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UNIVERSIDAD NACIONAL DE UCAYALI

Facultad de Ciencias Agropecuarias

Escuela Profesional de Agronomía

EFECTO DE LA ESCARIFICACIÓN NATURAL CONAGUA A DIFERENTES TEMPERATURAS Y TIEMPOS DE

INMERSIÓN, EN LA GERMINACIÓN DE SEMILLAS DEOenocarpus bataua Mart. “Ungurahui”, EN PUCALLPA

Tesis para optar el título de

INGENIERO AGRÓNOMO

BACH. NILS ROCHA CAVERO

PUCALLPA – PERU

2010

1

DEDICATORIA

A mis padres, Gladys y Carlos, por su

magnánimo e incansable apoyo y por

ser mí primer ejemplo de formación

humana y académica.

A mis hermanos Eric, Katherine y

Lialy por su infatigable e

incondicional apoyo durante mis

estudios, y por enseñarme a valorar

las cosas.

2

AGRADECIMIENTO

A la Universidad Nacional de Ucayali por brindarme en sus recintos las

enseñanzas a través de profesores idóneos de la Facultad de Ciencias

Agropecuarias.

Al Ing. Grober Panduro Pisco M.Sc., asesor de la tesis, por su valioso y

constante apoyo durante toda la etapa de realización del presente trabajo de

investigación.

A la Ing. Diana Carolina Chávez Angulo, por su total apoyo y colaboración en

todas las etapas de realización del presente trabajo.

A los Ings.: Javier Amacifuen Vigo, por su apoyo en la formulación del presente

trabajo de investigación; Fernando Pérez Leal M.Sc, por brindarme las

instalaciones del Módulo de Hidroponía – UNU y todas las facilidades para la

ejecución del presente trabajo de investigación; y Leonardo Fulvio Hidalgo Ríos

M.Sc., por su valiosa orientación y consejos que ayudaron a interpretar los

resultados obtenidos.

Al Técnico Agropecuario Jorge Antonio Briones Torres por facilitarme el

material vegetal para el presente estudio.

3

CONTENIDO

Pág.

DEDICATORIA 1

AGRADECIMIENTO 2

RESUMEN 11

SUMMARY 12

I. INTRODUCCIÓN 13

II. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 14

2. 1. Taxonomía 14

2. 2. Origen, Distribución y Ecología 14

2. 3. Descripción Botánica 15

2. 4. Fenología 16

2. 5. Dispersión de las semillas de ungurahui (Oenocarpus bataua

Mart.) en el bosque 17

2. 6. Producción, cosecha y rendimiento 18

2. 7. Usos 19

2. 7. 1. Composición química y valor nutricional 20

2. 8. Germinación de semillas 21

2. 8. 1. Proceso de germinación 22

2. 8. 2. Factores que afectan la germinación 22

2. 8. 2. 1. Factores Internos 22

a. Madurez de la semilla 22

b. Viabilidad 23

2. 8. 2. 2. Factores Externos 23

a. Agua 23

b. Temperatura 24

c. Aireación 24

2. 8. 3. Tipos de germinación 25

a. Germinación epigea 25

4

b. Germinación hipogea 25

2. 9. Dormición 26

2. 9. 1. Tratamientos para superar el letargo de las semillas 26

2. 9. 1. 1. Escarificación 26

a. Escarificación mecánica 27

b. Escarificación con agua caliente 27

c. Escarificación con ácido 27

2. 9. 1. 2. Estratificación 27

2. 10. Germinación de semillas de palmeras 28

a. Remojo en agua 28

b. Escarificación 28

2. 11. Métodos de propagación del Ungurahui (Oenocarpus

bataua Mart.) 29

III. MATERIALES Y MÉTODOS 31

3. 1. Descripción del lugar de estudio 31

A. Ubicación 31

B. Características del lugar 31

C. Ecología y clima 31

D. Duración del experimento 31

E. Descripción de materiales 32

3. 2. Variables evaluadas 32

3. 2. 1. Variables Independientes 32

A. Temperatura del escarificante natural 32

B. Tiempo de inmersión del escarificador natural 32

3. 2. 2. Variables Dependientes 33

A. Porcentaje de germinación 33

B. Tiempo de germinación 33

3. 3. Diseño estadístico 34

3. 4. Tamaño del experimento 36

3. 5. Metodología 36

A. Ubicación de la planta madre 36

B. Selección de la planta madre y selección de los frutos 36

C. Selección de los frutos 37

D. Obtención de las semillas 37

5

E. Aplicación de los tratamientos 37

F. Acondicionamiento de la cama germinadora 38

G. Siembra de las semillas 39

H. Evaluación de los tratamientos en estudio 39

a. Velocidad de germinación 40

b. Tiempo medio de germinación 40

I. Análisis de semillas 41

a. Porcentaje de pureza 41

b. Número de semillas por kilogramo 41

c. Contenido de humedad de las semillas 41

J. Toma de datos ambientales 42

K. Prueba de viabilidad por el método de escarificación

física 42

IV. RESULTADOS Y DISCUSIONES 43

V. CONCLUSIONES 55

VI. RECOMENDACIONES 56

VII. BIBLIOGRAFÍA 57

VIII. ANEXOS 60

IX. ICONOGRAFÍA 79

6

LISTA DE CUADROS

EN EL TEXTO Pág.

Cuadro 1. Composición de ácidos grasos del mesocarpio de ungurahui

en comparación al aceite de olivo (% de aceite total) 20

Cuadro 2. Esquema del Análisis de Varianza 36

Cuadro 3. Porcentaje de germinación de Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui) bajo el efecto de 8 tratamiento de escarificación natural. 43

Cuadro 4. Estado fisiológico de las semillas de Oenocarpus bataua

Mart. al final del experimento por cada uno de los tratamientos. 44


(Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de escarificación natural. 46

Cuadro 6. Tiempo de germinación, inicio de la germinación y

periodo de germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de escarificación natural. 48

Cuadro 7. Velocidad de germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart (Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de

escarificación natural 53

Cuadro 8. Tiempo medio de germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart. (Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de

escarificación natural. 54

EN EL ANEXO

Anexo 2 Germinación sencilla por cada repetición por tratamiento 61

Anexo 3 Germinación acumulada por cada tratamiento 61

Anexo 4 Análisis de variancia del porcentaje de germinación por

Tratamientos 62

Anexo 5 Prueba de promedios de Tukey al 0.01 de significancia 62

Anexo 6 Datos para el cálculo del porcentaje de germinación, tiempo

medio de germinación y velocidad de germinación del tratamiento 1 62


7








Anexo 16 Características del racimo cosechado de Oenocarpus bataua

Mart. (Ungurahui) 70

Anexo 17 Características del fruto y la semilla cosechados de

Oenocarpus bataua Mart. (Ungurahui) 71

Anexo 18 Composición del fruto de acuerdo a las partes que lo

Conforman 71

Anexo 19 Porcentaje de humedad de las semillas Oenocarpus

bataua Mart. (Ungurahui) por cada tratamiento 71

Anexo 20 Porcentaje de pureza física y número de semillas por

kilogramo de las semillas de Oenocarpus bataua Mart. (Ungurahui) 71

Anexo 21 Climatología de la zona de Pucallpa 72

Anexo 26 Temperatura y humedad relativa dentro del Módulo de

Hidroponía – UNU 75

Anexo 27 Temperatura del sustrato de la cama germinadora 75

8

LISTA DE GRÁFICOS

EN EL TEXTO Pág.

Gráfico 1. Porcentaje de germinación de Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de escarificación natural 47

Grafico 2. Tiempo de germinación, inicio de la germinación y

periodo de germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de escarificación natural 49

Gráfico 3. Comparación de germinación acumulada de semillas

de Oenocarpus bataua Mart. (Ungurahui) con 5 tratamientos en estudio 51

EN EL ANEXO

Anexo 11 Germinación sencilla de semillas bajo efecto del

tratamiento 1 (sin tratamiento) 68


tratamiento 3 (Remojo de los frutos durante 24 horas + Inmersión de

las semillas en agua a 40 ºC durante 30 minutos) 68









las semillas en Agua a 50 ºC durante 60 minutos) 70

Anexo 22 Temperatura media diaria del ambiente registrada durante

la ejecución del experimento 73

Anexo 23 Humedad relativa diaria del ambiente registrada durante

la ejecución del experimento 73

9

Anexo 24 Temperatura media mensual del ambiente registrada

durante la ejecución del experimento 74

Anexo 25 Humedad relativa media mensual del ambiente registrada

durante la ejecución del experimento 74

Anexo 28 Temperatura media diaria registrada dentro del Módulo de

Hidroponía – UNU durante la ejecución del experimento 76

Anexo 29 Humedad relativa diaria registrada dentro del Módulo de

Hidroponía – UNU durante la duración del experimento 76

Anexo 30 Temperatura media mensual registrada dentro del Módulo

de Hidroponía – UNU durante la duración del experimento 77

Anexo 31 Humedad relativa media mensual registrada dentro del

Módulo de Hidroponía – UNU durante la duración del experimento 77

Anexo 32 Temperatura diaria del sustrato de la cama germinadora 78

Anexo 33 Temperatura media mensual del sustrato de la cama

germinadora 78

10

ICONOGRAFÍA

Pág.

Foto 1. Cama germinadora utilizada en el trabajo 79

Foto 2. Selección de semillas 79

Foto 3. Obtención de las semillas 79

Foto 4. Aplicación de los tratamientos 79

Foto 5. Siembra de las semillas en la cama germinadora 80

Foto 6. Cama germinadora completamente instalada para el desarrollo

del experimento 80

Foto 7. Suministro de agua utilizando el riego por nebulización 80

Foto 8. Evaluación y marcado de las semillas germinadas 80

Foto 9. Semilla embebida (a punto de germinar) 81

Foto 10. Semilla con el eje embrionario expuesto (germinado) 81

Foto 11. Semilla recién germinada 81

Foto 12. Semilla a los 7 días de germinado 81







Foto 19. Plántula del tratamiento T1 con 87 días de germinado 83





11

RESUMEN

La investigación se realizó en el Módulo de Hidroponía de la Universidad

Nacional de Ucayali, ubicada a 08º 23’ 39.6’’ Latitud Sur y 74º 34’ 39.8’’

Longitud Oeste, teniendo como objetivo evaluar el efecto de escarificación

natural con agua a diferentes temperaturas y tiempos de inmersión para la

germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart. (Ungurahui) en Pucallpa,

aplicando un Diseño Completamente Aleatorio (DCA), con 8 tratamientos y 4

repeticiones, teniendo como variable la temperatura y el tiempo de inmersión

del escarificador; distribuidos en los siguientes tratamientos: T1 (testigo: frutos

maduros, despulpados manualmente), T2 (Pre calentamiento de los frutos

(“maduración”) a 50 ºC durante 60 minutos), T3 (Remojo de los frutos durante

24 horas + inmersión de las semillas en agua a 40 ºC durante 30 minutos), T4

(Remojo de los frutos durante 24 horas + inmersión de las semillas en agua a

40 ºC durante 60 minutos), T5 (Remojo de los frutos durante 24 horas +

inmersión de las semillas en agua a 50 ºC durante 30 minutos), T6 (Remojo de

los frutos durante 24 horas + inmersión de las semillas en agua a 50 ºC durante

60 minutos), T7 (Remojo de los frutos durante 24 horas + inmersión de las

semillas en agua a 60 ºC durante 30 minutos) y T8 (Remojo de los frutos

durante 24 horas + inmersión de las semillas en agua a 60 ºC durante 60

minutos).

Aplicados los tratamientos y analizados los resultados mediante prueba de

promedios de Tukey al 0.01 de significancia, se encontró que los tratamientos

T5, T4, T3, T1 y T6 obtuvieron 61, 57, 33, 26 y 4% de germinación

respectivamente y los tratamientos T2, T7 y T8 no presentaron germinación.

Los tratamientos T5, T4, T3, T1 y T6 tuvieron un tiempo de germinación de 95,

113, 102, 79 y 83 días, respectivamente. El tratamiento T5 obtuvo el mayor

porcentaje de germinación (61%) y el menor tiempo de germinación (95 días)

superando a los demás tratamientos.

12

SUMMARY

The research was carried out in Hydroponics Module of the National University

of Ucayali, located at 08º 23' 39.6'' South Latitude and 74º 34' 39.8'' West

Longitude, aiming at evaluating the effect of natural scarification with water at

different temperatures and times immersion for seed germination Oenocarpus

bataua Mart. (Ungurahui) in Pucallpa, using a completely randomized design

(CRD), with 8 treatments and 4 repetitions, with the variable temperature and

immersion time of the scarifier; distributed in the following treatments: T1

(control: ripe fruit, pulped manually ), T2 (Pre heating of the fruits ("ripening") at

50 °C for 60 minutes), T3 (Soaking the fruit for 24 hours + seed immersion in

water at 40 ºC for 30 minutes), T4 (Soaking of the fruits for 24 hours + seed

immersion in water at 40 ºC for 60 minutes), T5 (Soak fruit for 24 hours + seed

immersion in water at 50 ºC for 30 minutes), T6 (Soak fruit 24 hours + seed

immersion in water at 50 ºC for 60 minutes), T7 (Soak the fruit for 24 hours +

seed immersion in water at 60 ºC for 30 minutes) and T8 (Soak the fruit for 24

hours + seed immersion in water at 60 ºC for 60 minutes).

Applying the treatments and analyzed the results, we found that the treatments

T5, T4, T3, T1 and T6 were 61, 57, 33, 26 and 4% germination respectively and

T2, T7 and T8 showed no germination. The treatments T5, T4, T3, T1 and T6

had a germination time of 95, 113, 102, 79 and 83 days respectively. T5

treatment had the highest percentage of germination (61%) and lower

germination time (95 days) beating the other treatments.

13

I. INTRODUCCIÓN

La especie Oenocarpus bataua Mart., regionalmente conocida como

“ungurahui”, es una de las palmeras más importantes para la población

nativa y mestiza en zonas rurales y urbanas de la Amazonia Peruana,

por tener múltiples usos como alimento (bebidas, pulpa, palmito, y un

medio para cultivar larvas de insectos, ricas en proteína, para consumo

humano), medicina, fibras, material de construcción, artesanías y objetos

manuales (Villachica, 1996). En ese sentido, Balick, 1992, menciona que

el aceite que se extrae de esta palmera tiene propiedades químicas y

físicas idénticas al del aceite de oliva (Olea europea L.), por lo cual se

considera que lo puede reemplazar fácilmente.

La importancia económica que esta palmera tiene para el agricultor,

radica básicamente en los ingresos que genera la comercialización del

fruto en los mercados locales, donde la pulpa es utilizada en la industria

de helados, chupetes y refrescos, a parte del consumo directo como

fruta. Este recurso en la actualidad es básicamente extractivo, en un

80%, por que solo consta de la cosecha de los frutos y para ello muchas

veces el árbol es derribado, por lo que esta especie es muy escasa y

cada vez es más difícil de disponer de él.

Frente a esta problemática, la falta de información agronómica de este

cultivo y el conocimiento empírico de los agricultores, se vio la necesidad

de estudiar la propagación de esta especie, sobre todo en la fase de

germinación, debido a que la semilla presenta un endocarpo duro

induciendo latencia en el embrión. Para superar esta característica es

que se planteó el siguiente objetivo: Evaluar el efecto de la escarificación

natural con agua a diferentes temperaturas y tiempos de inmersión en la

germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart.

14

II. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA

2.1.Taxonomía

El Ungurahui, antes incluido en el género Jessenia (Balick 1986

citado por Miranda et al, 2008), pertenece ahora al género

Oenocarpus, que significa “fruta de vino” (Balick, 1992), recibió este

nombre de los primeros exploradores de América que observaron

la utilización del fruto en la producción de refrescos y bebidas

altamente nutritivas (Aguilar, 2005).

Nivel Taxonómico

Clase: Liliopsida

Orden: Arecales

Familia: Arecaeae (Palmae)

Tribu: Areceae

Subtribu: Euterpeinae

Género: Oenocarpus

Especie: Oenocarpus bataua Mart.

Nombres Comunes: Perú: Cuuruhu (Bora); Hunguravi, Ungurahui;

Sacumana; Sinami; Colombia: Milpesos, Seje, Patabá; Palma de

leche; Brasil: Batauá, Pacauá, Patauá Pranca (Castaño et al,

2007); Venezuela: Aricaguá, Aricacua, Curuba, Hunguravi;

Ecuador: Chapil (Balick, 1992); Bolivia: Majo (Miranda et al,

2008).

2.2.Origen, Distribución y Ecología

Galeano (1992), Henderson et al (1995) citados por Castaño et al

(2007) señalan que es una especie nativa de América Tropical, de

probable origen amazónico donde ocurre en forma silvestre. En la

cuenca amazónica está distribuida en Bolivia, Brasil, Colombia,

15

Ecuador, Perú, Venezuela y Guyana. Se encuentra ampliamente

distribuida por Sur América, desde Panamá hasta Ecuador por la

costa del pacífico, pasando por Trinidad, Brasil, Bolivia, Surinam y

las Guyanas, desde el nivel del mar hasta los 1000 m de altura.

Balick (1992) observó que esta especie crece en hábitats variados

pero se desarrolla principalmente en zonas húmedas pantanosas

con inundaciones periódicas a lo largo de los ríos, también se

encuentra en tierras no inundables, en menor densidad debido a la

competencia del resto de vegetación.

En el Perú, el ungurahui se encuentra en los bosques de quebrada,

en suelos con un horizonte hidromórfico (gleysoles) y acumulación

de materia orgánica en la superficie. Los suelos inundados son

generalmente muy arenosos con contenido relativamente alto de

materia orgánica y un horizonte impermeable en el subsuelo,

mientras que en los suelos inundables periódicamente en las zonas

aluviales, son gley húmico, altos en limo, materias orgánicas y

nutrientes que se renuevan fácilmente (Villachica, 1996).

2.3.Descripción Botánica

Es una palmera monocaule, de 15 a 25 m de altura y de 15 a 30

cm de DAP. Estípite desarmado y con fisuras verticales tenues; con

anillos de aproximadamente 5 cm de ancho, cada 20 a 30 cm en

los primeros metros, luego mas cortos. El sistema radicular es

emergente, penacho foliar de 6 m de altura y 8 m de amplitud, de

tono glauco. Hojas compuestas pinnadas en número de 7 a 16, en

arreglo espiral, de 3 a 10 m de largo; vaina de 0.5 a 1.4 m, peciolo

de 0.2 a 1.0 m y raquis de 3 a 9 m. Foliolos en número de 80 a 110

por lado, dispuestas en un solo plano, de forma linearlancioladas,

los foliolos medios de 85 a 165 cm de longitud y 7 a 14 cm de

ancho y los basales de 60 a 150 cm de largo y 2.5 a 4.0 cm de

ancho, haz verde oscuro, envés blancuzco (TCA, 1997).

16

Villachica (1996) señala que en la axila de cada hoja adulta se

produce una sola inflorescencia, alcanzando maduración completa

durante el año solamente de 1 a 3. La inflorescencia es una

panícula intrafoliar, con 120 a 350 raquillas, 70 a 130 cm de largo,

de 4 a 7 mm diámetros. Flores unisexuales de color pardo

cremoso. Flores masculinas con 9 a 2 estambres, flores femeninas

con pistilo ovoide pequeño.

El fruto es una drupa, ovoide o elipsoide, de 2.3 a 3.6 cm de largo y

1.7 a 2.3 cm de diámetro (Spichiger et al, 1990); agrupados en

racimos con peso entre 2 a 32 kg, con 500 a 4 000 frutos

(Villachica, 1996); epicarpo liso, recubierto de indumentos seroso y

de color negro violáceo a la madurez; mesocarpo carnoso,

oleaginoso, de aproximadamente de 0.5 a 1.5 mm de espesor y de

color entre blanco y violeta; endocarpo, duro, leñosos, cubierto por

grandes fibras oscuras; endospermo ruminado (TCA, 1997).

2.4.Fenología

El ciclo reproductivo de Oenocarpus bataua Mart. es bianual, lo que

significa que una palmera adulta tendrá frutos maduros, en

promedio, cada dos años, sin embargo el tiempo de este ciclo es

ampliamente variable y tanto la floración, como la fructificación

pueden acelerarse, por ejemplo, en áreas con mayor insolación

(Miranda et al, 2008).

El ungurahui es una planta monoica, lo que significa que un mismo

individuo tiene tanto flores masculinas como flores femeninas, pero

en cada palma, primero se abren las flores masculinas y luego las

femeninas (Balick, 1992).

Collazos y Mejía (1988) citado por Castaño et al (2007) indican que

el fruto tiene dos etapas de desarrollo: la primera de desarrollo del

embrión que dura entre 6 y 7 meses y la segunda de maduración

17

con una duración de 5 a 6 meses. Coincidiendo con lo anterior,

Miranda et al (2008) señalan que desde la polinización, un fruto

tarda entre diez y trece meses en madurar y puede permanecer

maduro y accesible, en la palma entre uno y cinco meses más.

Estas diferencias en periodos de maduración de flores y frutos

generan un patrón de fructificación asincrónico, en el que se

pueden encontrar frutos maduros e inmaduros en distintas

cantidades, durante todo el año, incluso en las mismas palmas.

2.5.Dispersión de las Semillas de Ungurahui en el Bosque

En los bosques tropicales el ungurahui es abundante localmente, y

produce una gran cantidad de frutos a la vez, especialmente en

épocas donde otros frutos son escasos, siendo por esto, un recurso

importante para animales frugívoros que dependen de estos frutos

(Miranda et al, 2008). Uno de los mayores dispersores en el

continente es probablemente el hombre (Balick, 1992).

Además hay otros animales que dispersan los frutos, algunos a

cortas distancias como los Loros (Pionus fuscus, Pionites

melanocephala, Amazona acrocephala y Amazona farinosa), otros

a larga distancia como los Tucanes (Rhamphastos tucanus) y la

Pava (Penelope marail) (Castaño et al, 2007). Algunas especies

importantes para el bosque, como el Sajino (Tayassu tajacu) y la

Huangana (Tayassu pecari) tienen interacciones estrechas con las

palmeras, diseminando sus semillas, controlando su distribución y

por tanto la estructura del bosque (Miranda et al, 2008).

Oenocarpus bataua es consumido y dispersado por monos de los

géneros Cebus (C. albifrons y C. apella) “Monos capuchinos”,

Pithecia, Lagothrix y Ateles belsebuth “Maquisapa” (Castaño et al,

2007).

18

2.6.Producción, Cosecha y Rendimiento

El inicio de la fructificación aun no ha sido documentado; bajo

cultivo se asume ocurra entre 5 y 6 años después de la plantación

(TCA, 1997) y en el bosque natural, el tiempo debe ser mayor,

debido al sombramiento causado por las especies leñosas

asociadas (Miranda et al, 2008). Castaño et al (2007) indica como

promedio los 18 años edad para que esta palmera empiece a

fructificar.

La fruta, madura en el racimo y cae entre los seis a ocho días

cuando está de color negro, por lo que frecuentemente la cosecha

se realiza colectando los frutos del suelo. En condiciones de alta

demanda de la fruta, la gente corta el tallo para cosechar el racimo,

produciendo deterioro en el germoplasma nativo (Orduz y Rangel,

2002).

En Loreto, Jenaro Herrera, evaluaciones muestrales de ungurahui

en el bosque natural, refieren promedios de 1.5 racimos/planta,

peso total promedio de racimos de 28.66 Kg y peso promedio de

frutos de 19.24 Kg (TCA, 1997). Orduz y Rangel (2002) señalan

que una planta tiene dos racimos en promedio, con 10 a 15 kg cada

uno, del cual el 80% lo representa la fruta.

Miranda et al (2008) indican que cada individuo tiene de una a

cuatro infrutescencias. Cada una de ellas puede llegar a pesar 30

Kg, de los cuales hasta el 83% pueden ser frutos (Balick, 1992).

El número de frutos por infrutescencia también es variable,

oscilando entre 8 y 15 frutos por raquilla. El mesocarpio ocupa

alrededor del 40% del total de peso del fruto, y el contenido de

aceite en el mesocarpio varía de 12.4 a 18.2% (Miranda et al,

2008). Este mismo autor señala que la producción bianual de frutos

por palmera puede variar entre 500 y 7000 frutos. Villachica (1996)

19

por su parte menciona que el número de frutos por planta varía de

500 a 4000 frutos.

2.7.Usos

Las palmeras son factor importante en la economía de subsistencia

de varios pueblos neotropicales, tantos indios como de agricultores

campesinos (Balick 1992).

Los frutos tienen dos usos principales, como fuente alimenticia y

como recurso medicinal. La pulpa del fruto maduro es comestible,

diluida en agua se utiliza tradicionalmente en la preparación de

bebidas no alcohólicas, jugos, helados y dulces con alto contenido

nutritivo (Miranda et al, 2008).

A partir del fruto, comunidades de toda América del Sur han

extraído aceite mediante métodos tradicionales, que además de ser

comestible, es muy apreciado para productos cosméticos y

medicinales (Balick, 1992).

Las hojas son utilizadas para fabricar canastas, catarijanas,

algunas veces para techos (son impermeables y dejan pasar el

humo) o hacer escobas y para realizar divisiones en las viviendas o

demarcar las áreas familiares (Castaño et al, 2007; Kahn y Moussa,

1994).

Los troncos se usan como criaderos de nutritivas larvas de “Suri”

(Rhynchophorus palmarum) (Castañeda et al, 2007).

También son utilizados para la construcción de casas debido a su

gran resistencia (como armazón de la casa o para vigas) o para

fabricar los arcos, flechas y mazos de combate (Balick, 1992).

20

2. 7. 1. Composición química y valor nutricional

La pulpa de la fruta es rica en lípidos, proteínas y

vitaminas. Cada fruta fresca pesa entre 5 y 14 g, promedio

8 g con 35.6 a 44.7% de pulpa, promedio 41.4% y 6.6 a 8.1

% de aceite en la pulpa, promedio 7.4%.Tiene entre 77 y

82% de ácidos grasos no saturados y 2 a 4 % de ácidos

grasos saturados, lo que compara favorablemente con el

87% de ácidos grasos no saturados y el 7 a 8% de ácidos

grasos saturados que tiene el aceite de oliva. La

composición en ácidos grasos del aceite del mesocarpio se

presenta en el Cuadro 1.

Cuadro 1. Composición de ácidos grasos del mesocarpio de ungurahui en

comparación al aceite de olivo (% de aceite total).

Ungurahui

# C Acido grasoJamieson

(1943)

Balick &

Gershoff

(1981)

Jamieson

(1943)

Balick &

Gershoff

(1981)

C14:0 - mirístico -- -- 1.0 --

C16:0 - palmítico 8.8 13.2+-2.1 9.4 11.2

C16:1- palmitoeico -- 0.6+-0.2 -- 1.5

C18:0 - esteárico 5.6 3.6+-1.1 1.4 2.0

C18:1 - oleico 76.5 77.7+-3.1 80.5 76.0

C18:2 - linoleico 3.4 2.7+-1.0 6.9 8.5

C18:3 - linolénico -- 0.6+-0.4 -- 0.5

% no saturado 79.9 81.6+-4.7 87.4 86.5

Fuente: Villachica, 1996.

21

2.8.Germinación de Semillas

Según Jean-Prost (1970), se entiende por germinación el conjunto

de transformaciones por las cuales una planta en reposo, en el

interior de una semilla, se convierte en otra con vida activa, capaz

de extraer su alimento del medio circundante.

Wilson y Loomis (1992) entienden por germinación la reanudación

del crecimiento del embrión y termina al aparecer la radícula al

exterior de la cubierta seminal.

Hartmann y Kester (1995) definen la germinación como el proceso

de reactivación de la maquinaria metabólica de la semilla y la

emergencia de la radícula (raíz) y de la plúmula (tallo), conducentes

a la producción de una plántula.

Valla (2004) menciona las condiciones necesarias para que una

semilla pueda germinar son:

- La semilla debe estar madura.

- La semilla debe estar viva.

- La semilla debe ser permeable.

- La semilla debe estar bien constituida.

- La condiciones externas básicas son: agua, oxígeno, calor y en

algunos casos, luz.

A su vez, Hartmann y Kester (1995) Indican que la iniciación de la

germinación requiere de tres condiciones:

Primera: La semilla debe ser viable; esto es, el embrión debe estar

vivo y ser capaz de germinar.

Segunda: La semilla no debe estar en letargo ni el embrión

quiescente. No deben existir barreras fisiológicas o físicas que

induzcan letargo ni barreras químicas para la germinación.

22

Tercera: La semilla debe estar expuesta a las condiciones

ambientales apropiadas: agua, temperatura, oxigeno y en

ocasiones luz.

2.8.1. Proceso de Germinación

Wilson y Loomis (1992) mencionan que en condiciones

favorables, a la imbibición de agua por las semillas siguen

muchas actividades. El protoplasma se hidrata y sus enzimas

empiezan a funcionar. El almidón es digerido y se transforma

en azúcar, los lípidos en compuestos solubles y las proteínas

almacenadas en aminoácidos. La disponibilidad de estas

sustancias permite la liberación de energía por la respiración,

el traslado de alimentos al embrión y el comienzo del

crecimiento de éste. El humedecimiento de las semillas hace

que la respiración aumente rápidamente. A consecuencia del

aumento de la actividad enzimática y de alimento y energía

disponible en la semilla en germinación, el alargamiento

celular empieza en el embrión y nuevamente se pone en

marcha el desarrollo de la nueva planta que había empezado

con la fecundación.

2.8.2. Factores que afectan la germinación

2.8.2.1. Factores internos

a. Madurez de la semilla

Decimos que una semilla es madura cuando ha alcanzado su

completo desarrollo tanto desde el punto de vista morfológico

como fisiológico (Fuller y Ritchie, 1972). Jean-Prost (1970)

indica que la madurez morfológica se consigue cuando las

distintas estructuras de la semilla han completado su

desarrollo, dándose por finalizada cuando el embrión ha

23

alcanzado su máximo desarrollo. Hess (1980) señala que

aunque la semilla sea morfológicamente madura, muchas de

ellas pueden seguir siendo incapaces de germinar porque

necesitan experimentar aún una serie de transformaciones

fisiológicas. Lo normal es que requieran la pérdida de

sustancias inhibidoras de la germinación o la acumulación de

sustancias promotoras.

b. Viabilidad

La viabilidad de las semillas es el período de tiempo durante el

cual las semillas conservan su capacidad para germinar

(Fuller y Ritchie, 1972). Es un período variable y depende del

tipo de semilla y de las condiciones de almacenamiento (Jara,

1996).

2.8.2.2. Factores Externos

a. Agua

La absorción de agua es el primer paso, y el más importante,

que tiene lugar durante la germinación; porque para que la

semilla recupere su metabolismo es necesaria la rehidratación

de sus tejidos (Valla, 2004). Para Hess (1980) la toma de agua

por las semillas secas empieza con la hinchazón, un proceso

puramente físico. Hartmann y Kester (1995) resaltan que el

contenido de agua es un factor muy importante en el control

de la germinación de la semilla. Con menos del 40 o 60 % de

agua en la semilla (con base en peso fresco), no se efectúa la

germinación. La entrada de agua en el interior de la semilla se

debe exclusivamente a una diferencia de potencial hídrico

entre la semilla y el medio que le rodea (Valla, 2004). En

condiciones normales, este potencial hídrico es menor en las

semillas secas que en el medio exterior. Por ello, hasta que

24

emerge la radícula, el agua llega al embrión a través de las

paredes celulares de la cubierta seminal; siempre a favor de

un gradiente de potencial hídrico. Aunque es necesaria el

agua para la rehidratación de las semillas, un exceso de la

misma actuaría desfavorablemente para la germinación, pues

dificultaría la llegada de oxígeno al embrión (Fuller y Ritchie,

1972).

b. Temperatura

La temperatura es un factor decisivo en el proceso de la

germinación, ya que influye sobre las enzimas que regulan la

velocidad de las reacciones bioquímicas que ocurren en la

semilla después de la rehidratación (Jara, 1996). La actividad

de cada enzima tiene lugar entre un máximo y un mínimo de

temperatura, existiendo un óptimo intermedio. Del mismo

modo, en el proceso de germinación pueden establecerse

unos límites similares. Por ello, las semillas sólo germinan

dentro de un cierto márgen de temperatura. Si la temperatura

es muy alta o muy baja, la geminación no tiene lugar aunque

las demás condiciones sean favorables (Wilson y Loomis,

1992). Hartmann Y Kester (1995) señalan que la temperatura

óptima para las semillas de la mayoría de las plantas que no

están en letargo es de 20 a 30 ºC.

c. Aireación

Hartmann y Kester (1995) señalan que un buen intercambio

de gases entre el medio de germinación y el embrión es

básico para una germinación rápida y uniforme. La mayor

parte de las semillas requieren para su germinación un medio

suficientemente aireado que permita una adecuada

disponibilidad de O2 y CO2 (Wilson y Loomis, 1992). De esta

forma el embrión obtiene la energía imprescindible para

25

mantener sus actividades metabólicas. La mayoría de las

semillas germinan bien en atmósfera normal con 21% de O2 y

un 0.03% de CO2. Sin embargo, existen algunas semillas que

aumentan su porcentaje de germinación al disminuir el

contenido de O2 por debajo del 20% (Hess, 1980). Para que la

germinación tenga éxito, el O2 disuelto en el agua de

imbibición debe poder llegar hasta el embrión (Hartmann y

Kester, 1995). A veces, algunos elementos presentes en la

cubierta seminal como compuestos fenólicos, capas de

mucílago, macroesclereidas, etc. pueden obstaculizar la

germinación de la semilla por que reducen la difusión del O2

desde el exterior hacia el embrión (Fuller y Ritchie, 1972).

2.8.3. Tipos de Germinación

a. Germinación Epigea

En las plántulas denominadas epigeas, los cotiledones

emergen del suelo debido a un considerable crecimiento del

hipocótilo (porción comprendida entre la radícula y el punto de

inserción de los cotiledones). Posteriormente, en los

cotiledones se diferencian cloroplastos, transformándolos en

órganos fotosintéticos y, actuando como si fueran hojas.

Finalmente, comienza el desarrollo del epicótilo (porción del

eje comprendida entre el punto de inserción de los cotiledones

y las primeras hojas). Presentan este tipo de germinación las

semillas de cebolla, ricino, judía, lechuga, mostaza blanca, etc

(Hartmann y Kester, 1995).

b. Germinación Hipogea

En las plántulas hipogeas, los cotiledones permanecen

enterrados; únicamente la plúmula atraviesa el suelo. El

hipocótilo es muy corto, prácticamente nulo. A continuación, el

26

epicótilo se alarga, apareciendo las primeras hojas

verdaderas, que son, en este caso, los primeros órganos

fotosintetizadores de la plántula. Este tipo de germinación lo

presentan las semillas de los cereales (trigo, maíz, cebada,

etc.), guisante, haba, robles, etc (Hartmann y Kester, 1995).

2.9.Dormición (Camacho, 1994)

Dormición es el estado en que se encuentra una semilla viable sin

que germine, aunque disponga de suficiente humedad para

embeberse, una aireación similar a la de las primeras capas de un

suelo bien ventilado, y una temperatura que se encuentra entre 10º

y 30 ºC. Por lo tanto, quiescencia se entenderá como la inhibición

por no tener las condiciones ambientales adecuadas para la

germinación. Dormición será sinónimo de dormancia, letargo,

latencia, reposo y vida latente.

Los mecanismos causantes de la dormición son:

- Impermeabilidad al agua.

- Baja resistencia a los gases.

- Resistencia mecánica al crecimiento del embrión.

- Permeabilidad selectiva a los reguladores del crecimiento.

- Bloqueos metabólicos.

- Presencia de inhibidores.

- Embriones rudimentarios.

2.9.1. Tratamientos para Superar el Letargo de las Semillas

(Hartmann y Kester, 1995)

2.9.1.1. Escarificación

Es cualquier proceso de romper, rayar, alterar

mecánicamente o ablandar las cubiertas de las semillas

27

para hacerlas permeables al agua y a los gases. Se

consideran 3 tipos de escarificación.

a. Escarificación Mecánica: Raspar con lija las cubiertas

con semillas duras, limarlas o quebrarlas con un martillo o

entre las mordazas de un tornillo de banco, son métodos

simples y útiles para semillas pequeñas relativamente

grandes.

b. Escarificación con Agua Caliente: Coloque las

semillas en un recipiente en una proporción de 4 a 5 veces

su volumen de agua caliente a temperatura entre 77º y 100

ºC de inmediato se retira la fuente de calor, las semillas se

dejan remojar durante 12 a 24 horas en el agua que se va

enfriando gradualmente. De ordinario, las semillas se

deben sembrar después del tratamiento con agua caliente.

c. Escarificación con Ácido: Las semillas secas se

colocan en recipientes y se cubren con ácido sulfúrico

concentrado (de peso especifico 1.84) en proporción de

una parte de semilla por 2 de acido. La cantidad de

semillas que se trate a la vez no debe de sobrepasar los 10

kg para evitar un calentamiento incontrolado.

2.9.1.2. Estratificación

Es un método de tratamiento de semillas en letargo en el

cual las semillas embebidas de agua son sometidas a un

periodo de enfriamiento para que se efectué la post

maduración del embrión.

28

2.10. Germinación de Semillas de Palmeras (Meerow, s.f.)

Las palmas son las únicas entre las plantas ornamentales leñosas,

con pocas excepciones, que sólo pueden propagarse por semillas.

También son notorias en el mercado de las plantas, por la

germinación lenta y desigual de sus semillas. Se ha estimado que

más del 25% de todas las especies de palmas, tardan más de 100

días en germinar y tienen menos del 20% de germinación total. Las

razones de esto permanecen oscuras, ya que un trabajo de

investigación muy pequeño ha sido efectuado sobre las

condiciones de inactividad de las semillas de palmeras.

Debido a la germinación lenta y desigual de las semillas de palmas,

hay mucho interés en cualquier tratamiento anterior a la siembra

que pueda acelerar la germinación o produzca mayores o más

parejos porcentajes de germinación. El productor comercial de

palmeras, debe evaluar la rentabilidad contra el costo de cualquier

tratamiento anterior a la siembra. Por lo que antes de sembrar las

semillas de palmeras, deben seguir los siguientes tratamientos.

a. Remojo en agua. Una recomendación bastante universal ha

sido siempre remojar las semillas en agua durante 1 a 7 días. Es

aconsejable cambiar el agua diariamente. Dicho tratamiento sólo es

útil después de comprobar los síntomas de inactividad (si

existieran) de las semillas, ya que en pocas especies de palmas se

han comprobado dichos síntomas.

La semilla debe sembrarse inmediatamente después del remojo, ya

que el almacenamiento posterior a la rehidratación puede inducir

una inactividad secundaria.

b. Escarificación. Este tratamiento implica el adelgazamiento del

endocarpo óseo de la semilla que puede impedir la absorción de

agua. Este adelgazamiento puede lograrse mecánicamente

29

(lijando) desgastando la superficie de la semilla hasta que el

endosperma se haga visible, o empapando la semilla en ácido

sulfúrico (SO4H2) diluido, durante 10 a 30 minutos.

La escarificación ha aumentado el porcentaje de germinación de

varias especies de palmas con la cubierta de las semillas duras e

impermeables.

2.11. Métodos de Propagación del Ungurahui (Oenocarpus bataua

Mart.)

La propagación es por semilla, que tiene alto poder germinativo

(Orduz y Rangel, 2002). La semilla contenida en el endocarpo, en

ambiente húmedo, puede conservar su viabilidad hasta 6 semanas

(TCA, 1997).

Con respecto al tiempo de germinación y los tratamientos utilizados

en semillas de ungurahui se tienen resultados dispersos.

Villachica (1996) señala que la semilla se obtiene eliminando la

pulpa y remojándola en agua a 50 ºC de 30 a 60 minutos,

lográndose 90 a 98% de germinación. La germinación se produce a

los 40 y 88 días después del almacigado.

Collazos y Mejía (1988) citado por Castaño et al (2007) encontraron

que la germinación se produce entre 45 y 120 días en condiciones

naturales y en menos de 30 días cuando se tratan con agua tibia.

Otro experimento realizado por Ríos et al (1997) citado por Castaño

et al (2007) evaluó la germinación en un semillero cubierto y otro

sin cubierta, cada uno con semillas al natural, escarificada y

escaldada. Encontraron que las semillas empiezan a germinar a los

31 días y la mayor germinación se da en el día 45, la germinación

más alta se presentó en el escaldado sin cubierta (86 %), seguido

30

del escarificado con cubierta (80%) y escarificado sin cubierta (79

%); concluyen que las condiciones naturales de alta pluviosidad y

temperatura favorecen la germinación.

Castaño et al (2007) cita los resultados obtenidos por diferentes

autores como; Forero & Balick (1985), quienes indican que la

semilla fresca germina entre 40 y 90 días; Braun (1968) quien

señala que la semilla germina entre los 20 y 40 días de haber sido

sembrada; Jordan (1970) encontró una germinación entre el 80-

99% después de 79 y 843 días respectivamente; Ayangma (1997)

quien afirma que la semilla demora de 4 a 8 semanas en germinar

sin aplicar tratamientos.

En un experimento registrado por Balick (1992) a los 52 días

reporta un 98% de germinación en semillas remojadas en agua a

temperatura ambiente sin el epicarpio, como también en semillas

tratadas en agua caliente a 50 ºC durante media hora sin el

epicarpo y mesocarpo.

31

III. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1.Descripción del Lugar de Estudio

A. Ubicación.

El presente experimento se desarrolló en el Módulo de

Hidroponía de la Universidad Nacional de Ucayali, ubicada en

el kilómetro 6.00 de la Carretera Federico Basadre, Distrito de

Callería, Provincia de Coronel Portillo, Región Ucayali, selva

baja de la Amazonía Peruana. Geográficamente se encuentra

localizada a 08º 23’ 39.6” Latitud Sur y 74º 34’ 39.8” Longitud

Oeste, a 144 msnm.

B. Características del Lugar.

El Módulo de Hidroponía de la Universidad Nacional de

Ucayali consta de 4 camas germinadoras y/o enraizadoras

hechas de fibra de cemento y con arena como sustrato. El

suministro de agua se hace a través de riego por nebulización.

C. Ecología y Clima.

La clasificación ecológica corresponde a un bosque tropical

semi-siempre verde estacionalmente lluvioso, el clima es

cálido húmedo, con una temperatura comprendida entre 21.6

ºC y 34.1 ºC, con un promedio mensual de 25.7 ºC, la

precipitación anual es de 1 752.8 mm y una humedad relativa

de 77% (Anuario Geográfico Departamental, 2007).

D. Duración del Experimento.

El experimento tuvo una duración de 120 días, iniciándose en

el mes de Mayo de 2010 y finalizando en Setiembre del 2010.

32

E. Descripción de Materiales.

Los materiales empleados en esta investigación fueron: 800

frutos de Oenocarpus bataua Mart., drupa ovoide u elipsoide,

con un promedio de 3.20 cm de largo y 2.21 cm de ancho, de

7.05 g de peso, de color violáceo oscuro a Negro.

Otros materiales utilizados fueron: Baldes de 20 litros,

costales, machete, cuchillo, pala recta, wincha de 5 metros,

olla, vernier, estufa, termómetro (0 a 105 ºC), balanza

gramaera (5 Kg de capacidad y 25 g de sensibilidad), balanza

de gancho o romana (50 Kg de capacidad y 2 Kg de

sensibilidad), balanza analítica, Navegador GPS, placas petri,

agua, arena (sustrato), desinfectante para el sustrato (Solución

de Hipoclorito de Sodio al 2%) y otros.

3.2.Variables Evaluadas

3.2.1. Variables Independientes

A. Temperatura del Escarificador Natural.

Se realizó la aplicación del escarificador natural (agua) a

diferentes temperaturas a las semillas previamente

seleccionadas de acuerdo a cada tratamiento en estudio.

B. Tiempo de Inmersión en el Escarificador Natural.

Se realizó la aplicación del escarificador natural (agua) a

diferentes tiempos de inmersión a las semillas previamente

seleccionadas de acuerdo a cada tratamiento en estudio.

33

3.2.2. Variables Dependientes

A. Porcentaje de Germinación.

Para determinar el porcentaje de germinación o capacidad

germinativa, se contó todas las semillas germinadas por

tratamiento durante el tiempo que duró el experimento.

Para su cálculo se aplicó la siguiente fórmula:

GAPG = -------- x 100

TSDonde:

PG: Porcentaje de germinación (%).

GA: Germinación acumulada hasta el ultimo día de

evaluación.

TS: Total de semillas sembradas.

B. Tiempo de Germinación.

Se consideró desde la siembra de las semillas hasta el día

en el que se registró la última germinación.

TG = IG + PrG

Donde:

TG: Tiempo de germinación (días)

IG: Inicio de la germinación.

PrG: Periodo de Germinación.

Esta variable está conformada por 2 componentes:

34

B.1. Inicio de la Germinación: Se consideró el inicio

de la germinación a partir de la primera semilla

germinada por cada tratamiento en estudio.

IG = 1S

Donde:

IG: Inicio de la Germinación (días)

1s: Día de la germinación de la primera semilla por

cada tratamiento.

B.2. Periodo de Germinación: Se consideró el

periodo de la germinación a partir del inicio de la

germinación hasta el día en el que se registró la

última germinación.

PrG = UG – 1S

Donde:

PrG: Periodo de Germinación (Días)

UG: Día en el que se registró la última germinación.

3.3.Diseño Estadístico

En el presente experimento se utilizó un Diseño Completamente

Aleatorio (Calzada, 1982) con 8 tratamientos y 4 repeticiones. Se

usó la prueba de promedios de Tukey con un nivel de significancia

de 0.01.

Los datos fueron procesados y analizados con la ayuda del

software informático Statistical Package for the Social Sciences –

SPSS (Paquete Estadístico para las Ciencias Sociales) Versión 12.

35

Los tratamientos quedaron formulados de la siguiente manera:

T1= Tratamiento Testigo (Frutos madurados naturalmente y

despulpados manualmente).

T2= Pre calentamiento de los frutos (“maduración”) a 50 ºC durante

60 minutos.

T3= Remojo de los frutos durante 24 horas + Inmersión de las

semillas en agua a 40 ºC durante 30 minutos.











El modelo matemático es el siguiente:

Yij=U+Ti+Eij

Donde:

Yij = j-ésima observación en el i-enésimo tratamiento.

U = Media general.

Ti = Efecto del i-ésimo tratamiento en estudio.

Eij = Error experimental.

36

Cuadro 2. Esquema del Análisis de Varianza.

FV GL

Tratamiento 7

Error 24

Total 31

3.4.Tamaño del Experimento

El número de tratamientos empleados en el experimento fueron 8,

cada tratamiento contó con 100 semillas, con 4 repeticiones por

tratamiento y cada repetición con 25 semillas, haciendo un total de

800 semillas.

3.5.Metodología

A. Ubicación de la Planta Madre.

La planta madre seleccionada se encuentra ubicada en el caserío

“Esperanza de Panaillo”, distrito de Yarinacocha, Provincia de

Coronel Portillo, Departamento de Ucayali, georeferencialmente

ubicada a 08º 16’ 18” Latitud Sur y 74º 42’ 11” Longitud Oeste.

Dicha palmera se encuentra dentro de la propiedad del Técnico

Agropecuario Jorge Antonio Briones Torres.

El terreno es un pastizal con predominancia de Brachiaria sp, en

la cual se halla una parte de bosque primario que no fue

intervenido, en donde existe una población considerable de

palmeras de esta especie (ungurahual).

B. Selección de la Planta Madre y Cosecha de los Frutos.

La planta madre seleccionada tiene una altura de 9 m, con un

DAP de 0.40 m, con presencia de 3 racimos, uno de ellos maduro,

37

de los que se dispuso para el presente trabajo, y los otros 2 en

proceso de maduración.

La cosecha fue manual, trepándose por el estípite y cortando el

racimo con la ayuda de un machete. El racimo cosechado fue

colocado en un saco conjuntamente con los frutos sueltos, para

posteriormente ser transportado y seleccionados. Para mayor

detalle acerca de las características de racimo, ver Anexo 16.

C. Selección de los Frutos.

Los frutos fueron separados del racimo en forma manual,

seleccionándose 800 frutos que fueron sometidos al presente

experimento. Para la selección se consideró los siguientes

criterios: Madurez total, forma y tamaño uniforme, descartándose

los que presenten menor tamaño, deformes o algún tipo de daño.

Estos frutos seleccionados fueron pesados y medidos (Ver Anexo

17).

D. Obtención de las Semillas.

La obtención de las semillas se hizo de acuerdo a cada uno de

los tratamientos en estudio.

E. Aplicación de los Tratamientos.

Para el Tratamiento Uno (T1) los frutos fueron despulpados a

mano con la ayuda de cuchillos y sembrados de forma directa sin

aplicársele ningún tratamiento.

Para el Tratamiento Dos (T2) los frutos fueron sometidos a un

calentamiento en agua, a 50 ºC durante 60 minutos hasta lograr el

ablandamiento de pericarpio (“maduración”), luego fueron

38

despulpados manualmente, se dejaron secar al ambiente por 2

horas y posteriormente sembrados.

Para los Tratamientos Tres, Cuarto, Cinco, Seis, Siete y Ocho (T3,

T4, T5, T6, T7 y T8) los frutos fueron sometidos a un remojo en

agua a temperatura ambiente durante 24 horas con el fin de

ablandar el pericarpio (“maduración”), luego fueron despulpados a

mano y se dejaron secar a la sombra por 24 horas. Posterior a

esto se realizó la aplicación de los tratamientos a cada uno

respectivamente. Para eso se procedió a calentar agua en un

recipiente de metal (olla) utilizando una fuente de calor

convencional (cocina a gas). El volumen de agua que se utilizó

fue de 5 veces el volumen de las semillas (TCA, 1997), el cual se

calculó por observación directa. Una vez que el agua alcanzó la

temperatura en estudio, la cual se registró con ayuda de un

termómetro, se sumergió las 100 semillas durante el tiempo

establecido para cada tratamiento. Pasado el tiempo requerido

para cada tratamiento, se procedió a retirar las semillas con ayuda

de un recipiente. Estas se dejaron enfriar por una hora y luego

fueron sembrados.

F. Acondicionamiento de la cama germinadora.

La cama germinadora se encuentra ubicada en el módulo de

Hidroponía de la Universidad Nacional de Ucayali, con

dimensiones de 6.06 m de largo por 0.82 m de ancho;

conteniendo como sustrato arena de río.

Para el acondicionamiento de la cama germinadora se procedió

de la siguiente manera: se removió la arena de la cama con ayuda

de una pala y se la colocó sobre unos plásticos, dejando

descubierta la parte interior de la cama compuesta por grava, a la

que se le desinfectó regándola con agua hirviendo y con una

solución de Hipoclorito de Sodio al 1% a razón de 4 l/m2,

39

dejándolo secar por 24 horas, para después ser regada con agua

a temperatura ambiente para eliminar los restos del desinfectante.

El sustrato (arena) fue tamizado para eliminar las impurezas

presentes (semillas, restos de semillas, rastrojos, piedras, etc) y

sometido al mismo proceso de desinfección: agua caliente y una

solución de Hipoclorito de Sodio al 2% a razón de 4 l/m2,

dejándose secar por 24 horas para luego ser regada con agua a

temperatura ambiente*.

Una vez desinfectado, el sustrato se distribuyó uniformemente en

la cama germinadora, nivelándola con ayuda de una tabla de

madera, dejando así la cama germinadora lista para la siembra.

G. Siembra de las Semillas.

Con las semillas ya tratadas, se procedió a la siembra a los 2 días

después de acondicionar la cama germinadora. El distanciamiento

fue de 6 cm x 6 cm. Las semillas se sembraron a una profundidad

de 2 cm, dispuesta de forma horizontal (“echadas”).

El suministro de agua se realizó con el sistema de riego por

nebulización con el que cuenta la cama germinadora y esta fue

diaria o interdiaria, de acuerdo a la humedad que presentase el

sustrato (arena). La distribución de la se semillas se puede ver en

el Anexo 1

H. Evaluación de los Tratamientos en Estudio.

Las evaluaciones se realizaron en forma diaria posterior a la

siembra, con una duración de 124 días. Se registraron el número

de semillas germinadas por día por cada repetición de cada

tratamiento en estudio.

Pérez Leal, F. 2010. Acondicionamiento de Cama Germinadora. Pucallpa, Perú, UniversidadNacional de Ucayali. Comunicación Personal.

40

La germinación se consideró a partir de que la semilla mostrase

un “punto blanco” (eje embrionario) en el extremo de la misma,

donde se une al racimo (Ver Foto 10).

Con los datos obtenidos de las evaluaciones se procedió a

calcular los siguientes parámetros:

a. Velocidad de Germinación.

La velocidad de germinación está definida como la relación del

número de semillas germinadas con el tiempo de germinación.

N Xi X1 X2 X3 Xn

VG = ------ = ------ + ------ + ------- + … + -------i=1 Ni 1 2 3 n

Donde:

VG: Velocidad de Germinación.

Xi: Número de semillas germinadas en la i-ésima fecha de

medición.

Ni: Número de días a partir de la siembra en la i-ésima

fecha de medición.

b. Tiempo Medio de Germinación.

Se denomina tiempo medio de germinación, TMG o T50, al

número de días necesarios para que germinen la mitad de las

semillas con respecto al total de semillas que germinan.

(pi x gi)TMG = --------------------

gi

Donde:

TMG: Tiempo medio de germinación (días).

pi: puntos medios [(ti + ti-1)/2].

gi: Germinación sencilla.

41

I. Análisis de Semillas.

a. Porcentaje de Pureza.

En el experimento se consideró el porcentaje de pureza física del

total de las semillas recolectadas de la planta madre,

descartándose aquellas que presentaron deformaciones, daños o

heridas.

NSSPP = ---------- x 100

NTS

Donde:

PP = Porcentaje de pureza.

NSS = Número de semillas sanas.

NTS = Número total de semillas.

b. Número de Semillas por Kilogramo.

Una vez obtenidas las semillas se tomaron al azar 100 semillas

que se pesaron y por medio de la siguiente fórmula se calculó el

número de semillas por kilogramo:

1000 g x 100 semillasNº Semillas = ----------------------------------

Peso de 100 semillas

c. Contenido de Humedad de las semillas.

Para determinar el contenido de humedad de las semillas, se

consideró 50 semillas adicionales para cada uno de los

tratamientos en estudio, a las cuales se les pesó y luego se las

secó en una estufa a 100 ± 2 ºC de temperatura hasta que el

42

peso de las semillas fue constante. Para el cálculo del contenido

de humedad se aplicó la siguiente fórmula:

Pi - PfCH = ------------ x 100

Pf

Donde:

CH = Porcentaje del Contenido de Humedad (%).

Pi = Peso inicial.

Pf = Peso final.

J. Toma de Datos Ambientales.

Se registraron los siguientes factores climatológicos: Temperatura

(máxima, mínima y media) y humedad relativa del ambiente y

dentro del módulo de Hidroponía, y a su vez la temperatura del

sustrato.

K. Prueba de Viabilidad por el Método de Escarificación Física.

Esta prueba se hizo al final de las evaluaciones con las semillas

que no germinaron en cada uno de los tratamientos, con el

objetivo de conocer el estado fisiológico de estas (viables o

muertas). La prueba de viabilidad consistió en eliminar el

endocarpo con una lija para metal Nº 40 hasta exponer todo el

endospermo de la semilla. Luego estas semillas fueron

sumergidas en agua a temperatura ambiente hasta observar la

salida del eje embrionario (Metodología propia).

43

IV. RESULTADOS Y DISCUSIONES

4.1.Porcentaje de Germinación.


(Ungurahui) bajo el efecto de 8 tratamientos de

escarificación natural.

Repeticiones

Tratamientos

T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8

R1 28 0 28 60 52 0 0 0

R2 32 0 56 52 76 16 0 0

R3 16 0 28 60 68 0 0 0

R4 28 0 20 56 48 0 0 0

Promedio 26 0 33 57 61 4 0 0

T1= Tratamiento Testigo (Frutos madurados naturalmente y despulpados manualmente).

T2= Pre calentamiento de los frutos (“maduración”) a 50 ºC durante 60 minutos.

T3= Remojo de los frutos durante 24 horas + Inmersión de las semillas en agua a 40 ºC durante 30 minutos.






En el cuadro 3, se observa que los tratamientos T2, T7 y T8 no

presentaron ninguna germinación, por lo que en el Cuadro 5 solo se

han considerado los tratamientos que tuvieron efectos positivos

sobre la germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui).

El experimento concluyó a los 124 días de sembrado las semillas,

debido a que no se registraba germinación en ninguno de los

tratamientos, siendo el tratamiento T4 el último en presentar

germinación en el día 113, habiendo los demás tratamientos

suspendido su germinación 20 días atrás (Cuadro 6); este fenómeno

se debió posiblemente al cambio del clima por 10 días, en el cual la

temperatura y la humedad relativa oscilaban entre 13 y 23 ºC, y 90 y

44

98% respectivamente (Ver Anexo 21), cuando las condiciones

adecuadas para la germinación de esta especie son de 25 a 30 ºC y

de 80 a 85% de humedad relativa (TCA, 1997).

Al obtenerse un bajo porcentaje de germinación en el experimento se

realizó una prueba de viabilidad (método de escarificación física)

para determinar el estado en el que se encontraban las semillas; los

resultados se muestran en el siguiente cuadro.

Cuadro 4. Estado fisiológico de las semillas de Oenocarpus bataua

Mart. obtenidas en la prueba de viabilidad al final del

experimento por cada uno de los tratamientos.

Tratamientos

%

Germinadas Viables Muertas

T1 26 37 37

T2 0 50 50

T3 33 20 47

T4 57 4 39

T5 61 4 35

T6 4 58 38

T7 0 40 60

T8 0 20 80

En el cuadro 4 se muestra el estado fisiológico de las semillas

obtenidas en la prueba de viabilidad al final del experimento. Como

se puede observar en el caso del tratamiento T2 este no presentó

germinación, sin embargo el 50% de las semillas aun se encuentran

viables. En el caso de los tratamientos T7 y T8, los cuales fueron

sometidos a la máxima temperatura del escarificador, tampoco

presentaron germinación, con un 40% y 20% de semillas viables

respectivamente, porcentaje muy bajo comparado a los anteriores

tratamientos, pudiéndose deducir que la alta mortalidad fue producto

45

del mismo tratamiento, por ser expuestas a altas temperaturas (60

ºC).

Con las semillas viables se puede asumir que sufrieron algún tipo de

dormición, producto de las condiciones desfavorables a las que

estuvieron expuesta; como señala Camacho (1994) sobre la

germinación incompleta, que se produce cuando parte de población

permanece firme mucho tiempo, o sea, se embebe pero no germina

ni se pudre, o bien, permanece dura, es decir, ni siquiera se embebe;

este hecho se produce en semillas extremadamente sensibles a las

condiciones de temperatura y humedad, como es el caso de

Oenocarpus bataua Mart.

De las semillas muertas, alrededor del 50% no mostraron cambio

físico alguno, pudiéndose deducir 2 probabilidades, la primera, que

no fueron viables desde la formación de la semilla y, segundo, que

fueron afectados por los factores externos mencionados

anteriormente. La primera probabilidad quedaría descartada según

los estudios realizados por Balick (1992), quien afirma que un alto

porcentaje (95 a 98%) de la semilla fresca llega a germinar;

coincidiendo con Pinedo (1989) citado por Villachica (1996) quien

reporta entre un 90 y 98% de germinación; por lo tanto, lo mas

probable es que las condiciones externas desfavorables hayan

afectado la viabilidad de las semillas.

La otra mitad de las semillas muertas presentaron daños en el eje

embrionario (necrosamiento), ante lo cual Hartmann y Kester (1995)

indican que la exposición a temperaturas bajas (10 a 15ºC) en

semillas de especies tropicales durante la germinación puede

ocasionar daño en el eje embrionario y conducir hasta la muerte del

propio embrión.

46


(Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamiento de


RepeticionesTratamientos

T1 T3 T4 T5 T6

R1 28 28 60 52 0

R2 32 56 52 76 16

R3 16 28 60 68 0

R4 28 20 56 48 0

Promedio 26 33 57 61 4

En el Cuadro 5, se observa solamente los tratamientos que tuvieron

efectos positivos sobre la germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart. (Ungurahui). En este cuadro se observa que el

tratamiento T5 (remojo de los frutos durante 24 horas para ablandar

el pericarpo más la inmersión de las semillas en agua a 50 ºC

durante 30 minutos) logró el 61% de germinación, siendo el

tratamiento con el que se obtuvo mayor germinación; en segundo se

encuentra el T4 (remojo de los frutos durante 24 horas para ablandar

el pericarpo más la inmersión de las semillas en agua a 40 ºC

durante 60 minutos) que logró el 57% de germinación; en tercer lugar

tenemos el T3 (remojo de los frutos durante 24 horas para ablandar el

pericarpo más la inmersión de las semillas en agua a 40 ºC durante

30 minutos) con un 33% de germinación; en el cuarto lugar el T1

(frutos madurados naturalmente y despulpados manualmente) que

obtuvo un 26% de germinación y por último, el T6 (remojo de los

frutos durante 24 horas para ablandar el pericarpo más la inmersión

de las semillas en agua a 50 ºC durante 60 minutos) que logró un 4%

de germinación.

47

Gráfico 1. Porcentaje de germinación de Oenocarpus bataua Mart.



33

5761

4

26

0

10

20

30

40

50

60

70

T1 T3 T4 T5 T6

Tratamientos

Germ

inació

n(%

)

En el Gráfico 1, se presentan los porcentajes de germinación de los

tratamientos que presentaron germinación, los cuales fueron

sometidos a un análisis de variancia (Ver Anexo 4), teniendo como

resultado que existe diferencias altamente significativas entre

tratamientos por lo que se recurrió a la prueba de promedios de

Tukey al 0.01 (Ver Anexo 5), en el que se observa que los

tratamientos T5 (61%) y T4 (57%) no tienen diferencia significativas

(T5 = T4), pero ambos difieren significativamente de los demás

tratamientos T3, T1 y T6; y finalmente se observa que los tratamientos

T3 (33%), T1 (26%) y T6 (4%) presentan diferencias altamente

significativas entre sí (T3 > T1 > T6).

Balick (1992) reporta que semillas de Oenocarpus bataua Mart. con

epicarpo y mesocarpo removidos y remojados en agua tibia (50 ºC)

durante media hora lograron un 98% de germinación, resultados muy

por encima de los obtenidos durante el experimento (cuyo fenómeno

fue explicado líneas arriba), considerándose al tratamiento T5 (remojo

de los frutos durante 24 horas para ablandar el pericarpo más la

48

inmersión de las semillas en agua a 50 ºC durante 30 minutos)

similar al de este autor, el que obtuvo mayor porcentaje de

germinación (61%) respecto a los demás tratamientos.

En un experimento similar, Pinedo (1989) citado por Villachica (1996)

señala que la semilla se obtiene eliminando la pulpa y remojándola

en agua a 50 ºC de 30 a 60 minutos, lográndose de 90 a 98% de

germinación, resultados similares a los obtenidos por Balick (1992) y

que se encuentran por encima de los resultados obtenidos durante

nuestro experimento.

4.2.Tiempo de Germinación.

Cuadro 6. Tiempo de germinación, inicio de la germinación y periodo

de germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart.



TratamientosInicio de la

germinación (días)Periodo de

germinación (días)

Tiempo degerminación

(días)

T1 53 26 79

T3 46 56 102

T4 43 70 113

T5 52 43 95

T6 58 25 83

En el cuadro 6 se presenta el tiempo de germinación, inicio de la

germinación y periodo de germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart. (Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de


49

Gráfico 2. Tiempo de germinación, inicio de la germinación y periodo

de germinación de semillas de Oenocarpus bataua Mart.



53 26 79

46 56 102

43 70 113

52 43 95

58 25 83

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110 120

Tiempo (días)

T1

T3

T4

T5

T6

Tra

tam

ien

tos

Inicio de la germinación (días) Periodo de germinación (días) Tiempo de germinación (días)

En el Gráfico 2 se observa que el T4 tuvo el menor inicio de

germinación, es decir, la primera germinación se produjo a los 43

días de la siembra de las semillas; seguido por los tratamientos T3 a

los 46 días; T5 a los 52 días; T1 a los 53 días y finalmente el T6 a los

58 días.

Con respecto al periodo de germinación, es decir, el intervalo de

tiempo en el que se produjeron las germinaciones; el T6 tuvo el

menor periodo de germinación, de 25 días; seguido por los

tratamientos T1 con 26 días; T5 con 43 días; T3 con 56 días y

finalmente el T4 con 70 días.

Con relación al tiempo de germinación, siendo este la suma del inicio

de la germinación y el periodo de germinación, se tiene que el

tratamiento con menor tiempo de germinación es el T1, con 79 días

50

de duración, seguido por los tratamientos T6 con 83 días; T5 con 95

días; T3 con 102 días y finalmente el T4 con 113 días de duración.

Játiva y Alarcón (1994) citado por Castaño et al (2007) demostró que

la semilla de Oenocarpus bataua Mart. germina después de los 6

meses de sembrada. Collazos y Mejía (1988), citado por Castaño et

al (2007) encontraron que la germinación se produce entre 40 a 120

días en condiciones naturales, lo cual se asemeja a los resultados

obtenidos, donde el tratamiento T1 (frutos madurados naturalmente y

despulpados manualmente) tuvo una germinación de 53 a 79 días

pero con un bajo porcentaje de germinación (26%).

En la presente investigación el tratamiento T5 (remojo de los frutos

durante 24 horas para ablandar el pericarpo más la inmersión de las

semillas en agua a 50 ºC durante 30 minutos) tuvo el menor tiempo

de germinación (95 días) y presentó mayor porcentaje de

germinación (61%) que los demás tratamientos en estudio.

Balick (1992), en un experimento similar (semillas con epicarpo y

mesocarpo removidos y remojados en agua tibia a 50 ºC durante

media hora) obtuvo un tiempo de germinación de 52 días. Este

resultado está por encima de lo obtenido en el presente trabajo; sin

embargo, lo reportado por Pinedo (1989) citado por Villachica (1996)

señala que la semilla, que se obtiene eliminando la pulpa y

remojándola en agua a 50 ºC de 30 a 60 minutos, logró un periodo

de germinación entre 40 y 88 días, lo cual se asemeja a lo reportado

por el tratamiento T5 del presente trabajo.

51

Gráfico 3. Comparación de germinación acumulada de semillas de Oenocarpus bataua Mart. (Ungurahui) con 5

tratamientos en estudio.

05

101520253035404550556065

43 45 47 49 51 53 55 57 59 61 63 65 67 69 71 73 75 77 79 81 83 85 87 89 91 93 95 97 9910110

310

510

710

911

111

3

Tiempo (días)

Germ

ina

ció

na

cu

mu

lad

a(N

ºd

e

se

mil

las

)

T1

T3

T4

T5

T6

52

En el Gráfico 3 se observa la germinación acumulada en el tiempo

(días) por cada tratamiento en estudio, pudiéndose observar la

influencia que tuvo el clima durante el proceso germinativo, en el que

a partir del día 65, éste tiende a estabilizarse, hasta detenerse por

completo la germinación, siendo mas notorios en los tratamientos

que presentaron mayor porcentaje de germinación (T5 y T4).

El proceso germinativo de esta especie se inicia con la imbibición de

la semilla, tornándose de color oscuro. Posterior a esto, las fibras de

la parte basal (unión de la semilla a la raquilla del racimo) del

endocarpo empiezan a abrirse para dar paso a la salida del botón o

eje embrionario (Ver Foto 9). Con el eje embrionario expuesto (Ver

Foto 11) estaríamos hablando de una semilla germinada. A partir del

eje embrionario se desarrolla la plúmula, la que se empieza a

distinguir a los 14 días de germinado la semilla (Ver Foto 13). A los

21 días se observa la emisión de la radícula, que al igual que la

plúmula se desarrolla a partir del eje embrionario (Ver Foto 14). A los

28 días (Ver Foto 15) la plúmula es ligeramente mas desarrollada (9

mm de largo) que la radícula (8 mm de largo). A los 35 días (Ver

Foto 16) la radícula es mas larga (16 mm) que la plúmula (9 mm). A

los 42 días (Ver Foto 17) la plúmula empieza a diferenciarse (17 mm

de largo) mientras que la radícula sigue penetrando el suelo (21 mm

de largo). A los 58 días la plántula tiene la plúmula bien desarrollada

(22 mm de largo), mientras que la radícula (54 mm de largo) está

acompañada de una raíz adventicia (11 mm de largo). El proceso

germinativo continua con la aparición y desarrollo de una o mas

raíces adventicias, la plúmula sigue creciendo y empiezan a

diferenciarse los primordios foliares hasta la formación de la hoja

bífida, concluyendo allí el proceso germinativo.

53

4.3.Velocidad de Germinación.

Cuadro 7. Velocidad de germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart (Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos de


TratamientosVelocidad de Germinación

(Nº semillas/día)T1 0.429T3 0.518T4 0.920T5 0.963T6 0.059

En el Cuadro 7 se muestra la velocidad de germinación de semillas

de Oenocarpus bataua Mart (Ungurahui) bajo el efecto de 5

tratamientos de escarificación natural. El cuadro indica cuantas

semillas germinaron por día por cada tratamiento en estudio. Se

puede observar que los tratamientos que tuvieron mayor porcentaje

de germinación, T5 (61%) y T4 (57%), tienen un mayor número de

semillas germinadas por día, 0.963 y 0.920 respectivamente. Los

tratamientos T3 y T1, con un porcentaje de germinación de 33% y

26% respectivamente, presentaron una velocidad de germinación de

0.518 y 0.429 semillas germinadas por día respectivamente; y por

último, el tratamiento con el porcentaje mas bajo de germinación, el

T6 (4%), con 0.059 semillas germinadas por día.

De todo esto se puede decir que existe una relación entre el

porcentaje de germinación y la velocidad de germinación, que cuanto

mayor es el porcentaje de germinación mayor será la velocidad de

germinación.

54

4.4.Tiempo Medio de Germinación.

Cuadro 8. Tiempo medio de germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart. (Ungurahui) bajo el efecto de 5 tratamientos

de escarificación natural.

TratamientosTiempo medio de

germinación (días)T1 61T3 66T4 63T5 64T6 68

El tiempo medio de germinación viene a ser el número de días

necesarios para que germinen la mitad de las semillas con respecto

al total de semillas que germinaron, observándose en el cuadro 8 los

resultados por cada uno de los tratamientos en estudio.

El tratamiento con menor tiempo medio de germinación fue el T1 con

61 días, seguidos por los tratamientos T4 con 63 días; T5 con 64 días;

T3 con 66 días y finalmente el T6 con 68 días.

Flores (2002) en su trabajo de investigación sobre tratamientos pre-

germinativos en semillas de Euterpe precatoria Mart. (Huasaí),

reporta que existe una relación entre el tiempo medio de germinación

y el porcentaje de germinación, en el que a mayor porcentaje de

germinación, menor es el tiempo medio de estas, lo cual no

concuerda con lo reportado en la presente investigación, debiéndose

posiblemente esto a los factores externos que afectaron a la

germinación.

55

V. CONCLUSIONES

Los tratamientos de escarificación natural con agua a diferentes

temperaturas y tiempos de inmersión que tuvieron mejor efecto sobre

la germinación se semillas de Oenocarpus bataua Mart. fueron los

tratamientos T5, (Remojo de los frutos durante 24 horas + Inmersión

de las semillas en agua a 50 ºC durante 30 minutos) con 61% de

germinación y un tiempo de germinación de 95 días, y T4 (Remojo de

los frutos durante 24 horas + Inmersión de las semillas en agua a 40

ºC durante 60 minutos) con 57% de germinación y un tiempo de

germinación de 113 días.

Se pudo comprobar que la inmersión en agua por un tiempo

prologando (30 a 60 minutos) y a alta temperatura (60 ºC) ocasiona

un alto porcentaje de mortalidad en la semillas de Oenocarpus

bataua Mart. como en los casos de los tratamientos T7 y T8 con 60%

y 80% de mortalidad respectivamente.

Con respecto al inicio de la germinación, se pudo evidenciar que las

semillas que fueron sometidos a escarificación natural con agua

caliente iniciaron más rápido la germinación, como es el caso de los

tratamientos T4 (43 días) y T3 (46 días) en comparación al

tratamiento testigo (53 días).

El agua caliente como escarificador a temperaturas controladas tiene

un efectos positivo sobre la germinación de semillas de Oenocarpus

bataua Mart.

El clima (temperatura y humedad relativa) influye sobre la

germinación de las semillas de Oenocarpus bataua Mart.

demostrándose que esta especie es muy sensible al ser expuesta a

los cambios bruscos de estos factores.

56

VI. RECOMENDACIONES

Para incrementar y acelerar la germinación de semillas de

Oenocarpus bataua Mart. la inmersión en agua como escarificador

debe ser a 50 ºC durante 30 minutos o 40 ºC durante 60 minutos.

No utilizar la escarificación en agua a más de 60 ºC por más de 30

minutos pues ocasiona mortalidad en las semillas.

Repetir el experimento en otra época del año ya que la variación de

los factores climáticos (temperatura y humedad relativa) alteran el

desarrollo normal del proceso germinativo en las semillas de esta

especie.

Se recomienda investigar el efecto de otros tipos de escarificación

(mecánica o física) en estas semillas, para así poder compararlas y

ver cual tiene mejor resultado.

Recolectar frutos de Oenocarpus bataua Mart. de varios lugares de

procedencia para poder comparar su comportamiento germinativo

bajo las mismas condiciones de los tratamientos.

57

VII.BIBLIOGRAFÍA

1. Aguilar M, Z. 2005. Influencia de las comunidades Huaroni en el

Estado de Conservación de Oenocarpus bataua (Arecaceae) en la

Amazonia Ecuatoriana. Tesis de Masterado. Universidad

Internacional de Andalucía. 100 p.

2. Balick, MJ. 1992. Jessenia y Oenocarpus: palmas aceiteras

neotropicales dignas de ser domésticas. Organización de la Naciones

Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO). Roma, Italia, 180

p.

3. Calzada Benza, J. 1982. Métodos estadísticos para la investigación.

5 ed. Lima, Perú, Editorial Milagros. 643 p.

4. Camacho Morfín, F. 1994. Dormición de semillas: causas y

tratamientos. México, Trillas. 125 p.

5. Castaño Arboleda, N; Cárdenas López, D; Otavo Rodríguez, E. 2007.

Ecología, aprovechamiento y manejo sostenible de nueve especies

de plantas del departamento del Amazonas, generadoras de

productos maderables y no maderables. Instituto Amazónico de

Investigaciones Científicas –Sinchi-. Corporación para el Desarrollo

Sostenible del Sur de la Amazonia (CORPOAMAZONIA). Bogotá,

Colombia. 266 p.

6. Flores Romayna, MA. 2002. Tratamientos pre-germinativos en

semillas de Euterpe predatoria Mart. (Huasaí) de Pucallpa. Tesis Ing.

Forestal. Pucallpa, Perú, Universidad Nacional de Ucayali. 45 p.

7. Fuller, HJ; Ritchie, DD. 1972. Botánica general. Trad A Marino

Ambrosio. México, D.F., México, Compañía Editorial Continental. 272

p.

58

8. Gobierno Regional de Ucayali. 2007. Anuario geográfico

departamental de Ucayali. Pucallpa, Ucayali, Perú. 95 p.

9. Hartmann, HT y Kester, DE. 1995. Propagación de plantas: principios

y prácticas. Trad AM Ambrosio. 4ª reimpresión. México. Continental.

760 p.

10.Hess, D. 1980. Fisiología vegetal. Trad M de Simón. Barcelona,

España, Ediciones Omega S.A. 388 p.

11.Jara N, LF. 1996. Biología de semillas forestales. CATIE. Turrialba,

Costa Rica. 33 p.

12.Jean-Prost, P. 1970. La Botánica y sus aplicaciones agrícolas. Mundi

Prensa, Madrid, España. 534 p.

13.Kahn, F y F Moussa. 1994. Las palmeras del Perú: colecciones,

patrones de distribución geográfica, ecología, estatutos de

conservación, nombres vernáculos, utilizaciones. Instituto Francés de

Estudios Andinos (IFEA). Lima, Perú. 180 p.

14.Meerow, AW. s.f. Germinación de semillas de palmeras. Trad José

Grassia. s.l. 8 p.

15.Miranda, J; Montaño, F; Zenteno, F; Nina, H; Mercado, J. 2008. El

majo (Oenocarpus bataua): una alternativa al biocomercio en Bolivia.

TRÓPICO – PNBS – FAN. La Paz, Bolivia. TROPICO. 99 p.

16.Orduz R, JO y JA Rangel M. 2002. Frutales tropicales para el

piedemonte llanero: manual de asistencia técnica No. 8. Corporación

Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Programa

Nacional de Transferencia de Tecnología Agropecuaria

(PRONATTA). Villavicencio, Meta, Colombia. Produmedios. 133 p.

59

17.Spichiger, R; Méroz, J; Loizeas, P-A; Stuz de Ortega, L. 1990.

Contribución a la flora de la Amazonia Peruana: los árboles del

arboretum Jenaro Herrera. Conservatoire et jardin botniques de

Genève. Italia. v. 2. 565 p.

18.Tratado de Cooperación Amazónica (TCA), Secretaría Pro –

Tempore (SPT). 1997. Cultivo de frutales nativos: manual para el

extensionista. Lima, Perú. s.p.

19.Valla, JJ. 2004. Botánica: morfología de las plantas superiores.

Buenos Aires, Argentina, Editorial Hemisferio Sur S.A. 332 p.

20.Villachica, H. 1996. Frutales y hortalizas promisorios de la Amazonia.

Tratado de Cooperación Amazónica, Secretaria Pro – Tempore.

Lima, Perú. 367 p.

21. Wilson, CL; Loomis, WE. 1992. Botánica. Trad IL de Coll. México,

D.F., México, Limusa. 682 p.

60

VIII. ANEXOS

Anexo 1

Croquis de distribución de los tratamientos en estudio¡Error! Vínculo no

válido.

T7

R1

R2

R4

R1

T1

R2

R4

R1

R3

T6

R4

R1

R3

R2

T8

R3

R2

R1

R4

T2

R1

R4

R3

R2

T5

R1

R3

R2

R4

T4

R2

R4

R1

R3

T3

R4

<--

--0

.48

m--

--->

R1

R2

R3 0.12 m

<--- 0.82 m -->

Dimensiones del Área Experimental.

a) Dimensiones del área total de la cama.

- Largo: 6.06 m.

- Ancho: 0.82 m.

- Área Total: 4.97 m2.

b) Dimensiones del área experimental.

- Largo: 3.51 m.

- Ancho: 0.82 m

- Área Total: 2.88 m2.

c) Número de semillas por tratamiento:100

d) Número semillas por repetición. 25

e) Distanciamiento entre semillas: 6 x 6 m

62

Anexo 4

Análisis de variancia del porcentaje de germinación por tratamientos

FV GL SC CM FC

Tratamiento 7 18623.5 2660.5 38.65**

Error 24 1652 68.8

Total 31 20275.5

Anexo 5

Prueba de promedios de Tukey al 0.01 de significancia

Clave Tratamiento Promedio

I T5 61 a

II T4 57 ab

III T3 33 c

IV T1 26 d

V T6 4 e

Anexo 6

Datos para el cálculo del porcentaje de germinación, tiempo medio de

germinación y velocidad de germinación del tratamiento 1

Días desdela siembra

(ti)

Puntosmedios (pi)

Germinaciónsencilla (gi)

SPG (pix gi)

Velocidad degerminación

(gi/ti)

t0 52 g0 0 0 0.0000

t1 53 p1 52.5 g1 1 52.5 0.0189

t2 54 p2 53.5 g2 0 0 0.0000

t3 55 p3 54.5 g3 0 0 0.0000

t4 56 p4 55.5 g4 2 111 0.0357

t5 57 p5 56.5 g5 2 113 0.0351

t6 58 p6 57.5 g6 5 287.5 0.0862

t7 59 p7 58.5 g7 3 175.5 0.0508

t8 60 p8 59.5 g8 2 119 0.0333

t9 61 p9 60.5 g9 5 302.5 0.0820

t10 62 p10 61.5 g10 2 123 0.0323

t11 63 p11 62.5 g11 0 0 0.0000

63

t12 64 p12 63.5 g12 0 0 0.0000

t13 65 p13 64.5 g13 1 64.5 0.0154

t14 66 p14 65.5 g14 0 0 0.0000

t15 67 p15 66.5 g15 0 0 0.0000

t16 68 p16 67.5 g16 0 0 0.0000

t17 69 p17 68.5 g17 0 0 0.0000

t18 70 p18 69.5 g18 0 0 0.0000

t19 71 p19 70.5 g19 0 0 0.0000

t20 72 p20 71.5 g20 1 71.5 0.0139

t21 73 p21 72.5 g21 0 0 0.0000

t22 74 p22 73.5 g22 0 0 0.0000

t23 75 p23 74.5 g23 0 0 0.0000

t24 76 p24 75.5 g24 0 0 0.0000

t25 77 p25 76.5 g25 1 76.5 0.0130

t26 78 p26 77.5 g26 0 0 0.0000

t27 79 p27 78.5 g27 1 78.5 0.0127

Total 26 1575 0.4292

Anexo 7




(ti)

Puntosmedios (pi)


SPG(pi x gi)


(gi/ti)

t0 45 g0 0 0 0.0000

t1 46 p1 45.5 g1 1 45.5 0.0217

t2 47 p2 46.5 g2 1 46.5 0.0213

t3 48 p3 47.5 g3 0 0 0.0000

t4 49 p4 48.5 g4 0 0 0.0000

t5 50 p5 49.5 g5 1 49.5 0.0200

t6 51 p6 50.5 g6 0 0 0.0000

t7 52 p7 51.5 g7 1 51.5 0.0192

t8 53 p8 52.5 g8 1 52.5 0.0189

t9 54 p9 53.5 g9 2 107 0.0370

t10 55 p10 54.5 g10 0 0 0.0000

t11 56 p11 55.5 g11 2 111 0.0357

t12 57 p12 56.5 g12 1 56.5 0.0175

t13 58 p13 57.5 g13 0 0 0.0000

t14 59 p14 58.5 g14 1 58.5 0.0169

t15 60 p15 59.5 g15 1 59.5 0.0167

t16 61 p16 60.5 g16 1 60.5 0.0164

t17 62 p17 61.5 g17 1 61.5 0.0161

t18 63 p18 62.5 g18 1 62.5 0.0159

t19 64 p19 63.5 g19 2 127 0.0313

t20 65 p20 64.5 g20 0 0 0.0000

t21 66 p21 65.5 g21 1 65.5 0.0152

t22 67 p22 66.5 g22 1 66.5 0.0149

t23 68 p23 67.5 g23 1 67.5 0.0147

t24 69 p24 68.5 g24 2 137 0.0290

t25 70 p25 69.5 g25 1 69.5 0.0143

64

t26 71 p26 70.5 g26 1 70.5 0.0141

t27 72 p27 71.5 g27 1 71.5 0.0139

t28 73 p28 72.5 g28 2 145 0.0274

t29 74 p29 73.5 g29 0 0 0.0000

t30 75 p30 74.5 g30 2 149 0.0267

t31 76 p31 75.5 g31 0 0 0.0000

t32 77 p32 76.5 g32 0 0 0.0000

t33 78 p33 77.5 g33 0 0 0.0000

t34 79 p34 78.5 g34 0 0 0.0000

t35 80 p35 79.5 g35 0 0 0.0000

t36 81 p36 80.5 g36 0 0 0.0000

t37 82 p37 81.5 g37 1 81.5 0.0122

t38 83 p38 82.5 g38 0 0 0.0000

t39 84 p39 83.5 g39 0 0 0.0000

t40 85 p40 84.5 g40 0 0 0.0000

t41 86 p41 85.5 g41 0 0 0.0000

t42 87 p42 86.5 g42 1 86.5 0.0115

t43 88 p43 87.5 g43 0 0 0.0000

t44 89 p44 88.5 g44 0 0 0.0000

t45 90 p45 89.5 g45 0 0 0.0000

t46 91 p46 90.5 g46 0 0 0.0000

t47 92 p47 91.5 g47 0 0 0.0000

t48 93 p48 92.5 g48 0 0 0.0000

t49 94 p49 93.5 g49 0 0 0.0000

t50 95 p50 94.5 g50 0 0 0.0000

t51 96 p51 95.5 g51 0 0 0.0000

t52 97 p52 96.5 g52 0 0 0.0000

t53 98 p53 97.5 g53 0 0 0.0000

t54 99 p54 98.5 g54 0 0 0.0000

t55 100 p55 99.5 g55 0 0 0.0000

t56 101 p56 100.5 g56 1 100.5 0.0099

t57 102 p57 101.5 g57 1 101.5 0.0098

Total 33 2161.5 0.5182

Anexo 8




(ti)

Puntos medios(pi)


SPG(pi x gi)


(gi/ti)

t0 42 g0 0 0 0.0000

t1 43 p1 42.5 g1 1 42.5 0.0233

t2 44 p2 43.5 g2 0 0 0.0000

t3 45 p3 44.5 g3 0 0 0.0000

t4 46 p4 45.5 g4 0 0 0.0000

t5 47 p5 46.5 g5 0 0 0.0000

t6 48 p6 47.5 g6 0 0 0.0000

t7 49 p7 48.5 g7 0 0 0.0000

t8 50 p8 49.5 g8 0 0 0.0000

t9 51 p9 50.5 g9 1 50.5 0.0196

65

t10 52 p10 51.5 g10 0 0 0.0000

t11 53 p11 52.5 g11 1 52.5 0.0189

t12 54 p12 53.5 g12 2 107 0.0370

t13 55 p13 54.5 g13 2 109 0.0364

t14 56 p14 55.5 g14 2 111 0.0357

t15 57 p15 56.5 g15 4 226 0.0702

t16 58 p16 57.5 g16 6 345 0.1034

t17 59 p17 58.5 g17 5 292.5 0.0847

t18 60 p18 59.5 g18 4 238 0.0667

t19 61 p19 60.5 g19 6 363 0.0984

t20 62 p20 61.5 g20 6 369 0.0968

t21 63 p21 62.5 g21 3 187.5 0.0476

t22 64 p22 63.5 g22 1 63.5 0.0156

t23 65 p23 64.5 g23 1 64.5 0.0154

t24 66 p24 65.5 g24 1 65.5 0.0152

t25 67 p25 66.5 g25 0 0 0.0000

t26 68 p26 67.5 g26 0 0 0.0000

t27 69 p27 68.5 g27 0 0 0.0000

t28 70 p28 69.5 g28 1 69.5 0.0143

t29 71 p29 70.5 g29 1 70.5 0.0141

t30 72 p30 71.5 g30 1 71.5 0.0139

t31 73 p31 72.5 g31 1 72.5 0.0137

t32 74 p32 73.5 g32 0 0 0.0000

t33 75 p33 74.5 g33 0 0 0.0000

t34 76 p34 75.5 g34 0 0 0.0000

t35 77 p35 76.5 g35 1 76.5 0.0130

t36 78 p36 77.5 g36 0 0 0.0000

t37 79 p37 78.5 g37 0 0 0.0000

t38 80 p38 79.5 g38 0 0 0.0000

t39 81 p39 80.5 g39 0 0 0.0000

t40 82 p40 81.5 g40 1 81.5 0.0122

t41 83 p41 82.5 g41 1 82.5 0.0120

t42 84 p42 83.5 g42 0 0 0.0000

t43 85 p43 84.5 g43 1 84.5 0.0118

t44 86 p44 85.5 g44 0 0 0.0000

t45 87 p45 86.5 g45 0 0 0.0000

t46 88 p46 87.5 g46 1 87.5 0.0114

t47 89 p47 88.5 g47 0 0 0.0000

t48 90 p48 89.5 g48 0 0 0.0000

t49 91 p49 90.5 g49 0 0 0.0000

t50 92 p50 91.5 g50 0 0 0.0000

t51 93 p51 92.5 g51 0 0 0.0000

t52 94 p52 93.5 g52 0 0 0.0000

t53 95 p53 94.5 g53 0 0 0.0000

t54 96 p54 95.5 g54 0 0 0.0000

t55 97 p55 96.5 g55 0 0 0.0000

t56 98 p56 97.5 g56 1 97.5 0.0102

t57 99 p57 98.5 g57 0 0 0.0000

t58 100 p58 99.5 g58 0 0 0.0000

t59 101 p59 100.5 g59 0 0 0.0000

t60 102 p60 101.5 g60 0 0 0.0000

t61 103 p61 102.5 g61 0 0 0.0000

t62 104 p62 103.5 g62 0 0 0.0000

t63 105 p63 104.5 g63 0 0 0.0000

66

t64 106 p64 105.5 g64 0 0 0.0000

t65 107 p65 106.5 g65 0 0 0.0000

t66 108 p66 107.5 g66 0 0 0.0000

t67 109 p67 108.5 g67 0 0 0.0000

t68 110 p68 109.5 g68 0 0 0.0000

t69 111 p69 110.5 g69 0 0 0.0000

t70 112 p70 111.5 g70 0 0 0.0000

t71 113 p71 112.5 g71 1 112.5 0.0088

Total 57 3593.5 0.9202

Anexo 9




(ti)

Puntos medios(pi)


SPG (pix gi)


(gi/ti)

t0 51 g0 0 0 0.0000

t1 52 p1 51.5 g1 1 51.5 0.0192

t2 53 p2 52.5 g2 0 0 0.0000

t3 54 p3 53.5 g3 0 0 0.0000

t4 55 p4 54.5 g4 0 0 0.0000

t5 56 p5 55.5 g5 7 388.5 0.1250

t6 57 p6 56.5 g6 6 339 0.1053

t7 58 p7 57.5 g7 6 345 0.1034

t8 59 p8 58.5 g8 4 234 0.0678

t9 60 p9 59.5 g9 2 119 0.0333

t10 61 p10 60.5 g10 4 242 0.0656

t11 62 p11 61.5 g11 2 123 0.0323

t12 63 p12 62.5 g12 4 250 0.0635

t13 64 p13 63.5 g13 1 63.5 0.0156

t14 65 p14 64.5 g14 6 387 0.0923

t15 66 p15 65.5 g15 2 131 0.0303

t16 67 p16 66.5 g16 3 199.5 0.0448

t17 68 p17 67.5 g17 1 67.5 0.0147

t18 69 p18 68.5 g18 0 0 0.0000

t19 70 p19 69.5 g19 1 69.5 0.0143

t20 71 p20 70.5 g20 0 0 0.0000

t21 72 p21 71.5 g21 1 71.5 0.0139

t22 73 p22 72.5 g22 0 0 0.0000

t23 74 p23 73.5 g23 2 147 0.0270

t24 75 p24 74.5 g24 1 74.5 0.0133

t25 76 p25 75.5 g25 0 0 0.0000

t26 77 p26 76.5 g26 0 0 0.0000

t27 78 p27 77.5 g27 0 0 0.0000

t28 79 p28 78.5 g28 0 0 0.0000

t29 80 p29 79.5 g29 1 79.5 0.0125

t30 81 p30 80.5 g30 1 80.5 0.0123

t31 82 p31 81.5 g31 0 0 0.0000

t32 83 p32 82.5 g32 0 0 0.0000

t33 84 p33 83.5 g33 0 0 0.0000

67

t34 85 p34 84.5 g34 0 0 0.0000

t35 86 p35 85.5 g35 2 171 0.0233

t36 87 p36 86.5 g36 2 173 0.0230

t37 88 p37 87.5 g37 0 0 0.0000

t38 89 p38 88.5 g38 0 0 0.0000

t39 90 p39 89.5 g39 0 0 0.0000

t40 91 p40 90.5 g40 0 0 0.0000

t41 92 p41 91.5 g41 0 0 0.0000

t42 93 p42 92.5 g42 0 0 0.0000

t43 94 p43 93.5 g43 0 0 0.0000

t44 95 p44 94.5 g44 1 94.5 0.0105

Total 61 3901.5 0.9633

Anexo 10




(ti)

Puntosmedios (pi)


SPG(pi x gi)


(gi/ti)

t0 57 g0 0 0 0.0000

t1 58 p1 57.5 g1 1 57.5 0.0172

t2 59 p2 58.5 g2 0 0 0.0000

t3 60 p3 59.5 g3 0 0 0.0000

t4 61 p4 60.5 g4 0 0 0.0000

t5 62 p5 61.5 g5 1 61.5 0.0161

t6 63 p6 62.5 g6 0 0 0.0000

t7 64 p7 63.5 g7 0 0 0.0000

t8 65 p8 64.5 g8 0 0 0.0000

t9 66 p9 65.5 g9 0 0 0.0000

t10 67 p10 66.5 g10 0 0 0.0000

t11 68 p11 67.5 g11 0 0 0.0000

t12 69 p12 68.5 g12 0 0 0.0000

t13 70 p13 69.5 g13 0 0 0.0000

t14 71 p14 70.5 g14 0 0 0.0000

t15 72 p15 71.5 g15 1 71.5 0.0139

t16 73 p16 72.5 g16 0 0 0.0000

t17 74 p17 73.5 g17 0 0 0.0000

t18 75 p18 74.5 g18 0 0 0.0000

t19 76 p19 75.5 g19 0 0 0.0000

t20 77 p20 76.5 g20 0 0 0.0000

t21 78 p21 77.5 g21 0 0 0.0000

t22 79 p22 78.5 g22 0 0 0.0000

t23 80 p23 79.5 g23 0 0 0.0000

t24 81 p24 80.5 g24 0 0 0.0000

t25 82 p25 81.5 g25 0 0 0.0000

t26 83 p26 82.5 g26 1 82.5 0.0120

Total 4 273 0.0593

68

Anexo 11

Germinación sencilla de semillas bajo efecto del tratamiento 1 (Frutos

madurados naturalmente y despulpados manualmente)

0

1

2

3

4

5

6

53 55 57 59 61 63 65 67 69 71 73 75 77 79

Tiempo (días)

Ge

rmin

ac

ión

sen

cil

la(N

ºd

e

se

mil

las

)

Anexo 12

Germinación sencilla de semillas bajo efecto del tratamiento 3 (Remojo de

los frutos durante 24 horas + Inmersión de las semillas en agua a 40 ºC

durante 30 minutos)

0

1

2

3

46 48 50 52 54 56 58 60 62 64 66 68 70 72 74 76 78 80 82 84 86 88 90 92 94 96 98 100

102

Tiempo (días)

Ge

rmin

ació

ns

en

cilla

(Nº

de

se

milla

s)

69

Anexo 13



durante 60 minutos)

0

1

2

3

4

5

6

7

43 45 47 49 51 53 55 57 59 61 63 65 67 69 71 73 75 77 79 81 83 85 87 89 91 93 95 97 99 10110

310

510

710

911

111

3

Tiempo (días)

Germ

inació

nsen

cil

la(N

ºd

e

sem

illa

s)

Anexo 14



durante 30 minutos)

0

1

2

3

4

5

6

7

8

52 54 56 58 60 62 64 66 68 70 72 74 76 78 80 82 84 86 88 90 92 94

Tiempo (días)

Germ

inació

nsen

cil

la(N

ºd

e

sem

illa

s)

70

Anexo 15



durante 60 minutos)

0

1

2

58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 81 82 83

Tiempo (días)

Ge

rmin

ac

ión

se

nc

illa

(Nº

de

se

mil

las

)

Anexo 16

Características del racimo cosechado de Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui)

Peso del racimo 28 Kg

Peso de los frutos 22 Kg

Nº total de frutos 2131

Nº de frutos por Kg 110

Peso de 100 frutos 900 g

Peso de 100 semillas 487 g

71

Anexo 17

Características del fruto y la semilla cosechados de Oenocarpus bataua

Mart. (Ungurahui)

Fruto

Peso 7.05 g

Largo 3.20 cm

Diámetro 2.21 cm

Semilla

Peso 5.61 g

Largo 2.79 cm

Diámetro 1.79 cm

Anexo 18

Composición del fruto de acuerdo a las partes que lo conforman

Parte %

Semilla 60.48

Pericarpo (cáscara + pulpa) 39.52

Fruto 100.00

Anexo 19

Porcentaje de humedad de las semillas Oenocarpus bataua Mart.

(Ungurahui) por cada tratamiento

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8

% 42.64 70.44 45.45 50.00 48.78 50.00 55.56 49.46

Anexo 20

Porcentaje de pureza física y número de semillas por kilogramo de las

semillas de Oenocarpus bataua Mart. (Ungurahui)

Porcentaje de pureza física 81. 84%

Número de semillas por Kilogramo 205

73

Anexo 22

Temperatura media diaria del ambiente registrada durante la ejecución del

experimento

10.012.014.016.018.020.022.024.026.028.030.032.0

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31Días

Te

mp

era

tura

(ºC

)

Mayo

Junio

Julio

Agosto

Setiembre

Anexo 23

Humedad relativa diaria del ambiente registrada durante la ejecución delexperimento

70.0

73.0

76.0

79.0

82.0

85.0

88.0

91.0

94.0

97.0

100.0

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10111213141516171819202122 23 24 25 26 27 28 29 30 31

Días

Hu

me

dad

Rela

tiv

a(%

)

Mayo

Junio

Julio

Agosto

Setiembre

74

Anexo 24

Temperatura media mensual del ambiente registrada durante la ejecucióndel experimento

24.0

24.5

25.0

25.5

26.0

26.5

27.0

27.5

May

o

Junio

Julio

Agosto

Setiem

bre

Meses

ºCTemperatura

Anexo 25

Humedad relativa media mensual del ambiente registrada durante laejecución del experimento

80.081.082.083.084.085.086.087.088.089.0

May

o

Junio

Julio

Agost

o

Setiem

bre

Meses

Po

rce

nta

jed

eH

um

ed

ad

Humedad Relativa

76

Anexo 28

Temperatura media diaria registrada dentro del Módulo de Hidroponía –

UNU durante la ejecución del experimento

5.07.09.0

11.013.015.017.019.021.023.025.027.029.031.0

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31

Días

Te

mp

era

tura

(ºC

)

Mayo

Junio

Julio

Agosto

Setiembre

Anexo 29

Humedad relativa diaria registrada dentro del Módulo de Hidroponía –UNU durante la duración del experimento

70.0

73.0

76.0

79.0

82.0

85.0

88.0

91.0

94.0

97.0

100.0

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31Días

Hu

me

dad

Re

lati

va

(%)

Mayo

Junio

Julio

Agosto

Setiembre

77

Anexo 30

Temperatura media mensual registrada dentro del Módulo de Hidroponía– UNU durante la duración del experimento

22.022.523.023.524.024.525.025.526.0

May

o

Junio

Julio

Agosto

Setiem

bre

Meses

ºC

Temperatura

Anexo 31

Humedad relativa media mensual registrada dentro del Módulo deHidroponía – UNU durante la duración del experimento

80.081.082.083.084.085.086.087.088.089.090.0

May

o

Junio

Julio

Agosto

Setiem

bre

Meses

%

Humedad Relativa

78

Anexo 32

Temperatura diaria del sustrato de la cama germinadora

5.07.09.0

11.013.015.017.019.021.023.025.027.029.0

1 2 3 4 5 6 7 8 910111213141516171819202122232425262728293031

Días

ºC

Mayo

Junio

Julio

Agosto

Setiembre

Anexo 33

Temperatura media mensual del sustrato de la cama germinadora

20.5

21.0

21.5

22.0

22.5

23.0

23.5

24.0

24.5

25.0

Mayo Junio Julio Agosto Setiembre

Meses

ºC

Temperatura

79

IX. ICONOGRAFÍA

Foto 1. Cama germinadora utilizada

en el trabajo.

Foto 2. Selección de semillas.

Foto 3. Obtención de las semillas. Foto 4. Aplicación de los tratamientos.

80

Foto 5. Siembra de las semillas en la

cama germinadora.

Foto 6. Cama germinadora instalada para el

desarrollo del experimento.

Foto 7. Suministro de agua utilizando

el riego por nebulización.

Foto 8. Evaluación y marcado de las semillas

germinadas.

81

Foto 9. Semilla embebida (a punto de

germinar)

Foto 10. Semilla con el eje embrionario expuesto

(germinado)

Foto 11. Semilla recién germinada. Foto 12. Semilla a los 7 días de germinado.

82

Foto 13. Semilla a los 14 días de germinado. Foto 14. Semilla a los 21 días de germinado.


83


Foto 19. Plántula del tratamiento T1 con 87

días de germinado.

Foto 20. Plántula del tratamiento T3 con 94 días

de germinado.

84


días de germinado.

Foto 22. Plántula del tratamiento T5 con 88 días

de germinado.


días de germinado.

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