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i
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
TESIS DE GRADO
PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
INGENIERA AGRÓNOMA
TEMA:
“COMPORTAMIENTO DE ACODOS AÉREOS EN
BUNGAVILLAS (Bougainvillae glabra Ch) ANTE LA
APLICACIÓN DE AUXINAS”
AUTORA:
YORKA ISABEL TORRES BARZOLA
DIRECTOR DE TESIS:
ING. AGR. LAURA PARISMORENO, MSC.
ECUADOR
2016
ii
iii
Z
DEDICATORIA
A Dios, Por ser mi guía y compañero desde que tengo uso de razón,
por permitirme alcanzar mis objetivos y hacer lo correcto, por su
infinita presencia, es mi deseo darle gracias por bendecirme y dejar que
culminara una etapa más en mi vida.
A mi padre quien en vida fué el Ing. Agr. Y Veterinario Olegario
Torres Henriquez, a Mi madre Sra. Fresia Barzola Brionez, a mi
querido abuelo Sr. Pablo Barzola Moran, Por su apoyo incondicional,
por sus consejos y su amor, que me han permitido formarme como
persona y profesionalmente, por enseñarme a sobrellevar y valorar la
vida, aprender de mis errores y cumplir siempre los objetivos que me he
propuesto.
A mis hermanas, Solange Torres y Ginger Torres, mis dos amigas
eternas e incondicionales que han estado a mi lado siempre
tendiéndome la mano, compartiendo buenos y malos momentos.
A mí amado hijo, José Huayamabe Torres, por su amor y
comprensión, por enseñarme tanto a pesar de su edad y recordarme
siempre que con deseos de superación todo es posible.
A mis compañeros y amigos, en especial al Ing. Agr. Kleber
Navarrete y a la Ab. Isabel Zambrano, por su transparente y gran
amistad, por sus consejos, por cada uno de los momentos compartidos a
lo largo de nuestra formación profesional, por el apoyo incondicional
que me brindaron en el transcurso de mi trabajo de tesis.
Yorka Isabel
iv
AGRADECIEMIENTO
Primero y ante todo a DIOS, por sus bendiciones, por sus pruebas y por
las oportunidades que me ha ofrecido día a día, haciéndome más fuerte
y mejor ser humano.
A la Universidad de Guayaquil Facultad de Ciencias Agrarias por
abrirme sus puertas, y brindarme la posibilidad de formarme
profesionalmente.
Al Ing. Agr. Carlos Becilla Justillo, Mg. Ed. Decano de la Facultad de
Ciencias Agrarias, al Ing. Agr. Eisón Valdivieso Freire MSc,
Subdecano, por sus conocimientos, por haber sido mis guías y por su
apoyo incondicional en el desarrollo de mi trabajo de tesis.
A mi directora de tesis la Ing. Agr. Laura Parismoreno Rivas MSc, y a
los miembros del tribunal de grado el Dr. Ing. Agr. Fulton López
Bermúdez MSc. y el Ing. Agr. Carlos Ramírez Aguirre MSc, por
brindarme la asesoría necesaria para culminar este proyecto de
investigación.
Agradezco en especial al Ing. Agr. Ernesto Lavayen, a los profesores de
la Facultad de Ciencias Agrarias, por transmitirnos sus conocimientos y
concejos, que con paciencia, dedicación y orientación, han ido
formando a lo largo de sus vidas, a profesionales, los que día a día
contribuyen al desarrollo y progreso de este país.
Yorka Isabel Pon en manos del Señor todas tus obras,
y tus proyectos se cumplirán
Proverbios
v
vi
vii
viii
REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA FICHA DE REGISTRO DE TESIS
TÍTULO Y SUBTÍTULO: “COMPORTAMIENTO DE ACODOS AÉREOS EN
BUNGAVILLAS (Bougainvillea glabra Ch) ANTE LA APLICACIÓN DE AUXINAS”
AUTOR:
Yorka Isabel Torres Barzola Directora de Tesis:
Ing. Agr. Laura ParisMoreno Rivas MSc.
INSTITUCIÓN:
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD:
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
CARRERA:
INGENIERA AGRONÓMICA
FECHA DE PUBLICACIÓN: No. DE PÁGS: 96
TÍTULO OBTENIDO:
INGENIERO AGRONOMO
ÁREAS TEMÁTICAS:
Dosis de auxinas, método acodos aéreos en plantas ornamentales, Bougainvillea glabra Choysi .
PALABRAS CLAVE: Dosis, acodado y Buganvillas
RESUMEN
El presente trabajo se realizó en un predio ubicado en la Av. Piedrahita y Jaime Roldós, Mz. 434, cantón
Daule, provincia del Guayas, en el periodo comprendido entre el mes de Julio del 2015 – Noviembre del
2015, esta investigación se hiso con la finalidad de establecer una nueva alternativa para la propagación de
Boungainvillea glabra Chousy, conocida en Ecuador como veranera, utilizando como método de
propagación acodos aéreos aplicando diferente dosis de Auxinas: El ANA (Ácido Naftaleneacético), AIA
(Ácido Indolacético) y Hormonagro, para determinar el tiempo más adecuado y la dosis más efectiva en la
aplicación de auxinas, para obtener un mejor enraizamiento. En base a todo el trabajo de investigación
realizado, se concluye en términos generales, la Bougainvillea glabra Choisy, requiere de
aproximadamente dos a tres meses para lograr un enraizamiento satisfactorio, mediante la técnica de acodo
aéreo.
La auxina con la que se obtuvo el mayor enraizamiento de acodos, significativamente altas entre las otras
usadas, fue ANA. Las dosis que más se recomienda en cuanto enraizamiento son: 0,10, 0,15, 0,20 y 0,25
mg/L.
No. DE REGISTRO (en base de datos): No. DE CLASIFICACIÓN:
DIRECCIÓN URL (tesis en la web):
ADJUNTO PDF: x SI NO
CONTACTO CON AUTOR/ES Teléfono:0983092730 E-mail: [email protected]
CONTACTO EN LA INSTITUCIÓN: Nombre: Ab. Isabel Zambrano
Teléfono:(042)288040
E-mail: [email protected]
X
ix
ÍNDICE GENERAL
Página
CARATULA I
TRIBUNAL DE SUSTENTACION II
AGRADECIMIENTO III
DEDICATORIA IV
CERTIFICADO DEL GRAMATÓLOGO V
CERTIFICADO DELTUTOR VI
RESPONSABILIDAD VII
FICHA DE REGISTRO DE TESIS VIII
ÍNDICE GENERAL IX
ÍNDICE DE CUADROS X
ÍNDICE DE ANEXOS XI
ÍNDICE DE FIGURAS XII
I ÍNTRODUCCION 2
Objetivo general 4
Objetivos específicos 4
II REVISIÓN DE LITERATURA 5
2.1 Origen 5
2.2 Taxonomía 5
2.3 Características botánicas
5
x
Página
2.4 Requerimientos de la especie 6
2.4.1 Temperatura 6
2.4.2 Exposición 6
2.4.3 Suelo 6
2.4.4 Fertilización 6
2.4.5 Riego 7
2.4.6 Tamaño 7
2.4.7 Poda 7
2.4.8 Plagas 8
2.4.9 Daños 8
2.5 Importancia y uso de las Bougainvillea 9
2.5.1 Ornamental 9
2.5.2 Medicinal 9
2.5.3 Valor en el paisajismo 10
2.6 Propagación más utilizada de las Bougainvillea 10
2.7 Tipos de propagación asexual 10
2.8 Razón para emplear la propagación mediante
acodos aéreos
11
2.8.1 Propagación por acodo 11
2.8.1.1 Especies propagadas por acodos aéreos
12
xi
Página
2.8.1.2 Acodos aéreos 12
2.8.2 Sustrato para los acodos 13
2.9
Regulación hormonal
13
2.9.1 Enraizadores
17
2.9.2.1 Ácido Naftaleneacético (ANA) 17
2.9.2.2 Ácido Indolacético 17
2.9.2.3 Condiciones climáticas para el enraizamiento 18
III MATERIALES Y METODOS 19
3.1 Ubicación del experimento 19
3.2 Datos geográficos 19
3.4 Mapa satelital de la ubicación geográfica del área
del experimento
20
3.5 Materiales usados 21
3.5.1 Material vegetal 21
3.5.2 Fitohormonas 21
3.5.3 Fertilizante 22
3.5.4 Insecticida 22
3.6 Metodología aplicada 23
3.6.1 Propagación vegetativa por acodos aéreos
24
xii
Página
3.6.2 La acodadura en el área seleccionada 24
3.6.3 Preparación de la hormona 24
3.6.4 Incisión para realizar del acodo 25
3.6.5 Preparación del sustrato 25
3.6.6 Colocación de tutores 26
3.6.7 Riego 26
3.6.8 Poda 26
3.7 Factores estudiados 27
3.7.1 Tratamientos
27
3.8. Diseño experimental
28
3.8.1 Análisis de varianza 28
3.8.2
3.8.3
Delineamiento experimental
Variables evaluadas
29
29
IV RESULTADOS EXPERIMENTALES
30
4.1 Longitud de raíz a los 30 días de aplicación de las
auxinas
30
4.2 Diámetro de la raíz a los 30 días de aplicación de
las auxinas
31
4.3 Número de raíces a los 30 días de la aplicación
de las axinas
32
4.4 Longitud de raíz a los 60 días de aplicación delas
auxinas
33
xiii
Página
45 Diámetro de la raíz a los 60 días de aplicación de
Las auxinas
35
4.6 Número de las raíces a los 60 días de aplicación
de las auxinas
36
4.7 Longitud de la raíz a los 90 días de aplicación de
las auxinas
37
4.8 Diámetro de raíz a los 90 días de aplicación de
las auxinas
38
4.9 Número de raíces a los 90 días de la aplicación
de las auxinas
39
V DISCUSIÓN
43
VI CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
45
VII RESUMEN
46
VIII SUMARY
48
IX LITERATURA SITADA
50
X ANEXOS
55
XI FIGURAS
66
xiv
ÍNDICE DE CUADROS
Página
Cuadro 1
Composición química de las auxinas
21
Cuadro 2 Número de aplicaciones del
insecticida
23
Cuadro 3 Características óptimas de las ramas a
acodar
23
Cuadro 4 Factores estudiados
27
Cuadro 5 Análisis de varianza
27
Cuadro 6 Diseño experimental
28
Cuatro 7 Análisis de varianza 41
Cuadro 8 Esquema de las fuentes de variación y
grados de libertad.
42
xv
ÍNDICE DE ANEXOS
Página
Anexo 1 Programación SAS para el análisis general de
nueve variables obtenidas en el experimento
sobre tres auxinas probadas en cinco dosis en
acodos aéreos de Bugaenvillea glabra Ch.
Daule. 2015.
56
Anexo 2 Programación SAS para el análisis factorial
de nueve variables obtenidas en el
experimento sobre tres auxinas probadas en
cinco dosis en acodos aéreos de Bugaenvillea
glabra Ch. Daule. 2015.
58
Anexo 3 Análisis de la varianza para la variable
longitud de raíz (cm) tomada a los 30 días
después de la aplicación de la auxina. Daule,
2015.
59
Anexo 4 Análisis de la varianza para la variable
diámetro de raíz (mm) tomada a los 30 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015.
59
Anexo 5 Análisis de la varianza para la variable
número de raíces tomada a los 30 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015.
60
Anexo 6 Análisis e la varianza para la variable
longitud de raíz (cm) tomada a los 60 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015
60
Anexo 7 Análisis de la varianza para la variable
diámetro de raíz (mm) tomada a los 60 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015.
61
xvi
Página
Anexo 8 Análisis de la varianza para la variable
número de raíces, tomada a los 60 días
después de la aplicación delas auxinas Daule,
2015
61
Anexo 9 Análisis de la varianza para la variable
longitud de raíz (cm) tomada a los 90 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015.
62
Anexo 10 Análisis de la varianza para la variable
diámetro de raíz (mm) tomada a los 90 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015.
62
Anexo 11 Análisis de la varianza para que la variable
número de raíces tomada a los 90 días
después de la aplicación de las auxinas.
Daule, 2015.
63
Anexo 12 Croquis del lugar donde se realizó el
experimento
64
Anexo 13 Croquis del diseño experimental 65
xvii
ÍNDICE DE FIGURAS
Página
Figura 1 A
Estructura de algunas auxinas naturales (IAA,
IBA, PAA, Cl-IAA) y sintéticas (NAA,
dicamba, 2,4-D y 2, 4, 5-T).
16
Figura 2 A Mapa satelital de la ubicación geográfica del
área de estudio
20
Figura 3 A Hormonagro # 1 Ficha técnica 22
Figura 4 A Interacción entre dos auxinas con cinco dosis
de las mismas en la variable longitud de raíz a
los 30 días.
31
Figura 5A Interacción entre dos auxinas con cinco dosis
de las mismas en la variable diámetro de la
raíz a los 30 días
32
Figura 6 A Interacción entre dos auxinas con cinco dosis
de las mismas en la variable diámetro de la raíz
a los 30 días.
33
Figura 7 A Longitud de raíz a los 60 días de aplicación de
las auxinas.
34
xviii
Página
Figura 8 A Diámetro de raíz a los 60 días de aplicación de
las auxinas
36
Figura 9 A Número de raíces a los 60 días de aplicación
de las auxinas
37
Figura 10 A Longitud de raíz a los 90 días de aplicación de
las auxinas
38
Figura 11 A Diámetro de raíz a los 90 días de aplicación de
las auxinas
39
Figura 12 A Número de raíces a los 90 días de aplicación
de las auxinas
40
Figura 13 A Pesaje y preparación de las hormonas. 66
Figura 14 A Preparación del sustrato para usarse en las
unidades experimentales.
66
Figura 15 A Cambio de fundas de más volumen a las
plantas.
67
Figura 16 A Fertilización de las plantas. 67
Figura 17 A Colocación del plástico negro, para evitar la
proliferación de malezas en el área
experimental.
67
Figura 18 A Riego.
68
xix
Página
Figura 19 A A preparación del sustrato para los acodos. 68
Figura 20 A Realización de los acodos. 68
Figura 21 A Colocación de tutores en las plantas y
resuspender ramas acodadas.
69
Figura 22 A Acodos aéreos. 69
Figura 23 A Colocación de letreros para especificar los
tratamientos con ANA.
70
Figura 24 A Tratamientos con AIA. 71
Figura 25 A Sistema de riego de acodos. 71
Figura 26 A Fumigación #1 para cochinillas harinosas o
chanchitos blancos (Hemiptera:
Pseudococcidae).
72
Figura 27 A Fumigación #2 para cochinillas harinosas o
chanchitos blancos (Hemiptera:
Pseudococcidae).
72
Figura 28 A
Recolección de datos # 1.
72
Figura 29 A
Recolección de datos #2.
73
Figura 31 A Evaluación final junto al tutor de tesis.
74
Figura 32 A Recolección de datos #3.
74
Figura 33 A Resultados, Hormonagro Ácido Alfa-
Naftaleneácetico
75
Figura 34 A Testigo
76
Figura 35 A ANA Ácido Naftaleneácetico enraizamiento de
acodos
76
Figura 36 A AIA Ácido Indolacético enraizamiento de
acodos
77
xix
1
I INTRODUCCIÓN
La floricultura es una actividad que posee una importancia económica,
en cuanto a su superficie cultivada a nivel mundial Asia posee el 75% ,
después Europa con el 10%, América Central y Sur América 9%,
América del Norte el 4% , Medio Oriente el 1% y África el 1%. El
valor de las exportaciones mundiales se estima en más de $8,500
millones de dólares. Este se encuentra distribuido en los siguientes países
Holanda el 42%, Colombia el 13%, Kenia el 7%, Ecuador 5%, China el
4%, Israel el 3%, y otros países suman el 26% (González, 2010).
El cultivo de plantas ornamentales se encuentra genéricamente dentro de
lo que se denomina horticultura no comestible, que sirve para embellecer
y mejorar nuestro entorno de vida, dentro de esta categoría tenemos
principalmente la producción de árboles, arbustos ornamentales, plantas
de colores y florales, ya sean sembradas en el suelo o en jardineras
(Liotier y Sébastie 2006) citado por (Espinoza, 2008).
Es relevante indicar que se enfoca en la horticultura de productos no
comestibles como son las florícolas que ocupan una superficie
aproximada de 200,000 ha. en todo el mundo, de las cuales 47,000
corresponden a Europa, 120,000 a Asia, 30,000 a América y unas 5,000
a África, esto representa una cifra de 360,000 euros (568, 800 dólares) y
ocupa directamente a 1.5 millones de personas (Liotier y Sébastie,
2006).
Dentro de las especies ornamentales más populares en la decoración de
jardines se encuentra Bougainvillea glabra choisy, que en Nicaragua se
2
le conoce como veranera o trinitaria con un gran número de variedades
cultivadas y posibles de ser empleadas en todo tipo de diseños de
paisajismo, ocupando el cuarto lugar en importancia entre las especies
más propagadas en algunas regiones de América (Pérez y Guerrero et
al., 2003).
La propagación de esta especie se realiza por el método tradicional
basado fundamentalmente en el uso de estacas tomadas de diferentes
secciones de la ramas y tallos colocadas para enraizar en un lecho
favorable obteniéndose bajos porcentajes, lo que puede estar dado por la
selección del tipo de estaca, el manejo del riego y la falta de ciertas
sustancias internas necesarias para la formación de raíces (Hartmann y
Kester et al., 1981).
Dicho proceso es básico para el crecimiento vegetativo normal, de la
regeneración y cicatrización de heridas, que hace posible la propagación
vegetativa, a través de la multiplicación por estaca, injerto, acodo,
separación y división. Esos métodos son importantes debido a que
permiten la multiplicación en gran escala de una planta individual, en
tantas plantas separadas como la cantidad de material paterno
(Hartmann y Kester 1984).
Mediante el empleo de técnicas de multiplicación vegetativa artificial,
las características propias de cada especie se conservan en las plantas
descendientes y pueden conservar intacto el genotipo de la planta madre
(Hartmann y Kester 1984).
Dicen que entre las principales técnicas de multiplicación vegetativa se
encuentra el acodado: de puntas, simple, de trinchera, aporcado, aéreo y
3
compuesto, aplicado en plantas de fácil o con dificultad de propagarse
sexualmente, como el caso de la Bougainvillea glabra Ch, (Hartmann
y Kester, 1984).
Las auxinas estimulan la división celular, favoreciendo el crecimiento
por elongación de tallos y el desarrollo de callos, diferenciación celular,
dominancia apical y formación de raíces. Este último proceso, se debe a
que el tejido rico en auxinas, se convierte en un punto de atracción de
nutrientes y otras hormonas del crecimiento, como las giberelinas,
(Beaulieu et al., 1973; Weaver 1976; Jankiewicz 2003).
La presente tesis está enfocada en una alternativa más eficaz de
propagación asexual, determinando si el método de acodos aéreos y el
uso de auxinas, es efectivo para la propagación de Bougainvillea,
contribuyendo así a mantener la población de esta especie.
Dada la situación planteada, se realizó esta investigación con los
siguientes objetivos:
4
1.1 Objetivo general:
Contribuir al mejoramiento tecnológico de la propagación asexual por
acodos aéreos en Bougainvillea glabra Ch. mediante la aplicación de
tres auxinas, cuando la planta está en crecimiento activo.
1.2 Objetivos específicos:
Definir el período y emisión de raíces, de los acodos aéreos en
Bougainvillea glabra Ch.
Determinar cuál es el enraizador más eficaz en la formación de
raíces adventicias.
Comprobar cuál es la dosis más favorable en el enraizamiento de
acodos.
5
II REVISION DE LITERATURA
2.1 Origen
La veranera es originaria del Brasil, fue descubierta, en 1790 por el
navegante francés Louis Antoine de Bougainbille, quien la llevo a
Europa y la popularizó rápidamente.
El grupo de veranera tiene 14 especies entre ellas Bouganvillea glabra
(Clarazo 1998), esta especie forma parte de un grupo de enredaderas o
plantas leñosas de flores cultivadas en muchas regiones tropicales y
subtropicales. Se clasifica botánicamente según (Warde 1991).
2.2 Taxonomía
Reino: Vegetal
División: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Subclase: Cariophyllidae
Orden: Caryophyllales
Familia: Nictaginácea
Nombre Científico: Bougainvillea glabra choisy
(Warde, 1991).
2.3 Características botánicas
Algunos autores coinciden en que constituyen enredaderas leñosas,
sarmentosas, con flores amarillas reunidas por brácteas grandes
foliáceas, de color, que se considera como flor en la jardinería (Mac.
Millan 2000).
6
Dentro de este género que comprenden 14 especies, Bougainvillea
glabra Choisy es la variedad de mayor interés.
Al referirse a ella, (Clarazo 1998) la describe como uniforme, con ramas
tupidas y abundantes flores en racimos axilares a lo largo de las ramas.
La veranera, es un arbusto espinoso frecuentemente trepador con hojas
alternas, flores pequeñas, poco vistosas, hermafroditas, acompañadas de
tres Brácteas grandes de color lila, rosa, amarillo o blanco,
frecuentemente en inflorescencias cimosas (Clarazo, 1998).
2.4 Requerimientos del cultivo de la especie
2.4.1 Temperatura
Sensible a las heladas; el follaje es dañado a los 32°F (0 grados Celsius).
2.4.2 Exposición
Sol total tolerante al calor
2.4.3 Suelo
Adaptable, está bien en suelo rocoso ò arenoso, el enriquecer el suelo es
beneficioso pero no necesario.
(www.arbol2000.commailto:[email protected])
2.4.4 Fertilización
La veranera no es exigente en nutrientes, dependiendo de las
características del suelo, si está en una maceta, se le añade el fertilizante
líquido en forma de quelatos cada 15 días. En plantaciones de jardín no
se fertiliza y siempre se mantiene una excelente floración. En ocasiones
aparecen síntomas de carencia, las que se manifiestan por el
amarillamiento de las hojas, lo cual pudiera solucionarse con
7
aplicaciones al suelo de material orgánico a base de estiércol
compostado o lombrihumus (Infojardín 2004).
2.4.5 Riego
El riego depende del lugar donde estén sembradas las plantas y la época
del año. Cuando estas se plantan en macetas, se riega dos o tres veces
por semana manteniendo la humedad del sustrato. En plantaciones
realizadas en jardines se riega una a tres veces por semana o incluso
menos. No soporta el encharcamiento, para florecer en abundancia
requiere de estrés hídrico, en los viveros las plantas ubicadas en bolsas
de polietileno suelen regarse tres veces por semana (Infojardín, 2004).
2.4.6 Tamaño.
Hasta 30 ft (9 m) en lugares donde no hay heladas; más comúnmente
10-12 ft (3 m-3.5) con un esparcimiento de 8ft (2.4 m)
(www.arbol2000.commailto:[email protected])
2.4.7 Poda.
Se poda el arbusto cada 20 días o cada mes, con tijera de mango lo cual
facilita esta labor. Solo se cortan las puntas largas las podas se realizan
para dar forma a las plantas de pequeños arbustos y evitar que proliferen
más ramas largas para plantas con tutor el manejo es muy distinto, en
esos casos habrá que ir guiando a la planta (producción de
Bougainvillae 2006).
8
2.4.8 Plagas
Ácaros Tretanychus telarius L. Son parásitos muy pequeños
normalmente viven y se alimentan en la superficie inferior de las hojas.
Su ataque causa síntomas como el amarillamiento, bronceado y
quemadura de las hojas, el follaje puede también aparecer arrugado y
deformado y en ocasiones telarañas en el envés (Morales 1995).
El control químico es satisfactorio con productos a base de dicofol,
tetradion, dicarzol, dinacop, metamidofos, y jabones insecticidas
(Morales, 1995).
Cochinillas harinosas o chanchitos blancos (Hemiptera: Pseudococcidae)
Dentro del orden Hemiptera, se encuentra la familia Pseudococcidae, que
vulgarmente se les conoce como “chanchitos blancos” o “cochinillas
harinosas”. Dentro de esta familia los géneros Planococcus y
Pseudococcus agrupan a la mayoría de las especies plagas más
importantes en la agricultura. Estas especies tienen una morfología
externa similar, siendo difícil la identificación de las mismas en forma
macroscópica (Núñez y Scatoni, 2003).
2.4.9 Daños.
Los daños principales que producen estos insectos, son ocasionados por
la succión de la savia, transmitir enfermedades e inyectar toxinas a las
plantas, lo cual reduce el vigor y eventualmente pueden llegar a morir.
La actividad de los pseudococcidos sobre el cáliz de los frutos,
constituye otro de los efectos negativos, lo que en ocasiones produce una
reducción de su valor comercial como resultado de la generación de
cicatrices (Schreiner, 2000).
9
La infestación por cochinillas produce síntomas tales como:
deformaciones y presencia de fumagina que ennegrece las hojas
debilitando la planta y dificultando el proceso fotosintético (Martínez,
Blanco y Suris, 2006).
2.5 Importancia y uso de las Bougainvillea
2.5.1 Ornamental.
Es una planta ornamental de alta demanda, muy difundida y
popularizada en la decoración de jardines, de mayores posibilidades para
ser usada en todo tipo de diseños de paisajismos, otro uso es como
arreglo en seco, ya que es posible deshidratar y mantener el brillante
color de sus brácteas, lo que hace muy atractivo su cultivo (Acosta y
González, 2000).
2.5.2 Medicinal
Además de ornamental también es utilizada para casos de afecciones
respiratorias como tos, asma, bronquitis, gripe y tosferina, para su
tratamiento son empleadas las flores y brácteas, así como su preparación
en infusión, suministrados por vía oral. Para estos casos se recomienda
tomarlo caliente tres veces al día durante 72 horas, suspender el
tratamiento durante una semana y repetirlo hasta sentir mejoría. Para la
misma finalidad es recomendada con otras plantas como naranja y canela
para ser tomadas como agua. En otros casos, este arbusto ha resultado
10
eficaz para tratar convulsiones de niños, dolor de estómago, mal de orina
y el acné (Valdés, 2001).
2.5.3 Valor en el paisajismo.
Color de fondo
Buena planta para contenedores buena planta trepadora
Efecto tropical
2.6 Propagación más utilizada en las Bougainvillea.
La veranera al igual que un gran número de especies vegetales se
reproducen fundamentalmente de forma vegetativa, a través de estacas
de tallo tomadas en cualquier época del año (Clarazo y 1998), por lo
que es necesario profundizar en el conocimiento de la estructura interna
del tallo, aspecto ampliamente estudiado por varios autores entre los que
se destacan (Hartmann y Kester, 1981).
2.7 Tipos de propagación Asexual.
La propagación asexual o vegetativa, es la capacidad que tienen algunos
órganos vegetativos de regenerar parte de la planta y formar un nuevo
individuo independiente, a través de la mitosis, ya que la planta posee los
genes necesarios para su crecimiento y desarrollo. Aunque las especies
que se propagan de esta manera, se encuentran limitadas al medio
ambiente en el que están adaptadas (Hartmann y Hocker, 1984).
Dicho proceso es básico para el crecimiento vegetativo normal, de la
regeneración y cicatrización de heridas, que hace posible la propagación
11
vegetativa, a través de la multiplicación por estaca, injerto, acodo,
separación y división. Esos métodos son importantes debido a que
permiten la multiplicación en gran escala de una planta individual, en
tantas plantas separadas como la cantidad de material paterno
(Hartmann y Kester, 1984).
2.8 Razones para emplear la propagación mediante acodos aéreos.
La propagación asexual reproduce clones. Esa propagación implica la
división auténtica de las células, en la cual, hay una duplicación íntegra
del sistema cromosómico y del citoplasma asociadas de la célula
progenitora, para formar dos células hijas. En consecuencia, las plantas
propagadas vegetativamente reproducen, por medio de la réplica del
DNA, toda la información genética de la planta progenitora. Por esto,
las características específicas de una planta dada son perpetuadas en la
propagación de un clon. El proceso de reproducción asexual tiene
importancia especial en horticultura porque la composición genética
(genotipo) de la mayoría de los cultivares de los frutales y de las plantas
ornamentales más valiosas, es generalmente heterocigota y las
características que distinguen a esos tipos se pierden de inmediato al
propagarlos por semilla (Blanco, 1999; Alcántar, 2001).
2.8.1 Propagación por acodos.
El principio del acodo es el de colocar una parte del vegetal en
condiciones favorables para que emita y desarrolle raíces, es un método
fácil, sencillo y seguro de propagación, con el cual se estimula la
emisión de raíces en ramas o brotes antes de separarlas de la planta
madre. Las raíces que se producen en un acodo tienen el mismo origen
12
que las provenientes de las estacas: Se formarán ya sea a partir de
meristemos existentes, donde va a tener lugar una actividad inicial y a
continuación una desdiferenciación celular que conducirá a una
reorganización o a partir de los islotes meristemáticos, donde las células
se van a diferenciar y dar nacimiento a un meristemo radical y entonces
las raíces se podrán desarrollar. Los acodos aéreos se desprenden
después de la formación del callo y se enraízan en camas. Aunque
existen diversas maneras de realizar el acodo, los más importantes y
utilizados son: acodo aéreo, acodo de punta, acodo subterráneo y acodo
de cepa. La utilización conjunta de las auxinas, así como la evolución de
las técnicas de estacas, han hecho perder el interés en el acodo (Blanco,
1999; Alcántar, 2001).
2.8.1.1 Especies propagadas por acodos aéreos.
Existen varias especies propagadas con este método, su mayor aplicación
es comercial en plantas frutales como el litchi (Litchi chinensis Sonn.),
guayaba (Psidium guajava L.), limón persa (Citrus aurantifolia
(Christm.) Swingle), mango (Mangifera indica L.), vid muscadina (Vitis
rotundifolia), chirimoya (Annona cherimola Mill.), higuera (Ficus carica
L.), avellano (Corylus avellana) y diversos pinos (Pinus spp.) (Blanco,
1999; Alcántar, 2001).
2.8.1.2 Acodo aéreo
Para lograr la emisión de raíces se hacen cortes transversales en la
corteza de la rama o brote, sitio en donde se acumula la mayor cantidad
de carbohidratos y hormonas, ya que no pueden translocarse a los sitios
más bajos de la planta por interrupción del paso de los mismos, lo que no
13
afecta la sobrevivencia de la misma. La emisión de raíces se puede
estimular con la aplicación de reguladores de crecimiento u hormonas.
Los pasos a seguir son:
Seleccionar una rama joven, preferiblemente de un (1) año de
edad.
Eliminar las hojas que se encuentren en donde se va a realizar el
acodo.
Realizar una incisión transversalmente en forma anular de uno a
dos centímetros (1 a 2 cm) de ancho.
Levantar y remover totalmente la corteza, formando un anillo
completo.
Aplicar en la parte superior de la incisión o anillo, producto
hormonal en polvo.
Cubrir el corte o anillo con un material o sustrato que tenga alta
capacidad de retención de humedad (musgo, suelo franco
arcilloso), formando una masa uniforme y compacta alrededor del
mismo.
Envolver el sustrato con polietileno (plástico negro), papel
aluminio u otro material que permita conservar la humedad y no
se deteriore por el manipuleo y medio ambiente.
Amarrar muy bien los extremos de la envoltura del sustrato
Aplicar riego periódicamente con una jeringa.
Revisar la formación de raíces
Cuando haya buena emisión y desarrollo de raíces, cortar la rama
después del corte anular, sin ocasionar daño a las nuevas raíces.
Sembrar la nueva planta en bolsa y llevar a vivero.
Cuando la planta obtenga un buen desarrollo físico y no presente
problemas fitosanitarios, se lleva a sitio definitivo. (Blanco, 1999;
Alcántar, 2001).
14
2.8.2 Sustrato para los acodos.
Un adecuado sustrato enraizador debe ser ligero en el peso, poroso para
permitir el suficiente intercambio de oxígeno alrededor de la herida, pero
con una capacidad de retención de agua alta; el musgo, la fibra de coco,
el aserrín, la vermiculita o las mezclas de tierra con cualquiera de estos
sustratos han demostrado ser convenientes. Un poco de tierra de debajo
los árboles establecidos puede agregarse al sustrato para ayudar en el
proceso de enraizamiento, sobre todo para especies que requieren el
microsymbionts. Dos manojos de un adecuado sustrato enraizador se
aplican alrededor de la herida. Este sustrato se sostiene adherido a la
herida con un plástico y se envuelve en la lámina de aluminio para
conservar la humedad y prevenir el excesivo calor. (Blanco, 1999;
Alcántar, 2001).
2.9 Regulación Hormonal
Uno de los ensayos más antiguos sobre crecimiento vegetal implicó
estudios sobre la biología y mecanismos de acción de las auxinas, las
primeras hormonas vegetales en ser descubiertas. El primer indicio de
su existencia se derivó de experimentos realizados por Darwin quien
analizó los efectos de una sustancia hipotética presente en el ápice de
coleoptilos de avena sobre el crecimiento de plántulas hacia una señal de
luz (El coleoptilo corresponde a una estructura “tubular” semejante a una
hoja hueca que envuelve y protege a la plúmula durante los primeros
estados de desarrollo en gramíneas. Sus células crecen sólo por
elongación) (Thimann, 1977).
15
Las características principales de las fitohormonas es que actúan como
reguladores del desarrollo, que son sintetizados por la planta, los mismos
que se encuentran en muy bajas concentraciones en el interior de los
tejidos, y pueden actuar en el lugar que fueron sintetizados o en otro
lugar, de lo cual concluimos que estos reguladores son transportados en
el interior de la planta. (Rojas, 2006).
Los reguladores de crecimientos son compuestos orgánicos involucrados
en el desarrollo, crecimiento y actividad metabólica de las plantas,
constituyen un elementó importante en el cultivo in vitro ya que están
encargados de la distribución de los compuestos que la planta
biosintetiza y además determina todos los órganos relativos de la planta
(Pierik, 1990),
Las auxinas son un grupo de hormonas vegetales naturales que regulan
muchos aspectos del desarrollo y crecimiento de plantas. La forma
predominante en las plantas es el ácido indolacético (IAA), muy activo
en bioensayos y presente comúnmente en concentraciones nanomolares.
Otras formas naturales de auxinas son el ácido 4-cloro-indolacético (4-
Cl-IAA), ácido fenilacético (PAA), ácido indol butírico (IBA) y el ácido
indol propiónico (IPA; Ludwig-Müller & Cohen, 2002).
En el uso de las auxinas, no es posible establecer una concentración
particular, que se debe utilizar en un sólo caso. Sin embargo, en general
se utiliza AIA en concentraciones que varían de 0.001a 10 ppm, con un
punto óptimo alrededor de 0.1 a 1 ppm; el ANA generalmente se utiliza
en concentraciones levemente mayores (1 a 10 ppm), con un punto
óptimo cerca de 2 ppm (Roca y Mroginski, 1993).
16
Calle y Córdova 2009), quien afirma que, en el tratamiento con ácido
naftaleneacético, a los 90 días de su inoculación la producción de rices
alcanza su máximo en la concentración número tres (600ppm) y decrece
en las demás concentraciones.
Utilizando ácido indolacético, a los 60 días de la aplicación, hubieron
diferencias significativas en el número de individuos enraizados en cada
revisión teniendo un incremento aproximado del 20% entre la primera
revisión (Calle y Córdova, 2009).
Fig. # 1. Estructura de algunas auxinas naturales (IAA, IBA, PAA, Cl-
IAA) y sintéticas (NAA, dicamba, 2,4-D y 2,4,5-T).
17
2.9.1 Enraizadores.
Son materiales químicos sintéticos que se han encontrado más dignos de
confianza para estimular la producción de raíces adventicias de las
estacas, son los AIA (Ácidos Indolacético) y ANA (Ácido
Naftaleneacético) aunque hay otros que puedan usarse, el ácido
indolbutírico probablemente es el mejor material para uso general debido
a que no es tóxico en una amplia gama de concentraciones y es eficaz
para estimular el enraizamiento de un gran número de especies de
plantas (Hudson y Dale, 1972).
2.9.2.1 Ácido naftaleneacético (ANA).
ANA actúa estimulando la actividad fisiológica de la planta, sobre los
puntos de crecimiento activo en diferentes procesos; es un activador
enzimático que afecta la división celular, promoviendo la emisión radical
en plantas por trasplantar o en plantas ya sembradas (Noboa, 2011).
El mismo investigador indica, que es un poderoso estimulante hormonal,
diseñado para inducir la formación de un sistema radicular más fuerte en
una amplia gama de especies vegetales, es empleado para la propagación
asexual por medio de estacas, para el enraizamiento de acodos y esquejes
y para estimular la formación de macollos (Noboa, 2011).
2.9.2.2 Ácido Indolacético.
ANA se considera una auxina fuerte, muy estable, pero es más tóxico
que el ácido indolacético (AIA), esta última auxina es de origen natural;
Weaver, 1976; Margara, 1988; Jankiewicz, 1989).
18
62.9.2.3 Condiciones climáticas para el enraizamiento.
La temperatura está relacionada tanto con el desarrollo vegetal de la
planta, como con la floración y la fructificación del cultivo; asimismo
ejerce un efecto sobre la actividad de las raíces y de los brotes, de
manera que las bajas temperaturas disminuyen su actividad y las altas
limitan la capacidad de absorción (Pedroza y Montes, 2008).
19
III MATERIALES Y MÉTODOS
3.1 Ubicación del experimento.
La presente investigación se llevó a cabo en un predio ubicado en el
cantón Daule, Barrio Banife, sector Marianita # 4 junto al laboratorio
AGROVITROPARIS; ubicada en:
Provincia: Guayas
Cantón: Daule
Dirección: Av. Piedrahita y Jaime Roldós, Mz. 434
Latitud Sur: 1º 51' 37,77" S (613866.52 UTM)1/
Longitud Occidental: 79º 58' 34,42" W (9794326.09 UTM)1/
Número telefónico: 042797639
3.2 Datos geográficos: 1/
La empresa se encuentra al noreste del cantón Daule, a una altitud de 15
m.s.n.m y en un terreno de topografía plana.
3.3 Datos climáticos: 2/
La temperatura es media anual con 26oC, tiene una precipitación media
anual de 905 mm y una humedad relativa anual de 75%
__________________________________________________________
FUENTES:
1/ http://www.mundivideo.com/coordenadas_chrome.htm (2014) 2/ Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología (INAMHI, 2013)
20
3.4 Mapa satelital de la ubicación geográfica del área de estudio.
Figura # 2. Daule Av. Vicente Piedrahita y Leopoldo Benítez
Vizueta, Fuente: GPS.
Coordenadas
UTM:
21
3.5 Materiales utilizados.
Guantes quirúrgicos, bisturí # 23, mango de bisturí # 4, gasas, tijera,
jeringa de 50cm, agua destilada, piseta, alcohol al 75%, balanza
analítica, Erlenmeyers 100 ml, plástico negro, piola, tijera de podar,
espátula, fundas negras de plástico, recipiente mediano de aluminio,
cocina a gas, insecticidas, fertilizante completo, sustrato, cinta
milimetrada, llave de agua y manguera larga para (riego), vernier,
estaquillas de 1.50cmde longitud, tachuelas, calculadora, lápiz, marcador
permanente color negro, libreta de apuntes, tablero, formatos de cartulina
blancos, , computadora e impresora, hojas papel bond.
3.5.1 Material vegetal.
Se utilizaron plantas de Bougainvillea glabra Ch. con una edad de un
año y cuatro meses, fueron adquiridas en el vivero los Vergeles, km 6
1/2, vía a Guayaquil, provincia del Guayas.
3.5.2 Fitohormonas.
Lo constituyen las auxinas, ANA, AIA y Hormonagro.
Cuadro # 1
Composición química de las auxinas
Auxinas Composición Concentración
(%)
ANA
Ácido naftaleneácetico
0.40
AIA
Ácido Indolacético
0.40
22
Hormonagro # 1 Descripción
Figura. 3 Fuente: COLINAGRO (2015).
3.5.3 Fertilizante
Se aplicó fertilizante completo (NPK) con un intervalo de un mes luego
de realizada la adquisición de las plantas (Figura, 4A).
3.5.4 Insecticida.
Debido a la detección de la presencia de Cochinillas harinosas
(Hemiptera: Pseudococcidae), fué necesario realizar dos aplicaciones
23
del insecticida piretroide concentrado emulcionable (EC), de nombre
ZERO 5 EC de uso agrícola contenido neto 250 cc.
Ingrediente activo Lanbda Cihalotrina 50 gramos/l.
Control de insectos masticadores, picadores y chupadores.
Cuadro. # 2
Número de aplicaciones del insecticida
Aplicaciones Insecticida Dosis
1 ZERO 5 EC 0.20 mg/l
2 0.30 mg/l
Figuras # 14A y 15A.
3.6 Metodología utilizada
3.6.1 Propagación vegetativa por acodos aéreos
Para llevar a cabo el método antes indicado, primeramente se
seleccionaron las ramas de las plantas (Bougainvillea), siguiendo los
siguientes criterios, según se observa en el (Cuadro # 3).
Cuadro # 3.
Ramas
Características óptimas de las ramas a acodar
Edad Diámetro
Jóvenes Menores a un año, el color de
las ramas esverdoso
(herbácea)
Menor a 1 cm
Óptimas Entre uno y dos años, el color
de las ramas es café claro
(medianamente leñosas)
Su diámetro oscila
entre 1 y 2 cm.
De más
avanzada edad.
Mayores a dos años (leñosas) Mayor a 2 cm.
24
3.6.1 Acodadura aérea en las plantas seleccionadas
Para los acodos aéreos se adquieren plantas con ramas en forma regular
que tengan más de tres yemas (Hartman y Kester, 1995).
Para llevar a cabo de las 88 acodaduras de las 44 plantas en estudio, se
procedió, con el empleo de un bisturí y con la mayor asepsia posible
(utilizando guantes de cirugía), haciendo una incisión circular de 2cm de
ancho, en las ramas seleccionadas para la acodadura aérea.
Este protocolo se lo realizó en las ramas con un diámetro comprendido
entre 1,5cm a 2cm primeramente, en primer lugar se desprendió la
corteza (epidermis) de todas las ramas, con la finalidad de dejar el
xilema directamente en contacto con el medio exterior. El largo de las
ramas, se tomó en cuenta, desde el lugar donde se realizó la acodadura,
hasta las yemas terminales, fue de 45cm a 50cm aproximadamente.
(Figuras # 14A – 15A).
3.6.3 Preparación de las hormonas
Ya en el laboratorio se procedió al pesaje y dilución de las fitohormonas
de enraizamiento AIA-Ácido Indolacético y ANA- Ácido
Naftaleneácetico c/u al 0.10, 0.15, 0.20, 0.25 mg/l con alcohol al 75 %,
y hormonagro Ácido Alfa-Naftaleneácetico con una dosis de de 100
gr/L, las antes mencionadas dosis fueron distribuidas y aplicadas en
los acodos según los tratamientos y sus repeticiones donde
posteriormente se evaluó su desempeño (Figura # 1A).
25
3.6.4 Incisión para realizar el acodo
Una vez retirada la epidermis o corteza del sitio de acodadura de los
sitios seleccionados se procedió a colocar la gasa humedecida con la
dosis determinada para cada tratamiento de las auxinas liquidas, AIA y
ANA, también se aplicó Hormonagro (polvo), esperando el sellado con
material suberoso y se cubra el xilema con la goma; las células
originaron una capa de parenquimas (callos) y finalmente las células del
cambium vascular y floema (Figura # 8A).
3.6.5 Preparación del sustrato
El sustrato utilizado para el establecimiento de este estudio fue, estiércol
vacuno descompuesto, mantillo de huerta, tierra arcillosa, arena y
material orgánico. Se mezcló, se colocó en un recipiente, y luego se le
aplicó agua, obteniendo así el sustrato con la humedad adecuada para los
acodos aéreos. Seguidamente, se cubrió la incisión con una porción
considerable de sustrato humedecido, aproximadamente media libra (227
g), como se indica en la figura (Figura # 7A).
Posteriormente se cubrió con polietileno perforado de color negro (40
cm x 25 cm); con la perforación de éste se facilitó el riego, se hizo un
amarre en cada extremo y otro en el medio, para que exista mayor
superficie de contacto con el acodo, entre la hormona, y el sustrato,
quedando una envoltura similar a un caramelo (Figura # 10A).
Cabe señalar que la forma en que se amarraron los acodos fue la
adecuada, por cuanto permitió el riego, esto facilito que los acodos
26
mantengan humedad. Se realizó dos acodos por planta, ocho acodos por
tratamiento.
3.6.6 Colocación de tutores
Una vez realizados los acodos en las plantas, las ramas de las unidades
experimentales debido al peso cedieron hacia el suelo, por dicho
imprevisto fue necesario colocar tutores y se amarraron con piolas
respectivas para evitar que se destruyan, para facilitar la evaluación, el
riego de los acodos, y así mantener la humedad requerida en los mismos
(Figura # 9A).
3.6.7 Riego.
El riego en los acodos, se lo llevo a cabo mediante una jeringuilla de 60
ml, de acuerdo a la capacidad de absorción del sustrato, se aplicaron dos
jeringuillas de 60mg llenas de agua por acodo, fue la cantidad adecuada
para mantener la húmedad a los 227g de sustrato que cubrió a éstos, es
importante mencionar que el riego se lo hizo tres veces por semana,
dependiendo de la variación climática, como se indica en la Figura #
13A.
3.6.8 Poda
La poda se la realizó cada 20 días, ya que las Bouganvillea son plantas
que se ramifican rápidamente y según la conveniencia, se trató de dar
formas, podándolas con tijera de mango largo lo cual facilito esta labor
ya que por presentar espinas sus ramas, en algunos casos no lo permitía.
27
3.7 Factores en estudiados
Cuadro # 4
Factores estudiados
Dos auxinas:
ANA (A1)
AIA (A2)
mg/L.
Cinco dosis de auxinas: 0,00 (D1)
0,10 (D2)
0,15 (D3)
0,20 (D4)
0,25 (D5)
3. 7.1 Tratamientos.
La combinación de las dos hormonas con cinco niveles de auxinas dieron
un total de diez tratamientos, más un tratamiento de una hormona
(Hormonagro) utilizado como testigo, los mismos que se detallan en el
Cuadro # 5.
Cuadro # 5 Tratamientos estudiados y su combinación
No de
Tratamiento
Tipo Auxinas Mg Interacción
1 ANA 0,00 A1 D1
2 ANA 0,10 A1 D2
3 ANA 0,15 A1 D3
4 ANA 0,20 A1 D4
5 ANA 0,25 A1 D5
6 AIA 0,00 A2 D1
7 AIA 0,10 A2 D2
8 AIA 0,15 A2 D3
9 AIA 0,20 A2 D4
10 AIA 0,25 A2 D5
11 Hormonagro 100 g/l T
28
3.8 Diseño experimental
Para el análisis estadístico se utilizó el diseño completamente al azar,
con arreglo factorial (2 x 5 + 1), con cuatro repeticiones, cada una en la
comparación de las medias de tratamientos que se calcula con la prueba
del Tukey al 5% de probabilidad y el cálculo de coeficiente de variación
se lo expresó en porcentaje.
3.8.1 Análisis de varianza.
El esquema de las fuentes de variación y con sus grados de libertad se
presenta en el cuadro 6
Cuadro # 6 Esquema de las fuentes de variación y grados de libertad.
F. de V. G.L.
Tratamiento 10
Factorial
Fitohormonas 1
Dosis 4
F x D 4
Factorial Vs. Testigo 9
Error Experimental 33
Total 43
El experimento se llevó a cabo de Julio a Noviembre del 2015, El área
experimental estuvo conformada por 44 plantas en fundas de (25 cm x
30 cm) de polietileno, de las plantas acodadas, se tomaron cinco al azar
de cada tratamiento, a los cuales se les evaluó las variables en estudio.
29
3.8.2 Delineamiento del campo experimental
Número de tratamientos: 11
Número de repeticiones: 4
Número de las unidades experimentales: 44
Forma del lugar experimental: Rectangular
Distancia entre hileras: 0,60 cm
Distancia entre plantas: 0,60 cm
Distancia del borde experimental de los cuatro lados: 0,60 cm
Área total del experimento: 21.60 m²(3 m x 7.20 m)
3.8.3 Variables evaluadas:
Número de raíces a los 30, 60 y 90 días
El conteo de esta variable se lo hizo cada mes, mientras duro el
experimento.
Longitud de las raíces a los 30, 60 y 90 días
Esta variable se la evaluó cada mes, las medidas se la tomo en
centímetros y se utilizó una regla milimetrada.
Diámetro de raíces a los 30, 60 y 90 días
En esta variable se utilizó un Vernier para medir el diámetro de las
raíces en milímetros (Figuras # 20A-26A)
30
IV. RESULTADOS EXPERIMENTALES
4.1 Longitud de raíz a los 30 días de aplicación de las auxinas
Según el análisis de la varianza todas las fuentes de variación fueron
altamente significativas. La media general para esta variable fue de 2,06
cm y el coeficiente de variación de 12,63% (Cuadro # 1A).
Con la fitohormona ANA, se alcanzó un promedio de 2,30 cm difiriendo
con lo obtenido con la fitohormona AIA cuyo valor fue de 2,04 cm
(Cuadro # 7).
En lo que respecta a las dosis de las fitohormonas, se observa que el
crecimiento de la longitud de raíz en la mayoría de los tratamientos
alcanzó valores iguales estadísticamente con excepción de la dosis de
0,20 mg/L (Cuadro # 7).
La mayoría de las combinaciones de tratamientos (interacciones)
tuvieron un comportamiento prácticamente igual, encontrándose sus
valores dentro del intervalo de 2,02 y 2,60 cm, con excepción de AIA en
dosis de 0,20 mg/L, cuya longitud fue de un centímetro,
considerándosela como la más baja (Figura # 4).
El grupo factorial superó con 2,17 cm, superó estadísticamente al
tratamiento testigo cuyo valor fue de 1,00 cm (Cuadro # 7).
31
Figura # 4 A. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de
las mismas en la variable longitud de raíz a los
30 días.
4.2 Diámetro de raíz a los 30 días de aplicación de las auxinas.
El análisis de la varianza mostró a todas las fuentes de variación
altamente significativas. La media general para esta variable fue de 1,88
cm y el coeficiente de variación de 13,92% (Cuadro # 2A).
En cuanto a la dosis; en las fitohormonas, el crecimiento de la longitud
de raíz se observó que en la mayoría de los tratamientos alcanzaron
promedios dentro del intervalo de 1,96 a 2,19 mm iguales
estadísticamente con excepción de la dosis de 0,20 mg/L cuyo valor fue
de 1,52 mm (Cuadro # 7).
La interacción, mostro que la uxina ANA, tuvo una ligera tendencia a
disminuir las raíces, a medida que se incrementaron las dosis de las
mismas, sin embargo, la auxina AIA tuvo una caída brusca en su
2,53
2,09
2,37 2,18
2,37 2,39 2,19
2,02
1,00
2,60
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25
Lon
gitu
d d
e ra
íz a
los
30 d
ías
(cm
)
Dosis de auxinas (mg/L)
ANA
AIA
32
tendencia con la interacción A2-D4, y posteriormente se incrementó su
valor con la interacción A2-D5 (Figura 5)
El grupo factorial con 1,97cm, superó estadísticamente al tratamiento
testigo cuyo valor fue de 1,00 cm (Cuadro # 7).
Figura # 5A Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable diámetro de la raíz a los 30 días.
4.3 Número de raíces a los 30 días de aplicación de las auxinas.
Según el análisis de la varianza, todas las fuentes de variación fueron
altamente significativas con excepción del factor fitohormona que fue no
significativo. La media general para esta variable fué de 2,68 raíces y el
coeficiente de variación de 17,07% (Cuadro # 3A).
En las dosis de auxinas, los tratamientos con 0,00 y 0,25 mg/L cuyos
promedios fueron de 3,39 y 3,76 raíces, respectivamente, el valor más
2,06 2,19
2,10 2,04 1,88
2,14 2,20
1,82
1,00
2,27
0,50
0,70
0,90
1,10
1,30
1,50
1,70
1,90
2,10
2,30
2,50
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25
Día
met
ro d
e r
aíz
a lo
s 30
día
s (m
m)
DosÍs de auxinas (mg/L)
ANA
AIA
33
bajo se alcanzó con la dosis de 0,20 mg/L que presentó un valor de 1,77
raíces (Cuadro # 7)
Según la interacción, se observan valores prácticamente iguales con la
auxina ANA en todas sus dosis, no así con la auxina AIA que a medida
que sube la dosis tiende a disminuir su tendencia hasta llegar al valor de
1,0 raiz con la interaccion A2-D4, sufriendo un incremento brusco con la
interaccion A2-D5, con las dosis de 0,25 mg/L (Figura 6).
El grupo factorial con 2,84 raíces superó estadísticamente al tratamiento
testigo cuyo valor fue de una raíz, es decir, 1,84 raíces más (Cuadro #7).
Figura # 6. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable número de raíces a los 30 días.
4.4 Longitud de raíz a los 60 días de aplicación de las auxinas.
De acuerdo con el análisis de la varianza todas las fuentes de variación
fueron altamente significativas. El promedio general para esta variable
fue de 2,40cm y el coeficiente de variación de 21,38% (Cuadro # 4A).
3,14 2,69 2,75
2,54 2,47
3,65
2,79 2,35
1,00
5,05
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
6,00
0 . 0 0 . 1 0 0 . 1 5 0 . 2 0 0 . 2 5
NÚ
MER
O D
E R
AIC
ES A
LO
S 30
DÍA
S
DosÍs de auxinas (mg/l)
AIA ANA
34
El factor de dosis de fitohormonas determino que con el nivel de
0,20mg/L se tuvo un promedio de 1,79cm siendo más baja en relación
con las demás medias que presentaron valores en el rango de 2,65 y
2,81cm (Cuadro # 7).
En la comparación entre los promedios del factorial vs el testigo, el
primero con 2,34 cm supero al testigo, que alcanzó un valor de 1,00 cm
(Cuadro # 7)
Al igual que las otras variables la tendencia de las dos auxinas con el uso
de las diferentes dosis fue similar, la interacción con promedio más bajo
(1,00m) se la encontró con A2-D4, mientras que la más alta fue para A2-
D5 con un valor de 3,49cm (Figura 7).
Figura # 7A Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable longitud de raíz los 60 días.
2,93
2,45
2,96 2,57
1,81
2,69 3,05
2,49
1,00
3,49
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
4,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25
Lon
gitu
d d
e r
aíz
a lo
s 60
día
s (c
m)
Dosís de auxinas (mg/l)
ANA
AIA
35
4.5 Diámetro de raíz a los 60 días de aplicación de las auxinas
El análisis de la varianza dio como resultados valores altamente
significativos para todas las fuentes de variación. La media general para
esta variable fue de 2,09 cm y el coeficiente de 17,91% (Cuadro # 5A).
Con la fitohormona ANA, se alcanzó un promedio de 2,33 cm difiriendo
con lo obtenido con la fitohormona AIA cuyo valor fué de 2,07 cm
(Cuadro # 8).
En lo que respecta a las dosis de auxinas, se observa que el diámetro de
la raíz en la mayoría de los tratamientos alcanzó valores comprendidos
entre 2,07 a 2,53 mm excepto a los obtenidos con las dosis de 0,20 mg/L
que obtuvo un valor de 1,69 mm igualando estadísticamente a los
tratamientos 0,15 y 0,25 mg/L de (Cuadro # 8).
Las interacciones A1-D1 y A1-D2, fueron prácticamente iguales con las
interacciones A2-D1 y A2-D2, la auxina ANA tuvo una ligera tendencia
a disminuir su decímetro de raíz a medida que se incrementaron las dosis
de auxinas, mientras que la auxina AIA su efecto en su valor fue
decreciente desde 0 a 0,20 mg/L de dosis, pero con la dosis de 0,25 mg/L
este valor se incrementó a 2,37 mm (Figura 8).
El grupo factorial superó con 2,2 cm, superó al tratamiento testigo cuyo
valor fue de 1,00 cm (Cuadro # 8 ).
36
Figura # 8. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable diámetro de la raíz a los 60 días.
4.6 Número de raíces a los 60 días de aplicación de las auxinas
En esta variable se observó significancia estadística al 5 y 1% de
probabilidad para dosis, la interacción de fitohormonas por dosis y
factorial vs testigo, la fuente de variación de fitohormonas fue de no
significativa. La media general para esta variable fue de 3,49 raíces con
un coeficiente de variación con 27,08% (Cuadro # 6A)
Con un valor de 2,47 raíces obtenido con las dosis de 0,20 mg/L fue el
tratamiento que presentó menor número de raíces, siendo igual
estadísticamente a lo obtenido con 0,15 y 0,25 mg/L de auxinas, cuyos
valores fueron de 3,95 y 3,88 raíces, respectivamente (Cuadro # 8)
Según las interacciones con la auxina ANA con las dosis de 0,0mg/L
tuvo un valor 4,12raices y con la 0,25 mg/L se3 llego a 2,84 raíces, en
cambio con la auxina AIA el valor más bajo se lo encontró con la
2,53 2,51 2,46 2,38
1,78
2,54 2,40
2,05
1,00
2,37
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25
Dám
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s 60
día
s (m
m)
Dosís de auxinas (mg/l)
ANA
AIA
37
interacción A2-D4 y la más alta (05,11 raíces) con la interacción A2-
D5 (Figura 9).
El promedio factorial con 3,74 raíces supero al testigo que obtuvo un
valor de un centímetro (Cuadro # 8)
Figura # 9. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable número de la raíces los 60 días.
4.7 Longitud de raíz a los 90 días de aplicación de las auxinas
Las fuentes de variación que fueron altamente significativas son la
interacción y combinación del factorial vs el testigo excepto para las
fitohormonas. La media general fue de 2,82 cm y el coeficiente de
variación de 29,13% (Cuadro # 7A)
El grupo factorial superó con 3,01cm, superó estadísticamente al
tratamiento testigo cuyo valor fue de 1,00 cm (Cuadro # 8).
Las interacciones tuvieron en su mayoría, un comportamiento
prácticamente igual, encontrándose sus valores dentro del intervalo de
2,56 y 3,52 cm, con excepción de AIA en dosis de 0,20 mg/L, cuya
4,12 3,85 4,04 3,94
2,84
4,41 4,48
3,66
1,00
5,11
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
6,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25Nú
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a lo
s 60
día
s
Dosís de auxinas (mg/l)
ANA AIA
38
longitud fue de un centímetro, considerándosela, la más baja de todas
(Figura 10).
Figura # 10. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable longitud de la raíz a los 90 días.
4.8 Diámetro de raíz a los 90 días de aplicación de las auxinas
Según el análisis de la varianza todas las fuentes de variación fueron
altamente significativas. La media general para esta variable fue de
2,15cm y el coeficiente de variación de 20,19% (Cuadro # 8A).
Con el ácido naftaleneácetico se alcanzó un promedio de 2,44 mm
difiriendo con lo obtenido con la fitohormona AIA cuyo valor fue de
2,09 mm (Cuadro # 8)
Por otra parte, con las dosis de 0,00, 0,10 y 0,15 mg/L se presentaron los
mejores promedios, estos fueron de 2,61, 2,60 y 2,40 mm,
respectivamente (Cuadro # 8).
3,44 3,30 3,54 3,61
2,29
3,33 3,50
2,56
1,00
3,52
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
4,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25
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Dosís de auxinas (mg/l)
ANA
AIA
39
En la interacción, se observó que con la auxina AIA con el nivel de 0,00
y 0,10 mg/L, los promedios son prácticamente iguales, y van
descendiendo sus valores con 0,15 mg/L hasta que cae al valor más bajo
que es de 1,00 mm de diámetro con las dosis de 0,20 mg/L de AIA. La
auxina ANA en cambio sus valores se mantuvieron estables dentro del
rango de dosis de 0,00 a 0,20 mg/L y descendió con la dosis de 0,25
mg/L (Cuadro # 8).
El grupo factorial con 2,27 mm, superó estadísticamente al tratamiento
testigo que presento un promedio de 1,00 cm (Cuadro # 8).
Figura # 11A. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable diámetro de la raíz a los 90 días.
4.9 Número de raíces a los 90 días de aplicación de las auxinas
Según el análisis de varianza, las fuentes de variación y el coeficiente de
variación de 35,52% que alcanzaron valores altamente significativos
2,60 2,61 2,63 2,59
1,80
2,62 2,59
2,17
1,00
2,08
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25
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Dosís de auxinas (mg/l)
ANA AIA
40
fueron la combinación y la interacción del factorial vs el testigo la media
general para esta variable fue de 4,36 raíces (Cuadro # 9A).
De acuerdo con las interacciones, se alcanzó el promedio más bajo
(1,0cm) con la combinación A2-D4 y el valor más alto con A2-D1
(5,96cm), la auxina ANA presento una tendencia al incremento a
medida que se subieron las dosis de auxinas hasta 0,20 mg/L, pero su
valor cayo con la dosis de 0,25 mg/L A1-D5 (Figura 12).
El grupo factorial obtuvo un valor de 4,70 raíces superó
estadísticamente al tratamiento testigo (Hormonagro) cuyo valor fue de
1,00 cm (Cuadro # 8).
Figura 12A. Interacción entre dos auxinas con cinco dosis de las
mismas en la variable número de raíces a los 90 días.
Cuadro # 7. Promedio de cuatro características agronómicas obtenidas
en el experimento “Comportamiento de acodos aéreos en bungavillas
(bougainvillae glabra Ch) ante la aplicación de auxinas” Daule. Guayas.
2015.
4,87 5,28 5,35 5,57
3,69
5,74 5,96
4,25
1,00
5,24
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
6,00
7,00
0.0 0.10 0.15 0.20 0.25Nú
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es
a lo
s 9
0 d
ías
(cm
)
Dosís de auxinas (mg/l)
ANA
AIA
41
1/ Valores señalados con las mismas letras no difieren estadísticamente
entre sí (Tukey ≤ 0,05); N.S. No Significativo; ** Altamente
significativo. d.d.a. = días después de la aplicación
Factores y
niveles
Longitud de
raíz cm (30
d.d.a.)
Diámetro
de raíz
mm (30
d.d.a.)
Número de
raíces (30
d.d.a.)
Longitud de
raíz cm (60
d.d.a.)
Auxinas
ANA 2,30 a1/
2,05N.S.
2,72N.S.
2,54N.S.
AIA 2,04 b 1,88 2,97 2,54
Dósis (mg/L)
D1 0 2,46 a 2,10 a 3,39 ab 2,81 a
D2 0,10 2,14 a 2,19 a 2,74 bc 2,75 a
D3 0,15 2,19 a 1,96 a 2,55 c 2,72 a
D4 0,20 1,59 b 1,52 b 1,77 d 1,79 b
D5 0,25 2,48 a 2,07 a 3,76 a 2,65 a
Interacciones
A1 D1 2,53** 2,06** 3,14** 2,93**
A1 D2 2,09 2,19 2,69 2,45
A1 D3 2,37 2,1 2,75 2,96
A1 D4 2,18 2,04 2,54 2,57
A1 D5 2,37 1,88 2,47 1,81
A2 D1 2,39 2,14 3,65 2,69
A2 D2 2,19 2,2 2,79 3,05
A2 D3 2,02 1,82 2,35 2,49
A2 D4 1,00 1,00 1,00 1,00
A2 D5 2,6 2,27 5,05 3,49
factorial 2,17 a 1,97 a 2,84 a 2,54 a
Testigo 1,00 b 1,00 b 1,00 b 1,00 b
X 2,06 1,88 2,68 2,40
C.V. (%) 12,63 13,92 17,07 21,38
42
Cuadro # 8. Promedio de cinco características agronómicas obtenidas en
el experimento ““Comportamiento de acodos aéreos en Bungavillas
glabra Ch. Ante la aplicación de auxinas” Daule. Guayas. 2015.
Factores y
niveles
Diámetro
de raíz
mm (60
d.d.a.)
Número
de raíces
(60 d.d.a.)
Longitud
cm de
raíz (90
d.d.a.)
Diámetro
de raíz
mm (90
d.d.a.)
Número
de raíces
(90 d.d.a.)
Auxinas
ANA 2,33 a 3,76N.S.
3,23N:S:
2,44 a 4,95N.S.
AIA 2,07 b 3,73 2,78 2,09 b 4,44
Dósis mg/L
D1 0,00 2,53 a 4,27 a 3,38N.S.
2,61 a 5,31N.S.
D2 0,10 2,45 a 4,16 a 3,40 2,60 a 5,62
D3 0,15 2,25 ab 3,85 ab 3,05 2,40 ab 4,80
D4 0,20 1,69 b 2,47 b 2,30 1,79 b 3,29
D5 0,25 2,07 ab 3,98 a 2,91 1,94 b 4,47
Interacción
A1 D1 2,53** 4,12** 3,44** 2,60** 4,87**
A1 D2 2,51 3,85 3,30 2,61 5,28
A1 D3 2,46 4,04 3,54 2,63 5,35
A1 D4 2,38 3,94 3,61 2,59 5,57
A1 D5 1,78 2,84 2,29 1,80 3,69
A2 D1 2,54 4,41 3,33 2,62 5,74
A2 D2 2,40 4,48 3,50 2,59 5,96
A2 D3 2,05 3,66 2,56 2,17 4,25
A2 D4 1,00 1,00 1,00 1,00 1,00
A2 D5 2,37 5,11 3,52 2,08 5,24
factorial 2,2 a 3,74 a 3,01 a 2,27 a 4,70 a
Testigo 1,00 b 1,00 b 1,00 b 1,00 b 1,00 b
X 2,09 3,49 2,82 2,15 4,36
C.V. (%) 17,91 27,08 29,13 20,19 35,52 1/
Valores señalados con las mismas letras no difieren estadísticamente
entre sí (Tukey ≤ 0,05); N.S. No Significativo; ** Altamente
significativo. d.d.a = días después de la aplicación.
43
V DISCUSIÓN
En la técnica del acodaje en nuestro medio, no había sido utilizado en la
Bougainvillae grabla Choysi ya que por su fisiología no permite ser
propagada, si no es con la utilización de estacas y la aplicación de
hormonas que inducen al enraizamiento, en este caso, la técnica utilizada
en esta investigación presento resultados positivos, se observó un
enraizamiento hasta un 65% en los acodos aéreos con el uso de auxinas
como el ANA y el AIA.
En el uso de las auxinas, no es posible establecer una concentración
particular, que se debe utilizar en un sólo caso. Sin embargo, en general
se utiliza AIA en concentraciones que varían de 0.001a 10 ppm, con un
punto óptimo alrededor de 0.1 a 1 ppm; el ANA generalmente se utiliza
en concentraciones levemente mayores (1 a 10 ppm), con un punto
óptimo cerca de 2 ppm (Roca y Mroginski, 1993).
En esta investigación de acodos aéreos y el uso de auxinas en
Bougainvillae, los tratamientos tres y cinco de ANA y AIA a los 30, 60 y
90 días dieron el porcentaje más alto en cuanto a longitud, diámetro y
número de raíces utilizando las dosis de 0,15mg/l y 0,25mg/l., lo que
difiere con (Calle y Córdova 2009), quien afirma que, en el tratamiento
con ácido naftaleneacético, a los 90 días de su inoculación la producción
de rices alcanza su máximo en la concentración número tres (600ppm) y
decrece en las demás concentraciones. , la dosis en la que se obtuvo
menos porcentajes fue la del tratamiento cuatro, cuya dosis era de
0,20mg/l específicamente del AIA.
Utilizando ácido indolacético, a los 60 días de la aplicación, hubieron
diferencias significativas en el número de individuos enraizados en cada
44
revisión teniendo un incremento aproximado del 20% entre la primera
revisión (Calle y Córdova, 2009).
En la finca situada en el km 7 vía Puerto Asís – Mocoa – Colombia, en el
mes de mayo del año 2001 se realizaron 3 tratamientos de acodos aéreos
por anillado (2 cm de ancho), a las heridas producidas se les aplicó el
estimulador en polvo comercial “Hormonagro No. 1”, esta zona se rodeó
con tierra húmeda y mantillo tomado del pie del árbol y se procedió a
cubrir con plástico negro. Los parámetros de evaluación fueron:
formación de callo (80%), número y tiempo brotación de raíces en un
(60%), longitud de raíces (4,7cm), se evaluaron mensualmente. (Rojas;
García y Alarcón, 2004).
45
VI CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
En base al presente trabajo de investigación realizado, se concluye y
recomienda lo siguiente, la multiplicación de las Buganvillas en la zona
de Daule, si es posible utilizando el método de acodos aéreos y
fitohormonas.
En términos generales, la Bougainvillea glabra Choisy, requiere
de aproximadamente dos a tres meses para lograr un
enraizamiento satisfactorio, mediante la técnica de acodo aéreo.
La auxina con la que se obtuvo el mayor enraizamiento de acodos,
significativamente diferente a las otras usadas, fue ANA.
Las dosis que más significancia tuvieron en cuanto enraizamiento
fueron 0,10 - 0,15 y 0,25 mg/L.
46
VII RESUMEN
El presente trabajo se llevó a cabo en el cantón Daule, provincia del
Guayas, en el periodo comprendido entre los meses de Julio a
Noviembre del 2015, esta investigación se realizó con la finalidad de
establecer una nueva alternativa para la propagación de Boungainvillea
glabra Chousy, conocida en el Ecuador como veranera, cuyo objetivo
fue:
Contribuir al mejoramiento tecnológico de la propagación asexual por
acodos aéreos en Bougainvillea glabra Ch. mediante la aplicación de
tres auxinas, cuando la planta está en crecimiento activo.
En el ensayo se emplearon plantas de un año cuatro meses de edad, con
ramas optimas medianamente leñosas de uno a dos cm de diámetro, el
sustrato que se utilizó para el acodado se preparó conforme a lo
requerido, para el área experimental fue necesario cuarenta y cuatro
plantas cada una con dos acodos aéreos, de los cuales se tomaron cinco
acodos al azar por tratamiento, y se les evaluó respectivas variables
como fueron: número de raíces, longitud de raíz, diámetro de raíz y un
testigo. Para el análisis estadístico se utilizó el diseño completamente al
azar, con arreglo factorial (2 x 5 + 1), se evaluaron diferentes
tratamientos, ANA y AIA en dosis de 0.10, 0.15, 0.20, 0.25mg/L y como
testigo comercial Hormonagro con dosis de 100g/L, se analizaron las
variables: Número de raíces, longitud de raíz y diámetro de raíz, a los 30,
60 y 90 días después de su aplicación
En base a todo el trabajo de investigación realizado, se concluye en
términos generales, la Bougainvillea glabra Choisy, requiere de
47
aproximadamente dos a tres meses para lograr un enraizamiento
satisfactorio, mediante la técnica de acodo aéreo.
La auxina con la que se obtuvo el mayor enraizamiento de acodos,
significativamente diferente a las otras usadas, fue ANA.
Las dosis que más se recomienda en cuanto enraizamiento son: 0,10,
0,15, 0,20 y 0,25 mg/L.
Se recomienda utilizar este método como son los acodos aéreos y seguir
con las investigaciones de plantas ornamentales utilizando otras dosis de
auxinas ya que consiguió un buen porcentaje de enraizamiento.
48
VIII SUMARY
This work was carried out in the canton Daule, Guayas province, in the
period between the months of July a- November 2015, this research was
conducted in order to establish a new alternative for the propagation of
Boungainvillea glabra Chousy, known in Ecuador as veranera, whose
aim was to contribute to the technological upgrading of asexual
propagation by air-layering in Bougainvillea glabra Ch by applying three
auxin, when the plant is actively growing..
In the test plants a year were used four months of age, with mildly
woody one to two cm diameter optimal branches, the substrate was used
for the layered prepared as required, to the experimental area was
required forty four floors each with two air layers, of which five layering
randomly per treatment were taken, and were assessed as respective
variables were: number of roots, root length, root diameter and a witness.
For statistical analysis, the design is completely randomized, factorial
arrangement (2 x 5 + 1) in the different treatments were evaluated, ANA
and AIA in doses of 0.10, 0.15, 0.20, 0.25mg / L and as commercial
control Hormonagro dose of 100g / L, the variables were analyzed:
Number of estate , root length and root diameter, 30, 60 and 90 days
after application.
Based on all the research done, it is concluded in general terms, the
Bougainvillea glabra Choisy, requires approximately two to three
months to reach a satisfactory rooting by air layering technique.
Auxin with the greatest rooting layering was obtained, significantly
different from the others used, was ANA.
Doses higher recommended as rooting are: 0.10, 0.15, 0.20 and 0.25 mg
/ L.
49
It is recommended to use this method such as air layering and continue
with investigations of ornamental plants using other doses of auxin and
he got a good percentage of rooting.
50
IX LITERATURA CITADA
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55
X ANEXOS
56
Cuadro # 1A. Programación SAS para el análisis general de nueve
variables obtenidas la experimento sobre tres auxinas probadas en cinco
dósis en acodos aéreos de Bugaenvillea glabra Ch. Daule. 2015. __________________________________________________________________________
DATA Yorka;
INPUT TRAT BLO LRTD DRTD NRTD LRSD DRSD NRSD LRND DRND NRND;
CARDS;
1 1 2.41 2.00 2.41 2.73 2.87 3.45 3.48 2.7 4.16
1 2 2.73 2.22 3.45 3.24 2.61 4.00 3.79 2.73 4.64
1 3 2.41 2.00 3.24 2.73 2.22 4.16 3.19 2.34 5.00
1 4 2.55 2.00 3.45 3.00 2.41 4.87 3.28 2.61 5.69
2 1 2.22 2.10 2.00 2.41 2.52 4.16 3.14 2.52 5.24
2 2 2.00 1.89 2.74 2.41 2.26 3.24 3.51 2.45 5.47
2 3 2.14 2.34 3.00 2.58 2.52 3.83 2.79 2.70 4.61
2 4 2.00 2.41 3.00 2.41 2.73 4.16 3.74 2.75 5.79
3 1 2.26 2.18 2.41 3.24 2.58 5.24 3.92 2.6 6.66
3 2 2.26 2.00 2.41 2.73 2.41 3.45 2.73 2.48 5.35
3 3 2.22 2.00 3.45 2.41 2.61 3.00 3.70 2.70 4.16
3 4 2.73 2.22 2.73 3.45 2.22 4.46 3.79 2.73 5.24
4 1 2.34 2.00 2.73 3.00 2.41 4.46 3.35 2.55 5.36
4 2 2.14 2.14 2.00 2.58 2.38 3.83 3.83 2.73 5.24
4 3 2.22 2.00 3.00 2.30 2.41 3.45 3.79 2.58 5.69
4 4 2.00 2.00 2.41 2.41 2.30 4.00 3.45 2.48 6.00
5 1 2.34 2.1 2.41 2.73 2.55 4.61 3.47 2.58 5.69
5 2 2.3 1.05 2.73 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
5 3 2.48 2.22 2.73 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
5 4 2.34 2.14 2.00 2.52 2.55 4.74 3.70 2.61 7.08
6 1 2.30 2.00 4.16 2.70 2.41 4.87 3.20 2.48 6.00
6 2 2.79 2.22 3.45 2.64 2.55 4.16 3.6 2.61 5.69
6 3 2.38 2.00 3.83 2.67 2.73 4.00 3.14 2.76 4.61
6 4 2.10 2.34 3.16 2.73 2.45 4.61 3.37 2.64 6.66
7 1 2.26 2.00 3.00 3.83 2.58 4.46 4.16 2.73 6.74
7 2 2.00 2.26 2.73 2.41 2.61 4.00 2.90 2.64 6.10
7 3 2.26 2.22 2.41 2.73 2.00 5.00 3.49 2.45 6.00
7 4 2.22 2.30 3.00 3.24 2.41 4.46 3.43 2.55 5.00
8 1 2.00 2.00 3.24 3.12 2.41 4.46 3.10 2.52 5.79
8 2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
8 3 2.61 2.26 2.73 2.38 2.38 4.32 2.52 2.55 5.58
8 4 2.45 2.00 2.41 3.45 2.41 4.87 3.60 2.61 4.64
9 1 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
9 2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
9 3 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
9 4 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
10 1 2.58 2.26 4.87 3.45 2.41 4.74 3.97 2.41 5.79
57
10 2 2.67 2.34 5.36 3.24 2.38 5.47 5.00 2.41 6.92
10 3 2.52 2.26 4.74 3.83 2.30 5.24 1.00 1.00 1.00
10 4 2.61 2.22 5.24 3.45 2.38 5.00 4.1 2.48 7.24
11 1 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
11 2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
11 3 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
11 4 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
PROC ANOVA;
CLASS TRAT BLO;
MODEL LRTD DR TD NRTD LRSD DRSD NRSD LRND DRND NRND=TRAT;
MEANS TRAT/TUKEY;
RUN;
_____________________________________________________________
LRTD = Longitud de raíz a los 30 días (cm); DR = Diámetro de raíz (mm);
NR= Numero de raíces; SD= Sesenta días; ND= Noventa días.
58
Cuadro 2A. Programación SAS para el análisis factorial de nueve
variables obtenidas la experimento sobre tres auxinas probadas en cinco
dosis en acodos aéreos de Bugaenvillea glabra Ch. Daule. 2015. Data YORKA;
Input A B REP LRTD DRTD NRTD LRSD DRSD NRSD LRND DRND NRND;
Cards;
1 1 1 2.41 2.00 2.41 2.73 2.87 3.45 3.48 2.70 4.16
1 1 2 2.73 2.22 3.45 3.24 2.61 4.00 3.79 2.73 4.64
1 1 3 2.41 2.00 3.24 2.73 2.22 4.16 3.19 2.34 5.00
1 1 4 2.55 2.00 3.45 3.00 2.41 4.87 3.28 2.61 5.69
1 2 1 2.22 2.10 2.00 2.41 2.52 4.16 3.14 2.52 5.24
1 2 2 2.00 1.89 2.74 2.41 2.26 3.24 3.51 2.45 5.47
1 2 3 2.14 2.34 3.00 2.58 2.52 3.83 2.79 2.70 4.61
1 2 4 2.00 2.41 3.00 2.41 2.73 4.16 3.74 2.75 5.79
1 3 1 2.26 2.18 2.41 3.24 2.58 5.24 3.92 2.6 6.66
1 3 2 2.26 2.00 2.41 2.73 2.41 3.45 2.73 2.48 5.35
1 3 3 2.22 2.00 3.45 2.41 2.61 3.00 3.70 2.70 4.16
1 3 4 2.73 2.22 2.73 3.45 2.22 4.46 3.79 2.73 5.24
1 4 1 2.34 2.00 2.73 3.00 2.41 4.46 3.35 2.55 5.36
1 4 2 2.14 2.14 2.00 2.58 2.38 3.83 3.83 2.73 5.24
1 4 3 2.22 2.00 3.00 2.30 2.41 3.45 3.79 2.58 5.69
1 4 4 2.00 2.00 2.41 2.41 2.30 4.00 3.45 2.48 6.00
1 5 1 2.34 2.10 2.41 2.73 2.55 4.61 3.47 2.58 5.69
1 5 2 2.3 1.05 2.73 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
1 5 3 2.48 2.22 2.73 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
1 5 4 2.34 2.14 2.00 2.52 2.55 4.74 3.70 2.61 7.08
2 1 1 2.3 2.00 4.16 2.70 2.41 4.87 3.20 2.48 6.00
2 1 2 2.79 2.22 3.45 2.64 2.55 4.16 3.6 2.61 5.69
2 1 3 2.38 2.00 3.83 2.67 2.73 4.00 3.14 2.76 4.61
2 1 4 2.10 2.34 3.16 2.73 2.45 4.61 3.37 2.64 6.66
2 2 1 2.26 2.00 3.00 3.83 2.58 4.46 4.16 2.73 6.74
2 2 2 2.00 2.26 2.73 2.41 2.61 4.00 2.90 2.64 6.10
2 2 3 2.26 2.22 2.41 2.73 2.00 5.00 3.49 2.45 6.00
2 2 4 2.22 2.30 3.00 3.24 2.41 4.46 3.43 2.55 5.00
2 3 1 2.00 2.00 3.24 3.12 2.41 4.46 3.10 2.52 5.79
2 3 2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
2 3 3 2.61 2.26 2.73 2.38 2.38 4.32 2.52 2.55 5.58
2 3 4 2.45 2.00 2.41 3.45 2.41 4.87 3.60 2.61 4.64
2 4 1 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
2 4 2 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
2 4 3 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
2 4 4 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00
2 5 1 2.58 2.26 4.87 3.45 2.41 4.74 3.97 2.41 5.79
2 5 2 2.67 2.34 5.36 3.24 2.38 5.47 5.00 2.41 6.92
2 5 3 2.52 2.26 4.74 3.83 2.30 5.24 1.00 1.00 1.00
2 5 4 2.61 2.22 5.24 3.45 2.38 5.00 4.10 2.48 7.24
59
proc print;
proc anova;
Classes trat A B REP;
Model LRTD DRTD NRTD LRSD DRSD NRSD LRND DRND NRND=A B A*B;
Means REP A B A*B; Means A/TUKEY;
Means B/TUKEY;
Run;
_________________________________________________________________________
LRTD = Longitud de raíz a los 30 días (cm); DR = Diámetro de raíz (mm);
NR= Numero de raíces; SD= Sesenta días; ND= Noventa días.
Cuadro 1A. Análisis de la varianza para la variable longitud de raíz
(cm) tomada a los 30 días después de la aplicación de la auxinas. Daule,
2015.
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 12.31734091 1.23173409 18.10** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 0.71289000 0.71289000 10.48** 4,14 7,47
Dosis 4 4.16228500 1.04057125 15.29** 2,66 3,95
F x D 4 2.45583500 0.61395875 9.02** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 4,98633091 4,98633091 73.29** 4,14 7,47
Error exp. 33 2.24515000 0.06803485
Total 43 14.56249091
2.06
C.V. (%) 12.63
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad.
Cuadro 2A. Análisis de la varianza para la variable diámetro de raíz
(mm) tomada a los 30 días después de la aplicación de la auxinas. Daule,
2015. F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 8.27210455 0.82721045 12.08** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 0.27722250 0.27722250 4.05N.S.
4,14 7,47
Dosis 4 2.24236000 0.56059000 8.19** 2,66 3,95
F x D 4 2.35044000 0.58761000 8.58** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 3.40208205 3.40208205 49.70** 4,14 7,47
Error exp. 33 2.25897500 0.06845379
Total 43 10.53107955
1.88
C.V. (%) 13.92
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad; N. S. No significativa.
60
Cuadro 3A. Análisis de la varianza para la variable número de raíces
tomada a los 30 días después de la aplicación de la auxinas. Daule, 2015.
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad; N. S. No significativa.
Cuadro 4A. Análisis e la varianza para la variable longitud de raíz (cm)
tomada a los 60 días después de la aplicación de la auxinas. Daule, 2015.
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad; N. S. No significativa.
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T 5% 1%
Tratamientos 10 50.47056364 5.04705636 24.23** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 0.63252250 0.63252250 3.04 N.S.
4,14 7,47
Dosis 4 19.19899000 4.79974750 23.04** 2,66 3,95
F x D 4 18.31774000 4.57943500 21.9** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 12.32131114 12.32131114 59.14** 4,14 7,47
Error exp. 33 6.87502500 0.20833409
Total 43 57.34558864
2.68
C.V. (%) 17.07
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 26.36866364 2.63686636 9.98 ** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 0.00000250 0.00000250 0.00 N.S. 4,14 7,47
Dosis 4 5.83530000 1.45882500 5.52** 2,66 3,95
F x D 4 11.86731000 2.96682750 11.23** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 8.66623014 8.66623014 32.81** 4,14 7,47
Error exp. 33 8.71552500 0.26410682
Total 43 35.08418864
2.40
C.V. (%) 21.38
61
Cuadro 5A. Análisis de la varianza para la variable diámetro de raíz
(mm) tomada a los 60 días después de la aplicación de la auxinas. Daule,
2015.
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad.
Cuadro 6A. Análisis de la varianza para la variable número de raíces,
tomada a los 60 días después de la aplicación de la auxinas. Daule, 2015.
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad; N. S. No significativa.
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 13.71327273 1.37132727 9.78 ** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 0.66306250 0.66306250 4.73** 4,14 7,47
Dosis 4 3.64881500 0.912203750 6.51** 2,66 3,95
F x D 4 4.17157500 1.0428937 7.44** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 3.40208205 3.40208205 24.27** 4,14 7,47
Error exp. 33 4.62602500 0.14018258
Total 43 18.33929773
2.09
C.V. (%) 17.91
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 73.3478227 7.3347823 8.18 ** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 0.00506250 0.00506250 0.00 N.S. 4,14 7,47
Dosis 4 17.13344000 4.28336000 4.78** 2,66 3,95
F x D 4 28.82420000 7.20605000 8.04** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 27.3851202 27.3851202 30.56** 4,14 7,47
Error exp. 33 29.5728750 0.8961477
Total 43 102.9206977
3.49
C.V. (%) 27.08
62
Cuadro 7A. Análisis de la varianza para la variable longitud de raíz
(cm) tomada a los 90 días después de la aplicación de la auxinas. Daule,
2015.
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 39.61656364 3.96165636 5.86 ** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 2.05662250 2.5662250 3.79N.S. 4,14 7,47
Dosis 4 6.39014000 1.5953500 2.36 N.S.
2,66 3,95
F x D 4 16.54059000 4.13514750 6.12** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 14.62921114 14.6291114 21.63** 4,14 7,47
Error exp. 33 22.32242500 0.67643712
Total 43 61.93898864
2.82
C.V. (%) 29.13
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad; N. S. No significativa.
Cuadro 8A. Análisis de la varianza para la variable diámetro de raíz
(mm) tomada a los 90 días después de la aplicación de la auxinas. Daule,
2015.
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 16.06635455 1.60663545 8.51** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 1.22500000 1.22500000 6.49** 4,14 7,47
Dosis 4 4.63004000 1.15751000 6.13** 2,66 3,95
F x D 4 4.37390000 1.09347500 5.79** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 5.83741455 5.83741455 30.93** 4,14 7,47
Error exp. 33 6.22830000 0.18873636
Total 43 22.29465455
2.15
C.V. (%) 20.19
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad.
63
Cuadro 9A. Análisis de la varianza para que la variable número de
raíces tomada a los 90 días después de la aplicación de la auxinas. Daule,
2015.
F. de V. G.L. S.C. C.M. F”C” F “T”
5% 1%
Tratamientos 10 127.3215727 12.7321573 5.31** 2,13 2,91
Fitohormonas 1 2.65740250 2.65740250 1.11 N.S.
4,14 7,47
Dosis 4 26.20776500 6.55194125 2.73 N.S.
2,66 3,95
F x D 4 48.78888500 12.19722125 5.09** 2,66 3,95
Fact. Vs. Test 1 49.6675202 49.6675202 20.71** 4,14 7,47
Error exp. 33 79.1559250 2.3986644
Total 43 206.4774977
4.36
C.V. (%) 35.52
**Altamente significativo al 5 y 1% de probabilidad; N. S. No significativa.
64
Av.
Pie
dra
hit
a
± 25
0
m.
± 45
0 m
.
Vía
Dau
le –
Sta
.
Lu
cia
ANEXO 12
Croquis del lugar donde se realizó el experimento
Puente de Banife
Municipio de
Daule
Iglesia del Carmen
Paseo Shopping
Daule
CTE - Daule
LABORATORIO Y VIVERO
AGROVITROPARIS
Lavadora “Pelito”
Iglesia Evangélica
“Momento de Dios”
65
ANEXO 13 CROQUIS DEL DISEÑO EXPERIMENTAL Diámetro del área experimental 3 m2
T.3 0,20mg/l ANA
T.4 0,15 mg/l ANA
T.5 0,10 mg/l ANA
T.6 0 mg/l AIA
T.8 0,15 mg/l AIA
T.9 0.20 mg/l AIA
T.10 0,25 mg/l AIA
T.11 100 gr/l Hormonagro
T.2 0,25 mg/l ANA
T.7 0,10 mg/l AIA
24
28
32
36
37
R 2
R 3
R 4 R 3
R 2
R 2
R 2
R 2
R 3
R 3
R 3
R 3
R 2
R 2
R 3
R 2
R 2
R 3
R 2 R 3
R 3
R 4
R 4
R 4
R 4
R 4
R 4
R 4
0,10
R4
R 4
25
21
17
26 27
30 3|
35
29
33
40 39 38
34
22
18
14 13
12
5
4 3
6
11
2
7
10
15
19
23
20
16
9
8
1
PA
SILLOS
R 4 R 3 R 2 T.1 0 mg/l ANA
42 43 41 44
Longitud del área
experimental 7.20 m²
0.60cm entre plantas
0.60 cm Entre tratamientos
Total de plantas en el área
experimental 44, acodos
por planta 2, total acodos
por el área experimental
88 acodos aéreos.
66
XI FIGURAS
Figura # 1A. Pesaje y dilución de las hormonas.
Figura # 2A preparación del sustrato para usarse en las unidades
experimentales.
67
Figura # 3A Trasplante a fundas de mayor volumen.
Figura # 4A Fertilización de las plantas.
Figura # 5A Colocación de polietileno, en el piso para evitar la
proliferación de malezas.
68
Figura # 6 A Autora efectuando labor de riego.
Figura # 7 A Preparación del sustrato para
los acodos.
Figura# 8 A Realizando los acodos aéreos.
69
Figura# 9 A Colocación de tutores en las plantas y resuspender
ramas acodadas.
Figura# 10 A Acodos aéreos ya finalizado.
70
Figura #17 A Colocación de letreros para identificación de
tratamientos, con ANA.
71
Figura# 12A Tratamientos con AIA.
Figura# 13 A Riego de los acodos con ayuda de la jeringuilla.
72
Figura # 14 A Fumigación #1 para las Cochinillas harinosas o
chanchitos blancos (Hemiptera: Pseudococcidae).
Figura# 15 A Fumigación #2 para las Cochinillas harinosas o
chanchitos blancos (Hemiptera: Pseudococcidae).
Figura # 16 A Primera recolección de datos.
73
Figura# 17 A Recolección de datos # 1.
Figura # 18 A Recolección de datos #2.
74
Figura# 19 A Evaluación final junto a la tutora de la investigación.
Figura# 20 A Recolección de datos #3.
75
Figura # 21 A Raíces obtenidas Hormonagro Ácido Alfa- Naftaleneácetico.
RESULTADOS
76
Figura# 22 A Resultados del tratamiento testigo con ausencia de
raíces.
Figura # 23 A Tratamiento con ANA Ácido Naftaleneácetico.
77
Figura # 24 A Tratamiento con AIA Ácido Indolacético