADP, ATP, vitaminas, urea, acido úrico, creatina y creatinina. El

estroma es un complejo de lipoproteínas que mantiene la forma de

disco bicóncavo en la mayoría de los casos (Núñez y Bouda; 2007).

Los eritrocitos nucleados pueden ser más numerosos en cachorros,

pero el número empieza a decrecer rápidamente dentro de la primera

semana de vida y alcanzar los niveles adultos en aproximadamente

uno a dos meses de edad (Feldman, 2006).

6

Los cambios en las características morfológicas de los eritrocitos, se

llevan a cabo durante la maduración desde rubiblasto hasta eritrocito

maduro. Las células se hacen más pequeñas. El núcleo se hace más

pequeño y su cromatina es más agregada (Latimer et al., 2003).

En mamíferos, los reticulocitos y eritrocitos migran dentro del seno

venoso de la medula ósea a través del tránsito en el citoplasma de las

células endoteliales (Latimer et al., 2003).

Varias hormonas desempeñan un papel fisiológico en la regulación

del tamaño del eritrocito. Esto se comprueba con lo siguiente: tanto

en el hombre como en la rata, se ha observado que la extirpación de

las gónadas modifica el número de eritrocitos circulantes. Su número

aumenta en caninos hembras después de la extirpación de los

ovarios y disminuye en los machos castrados. La administración

parenteral de la hormona respectiva al individuo castrado produce el

regreso del número de eritrocitos a los niveles normales del sexo de

que se trate (Schalm, 1964).

Durante el examen microscópico, la morfología de los eritrocitos se

evalúa principalmente dentro de la monocapa, donde la distorsión por

artefactos producidos durante la preparación y las diferencias en

grosor influyen menos en la apariencia celular. Casi todas las

anormalidades morfológicas significativas de los eritrocitos se pueden

detectar con aumento de 40x o 50x, aunque algunas alteraciones

pueden necesitar un examen adicional a mayor aumento. Tanto en

canes como en gatos presentan una leve anisocitosis de eritrocitos y

pueden mostrar ocasionalmente células inmaduras policromatófilas

en las extensiones de sangre periférica (Cowell, 2009).

1.2 Metabolismo de los eritrocitos

El metabolismo es limitado después de la etapa de reticulocitos

porque los eritrocitos maduros carecen de mitocondrias para la

oxidación del metabolismo (Latimer et al., 2003).

7

El aumento primario en la producción de eritrocitos es raro

(policitemia vera) pero en animales en gran altitud puede ocurrir una

policitemia secundaria (Medway, 1973).

A grandes altitudes, cuando la cantidad de oxígeno del aire se

encuentra muy reducida, y no hay suficiente transporte de oxígeno a

los tejidos y los eritrocitos se producen tan rápidamente que su

número en sangre aumenta. Lo cual hace evidente que no es la

concentración de eritrocitos de la sangre lo que controla el ritmo de

producción de éstos, sino su capacidad funcional para transportar

oxígeno a los tejidos en relación con las demandas tisulares de este

elemento (García, 1995).

1.2.1 Reticulocitos:

Los reticulocitos de la mayoría de las especies permanecen en la

médula ósea por 2 a 3 días antes de liberarse, y por último

maduran en la sangre periférica o en el bazo (Latimer et al., 2003).

Los reticulocitos son eritrocitos inmaduros sin núcleo cuya malla

reticular no es visible con coloración de Romanovsky. El can y el

gato pueden tener normalmente un promedio de 0,5 a 1 % de

células reticuladas en la sangre periférica (Medway, 1973).

Los reticulocitos se pueden contar hasta en 10% en canes

durante los dos primeros meses de vida. Este número decrece

en los niveles de sangre de canes adultos aproximadamente a

partir de los 5 a 6 meses de edad (Feldman, 2000).

1.3 Eritropoyesis:

En mamíferos, la eritropoyesis ocurre de manera extravascular en la

medula ósea de los huesos; la cual tiene la capacidad de

incrementar la eritropoyesis y la producción de eritrocitos hasta siete

veces, lo cual es normal en humanos; se provee ésta estimulación si

es necesaria y si los nutrientes están presentes. Esta capacidad para

8

incrementar la producción varía con la especie animal. Esto es mayor

en aves y caninos; y menor en caballos (Latimer et al., 2003).

El principal factor que estimula la producción de eritrocitos es la

eritropoyetina, una hormona glucoproteica circulante cuyo peso

molecular es del orden de 34000 Daltons. En ausencia de

eritropoyetina, la hipoxia o bien no tiene efecto estimulante de la

producción de eritrocitos, o bien su efecto es muy pequeño. Por otra

parte, cuando funciona bien el sistema de la eritropoyetina la hipoxia

induce un gran aumento de la producción de esta hormona que, a su

vez, eleva la producción de eritrocitos hasta que desaparece la

hipoxia. (Guyton, 1991; Langley 1973).

La hematopoyesis se inicia en el saco vitelino, en el hígado, en el

bazo y en la médula ósea; en ésta última se va incrementando

gradualmente su actividad, y al nacimiento es el principal órgano

hematopoyético. Durante la vida postnatal, en la mayoría de los

mamíferos, la hematopoyesis se restringe a la médula ósea, mientras

que el hígado y el bazo son usualmente inactivos, pero mantienen su

potencial hematopoyético, el mismo que se activa al incrementarse

las necesidades de las células sanguíneas. La médula ósea roja

activa es reemplazada por la médula amarilla en animales adultos,

pero la hematopoyesis activa continúa a lo largo de la vida en los

huesos planos y en las epífisis de los huesos largos (Núñez y Bouda,

2007). En edad temprana, toda la cavidad medular es activa, pero en

el adulto solamente en los extremos de los huesos largos, esternón,

pelvis, costillas y cresta del ilion conservan tejido proliferante,

mientras que el resto de la médula se llena con células adiposas y

células reticulares en reposo (Medway, 1973).

En general los elementos sanguíneos son de mayor tamaño cuanto

más jóvenes son los animales y se vuelven más pequeños cuando

van envejeciendo, prueba de ello es la macrocitosis del feto y de los

recién nacidos hasta el primer o segundo mes de edad (Schalm, 1964)

9

Los factores que afectan el hematocrito, la concentración de

hemoglobina y el número de eritrocitos (Latimer et al., 2003):

a. El cambio en el aumento de eritrocitos en la circulación afecta a

los tres parámetros:

- Bajos valores pueden ocurrir en anemia. Disminución en los tres

parámetros pueden ser desproporcionados si el tamaño de la

célula o contenido de hemoglobina por célula también está

alterado.

- Incremento excesivo de eritrocitos (policitemia absoluta) causa

altos valores.

- Falsos valores elevados del hematocrito ocurren con

deshidratación y excitación inducida por contracción esplénica.

b. Cambios en el volumen del plasma afecta los tres parámetros,

entonces, la interpretación debe ser siempre hecha con

conocimiento de el estado de deshidratación del paciente:

- Deshidratación o transito de fluidos a los órganos viscerales

pueden incrementar los valores.

- Sobrerehidratación con fluidos parenterales pueden causar

una reducción en valores, simulando anemia.

1.4 Destrucción eritrocitaria

El promedio de la vida del eritrocito en la circulación varía con la

especie, en el caso del canino es de ciento diez días. A su vez, el

envejecimiento de los eritrocitos está acompañado por los cambios

en contenido enzimático y la estructura de la membrana celular que

hace a las células menos capaces para sobrevivir y por ende sujetos

a removerlos al bazo. Los eritrocitos viejos de un animal clínicamente

sano son removidos desde la circulación por dos formas.

Fagocitados por los macrófagos que es la vía principal. Y la otra

10

forma es la lisis intravascular con liberación de hemoglobina en el

plasma, lo cual es de menor ocurrencia (Latimer et al., 2003).

2. Volumen globular aglomerado o hematocrito (VGA)

Los eritrocitos por tener una densidad específica más elevada, se puede

determinar su volumen por el método del microhematocrito, cuyo

principio de centrifugar es el de obtener la máxima aglomeración de los

eritrocitos y que lo mínimo de plasma permanezca entre los ellos; con un

pequeño error inherente (+1%) (Benjamin, 1990; Schalm 1964).

Observando desde la parte superior hasta el fondo el siguiente orden

(Benjamín, 1990):

a) Plasma: capa amarillenta que se separa de las que contienen células.

b) Costra flogística: capa blanca o gris, en ocasiones gris rojiza, en la que

están contenidos trombocitos (la capa gris más superior de color

crema), leucocitos (capa gris), eritrocitos nucleados (cuando se

encuentran presentes, producen un tinte rojizo en la capa flogística,

donde pueden atraparse debido a su densidad específica, la cual es

menor que la de los eritrocitos maduros).

c) Eritrocitos: capa de color rojo oscuro que se separa de la capa

flogística por medio de una línea oscura producida por la reducción de

la hemoglobina al contacto con los leucocitos.

Los animales muy jóvenes, debido al rápido crecimiento de su espacio

vascular, tienen valores relativamente bajos de hematocrito. Debido a

que los eritrocitos fetales son sustituidos por eritrocitos adultos, los

animales en periodo de crecimiento inicial tienen mayor anisocitosis,

policromasia y eritrocitos nucleados comparados con animales

maduros (Cowell, 2009).

11

El valor de hematocrito varía ampliamente entre las especies y se halla

también sujeto a variaciones en cuanto a la edad y sexo; también se

observan variaciones del hematocrito entre las diferentes razas con el

caso del rango de referencia del Greyhound es más alto que para otras

razas 49 a 65 % y otros canes han sido determinados con incrementos

fisiológicos del hematocrito como el Caniche, Boxer, Dachshund y

Chihuahua (Kraft y Dürr, 2000).

El hematocrito en cachorros que se encuentra dentro de los intervalos

de referencia o bajo es por una persistente reticulocitosis. Por esta

razón, se podría respaldar que los canes jóvenes tengan menos

porcentaje de hematocrito (Latimer 2003).

2.1 Microhematocrito

Las ventajas del microhematocrito sobre el método de Wintrobe son:

1) Valores de volumen globular más exactos y constantes; 2) El

tiempo necesario para todo el procedimiento es inferior a cinco

minutos, y 3) La cantidad de sangre requerida es mínima, lo cual

permite el empleo del método con sangre extraída por punción aun en

la vena marginal de la oreja (Schalm, 1964).

La obtención del volumen globular aglomerado (VGA) mediante la

prueba del microhematocrito constituye la prueba aislada más útil en

hematología por la información que entrega, su facilidad, costo y

exactitud. Con éste examen además del valor del VGA se obtiene una

apreciación del número de leucocitos, considerando el grosor de la

costra flogística; además se aprecia el índice ictérico o lipemia en el

color del plasma (Wittwer y Böhmwald, 1987).

Además, el plasma obtenido por el método del microhematocrito

puede ser usado para otros análisis rutinarios: concentración de

proteína en plasma usando refractometría. Refiriendo que el plasma

en caninos es claro, así como la fibrina plasmática también medida

por refractometría. (Latimer et al., 2003).

12

3. Hemoglobina

La hemoglobina absorbe oxígeno contenido en el aire de los pulmones

con el que, forma oxihemoglobina, sustancia que con facilidad cede su

oxígeno a los tejidos con los que entra en contacto. Y su mayor

formación ocurre en la fase del eritrocito denominada normablasto

ortocromático antes de la formación de reticulocito. (Kraft y Dürr, 2000).

La molécula de hemoglobina consta de protoporfirina, globina natural y

hierro ferroso. Su contenido en hierro es de 0,335% o 3,35 mg/gr de

hemoglobina. La capacidad de oxígeno es de 1,36 c.c. por gramo de

hemoglobina (Schalm, 1964).

La hemoglobina del gato es más susceptible a la oxidación que la del

canino ya que contiene un alto porcentaje de aminoácidos con sulfuros

que se oxidan más fácilmente. Así, la formación de cuerpos de Heinz y la

anemia hemolítica por cuerpos de Heinz se presenta con mayor facilidad

en gatos que en canes (Rebar, 2000).

En el canino, el valor normal de hemoglobina generalmente aceptado es

de 12 a 17 gr/µl de sangre (Schalm, 1964).

El dosaje de hemoglobina determina la cantidad de hemoglobina en

gramos, presentes en un decilitro de sangre (g/dl), existen variaciones del

dosaje de hemoglobina en relación al sexo y edad ya que en el canino

estos valores comienzan a disminuir a partir del nacimiento, seguidas de

un incremento gradual hasta los cuatro meses (Kraft y Dürr, 2000).

La absorción del hierro, sustancia importante para la formación de

hemoglobina, se realiza desde la dieta, lo cual depende de la edad,

especie, reservas de hierro, capacidad de eritropoyesis, inflamaciones y

preñez, como también la cantidad y la forma química ingerida. Un

pequeño porcentaje de hierro en la dieta es absorbido en animales

adultos normales. La absorción del hierro ocurre a través de los

enterocitos del duodeno y el yeyuno proximal. El hierro puede ser

13

tomado por los enterocitos como iones libre o como grupo heme por

diferentes caminos (Harvey, 2012).

4. Valores corpusculares medios:

4.1 Concentración media de hemoglobina corpuscular (CMHC):

Representa la concentración media de hemoglobina en los eritrocitos

(Aguiló, 2001).

Sus valores son afectados por el tamaño de los eritrocitos, de suerte

que es posible hallar valores normales de HCM en los macrocitos

hipocrómicos. Por eso la concentración media de hemoglobina

corpuscular es una mejor medida de hipocromía (Medway, 1973).

La CMHC y la HCM, deben compararse con la morfología expuesta

por un buen frotis de la misma sangre, el cual mostrará macrocitos,

microcitos o hipocromía. El eritrocito no puede contener más de 36%

de hemoglobina, pero puede parecer hipercrómico en un frotis si se

ha convertido en esferocito y ha perdido la ordinaria palidez central

producida por su biconcavidad (Medway, 1973).

4.2 Hemoglobina corpuscular media (HCM):

Expresa el peso promedio de hemoglobina en los eritrocitos. Se obtiene

dividiendo la hemoglobina por el número de eritrocitos (en millones) y se

multiplica por 10 expresándose en picogramos (Aguiló, 2001).

4.3 Volumen corpuscular medio (VCM):

Expresa el volumen promedio del eritrocito individual, es una forma de

calcular el tamaño del eritrocito (Benjamin, 1990).

El VCM nos puede indicar la presencia de macrocitosis y microcitosis,

se puede apreciar a partir del examen microscópico de una extensión

en lámina porta. También se puede calcular a partir del hematocrito y

el recuento de eritrocitos (Aguiló, 2001).

14

5. Leucocitos

Son unidades móviles del sistema retículo endotelial, se forman en parte

en la médula ósea (granulocitos), y en parte en los diversos órganos

linfógenos, incluyendo ganglios linfáticos, bazo, timo, amígdalas y

diversos restos linfáticos del intestino (linfocitos y monocitos), pero

después de producidos son transportados por la sangre a diferentes

partes de la anatomía, donde ejercerán sus funciones. El valor

fundamental de los leucocitos consiste en que, son transportados

específicamente a zonas donde hay inflamación intensa, proporcionando

así una defensa rápida y enérgica contra cualquier posible agente

infeccioso (Guyton, 1991).

Para los caninos, suelen presentarse grandes fluctuaciones en el

recuento de leucocitos, como en el caso de la edad ya que el recuento

de leucocitos en el cachorro recién nacido tiene una cuenta leucocítica

relativamente alta (16.5 × 103/µl) que disminuye rápidamente durante los

primeros días de vida y comienza a incrementarse a partir de la primera

semana después del nacimiento, y hasta aproximadamente los sesenta

días de vida, para después estabilizarse, siendo el incremento en base a

los linfocitos, lo que se cree que está relacionado con la formación de

anticuerpos. Disminuye en la segunda semana de edad, posterior

presenta un incremento gradual, la cuenta leucocítica disminuye con la

edad a una media de 13 ×103/µl a los sesenta días hasta una media de

10 ×103/µl a los cuatro años y medio de edad. En lo que respecta a la

raza, en el canino se describen variaciones, como la neutropenia cíclica

del Collie Gris plateado, la eosinofilia del Pastor Alemán y la basofilia en

el Basenji joven. En cuanto al sexo y estado fisiológico se encuentra una

eosinofilia de la perra en celo y una leucocitosis marcada durante la

preñez y una gran variedad de otras condiciones. Por tanto, los

recuentos totales de leucocitos para que sean significativos clínicamente,

deben desviarse considerablemente de los valores normales al objeto de

que un clínico pueda valorar un proceso de enfermedad (Wittwer y

Böhmwald, 1987; Benjamin, 1990; Serrano, 2011).

15

Para el recuento se ha empleado el método de la cámara de Neubauer,

método simple, pero que tiene un coeficiente de variación muy amplio

(±12%) (Wittwer y Böhmwald, 1987).

En caninos, gatos y caballos usualmente tienen más neutrófilos que

linfocitos en sangre. A diferencia que, los linfocitos son usualmente más

numerosos en cerdos, cabras y ovejas, roedores. El número de

neutrófilos y linfocitos cambian con la edad después del nacimiento. El

número de neutrófilos a linfocitos tienen a ser más alto al nacimiento que

luego, en parte por el incremento de cortisol en sangre al nacimiento. El

cortisol causa en la circulación el incremento de neutrófilos y la

disminución del número de linfocitos. Dentro de una semana, el número

de neutrófilos disminuye y el número de linfocitos son iguales. Y a las

tres semanas el número de linfocitos es superior a los neutrófilos

(Harvey, 2012).

El número bajo de monocitos, eosinófilos y basófilos están presentes en

mamíferos normales. El número de basófilos son especialmente bajos en

caninos y gatos, incluso no son vistos en animales sanos (Harvey, 2012).

A diferencia de los eritrocitos, los leucocitos no están expuestos a un

promedio de vida en sangre, sino que responden en forma aleatoria de

acuerdo a una estimulación quimiotáctica. A excepción de de los

linfocitos que recirculan, esto hizo pensar que los leucocitos no retornan

a la circulación después de la migración a los tejidos. Pero existe

evidencia que algunos eosinófilos regresan a la circulación vía linfática y

que, en ausencia de inflamación, algunos monocitos pueden retornar de

la médula ósea (Harvey, 2012).

5.1 Neutrófilos

Los neutrófilos son producidos en la medula ósea, se liberan a la

sangre, circulan brevemente (vida media de 5 a 10 horas), y migran a

los espacios tisulares o a las superficies epiteliales como las que

existen en el sistema respiratorio, digestivo o urogenital. La

16

producción es continua para abastecer la constante demanda de

neutrófilos en los tejidos y para mantener un compartimiento (“pool”)

circulante en la sangre (Rebar, 2000; Harvey, 2012).

La medula ósea precisa aproximadamente de 4 a 6 días para la

formación de nuevos neutrófilos, y es capaz de mantener en reserva

el aporte de neutrófilos maduros para cinco días (Rebar, 2000).

5.1.1 Función

Los neutrófilos constituyen la principal defensa contra la

invasión de los tejidos por microorganismos. Los neutrófilos

eliminan bacterias pero también pueden dañar o participar en

la destrucción de hongos o virus (Rebar, 2000).

Los neutrófilos se congregan en los puntos donde se produce

inflamación o infección bacteriana por un proceso de migración

direccional o quimiotaxis (Rebar, 2000).

5.1.2 Morfología

Los neutrófilos circulantes normales presentan las siguientes

características (Rebar, 2000):

Tamaño: 12 - 15 µm en diámetro.

Núcleo lobulado o parcialmente segmentado con cromatina

densa de coloración purpura oscuro. Citoplasma rosa pálido o

azul claro, finamente granular, liso.

5.1.3 Variaciones de la morfología normal

Si la sangre está un tiempo excesivo en EDTA antes de realizar las

extensiones se pueden producir artefactos en el citoplasma, como

la presencia de algunas vacuolas pequeñas y pálidas. Los

neutrófilos presentan 2 a 4 lobulaciones nucleares. La presencia de

cinco o más lobulaciones indican hipersegmentación, un cambio de

17

envejecimiento, que se produce tras una exposición prolongada a

EDTA, terapia con glucocorticoides, hiperadrenocorticismo, o

neutrofilias asociadas con infecciones crónicas (Rebar, 2000).

a. Neutrófilos en banda

Los Neutrófilos en banda, que se pueden ver en bajo

número de sangre periférica de caninos y gatos sanos,

tienen un núcleo alargado o ligeramente retorcido con

formas en U o J y con menos condensación de cromatina

que los Neutrófilos maduros. La lobulación nuclear está

ausente o pobremente definida (Cowell, 2009).

5.1.4 Cantidad

El número de neutrófilos cuantificados en el hemograma

depende de los cambios en la producción y liberación por la

medula ósea, el intercambio entre el compartimiento marginal y

circulante, y/o el ritmo de migración tisular (Rebar, 2000).

5.2 Linfocitos

Los linfocitos circulantes son muy numerosos en animales jóvenes y

declinan al aumentar la edad. El linfocito de vida larga es la principal

célula de los ganglios linfáticos (Medway, 1973).

Varían de tamaño en sangre periférica de canes y gatos, con

predominio de células pequeñas. Algunos linfocitos tienen unos pocos

gránulos citoplasmáticos variables en tamaño que suelen estar

concentrados dentro de una única área celular perinuclear (Cowell, 2009).

A la vista microscópica se distinguen los pequeños linfocitos y los

grandes linfocitos. Un núcleo de cromatina obscura en forma de

grumos que se tiñen de azul (Medway, 1973).

La designación de linfocitos pequeños, de tamaño medio y grande,

carecen de significado biológico. La mayoría de los linfocitos de la

corriente sanguínea son del tipo pequeño, generalmente de unos 6 a

18

9 µm de diámetro, con un núcleo grande y denso rodeado por un

ribete de citoplasma azul pálido. Frecuentemente el núcleo presenta

una pequeña hendidura en uno de los lados. Los grandes linfocitos

(de 12 a 15 µm de diámetro), tienen mucho más citoplasma y el

núcleo es menos denso que el de los pequeños linfocitos; y pueden

existir gránulos azurófilos en la hendidura nuclear (Delman, 1993).

El citoplasma forma un ribete azul alrededor del núcleo y puede estar

restringido a un lado. En la sangre periférica pueden aparecer formas

más jóvenes de la serie linfocítica, semejantes en tamaño a los grandes

linfocitos (Medway, 1973).

El recuento de linfocitos relativamente elevados también es común en

animales jóvenes y hay que sospechar de linfopenia en gatitos y

cachorros menores de 6 meses de edad cuando el recuento está por

debajo de 2000 células/µl. Las elevaciones transitorias de los

linfocitos por encima de los rangos de referencia son normales en

animales excitados o que han hecho ejercicio intenso, sobre todo si

son jóvenes. Esta respuesta inducida por la adrenalina también puede

resultar en un incremento temporal en sangre periférica de otros tipos

de leucocitos en pacientes sanos. Al menos en una raza canina, el

galgo, los valores hematológicos se salen ligeramente de los rangos

de referencia usados normalmente para la especie. Aunque esto es

una situación habitualmente fisiológica que hay que considerar,

explica menos del 5% de los valores fuera de rango para un solo

parámetro hematológico (Cowell R., 2009).

5.3 Monocitos

Se originan en la medula ósea. A diferencia de los granulocitos, se

liberan a la circulación periférica todavía como células inmaduras y se

transportan a los tejidos en donde pueden diferenciarse en

macrófagos, células epiteloides, o células inflamatorias gigantes

multinucleadas (Rebar, 2000).

19

No existe un compartimento de almacenamiento medular para los

monocitos. Los monocitos y sus precursores (monoblastos,

promonocitos) se encuentran en un número bajo y puede llegar a ser

difícil identificarlos (Rebar, 2000).

5.3.1 Función

La evolución continua de monocito a macrófago representa la

segunda línea de defensa del sistema fagocítico circulante (los

neutrófilos constituyen la primera). Las funciones específicas

del macrófago incluyen: fagocitosis, regulación de la respuesta

inflamatoria por medio de la liberación de mediadores

inflamatorios (factores quimiotácticos, prostaglandinas,

complemento, etc.) (Rebar, 2000).

5.3.2 Morfología

Los monocitos caninos y felinos son más grandes que los

neutrófilos y de tamaño similar a los eosinófilos y basófilos. El

núcleo varía enormemente en morfología, adoptando desde

formas alargadas en “U”, que recuerdan a los neutrófilos en

banda, a formas multilobuladas irregulares. La cromatina

nuclear de los monocitos es generalmente distinta tanto de

granulocitos maduros como inmaduros, y tienen forma de

cordón, con solo unos pocos agregados aislados de

heterocromatina (Cowell, 2009).

De acuerdo a su tamaño, relativamente grande, los monocitos

se pueden concentrar a lo largo del borde difuminado, y su

proporción en el recuento diferencial de leucocitos en la

extensión sanguínea puede ser infraestimado (Cowell, 2009).

Los monocitos circulantes presentan las siguientes

características: de un tamaño de 15 - 20 µm, con núcleo en

forma irregular, cromatina ligeramente reticulada, citoplasma

abundante, de gris a azul grisáceo. Debido al manejo de la

20

muestra pueden producirse variaciones en la morfología

normal. Los monocitos de extensiones realizadas a partir de la

sangre fresca sin anticoagulante suelen ser redondos y no

contienen vacuolas citoplasmáticas (Cowell, 2009).

Los monocitos, de extensiones realizadas a partir de sangre con

EDTA suelen presentar los márgenes regulares con pseudópodos

y contienen vacuolas citoplasmáticas (Rebar, 2000).

5.4 Eosinófilos

Los eosinófilos se producen en la medula ósea de una forma similar a

los neutrófilos. Son reconocibles en el estadio de mielocitos por la

presencia de gránulos eosinófilos específicos (Rebar, 2000).

5.4.1 Función

Constituyen el principal componente de las reacciones de

hipersensibilidad sistémicas. Cuando los antígenos de

parásitos o alérgenos se unen a las IgE específicas de los

mastocitos, estimulan la degranulación de éstos y se libera así

histamina que atrae a los eosinófilos. Son los principales

responsables en eliminar trematodos y nematodos que

presenten IgG o complemento unido a su superficie. Tienen

también una capacidad fagocítica o bactericida limitada y

pueden desempeñar cierto papel en la destrucción de células

neoplásicas (Rebar, 2000).

5.4.2 Cantidad

El número de eosinófilos presentes en la circulación refleja el

equilibrio existente entre producción medular y demanda o

consumo tisular. Una amplia variedad de enfermedades se

caracterizan por una marcada respuesta inflamatoria

eosinofílica en el tejido. Existe una considerable variación de

los intervalos de normalidad para eosinófilos según el área

21

geográfica. Siempre que sea posible es preferible emplear los

valores de referencia generados de animales residentes en la

región (Rebar, 2000).

5.4.3 Morfología

Los eosinófilos, son ligeramente más grandes con un tamaño de

12-20 µm de diámetro, parecido o ligeramente mayor que un

neutrófilo, se encuentran normalmente en números muy bajo en las

extensiones sanguíneas de caninos y gatos sanos. Existiendo

diferencias morfológicas marcadas entre los eosinófilos de las

diferentes especies (Rebar, 2000).

Su núcleo es segmentado, pero suele ser menos lobulado que

el de los neutrófilos y normalmente se divide únicamente en

dos lóbulos bien diferenciados. El citoplasma de los eosinófilos

contiene gránulos prominentes de color naranja a rosa. Y, en

ocasiones, el eosinófilo canino puede contener un único

gránulo grande y redondo que recuerda en tamaño y color a un

eritrocito. Aunque también los gránulos son de tamaño y

número variable (Rebar, 2000, Cowell, 2009).

5.5 Basófilos

Los basófilos se producen en la medula ósea y comparten con los

mastocitos una célula progenitora común. Los basófilos no se

desarrollan hasta formar un mastocito, pero los dos tipos celulares

presentan funciones similares (Rebar, 2000).

Los basófilos inmaduros pueden reconocerse en el estadio de

mielocito por sus característicos gránulos secundarios. Éstos circulan

durante unas pocas horas en la sangre y migran hacia los tejidos

donde pueden permanecer durante varias semanas (Rebar, 2000).

Son las más grandes células granulocíticas maduras y son infrecuentes

en la sangre periférica de caninos y gatos; raramente se encuentran en

22

frotices sanguíneos de caninos normales. Los basófilos caninos

pueden carecer ocasionalmente de gránulos visibles, pero se

reconocen por su tamaño, su morfología celular y su tinción

citoplasmática (Feldman, 2000; Cowell, 2009).

5.5.1 Función

Los gránulos de los basófilos contienen histamina y heparina.

La histamina liberada por los basófilos y los mastocitos juegan

un papel primordial en la reacción de hipersensibilidad

inmediata como la que ocurre en la urticaria, anafilaxis y alergia

aguda. La heparina inhibe la coagulación, con una importante

función en la inflamación (Rebar, 2000).

5.5.2 Cantidad

Los basófilos constituyen un porcentaje muy bajo en la

población total de leucocitos circulantes. En muchos caninos y

gatos, raramente se llegan a observar basófilos en un recuento

diferencia manual de leucocitos (Rebar, 2000).

5.5.3 Morfología

El basófilo canino, tiene un tamaño de 12 – 20 µm en diámetro,

similar o ligeramente mayor que un neutrófilo (Rebar, 2000).

El núcleo de los basófilos aparece en el examen microscópico

menos densamente teñido y tiene menos lobulaciones y más

alargadas, con apariencia de cinta. El citoplasma es

moderadamente azul grisáceo a ligeramente morado y

normalmente contiene gránulos. En los caninos, los gránulos

basófilos son menores en número y con tinción de azul oscuro a

metacromática. (Cowell, 2009)

23

6. Plaquetas

Las plaquetas se constituyen a partir del citoplasma de los

megacariocitos mediante la formación de una estructura conocida como

proplaqueta, esta estructura se fragmenta en múltiples plaquetas. Las

plaquetas resultantes son células pequeñas de forma discoide que no

tienen núcleo y poseen citoplasma rosado con presencia ocasional de

gránulos púrpura. (Nuñez y Bouda, 2007)

Las plaquetas aparecen en gatos y caninos de forma oval, redonda o con

forma de bacilo en las preparaciones de sangre periférica. Su citoplasma,

va de color gris claro a pálido, habitualmente ante la coloración tienen un

agregado central de gránulos eosinofílicos a metacromáticos. Las

plaquetas varían en tamaño desde alrededor de un cuarto a dos tercios

de diámetro de un hematíe en la sangre canina y en la sangre felina,

pueden ser incluso más grandes en algunas ocasiones. Las plaquetas

parcialmente activadas tienen una apariencia como de araña con unos

finos procesos citoplasmáticos que se extienden desde un pequeño

cuerpo celular esférico. Las plaquetas también pueden aparecer

agregadas o aglutinadas en una masa amorfa en las preparaciones, un

hallazgo particularmente común en las extensiones de sangre felina. Las

plaquetas agregadas y aglutinadas suelen ser empujadas hacia el borde

difuminado, lo que puede resultar en una falsa impresión de

trombocitopenia si solo se examina la monocapa de la preparación

(Cowell, 2009).

Las plaquetas son totalmente funcionales desde el nacimiento y su

número es similar al de los adultos (Serrano, 2001).

La reserva de trombocitos es muy limitada en los caninos. La extracción

de todos los trombocitos de dos a tres volúmenes totales de sangre

termina en grave trombocitopenia. Dos o tres días después de la

depleción se nota aumento progresivo en los trombocitos y este continúa

hasta que se alcanzan los niveles normales seis o siete días después.

24

Los trombocitos son extraídos de la circulación por las células

reticuloendoteliales. Mantienen la integridad capilar ocluyendo pequeñas

rupturas en las paredes vasculares (Medway, 1973).

A veces las plaquetas aparecen en masas. Si se sobreponen a un

eritrocito pueden confundirse con un parásito del glóbulo rojo. Como

estas partículas de citoplasma son fragmentos desprendidos por

gemación del megacariocito, se presentan con gran variación en forma y

tamaño (Medway, 1973).

En los extendidos sanguíneos de la mayoría de los animales domésticos

normalmente tienen un promedio entre 10 a 30 plaquetas bajo el objetivo

de 100X. El número de plaquetas puede estimarse multiplicando el

promedio por 15,000 o 20,000 para conseguir el número aproximado de

plaquetas por microlitro de sangre. (Harvey, 2012)

El recuento indirecto de plaquetas en un frotis teñido, se considera una

técnica inexacta, pero más práctica y útil en clínica. Puesto que

normalmente se requiere de una estimación, lo que se puede hacer al

mirar el frotis cuando se realiza la fórmula diferencial de leucocitos,

apreciando si las plaquetas están normales, aumentadas y disminuidas.

(Benjamin, 1990)

7. Velocidad de sedimentación eritrocitaria:

La rapidez con que los eritrocitos se precipitan y forman una masa de

eritrocitos sedimentados, dejando sobre ellos un plasma transparente,

depende de la especie animal estudiada (Medway, 1973).

La propensión de las células a formar agregados aumenta la velocidad

de sedimentación. Esta tendencia se ve cuando hay infección aguda

generalizada o considerable destrucción de tejido por la inflamación o por

neoplasma. La aglomeración de las células hemáticas reduce el área

superficial de la masa celular. A la vez aumenta la cantidad de

fibrinógeno y de globulinas. En la hipercolesterolemia y en la preñez es

25

donde se encuentra aumentada la velocidad de sedimentación. Los

eritrocitos pequeños (microcitos) tienen menor velocidad de

sedimentación que los macrocitos. Se ha observado que los macrocitos

son con frecuencia reticulocitos y que éstos y los eritrocitos nucleados no

se aglomeran (Medway, 1973).

El índice de sedimentación debe interpretarse junto con el volumen de

eritrocitos conglomerados (VGA). La sedimentación lenta es de esperar

cuando es grande la masa de eritrocitos, porque el exceso de células

dificulta el movimiento del plasma. Las grandes velocidades de

sedimentación se ven en las anemias, que también pueden mostrar

sedimentación difásica. Y la determinación de la velocidad de

sedimentación no es específica y tiene aplicación clínica al caballo, al

canino y al gato. Cuando la sedimentación de los eritrocitos es rápida,

indica un proceso patológico y el valor de la velocidad de sedimentación

es en cierto grado una medida de la gravedad de la enfermedad

(Medway, 1973).

El número de eritrocitos por unidad de volumen de sangre, así también

cuando el hematocrito está aumentado tienen influencia sobre la

velocidad de sedimentación. Esta es inversamente proporcional al

número de eritrocitos. Por lo tanto, cuanto menor sea el número de

eritrocitos en condiciones de salud varían mucho, y en un mismo animal

el número de células por unidad de volumen sanguíneo es diferente de

un día a otro, según el estado del equilibrio hídrico, es importante

comparar la velocidad de sedimentación observada con la que

corresponde al volumen globular del caso correspondiente (Schalm,

1964; Benjamin, 1990).

Cuando hay numerosos reticulocitos o formas inmaduras de eritrocitos se

advierte en la prueba de la sedimentación. Los reticulocitos no entran en

la formación de pilas globulares y, por lo tanto, se distribuyen en la zona

plasmática (Schalm, 1964).

26

8. Cuadros de valores de referencia

8.1 Valores de Referencia para Cajamarca

Tabla N° 01: Valores hematológicos de la serie roja encontrados en 50

caninos hembras de la ciudad de Cajamarca (Gómez, 1988)

CONSTANTES

HEMATOLÓGICAS PROMEDIO D.S. C.V. %

VALORES

EXTREMOS

Eritrocitos (106/uL) 6,4 0,85 13,29 4,89 – 8,69

Hemoglobina (g/dl) 15,02 2,09 13,92 12,1 – 18,8

VEE. (L/L) 0,43 0,04 11,24 0,36 – 0,54

VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN

(mm/30 minutos) 2,17 2,32 106,9 0 – 8

(mm/60 minutos) 5,58 4,68 83,94 1 – 18

VALORES HEMATIMÉTRICOS

V.C.M. (fl.) 67,81 3,85 5,69 61 – 75,6

H.C.M (pg.) 23,4 1,41 6,03 21,2 – 26,3

C.H.C.M. (g/dl. de ery.) 64,65 1,42 4,10 31,6 – 36,8

Donde:

VEE = Volumen de eritrocitos empaquetados

D.S.: Desviación estándar

C.V.: Coeficiente de variabilidad

V.C.M.: Volumen corpuscular medio

H.C.M.: Hemoglobina corpuscular media

C.H.C.M.: Concentración de hemoglobina corpuscular media

27

Tabla N° 02: Valores hematológicos de la serie roja encontrados en

50 caninos machos de la ciudad de Cajamarca

(Gómez, 1988)

CONSTANTES


VALORES

EXTREMOS

Eritrocitos (106/uL) 6,7 1,01 15,18 5,2 – 8,6

Hemoglobina (g/dl) 15,38 2,97 19,32 11,0 – 18,8

VEE. (lt/lt) 0,44 0,05 12,43 0,36 – 0,52


(mm/30 minutos) 1,22 1,32 108,6 0,0 – 4,0

(mm/60 minutos) 4,75 4,73 99,77 1,0 – 20,0


V.C.M. (fl.) 67,13 4,04 6,02 60,0 – 76,9

H.C.M (pg.) 23,3 1,37 5,8 20,8 – 26,6

C.H.C.M. (g/dl. de ery.) 34,78 1,77 5,10 30,55 – 36,6

Donde:







28

Tabla N° 03: Valores hematológicos de la serie roja encontrados en

100 caninos de ambos sexos de la ciudad de

Cajamarca (Gómez, 1988)

CONSTANTES


VALORES

EXTREMOS

Eritrocitos (106/uL) 6,5 0,94 14,47 4,89 – 8,69

Hemoglobina (g/dl) 15,29 2,15 14,12 9,65 – 18,8

VEE. (lt/lt) 0,44 0,05 11,78 0,36 – 0,54


(mm/30 minutos) 1,69 1,94 115,23 0,36 – 0,54

(mm/60 minutos) 5,00 4,46 89,25 1,00 – 20,0


V.C.M. (fl.) 67,47 13,16 19,50 60,0 – 76,9

H.C.M (pg.) 23,3 1,38 5,97 20,8 – 26,6

C.H.C.M. (g/dl. De ery.) 34,71 1,37 3,95 30,55 – 36,6

Donde:







29

Tabla N° 04: Valores de las constantes hematológicas de la serie

blanca en 50 caninos hembras de la ciudad de

Cajamarca. (Gómez, 1988)

CONSTANTES


VALORES

EXTREMOS

Leucocitos (mil/µl) 16,53 3,85 23,20 9,65 – 24,15

Neutrófilos abastonados 0,88 1,00 113,96 0,00 – 4,0

Neutrófilos segmentados 59,18 1,98 3,35 53,0 – 63,0

Eosinófilos 17,18 2,63 15,31 14.0 – 23,0

Basófilos 0,02 0,14 707,10 0,0 – 1,0

Monocitos 3,46 0,50 14,45 2,0 – 4,0

Linfocitos 19,26 2,10 10,24 16,0 – 23,0

Donde:



30

Tabla N° 05: Valores de las constantes hematológicas de la serie

blanca en 50 caninos machos de la ciudad de Cajamarca.

(Gómez, 1988)

CONSTANTES


VALORES

EXTREMOS



Neutrófilos segmentados 59,34 1,67 2,82 36,0 – 62,0

Eosinófilos 17,4 2,11 12,17 14.0 – 21,0

Basófilos 0,0 0,0 0,0 0,0 – 0,0

Monocitos 3,38 0,48 14,36 3,0 – 4,0

Linfocitos 18,88 1,59 8,46 16,0 – 22,0

Tabla N° 06: Valores de las constantes hematológicas de la serie blanca de

los caninos muestreados en la ciudad de Cajamarca (Gómez,

1988).

CONSTANTES


VALORES

EXTREMOS



Neutrófilos segmentados 59,25

Donde:



31

8.2 Valores de Referencia de otros autores:

Tabla N° 07: Valores hematológicos promedio y valores de referencia

de la población total del perro sin pelo del Perú y según

sexo, tamaño y edad en las provincias de Piura, Sullana

Y Talara (Choquehuanca, 2008)

PARÁMETRO

POBLACIÓN

Eritrocitos 106/µl

Hematocrito %

Hemoglobina g/dl

Leucocitos 103/µl

Plaquetas 103/µl

POBLACIÓN TOTAL

(4.22 – 7.74) [5.98]

(30.1 – 56.2) [43.2]

(10.1 – 19.6) [14.9]

(7 – 20.1) [13.5]

(103 – 353) [228]

SEGÚN SEXO

Macho (3.91 - 8.16)

[6.04] (27.5-60.1)

[43.8] (9.1-20.6)

[14.8] (7,1-19,8)

13,5 (86-355)

[220]

Hembra (4.41-7.43

[5.92] (31.7-53.4)

[42.6] (10.7-19.1)

[14.9] (7.5-19.7)

[13.6] (131-339)

[235]

Significancia (p < 0.05)

0.540 0.403 0.911 0.821 0.582

SEGÚN TAMAÑO

Pequeño (4.05-8.31)

[6.18] (30.1 – 61.3)

[45.7] (10.8 – 20.5)

[15.6] (7.9 – 23.3)

[13.1] (91 – 344)

[217]

Mediano (4.41 – 7.71)

[6.06] (30.3-56.2)

[43.3] (10.0-20.0)

[15] (7.7-18.6)

13.1 (92-347)

[220]

Grande (4.30-7.20)

[5.75]

(30.7-53.4)

[42]

(10.5-18.0)

[14.3]

(7.3-21.9)

[14.6]

(99-400)

[249]


0.269 0.373 0.247 0.139 0.134

SEGÚN EDAD

< 1 año (4.04-7.27)

[5.66]

(28.7-54.8)

[41.8]

(8.6-20.0)

[14.3]

(8.5-18.0)

[13.2]

(112-361)

[237]

1-7 años (4.24-7.82)

[6.03] (29.5-57.5)

[43.5] (9.9-20.0)

[14.9] (6.7-21.0)

[13.9] (93-356)

[224]

> 7 años (4.48-8.47)

[6.48] (27.6-61.2)

[44.4] (10.1-22.6)

[16.4] (8.4-15.1)

[11.7] (95-357)

[226]


0.115 0.569 0.211 0.238 0.726

( ): Límites [ ]: Promedio

32

Tabla N° 08: Valores relativos de referencia y promedio de la formula

leucocitaria diferencial de la población total del perro sin pelo

del Perú y según sexo, tamaño y edad en las provincias de

Piura, Sullana Y Talara (Choquehuanca, 2008)

PARÁMETRO

POBLACIÓN

Neutrófilos segmentados

%

Neutrófilos abastonados

%

Linfocitos %

Monocitos %

Eosinófilos %

Basófilos %

POBLACIÓN TOTAL (54 – 87.2)

[70.6] (0.3 – 4.6)

[2.4] (10.4 –32.4)

[21.4] (0.8 – 8.1)

[4.4] (0 – 6)

[3] 0 0

SEGÚN SEXO

Macho (53.3-88.3)

[70.8] (0-4) [2]

(9.3-33.3) [21.3]

(0.2-8.9) [4.5]

(2-6.7) [3.2]

0 0

Hembra (52.1-88.8)

[70.5] (0.7-5.3)

[3] (9.9-32.1)

[21] (1.5-7.2)

[4.4] (0-6) [2.9]

0 0

Significancia (p<0.05)

0.865 0.149 0.605 0.707 0.435 -

SEGÚN TAMAÑO

Pequeño (66.6-82.2)

[74.4] (0.5-7.5)

[4] (12.2-23.9)

[18.1] (1.9-6.5)

[4.2] (0-6.2) [2.5]

0 0

Mediano (53.2-89.3)

[71.2] (0.6-4.1)

[2.4] (9.4-33.1)

[21.2] (0.8-8.2)

[4.5] (0-6.7) [3.1]

0 0

Grande (53.4-82.8)

[68.1] (0-4.3) [2.1]

(9.9-34.3) [22.1]

(0-8.8) [4.3]

(0.5-6) [3.2]

0 0


0.795 0.258 0.313 0.862 0.587 -

SEGÚN EDAD

<1 año (49.6-93.5)

[71.5] (0-5.2) [2.3]

(9.8-32.5) [21.1]

(0.5-8-8) [4.6]

(0-6.25) [3]

0 0

1 a 7 años (53.5-86.9)

[70.2] (0-4.6) [2.3]

(10.8-32.8) [21.8]

(0.6-8.2) [4.4]

(0-6) [3]

0 0

>7 años (58.0-85.0)

[71.5] (0.1-7.2)

[3.7] (9.3-26.3)

[17.8] (0-8.8) [3.8]

(1.5-5) [3.3]

0 0


0.807 0.459 0.688 0.718 0.969 -

33

Tabla N° 09: Valores absolutos de referencia y promedio de la formula

leucocitaria diferencial de la población total del perro sin pelo

del Perú y según sexo, tamaño y edad en las provincias de

Piura, Sullana Y Talara (Choquehuanca, 2008)

PARÁMETRO

POBLACIÓN

Neutrófilos

segmentados 103/µl

Neutrófilos

abastonados 103/µl

Linfocitos

103/µl

Monocitos

103/µl

Eosinófilos

103/µl

Basófilos

103/µl

POBLACIÓN TOTAL (2 – 12.5)

[7.3]

(0 – 0.6)

[0.3]

(0 – 5.7)

[2.8]

(0 – 1.3)

[0.6]

(0 – 0.9)

[0.4]

0

0

SEGÚN SEXO

Macho (1.5-13.7)

[7.6] (0.0-0.5)

[0.2] (0-6.1) [2.9]

(0-1.5) [0.7]

(0-1.1) [0.5]

0 0

Hembra (2.4-11.5)

[7] (0-0.7) [0.3]

(0-5.4) [2.7]

(0.1-1.1) [0.6]

(0-0.9) [0.4]

0 0


0.296 0.248 0.372 0.333 0.182 -

SEGÚN TAMAÑO

Pequeño (2.8-12.5)

[7.6]

(0.1-0.6)

[0.3]

(0-5.4)

[2.7]

(0.1-1.1)

[0.6]

(0-0.9)

[0.4]

0

0

Mediano (2.6-11.8)

[7.2]

(0-0.5)

[0.3]

(0-5.6)

[2.6]

(0-1.3)

[0.6]

(0-1.0)

[0.4]

0

0

Grande (1.4-13.2)

[7.3] (0-0.6) [0.2]

(0.3-6.1) [3.2]

(0-1.4) [0.7]

(0-1.0) [0.5]

0 0

Significancia (p<0.05)

0.887 0.806 0.232 0.839 0.707 -

SEGÚN

EDAD

<1 año (2.5-11.8)

[7.1] (0-0.6) [0.3]

(0.1-5.0) [2.6]

(0-1.3) [0.6]

(0-1.0) [0.4]

0 0

1-7 años (1.9-12.9)

[7.4] (0-0.6) [0.2]

(0-6) [3]

(0-1.4) [0.7]

(0-1.1) [0.5]

0 0

>7 años (1.8-10.5)

[6.2] (0-0.8) [0.4]

(0.8-3.1) [2]

(0-0.8) [0.4]

(0.2-0.4) [0.3]

0 0


0.570 0.749 0.192 0.310 0.731 -

34

Tabla N° 10: Promedio de los valores hematológicos referenciales para

la serie roja para caninos de la ciudad de Trujillo – 2009.

Serie roja Promedio del total Valores

referenciales

Eritrocitos x 1012/L 6.6 +/- 1.0 4.7 – 8.5

Hematocrito L/L 0.4 +/- 0.1 0.3 – 0.5

Hemoglobina g/L 132.0 +/- 19.3 94.0 – 170.0

VCM (fL) 60.2 +/- 1.3 57.7 – 62.7

CHCM g/L 334.0 +/- 15.0 305.0 – 364.0

Tabla N° 11: Promedio de los valores hematológicos referenciales para

la serie blanca de caninos de la ciudad de Trujillo.

Serie blanca Unidad Promedio del

total Valores

referenciales

Leucocitos 109/L 9.6 +/- 2.5 7.1 – 14.5

Abastonados % 1.9 +/- 1.5 0.0 – 4.8

109/L 0.0 +/- 0.2 0.0 – 0.5

Segmentados

% 77.7 +/- 6.4 65.2 – 90.2

109/L 7.4 +/- 2.1 3.3 – 11.5

Eosinófilos

% 2.1 +/- 2.1 0.0 – 0.2

109/L 0.2 +/- 0.2 0.0 – 0.7

Basófilos

% 0.0 +/- 0.0 0.0 – 0.0

109/L 0.0 +/- 0.0 0.0 – 0.0

Monocitos

% 2.3 +/- 1.7 0.0 – 5.6

109/L 0.2 +/- 0.2 0.0 – 0.6

Linfocitos

% 16.0 +/- 5.9 4.5 – 27.5

109/L 1.6 +/- 0.7 0.1 – 3.0

35

CAPITULO III

MATERIALES Y MÉTODOS

1. Localización

El presente Proyecto de investigación se realizará en el distrito, provincia

y región de Cajamarca, ciudad de Cajamarca ubicada en la sierra norte

del Perú; y será ejecutado en el laboratorio de Fisiología Veterinaria de la

Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad Nacional de

Cajamarca.

1.1 Datos Meteorológicos.

La ciudad de Cajamarca en donde se realizará el muestreo para el

trabajo de investigación, tiene dos épocas bien diferenciadas; una

época de lluvias y una seca. Teniendo las siguientes características

climatológicas1:

Altitud : 2650 msnm

Latitud : 7° 10’ 03”

Longitud : 78° 29’ 35”

Clima : Templado seco

Precipitación pluvial : 801 mm3 (Promedio anual)

Humedad relativa : 68.92% (Promedio anual)

Temperatura promedio : 14,5 °C

Humedad relativa promedio : 66,7%

1 Servicio Nacional de Meteorología e Hidrología (SENAMHI Cajamarca 2012).

36

2. Materiales

2.1 Material biológico

El presente estudio se realizará en ciento veinte (120) muestras de

sangre entera (EDTA + sangre), las que serán obtenidas de

caninos clínicamente sanos y de crianza doméstica.

2.2 Material de campo

Hoja de identificación del canino.

Etiqueta para la identificación de las muestras.

Guantes.

Lapicero.

Plumón (para rotular las muestras).

Libreta (para anotaciones).

Caja térmica

2.3 Material de escritorio

Papel bond A4.

Fólderes

Lapiceros.

Lápices.

CDs.

Impresora.

Computadora

2.4 Material de laboratorio

Los materiales utilizados para la obtención de cada uno de los

parámetros hematológicos se describen en sus respectivos anexos.

Tubos de ensayo de 10 ml.

Tubos de ensayo para recolectar sangre con EDTA

Láminas porta y cubre objetos.

Tubos capilares

37

Gradilla portatubos

Centrífuga para hematocrito TRIAC Centrifuge.

Microscopio (YUJIE Optics).

Espectrofotómetro

Pipetas de 10 µl a 100 µl.,

Pipeta de Thoma

Colorante Wright

Tubo de goma y boquilla de caucho

Cámara de Neubauer Merenfield

Plastilina

Escala de lectura para microhematocrito

2.5 Reactivos

Solución de Gower

Diluyente original

Kit de tinción Hemacolor2

Solución Drabkin 3

Solución Buffer 6.5

3. Metodología

3.1 Selección de muestras:

Se seleccionaran caninos que no pertenezcan a ninguna raza,

clínicamente sanos definidos por inspección clínica, sin ningún tipo de

signo o síntoma que indique que el animal padecía de alguna

enfermedad, libre de antecedentes recientes de enfermedad,

temperatura normal y hembras en anestro. No se incluirán hembras

2 Merck. Hemacolor ® Rapid staining of blood smear staining set for microscopy.

3 VALTEK ® Diagnosis. Chile

38

preñadas o en lactancia, ni caninos bajo tratamiento médico o

recibiendo suplementación mineral. (Pedrozo, 2010)

3.2 Obtención de muestras:

De cada uno de los caninos se obtendrán 3 ml de sangre con

anticoagulante EDTA, mediante venopunción cefálica, empleado el

sistema de tubos al vacío4. Las muestras serán mantenidas a 4°C y

transportadas de inmediato al Laboratorio de Fisiología Veterinaria de

la Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad Nacional de

Cajamarca, para los respectivos análisis.

3.3 Del Número de Muestras

a) Muestra:

120 muestras de sangre con anticoagulante.

b) Número:

120 muestras tomadas del mismo número de caninos los que

serán clasificados de la siguiente manera:

De acuerdo al sexo: machos = 60 y hembras = 60

De acuerdo a la edad:

Cachorros (3 meses–1 año) = 15 hembras y 15 machos.

Jóvenes (1– 3 años) = 15 hembras y 15 machos

Adultos (3 – 7 años) = 15 hembras y 15 machos

Geriátricos (7 – 16 años) = 15 hembras y 15 machos

3.4 Parámetros hematológicos por analizar.

Los parámetros a analizar serán los siguientes:

Recuento de eritrocitos: Método de la cámara de cuentaglóbulos.

4 Vacutainer ®

39

Recuento de leucocitos: Método de la cámara de cuentaglóbulos.

Dosaje de Hemoglobina: Método de la Cianometahemoglobina y

hemacolor.

Volumen globular aglomerado (VGA): Método del

Microhematocrito.

Recuento Leucocitario Diferencial Relativo y Absoluto: Método

de coloración Wright y por cálculo.

Cálculo de los Índices Hematimétricos: Mediante fórmulas

establecidas.

Características Morfológicas de Eritrocitos: Frotis sanguíneo

coloreado.

Plaquetas: Método directo.

Velocidad de sedimentación eritrocítica: Método Wintrobe.

3.5 Análisis estadístico:

Los valores referenciales de cada variable hematológica, se

estableció la normalidad de la distribución de los datos y se

determinó su promedio y desviación estándar, luego se calculó los

valores de referencia de cada parámetro según el método de los

promedios (X + 1.96 D.E.).

Los valores que se obtuvieron fueron también sometidos a la prueba

de significación de Tukey (P=0,05) para establecer el nivel de

diferencia significativa existente entre ellos.

40

CAPITULO IV

RESULTADOS

Muestra los valores promedio y de referencia, obtenidos mediante el

promedio ± 1,96 D.E. de eritrocitos, hematocrito, hemoglobina, VCM, CHCM,

HCM de una población total de 120 caninos mestizos de la ciudad de

Cajamarca.

Cuadro N° 01: Valores hematológicos de referencia (X+1,96 DE) para la

serie roja de caninos de la ciudad de Cajamarca.

VARIABLES HEMATOLÓGICAS

UNID. X+/-DE VALORES DE REFERENCIA

Eritrocitos 106 /µl 6,8 +/- 0,9 5,0 - 8,6

Hematocrito % 49,1 +/- 4,5 40 - 58

Hemoglobina gr/dl 19 +/- 2,3 14,5 - 23,5

VCM fl 72,8 +/- 6,7 59,7 - 85,9

CHCM g/dl 38,7 +/- 3,9 31,1 - 46,3

HCM pg. 28,1 +/- 3,4 21,4 - 34,8

41

Muestra los valores hematológicos promedio y los valores de referencia,

obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E. de leucocitos, divididos en las

formas celulares de neutrófilos segmentados, neutrófilos en banda,

eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos de una población total de 120

caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca.

Cuadro N° 02: Valores Hematológicos De Referencia (X+1,96 DE) para

la serie blanca de caninos de la ciudad de Cajamarca.


UNID. X +/- DE VALORES DE REFERENCIA

Leucocitos 103/µl 8,8 +/- 1,2 6,4 - 11,2


% 66,7 +/- 2,4 62 - 71

103 /µl 5,9 +/- 0,8 4,3 - 7,5


% 1,7 +/- 1 0 - 4

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Eosinófilos

% 2,7 +/- 1,1 1 - 5

103 /µl 0,2 +/- 0,1 0,0 - 0,4

Monocitos

% 1,4 +/- 0,9 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Linfocitos

% 27,6 +/- 2,2 23 - 32

103 /µl 2,4 +/- 0,4 1,6 - 3,2

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0,00 - 0,00

42


obtenidos mediante el promedio ± 1,96 D.E. de velocidad de sedimentación

y plaquetas, de una población total de 120 caninos mestizos de la ciudad de

Cajamarca.

Cuadro N° 03: Valores hematológicos de referencia (x+1,96 DE) en

velocidad de sedimentación y plaquetas de caninos de la

ciudad de Cajamarca



Velocidad Sedimentación mm/h 1,5 +/- 0,6 0,3 - 2,7

Plaquetas 103 /µl 165 +/- 1,8 130 - 200

43


obtenidos mediante el promedio ± 1,96 D.E. de eritrocitos, hematocrito,

hemoglobina, VCM, CHCM, HCM de 60 caninos mestizos hembras de la

ciudad de Cajamarca, de los grupos de edades: cachorros, jóvenes, adultos

y geriátricos.

Cuadro N° 04: Valores hematológicos de referencia (x+1,96 DE) para la

serie roja de caninos hembras de la ciudad de Cajamarca



Eritrocitos 106 /µl 6,9 +/- 0,9 5,1 - 8,7

Hematocrito % 49,3 +/- 4,8 40 - 59

Hemoglobina gr/dl 18,4 +/- 2,4 13,7 - 23,1

VCM fl 72 +/- 6,6 59,1 - 84,9

CHCM g/dl 37,4 +/- 3,8 30,0 - 44,8

HCM pg. 26,9 +/- 3,2 20,6 - 33,2

44

Muestran los valores hematológicos promedio y los valores de referencia,

obtenidos mediante el promedio ± 1,96 D.E. de leucocitos, divididos en las


eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos de 60 caninos mestizos hembras

de la ciudad de Cajamarca, de los grupos de edades: cachorros, jóvenes,

adultos y geriátricos.


serie blanca de caninos hembras de la ciudad de

Cajamarca.



Leucocitos 103/µl 8,9 +/- 1,4 6,2 - 11,6


% 66,5 +/- 2,7 61 - 72

103 /µl 5,9 +/- 0,9 4,1 - 7,7


% 1,8 +/- 1 0 - 4

103 /µl 0,2 +/- 0,1 0 - 0,4

Eosinófilos

% 2,9 +/- 1,2 1 - 5

103 /µl 0,3 +/- 0,1 0,1 - 0,5

Monocitos

% 1,5 +/- 0,8 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Linfocitos

% 27,4 +/- 2,3 23 - 32

103 /µl 2,5 +/- 0,4 1,7 - 3,3

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0,00 - 0,00

45

Se muestran los valores hematológicos promedio y los valores de referencia,

obtenidos mediante el promedio ± 1,96 D.E de velocidad de sedimentación y

plaquetas de 60 caninos mestizos hembras de la ciudad de Cajamarca, de

los grupos de edades: cachorros, jóvenes, adultos y geriátricos

Cuadro N° 06: Valores hematológicos de referencia (x + 1,96 DE) en velocidad

de sedimentación y plaquetas de caninos hembras de la ciudad

de Cajamarca.

VARIABLES

HEMATOLÓGICAS UNID. X +/- DE

VALORES DE

REFERENCIA


Plaquetas 103 /µl 170 +/- 1,8 166,5 - 173,5

46


obtenidos mediante el promedio ± 1,96 D.E de eritrocitos, hematocrito,

hemoglobina, VCM, CHCM, HCM de 60 caninos mestizos machos de la

ciudad de Cajamarca, entre los grupos de edades: cachorros, jóvenes,



serie roja de caninos machos de la ciudad de

Cajamarca.



Eritrocitos 106 /µl 6,7 +/- 0,9 4,9 - 8,5

Hematocrito % 49 +/- 4,3 41 - 57

Hemoglobina gr/dl 19,5 +/- 2 15,6 - 23,4

VCM fl 73,7 +/- 6,8 60,4 - 87,0

CHCM g/dl 40 +/- 3,5 33,1 - 46,9

HCM pg. 29,3 +/- 3,1 23,2 - 35,4

47


obtenidos mediante el promedio ± 1,96 D.E de leucocitos, divididos en las


eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos de 60 caninos mestizos machos

de la ciudad de Cajamarca, entre los grupos de edades: cachorros, jóvenes,



serie blanca de caninos machos de la ciudad de

Cajamarca



Leucocitos 103/µl 8,7 +/- 1 6,7 - 10,7


% 66,9 +/- 2,1 63 - 71

103 /µl 5,8 +/- 0,7 4,4 - 7,2

Neutrófilos

abastonados

% 1,5 +/- 0,9 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Eosinófilos

% 2,5 +/- 1,1 0 - 5

103 /µl 0,2 +/- 0,1 0,0 - 0,4

Monocitos

% 1,4 +/- 0,9 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Linfocitos

% 27,7 +/- 2,1 24 - 32

103 /µl 2,4 +/- 0,3 1,8 - 3,0

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0,00 - 0,00

48

Se muestra los valores hematológicos promedio y los valores de referencia,

obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de velocidad de sedimentación y

plaquetas de 60 caninos mestizos machos de la ciudad de Cajamarca, de los

grupos de edades: cachorros, jóvenes, adultos y geriátricos.

Cuadro N° 09: Valores hematológicos de referencia (x + 1,96 DE) en

velocidad de sedimentación y plaquetas de caninos

machos de la ciudad de Cajamarca.

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA


Plaquetas 103 /µl 160 +/- 1,8 156,5 - 163,5

49

Se muestran los valores hematológicos de la serie roja promedio, obtenidos

mediante la prueba estadística de Tukey para los 120 caninos mestizos de la

ciudad de Cajamarca.

Cuadro N° 10: Valores hematológicos de referencia en caninos de la

serie roja entre sexos (Canis lupus familiaris) de la

ciudad de Cajamarca - 2012.

Variable Hematológica

Unid. Hembras Machos

Eritrocitos 106 /µl 6,89 ± 0,9 a 6,73 ± 0,9 a

Hematocrito % 49,33 ± 5 a 48,95 ± 4,3 a

Hemoglobina g/dl 18,43 ± 2,4 b 19,53 ± 2 a

VCM fl 72,04 ± 6,6 a 73,66 ± 6,8 a

CHCM g/dl 37,42 ± 3,80 b 40,00 ± 3,5 a

HCM pg. 26,91 ± 3,2 b 29,31 ± 3,2 a

Letras diferentes en una misma fila indican diferencia (P < 0,05)

50

Se muestran los promedios valores hematológicos de la serie blanca,

obtenidos mediante la prueba estadística de Tukey para los 120 caninos

mestizos de la ciudad de Cajamarca.

Cuadro N° 11: Valores hematológicos de referencia hematológicos de

referencia en caninos de la serie blanca entre sexos

(Canis lupus familiaris) de la ciudad de Cajamarca –

2012.


Unid. Hembra Macho

Leucocitos 103/µl 8,94 ± 1,3 a 8,73 ± 1 a

Neutrófilos Segmentados

% 66,48 ± 2,7 a 66,9 ± 2,1 a

103/µl 5,94 ± 0,95 a 5,84 ± 0,7 a


% 1,78 ± 1 a 1,52 ± 0,9 a

103/µl 0,16 ± 0,1 a 0,13 ± 0,1 a

Eosinófilos

% 2,93 ± 1,2 a 2,5 ± 1 b

103/µl 0,26 ± 0,11 a 0,21 ± 0,1 b

Monocitos

% 1,4 ± 0,9 a 1,4 ± 0,9 a

103/µl 0,12 ± 0,1 a 0,12 ± 0,1ª

Linfocitos

% 27,4 ± 2,3 a 27,7 ± 2 a

103/µl 2,45 ± 0,4 a 2,42 ± 0,3 a

Basófilos

% 0 0

103/µl 0 0

Letras diferentes en una misma fila indican diferencia (P<0,05 Tukey).

51

Se muestran los valores hematológicos de velocidad de sedimentación y

número de plaquetas, obtenidos mediante la prueba estadística de Tukey

para los 120 caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca, divididos por

sexo.

Cuadro N° 12: Valores hematológicos de referencia hematológicos en

caninos de la velocidad de sedimentación y Plaquetas

entre sexos (Canis lupus familiaris) de la ciudad de

Cajamarca – 2012.


Hembras Machos

Promedio Promedio

Velocidad Sedimentación (mm/h) 1,45 ± 0,5 a 1,49 ± 0,6 a

Plaquetas (103/µl) 16,97 ± 1,78 a 16,02 ± 1,8 b

Letras diferentes en una misma fila indican diferencia (P<0,05 Tukey)

52


obtenidos mediante el promedio ± 1.96 D.E de eritrocitos, hematocrito,

hemoglobina, VCM, CHCM, HCM de 60 caninos mestizos machos y 60

hembras entre los 3 meses y 1 año de edad de la ciudad de Cajamarca.


serie roja de caninos de 3 meses a 1 año (cachorros)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA

Eritrocitos 106 /µl 6,1 +/- 0,5 5,1 - 7,1

Hematocrito % 44,1 +/- 3,6 37 - 51

Hemoglobina gr/dl 16,9 +/- 2 13,0 - 20,8

VCM fl 73,6 +/- 6,7 60,5 - 86,7

CHCM g/dl 38,4 +/- 4 30,6 - 46,2

HCM pg. 28,1 +/- 3,7 20,8 - 35,4

53


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de leucocitos, divididos en las


eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos; de de 60 caninos mestizos

machos y 60 hembras entre los 3 meses y 1 año de edad de la ciudad de

Cajamarca.

Cuadro N° 14: Valores hematológicos de referencia (x + 1,96 DE) para

la serie blanca de caninos de 3 meses a 1 año

(cachorros)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA

Leucocitos 103/µl 9,1 +/- 0,9 7,3 - 10,9

Neutrófilos

segmentados

% 66,8 +/- 1,5 64 - 70

103 /µl 6,1 +/- 0,6 4,9 - 7,3

Neutrófilos

abastonados

% 1,2 +/- 0,8 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Eosinófilos

% 2,1 +/- 0,9 0 - 4

103 /µl 0,2 +/- 0,1 0,0 - 0,4

Monocitos

% 1 +/- 0,8 -1 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Linfocitos

% 29 +/- 2 25 - 33

103 /µl 2,6 +/- 0,3 2 - 3,2

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0 - 0

54


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de velocidad de sedimentación y

plaquetas de de 60 caninos mestizos machos y 60 hembras de la ciudad de

Cajamarca.


velocidad de sedimentación y plaquetas de caninos de 3

meses a 1 año (cachorros)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA


Plaquetas 103 /µl 163 +/- 2 159,1 - 166,9

55


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de eritrocitos, hematocrito,

hemoglobina, VCM, CHCM, HCM de de 60 caninos mestizos machos y 60

hembras entre 1 y 3 años de edad de la ciudad de Cajamarca.


la serie roja de caninos de 1 a 3 años (Jóvenes)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA

Eritrocitos 106 /µl 6,9 +/- 0,7 5,5 - 8,3

Hematocrito % 50 +/- 3 44 - 56


VCM fl 72,7 +/- 7,1 58,8 - 86,6

CHCM g/dl 39,2 +/- 3,2 32,9 - 45,5

HCM pg. 28,5 +/- 3,2 22,2 - 34,8

56




eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos; de de 60 caninos mestizos

machos y 60 hembras entre 1 y 3 años de edad de la ciudad de Cajamarca.

Cuadro N° 17: Valores hematológicos de referencia (x+1,96 DE)

para la serie blanca de caninos de 1 a 3 años (jóvenes)



Leucocitos 103/µl 9,2 +/- 1,4 6,5 - 11,9


% 66,7 +/- 2,5 62 - 72

103 /µl 6,2 +/- 1 4,2 - 8,2


% 1,6 +/- 0,9 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Eosinófilos

% 2,9 +/- 1 1 - 5

103 /µl 0,3 +/- 0,1 0,1 - 0,5

Monocitos

% 1,3 +/- 0,7 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Linfocitos

% 27,5 +/- 2,1 23 - 32

103 /µl 2,5 +/- 0,4 2 - 3,3

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0 - 0

57


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de la velocidad de sedimentación

y el número de plaquetas; de de 60 caninos mestizos machos y 60 hembras

entre 1 y 3 años de edad de la ciudad de Cajamarca.

Cuadro N° 18: Valores hematológicos de referencia (x + 1,96 DE) en


a 3 años (jóvenes)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA


Plaquetas 103 /µl 170 +/- 1,8 166,5 - 173,5

58


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de eritrocitos, hematocrito,

hemoglobina, VCM, CHCM, HCM de 60 caninos mestizos machos y 60

hembras entre 3 a 7 años de edad de la ciudad de Cajamarca.


serie roja de caninos de 3 a 7 años (adultos)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA

Eritrocitos 106 /µl 7,2 +/- 0,9 5,4 - 9,0

Hematocrito % 51,5 +/- 3,2 45 - 58


VCM fl 72,2 +/- 7,2 58,1 - 86,3

CHCM g/dl 39,6 +/- 4 31,8 - 47,4

HCM pg. 28,4 +/- 2,8 22,9 - 33,9

59




eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos; de 60 caninos mestizos

machos y 60 hembras entre 3 a 7 años de edad de la ciudad de Cajamarca.


serie blanca de caninos de 3 a 7 años (adultos)



Leucocitos ×103/µl 8,4 +/- 1,1 6,2 - 10,6

Neutrófilos

segmentados

% 67,2 +/- 2,4 62 - 72

103 /µl 5,6 +/- 0,8 4,0 - 7,2

Neutrófilos

abastonados

% 1,5 +/- 0,8 0 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Eosinófilos

% 3 +/- 1 1 - 5

103 /µl 0,3 +/- 0,1 0,1 - 0,5

Monocitos

% 1,4 +/- 1 -1 - 3

103 /µl 0,1 +/- 0,1 0 - 0,3

Linfocitos

% 26,8 +/- 2,1 23 - 31

103 /µl 2,2 +/- 0,3 2 - 2,8

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0 - 0

60


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E de la velocidad de sedimentación

y el número de plaquetas; de de 60 caninos mestizos machos y 60 hembras

entre 3 a 7 años de edad de la ciudad de Cajamarca.



a 7 años (adultos)




Plaquetas 103 /µl 163 +/- 1,7 159,7 - 166,3

61


obtenido mediante el promedio ±1,96 D.E. de eritrocitos, hematocrito,

hemoglobina, VCM, CHCM, HCM de de 60 caninos mestizos machos y 60

hembras desde los 7 años en adelante de la ciudad de Cajamarca.


la serie roja de caninos de 7 años a más (geriátricos)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA

Eritrocitos 106 /µl 7 +/- 0,9 5,2 - 8,8

Hematocrito % 50,9 +/- 4 43 - 59

Hemoglobina gr/dl 19 +/- 1,7 15,7 - 22,3

VCM fl 73 +/- 6 61,2 - 84,8

CHCM g/dl 37,5 +/- 4,1 29,5 - 45,5

HCM pg. 27,4 +/- 3,8 20,0 - 34,8

62


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E. de leucocitos, divididos en las


eosinófilos, linfocitos, monocitos y basófilos; de 60 caninos mestizos

machos y 60 hembras desde 7 años en adelante de la ciudad de Cajamarca.


la serie blanca de caninos de 7 años a más (geriátricos)

VARIABLES


VALORES DE

REFERENCIA

Leucocitos ×103/µl 8,7 +/- 1,1 6,5 - 10,9

Neutrófilos

segmentados

% 66,1 +/- 3 60 - 72

103 /µl 5,7 +/- 0,8 4,1 - 7,3

Neutrófilos

abastonados

% 2,3 +/- 1 0 - 4

103 /µl 0,2 +/- 0,1 0 - 0,4

Eosinófilos

% 2,9 +/- 1,4 0 - 6

103 /µl 0,3 +/- 0,1 0,1 - 0,5

Monocitos

% 1,8 +/- 0,9 0 - 4

103 /µl 0,2 +/- 0,1 0 - 0,4

Linfocitos

% 26,9 +/- 2,1 23 - 31

103 /µl 2,3 +/- 0,3 2 - 2,9

Basófilos

% 0 +/- 0 0 - 0

103 /µl 0 +/- 0 0 - 0

63


obtenido mediante el promedio ± 1,96 D.E. de la velocidad de sedimentación

y el número de plaquetas; de 60 caninos mestizos machos y 60 hembras

desde 7 años a más edad de la ciudad de Cajamarca.



años a más (geriátricos)




Plaquetas 103 /µl 163 +/- 1,8 159,5 - 166,5

64

Se muestran los valores hematológicos de la serie roja promedio, obtenidos

mediante la prueba estadística de Tukey para los 120 caninos mestizos de la

ciudad de Cajamarca, divididos por edades.


referencia en caninos de la serie roja entre edades

(Canis lupus familiaris) de la ciudad de Cajamarca –

2012.


Edades

3 m a <1año 1 a <3 años 3 a <7 años > de 7 años

Eritrocitos 106 /µl 6,05 ± 0,5 b 6,94 ± 0,7 a 7,23 ± 0,9 a 7,02 ± 0,9 a

Hematocrito % 44,13 ± 3,6 b 50,03 ± 3 a 51,53 ± 3,2 a 50,87 ± 4 a

Hemoglobina g/dl 16,93 ± 2 c 19,63 ± 1,9 ab 20,37 ± 1,9 a 19,00 ± 1,7 b

VCM fl 73,55 ± 6,6 a 72,66 ± 7 a 72,23 ± 7,2 a 72,96 ± 6 a

CHCM g/dl 38,42 ± 4 a 39,25 ± 3,2 a 39,63 ± 4 a 37,54 ± 4 a

HCM pg. 28,13 ± 3,7 a 28,5 ± 1,9 a 28,39 ± 2,8 a 27,42 ± 3,8 a


65

Se muestran los promedios de valores hematológicos para la serie blanca,

obtenidos mediante la prueba estadística de Tukey para los 120 caninos

mestizos de la ciudad de Cajamarca, divididos por edades.


referencia en caninos de la serie roja entre edades (Canis



Edades

3 m a < 1 año 1 a < 3 años 3 a <7 años > de 7 años

Eritrocitos 106/µl 6,05 ± 0,5 b 6,94 ± 0,7 a 7,23 ± 0,9 a 7,02 ± 0,9 a

Hematocrito % 44,13 ± 3,6 b 50,03 ± 3 a 51,53 ± 3,2 a 50,87 ± 4 a

Hemoglobina g/dL 16,93 ± 2 c 19,63 ± 1,9 ab 20,37 ± 1,9 a 19,00 ± 1,7 b

VCM fl 73,55 ± 6,6 a 72,66 ± 7 a 72,23 ± 7,2 a 72,96 ± 6 a

CHCM g/dl 38,42 ± 4 a 39,25 ± 3,2 a 39,63 ± 4 a 37,54 ± 4 a

HCM pg. 28,13 ± 3,7 a 28,5 ± 1,9 a 28,39 ± 2,8 a 27,42 ± 3,8 a


66

Se muestran los valores promedios hematológicos de velocidad de

sedimentación y plaquetas, obtenidos mediante la prueba estadística de

Tukey para los 120 caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca, divididos

por edades.


referencia en caninos de la velocidad de la velocidad de

sedimentación y Plaquetas en relación a la edad (Canis


Variable

Hematológica

Edad

3 m. a< 1año 1 a <3 años 3 a <7 años > de 7 años

Velocidad de Sedimentación

mm/h 0,93 ± 0,29 c 1,47 ± 0,5 b 1,47 ± 0,5 b 2,02 ± 0,6 a

Plaquetas 103/µl 16,3 ± 1,97 a 17,03 ± 1,8 a 16,33 ± 1,7a 16,3 ± 1,8 a


67

CAPITULO V

DISCUSIÓN

DE LA POBLACIÓN TOTAL

El recuento de eritrocitos para los caninos mestizos de la ciudad de

Cajamarca presentan un promedio de 6,8 ×106/µl (Cuadro N° 01) resultados

ligeramente superiores a los obtenidos por Gómez (1988) con 6,5 ×106/µl

(Tabla N° 03) quien realizó su investigación en la misma ciudad, pero con un

número inferior de muestra (n=100); difiere también con lo reportado por

Choquehuanca (2008) cuyos valores son inferiores (5,9 ×106/µl) (Tabla N° 09)

y cuya investigación fue ejecutada con la raza de perros sin pelo del Perú, a

nivel del mar y utilizando el método del contador automatizado Coulter;

también difiere en menor proporción con los resultados obtenidos por Chu

(2010) que fueron 6,6 ×106/µl (Tabla N° 12), investigación realizada al igual

que Choquehuanca a nivel del mar.

En el caso de los promedios obtenidos en este estudio para hematocrito y

hemoglobina fueron de 49,1% y 19 g/dl respectivamente (Cuadro N° 01), los

cuales también son superiores a los encontrados por Gómez (1988) 43% de

hematocrito y 15 g/dl de hemoglobina; a lo encontrado por Choquehuanca

(2008) con 43,2% hematocrito y 14,9 g/dl hemoglobina; y a los resultados

encontrados por Chu (2010) con 40% y 13,2 g/dl para ambas variables.

Además, se difiere con Schalm (1979) quien propone que en el canino, el valor

normal de hemoglobina aceptado es de 12 a 17 gr/dl de sangre. Sin embargo

no se conoce el grupo de estudio de Schalm, y tampoco el lugar donde se

realizó. Se debe manifestar además que, en algunos casos el error en altos

valores de hemoglobina según Latimer (2003) pueden ocurrir con la presencia

68

de cuerpos de Heinz, hemolisis, lipemia y tratamientos con oxiglobina que

pueden causar altos valores de hemoglobina. Sin embargo, los animales de

este estudio que presentaron en el suero lipemia, ictericia o hemolisis, fueron

descartados del grupo, así como no se observaron en los extendidos eritrocitos

con Cuerpos de Heinz, lo que descarta la probabilidad de que se atribuya a

estas inclusiones citoplasmáticas los altos valores de hemoglobina en los

caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca.

Los promedios obtenidos para los índices eritrocitarios: VCM 72,8 fl., CHCM

son 38,7 g/dl y HCM 28,1 pg., son mayores que los trabajos reportados. Los

resultados de ésta investigación, como se aprecian son superiores a los de los

autores consultados, ésta mayor variación se debería a que el trabajo fue

realizado a una altura de 2 650 msnm y donde la concentración de oxigeno es

menor a la concentración del mismo a nivel del mar. Esta situación se corrobora

con los manifestado con Kirk (1997), García (1995) y Latimer et al. (2003)

quienes mencionan que, entre los factores que afectan al recuento eritrocitario,

así como a la concentración de hemoglobina y concentración de otros

constituyentes hemáticos, está la altitud, entre otros.

Estos valores referenciales superiores en cuanto a número de eritrocitos,

hematocrito y hemoglobina, son además sustentados por Latimer (2003) quien

menciona que la concentración de hemoglobina nos provee una indicación más

directa de la capacidad de la sangre para el transporte de oxigeno.

Concordando también con García (1995) quien indica que, a grandes altitudes,

cuando la cantidad de oxígeno del aire se encuentra muy reducida, y no hay

suficiente transporte de oxígeno a los tejidos los eritrocitos se producen tan

rápidamente que su número en sangre aumenta, por lo tanto a mayor número

de eritrocitos, mayor presencia de hemoglobina, teniéndose una relación directa

entre ellos.

Además que, Guyton (1991) y Langley (1973) indican que la disminución de

oxigeno (hipoxia) estimula la producción de eritropoyetina la que a su vez eleva

la producción de eritrocitos hasta que desaparece la hipoxia.

69

Con respecto a Gómez (1988) se encontró una menor diferencia, éste autor no

menciona en su trabajo la raza, edad, condiciones de manejo y sanidad de los

animales con los cuales trabajó, a pesar de que las condiciones de altitud son

iguales a esta investigación, por lo que no podemos establecer las causales de

diferencia entre ambos estudios.

El recuento de leucocitos para caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca

presenta un promedio de de 8,8×103/µl (Cuadro N° 02) resultados inferiores a

los obtenidos por Gómez (1988) con 16,34 ×103/µl (Tabla N° 03) quien realizó

su investigación en la misma ciudad; difiere también con lo reportado por

Choquehuanca (2008) cuyos valores son superiores (13,5×106/µl) (Tabla N°

09); también difiere en menor proporción con los resultados obtenidos por Chu

(2010) que fueron 9,6×106/µl (Tabla N° 13).

Según, Wittwer y Böhmwald (1987), mencionan que para los caninos, suelen

presentarse grandes fluctuaciones en el recuento de leucocitos. Por otro lado

también se debería a factor predominante de raza, manejo y alimentación y

salud.

Los resultados para los valores promedios obtenidos en la fórmula leucocitaria

relativa (Cuadro N° 02), indica que se obtuvo un mayor porcentaje en el caso

de neutrófilos segmentados y abastonados, linfocitos y disminuidos en

eosinófilos y monocitos respecto a lo reportado por Gómez (1988), pero es

posible que la fórmula leucocitaria absoluta sea mayor a lo obtenido por Gómez

(1988) debido a que él reporta una cantidad de leucocitos totales que casi

duplica a lo obtenido en este trabajo, sin embargo no se ha podido establecer

una comparación exacta dado que Gómez (1988) no reporta la fórmula

leucocitaria absoluta.

Con respecto a los otros autores de la revisión bibliográfica se puede apreciar

que hay diferencias mínimas tanto en la fórmula leucocitaria relativa como

absoluta. Choquehuanca (2008) presente un número superior en la cuenta de

monocitos, pues cita datos del Kennel Club del Perú (2008) que los perros sin

pelo del Perú, poseen el defecto genético conocido como el síndrome de

hipoplasia ectodérmica. Coincidiendo con Rebar (2000) quien menciona que los

70

monocitos son los responsables de funciones específicas del macrófago como:

fagocitosis y regulación de la respuesta inflamatoria por medio de la liberación

de mediadores inflamatorios (factores quimiotácticos, prostaglandinas,

complemento, etc.); y por otro lado Harvey (2012) precisa que el número bajo

de monocitos se presenta en mamíferos normales.

Con respecto a los eosinófilos, Harvey (2012) menciona que el número de

éstos es bajo en mamíferos normales. La estimación de Gómez (1988), pudo a

la presencia de animales con alguna enfermedad de tipo hipersensibilidad,

incluso de tipo parasitaria, como no se conoce la población pudieron haber sido

tomados caninos callejeros sin ningún control antiparasitario o de permanencia

en el campo. Así, Rebar (2000) nos menciona que los eosinófilos constituyen el

principal componente de las reacciones de hipersensibilidad sistémicas.

Cuando los antígenos de parásitos o alérgenos se unen a las IgE específicas

de los mastocitos y estimulan la degranulación de éstos y se libera así

histamina que atrae a los eosinófilos. Son los principales responsables en

eliminar trematodos y nematodos que presenten IgG o complemento unido a su

superficie. Tienen también una capacidad fagocítica o bactericida limitada y

pueden desempeñar cierto papel en la destrucción de células neoplásicas.

La presencia de basófilos en el recuento realizado por Gómez (1988) es 0%

igual a lo reportado en éste trabajo. Esto se explicaría tomando en cuenta a lo

manifestado por Feldman (2000) y Cowell (2009); concuerdan que éstas células

granulocíticas maduras son infrecuentes en la sangre periférica de caninos y

gatos. Por lo que raramente se encuentran en frotices sanguíneos de caninos

normales. Y, Rebar (2000) menciona que su presentación en sangre periférica

es porque los basófilos juegan un papel primordial en la reacción de

hipersensibilidad inmediata como la que ocurre en la urticaria, anafilaxias y

alergia aguda. La heparina que se encuentra dentro de los basófilos inhibe la

coagulación, con una importante función en la inflamación. Los basófilos

constituyen un porcentaje muy bajo en la población total de leucocitos

circulantes. En muchos caninos y gatos, raramente se llegan a observar

basófilos en un recuento diferencial manual de leucocitos.

71

Con respecto a los valores de referencia de plaquetas de los caninos de la

ciudad de Cajamarca el valor promedio general de 165×103/µl los cuales no

pueden ser comparados con Gómez (1988), pues él no realizó la cuenta de

éstas células; sin embargo Choquehuanca (2008) arroja un resultado promedio

de 228×103/µl para los perros sin pelo del Perú, los cuales son superiores a los

encontrados para los caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca. Y Chu

(2010) arroja 305,6 ×109/L de plaquetas. Tomando en cuenta que

Choquehuanca (2008) hizo el conteo mediante el sistema automatizado

Coulter, el cual es más exacto que el método manual que se hizo en la

presente investigación.

Sin embargo, el procedimiento realizado en este estudio coincide con la

metodología descrita por Harvey (2012) quien menciona que en los extendidos

sanguíneos de la mayoría de los animales domésticos normalmente tienen un

promedio entre 10 a 30 plaquetas bajo el objetivo de 100X. El número de

plaquetas puede estimarse multiplicando el promedio por 15,000 o 20,000 para

conseguir el número aproximado de plaquetas por microlitro de sangre.

Benjamin (1990), menciona que el recuento directo de plaquetas en un frotis

teñido, utilizado en esta investigación, se considera una técnica inexacta, pero

más práctica y útil en clínica. Puesto que normalmente se requiere de una

estimación, lo que se puede hacer al mirar el frotis cuando se realiza la fórmula

diferencial de leucocitos, apreciando si las plaquetas están normales,

aumentadas y disminuidas.

Con respecto a los valores de referencia para la velocidad de sedimentación de

los caninos de la ciudad de Cajamarca presentan un valor promedio general de

1,5 mm/h que es menor a los comparados con Gómez (1988) cuyo resultado en

promedio de la segunda lectura en 60 minutos (Cuadro N° 03) fue de 5 mm/h.

Esta menor velocidad de sedimentación se debería a que en éste trabajo se

obtuvo un mayor hematocrito. Medway (1973) considera que el índice de

sedimentación debe interpretarse junto con el volumen de eritrocitos

conglomerados (VGA). La sedimentación lenta es de esperar cuando es grande

la masa de eritrocitos, porque el exceso de células dificulta el movimiento del

plasma. Las grandes velocidades de sedimentación se ven en las anemias, que

72

también pueden mostrar sedimentación difásica. No se establece comparación

con Choquehuanca (2008) y Chu (2010) por no haber estimado este parámetro.

SEGÚN SEXO:

En el Cuadro N° 10, los promedios obtenidos de acuerdo al sexo se puede

apreciar que no existe diferencia significativa (P>0,05) entre machos y hembras

en cuanto a eritrocitos, hematocrito y VCM, y hay diferencia significativa

(P<0,05) en hemoglobina, CHCM, y HCM. Las diferencias en éstos se deben

principalmente a que se tiene la concentración de hemoglobina es mayor en

machos y esto se refleja en la relación con respecto a hematocrito y al número

de eritrocitos que nos da una relación en gr/dl mayor para el CHCM y un peso

en pg. en el caso de HCM.

Los valores encontrados en este trabajo son similares a los reportados por

Gómez (1988), Choquehuanca (2008) y Chu (2010) para ambos sexos.

Los resultados obtenidos, están sustentados, también por lo manifestado por

Kraft y Diür (2000), quienes señalan una diferencia en la cantidad de

hemoglobina según el sexo.

En el Cuadro N° 11, los promedios obtenidos de acuerdo al sexo en el recuento

de leucocitos no presentan diferencia significativa (P>0,05), en el número de

leucocitos, tipos celulares: neutrófilos segmentados, neutrófilos abastonados,

monocitos y linfocitos; sin embargo se observa diferencia en el recuento de

eosinófilos tanto en formula relativa y absoluta (P<0,05), siendo mayor en el

caso de las hembras que en los machos. En el caso de Gómez (1988), no se

observa diferencia significativa en ninguna de las formas celulares,

Choquehuanca (2008) y Chu (2010) no tienen resultados estadísticos que

permitan conocer si hay diferencia entre sexos estadísticamente significativa.

Wittwer y Böhmwald (1987), mencionan que en cuanto al sexo y estado

fisiológico se encuentra una eosinofilia de la perra en celo y una leucocitosis

marcada durante la preñez y una gran variedad de otras condiciones. En este

estudio se observa una mayor cantidad de eosinófilos en hembras (P<0,05) con

respecto a los machos; sin embargo, no se puede hablar de eosinofilia por no

73

ser los resultados elevados con respecto a otros autores, además de que no se

tomaron en consideración para el estudio perras en celo y/o estado o sospecha

de gestación.

Referente a la velocidad de sedimentación (Cuadro N° 12) para ambos sexos

no existe diferencia significativa en los resultados (P>0,05). Comparados con

Gómez (1988) son inferiores, donde las hembras presentan mayor velocidad

de sedimentación eritrocítica con respecto a los machos.

En el Cuadro N° 12, con respecto a las plaquetas, se observa una diferencia

significativa (P<0,05) entre el número de plaquetas de hembras con las de

machos, teniendo las hembras un mayor número de plaquetas que los machos.

SEGÚN EDAD

En el Cuadro N° 13, se observa que los valores promedio de eritrocitos,

hemoglobina y hematocrito en el grupo de canes de 3 meses a 1 año es menor

y diferente significativamente (P<0,05), con respecto a los otros tres grupos. No

se observa diferencia significativa (P>0,05) en cuanto a los índices

hematimétricos como VCM, CHCM y HCM entre grupos.

En el caso de Gómez (1988) no se hizo la comparación entre edades. Se

concuerda con Choquehuanca (2008) que presenta también un número inferior

en eritrocitos, hematocrito y hemoglobina, en el grupo de edad menores a un

año, mientras que Chu (2010) no tiene diferencia en sus variables

hematológicas de eritrocitos, hematocrito y hemoglobina.

Según Kraft y Dürr (2000), se coincide que existen variaciones del dosaje de

hemoglobina en relación al sexo y edad ya que en el can estos valores

comienzan a disminuir a partir del nacimiento, seguidas de un incremento

gradual desde los cuatro meses. Así también (Harvey, 2012) menciona que la

absorción del hierro, sustancia importante para la formación de hemoglobina,

se realiza desde la dieta, lo cual depende de la edad, especie, reservas de

hierro, capacidad de eritropoyesis, inflamaciones y preñez, como también la

cantidad y la forma química ingerida. Un pequeño porcentaje de hierro en la

dieta es absorbido en animales adultos normales.

74

Valores disminuidos para hematocrito obtenidos en canes menores a un año se

sustenta en lo mencionado por Latimer (2003), que el hematocrito en cachorros

que se encuentra dentro de los intervalos de referencia o bajo es por una

persistente reticulocitosis. Por esta razón, se podría respaldar que los caninos

jóvenes tengan menos porcentaje de hematocrito. Y lo que es sustentado por

Feldman (2000) quien menciona que los reticulocitos se pueden contar hasta

en 10% en caninos durante los dos primeros meses de vida. Este número

decrece en los niveles de sangre de caninos adultos aproximadamente a partir

de los 5 a 6 meses de edad. Y, Cowell (2009) indica que los animales muy

jóvenes, debido al rápido crecimiento de su espacio vascular, tienen valores

relativamente bajos de hematocrito. Debido a que los eritrocitos fetales son

sustituidos por eritrocitos adultos, los animales en periodo de crecimiento inicial

tienen mayor anisocitosis, policromasia y eritrocitos nucleados comparados con

animales maduros.

De acuerdo a los resultados anteriores se sugiere cambiar la división de grupos

etarios para próximas investigaciones, y formar grupos de cachorros

dividiéndoles desde neonatos hasta cachorros juveniles, por considerarse que

estas edades tienen parámetros diferentes, como lo menciona Serrano (2001),

quien considera en cachorros, a los neonatos durante sus dos primeras

semanas de vida y son pacientes pediátricos entre las dos semanas y los seis

meses.

En cuanto al conteo de las plaquetas (Cuadro N° 15), no se observa diferencia

significativa (P>0,05) en los cuatro grupos etarios, estos resultados son

inferiores a los obtenidos por Choquehuanca (2008) quien obtuvo valores

superiores en el grupo de cachorros con respecto a sus dos otros grupos, y

Chu (2010) sus valor más alto está en el grupo de jóvenes.

Sin embargo coincide con Serrano (2011) quien menciona que las plaquetas

son totalmente funcionales desde el nacimiento y su número es similar al de

los adultos.

En el Cuadro N° 15, la velocidad de sedimentación se observa que los valores

promedio van aumentando de acuerdo al avance de la edad, el grupo de 3

75

meses a 1 año es menor; en los grupos de 1 a 3 años y 3 a 7 años se mantienen

constante; mientras que se observa un aumento en los caninos de 7 años a más

edad. Estos rangos no se pueden comparar con Gómez (1988) porque no se

ubica en sus tablas, la diferenciación por edades de éste parámetro.

De acuerdo a Medway (1979), la velocidad de sedimentación está supeditada a

la cantidad de eritrocitos pequeños (microcitos) que tienen menor velocidad de

sedimentación que los macrocitos. Se ha observado que los macrocitos son con

frecuencia reticulocitos y que éstos y los eritrocitos nucleados no se aglomeran.

En el Cuadro N° 14 se observa que los valores promedio en la cuenta

leucocitaria son diferentes significativamente (P<0,05) en número de leucocitos

y todos los tipos celulares leucocitarios, exceptuando a los basófilos. Gómez

(1988) no nos muestra tabla de valores por edad en diferenciación de éstos

grupos celulares leucocitarios. Choquehuanca (2008), se observa también

diferencia entre leucocitos y sus formas celulares. Así como Chu (2010)

también muestra ciertas diferencias en la fórmula de blancos.

En el caso de los linfocitos, se observa una importante presencia de éstos en el

grupo de cachorros (3 meses y 1 año) y el grupo de jóvenes (1 – 3 años) Así

también, lo obtenido por Choquehuanca (2008) el grupo de edad menores de

un año tienen mayor presencia de linfocitos. Los datos obtenidos por Chu

(2010) también muestran valores de linfocitos elevados en los cachorros con

respecto a las edades de jóvenes y adultos.

Wittwer y Böhmwald (1987) y Serrano (2011), mencionan que como en el caso

de la edad el recuento de leucocitos en el cachorro recién nacido es

relativamente alta (16,5 ×103/µl) y disminuye rápidamente durante los primeros

días de vida y comienza a incrementarse a partir de la primera semana

después del nacimiento, hasta aproximadamente los 60 días de vida, para

después estabilizarse, siendo el incremento en base a los linfocitos, lo que se

cree que está relacionado con la formación de anticuerpos. Concordando a su

vez con Latimer (2003), quien menciona el origen de los linfocitos T y B son

embriológicamente derivados del timo y la médula ósea respectivamente. Y los

linfocitos en mamíferos adultos, se originan en tejidos linfoides secundarios

76

como las tonsilas, nódulos linfáticos, bazo, tejidos linfoides bronquiales, cuya

presencia se encuentra elevada en edades temprana de vida.

En el grupo geriátrico (7 años a más edad) se observa una mayor cantidad de

neutrófilos abastonados que lo diferencia significativamente de los grupos

(P<0,05). Se coincide con Choquehuanca (2008), quien encuentra mayor

número de neutrófilos abastonados en el grupo de adultos mayores de 7 años.

El grupo celular de eosinófilos presenta ligero aumento no significativo de

acuerdo al avance de la edad, observándose una diferencia significativa

(P<0,05) entre el grupo de 3 meses a 1 año con los otros grupos.

Choquehuanca (2008) presenta un valor absoluto mayor en el grupo de 1 a 7

años, siendo un grupo de edad similar al rango de ésta investigación, con

0,5×103/µl absoluto y 3% relativo. Y, Chu (2010), en la cuenta absoluta

permanecen igual para los tres grupos de edades 0,2×103/µl, mientras que en

la parte relativa se encuentra un alto porcentaje en el grupo de cachorros 2.6%

sobre los grupos de jóvenes y adultos.

77

CAPITULO VI

CONCLUSIONES

Para los caninos mestizos de la ciudad de Cajamarca, en las condiciones de

éste estudio se obtuvo las siguientes conclusiones:

1. El recuento de eritrocitos para la población presentan un promedio de 6,8

×106/µl, y referenciales entre de 5,0 – 8,6 ×106/µl, hematocrito 49,1%

promedio y sus valores referenciales entre 40 - 58%, hemoglobina promedio

de 19 g/dl y los valores referenciales 14,5 - 23,5 g/dl. En cuanto los índices

eritrocitarios VCM promedio de 72,8 fl., y referenciales entre 59,7 - 85,9 fl.;

CHCM promedio 38,7 g/dl y sus límites 31,1 - 46,3 g/dl, HCM en promedio

28,1 pg. y las referencias 21,4 - 34,8 pg.

Los valores de referencia de leucocitos presentan un valor promedio de

8,8 ×103/µl y los valores referenciales entre 6,4 - 11,2 ×103/µl, en cuanto a

las formas celulares, los neutrófilos segmentados en valor absoluto

promedio es de 5,9 ×103/µl y valor relativo 66,7% y sus valores de

referencia absoluto fueron de 4,3 - 7,5 ×103/µl y relativo entre 62 - 71%, los

neutrófilos abastonados en promedio para valor absoluto fue de 0,1 ×103/µl

y el valor relativo fue 1,7%, los valores de referencia están entre 0 - 0,3

×103/µl absoluto y 0 – 4% relativo, en linfocitos el promedio absoluto fue de

2,4 ×103/µl y en valor relativo 27,6%, los valores de referencia absoluto entre

1,6 - 3,2 ×103/µl y en valor relativo 23 – 32%, los monocitos en promedio de

valor absoluto 0,1 ×103/µl y 1,4% valor relativo, los valores de referencia de

valor absoluto fueron de 0,0 - 0,3 ×103/µl y en valor relativo 0 – 3%,

finalmente los basófilos se encuentran en promedio 0% y 0 ×103/µl.

Los valores de referencia para la velocidad de sedimentación presentan

promedio general de 1,5 mm/h, y rangos referenciales entre 0,3 – 2,7 mm/h.

78

Los valores de referencia de plaquetas promedio fue de 165 × 103/µl y los

rangos referenciales están entre 130 - 200 × 103/µl.

2. Los valores referenciales para caninos hembras: en eritrocitos promedio de

6,9 ×106µ/l y los valores referenciales entre 5,1 - 8,7 ×106µ/l, el hematocrito

promedio fue de 49% y los valores referenciales entre 40 - 59%, la

hemoglobina promedio de 18,4 g/dl y sus referenciales entre 13,7 – 23,1

g/dl., en cuanto a los índices eritrocitarios como VCM el promedio de 72 fl. y

sus referenciales 59,1 – 84,9 fl.; CHCM en promedio 37,4 g/dl y sus

referenciales entre 30,0 - 44,8 g/dl, HCM, en promedio 26,9 pg. y los valores

referenciales 20,6 – 33,2 pg.

El recuento de leucocitos promedio en hembras fue de 8,9 ×103/µl, y los

valores referenciales entre 6,2 - 11,6 ×103/µl, en el caso de formas celulares

los neutrófilos segmentados en promedio para valor absoluto fue de 5,9

×103/µl y de 66.5% para valor relativo, los valores referenciales absolutos

fueron 4,1 - 7,7 ×103/µl y en valores relativos de 61 – 72%, el valor promedio

de neutrófilos abastonados 0,2 ×103/µl absoluto y 1,8% relativo, los valores

referenciales fueron de 0 - 0,4 ×103/µl y 0 - 4% respectivamente, eosinófilos

tienen un promedio absoluto de 0,3 ×103/µl, y 2,9% relativo, con los valores

referenciales entre 0,1 - 0,5 ×103/µl y 1 - 5%, los linfocitos con promedio

absoluto 2,5 ×103/µl y 27,4% relativo, los valores referenciales fueron 1,7 - 3,3

×103/µl y 23 - 32%, los monocitos en promedio absoluto fue de 0,1 ×103/µl y

1,5% en relativo, los referenciales están entre 0 - 0,3 ×103/µl y 0 - 3%.

Los valores promedio de la velocidad de sedimentación fue de 1,5 mm/h, y

los valores referenciales están entre 0,3 – 2,7 mm/h.


rangos referenciales están entre 166,5 – 173,5 × 103/µl.

3. Los valores referenciales para caninos machos: en eritrocitos promedio de

6,7 ×106µ/l y los valores referenciales entre 4,9 - 8,5 ×106µ/l, el hematocrito

promedio fue de 49% y los valores referenciales entre 41 - 57%, la

hemoglobina promedio de 19,5 g/dl y sus referenciales entre 15,6 – 23,4

g/dl., en cuanto a los índices eritrocitarios como VCM el promedio de 73,7 fl.

79

y sus referenciales 60,4 - 87 fl.; CHCM en promedio 40 g/dl y sus

referenciales entre 33,1 - 46,9 g/dl, HCM en promedio 29,3 pg. y los valores

referenciales 23,2 – 35,4 pg.

El promedio de leucocitos 8,7 ×103/µl y valores referenciales fueron 6,7 - 10,7

×103/µl, los neutrófilos segmentados tienen promedio absoluto de 5,8×103/µl y

relativo 66,9%, los referenciales fueron 4,4 - 7,2 ×103/µl y 63 - 71%, los

neutrófilos abastonados en promedio 0,1 ×103/µl y 1,5%, los valores

referenciales están entre 0 - 0,3 ×103/µl y 0 - 3%, el valor promedio de

eosinófilos fue de 0,2 ×103/µl y 2,5%, los valores referenciales fueron de 0,0 -

0,4 ×103/µl y 0 - 5%, promedio de linfocitos fue de 2,4 ×103/µl absoluto y

27,7% relativo, los referenciales fueron de 1,8 - 3,0 ×103/µl y 24 - 32%,

finalmente, los basófilos se encuentran en promedio 0% y 0 ×103/µl.

Los valores promedio de la velocidad de sedimentación fue de 1,5 mm/h, y

los valores referenciales están entre 0,1 - 2,9 mm/h.


rangos referenciales están entre 156,5 – 163,5 × 103/µl.

4. Los valores referenciales de acuerdo a la edad fueron los siguientes:

eritrocitos, hematocrito, hemoglobina respectivamente, de 3 meses a 1

año (5,1 – 7,1 ×106/µl), (37 – 51%), (13 – 20,8 gr/dl); de 1 a 3 años (5,5 –

8,3 ×106/µl), (44 – 56%), (15,9 – 23,3 gr/dl); de 3 a 7 años (5,4 – 9,0

×106/µl) (45 – 58%), (16,7 – 24,1 gr/dl) y el grupo de 7 años a más (5,2 –

8,8 ×106/µl), (43 – 59%), (15,7 – 22,3 gr/dl)

Los valores de referencia del número de leucocitos para las edades 3

meses a 1 año son 7,3 - 10,9 ×103/µl, de 1 a 3 años 6,5 - 11,9 ×103/µl; y los

grupos de 3 a 7 años 6,2 - 10,6 ×103/µl y de 7 a más años 6,5 - 10,9 ×103/µl.

Los valores de referencia para neutrófilos segmentados, neutrófilos

abastonados, eosinófilos, monocitos, linfocitos y basófilos en valor

absoluto y relativo respectivamente fueron, entre edades 3 meses a 1

año fue de 4,9 – 7,3 ×103/µl ; 64 - 70%, de 1 a 3 años 4,2 – 8,2 × 103/µl y

62 a 70%; de 3 a 7 años tienen de 4,0 a 7,2 ×103/µl y 62 – 72%, y de 7 a

más años fue de 4,1 a 7,3 × 103/µl y 60 – 72%.

80

Neutrófilos abastonados de 3 meses a 1 año fue de 0 – 0,3 ×103/µl, 0 - 3%,

de 1 a 3 años de 0 - 0,3 ×103/µl y 0 - 3%; de 3 a 7 años con 0 - 0,3 ×103/µl y

0 – 3%, y de 7 a más años fue de 0 - 0,4 ×103/µl y 0 – 4%.

Eosinófilos, de 3 meses a 1 año fueron de 0 – 0,4 ×103/µl y 0 a 4%, grupo

de 1 a 3 años de 0,1 – 0,5 ×103/µl y de 1 a 5%, grupo de 3 a 7 años de

0,1 - 0,5 ×103/µl y de 1 – 5%; mientras en el grupo de 7 a más años de

0,1 - 0,5 ×103/µl y de 0 – 6%.

Monocitos, de 3 meses a 1 año fueron de 0 – 0,3 ×103/µl y 0 a 3%, grupo

de 1 a 3 años desde 0 – 0,3 ×103/µl y de 0 a 3%, grupo de 3 a 7 años de

0 - 0,3 ×103/µl y de 1 – 3%; mientras en el grupo de 7 a más años de 0 -

0,4 ×103/µl y de 0 – 4%.

Linfocitos, de 3 meses a 1 año fueron de 2 – 3,2 ×103/µl y 25 a 33%,

grupo de 1 a 3 años desde 2 – 3,3 ×103/µl y de 23 a 32%, grupo de 3 a 7

años de 2 - 2,8 ×103/µl y de 23 – 31%; mientras en el grupo de 7 a más

años de 2 - 2,9 ×103/µl y de 23 – 31%.

Basófilos, los valores de referencia son iguales en todos los grupos de

edades de: 0,0 a 0,0 × 103/µl y 0%

La velocidad de sedimentación se obtuvieron los valores de referencia de

los grupos: 3 meses a 1 año presenta un rango de 0,5 – 1,3 mm/h; el

grupo de 1 a 3 años y 3 a 7 años mantienen el mismo rango 0,5 – 2,5

mm/h; mientras los 7 años a más edad con rango de 0,9 – 3,3 mm/h.

Las plaquetas tuvieron valores de referencia para el grupo de 3 meses a 1

año de 159,1 - 166,9 ×103/µl, de 1 a 3 años 166,5 – 173,5 ×103/µl, el grupo de

3 a 7 años 159.7 – 166.3 ×103/µl; y el de 7 años a más 159.5 – 166.5 ×103/µl.

5. Por otro lado, el referente de Gómez, B. como guía paraclínica realizada

en Cajamarca en el año 1988, se encontraron diferencias en el método

para determinar los valores referenciales, los valores de serie roja son

mayores. En cuanto a leucocitos el número obtenido fue menor en este

trabajo, en la fórmula relativa los resultados fueron mayores, no presenta

fórmula leucocitaria absoluta. Y su trabajo no considera división entre

edades.

81

CAPITULO VII

BIBLIOGRAFÍA

1. Aguiló J. (2001). Valores Hematológicos [versión electrónica]. Clínica

Veterinaria de Pequeños Animales, Revista Oficial AVEPA, 75-84.

2. Benjamin, M. (1990). Manual de Patología Clínica en Veterinaria. México,

D.F.: Limusa.

3. Carr, J. H.; Rodak B. F. (2010). Atlas de Hematología Clínica. Argentina.

Editorial médica Panamericana.

4. Cowell R.; Tyler R.; Meinkoth J. H.; De Nicola D. B. (2009). Diagnóstico

citológico y hematológico del perro y el gato. España. Travessera de

gràcia.

5. Choquehuanca, G. (2008). Valores hematológicos de referencia del perro

sin pelo del Perú en las provincias de Piura, Talara y Sullana. Perú.

Universidad Nacional de Piura.

6. De Lima, N. C. (2001). Manual de la salud canina. España. Editorial

Hispano Europea S.A.

7. Delman, H; Dieter E. (1993). Histología Veterinaria. España. Editorial

Escriba.

8. Feldman B. F.; Zinkl J. G.; Jain N. C., (2006). Veterinary Hematology. J.

H. Meinkoth, K. D. Clinkenbeard (Eds.), Normal Hematology of the Dog

(pp. 1057–1062) Estados Unidos: Blackwell Publishing Pofessional.

9. García, S. (1995) Fisiología Veterinaria. Editorial Interamericana. España.

82

10. Gómez, C. (1988), Contribución al Estudio de las Constantes

Hematológicas en Caninos de la Ciudad de Cajamarca. Perú.

Universidad Nacional de Cajamarca.

11. Guyton, A. (1991), Tratado de Fisiología Médica. Editorial Interamericana.

España.

12. Harvey J. W. (2012). Veterinary Hematology: a diagnostic guide and color

atlas. Elsevier. China.

13. Kirk, C. A.; Bonagura J. D. (1997); Terapéutica Veterinaria de Pequeños

Animales. Editorial Ofgloma. México.

14. Kraft, H., Schillinger, D. (1998) Métodos de Laboratorio Clínico en

Medicina Veterinaria de Mamíferos Domésticos. Acribia. España.

15. Kraft W.; Dürr, U.M. (2000) Diagnóstico clínico de laboratorio en

veterinaria. Grass. México.

16. Latimer, K. S., Mahaffey E. A., Prasse K. W. (2003). Clinical Pathology.

Iowa: Blackwell.

17. Medway, W., Prier J. E., Wilkinson J. S. (1973). Patología Clínica

Veterinaria. México. Unión Tipográfica Editorial Hispano América.

18. Merck, Sharp; Dhome (2002). Equipo de tinción para material

hematológico y clínico HEMACOLOR ®. Darmstadt – Alemania.

19. Núñez O. L., Bouda J. (Ed.) (2007). Patología Clínica Veterinaria. (1ra

edición) México: Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de

Medicina Veterinaria y Zootecnia. Departamento de Patología.

20. Pedrozo, R., Quintana, G., Bazán, A., Florentín, M. (2010). Valores

hematológicos de referencia en caninos adultos aparentemente sanos,

que concurren a una clínica privada de Asunción. Consultado el 15 de

abril de 2012, Mem. Inst. Investig. Cienc. Salud, página web:

http://www.iics.una.py/n/pdf/revista/116.pdf

http://www.iics.una.py/n/pdf/revista/116.pdf

83

21. Rebar A. H., MacWilliams P. S., Feldman B. F., Metzger, L. F., Pollock

R.V. H., Roche J., (2002). Manual de hematología de perros y gatos.

España. Multimédica.

22. Serrano, S. (2011). Emergencias y Cuidados Intensivos en Pediatría

Parte I. Revista Selecciones Veterinarias, Vol. 19. N° 3-2011. (70 – 75).

23. Schalm, O. (1964). Hematología Veterinaria. México: Unión Topográfica

Editorial Hispano American UTEHA.

24. Tietz, N. W. (1976). Fundamentals of Clinical Xhemistry, 2° Ed., W.B.

25. Voigt, G. (2000). Conceptos y técnicas hematológicas para técnicos

veterinarios. España. Acribia.

26. Wittwer, M.; Böhmwald, L. (1987). Manual de Patología Clínica

Veterinaria. Chile.

84

ANEXO

ANEXO N° 01

1. Recuento de eritrocitos:

Benjamín (1990), describe el siguiente procedimiento:

Método: Método del Hemocitómetro

Muestra: Sangre con anticoagulante

Reactivos:

Solución de Gower a base de:

- Sulfato de sodio 15.63 gr.

- Acido acético 41.65 ml

- Agua destilada 250 ml

Material: Pipeta de Thoma, pieza de caucho, cámara de Neubauer,

gradillas portatubos.

Técnica:

1. Colocar la pieza de caucho a la pipeta cuenta glóbulos de Thoma, la

que se identifica con la marca 101 por encima del bulbo.

2. Homogenizar la muestra de sangre, aspirar suavemente muestra de

sangre hasta la marca 0.5 de la pipeta. Limpiar las paredes exteriores

con papel absorbente.

3. Aspirar el diluyente (Solución de Gower), hasta la marca 101. Poner la

pipeta en forma horizontal y tapar la punta con el dedo antes de retirar

la pieza de caucho. Agitarla por lo menos 2 a 3 minutos con un simple

movimiento de muñeca.

4. Descartar las 3 a 4 primeras gotas, limpiar el área graduada de la

cámara de Neubauer. Llenar el espacio comprendido entre la cámara

y el cubreobjetos anteriormente colocado.

85

5. Observar al microscopio con el objetivo de 40X, se cuentan todos los

eritrocitos de 5 a 25 cuadrados del área central.

Cálculo:

Células contadas X 10 (0.1 mm. de profundidad) X 5 (1/5 de mm2)

X 200 (dilución 1:200) = eritrocitos/microlitro.

Se puede efectuar la suma de las células en los 5 cuadrados

pequeños X 10000 = eritrocitos/microlitro.

2. Recuento de leucocitos:

Guía de Laboratorio Diagnóstico Clínico de la Facultad de Ciencias

Veterinarias de la Universidad Nacional de Cajamarca (1990), describe el

siguiente procedimiento para el recuento de leucocitos.

Método: Método del Hemocitómetro

Muestra: Sangre con anticoagulante

Reactivos:

Diluyente original, elaborado con:

- Acido acético glacial 1 ml

- Solución alcohólica de violeta de genciana: 2.5 ml

- Agua destilada 100 ml

Material: Pipeta de Thoma, pieza de caucho, cámara de Neubauer,

gradillas portatubos.

Técnica:

1. Colocar la pieza de caucho a la pipeta cuenta glóbulos de Thoma, la

que a diferencia de la utilizada para recuento de eritrocitos se

identifica con la marca 11 por encima del bulbo.

2. Homogenizar la sangre y llenar la pipeta hasta la marca 0,5 con la

sangre, luego secar la parte externa y aspirar uniformemente el

diluyente original hasta la marca 11, esto proporciona una dilución de

1:20.

3. Agitar por unos 3 minutos para que se mezcle bien. Se descarta de 2

a 3 gotas de la pipeta antes de llenar la cámara contadora. Se deja

86

por lo menos 1 minuto para que los eritrocitos se lisen y que los

leucocitos se sedimenten.

4. Con el objetivo de poco aumento (10 x), se cuentan las células de

cada uno de los 4 cuadrados grandes de las esquinas.

5. El conteo se realiza de izquierda a derecha, se debe tener cuidado de

no contar dos veces la misma célula, pues al final se reflejará con una

diferencia enorme de lo que tiene en realidad el animal.

6. Se requiere contar las células que estén sobre la línea izquierda y la

línea superior para incluirlas, o por el contrario, se cuentan las células

que se encuentran sobre la línea derecha o la inferior del cuadro no se

incluyen en la cuenta.

7. Ya que se tiene la cuenta final (en la cual no debe haber una

diferencia superior de 25% entre cada cuadro de las esquinas).

Cálculo:

Células contadas X 20(dilución 1:20) X 10(profundidad 0.1 mm) = Leucocitos/microlitro

4 (numero de mm2 contados)

O la suma de las células de las cuatro esquinas de los cuatro cuadros

X 50 = leucocitos/microlitro.

3. Dosaje de hemoglobina

Laboratorio Valtek (1999), describe en su guía de reactivos el siguiente

procedimiento para la cuantificación de hemoglobina en la sangre.

Método: Método de la cianometahemoglobina

Fundamento: Los eritrocitos son lisados por un agente tensioactivo,

liberando la hemoglobina en la solución. Esta es oxidada a

metahemoglobina por el ferricianuro, siendo esta ultima convertida a

cianometahemoglobina por la presencia del cianuro. La absorbancia de la

cianometahemoglobina es medida a 540 nm, siendo la intensidad del

color obtenido, directamente proporcional a la concentraron de

hemoglobina en la sangre.

Reactivos:

Ferricianuro de potasio 0.6 mM

Cianuro de potasio 0.7 nM

87

Sterox – SE

Buffer y estabilizadores no reactivos c.s.p.

Estándar de hemoglobina (18 g/dl)

Material:

Pipeta de capacidad de 10 a 100 ul, espectrofotometro, gradillas.

Técnica:

1. Colocar 3 ml de reactivo para hemoglobina en los tubos de ensayo.

2. Invertir y homogenizar la sangre. Pipetear 12 ul de sangre, limpiar y

secar las paredes exteriores de la pipeta.

3. Introducir la pipeta en los tubos con el reactivo para hemoglobina.

4. Mezclar e incubar 3 minutos a temperatura ambiente. Leer las

absorbencias llevando a cero el equipo con el blanco.

Cálculos:

Factor = 18 / Absorbancia del estándar.

Hemoglobina (g/dl) = Factor X Absorbancia desconocida.

4. Determinación del volumen globular aglomerado (VGA)

1. Se utiliza el método del microhematocrito con los capilares no

heparinizados.

2. Se homogeniza la sangre en el tubo con EDTA, y se coloca por un

extremo el capilar para que la sangre con una determinada cantidad.

3. Se tapona uno de los extremos con plastilina.

4. Se coloca el capilar en la centrífuga por 3 minutos a 15000 rpm.

5. Una vez obtenido el capilar se mide en el escalímetro especial para

medir el hematocrito o VGA y obtener la lectura en porcentaje.

5. Determinación de la velocidad de sedimentación:

Oblitas (2010), describen el siguiente método para la obtención de

velocidad de sedimentación.

Método: Método del Microhematocrito con tubo milimétrico

Fundamento: El principio de medir la distancia recorrida por los

eritrocitos en el plasma por unidad de tiempo, prducida por

88

sedimentación de los eritrocitos al dejar la sangre en un tubo en posición

vertical. El valor numérico en milímetros se obtiene midiendo la distancia

que hay entre el punto más bajo del menisco de la superficie y el límite

superior del sedimento de eritrocitos.

Muestra: Sangre con anticoagulante o entera.

Material: Tubo milimétrico, cronómetro, pipeta Pasteur.

Técnica:

1. Tomar con la pipeta Pasteur sangre, y llenar la pipeta milimétrica

desde el fondo hasta la marca “0”.

2. Colocar el tubo de forma perpendicular y en un lugar fijo y sin

interferencia de movimiento.

3. Realizar la toma de la medida en milímetros en tiempo de 30 minutos

y luego en 60 minutos.

Cálculos: Las lecturas obtenidas se dan mm/hora.

4. Recuento leucocitario diferencial

Benjamín (1990), describen el siguiente procedimiento:

A. Frotis sanguíneo

1. Colocar una pequeña gota de sangre en uno de los extremos del

portaobjetos, el cual debe estar en una superficie sólida y plana.

2. Se coloca el extremo de un segundo portaobjetos o cubreobjetos

(para extender), contra la superficie del primeo en un ángulo de 30°.

3. El segundo portaobjetos o cubreobjetos se desliza suavemente para

extender la gota de sangre, cuando ésta se haya extendido sobre

aproximadamente dos tercios del ancho del portaobjetos, por acción

capilar, se mueve hacia delante con un movimiento firme y uniforme.

La sangre correrá formando una película delgada.

4. Secar rápidamente ondeándola en el aire o usando un ventilador.

89

B. Preparación del frotis y tinción Hemacolor y examen

B.1 Preparación del frotis: Carr y Rodak (2010).

1. Se coloca una gota de sangre con EDTA de aproximadamente 3 mm

en un extremo de la lámina portaobjetos de 75 x 25 mm que será

para el soporte del extendido y con otra lámina de bordes y esquinas

biselados denominada extensor, la lámina extensora se coloca por

delante de la gota de sangre ángulo de 35 - 45° con respecto a la

lámina porta, el extensor se desliza hacia atrás hasta tener contacto

con la gota de y se la sostiene hasta que la sangre cubra todo el

ancho del portaobjetos. A continuación el extensor se desliza con

rapidez y suavidad hacia el otro extremo del portaobjetos que sirve

de soporte para el extendido, con lo que se crea extendido en forma

de cuña.

2. El secado debe ser lo más rápido posible, utilizando para esto

agitaciones rápidas en el aire.

B.2 Tinción con Hemacolor ®

Fundamento: Esta preparación de tinción policromática, donde el

azul de metileno libre es básico tiñendo los grupos ácidos de color

azul como el RNA, modificándose a color púrpura que tiñe los

gránulos de los basófilos y el ADN nuclear; la eosina es el

componente ácido y tiñe de rojo los grupos básicos se tiñen de rojo

a anaranjado en el caso de proteínas, hemoglobina y gránulos de

eosinófilos (Merck, Sharp, Dhome, 2002; Carr, Rodak, 2010)

1. El frotis seco se sumerge en la solución fijadora 6 veces con un

intervalo dentro de la solución de un segundo.

2. Luego se sumerge tres veces por un segundo cada uno en la

solución de eosina.

3. Se retira el excedente con un papel absorbente, y se sumerge en

la tinción de azul de metileno por 6 veces y un segundo de tiempo

en ella.

90

4. Finalmente se enjuaga con agua destilada de un pH de 7.0 para

eliminar el excedente de la tinción.

5. Se deja en un plano inclinado para secar.

B.3 Observación:

Se realizó la observación de acuerdo a los pasos que describen Carr

y Rodak (2010), describen lo siguiente:

1. El frotis sanguíneo se comienza con el análisis del frotis con un

barrido del portaobjetos con el objetivo de 10X o de bajo

aumento, que determinaría la calidad general del frotis, incluida

la distribución de los eritrocitos que sugiere la presencia de

rouleaux o la de un número desproporcionado de grandes

células nucleadas en los bordes del extendido.

Luego se emplea el objetivo 40X, con el que se busca los

eritrocitos que se encuentren uniformemente distribuidos y en

donde apenas se toquen unos con otros. Se multiplica el número

promedio de leucocitos por campo de gran aumento por 1000

para obtener una aproximación del total de leucocitos contados

×103/µl.

El paso siguiente es la evaluación del frotis con el objetivo de

100X, el cual es realizar el estimado del recuento de leucocitos,

pero utilizando el objetivo de inmersión en aceite 100X. Cuando

se analiza el área correcta de un frotis de un paciente con el

recuento normal de eritrocitos, se observan alrededor de 200 a

250 eritrocitos por campo de 100X. Por lo general, el recuento

diferencial incluye el conteo y la clasificación de 100 leucocitos

consecutivos y el informe de estas clases como porcentajes. El

recuento diferencial se realiza de modo sistemático; para ello se

utiliza un recorrido en patrón de guarda griega, que minimiza los

errores de distribución de los leucocitos. Los resultados se

informan como porcentajes de cada tipo de leucocito observado

durante el recuento.

91

2. El recuento del número de plaquetas, en la que se utiliza el

objetivo de inmersión en aceite 100X. se realiza el recuento del

número de plaquetas en 10 campos que correspondan a un área

del frotis donde los eritrocitos apenas se toquen. El número

promedio de plaquetas se multiplica por 20000 para obtener un

número estimativo del total de plaquetas presentes en la

muestra.

5. Índices hematimétricos

Benjamín (1990), manifiesta que los índices eritrocíticos definen el

tamaño y el contenido de hemoglobina del eritrocito de valores obtenidos

por la cuenta eritrocítica, la concentración de hemoglobina y el

hematocrito; estos índices son obtenidos mediante cálculos matemáticos

y son los siguientes:

A. Volumen Corpuscular Medio (VCM): expresa el volumen promedio

del eritrocito individual, es una forma de calcular el tamaño del

eritrocito, y se calcula con la siguiente fórmula:

VCM = VGA X 10 N° eritrocitos (millones/microlitro)

El resultado expresa el volumen medio del eritrocito en fentolitros (fl.)

B. Concentración de Hemoglobina Corpuscular Media (CHCM):

Es la concentración de hemoglobina en el eritrocito promedio o la

proporción del peso de la hemoglobina y el volumen en el cual

está contenido; se calcula con la siguiente fórmula:

CHCM = Hemoglobina (g/dl) X 100

VGA

El resultado se expresa en gramos por decilitro (g/dl)

C. Hemoglobina Corpuscular Media (HCM): es la cantidad de

hemoglobina, por peso, en el eritrocito promedio; se calcula con la

siguiente fórmula:

HCM = Hemoglobina g/dl X 10 N° eritrocitos (millones/microlitro)

92

ANEXO N° 02

FICHA DE REGISTRO PARA CANINOS

Fecha de muestreo: ________________ N°

___________

Datos Generales:

Nombre del propietario:……………………………………………………………

Dirección:……………………………………………………………………………

Teléfono:…………………………………………………………………………….

Nombre de la mascota:……………………………………………………………

Fecha de nacimiento:………………………………………………………………

Tipo de alimentación:………………………………………………………………

Signos clínicos:

Sexo:……………………… Peso:…………………………..

T°:………………………… Mucosas:………………………

Ciclo sexual:………………………… Lat./min:……………………….

(En caso de hembras) T/LLc:………………………….

93

ANEXO N° 03

Anexo 3.1: Análisis de Factorial de Eritrocitos entre sexos

Fuente de variación GL SC CM F P

Sexo 1 0,7971 0,79707 1,36 0,2467

Edad 3 24,4389 8,14629 13,86 0,0000

Sexo*Edad 3 4,9618 1,65395 2,81 0,0425

Error 112 65,834 0,5878

Total 119 96,0318

CV: 11,26% Promedio: 6,81 Anexo 3.2: Análisis de Factorial de Hematocrito entre sexos


Sexo 1 4,41 4,408 0,41 0,5231

Edad 3 1037,23 345,742 32,18 0,0000

Sexo*Edad 3 191,76 63,919 5,95 0,0008

Error 112 1203,2 10,743

Total 119 2436,59

CV: 6,67 % Promedio: 49,14

Anexo 1.3: Análisis de Factorial de Hemoglobina entre sexos


Sexo 1 36,3 36,3 13,53 0,0004

Edad 3 196,167 65,3889 24,38 0,0000

Sexo*Edad 3 75,1 25,0333 9,33 0,0000

Error 112 300,4 2,6821

Total 119 607,967

CV: 8,63% Promedio: 18,98 Anexo 3.4: Análisis de Factorial de VCM entre sexos


Sexo 1 79,19 79,189 1,76 0,1876

Edad 3 27,98 9,3254 0,21 0,8914

Sexo*Edad 3 189,19 63,0637 1,4 0,2466

Error 112 5045,12 45,0457

Total 119 5341,48

CV: 9,91% Promedio: 72,85

94

Anexo 3.2: Análisis de Factorial de CHCM entre sexos


Sexo 1 199,42 199,425 20,21 0,0000

Edad 3 77,73 25,909 2,63 0,0539

Sexo*Edad 3 403,74 134,579 13,64 0,0000

Error 112 1104,94 9,866

Total 119 1785,83

CV: 8,11% Promedio: 38,709

Anexo 3.3: Análisis de Factorial de CHCM entre sexos


Sexo 1 173,36 173,357 23,02 0,0000

Edad 3 21,23 7,078 0,94 0,4241

Sexo*Edad 3 319,97 106,656 14,16 0,0000

Error 112 843,6 7,532

Total 119 1785,83

CV: 9,76% Promedio: 28,112

Anexo 3.4: Análisis de Factorial de Leucocitos entre sexo y edad


Sexo 1 1,37 1,3696 1,28 0,2597

Edad 3 13,589 4,5295 4,24 0,007

Sexo*Edad 3 30,332 10,1106 9,47 0,000

Error 112 119,515 1,0671

Total 119 164,805

CV: 11,69% Gran Media: 8,84,

Anexo 3.8: Análisis de Factorial de VEL


Sexo 1 0,0333 0,03333 0,16 0,6863

Edad 3 17,6062 5,86875 28,87 0,0000

Sexo*Edad 3 0,6167 0,20556 1,01 0,3906

Error 112 22,7667 0,20327

Total 119 41,0229

CV: 30,65% Gran Media:1,47

95

ANEXO N° 04

Figura N° 01. Principios de Cámara de Neubauer.

Figura N° 02. Pipeta hemocitométrica

96

Figura N° 03. Forma de lectura de lámina teñida.

Figura N° 04 Neutrófilo abastonado.

97

Figura N° 05. Neutrófilos segmentados.

Figura N° 06. Eosinófilo.

98

Figura N° 07. Linfocito.

Figura N° 08. Monocito

valores sanguineos de caninos de la ciudad de cajamarca

Documents