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UNIVERSIDAD DE CUENCA
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RESUMEN
Durante la realización de esta tesis se investigaron los valores
hematológicos, bioquímicos, elemental microscópico de orina y
coproparasitario, en estudiantes de 12 a 17 años de la ciudad de Cuenca
– Ecuador 2010 – 2011; estos valores serán referentes para el personal
de salud, para mejorar el diagnóstico y tratamiento de las diferentes
enfermedades.
Se trabajó con una muestra de 250 adolescentes del colegio Nacional
República de Israel sección nocturna de esta ciudad.
El procesamiento de las muestras se realizó en el Laboratorio Clínico del
Hospital Regional Vicente Corral Moscoso, se utilizó para química
sanguínea el equipo CelDin Química SanguineSynchron, un contador
hematológico CELL–DYN 3700 SYSTEM versión 1,3 del software, en la
lectura de los hemogramas, y el Microscopio OLYMPUS para el análisis
de orina y en la revisión de heces.
El valor promedio de glóbulos rojos obtenidos en nuestra investigación
varía de 4.500.000 a 5.4999.000xmm3, el valor de glóbulos blancos
obtenidos va de 6.000 a 7.999xmm3, el valor de plaquetas de 250.000 a
349.999 x mm3, el valor de hemoglobina de 14 a 16 gr%, el valor de
hematocrito de 40 a 44%, los Neutrófilos de 51 a 60%, Linfocitos 31 a
40%, Monocitos mayor a 4%, Basófilos 1 a 2%, Eosinófilos mayor a 2%,
el valor de glucosa obtenido es de 71 a 100 mg/dl, y de ASTO menor a
200 UI/l.
Todos estos valores obtenidos se encuentran en relación a la edad, sexo
y talla de los adolescentes estudiados.
Palabras clave: hemoglobina, hematocrito, glóbulos rojos, glóbulos
blancos, glucosa, ASTO.
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DeCS: Técnicas y Procedimientos de Laboratorio - Estadística y datos
numéricos; Estado de Salud; niño; adolescente; estudiantes; Cuenca-
Ecuador.
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INDICE
CONTENIDO Pág.
DEDICATORIA i
AGRADECIMIENTO ii
RESUMEN iii
ÍNDICE iv
CAPÍTULO I
1.1 INTRODUCCIÓN 1
1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 3
1.3 JUSTIFICACION 5
CAPITULO II
2. FUNDAMENTO TEORICO
6
2.1. Generalidades. 6
2.2. Hemograma. 6
2.2.1. Formación de células sanguínea. 7
2.2.2. Glóbulos rojos. 8
2.2.3. Hemoglobina. 9
2.2.4. Hematocrito. 10
2.2.5. Glóbulos blancos. 11
2.2.6. Plaquetas. 15
2.3. Componentes químicos séricos. 16
2.3.1. Glucosa. 16
2.3.2. ASTO. 17
2.4. Análisis de orina . 18
2.4.1. Examen físico. 19
2.4.2. Examen Químico. 21
2.4.3. Examen del sedimento urinario. 27
2.5. Coproparasitario. 35
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2.5.1. Caracteres Macroscópicos.
36
2.5.2. Examen microscópico. 38
2.6. Personas en estudio. 38
2.7. Medio geográfico donde se realizó la investigación Cuenca – Ecuador.
43
CAPITULO III
3. OBJETIVOS. 45
3.1. Objetivo general. 45
3.2. Objetivos específicos. 45
CAPITULO IV
4. METODOLOGIA. 46
4.1. Tipo de estudio. 46
4.2. Universo. 46
4.3. Muestra. 46
4.4. Criterios de inclusión. 47
4.5. Criterios de exclusión. 47
4.6. Métodos, técnicas, y procedimientos. 47
4.6.1. Cumplimiento objetivo 1. 47
4.6.2. Cumplimiento objetivo 2. 47
4.7. Técnicas y Equipos. 48
4.7.1. Técnicas hematológicas. 48
4.7.2. Pruebas Químicas. 53
4.7.2.1. Glucemia. 53
4.7.2.2. ASTO. 54
4.8. Uroanálisis. 56
4.9. Coproanálisis. 56
4.10. Equipos de laboratorio clínico utilizados en la investigación. 57
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4.11. Control de calidad de los resultados. 58
4.12. Control de calidad inter-laboratorio. 58
4.13. Resultados comparativos obtenidos en el control de calidad. 58
4.14. Controles de calidad del equipo hematológico. 62
4.15. Controles de calidad de temperaturas. 62
CAPITULO V
5. ANÁLISIS DE RESULTADOS. 63
CAPITULO VI
6.1. DISCUSIONES. 126
6.2. CONCLUSIONES. 128
6.3. RECOMENDACIONES. 129
CAPITULO VII
7. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.
130
CAPITULO VIII
8. ANEXOS. 135
8.1. Consentimiento informado. 135
8.2. Asentimiento firmado. 137
8.3. Ficha del estudiante. 139
8.4. Hoja de reporte de resultados. 140
8.5. Recursos. 141
8.6. Financiamiento. 141
8.7. Mapa.
142
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UNIVERSIDAD DE CUENCA
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA
“PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLÍNICO EN ESTUDIANTES
SECUNDARIOS DEL COLEGIO NACIONAL REPUBLICA DE ISRAEL,
SECCIÓN NOCTURNA, DEL ÁREA DE INFLUENCIA DEL CENTRO
DE SALUD №2 DE LA CIUDAD DE CUENCA, 2011.
TESIS PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL
TÍTULO DE LICENCIATURA EN
LABORATORIO CLINICO
AUTORES:
ELSA MOLINA
SANDRA MORA
ALEXANDRA ORTEGA
DIRECTOR:
Lcdo. Mauricio Baculima
ASESOR METODOLÓGICO:
Dr. José Cabrera V.
Dr. Hugo Cañar
CUENCA – ECUADOR
2010 – 2011
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RESPONSABLES
Licenciado Mauricio Baculima Profesor de la Escuela de Tecnología
Médica de la Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca,
Director de Tesis, certifica que el presente trabajo cumple con los
requisitos para obtener el grado en Licenciatura de Laboratorio Cínico.
Lcdo. Mauricio Baculima.
ELSA FRANCISCA MOLINA LIMA SANDRA MARISOL
MORA MOLINA
ROSA ALEXANDRA ORTEGA SANCHEZ
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AGRADECIMIENTO
Al finalizar este trabajo que para muchos de nosotros ha sido más que un
reencuentro de compañeros y amigos, volver a compartir tantas tristezas
y alegrías, agradecemos a Dios que nos puso nuevamente en este
camino, a toda nuestra familia a nuestras hijas que nos han servido de
fuerza y razón para terminar esta nueva etapa de nuestra vida
profesional.
A los directores de este trabajo investigativo: Dr. José Cabrera, Dr. Hugo
Cañar, por el apoyo incondicional brindado para llevar a cabo esta
investigación.
A los maestros que a lo largo de este año nos supieron guiar con
conocimientos, experiencias, y paciencia para poder alcanzar la meta
propuesta.
Un agradecimiento a toda nuestra familia, quienes han sido un gran apoyo
e incentivo para llegar a esta realidad.
De manera especial un sincero agradecimiento a todas las personas que
de una u otra forma colaboraron para la realización de nuestra tesis. A
todos ellos.
¡Gracias por habernos permitido llevar a cabo este Proyecto!
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DEDICATORIA
Este trabajo está dedicado para el amor de mi vida, mi hija Andreina que
con paciencia y comprensión supo esperar mi ausencia, a mi familia que
me apoyo y en especial a Jenny, Carlos y Farida que me ayudaron en
todo este proceso.
Gracias.
Elsa Molina Lima.
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DEDICATORIA
Este proyecto es dedicado especialmente a mis hijas Micaela y Camila
por su paciencia y comprensión que me han tenido día a día y a toda mi
familia que de una u otra manera me han apoyado para cumplir esta
nueva meta.
Gracias.
Sandra Mora Molina.
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DEDICATORIA
Este trabajo está dedicado de manera especial a mis hijas Ana
Karina y Maricela Fernanda, mi razón de vivir y respirar, a mi esposo
Marco Núñez, que con su amor y paciencia nunca dejo que me rindiera, a
mis padres y hermanas quienes desde el primer momento me apoyaron a
seguir adelante, a toda mi familia que siempre han sido un refugio ante
cada dificultad.
Gracias.
Alexandra Ortega Sánchez.
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SUMARY
During the realization of this thesis investigated the hematological values
chemical, elemental and urine microscopic coproparasitario in students of
12 and 17 years in the city of Cuenca - Ecuador from 2010 to 2011, these
values will be related to health personnel to improve diagnosis and
treatment of various diseases.
We worked with a sample of 250 adolescents in the Republic of Israel
National Association, section of the city night.
The processing of the draw, was performed in the Clinical Laboratory
Vicente Corral Moscoso Hospital, was used for blood chemistry chemical
equipment Sanguine Synchron Cell Dyn, a hematological counter CELL’
DYN 3700 System version 1,3 of the software, the reading of blood counts
and the Olympus microscope for analysis of urine an feces in the review.
The average value obtainer in our red cell research varies 5.4999.000 x
mm3 of 4.500.000 x mm3, to the value of white blood cells obtained ranges
from 6.000 to 7.999 x mm3, the value of 250.000 to 349.999 x mm3
platelets, hemoglobin level of 14 to 16gr/dl, the hematocrit value from to
40 to 44%, greather than 45 monocytes, basophiles 1 to 2%, the glucose
value obtained is 71 to 100 mg/dl, and the ASTO least 200 UI/l.
All these values were found in relationship at the age, sex, and height of
adolescents studied.
Keywords: hemoglobin, hematocrit, red cells, white blood cells, glucose,
ASTO.
DeCS: Laboratory Techniques and Procedures-statistics & numerical
data; Health Status; child; adolescent; students; Cuenca-Ecuador.
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CAPITULO I
1.2. INTRODUCCIÓN
La salud es hoy en día un derecho fundamental, uno de los más claros
síntomas de calidad de vida de la población. (1)
La salud y desarrollo de los adolescentes (10 a 19 años) y de los
jóvenes (15 a 24 años) es un elemento clave para el progreso social,
económico y político de todos los países.
La adolescencia es un periodo formativo crucial que moldea la manera
como los niños y las niñas vivirán sus años adultos, no solo en relación
con su salud sexual y reproductiva, sino también en su vida productiva,
social y económica.
Es importante atender los aspectos relacionados con las sociedades de
hoy y del futuro y acompañar las tendencias demográficas y sanitarias
actuales. (2)
Según estimaciones del Fondo de Población de Naciones Unidas
(UNFPA, 2009) la población mundial de adolescentes entre 10 y 19 años
se encuentra próxima a los 1.200 millones de personas, lo que representa
un 19% del total de la población mundial. (3)
Es por esta razón que se ha escogido al grupo de adolescentes
comprendidos en las edades de 12 a 17 años como universo y muestra
para la determinación de valores referenciales de pruebas bioquímicas,
hematológicas, elemental microscópico de orina y examen
coproparasitario en nuestro medio.
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La definición de salud según la OMS (Organización Mundial de la Salud)
se define como el completo bienestar físico, mental y social; y no
solamente la ausencia de enfermedad, las pruebas bioquímicas y
hematológicas sirven para determinar el estado de salud de las personas;
un examen de laboratorio clínico se considera normal cuando los valores
se encuentran dentro de un rango referencial. (4)
En nuestro medio se utilizan rangos obtenidos de investigaciones
realizadas en otros países, mas no a nuestra realidad geográfica, étnica,
social y económica, situaciones que podrían modificar el diagnóstico
establecido por el médico ante un valor dado. (5)
Nuestro estudio está basado en los siguientes exámenes:
Hemograma: Es uno de los exámenes de laboratorio que más se solicitan,
comprende: determinación de recuento de glóbulos rojos, recuento
glóbulos blancos, hematocrito, hemoglobina, recuento de plaquetas,
neutrófilos, linfocitos, monocitos, eosinófilos y basófilos, parámetros que
proporcionan individualmente o en conjunto un enorme valor
diagnóstico. (6)
Glucosa: Que constituye la principal fuente de energía para el
metabolismo celular. (7)
Antiestreptolisina-O ó ASTO: Es una exoenzima inmunogénica tóxica
producida por el estreptococo β-hemolítico de los grupos A, C y G. Tiene
la propiedad de producir hemólisis cuando se pone en contacto con
glóbulos rojos. (8).
Elemental microscópico de orina: Ya que es parte fundamental del
organismo, ha sido considerada desde el siglo V antes de Cristo como
elemento diagnóstico de múltiples enfermedades. (9)
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El examen coproparasitario: Es un conjunto de técnicas diagnósticas que
constituyen un método eficaz para la identificación de la mayoría de las
enteroparasitosis motivadas por protozoarios o helmintos. (10)
1.3. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Las pruebas de laboratorio clínico, son de gran importancia para la
prevención, diagnóstico, tratamiento y seguimiento de las enfermedades
que afectan al ser humano.
Los valores de estas pruebas permiten determinar el estado de salud de
una persona, la normalidad o anormalidad de la misma, se establece en
base a rangos referenciales que se manejan tanto en los laboratorios
clínicos como en los consultorios médicos; estos rangos referenciales
utilizados en nuestro medio son obtenidos de investigaciones realizados
en otros países, hasta la actualidad no existe un criterio unánime a la
hora de aplicar los mismos. (11)
El propósito de esta investigación es poder aportar un referente para la
elaboración de valores referenciales aplicables a nuestro medio.
En Estados Unidos el valor referencial de hemoglobina en hombres de 12
a 17 años es de 13,0 – 18,0 g/dl, mientras que en mujeres va de 12,0 –
16,0 g/dl. En Brasil se encontraron valores en mujeres 14,2 – 18,0 g/dl, y
en varones de 16,0 – 20,0 g/dl, En Argentina de 13,6 – 17,2 g/dl. (12)
En el Perú se obtuvo los siguientes valores para hematocrito: hombres de
43 - 53%. En Medellín - Colombia el valor referencial de hematocrito es 43
- 49%. En la mayoría de los casos los valores dependen de la edad y del
sexo, así como de la altitud geográfica. (13)
En estudio realizados en Perú se determinó los valores referenciales de
glóbulos rojos en hombres: 4.5 - 5.8 millones x mm3; en Perú se registran
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valores de 3,9 - 6,0 millones x mm3, en mujeres de 3,3 - 4,7 millones x
mm3; en Venezuela hombres de 4,3 - 5,6 millones x mm3, mujeres de 3,9 -
5,2 millones x mm3.
En Argentina recuento eritrocitario, 4,2 - 5,9 millones x mm3. (14).
EL recuento de glóbulos blancos en Venezuela va de 3.800 a 10.100 x
mm3, en México de 3.500 a 7.500 x mm3, en Chile 4.000 a 9.000 x mm3
en Argentina de 5.000 a 8.000 x mm3, en Perú de 5.000 a 10.000 x mm3,
en Brasil de 3.500 a 9.000 x mm3, en Bolivia de 4.800 a 10.800 x mm3, en
Colombia de 3.500 a 11.000 x mm3, en España de 4.500 a 7.500 x mm3 y
en Nueva York - Estados Unidos de 3.480 a 10.500 x mm3.(15)
Con respecto a la fórmula leucocitaria en Argentina los valores
referenciales son: Linfocitos 25 – 35%; Monocitos 4 – 8%; Neutrófilos 55 –
65%; Eosinófilos 0,5 – 4,0% y Basófilos 0,2%, en Perú Linfocitos 25 –
33%; Monocitos 3 – 7%; Neutrófilos 45 – 62%; Eosinófilos 1 – 2% y
Basófilos 0 – 1%; en Chile Linfocitos 30 – 45%; Monocitos 5 – 7%;
Neutrófilos 50 – 65 %; Eosinófilos 1 – 5% y Basófilos 0 – 1% ; en España
Linfocitos 20 – 40%; Monocitos 2 – 8%; Neutrófilos 55 – 70%; Eosinófilos
1 – 4,0% y Basófilos 0,5 – 1% ; en Nueva York – Estados Unidos
Linfocitos 22 – 44%; Monocitos 0 – 7%; Neutrófilos 40 – 60 %; Eosinófilos
0 – 4,0% y Basófilos 0–1%.(16)
En cuanto a la glucosa en Estados Unidos el valor referencial varia de 70
a 110 mg/dl, mientras que en Perú los valores van de 75 a 110 mg/dl, en
general en la mayoría de países se maneja un rango promedio, la
variación va de 70 a 115 mg/dl. (17)
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1.4. JUSTIFICACIÓN
La investigación se realizó en una muestra representativa seleccionada
de manera aleatoria en estudiantes de 12 a 17 años, aparentemente
sanos, para el análisis de las muestras se contó con personal calificado,
un laboratorio con tecnología de punta, certificado y la utilización de
reactivos de calidad.
Esta investigación servirá de base para futuras investigaciones
vinculadas al área de Laboratorio Clínico, servirá de enorme beneficio
para el paciente, quien recibirá mayores beneficios cuando los médicos y
el personal de salud comparen los resultados de sus análisis
hematológicos y bioquímicos, orina y heces con los valores de referencia
encontrados en esta investigación.
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CAPITULO II
2. FUNDAMENTO TEÓRICO.
2.1 SANGRE.
La sangre es un tejido fluido que circula por capilares, venas y arterias, su
color es rojo característico debido a la presencia del pigmento
hemoglobínico contenido en los eritrocitos.
Es un tipo de tejido conjuntivo especializado, con una matriz coloidal
líquida y una constitución compleja. Tiene una fase sólida (elementos
formes, que incluye a los glóbulos blancos, los glóbulos rojos y las
plaquetas) y una fase líquida, representada por el plasma sanguíneo.
Su función principal es la logística de distribución e integración sistémica,
cuya contención en los vasos sanguíneos (espacio vascular) admite su
distribución (circulación sanguínea) hacia casi todo el cuerpo.
Representa aproximadamente el 7% del peso de un cuerpo humano
promedio.
Así, se considera que un adulto tiene un volumen de sangre (volemia) de
aproximadamente seis litros, de los cuales 2,7 litros son plasma
sanguíneo. (18)
En la sangre se analizó los siguientes parámetros:
2.2 HEMOGRAMA.
Es uno de los análisis de laboratorio más frecuentemente solicitado por
los médicos para el diagnóstico, evaluación y seguimiento de muchos
padecimientos, especialmente en los casos de enfermedades
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hematológicas. Además de servir para monitorear los valores de los
diferentes elementos de la sangre cuando así se requiera.
Actualmente el hemograma o biometría hemática se realiza a través de
equipos automatizados, como los utilizados en los diferentes laboratorios,
los cuales en corto tiempo proporcionan al médico 25 o más parámetros,
contando con la observación del laboratorista clínico, quien revisa al
microscopio las posibles anormalidades de las diferentes líneas celulares
al enviar el equipo diferentes banderas de alarma.
Los parámetros de los que consta en el hemograma automatizado son los
siguientes: WBC (contaje de glóbulos blancos), DLC (contaje diferencial
de blancos tanto absoluto como relativo), RBC (recuento de glóbulos
rojos), HGB (hemoglobina), HCT (hematocrito), VCM (volumen
corpuscular medio), MCH (hemoglobina corpuscular media), HCMC
(concentración media de hemoglobina corpuscular), RDW (ancho de
distribución de glóbulos rojos), PLT (plaquetas), MVP (volumen
plaquetario medio), PDW (ancho de distribución plaquetario), RC (contaje
de reticulocitos),(19)
Es importante tener en cuenta que los elementos celulares que se
encuentran en la sangre no siempre reflejan la verdadera situación de los
órganos productores de las células sanguíneas, por lo que, en muchas
ocasiones, el médico solicita otros estudios para llevar a cabo un
diagnóstico.
El hemograma completo (por su sigla en inglés es CBC) es una prueba de
laboratorio en la que se van a cuantificar y evaluar diferentes grupos
celulares, las glóbulos rojos (eritrocitos), los glóbulos blancos (leucocitos),
las plaquetas, el contenido de hemoglobina, y otros parámetros
relacionados con su cantidad, forma y contenido.
Utilidad Clínica.
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Ayuda a diagnosticar problemas específicos de la sangre, la anemia y
otros trastornos como determinados cánceres y leucemias; permite
monitorizar la pérdida de sangre y la respuesta de un paciente a la
quimioterapia y la radioterapia; permite a demás sospechar de cuadros
agudos infecciosos y/o inflamatorios, y así, su utilidad clínica resulta
invaluable. (20)
2.2.1. FORMACIÓN DE LAS CÉLULAS SANGUÍNEAS
Las células sanguíneas se encuentran suspendidas por todo el cuerpo,
las encontramos en la sangre, recorriendo los tejidos, desde los más
pequeños, hasta los más grandes y complejos, por una especie de
tubería denominada venas y arterias, son muy importantes, puesto que
cada grupo de ellas se encarga de realizar un trabajo diferente en el
organismo.
Los progenitores de las plaquetas, hematíes, granulocitos y monocitos
realizan todo su proceso de crecimiento y diferenciación en la médula
ósea, englobando por ello todos estos procesos dentro del nombre de
mielopoyesis. A diferencia de lo que ocurre con los demás tipos celulares
de la sangre, los linfocitos también se multiplican y diferencian fuera de la
médula ósea y a este proceso se le llama linfopoyesis. (21).
2.2.2. GLÓBULOS ROJOS.
Los eritrocitos, (también llamados glóbulos rojos o hematíes), son los
elementos formes cuantitativamente más numerosos de la sangre. La
hemoglobina es uno de sus principales componentes, y su objetivo es
transportar el oxígeno hacia los diferentes tejidos del cuerpo.
Valores referenciales:
Hombre 4,5 a 5 millones x mm3.
Mujer 4,2 a 5,2 millones x mm3 .(22)
Morfología.
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El eritrocito es un disco bicóncavo de más o menos 7 a 7,5 μm de
diámetro y de 80 a 100 fL de volumen, usualmente viven algo más de 120
días antes de que sea sistemáticamente reemplazado por nuevos
eritrocitos creados en el proceso de eritropoyesis.
Hematopoyesis.
Los eritrocitos derivan de las células madre comprometidas denominadas
hemocitoblasto. La eritropoyetina, una hormona de crecimiento producida
en los tejidos renales, estimula a la eritropoyesis.
Las etapas de desarrollo morfológico de la célula eritroide incluyen (en
orden de madurez creciente) las siguientes etapas:
Proeritroblasto.
Eritroblasto basófilo.
Eritroblasto policromatófilo.
Eritroblasto ortocromático.
Reticulocito.
Hematíe, (carece de núcleo y mitocondrias).
Metabolismo.
A medida que la célula madura, la producción de hemoglobina aumenta,
lo que genera un cambio en el color del citoplasma en las muestras de
sangre teñidas con la tinción de Wright, de azul oscuro a gris rojo y
rosáceo. El núcleo paulatinamente se vuelve picnótico, y es expulsado
fuera de la célula en la etapa ortocromática.
La membrana del eritrocito en un complejo bilipídico–proteínico, el cual es
importante para mantener la deformabilidad celular y la permeabilidad
selectiva.
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La hemólisis es la destrucción de los eritrocitos envejecidos y sucede en
los macrófagos del bazo e hígado. Los elementos esenciales, globina y
hierro, se conservan y vuelven a usarse. La fracción hemo de la molécula
se cataboliza a bilirrubina y a biliverdina, y finalmente se excreta a través
del tracto intestinal.
La rotura del eritrocito a nivel intravascular libera hemoglobina
directamente a la sangre, donde la molécula se disocia en dímeros α y β,
los cuales se unen a la proteína de transporte, haptoglobina. Ésta
transporta los dímeros al hígado, donde posteriormente son catabolizados
a bilirrubina y se excretan. (23)
2.2.3. HEMOGLOBINA (Hb).
La hemoglobina (a menudo abreviada como Hb) es una heteroproteína de
la sangre, de masa molecular 64.000 (64 kDa), de color rojo
característico, que transporta el oxígeno desde los órganos respiratorios
hasta los tejidos, en vertebrados y algunos invertebrados, es un pigmento
de color rojo, que al interaccionar con el oxígeno toma un color rojo
escarlata, que es el color de la sangre arterial y al perder el oxígeno toma
un color rojo oscuro, que es el color característico de la sangre
venosa.(24)
Valores referenciales
En la sierra:
Hombre: de 14.0 a 17.2 g/dl
Mujer: de 13.0 a 16.0 g/dl
En la costa: baja de 1,0 a 2,0 g. En relación a los anteriores ya que
depende de la presión de oxígeno. (25)
Estructura Química.
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La forman cuatro cadenas polipeptídicas (globinas) a cada una de las
cuales se une un grupo hemo, cuyo átomo de hierro es capaz de unir de
forma reversible una molécula de oxígeno.
El grupo hemo está formado por:
• Unión del succinil-CoA (formado en ciclo de Krebs o ciclo del ácido
cítrico) al aminoácido glicina formando un grupo pirrol.
• Cuatro grupos pirrol se unen formando la protoporfirina IX.
• La protoporfirina IX se une a un ión ferroso (Fe2+) formando el
grupo hemo.
Cuando la hemoglobina tiene unido oxígeno se denomina oxihemoglobina
o hemoglobina oxigenada, cuando pierde el oxígeno, se denomina
hemoglobina reducida o desoxihemoglobina y presenta el color rojo
oscuro de la sangre venosa (se manifiesta clínicamente por cianosis).
Funciones.
Transporte del oxígeno de los pulmones a los tejidos y el bióxido de
carbono de los tejidos a los pulmones.
Participación en la regulación ácido - básica eliminando CO2 en los
pulmones y amortiguando los cambios de pH por acción de los grupos
histidinaimidazol de la hemoglobina. (26)
Utilidad clínica.
El cuadro más comúnmente relacionado con la disminución de la
hemoglobina es la anemia. Esta patología significa la reducción del
número de glóbulos rojos, en la cantidad de hemoglobina y el volumen
globular.
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Existen situaciones que por lo contrario la concentración de hemoglobina
se encuentra anormalmente elevada, debido a una superior producción de
glóbulos rojos. Estos trastornos pueden ser primarios como en el caso de
la policitemia vera o secundarios a cierto tumores renales, ováricos,
hematomas e hidronefrosis. (27)
2.2.4. HEMATOCRITO (Hto).
El hematocrito es el porcentaje que ocupan los glóbulos rojos en un
volumen determinado de sangre centrifugada.
Describe el porcentaje de células transportadoras de oxígeno con
respecto al volumen total de sangre. (28)
Su determinación se considera fundamental en las pruebas diagnósticas
para anemia como la medida del tamaño y número de células presentes
en la sangre de una persona.
Valores referenciales:
Hombres: de 40.7 a 50.3%
Mujeres: de 36.1 a 44.3%.
Utilidad Clínica.
No siempre el hematocrito refleja el número de glóbulos rojos por que
este depende de su tamaño.
Índice bajo de hematocrito puede deberse a:
• Anemia.
• Hemorragias.
Índice alto de hematocrito puede deberse a:
• Cardiopatías.
• Poliglobulia genuina.
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• Deshidratación, etc. (29)
2.2.5. GLÓBULOS BLANCOS.
Los glóbulos blancos o leucocitos forman parte de los elementos celulares
del sistema inmunitario, y son células con capacidad migratoria que
utilizan la sangre como vehículo para tener acceso a diferentes partes de
la anatomía.
Los leucocitos son los encargados de destruir los agentes infecciosos y
las células infectadas, y también segregan sustancias protectoras como
los anticuerpos, que combaten a las infecciones.
Valores referenciales.
Hombre: 4,5 a 10 mil x mm3
Mujer: 4,5 a 10 mil x mm3 (30)
Utilidad clínica:
Leucocitosis puede ser:
• Fisiológica: ejercicio, stress, embarazo, recién nacido.
• Patológica: infecciones bacterianas ( neutrófilos), parásitos (
eosinófilos),
Viral ( linfocitos).
Leucopenia. Siempre es patológica y se puede dar por:
• Aplasia medular: radiaciones, fármacos (cloranfenicol,
antineoplásicos).
• Virus de Inmunodeficiencia Humana (HIV).
El recuento porcentual de los diferentes tipos de leucocitos se conoce
como fórmula leucocitaria.
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Según las características microscópicas de su citoplasma (tintoriales) y su
núcleo (morfología), se dividen en:
• Los granulocitos o células polimorfonucleares: son los neutrófilos,
basófilos y eosinófilos; poseen un núcleo polimorfo y numerosos
gránulos en su citoplasma, con tinción diferencial según los tipos
celulares.
• Los agranulocitos o células monomorfonucleares: son los linfocitos
y los monocitos; carecen de gránulos en el citoplasma y tienen un
núcleo redondeado.
Granulocitos o células polimorfonucleares.
a) Neutrófilos: Denominados también macrófagos o
polimorfonucleares (PMN), son glóbulos blancos de tipo
granulocito. Miden de 12 a 18 μm y es el tipo de leucocito más
abundante de la sangre en el ser humano. Se presenta del 60 al
75%. Su periodo de vida media es corto, durando horas o algunos
días. Su función principal es la fagocitosis de bacterias y hongos.
Un aumento del porcentaje de neutrófilos puede deberse a:
• Infección aguda.
• Estrés agudo.
• Eclampsia.
• Gota.
• Leucemia mielógena.
• Artritis reumatoide.
• Fiebre reumática.
• Tiroiditis.
• Traumatismo.
Una disminución en el porcentaje de neutrófilos puede deberse a:
• Anemia aplásica.
• Quimioterapia.
• Gripe u otra infección viral.
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• Infección bacteriana generalizada.
• Radioterapia o exposición a la radiación.
b) Basófilos: Corresponde al 0,2 - 1,2% de los glóbulos blancos.
Presentan una tinción basófila, lo que los define. Segregan
sustancias como la heparina, de propiedades anticoagulantes, y la
histamina que contribuyen con el proceso de la inflamación.
Poseen un núcleo a menudo cubierto por los gránulos de
secreción.
Una disminución en el porcentaje de basófilos puede deberse a:
• Reacción alérgica aguda.
c) Eosinófilos: Corresponden del 1,0 – 4,0% de los leucocitos,
aumentan en enfermedades producidas por parásitos, en las
alergias y en el asma. Su núcleo, característico, posee dos lóbulos
unidos por una fina hebra de cromatina, y por ello también se las
llama "células en forma de antifaz". (31)
Un aumento en el porcentaje de eosinófilos puede deberse a:
• Reacción alérgica.
• Cáncer.
• Infección parasitaria.
Agranulocitos o células monomorfonucleares.
d) Monocitos: Conteo normal entre el 2% a 8% del total de glóbulos
blancos. Esta cifra se eleva casi siempre por infecciones originadas
por virus o parásitos. También en algunos tumores o leucemias.
Son células con núcleo definido y con forma de riñón. En los tejidos
se diferencian hacia macrófagos o histiocitos.
Un aumento del porcentaje de monocitos puede deberse a:
• Enfermedad inflamatoria crónica.
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• Infección parasitaria.
• Tuberculosis.
• Infección viral.
e) Linfocitos: Con un valor normal entre 24% a 32% del total de
glóbulos blancos. Su número aumenta sobre todo en infecciones
virales, aunque también en enfermedades neoplásicas (cáncer) y
pueden disminuir en inmunodeficiencias.
Los linfocitos son los efectores específicos del sistema inmunitario,
ejerciendo la inmunidad adquirida celular y humoral. Hay dos tipos de
linfocitos, los linfocitos B y los linfocitos T.
Los linfocitos B están encargados de la inmunidad humoral, esto es, la
secreción de anticuerpos (sustancias que reconocen las bacterias y se
unen a ellas y permiten su fagocitosis y destrucción). Los granulocitos y
los monocitos pueden reconocer mejor y destruir a las bacterias cuando
los anticuerpos están unidos a éstas (opsonización). Son también las
células responsables de la producción de unos componentes del suero de
la sangre, denominados inmunoglobulinas.
Los linfocitos T reconocen a las células infectadas por los virus y las
destruyen con ayuda de los macrófagos. Estos linfocitos amplifican o
suprimen la respuesta inmunológica global, regulando a los otros
componentes del sistema inmunitario, y segregan gran variedad de
citoquinas. Constituyen el 70% de todos los linfocitos.
Tanto los linfocitos T como los B tienen la capacidad de "recordar" una
exposición previa a un antígeno específico, así cuando haya una nueva
exposición a él, la acción del sistema inmunitario será más eficaz.
Un aumento en el porcentaje de linfocitos puede deberse a:
• Infección bacteriana crónica.
• Hepatitis infecciosa.
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• Mononucleosis infecciosa.
• Leucemia linfocítica.
• Mieloma múltiple.
• Infección viral
Una disminución en el porcentaje de linfocitos puede deberse a:
• Quimioterapia.
• Infección por Virus de inmunodeficiencia humana (VIH).
• Leucemia.
• Radioterapia o exposición a la radiación.
• Sepsis.
Es importante saber que el aumento anormal de un tipo de leucocito
puede causar una disminución en los porcentajes de otros tipos de
glóbulos blancos. (32)
2.2.6. PLAQUETAS.
Las plaquetas (trombocitos) se producen en la médula ósea a partir de la
fragmentación del citoplasma de los megacariocitos quedando libres en la
circulación sanguínea.
Morfología.
Son fragmentos celulares pequeños (2-3 μm de diámetro), ovales y sin
núcleo.
Valor referencial:
Varían entre 150.000 y 450.000 x mm³
Utilidad Clínica.
En el proceso de coagulación (hemostasia), las plaquetas contribuyen a la
formación de los coágulos (trombos), siendo así las responsables del
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cierre de las heridas vasculares, Una gota de sangre contiene alrededor
de 250.000 plaquetas.
• Trombocitopenia.
• Fibrosis y tumores de la médula ósea.
• Destrucción acelerada por anticuerpos.
• Infecciones, fármacos, perdida por hemorragias, etc. (33)
2.3. COMPONENTES QUÍMICOS SÉRICOS.
2.3.1. GLUCOSA.
Es una hexosa, su fórmula química es C6H12O6 y su peso molecular es
180,16 g, es el carbohidrato más importante en los mamíferos por ser su
principal fuente de energía.
La glicemia se define como el valor de los niveles de azúcar presentes en
un litro de sangre. La azúcar que se mide proviene de los alimentos que
son ingeridos por el propio organismo, particularmente los carbohidratos.
Este nivel de azúcar es nivelada por varias hormonas, pero sin duda la
principal es la insulina secretada por el páncreas. El azúcar es
trascendental para el desarrollo de las funciones del organismo, pues es
una de las fuentes energéticas más importantes. El cerebro y los glóbulos
rojos, por ejemplo, dependen totalmente de la glicemia para poder cumplir
efectivamente sus roles en el cuerpo. (34)
Valores referenciales:
Valores de 70 a 110 mg/dl. (35)
Por lo general este estudio se realiza para detectar pacientes con
diabetes mellitus, para evaluar el metabolismo de glucosa en el
organismo y la función de los órganos involucrados en este proceso:
como el páncreas y el hígado.
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En una persona sana la glucosa es controlada por la insulina, hormona
producida por el páncreas. Después de la ingestión de carbohidratos se
produce la liberación de insulina que facilita la captación de glucosa por
parte de los tejidos para producir energía. (36)
Homeostasis de la Glicemia.
Consiste en el mantenimiento de los niveles de glucosa en sangre en un
nivel adecuado para mantener el equilibrio del cuerpo.
Para hacer esto, cuando la glucosa en sangre es muy alta, el páncreas
detecta esto y libera insulina.
La insulina es una hormona que hace que las células del cuerpo tomen la
glucosa y la metabolicen para obtener energía o la conviertan en grasa o
glucógeno para su almacenamiento.
A su vez, cuando el nivel de glucosa en la sangre es bajo el páncreas
libera Glucagón, otra hormona que funciona de manera antagónica a la
insulina y que activa una enzima que transforma el glucógeno en glucosa
nuevamente, subiendo los niveles de esta en sangre.
Cuando hay defectos o problemas con la insulina da como resultado la
diabetes, enfermedad en la cual las concentraciones de glucosa en la
sangre son elevadas y aumentan mucho con la ingesta de azúcar.
Cuando la homeostasis de la glucosa se rompe por disfunción de
cualquier elemento que la mantiene, sobrevienen los síndromes hiper o
hipoglucémicos que, como sus nombres indican, conllevan el
aumento >120 mg/dl en ayunas o la disminución <50 mg/dl de la glucemia
respectivamente.
Funciones.
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Constituyente vital de la sangre humana, desde donde se metaboliza en
forma directa para suplir las necesidades energéticas inmediatas.
Es la fuente primaria de síntesis de energía de las células, mediante su
oxidación catabólica.
Componente principal de polímeros de importancia estructural como la
celulosa y de polímeros de almacenamiento energético como el almidón y
el glucógeno que se moviliza y se convierte en glucosa por la
glucogenólisis cuando la concentración de glucosa en sangre es baja.
(37)
2.3.2 ASTO.
La estreptolisina O es una hemolisina extracelular liberada a los tejidos
durante la infección por estreptococo B-hemolítico grupo A, provoca la
formación de anticuerpos capaces de bloquear su efecto hemolítico, el
90% de faringitis estreptocóccicas presentan títulos elevados de ASTO.
El aumento de título se produce a la semana de iniciada la infección;
alcanzan el máximo a las 3-4 semanas, recuperándose los valores
basales a los 6 meses a 1 año, en ausencia de complicaciones o
reinfección. Un título aumentado de un 30%, como mínimo, en intervalo
de una o dos semanas, tiene valor clínico.
Valor de referencia.
Hasta 200 UI/l.
La utilidad clínica es útil en el diagnóstico de la fiebre reumática aguda y
glomerulonefritis aguda.
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Los títulos muy altos están asociados al estado de portador crónico
faríngeo, en el cólera, tuberculosis, septicemias y hepatitis viral.
Se encuentra disminuido en Artritis reumatoidea, artritis reumatoidea
juvenil y fiebre reumática. (38)
2.4. ANÁLISIS DE ORINA.
Formación de la orina.
La formación de la orina se da mediante un largo recorrido que
comprende la cápsula de Bowman, el túbulo contorneado proximal, el asa
de Henle, túbulo contorneado distal y el túbulo colector.
Hay tres mecanismos para su formación:
Filtración: Se lleva a cabo en los glomérulos, la presión arterial glomerular
permite la filtración por medio de la membrana glomerular.
Reabsorción: Es el paso de las sustancias de los túbulos renales al
torrente sanguíneo, allí se reabsorbe glucosa, agua y sodio.
Secreción: Es el paso de sustancias a la orina desde la sangre a los
túbulos colectores y distales.
Dependiendo de la efectividad en la realización de estos mecanismo se
obtiene la formación de orina.
Concepto.
El análisis de orina comprende una serie de exámenes constituyendo uno
de los métodos más comunes de diagnóstico médico. El análisis químico
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se efectúa mediante tiras reactivas cuyos resultados se leen de acuerdo a
los cambios de color.
Condiciones del paciente.
Será necesario que el paciente se lave cuidadosamente el meato urinario
y los genitales con agua, previa recolección.
Recolección de la muestra.
Las muestras de orina se toman siguiendo instrucciones estrictas. Los
recipientes además de estar muy limpios, deben cumplir con las
siguientes condiciones:
• Ser de plástico translúcido y desechable.
• La tapa debe cerrar herméticamente de tal manera que el
contenido no se derrame, independientemente de la posición del
recipiente.
Comenzar la micción descartando el primer chorro de orina, luego sin
cortar colocar el frasco estéril para recolectar esta porción media de orina,
descartando el último chorro. (39)
2.4.1. Examen físico.
Volumen.
La eliminación normal en el adulto varía de 1000 a 2000 ml en 24 horas,
siendo afectada por varias condiciones fisiológicas. El aumento o
disminución del volumen urinario se puede observar en varias
enfermedades.
• Poliuria: Es el aumento del volumen sobre 2000 ml en 24 horas.
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• Oliguria: Es la disminución de la diuresis por debajo de 500 ml en
24 horas.
• Anuria: Es la producción de orina por debajo de 50 ml en 24 horas.
• Poliquiuria: Se refiere a las micciones frecuentes.
• Disuria: A micciones dolorosas y molestas.
Aspecto.
La orina normal reciente suele ser clara y transparente.
En relación a la transparencia se puede utilizar la siguiente terminología:
clara, ligeramente turbia y turbia.
Alteración del aspecto se puede dar por;
• Presencia de fosfatos.
• Presencia de pus o bacterias.
• En uretritis por sustancias mucopurulentas.
• Presencia de moco, leucocitos y células epiteliales.
Toda orina al enfriarse y en reposo se vuelven turbias por precipitación de
distintas sustancias o por contaminación bacteriana.
Color.
Normalmente amarillo pajizo con tonalidad más o menos intensa por la
presencia de urobilinógeno (pigmento urinario) puede cambiar en algunas
condiciones patológicas, volviéndose, por ejemplo: más rosado (color
“agua de lavar carne”), como en los casos de hemoglobinuria o de
hematuria (presencia de hemoglobina o sangre en la orina
respectivamente), o más oscuro (color vino), como en los casos más
graves de ictericia.
Olor.
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El olor de la orina normal reciente es aromático característico por la
presencia de ácidos volátiles y una sustancia llamada urinoid. Es más
intenso en las orinas concentradas. Los medicamentos como la
trementina, mentol o ciertos alimentos como espárragos, comunican a la
orina estos olores.
Entre los olores anormales tenemos:
• Amoniacal: por descomposición de la urea.
• Cetónico: por eliminación de acetona.
• Pútrido: por descomposición de proteínas.
• Fecal: por contaminación con heces o colibacilos. (40)
2.4.2. Examen Químico.
Tira reactiva.
Las tiras reactivas constan de almohadillas impregnadas en sustancias
químicas adheridas a una tira plástica. Se produce una reacción química
cuando la almohadilla absorbente toma contacto con la orina. Las
reacciones se interpretan mediante la reacción de color producido sobre
la almohadilla con una escala cromática provista por el fabricante. Sobre
la escala aparecen los diversos colores o las intensidades del color para
cada sustancia a evaluar. Mediante la comparación meticulosa de los
colores en la escala cromática y en la tira se puede informar un valor
semicuantitativo expresado como trazas, 1+, 2+, 3+ o 4+.
Densidad.
La densidad constituye un índice de la concentración del material disuelto
en la orina.
La reacción de la tira se basa en el cambio del pKa (constante de
disociación) de un polielectrolito en medio alcalino, que se ioniza y libera
iones hidrógeno en proporción al número de iones en la solución.
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El intervalo normal para una muestra tomada al azar es de 1,005-1,030,
aunque en casos de hidratación excesiva puede llegar a 1.001. El valor
varía enormemente según el estado de hidratación y el volumen urinario.
Por lo general la densidad se eleva cuando la ingesta de líquidos es baja,
desciende si la ingesta es alta.
La densidad puede ser útil para establecer la diferencia entre una
diabetes insípida y una diabetes mellitus. Ambas enfermedades producen
un volumen urinario alto, pero en la primera la densidad es muy baja
porque en este caso existe una deficiencia de ADH, mientras que en la
segunda existe un déficit de insulina y por lo tanto un exceso de glucosa
que supera el umbral renal y es excretada en la orina.
pH.
En las tiras reactivas se utiliza un sistema indicador doble de rojo de
metilo y azul de bromo timol. El rojo de metilo produce un cambio de color
del rojo al amarillo en el rango de pH de 4 a 6, y el azul de bromo timol
vira del amarillo al azul en el rango de 6 a 9.
Normalmente, la reacción de la orina oscila hacia el lado ácido o el
alcalino, según la descomposición de la dieta, alcanzándose en
circunstancias extremas cifras de pH que van desde 5 a 8. La dieta
cárnica es acidificante, mientras que la vegetariana es alcalinizante de la
orina. Una discreta alcalinidad es fisiológica.
Orinas ácidas:
• Acidosis metabólicas (diabética).
• Diarreas graves.
• Hipoalimentación.
• Insuficiencia respiratoria.
Orinas alcalinas:
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• Alcalosis respiratoria.
• Vómito.
• Acidosis tubular renal.
• En ciertas infecciones urinarias (Proteus y Pseudomona).
Leucocitos.
La reacción con tira reactiva usa la acción de la esterasa leucocitaria para
catalizar la hidrólisis de un éster ácido impregnado en la almohadilla de la
tira reactiva para producir un compuesto aromático y ácido. El compuesto
aromático se combina con una sal de diazonio presente en la almohadilla
para producir un color azoico violeta.
El umbral de detección es entre 5 a 15 leucocitos por campo de mayor
aumento (CMA).
Causas de leucocitaria.
• Prostatitis.
• Uretritis.
• Glomérulo nefritis.
• Tumores.
• Nefritis.
• Inflamaciones (apendicitis).
Nitritos.
La base química de la prueba de nitritos es la capacidad de ciertas
bacterias de reducir el nitrato un constituyente normal de la orina a nitrito,
que normalmente no aparece en la orina.
La prueba para detección de nitrito es un método rápido e indirecto, para
el diagnóstico temprano de bacteriuria significativa y asintomática. Los
organismos comunes que causan infección del tracto urinario, como la E.
Coli, Enterobacter, Citrobacter, Klebsiella y las especies de Proteus,
contienen enzimas que reducen el nitrato de la orina a nitrito. Para que
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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 39
esto ocurra, debe dejarse incubar la orina en la vejiga durante un mínimo
de cuatro horas. Por lo tanto, la primera orina de la mañana es la muestra
de elección.
Glucosa.
La tira reactivas emplean el método de la glucosa oxidasa mediante la
impregnación en el área de prueba de una mezcla de glucosa oxidasa,
peroxidasa, cromógeno y solución amortiguadora para producir una
reacción enzimática secuencial doble.
El primer paso, la glucosa oxidasa cataliza una reacción entre la glucosa y
el aire ambiental para producir ácido glucónico y peróxido.
En el segundo paso, la peroxidasa cataliza la reacción entre peróxido y
cromógeno para formar un compuesto oxidado coloreado que representa
la presencia de glucosa.
Normalmente el túbulo contorneado proximal reabsorbe toda la glucosa
filtrada, si ésta se encuentra en concentración por debajo de 180 mg/dl,
no se encontrara en la orina.
Esta se detecta según el método especifico de glucosa-oxidasa-
peroxidasa. El test reacciona independientemente del valor del pH y de la
densidad de la orina y no es perturbado por cuerpos cetónicos.
La glucosuria puede ocurrir como un hecho aislado (secundaria a
hiperglucemia) o como manifestación de daño renal (glucosuria renal),
donde es comúnmente asociada a otras manifestaciones en el caso de
disfunción tubular proximal, como hiperfosfatemia, hipouricemia,
aminoaciduria, acidosis tubular aguda, etc.
Proteínas.
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El test se basa en el principio de error proteico de indicadores de pH,
reacciona de manera especialmente sensible a la albumina ya que
normalmente se elimina una cantidad insignificante.
Normalmente la excreción de proteínas es menor de 150 mg al día, que
corresponde a la mucoproteína de Tamm-Horsfall segregada por los
túbulos distales.
En caso de haber proteinuria la principal proteína urinaria en pacientes
con enfermedades renales es la albúmina. Niveles elevados de
proteinuria, que persisten en varias mediciones, deben ser tomados en
consideración ya que implican anormalidades en la permeabilidad
glomerular. Las globulinas predominan en alteraciones tubulares y en
proliferación de las células plasmáticas. La cantidad de proteinuria indica
la gravedad de la enfermedad, y en un mismo enfermo el aumento o
disminución sirve para evaluar la progresión.
Cuerpos cetónicos.
La prueba en la tira reactiva utiliza la reacción del nitroprusiato de sodio
(nitroferrocianuro) para medir cetonas. En esta reacción el ácido
acetoacético en medio alcalino reacciona con el nitroprusiato de sodio
para producir un color violeta.
Los trastornos que se caracterizan por una alteración en el metabolismo
de los hidratos de carbono pueden dar lugar a una degradación excesiva
de grasa para obtener energía.
Esto, a su vez determina un aumento en el nivel de cuerpos cetónicos
presentes en la sangre (cetonemia) y niveles aumentados de cetonas en
orina (cetonuria). El término cetosis implica el aumento de los cuerpos
cetónicos tanto en sangre como en orina.
Cuando la capacidad de los tejidos para utilizar los cuerpos cetónicos es
superada, el exceso se excreta en la orina. Cuando es superada la
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capacidad de los riñones para excretar cetonas, éstas se acumulan en la
sangre. En consecuencia existirá cetonuria antes de que se produzca un
aumento significativo de cetonas en sangre.
Puede encontrarse cetosis en situaciones asociadas con:
• Inanición.
• Diabetes mellitus.
• Eclampsia.
• Vómitos de larga duración y diarrea.
• Ejercicio intenso y prolongado.
• Estados febriles.
• Daño hepático debido a procesos patológicos o intoxicaciones.
Los cuerpos cetónicos son levemente tóxicos, tienden a interferir en la
excreción de ácido úrico.
Urobilinógeno.
La tira reactiva utiliza la reacción de aldehído de Ehrlich, en la que el
urobilinógeno reacciona con el p-dimetilaminobenzaldehido para producir
colores que varían del rosa claro al rosa obscuro.
Cuando la bilirrubina conjugada se excreta a través del conducto biliar al
intestino, las bacterias intestinales convierten la bilirrubina en una
combinación de urobilinógeno y estercobilinógeno.
Parte del urobilinógeno se reabsorbe desde el intestino hacia la sangre,
circula al hígado y se excreta nuevamente al intestino a través del
conducto biliar.
El estercobilinógeno no puede reabsorberse y permanece en el intestino,
donde se oxida a urobilina y se excreta por las heces.
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El urobilinógeno aparece en la orina porque a medida que circula por al
sangre en su camino hacia el hígado, pasa a través de los riñones y es
filtrado por el glomérulo.
Urobilinuria alta:
• Ictericia hemolítica familiar.
• Ictericia hemolítica adquirida (infecciosas, toxicas, transfusionales).
• Eritroblastosis fetal.
• Anemia perniciosa descompensada.
• Policitemia.
• Paludismo.
Bilirrubinas.
La tira reactiva utiliza la reacción diazo. La bilirrubina se combina con la
sal de diazonio 2,4-dicloroanilina o 2,6-diclorobenceno-diazonio-
tetrafluoroborato en medio ácido para producir un colorante azoico con
colores que varían del rosa al violeta.
La presencia de bilirrubina en la orina confiere una coloración amarilla
intensa en los casos insipientes y como cerveza oscura si la
concentración es pronunciada.
La bilirrubinuria aparece en todas las ictericias obstructivas o
parenquimatosas y está ausente en las hemolíticas o prehepáticas.
La bilirrubinuria es proporcional al grado de bilirrubinemia, es decir, a la
intensidad de la ictericia.
Aparece antes que la ictericia (piel y mucosa) y desaparece también
antes que ella.
Sangre.
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La prueba química para la sangre usa la actividad de pseudoperoxidasa
de la hemoglobina para catalizar una reacción entre peróxido de
hidrógeno y el cromógeno tetrametilbenzidina para producir un
cromógeno oxidado, que tiene color verde- azul.
Puede haber sangre en la orina, ya sea en forma de eritrocitos intactos
(hematuria) o como producto de la destrucción de eritrocitos
(hemoglobinuria).
Hematuria: Es la presencia de hematíes en la orina, a diferencia de la
hemoglobinuria, en la que existe pigmento hemático, pero no células.
Orinas muy alcalinas o de muy baja densidad pueden provocar la lisis de
los eritrocitos, liberando su contenido de hemoglobina en la orina. La
presencia de este tipo de hemoglobina se considera también hematuria
cuando se conoce su origen, pero es muy difícil de distinguir de la
hemoglobina verdadera. Cuando existe lisis el examen microscópico
puede mostrar la presencia de membranas correspondientes a hematíes
vacíos.
Presencia de hematíes en orina se encuentra en:
• Cálculos renales.
• Glomérulo nefritis.
• Pielonefritis.
• Tumores.
• Traumatismos.
• Anticoagulantes.
• Actividad física extenuante.
Hemoglobina.
La hemoglobinuria puede producirse como consecuencia de la lisis de
eritrocitos en las vías urinarias.
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Es la presencia de hemoglobina en la orina que da un color rojizo rosado,
pero transparente a diferencia de la hematuria (eritrocituria).
Respectivamente la mioglobina, cataliza la oxidación del indicador por el
hidroperóxido orgánico contenido en el papel reactivo.
Para los eritrocitos y hemoglobina se indican en la etiqueta del tubo
escalas cromáticas diferentes. Puntos verdes aislados acumulados en la
zona reactiva amarilla indican la presencia de eritrocitos intactos. La
hemoglobina así como los eritrocitos hemolizados o la mioglobina son
indicados por una coloración verde homogénea.
Se presenta en:
• Reacciones transfusionales.
• Quemaduras graves.
• Infecciones (paludismo).
• Anemias hemolíticas mecánicas.
2.4.3. Examen del sedimento urinario.
El examen del sedimento urinario constituye uno de los datos más útiles
para el diagnóstico y pronóstico de las nefropatías.
El valor del examen microscópico depende los dos factores
fundamentales:
• De una muestra bien tomada.
• El conocimiento de la persona que realiza el estudio.
En los sujetos normales el sedimento es escaso y está formado por sales
(uratos, fosfatos y carbonatos), con algunas células epiteliales de la
vesícula y la uretra. En la mujer puede presentarse además algunas
células vaginales.
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La presencia de cantidades anormales de sales o la presencia de otros
elementos en el sedimento representan situaciones patológicas.
La observación del sedimento al microscopio permite identificar toda una
serie de elementos que revelan la presencia de procesos inflamatorios,
infecciosos u otras enfermedades más o menos graves que pueden
manifestarse en los riñones y/o en las vías urinarias.
Células Epiteliales.
No es raro encontrar células epiteliales en la orina, ya que provienen de
los revestimientos del aparato genitourinario, a menos que estén
presentes en cantidades grandes o con formas anormales, representan el
desprendimiento normal de las células viejas, escamosas, de transición y
túbulos renales.
Las células escamosas son células grandes, con citoplasma abundante e
irregular de núcleo central y pequeño, puede provenir del epitelio vaginal
o de la porción distal de la uretra.
Un aumento puede deberse a contaminación proveniente de la vagina o
uretra.
Las células de transición son más pequeñas que las escamosas de
contorno redondeado y núcleo central, provienen del epitelio que cubre la
pelvis renal, vejiga y uretra proximal.
Se encuentra aumentado en pacientes con litiasis renal.
Las células tubulares son redondas y algo más grandes que los
leucocitos, con un núcleo redondo central, en cantidades abundantes se
asocian a condiciones que causan daño tubular como: necrosis tubular
aguda, pielonefritis, reacciones toxicas.
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Eritrocitos.
Normalmente no existen hematíes en la orina, o pueden presentarse en
escasa cantidad de 1 a 2 por campo.
Los eritrocitos presentes en la orina pueden provenir de cualquier punto
del tracto urinario desde el glomérulo hasta el meato urinario y en la mujer
constituyen a veces contaminación menstrual, pueden aparecer en
diversas formas. Cuando la muestra de orina es fresca los hematíes
presentan aspecto normal de color pálido o amarillento, son discos
uniformes bicóncavos de aproximadamente 7 u de diámetro y 2 u de
grosor, carecen de núcleo.
En orinas diluidas o hipotónicas los hematíes se hinchan y pueden lisarse,
liberando de este modo su contenido de hemoglobina en la orina.
Leucocitos.
Leucocitos.
Pueden estar en cualquier punto del tracto urinario desde el glomérulo
hasta la uretra. En promedio, la orina normal puede contener hasta 2
glóbulos blancos por campo. Los leucocitos tienen un diámetro
aproximado de 10-12 u, por lo general forma esférica y color gris oscuro
o amarillo verdosos. Pueden aparecer en forma aislada o acúmulos. La
mayoría de los leucocitos en la orina son neutrófilos y habitualmente se
los identifica por sus gránulos característicos o por las lobulaciones del
núcleo.
Los Piocitos son leucocitos cuya membrana esta degenerada.
El aumento de leucocitos en la orina (piuria) está asociado con:
• Procesos inflamatorios en el tracto urinario o en sus adyacentes.
• A veces en enfermedades como apendicitis y pancreatitis.
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• Glomerulonefritis aguda.
• Nefritis lúpica.
• Deshidratación.
• Fiebre.
• Stress.
• Irritación no infecciosa del uréter, vejiga o uretra.
• Pielonefritis.
• Cistitis uretritis.
Los cilindros leucocitarios constituyen evidencia de que los leucocitos
provienen del riñón.
Cilindros.
Los cilindros son aglomeraciones de proteínas que se forman en los
túbulos renales y es por eso que tienen forma cilíndrica con márgenes
regulares, tienen una matriz orgánica compuesta principalmente de la
mucoproteínas de Tamm-Horsfall. Hay muchos tipos distintos, algunos de
ellos pueden verse en individuos sanos, mientras que otros pueden ser
diagnóstico para una enfermedad renal.
Cilindros hialinos.
Son incoloros, homogéneos, transparentes y por lo general tienen
extremos redondeados. Como están formados solo por proteínas tienen
un índice de refracción muy bajo y deben ser buscados con luz de baja
intensidad.
No son indicadores de enfermedad y se observan en personas post
ejercicio, fiebre, deshidratación, uso de diuréticos y métodos de contraste.
Cilindros hemáticos.
Están formados por eritrocitos o restos de ellos.
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La presencia de cilindros eritrocitarios significa hematuria de origen renal,
siempre patológicos. Son por lo general diagnósticos de enfermedad
glomerular.
Se encuentra en:
• Glomérulo nefritis aguda.
• Nefritis lúpica.
Cilindros leucocitarios.
Se forman por leucocitos principalmente, se originan en enfermedades
túbulo-intersticiales o pielonefritis aguda. Pueden verse en alteraciones
glomerulares.
Cilindros de células epiteliales.
Se asocian a necrosis tubular aguda en los cuales se descaman las
células epiteliales de los túbulos renales.
Cilindros grasos.
Generalmente son cilindros de células epiteliales que en su citoplasma
poseen gotas de colesterol o colesterol ester y se pueden ver libres en la
orina.
Se observan en varias glomerulopatías especialmente en Síndrome
Nefrótico.
Cilindros granulosos.
Son siempre patológicos se forman de proteínas agregadas o de células
antiguas que se han desintegrado, se ven principalmente en necrosis
tubular aguda.
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Cilindros céreos.
Son la última etapa de degeneración de los cilindros granulosos y se
observa en nefrones con flujo muy disminuido, se asocian a insuficiencia
renal avanzada.
Cristales.
La formación de cristales en la orina depende de muchos factores como el
grado de sobresaturación de sus constituyentes, pH o la presencia de
inhibidores de cristalización. Hay muchos tipos de cristales que pueden
ser observados en pacientes con distinta alteración.
Cristales de ácido úrico.
Pueden aparecer con muy diversas formas, las más características de las
cuales son el diamante, prisma rómbico y la roseta constituida por
muchos cristales arracimados. Los cristales de ácido úrico con frecuencia
están teñidos por los pigmentos urinarios y en consecuencia tienen color
amarillo o rojo-castaño.
La presencia en orina de éstos cristales no necesariamente indica un
estado patológico ni tampoco significa que el contenido de ácido úrico en
la orina se encuentre definitivamente aumentado.
Los estados patológicos en los cuales se observa este tipo de cristales en
la orina son:
• Gota.
• Metabolismo de las purinas aumentado.
• Enfermedades febriles agudas.
• Nefritis crónica.
Cristales de oxalato de calcio.
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Éstos son incoloros de forma octaédrica o de “sobre”, parecen cuadrados
pequeños cruzados por líneas diagonales que se interceptan.
Rara vez se presentan como esferas ovales o discos bicóncavos, que
tienen forma de pesas de gimnasia, pueden variar en tamaño.
Los cristales de oxalato de calcio pueden existir normalmente en la orina,
en especial después de ingerir diferentes alimentos ricos en oxalatos
como: tomate, ajo, naranjas, espárragos, cantidades elevadas de oxalato
de calcio en especial si están presentes en orina recién emitida sugieren
la posibilidad de cálculos de oxalato.
Estados patológicos en los que se pueden encontrar:
• Intoxicación con etilenglicol.
• Diabetes mellitus.
• Enfermedad hepática.
• Enfermedad renal crónica grave.
Urato amorfo.
Con frecuencia hay en la orinas sales de urato (de sodio, potasio,
magnesio y calcio), en una forma no cristalina o amorfa. Estos uratos
amorfos tienen aspecto granular y color amarillo-rojo, son solubles en
álcalis y a 60° C de temperatura. Carecen de significación clínica.
Fosfato triple.
Pueden existir en orinas neutras o alcalinas, son prismas incoloros de tres
a seis caras con frecuencia tienen extremos oblicuos. El fosfato amónico-
magnésico a veces puede precipitar formando cristales de fosfato triple,
son solubles en ácido acético.
A menudo se encuentran en orinas normales, pero pueden también
formar cálculos urinarios.
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Pueden aparecer en los siguientes procesos:
• Pielitis crónica.
• Cistitis crónica.
• Hipertrofia de próstata.
Fosfato amorfo.
La sales de fosfato con frecuencia están presentes en la orina en forma
no cristalina, es decir como sustancias amorfas. Estas partículas
granulares carecen de una forma definida y por lo general a simple vista
son indistinguibles de los uratos amorfos.
El pH de la orina, así como sus propiedades de solubilidad ayudan a
distinguir entre estos depósitos amorfos. Los fosfatos amorfos son
solubles en ácido acético carecen de significación clínica.
Cristales de leucina.
Se los encuentra en orinas ácidas en forma de esferas con estriaciones
concéntricas, son altamente refringentes como cuerpos amarillentos u
amarronados, aparecen en la orina en asociación con los cristales de
tirosina.
Significado clínico: Responden a las mismas condiciones que los de
tirosina.
Cristales de cistina.
Se encuentran en orinas con pH ácido y se observan como láminas
delgadas, incoloras y hexagonales.
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Significado clínico: La mayoría de las veces se los observa en orinas de
pacientes que padecen distintos tipos de desórdenes metabólicos
hereditarios.
Cristales de tirosina.
Son muy poco frecuentes y sólo se observan en orinas ácidas. Su color
varía desde incoloros a amarillo pardo. Su forma es la de agujas muy
finas y refringentes, apareciendo en grupos o acúmulos.
Frecuentemente se los encuentra junto con cristales de leucina. Son
producto del metabolismo proteico.
Significado clínico: Se presentan en orina de pacientes con necrosis o
degeneramiento tisular como por ejemplo: enfermedad hepática aguda,
hepatitis, cirrosis, leucemia y fiebre tifoidea.
Cristales de colesterol.
Se encuentran en orinas ácidas o neutras, aparecen como láminas planas
y transparentes con ángulos mellados. Muchas veces se observa
formando una película en la superficie de la orina en lugar de encontrarse
en el sedimento.
Significado clínico: No son comunes en la orina y siempre que están se
los relaciona con alguna patología.
Se los encuentra en enfermedades renales como en el síndrome
nefrótico, predominan en la quiluria, que se produce como consecuencia
de la obstrucción del flujo linfático del abdomen.
Bacterias.
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No existen bacterias a nivel renal ni vesical. A pesar de que la orina está
libre de ellas ésta puede contaminarse con bacterias presentes en la
uretra o en la vagina.
Significado clínico: Cuando una muestra de orina es recolectada en forma
estéril y contiene gran número de bacterias a demás acompañada por
muchos leucocitos es muy factible encontrar una infección del tracto
urinario.
Hongos.
Son estructuras incoloras de forma ovalada, a veces se los puede
confundir con eritrocitos pero son algo más pequeños que éstos, además
con frecuencia presentan evaginaciones tubulares o filamentosas (hifas).
Significado clínico: Es común encontrarlos en pacientes con
enfermedades metabólicas (diabetes mellitus).
Se les reconoce valor patológico en pacientes con bajas defensas, en
estos casos es Cándida albicans la que desempeña un papel
fundamental.
Mucina.
Se trata de filamentos irregulares de forma acintada, largos, delgados y
ondulantes de longitud variable.
A estos filamentos mucosos muchas veces se adhieren células epiteliales,
leucocitos, eritrocitos e incluso cristales.
Significado clínico: Existen normalmente en la orina en pequeñas
cantidades pero pueden ser muy abundantes en caso de inflamación o
irritación del tracto urinario. (41)
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2.5. EXAMEN COPROPARASITARIO.
El examen de heces tiene su máxima indicación clínica en las diarreas
crónicas y en general interesa en aquellos procesos que cursan con
insuficiencia digestiva en los que se busca el germen o parásito de la
enfermedad.
Comprende la observación macroscópica, examen bacteriológico y
parasitológico de la deposición, ya sea espontánea o mejor después de
una comida de prueba.
Por lo menos 48 horas antes del examen el paciente no debe ingerir
grasas en exceso o legumbres de hojas.
Las grasas interfieren en la preparación húmeda para la observación al
microscopio y las legumbres pueden tener parásitos de vida libre, que al
ser liberados en el intestino y eliminados con las heces pueden ser
considerados como parásitos del paciente.
Pasos para la recolección:
• Realizar la deposición en un recipiente limpio y seco.
• Destape el envase, y deje la tapa boca arriba para que no se
contamine.
• Recoger con baja lengua (o similar) una cantidad representativa de
la muestra, preferible de varios lugares sobre todo de aquellos que
tienen aspecto raro.
• Tape el envase y rotulé con su nombre completo de ser posible la
hora de recolección.
• Lleve la muestra al laboratorio lo más pronto posible para permitir
la observación de formas vivas.
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El examen coproparasitario es un conjunto de técnicas diagnósticas que
constituyen la indicación metodológica para la identificación de la mayoría
de las entero parasitosis motivadas por protozoarios o helmintos.
Su eficacia y sensibilidad para establecer un diagnóstico correcto
dependen de la adecuada indicación y preparación de la muestra. (42)
2.5.1. Caracteres Macroscópicos.
Cantidad.
Depende fundamentalmente de los residuos alimenticios procedentes de
la dieta según su contenido en verduras y frutas, celulosa y de la
existencia de estreñimiento o diarrea en el enfermo.
Por término medio, y con una alimentación corriente, se eliminan
normalmente entre 150 y 250 g. por día de heces, con un régimen
vegetariano se llega a 370 g., mientras que con un régimen cárneo se
excretan sólo unos 60 g. diarios.
En estado patológico pueden alcanzar las deposiciones un peso superior
al kilogramo diario y si se trata de diarreas agudas graves pueden
eliminarse varios litros diarios.
Consistencia.
Normalmente la deposición debe ser sólida y "formada", es decir cilíndrica
y consistente para mantener esta su forma después de excretada.
Los estreñidos eliminan deposiciones pequeñas, duras y a menudo "en
bolas" o "caprinas". Las falsas diarreas de los constipados se
caracterizan por la deposición mixta, compacta la primera parte y pastosa
al final.
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En las diarreas las heces son fluidas o líquidas. En el cólera se han
comparado con la "sopa de arroz", y en la tifoidea con el "puré de
guisantes", pero esta última es inconstante en su presentación. Parece
una "papilla" la deposición de los enfermos con insuficiencia gástrica
descompensada. Es cremosa y pegajosa, como "mantequilla", en las
esteatorreas de origen biliar, pancreático o entérico. Pegajosa y oscuras,
como alquitrán, son generalmente las heces de las melenas. Pastosa,
esponjada y espumosa, es la deposición en la llamada dispepsia de
fermentación.
Color.
Las heces normales del adulto son de color pardo de diferente intensidad,
debido a la estercobililina. Las heces de los niños tienen color amarillo
claro por su régimen lácteo y la presencia de bilirrubina.
Ciertos alimentos comunican su color a las heces, la remolacha,
chocolate, etc. Igualmente los medicamentos como el carbón y el bismuto
dan color negruzco.
La aquilia pancreática, la ictericia obstructiva y la peritonitis tuberculosa
producen heces acólicas como masilla de vidrio.
Con dieta cárnea se hace marrón oscuro, una alimentación rica en
verduras (espinacas especialmente) tiñe las heces de un color verdoso,
mientras que si preponderan las patatas y el pan las heces se aclaran
hacia un marrón amarillento.
Las hemorragias si son altas producen heces de color obscuro pudiendo
en los casos intensos asemejarse a la brea, si las hemorragias son bajas
del recto, hemorroides o con transito intestinal muy acelerado, pueden
asomarse heces rojas.
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Olor.
Se debe a la presencia especialmente de indol y escatol que proceden de
la diseminación y descarboxilación del triptófano por las bacterias de la
putrefacción.
El olor fecal característico se hace fétido en todos los procesos que
cursan con putrefacción de las proteínas ingeridas o endógenas (lo cual
puede ocurrir aunque no obligadamente en pacientes con insuficiencia
gástrica, biliar o pancreática, colitis, cáncer, etc.), sobre todo en las
melenas, en el cáncer de colon y en el absceso abierto en el intestino
grueso. En la acolia es desagradable pero no hediondo.
Moco.
Su aparición en las deposiciones suele ser reconocible ya
macroscópicamente, por lo menos en la emulsión de heces observada
sobre fondo oscuro. Si está finamente dividido y mezclado en las heces
dándoles un aspecto brillante procede del intestino delgado, a diferencia
del moco en copos visibles que tienen un origen más bajo y sobre todo en
tiras o gleras cuyo punto de partida está en el colon distal. Su significación
clínica es muy distinta si se presenta aisladamente como moco perlado,
transparente o si es opaco mezclado con células epiteliales, sangre o pus
en el primer caso se trata de un catarro alérgico puramente funcional o
mixoneurosis ("colon irritable") y excepcionalmente si es muy abundante
de un tumor velloso; mientras que en el segundo caso señala la existencia
de un proceso inflamatorio más o menos profundo (enteritis y colitis
genuinas). (43)
2.5.2. Examen microscópico.
Entre las enteroparasitosis motivadas por protozoarios o helmintos
destacan por su relativa frecuencia de observación en heces humanas las
amebas, los flagelados del tipo de las lamblias, Trichomonas, Chilomastix
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y los ciliados, como el Balantidium coli, Helmintos como las tenias,
oxiuros, áscaris, estrongiloides.
Pueden aparecer las formas activas o sus quistes que no deben
confundirse con las levaduras existentes normalmente en toda
deposición. Es discutible la capacidad patógena de cualquiera de los
protozoos señalados y antes de admitir la importancia etiológica de tal
hallazgo en las heces deben excluirse otras causas del cuadro y sólo
serán inculpados aquellos si además su presencia es abundante. (44)
2.6. PERSONAS EN ESTUDIO.
La Salud puede definirse como “el nivel de eficacia funcional o
metabólica de un organismo tanto a nivel micro (celular) como el macro
(social) que permite la adaptación del hombre a su ambiente.” (45)
En la forma física es la capacidad que tiene el cuerpo para realizar
cualquier tipo de ejercicio donde muestra que tiene resistencia, fuerza,
agilidad, coordinación y flexibilidad.
Existe también la salud mental, el cual se caracteriza por el buen estado
psíquico de una persona y su auto aceptación; en palabras clínicas es la
ausencia de cualquier tipo de enfermedad mental es decir que el individuo
sea capaz de adaptarse adecuadamente a los numerosos cambios y el
bienestar social, es la buena relación que se debe tener con los que nos
rodean. (46)
Características de los adolescentes de 12 a 17 años.
Se denomina enfermedad al proceso y al status causado por una afección
en un ser vivo, que puede ser provocado por distintos factores, ya sean
intrínsecos o extrínsecos al organismo enfermo, es decir se considera a la
salud como el estado de bienestar físico, mental y social. (47)
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Factores determinantes de salud.
Son un conjunto de condicionantes de la salud y de la enfermedad en
individuos, grupos y colectividades. En éste se considera que el nivel de
salud de una comunidad viene determinado por variables como:
Biología humana.
Medio ambiente (contaminación biológica: virus, bacterias,
parásitos, hongos), contaminación atmosférica (ruido, radiaciones,
vibraciones), contaminación química (plaguicidas, fertilizantes,
metales pesados), contaminación psico-social y socio-cultural
(estrés).
Estilo de vida: ciertas conductas insanas como: sedentarismo,
consumo excesivo de alimentos ricos en grasas y en hidratos de
carbono, mala utilización de los servicios de asistencia sanitaria.
Sistema de asistencia sanitaria: calidad, cobertura, gratuidad.
Los adolescentes y jóvenes constituyen el periodo de la vida en que, de
acuerdo a los indicadores clásicos de salud y enfermedad, se es más
saludable, ya que presentan las tasas de mortalidad más bajas y la
menor frecuencia de episodios de enfermedad percibidos en un año. Es
por lo tanto una etapa en que las demandas por servicios curativos son
relativamente inferiores a otros periodos de la vida lo que, debería facilitar
la reorientación de los servicios hacia el énfasis promocional y de
prevención.
La situación de salud básica del adolescente que ya había sobrevivido a
los altos riesgos de la niñez, muestra baja susceptibilidad a las
enfermedades y bajo riesgo de mortalidad. A pesar de lo anterior, los
adolescentes presentan una gran cantidad de necesidades que, aunque
algunas de ellas no amenacen su vida inmediata, sí amenazan su calidad
de vida presente y futura cuando no son satisfechas.
Características generales del proceso del crecimiento y desarrollo.
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La adolescencia se caracteriza por el crecimiento físico y desarrollo
psicológico y es la fase del desarrollo humano situada entre la infancia y
la edad adulta. Esta transición es tanto física como psicológica por lo que
debe considerarse un fenómeno biológico, cultural y social.
Desde el punto de vista práctico, los cambios habituales del crecimiento
tienen tres grandes características:
Se realizan en forma secuencial, es decir unas características
aparecen antes de que aparezcan otras, como es el caso del
crecimiento de los senos antes de la aparición de la menstruación,
el vello púbico antes que el axilar, los miembros inferiores crecen
primero que el tronco, los testículos se incrementan antes que el
pene, etc.
El tiempo de comienzo, la magnitud y la velocidad de cada evento
es considerablemente variable entre las edades y los sexos.
Cada evento del crecimiento sigue la ley de la variabilidad
individual del desarrollo. Cada individuo tiene una propia manera
de ser y la conserva a través de los años de la adolescencia y en el
que influyen diversos factores, como su origen étnico, su
constitución genética o familiar, nutrición, funcionamiento endocrino
y ambiente sociocultural. Basado en ello, la evaluación de la
maduración sexual suele ser más valiosa desde el punto de vista
clínico que la edad cronológica, que es la correlación que por lo
general preocupa a los padres y al mismo adolescente.
Características del crecimiento físico.
El crecimiento físico durante la infancia y la adolescencia parece mostrar
3 ciclos claros:
Desde un mes después de la fertilización, hasta 2 años después
del nacimiento.
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De los 2 a los 7 años.
Empieza gradualmente a los 7 u 8 años de edad. Entre los 9 y los
15 todo muchacho crece rápidamente en casi todas las
dimensiones corporales, lo que constituye el llamado estirón.
Se pueden advertir los períodos de crecimiento lento y rápido graficando
los incrementos anuales en estatura y peso por edad. En las desviaciones
respecto a la estatura, si no se crece en estatura puede ser indicación que
el individuo está fuera de su trayectoria y quizá indica falta de
suplementos hormonales o que se requiere alguna forma de intervención
terapéutica. La desviación en el peso suele indicar que existe necesidad
de mejorar la nutrición y el ejercicio.
Proporciones Somáticas.
El crecimiento relativamente temprano de manos y pies hace que los
adultos vean a los adolescentes más jóvenes “todo manos y piernas”.
Un aspecto fascinante del crecimiento de los adolescentes es que a
través de los años, todo el proceso de crecimiento parece haber ido
ocurriendo cada vez más temprano, es decir, los adolescentes de ahora
tienden a crecer y a llegar a una estatura de adultos más rápidamente de
lo que ocurría en adolescentes de hace 100 o inclusive de hace 50 años.
Ésta tendencia hacia una maduración cada vez más temprana se ha
llamado “tendencia secular” o tendencia a un cambio de cada siglo. Son
muchos los factores que explican esta aceleración en el desarrollo como
los son la dieta, el clima y el vigor híbrido.
Factores que influyen en el crecimiento físico.
Nutrición y obesidad.
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La sobrenutrición, al estimular el anabolismo proteínico, acelera el
crecimiento en talla, peso y del esqueleto. Los muchachos bien
alimentados tienden a ser más altos que el promedio. Las muchachas que
son más pesadas que el promedio, tienden a entrar en la menarquía con
anterioridad a las demás.
La desnutrición puede retardar el estirón. Parece que cuando se suple
alguna dieta deficiente antes o durante el estirón de la adolescencia, la
estatura, el peso y el desarrollo esquelético se aceleran hasta que el
individuo alcanza su modelo de crecimiento determinado genéticamente.
El sobrepeso y la obesidad se deben probablemente tanto a la herencia
como al desequilibrio regulatorio.
Es más probable que un joven adolescente se vuelva obeso si lo son uno
o ambos progenitores. Si bien esto puede ser índice de influjo de la
herencia, es más probable que el hábito de comer demasiado sea patrón
familiar.
Factores biológicos.
Las causas capaces de originar una enfermedad son muy numerosas y
complejas.
Existen causas exógenas como las infecciones, las enfermedades
parasitarias y endógenas que pueden aparecer por disfunción de un
órgano (páncreas en la diabetes mellitus), por una reacción anormal
(cirrosis hepática) o por un trastorno metabólico y funcional de las células.
Estilo de vida.
Los hábitos de vida condicionan no sólo la salud, sino la situación
sanitaria de las poblaciones y los recursos a ellas destinados. La
conducta personal en determinados aspectos influye enormemente en el
binomio salud-enfermedad.
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Esta conducta se forma por decisiones personales, por influencias de
nuestro entorno, grupo social y puede modificarse con la adecuada
educación.
Factores ambientales.
Características sociales de los adolescentes.
La sociabilidad es la capacidad, la aptitud que permite al individuo vivir
con los otros en grupo, es fruto de comprensión hacia el otro, de
posibilidad de simpatía y empatía, básicamente se relaciona con varios
aspectos.
Emocional.
Necesidad de una comprensión clara de las transformaciones de la
adolescencia.
Nuevas necesidades emocionales y físicas. El desarrollo de la seguridad,
emociones, motivación y autoestima.
Físico.
Hace referencia al cuerpo, crecimiento, salud y movimiento.
Intelectual.
Desarrollo intelectual en la adolescencia, los maestros desempeñan un
papel decisivo en la madurez intelectual de nuestros adolescentes.
La adolescencia se caracteriza por cambios físicos enormes que
trasladan a la persona desde la niñez hasta la madurez física.
Necesidades nutricionales del adolescente.
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Una adecuada ingesta de energía y nutrientes asegura un buen
crecimiento y desarrollo en el adolescente, por esta razón las
necesidades de nutrientes durante la infancia y adolescencia están
condicionadas por el crecimiento físico, el desarrollo psicosocial, factores
socioeconómicos etc. (48)
2.7. MEDIO GEOGRAFICO DONDE SE REALIZO LA INVESTIGACION
CUENCA – ECUADOR.
La ciudad de Cuenca, en donde se realizó el estudio está localizada al sur
del Ecuador, en la cordillera de los Andes a su vez localizada en la
Región Interandina o Sierra, en su parte Austral, conformada por 15
cantones, con un clima primaveral todo el año, con 417.632 habitantes, de
los cuales 195.683 son hombres y 221.949 mujeres, con una tasa de
crecimiento anual del 2 %, distribuida en un 66.4 % en el área urbana y el
33.6 % en el área rural, según el censo del año 2001. (49)
Los últimos datos obtenidos en el censo 2010 se ha registrado una
población de 712.127 habitantes en la provincia del Azuay, con un
crecimiento de 1.93%. En la ciudad de cuenca un crecimiento de 2.01%
con 331,888 Habitantes. (50)
Cuenca está constituida por una zona central urbana y 21 parroquias
rurales, entre ellas están: Molleturo, Chaucha, Baños, Victoria del Portete,
Cumbe, Quingeo, Tarqui, Santa Ana, Turi, El Valle, San Joaquín, Paccha,
Ricaurte, Sinincay, Llacao, Nulti, Sidcay, Octavio Cordero Palacios,
Chiquintad, Checa y Sayausi.
Se le considera una zona de alta emigración, sobre todo a Estados
Unidos, España e Italia, actualmente existe un gran número de
extranjeros jubilados procedentes de varios países de Europa, Australia y
de Estados Unidos, que han llegado a esta ciudad para quedarse y
disfrutar de la tranquilidad que caracteriza a esta urbe.
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Es la tercera ciudad de mayor importancia en el país y fue declarada
Patrimonio Cultural de la Humanidad por la UNESCO, el primero de
diciembre de 1999. (51)
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CAPITULO III
3.- OBJETIVOS.
3.1. OBJETIVO GENERAL:
Determinar pruebas básicas de Laboratorio Clínico en estudiantes
secundarios del Colegio Nacional República de Israel, sección nocturna,
del Área de influencia del Centro de Salud №2 de la ciudad de Cuenca.
3.2. OBJETIVOS ESPECIFICOS:
3.2.1. Determinar los valores de: Hematocrito hemoglobina, recuento de
glóbulos blancos, rojos, plaquetas, glucosa, ASTO, orina y heces en la
muestra de estudio.
3.2.2. Correlacionar el valor obtenido con las variables: Edad, sexo, talla
y peso.
3.2.3. Identificar a los estudiantes secundarios: Cuyos valores de las
pruebas se alejen de los rangos considerados normales.
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CAPITULO IV
4. METODOLOGIA.
4.1. Tipo de estudio.
El presente estudio fue observacional de tipo descriptivo, consistió en
determinar los valores hematológicos, químicos y microscópicos en las
muestras obtenidas de los estudiantes secundarios en un lugar y tiempo
determinado.
4.2. UNIVERSO.
Estuvo representado por 23.706 estudiantes secundarios que se
encuentren entre las edades de 12 a 17 años de edad cumplidos, de los
colegios pertenecientes al Área de influencia del centro de Salud # 2 de
la ciudad de Cuenca.
4.3. MUESTRA.
La muestra fue probabilística con elección no aleatoria de la muestra,
cuyos características fueron similares a las de la población objetivo, por
ser parte de una línea de investigación la muestra fue de 250 estudiantes
de ambos sexos del Colegio Nacional República de Israel, sección
nocturna.
Para calcular el tamaño de la muestra se introdujo los datos en el
programa estadístico SPSS, tomando en cuenta la población general, con
los siguientes datos:
Nivel de confianza: 95%
Margen de error: 5.0%
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Los colegios que entraron en la investigación fueron los siguientes:
Colegio Dominicano San Luis Beltrán, Julio María Matovelle, Colegio
Nacional Luis Monsalve Pozo, Manuel J.Calle, Colegio Nacional Checa,
Nacional Chiquintad, Unidad Educativa Santa Mariana de Jesús, Unidad
Educativa María Auxiliadora, Colegio Luisa de Jesús Cordero, República
de Israel (sección vespertina y nocturna), Colegio Francisco Tamariz,
Colegio Carlos Cueva Tamariz, Colegio Francisco Febres
Cordero,(sección vespertina y nocturna).
4.4. CRITERIOS DE INCLUSIÓN.
Se incluyeron:
Estudiantes secundarios comprendidos entre los 12 a 17 años
cumplidos, que pertenezcan al Colegio Nacional República de
Israel sección nocturna, de cualquier sexo o condición social.
Que tengan el consentimiento informado firmado por el
representante y el asentimiento firmado por el estudiante.
4.5. CRITERIOS DE EXCLUSIÓN.
Quedaron fuera de la investigación:
Muestras hemolizadas.
Muestras lipémicas.
Orinas con más de 2 horas de recolección.
Encuestas incompletas.
Estudiantes que no estén en ayunas.
4.6. Métodos, técnicas y procedimentos.
4.6.1. Para cumplir el primer objetivo se procedió de manera aleatoria a
ubicar el Colegio Nacional República de Israel sección nocturna para
seleccionar a los 250 estudiantes aparentemente sanos en las diferentes
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aulas del establecimiento educativo, a los cuales se les aplicó una
encuesta para contar con el consentimiento del representante o padre de
familia de cada estudiante.
A los estudiantes incluidos en el proyecto, se receptó el consentimiento
informado que abalizó su aceptación; y posteriormente se obtuvo las
muestras de sangre en ayunas, muestras de orina, de heces y la
determinación de su talla y peso.
4.6.2. Para cumplir el segundo objetivo, se procedió a la extracción de
sangre a los adolescentes seleccionados. Para la extracción de la misma
el paciente debió estar sentado extendido su antebrazo firmemente;
luego procedimos a aplicar el torniquete provocando la estasis venosa, se
desinfectó el sitio de punción utilizando una torunda empapada de
alcohol; se procedió a la punción utilizando agujas descartables o
vacutainer estériles, de calibre 20; las venas utilizadas fueron la cefálica,
basílica o mediana basílica; se recogió 5 ml de sangre en tubos al vacío
con anticoagulante EDTA para las pruebas hematológicas y 10 ml sin
anticoagulante para las pruebas bioquímicas, envases estériles para la
recolección de muestras de orina y heces.
Las muestras obtenidas fueron trasladadas inmediatamente al Laboratorio
Clínico del Hospital Vicente Corral Moscoso.
Para determinar los valores hematológicos y de sustancias bioquímicas,
utilizamos sangre total y suero de las personas seleccionadas, siguiendo
rigurosamente las siguientes técnicas.
4.7. TÉCNICAS Y EQUIPOS.
4.7.1. Técnicas hematológicas.
HEMOGRAMA (CELL-DYN 3700).
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El sistema CELL-DYN 3700 es un analizador de hematología automático
y multiparamétrico, diseñado para utilizarse en el diagnóstico in vitro en
los laboratorios clínicos.
El sistema CELL-DYN® 3700 efectúa las siguientes mediciones
hematológicas en sangre anticoagulada con EDTA:
WBC: Recuento de leucocitos.
NEU: Recuento absoluto de neutrófilos.
LYM: Recuento absoluto de linfocitos.
MONO: Recuento absoluto de monocitos.
EOS: Recuento absoluto de eosinófilos.
BASO: Recuento absoluto de basófilos.
%N: Porcentaje de neutrófilos.
%L: Porcentaje de linfocitos.
%M: Porcentaje de monocitos.
%E: Porcentaje de eosinófilos.
%B: Porcentaje de basófilos.
RBC: Recuento de glóbulos rojos o eritrocitos.
HGB: Concentración de hemoglobina.
HCT: Hematocrito.
MCV: Volumen corpuscular medio.
MCH: Hemoglobina corpuscular media.
MCHC: Concentración de hemoglobina corpuscular media.
RDW: Amplitud de la distribución del tamaño de los eritrocitos.
PLT: Recuento de plaquetas o trombocitos.
MPV: Volumen plaquetario medio.
PDW: Amplitud de la distribución del tamaño de las plaquetas.
PCT: Plaquetocrito.
DESCRIPCIÓN GENERAL.
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El analizador es la unidad central del sistema CELL-DYN 3700; aspira y
diluye las muestras de sangre, transporta y analiza las diluciones
preparadas y lava los conductos, para preparar la siguiente muestra.
SISTEMA DE REACTIVOS.
Diluyente.
El diluyente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los requisitos
siguientes:
Actúa como diluyente para los leucocitos (únicamente para el
recuento por impedancia), los eritrocitos, las plaquetas y la
hemoglobina.
Mantiene estable el volumen celular diluido de cada eritrocito y
plaqueta durante el recuento y la fase de clasificación volumétrica
del ciclo de medición.
Reactivo hemolizante HGB/WIC:
El reactivo hemolizante CELL-DYN HGB/WIC ha sido formulado para
cumplir los siguientes requisitos:
Hemoliza rápidamente los eritrocitos y minimiza el estroma
resultante.
Desprende el citoplasma de los glóbulos blancos, dejando intacta la
membrana nuclear, para poder contar los núcleos leucocitarios.
Transforma la hemoglobina en una sola sustancia cromógena, que
puede medirse a 540 nm. (El lisado de amonio cuaternario participa
como cromógeno.
Reactivo hemolizante WIC/HGB sin cianuro.
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El reactivo hemolizante CELL-DYN WIC/HGB sin cianuro ha sido
formulado para cumplir los siguientes requisitos:
Hemoliza rápidamente los eritrocitos y minimiza el estroma
resultante.
Desprende el citoplasma de los glóbulos blancos, dejando intacta la
membrana nuclear, para poder contar los núcleos leucocitarios.
Transforma la hemoglobina en una sola sustancia cromógena, que
puede medirse a 540 nm.
Proporciona una lectura de fondo igual o inferior a 0,2 g/dl.
Detergente:
El detergente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los siguientes
requisitos:
Una solución ópticamente clara, necesaria para obtener el valor
cero de referencia durante el ciclo de medición de la hemoglobina.
Facilita la formación del menisco apropiado en los tubos
volumétricos WIC y RBC/PLT y lo mantiene durante cada ciclo de
procesado.
Lava la cámara de recuento WIC, el tubo volumétrico WIC, la
cámara de recuento RBC/PLT, el tubo volumétrico RBC/PLT y la
celda de flujo de HGB, con una formación mínima de burbujas.
Reactivo envolvente:
El reactivo envolvente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los
siguientes requisitos:
Hemoliza los eritrocitos por un mecanismo osmótico.
Mantiene las propiedades de dispersión de la luz de los leucocitos
durante el periodo de medición.
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Actúa como líquido envolvente, necesario en el proceso de enfoque
hidrodinámico.
Proporciona una acción humectante adecuada que impide la
acumulación de burbujas de aire en el sistema de flujo WOC.
Proporciona una lectura de fondo WOC igual o inferior a 0,3 x
103/ul (109/1).
Limpiador enzimático:
El limpiador enzimático CELL-DYN ha sido formulado para eliminar con
eficacia los depósitos de proteínas acumuladas en el analizador.
Mensajes de alerta de los parámetros
PARÁMETRO ALERTA DE RESULTADOS FUERA DE RANGO
MENSAJES INTERPRETATIVOS
WBC
El resultado se visualiza en color amarillo, si se encuentra por debajo del límite inferior. El resultado se visualiza en color violeta, si se encuentra por encima del límite superior. El resultado aparece subrayado en el informe grafico impreso si excede de los límites. El resultado aparece subrayado en el ticket en blanco, si excede de los límites. El resultado aparece marcado con un asterisco (*) en el ticket pre-impreso si excede de los limites.
Leucopenia Leucocitosis
Diferencial NEU LYN MONO EOS BASO
Igual que WBC
Neutropenia Neutrofilia Linfopenia Linfocitosis Monocitosis Eosinofilia Basofilia
RBC MCV RDW MCH MCHC
Igual que WBC
Anemia Policitemia Eritrocitos microcíticos Eritrocitos macrocíticos Hipocromía Anisocitosis
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Las muestras, cuyos resultados exceden de la linealidad, deben diluirse
con el diluyente, según el procedimiento del laboratorio, luego se repetirá
su procesado. Cerciorarse de corregir el resultado según el factor de
dilución aplicado.
NOTA: MCB, MCH, MCHC, MPV, no se alteran con la dilución ni precisan
corrección.
Parámetros de la formula leucocitaria
TIPO DE CELULA
INTERVALO
DIFERENCIA RESPECTO AL VALOR MEDIO DE N= 31
% Neutrófilos 45 – 70 + 2.1
% Linfocitos 20 – 40 + 2.6
% Monolitos 3.5 – 11.5 + 2.4
% Eosinófilos 0.5 – 8.0 + 1.0
% Basófilos 0-5 – 2.0 + 1.0
Limite confianza: 95%.
4.7.2. PRUEBAS QUÍMICAS.
4.7.2.1. GLICEMIA.
PLT MVP
Igual que WBC
Trombocitopenia Trombocitosis Plaquetas microcíticas Plaquetas macrocíticas
PARAMETRO CV (COEFICIENTE DE VARIACION)
WBC (WOC) < 2.5%
WBC (WIC) < 2.8%
RBC < 1.5%
HGB < 1.2%
MCV < 1.0%
RDW < 5.0%
PLT < 5.0%
MPV < 6.1%
RETIC. % < 15.0%
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Fundamento.
Prueba enzimática colorimétrica: Debido al oxigeno del aire, la glucosa se
oxida a gluconolactona bajo la acción de la glucosaoxidada (GOD). Se
forma peróxido de hidrógeno que, en presencia de la peroxidasa (POD),
oxida la 4-aminofenazona y el fenol a 4-(p-benzoquinona-monoimino)-
fenazona.
La intensidad del color es directamente proporcional a la concentración de
glucosa que se mide fotométricamente.
Almacenamiento y estabilidad de la muestra.
Centrifugar la sangre lo antes posible: los eritrocitos y leucocitos
consumen glucosa, por tanto, si el contacto con las células es
prolongado se pueden dar resultados falsamente bajos (a
temperatura ambiente puede incluso desaparecer al cabo de 6h).
Actualmente existen tubos con separador de suero que funciona
como una interface entre las células y el suero después de la
centrifugación, haciendo que no sea necesario separar el suero en
otro tubo.
Si no se van a analizar inmediatamente, se puede refrigerar la
muestra o añadir un conservante ej. Fluoruro sódico.
Si los análisis no se completan en 48 horas, las muestras
separadas se deben congelar entre -15°C y -20°C. Estas deben
descongelarse sólo una vez. Puede haber deterioro del compuesto
en muestras congeladas y descongeladas repetidamente.
La concentración de glucosa en suero refrigerado es estable
durante 3 días.
Metodología.
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El Sistema Sistemas SYNCHRON® determina la concentración de
GLUCm mediante un método cinético que emplea el electrodo para
oxígeno de Beckman Coulter.
Técnica.
Un volumen preciso de muestra (10 microlitros) es inyectado en una
cubeta de reacción que contiene solución de glucosa oxidasa. La
proporción es una parte de muestra a 76 partes de reactivo. La velocidad
pico de consumo de oxígeno es directamente proporcional a la
concentración de GLUCm en la muestra.
Reactivos.
Dos frascos de Reactivo Glucosa (2 x 2 L).El Reactivo GLUCm, junto con
el AQUA CAL 1 y 2, SYNCHRON ® y el Sistemas LX®, Sistemas UniCel®
DxC 600/800, se usa para la determinación cuantitativa de la
concentración de Glucosa en suero, plasma, orina o líquido
cefalorraquídeo (LCR) humanos.
Almacenamiento y estabilidad del reactivo.
El Reactivo GLUCm, almacenado sin abrir entre +2°C y +8°C, permanece
estable hasta la fecha de caducidad indicada en cada botella. El reactivo
permanece estable en el instrumento 30 días o hasta la fecha de
caducidad, si ésta es anterior.
Si el reactivo ha sido congelado para su transporte, deje que alcance la
temperatura ambiente y mézclelo bien, invirtiendo el frasco suavemente
por lo menos 10 veces.
Calibración.
Calibrador necesario: AQUA CAL 1 y 2, SYNCHRON ®
Preparación del calibrador: No requiere preparación.
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4.7.2.2. ANTIESTREPTOLISINA-O o ASTO.
Fundamento.
Test inmunoturbidimétrico: La estreptolisina O que cubre el látex
reacciona con los anticuerpos de la muestra formando un complejo
antígeno-anticuerpo. La aglutinación en subsecuente se mide
turbidimetricamente.
Almacenamiento y estabilidad de la muestra.
Centrifugar las muestras que contienen precipitado antes de efectuar el
test.
Es estables: 2 días a 15 – 25°C
8 días a 2 – 8°C
6 meses a (-15) – (-25) °C
Metodología.
El Reactivo ASO se usa para medir los anticuerpos humanos contra la
estreptolisina-O mediante un método de turbidimetría cinética. En la
reacción, los anticuerpos contra la estreptolisina-O en la muestra se
combinan con partículas de látex recubiertas con estreptolisina-O
recombinante altamente purificada, lo que produce aglutinación y un
cambio en la absorbancia.
Técnica.
El Sistemas SYNCHRON® dispensa en forma automática los volúmenes
apropiados de muestra y reactivo en una cubeta. La proporción para
Antiestreptolisina-O es una parte de muestra a 50 partes de reactivo. El
sistema controla el cambio de absorbancia a 340 nanómetros.
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Este cambio de absorbancia es directamente proporcional a la
concentración de anticuerpos Antiestreptolisina-O humanos en la
muestra, y es usado por el Sistemas SYNCHRON® para calcular y
expresar la concentración de anticuerpos Antiestreptolisina-O humanos
basándose en una calibración lineal de un solo punto usando un
calibrador estandarizado según la Organización Mundial de la Salud.
Reactivo.
El Reactivo ASO-, junto con el SYNCHRON® Systems CAL 5 Plus
Sistemas SYNCHRON LX® y el Sistema UniCel® DxC 600/800, se usa
para la determinación cuantitativa de la concentración de anticuerpos
humanos contra estreptolisina O en suero o plasma humanos.
Almacenamiento y estabilidad del reactivo.
Sin abrir, a 2-8°C: hasta la fecha de caducidad indicada. Una vez abierto y
refrigerado en el analizador es estable 90 días.
4.8. UROANÁLISIS:
Materiales para el examen de Orina.
Recipiente para orina estéril.
Tubos de ensayo.
Gradillas.
Portaobjetos.
Cubreobjetos.
Tiras reactivas.
Equipo; Microscopio.
Técnica.
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En un tubo de ensayo colocamos la muestra.
Observar el Aspecto, Color, Olor.
Luego introducimos una tira reactiva en la muestra.
Mandar a centrifugar (durante 10 minutos a 5000 rpm).
Se desecha la orina centrifugada.
El sedimento se coloca en un portaobjeto.
Colóquese un cubreobjetos sobre la muestra.
Examínese las preparaciones en el microscopio con el objetivo de
10x para enfocar y con el lente de 40x para identificar las
estructuras presentes en la muestra.
4.9. COPROANALISIS:
Materiales:
Recipiente para heces estéril.
Portaobjetos
Cubreobjetos
Goteros
Palillos
Suero fisiológico
Equipo; Microscopio
Técnica.
Destapar el envase y observar el aspecto, color, consistencia, presencia
de estructuras macroscópicas y reportar.
En un portaobjetos colocamos una gota de solución salina en un extremo
y una gota de lugol en el otro.
Con un palillo, tómese una pequeña porción de heces mézclese con
solución salina y lugol para obtener una muestra homogénea.
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Colóquese un cubreobjetos sobre la muestra preparada.
Examínese las preparaciones en el microscopio con el objetivo de 10x
para enfocar y con el lente de 40x para identificar las estructuras
presentes en la muestra.
4.10. EQUIPOS DE LABORATORIO CLÍNICO UTILIZADOS EN LA
INVESTIGACIÓN.
Centrífuga.
Consiste en un motor rotatorio de velocidad controlable mediante el cual
se logra que un cabezal fijado al mismo mediante un eje vertical gire en el
cabezal, se encuentran dispuestos simétricamente, recipientes en los
cuales se colocarán los tubos cuyo contenido permite separar los
componentes de acuerdo a su densidad.
La velocidad de giro crea una fuerza de alejamiento del centro (centrífuga)
es más intensa en los elementos más pesados los cuales van hacia el
fondo de los tubos (sedimento), en tanto que los más livianos
permanecerán en la superficie (sobrenadante).
Toda centrífuga moderna tiene sus partes móviles dentro de un recipiente
cerrado con el fin de evitar que el desprendimiento accidental de
elementos durante el giro pueda causar accidentes al personal.
La marca de la centrifuga utilizada es: HETTICH ROTOFIX 32A.
4.11. CONTROL DE CALIDAD DE LOS RESULTADOS.
La fuente de investigación trata de determinar el estado de salud de los
adolescentes de 12 a 17 años del Colegio Nacional República de Israel
sección nocturna. Mediante los parámetros químicos, hematológicos,
orina y heces.
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Para que los resultados obtenidos en el laboratorio del Hospital Vicente
Corral Moscoso sean fiables se realizaron controles de calidad internos e
inter – laboratorios.
4.12. CONTROL DE CALIDAD INTER-LABORATORIO.
Se realizaron controles en laboratorios calificados como son el Hospital
Militar y Laboratorios GM tomando 2 muestras al azar por día.
Las muestras fueron enviadas en la brevedad posible para así obtener
resultados más confiables.
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4.13. RESULTADOS COMPARATIVOS OBTENIDOS EN EL CONTROL
DE CALIDAD.
Paciente NO. 23030426
PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS
MG
BIOMETRÍA HEMÁTICA
Recuento Blancos (mm3) 5.810 6.100
Recuento Rojos (mm3) 4.790.000 4’600.000
Plaquetas (mm3) 326.000 332.000
Neutrófilos % 44,3 50
Linfocitos % 48,4 42,8
Eosinófilos % 1.29 1.6
Monocitos % 5,51 5.1
Basófilos % 0.51 0.5
Hemoglobina (g/dl) 14,3 14,9
Hematocrito (%) 41.2 43,5
QUÍMICA SANGUÍNEA
Glucosa mg/dl 85 79
ASTO UI/l 135.5 133.4
Paciente NO. 23030448
PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS MG
BIOMETRÍA HEMÁTICA
Recuento Blancos (mm3) 6.970 6.510
Recuento Rojos (mm3) 5.470.000 5.210.000
Plaquetas (mm3) 243.000 351.000
Neutrófilos % 42.6 48.4
Linfocitos % 39.7 42,6
Eosinófilos % 1.29 1.1
Monocitos % 8,64 7.4
Basófilos % 0.05 0.5
Hemoglobina (g/dl) 15,9 15.2
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Hematocrito (%) 46,4 45,9
QUÍMICA SANGUÍNEA
Glucosa mg/dl 85 81
ASTO UI/l 58,9 64.2
Paciente NO. 25030355
PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS
MG
BIOMETRÍA HEMÁTICA
Recuento Blancos (mm3) 6.190 6.320
Recuento Rojos (mm3) 5.050.000 4.910.000
Plaquetas (mm3) 385.000 401.000
Neutrófilos % 48.1 51.2
Linfocitos % 44.5 41,1
Eosinófilos % 0.53 1
Monocitos % 6.84 6.6
Basófilos % 0.09 0.1
Hemoglobina (g/dl) 14,8 15.1
Hematocrito (%) 41.4 45.4
QUÍMICA SANGUÍNEA
Glucosa mg/dl 69 63
ASTO UI/l 65.1 49.9
Paciente NO. 25030358
PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS MG
BIOMETRÍA HEMÁTICA
Recuento Blancos (mm3) 7.760 7.600
Recuento Rojos (mm3) 5.900.000 5.770.00
Plaquetas (mm3) 298.000 312.000
Neutrófilos % 66.6 62.9
Linfocitos % 26.2 29.8
Eosinófilos % 0,95 1
Monocitos % 5.55 6.1
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Basófilos % 0,06 0,2
Hemoglobina (g/dl) 17.3 16.8
Hematocrito (%) 50 51
QUÍMICA SANGUÍNEA
Glucosa mg/dl 92 88
ASTO UI/l 67.3 62.6
Paciente NO. 29030554
PRUEBA HOSP. VCM HOSP. MILITAR
BIOMETRÍA HEMÁTICA
Recuento Blancos (mm3) 7.470 5.500
Recuento Rojos (mm3) 4.080.00 4.160.000
Plaquetas (mm3) 319.000 305.000
Neutrófilos % 49 52
Linfocitos % 33,7 36
Eosinófilos % 10,2 12
Monocitos % 5.89 0
Basófilos % 1.25 0
Hemoglobina (g/dl) 12.4 11.9
Hematocrito (%) 35.1 37
QUÍMICA SANGUÍNEA
Glucosa mg/dl 88 85
ASTO UI/l 71,3 128.7
Paciente NO. 29030555
PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS
MG
BIOMETRÍA HEMÁTICA
Recuento Blancos (mm3) 8.420 6,500
Recuento Rojos (mm3) 4.800.000 5.050.000
Plaquetas (mm3) 303.000 309.000
Neutrófilos % 54.7 51
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 85
Linfocitos % 35.1 41
Eosinófilos % 1.3 0
Monocitos % 7.0 0
Basófilos % 1.73 0
Hemoglobina (g/dl) 14,3 13.9
Hematocrito (%) 40.9 44
QUÍMICA SANGUÍNEA
Glucosa mg/dl 86 79
ASTO UI/l 26.2 82.9
La aplicación de un buen control de calidad permite obtener resultados
fidedignos y confiables, siendo necesario vigilar los procedimientos
durante las tres fase pre – analítica, analítica y la post – analítica.
En la fase pre – analítica: los pacientes seleccionados cumplieron todos
los criterios de inclusión, las muestras fueron tomadas en ayunas a las
07:30 am, receptadas e identificadas correctamente y llevadas al
laboratorio al laboratorio.
En la fase analítica, se siguieron minuciosamente las instrucciones de
cada técnica, no se realizó variación en el personal y los reactivos
estaban almacenados siguiendo las indicaciones respectivas de cada set.
En la fase post–analítica los resultados fueron ingresados inmediatamente
al programa SPSS para el consecuente análisis y la discusión.
4.14. CONTROL DE CALIDAD DEL EQUIPO HEMATOLÓGICO.
Con este mismo esquema se realizó el resto de parámetros que enmarca
el hemograma obteniendo resultados similares.
Se realizó una evaluación interna de calidad (analizador hematológico
marca CELL-DYN 3700 SYSTEM versión 1,3 del software) corriendo un
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calibrador, este análisis lleva a determinar errores aleatorios que se
originan cuando no se logra el mismo resultado al repetir una medición
utilizando el mismo proceso (instrumento, operador, método, etc.); estos
errores afectan poco a la media aritmética y la variabilidad de los
resultados.
Las discordancias básicamente se encontraron en los grupos celulares
(Glóbulos rojos, leucocito, plaquetas) lo que puede atribuirse a:
aglutininas frías, agregación plaquetaria, eritroblastosis, glóbulos rojos
nucleados, crioglobulinas, microcitosis severa, glóbulos rojos
fragmentados, leucocitosis (>100.000/ul).
4.15. CONTROL DE CALIDAD DE TEMPERATURAS.
Temperatura de la refrigeradora
Concentración: 4,38ºC
Desviación Típica: 0,740 %
Formula: CV = S x 100
FECHA T. DE LA
REFRIGERADORA
FECHA T. DE LA
REFRIGERADORA
23/03/2011 4,0 23/03/2011 4,0
24/03/2011 5,0 24/03/2011 4,0
2/03/2011 4,0 25/03/2011 5,0
29/03/2011 3,0 29/03/2011 5,0
m =4,38ºC
CV = 0,740 %
N = 4
Se concluye que no se ha violado ninguna de las reglas de westgard, por
lo tanto, se puede validar todos los resultados obtenidos en la
investigación.
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CAPITULO V 5.1. ANÁISIS DE RESULTADOS.
Cuadro No. 1
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA EDAD.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
EDAD (años)
Media 15,57
Mediana 16,00
Moda 17
Desv. Típ. 1,416
Varianza 2,005
Mínimo 12
Máximo 17
EDAD (años)
Frecuencia Porcentaje
12 9 3,6
13 17 6,8
14 30 12,0
15 45 18,0
16 65 26,0
17 84 33,6
Total 250 100,0
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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 89
De los 250 adolescentes estudiados el 59.6% se encuentran entre 16 y 17 años de edad, y el 3,6% corresponden a la edad de 12 años.
Gráfico No. 1
Fuente: Cuadro No. 1
Cuadro No. 2
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN EL SEXO. CUENCA – 2011
Sexo Frecuencia Porcentaje
Masculino 134 53,6
Femenino 116 46,4
Total 250 100,0
Fuente: Datos obtenidos Autores: Los investigadores De los adolescentes estudiados el 53,6% corresponde al sexo masculino, y el 46,4% al sexo femenino.
Gráfico No. 2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
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Fuente: Cuadro No. 2
Cuadro No. 3
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA TALLA.
CUENCA - 2011
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
TALLA EN METROS
Media 1,5383
Mediana 1,5400
Moda 1,52
Desv. Típ. ,07783
Varianza ,006
Mínimo 1,33
Máximo 1,75
De los adolescentes estudiados el 47.2% están entre 1.51 y 1.60 metros de estatura, y el 4,4% miden entre 1,31 y 1,40 metros.
Talla (metros) Frecuencia Porcentaje
1.31 - 1.40 11 4,4
1.41 - 1.50 72 28,8
1.51 - 1.60 118 47,2
>1.60 49 19,6
Total 250 100,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
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Gráfico No. 3
Fuente: Cuadro No. 3
TALLA EN METROS
1.801.701.601.501.401.30
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =1.54
Desviación típica =0.078
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 92
TALLA EN METROS
1.80
1.70
1.60
1.50
1.40
1.30
Cuadro No.4
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN EL PESO.
CUENCA – 2011
PESO (Kg) Frecuencia Porcentaje
31 – 40 4 1,6
41 – 50 80 32,0
51 – 60 93 37,2
>60 73 29,2
Total 250 100,0
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
En los adolescentes estudiados el 37,2% pesan de 51 a 60 kg, y el 1,6% tienen un peso entre 31 y 40 Kg.
Gráfico No. 4
PESO (Kg)
Media 55,434 Mediana 55,000
Moda 45,0 Desv. Típ. 9,2719 Varianza 85,969 Mínimo 33,0 Máximo 85,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 93
Fuente: Cuadro No. 4
PESO EN Kg.
90.080.070.060.050.040.030.0
Frec
uenc
ia
30
20
10
0
Histograma
Media =55.43
Desviación típica =9.272
N =250
PESO EN Kg.
90.0
80.0
70.0
60.0
50.0
40.0
30.0
194
164
Cuadro No. 5
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 94
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA
RESIDENCIA. CUENCA - 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los adolescentes estudiados el 84,8% pertenecen al área urbana, y el 15,2% al área rural.
Gráfico No. 5
Fuente: Cuadro No. 5
Cuadro No. 6
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN EL TIPO DE COLEGIO, CUENCA – 2011
RESIDENCIA
Frecuencia
Porcentaje
Urbano
212
84,8
Rural
38
15,2
Total
250
100,0
TIPO
Frecuencia
Porcentaje
Fiscal
250
100.0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 95
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 100% de los adolescentes estudiantes pertenecen a un colegio fiscal.
Cuadro No. 7
DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA CLASE DE COLEGIO, CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 100% de los adolescentes estudiados pertenecen a un colegio mixto.
Cuadro No. 8
VALOR DE HEMOGLOBINA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA - 2011.
Hemoglobina (gr/dl)
Frecuencia Porcentaje
8 – 10 6 2,4
11 – 13 48 19,2
14 – 16 175 70
17 – 19 20 8
>19 1 ,4
Total 250 100,0
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
CLASE
Frecuencia
Porcentaje
Mixto 250 100,0
HEMOBLOBINA (gr/dl)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 96
El 70% de los adolescentes tienen un valor de Hemoglobina entre 14 a 16 g%, el 2.4% hemoglobina de 8 a 10 g%, y el 0,4% un valor superior a 19 g/dl.
Gráfico No. 8
Fuente: Cuadro No. 8
Media 14,885
Mediana 15,000
Moda 14,5
Desv. Típ. 1,5243
Varianza 2,323
Mínimo 9,7
Máximo 18,4
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 97
HEMOBLOBINA gr/dl
20.018.016.014.012.010.08.0
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =14.88
Desviación típica =1.524
N =250
HEMOBLOBINA gr/dl
20.0
18.0
16.0
14.0
12.0
10.0
8.0
27
120213
21976
96
Cuadro No. 9
VALOR DE HEMATOCRITO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA - 2011.
HEMATOCRITO (%) Frecuencia Porcentaje <35 10 4,0
35 – 39 32 12,8 40 – 44 106 42,4 45 – 49 87 34,8 50 – 54 14 5,6
>54 1 0,4 Total 250 100,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 98
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
El 77.2% de los adolescentes tienen un valor de hematocrito entre 40 - 49%, el 4,0% presentan un hematocrito menor a 35% y el 0,4% un valor superior a 54%.
Gráfico No. 9
Fuente: Cuadro No. 9
HEMATOCRITO (%)
Media 43,420
Mediana 43,750
Moda 45,0
Desv. Típ. 4,3243
Varianza 18,699
Mínimo 28,0
Máximo 57,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 99
HEMATOCRITO %
60.050.040.030.020.0
Frec
uenc
ia
50
40
30
20
10
0
Histograma
Media =43.42
Desviación típica =4.324
N =250
HEMATOCRITO %
60.0
50.0
40.0
30.0
20.0
105
89
120
193
76213
96
Cuadro No. 10
VALOR DE GLÓBULOS ROJOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
GLÓBULOS ROJOS
(mm3)
Frecuencia
Porcentaje
<4.000.000
7
2,8
4.000.000 - 4.499.999
19
7,6
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 100
4.500.000 - 4.999.999 72 28,8
5.000.000 - 5.499.999
103
41,2
5.500.000 - 5.999.999
43
17,2
>5.999.999 6
2,4
Total
250
100,0
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
De los adolescentes estudiados el 70% tienen un valor de glóbulos rojos entre 4.500.000 - 5.499.999 x mm, el 2,8% menor a 4.000.00 x mm3, y el 2,4% un valor mayor a 5.999.999 x mm3.
GLÓBULOS ROJOS (mm3)
Media 5,088.916.00
Mediana 5,130.000.00
Moda 5,300.000
Desv. Típ. ,526912684
Varianza ,278
Mínimo 3,230.000
Máximo 6,380.000
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 101
Gráfico No. 10
Fuente: Cuadro No. 10
RECUENCTO DE GLOBULOS ROJOS mm3
7.0000006.0000005.0000004.0000003.000000
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =5.088916
Desviación típica =0.
526913
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 102
RECUENCTO DE GLOBULOS ROJOS mm3
7.000000
6.000000
5.000000
4.000000
3.000000
139
2739
76
60
213
79
96
Cuadro No. 11
VALOR DE GLÓBULOS BLANCOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
GLÓBULOS BLANCOS
(mm3)
Frecuencia
Porcentaje
<4.000 3 1,2
4.000 - 5.999 41 16,4
6.000 - 7.999 106 42,4
8.000 - 9.999 67 26,8
>9.999 33 13,2
Total 250 100,0
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
GLÓBULOS BLANCOS (mm3)
Media 7,764.72 Mediana 7,615.00
Moda 6,390 Desv. Típ. 2,024948 Varianza 4,100 Mínimo 2,370 Máximo 15,200
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 103
El 69,2% de los adolescentes tienen un valor de glóbulos blancos que va de 6.000 - 9.999 x mm3, y solo el 1,2% menor a 4.000 x mm3.
Gráfico No. 11
Fuente: Cuadro No. 11
RECUENCTO DE GLOBULOS BLANCOS mm3
15.00012.50010.0007.5005.0002.500
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =7.765
Desviación típica =2.025
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 104
RECUENCTO DE GLOBULOS BLANCOS mm3
15.000
12.500
10.000
7.500
5.000
2.500
248
113
200
145
196
214
Cuadro No. 12
VALOR DE PLAQUETAS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
Plaquetas (mm3)
Media 304.976,00
Mediana 310.000,00
Moda 271.000
Desv. Típ. 68935,447
Varianza 4752095807,229
Mínimo 142.000
PLAQUETAS (mm3) Frecuencia Porcentaje
<150.000 1 0,4
150.000 - 249.999 46 18,4
250.000 - 349.999 151 60,4
350.000 - 449.999 49 19,6
>449.999 3 1,2
Total 250 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 105
Máximo 646.000
El 60,4% de los adolescentes tienen un valor plaquetario de 250.000 - 349.999 x mm3, y el 0,4% un valor menor a 150.000 x mm3.
Gráfico No. 12
Fuente: Cuadro No. 12
Recuento de plaquetas
700000600000500000400000300000200000100000
Frec
uenc
ia
50
40
30
20
10
0
Histograma
Media =304976
Desviación típica
=68935.447
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 106
Recuento de plaquetas
700000
600000
500000
400000
300000
200000
100000
219
Cuadro No. 13
VALOR DE NEUTRÒFILOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
NEUTRÓFILOS (%) Frecuencia Porcentaje
<21 1 0,4
21 – 30 5 2
31 – 40 21 8,4
41 – 50 89 35,6
51 – 60 90 36,0
61 – 70 33 13,2
>70 11 4,4
Total 250 100,0
NEUTRÓFILOS (%)
Media 52,11136
Mediana 52,0
Moda 50,0 Desv. Típ. 10,87989807
Varianza 118,3721821
Mínimo 1,94
Máximo 85,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 107
El 71,6% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial los neutrófilos se mantienen entre 41 - 60%, mientras que en el 0,4 % de los estudiantes se observa un porcentaje menor a 21%.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 108
Gráfico No. 13
Fuente: Cuadro No. 13
NEUTROFILOS %
80.060.040.020.0
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =52.22
Desviación típica =10.
507
N =250
NEUTROFILOS %
80.0
60.0
40.0
20.0
39
7079
15
29
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 109
Cuadro No. 14
VALOR DE LINFOCITOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
El 40,8% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial los linfocitos se mantienen entre 31 - 40%, mientras que en el 1,2% de los estudiantes se observa un porcentaje menor a 11. %.
Gráfico No. 14
LINFOCITOS
(%)
Frecuencia
Porcentaje
<11 3 1,2 11 – 20 13 5,2 21 – 30 37 14,8 31 – 40 102 40,8 41- 50 77 30,8
>50 18 7,2 Total 250 100,0
LINFOCITOS (%)
Media 37,49404
Mediana 37,5
Moda 37,0
Desv. Típ. 10,18748362
Varianza 103,7848226
Mínimo 7,0
Máximo 73,6
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 110
Fuente: Cuadro No. 14
LINFOCITOS %
60.040.020.00.0
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =37.46
Desviación típica =10.09
N =250
LINFOCITOS %
60.0
40.0
20.0
0.0
82214
41
29
79
27
81
3970
Cuadro No. 15
VALOR DE MONOCITOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA - 2011.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 111
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
MONOCITOS (%)
Media 4,76916
Mediana 5
Moda 1
Varianza 7,48155391
Desv. Típ. 2,735242934
Mínimo 0,31
Máximo 15,5
El 34,8% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial los monocitos se mantienen en un rango menor al 4%, mientras que en el 16,8% de los estudiantes se observa un porcentaje mayor a 7%.
Gráfico No. 15
Fuente: Cuadro No. 15
Monocitos
(%)
Frecuencia
Porcentaje
< 4 87 34,8
4 – 5 69 27,6
6 – 7 52 20,8
> 7 42 16,8
Total 250 100,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 112
MONOCITOS %
20.0015.0010.005.000.00
Frec
uenc
ia
50
40
30
20
10
0
Histograma
Media =4.77
Desviación típica =2.735
N =250
MONOCITOS %
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
214
Tabla No. 16
VALOR DE BASÓFILOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
BASOFILOS (%) Frecuencia Porcentaje
<1 95 38,0
1 – 2 139 55,6
>2 16 6,4
Total 250 100,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 113
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 55,6% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial, los basófilos se mantienen entre 1 - 2%, mientras que en el 38% de los estudiantes se observa un porcentaje menor a 1%.
Gráfico No. 16
Fuente: Cuadro No. 16
BASÓFILOS (%)
Media 1,269516
Mediana 1,0
Varianza 1,963885391
Desv. Típ. 1,401386953
Mínimo 0,1
Máximo 10,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 114
BASOFILOS %
10.008.006.004.002.000.00
Frec
uenc
ia
120
100
80
60
40
20
0
Histograma
Media =1.27
Desviación típica =1.401
N =250
BASOFILOS %
10.00
8.00
6.00
4.00
2.00
0.00
2
5557
214
7
5
10
53
81
113
44
221
42
50
101
109
12791
93
96
105
227 205178
162
150 153
232106
Cuadro No. 17
VALOR DE EOSINÓFILOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO
REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA, 2011
EOSINÓFILOS Frecuencia Porcentaje
0 – 1 119 47,6
2 – 3 81 32,4
4 – 5 12 4,8
>5 38 15,2
Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 115
EOSINOFILOS %
Media 2,8615
Mediana 2,135
Moda 0,48
Desv. Típ. 2,5793
Varianza 6,6529
Mínimo 0,13
Máximo 12,4
El 47,6 % de los adolescentes estudiados en la formula diferencial los eosinófilos son menores al 1%, mientras que en el 15,2% de los estudiantes se observa un porcentaje mayor al 5%.
Gráfico No. 17
Fuente: Cuadro No. 17
EOSINOFILOS %
12.0010.008.006.004.002.000.00
Frec
uenc
ia
60
50
40
30
20
10
0
Histograma
Media =2.86
Desviación típica =2.579
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 116
EOSINOFILOS %
12.00
10.00
8.00
6.00
4.00
2.00
0.00
6129
56179 84
207
33
156
73196
103226
105
228
114
237
123
246
Cuadro No. 18
VALOR DE GLUCOSA EN LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
GLUCOSA mg/dl
Media 86,06
Mediana 85,0
Moda 95,0
Desv. Típ. 10,36911153
Mínimo 61,0
Máximo 113,0
GLUCOSA (mg/dl) Frecuencia Porcentaje
<71 3 1,2
71 - 80 87 34,8
81 - 90 68 27,2
91 - 100 91 36,4
>110 1 0,4
Total 250 100,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 117
De los adolescentes estudiados el 62,0% tienen el valor de glucosa entre 71 - 90mg/dl, el 1,2 % menor a 71mg/dl y el 0,4% de los estudiantes un valor mayor a110 mg/dl.
Gráfico No. 18
Fuente: Cuadro No. 18
GLUCOSA mg/dl
12011010090807060
Frec
uenc
ia
40
30
20
10
0
Histograma
Media =86.06
Desviación típica =10.
369
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 118
GLUCOSA mg/dl
120
110
100
90
80
70
60
Cuadro No. 19
VALOR DE ASTO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
ASTO (UI/l)
Frecuencia
Porcentaje
<200
218
87,2
200
1
0,4
>200
31
12,4
Total
250
100,0
ASTO (UI/l)
Media 112,522
Mediana 76,45
Varianza 18443,31963
Desv. Típ. 135,8061841
Mínimo 3,2
Máximo 1208,3
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 119
El 87,2 % de los estudiantes secundarios mantienen su valor de ASTO menor a 200 UI/l, y el 12,4% un valor de ASTO mayor a 200UI/l.
Gráfico No. 19
Fuente: Cuadro No. 19
ASTO UI/ml
1200.01000.0800.0600.0400.0200.00.0
Frec
uenc
ia
120
100
80
60
40
20
0
Histograma
Media =112.52
Desviación típica =135.
806
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 120
ASTO UI/ml
1200.0
1000.0
800.0
600.0
400.0
200.0
0.0
125
174
236
122
245
3429
62
51
194
151
192
162
200
Cuadro No. 20
COLOR DE LA ORINA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÙBLICA DE ISRAEL, SECCIÒN NOCTURNA. CUENCA 2011.
COLOR (orina) Frecuencia Porcentaje
Amarillo 230 93,6
Pajizo 13 6,4
Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
Gráfico No. 20
Fuente: Cuadro No. 20
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 121
El 93,6% de los adolescentes estudiados presentan orina de color amarillo, y el 6,4% de color pajizo.
Cuadro No. 21
ASPECTO DE LA ORINA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÙBLICA DE ISRAEL, SECCIÒN NOCTURNA. CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 93,6% de los adolescentes estudiados presentan orina de color amarillo, y el 1,6% presenta un aspecto turbio.
Gráfico No. 21
Fuente: Cuadro No. 21
ASPECTO
(orina)
Frecuencia
Porcentaje
Transparente 234 93,6
Lig. Turbio 12 4,8
Turbio 4 1,6
Total 250 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 122
ASPECTO DE LA ORINA
3.532.521.510.5
Frec
uenc
ia
400
300
200
100
0
Histograma
Media =1.07
Desviación típica =0.303
N =249
Tabla No. 22
DENSIDAD URINARIA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÙBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Densidad en orina Frecuencia Porcentaje
1.001 - 1.010 6 2,4
1.011 – 1020 204 81,6
1.021 - 1.030 40 16,0
Total 250 100,0
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 estudiantes el 81,6% tienen su densidad urinaria entre 1.011 - 1.020, y el 2,4% una densidad de 1.001 - 1.010.
Densidad (orina)
Media 1,018 Mediana 1,020
Moda 1,015 Desv. Típ. 0,004682703 Varianza 2,19277E-05 Mínimo 1,010 Máximo 1,030
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 123
Gráfico No 22
Fuente: Cuadro No. 22
DENSIDAD EN ORINA
1.0351.0301.0251.0201.0151.0101.005
Frec
uenc
ia
120
100
80
60
40
20
0
Histograma
Media =1.019
Desviación típica =0.005
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 124
DENSIDAD EN ORINA
1.030
1.025
1.020
1.015
1.010
196213
219221
Cuadro No. 23
PH EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
pH (orina)
Frecuencia
Porcentaje
5.0 - 6.0 217 87,4
6.1 - 7.0 33 12,6
Total 250 100
PH (orina)
Media 5,528
Mediana 5,0
Moda 5,0
Desv. Típ. 0,625123281
Varianza 0,390779116
Mínimo 5,0
Máximo 7,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 125
De los 250 adolescentes estudiados el 87,4% tienen el pH acido entre 5,0 - 6,0, y el 12,6% un PH de 6,1 - 7,0.
Grafico No. 23
Fuente: Cuadro No. 23
PH RECODIFICADO
7.507.006.506.005.505.004.50
Frec
uenc
ia
125
100
75
50
25
0
Histograma
Media =5.53
Desviación típica =0.625
N =250
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 126
PH DE ORINA
3.0
2.8
2.6
2.4
2.2
2.0
223
232242244
Cuadro No.24
GLUCOSA EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presenta glucosa en orina.
Cuadro No.25
PROTEINAS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Glucosa en orina
Frecuencia
Porcentaje
Negativo
250
100
Proteínas en orina
Frecuencia
Porcentaje
Negativo
250
100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 127
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan proteínas en orina.
Cuadro No.26
UROBILINÓGENO EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan Urobilinógeno en orina.
Cuadro No.27
BILIRRUBINA EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO
TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no manifiestan bilirrubinas en la orina.
Urobilinògeno en orina
Frecuencia
Porcentaje
Negativo
250
100
Bilirrubina en orina
Frecuencia
Porcentaje
Negativo
250
100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 128
Cuadro No.28
CUERPOS CETÓNICOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan cuerpos cetónicos en orina.
Cuadro No.29
NITRITOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011. Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentaron nitritos en la muestra de orina.
Cuadro No.30
SANGRE EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO
REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.
Cuerpos cetónicos en orina
Frecuencia Porcentaje
Negativo
250
100
Nitritos en orina
Frecuencia Porcentaje
Negativo
250
100
Sangre en orina
Frecuencia Porcentaje
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 129
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 96,8% presentan un valor negativo, y el 3,2% positivo para sangre en la orina.
Gráfico No.30
Fuente: cuadro No.30
Cuadro No.31
HEMOGLOBINA EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.
Positivo 8 3,2
Negativo 242 96,8
Total 250 100
Hemoglobina en orina Frecuencia
Porcentaje
Negativo
250
100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 130
De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan Hemoglobina en la orina.
Tabla No.32
LEUCOCITOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011.
Leucocitos en orina
Frecuencia
Porcentaje
Positivo 3 1,2 Negativo 247 98,8
Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. Los 250 adolescentes estudiados el 1,2% presentaron leucocitos en orina, y el 98,8% no presentan leucocitos.
Gráfico No. 32
Fuente: cuadro No.32
Cuadro No.33
LEUCOCITOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA - 2011.
Leucocitos (sedimento)
Frecuencia Porcentaje
Ausentes 130 51,8 0 – 2 98 39,0 3 – 5 10 4,0 6 – 8 9 3,6 >11 3 1,6
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 131
Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 51,8% no presentan leucocitos por campo, y el 1,6% presentan más de 11 leucocitos por campo.
Gráfico No.33
Fuente: Cuadro No. 33
Cuadro No.34
CÉLULAS EPITELIALES EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL,
SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.
Celulas epiteliales en sedimento
Frecuencia Porcentaje
Ausentes 91 36,4 + 143 57,2
++ 8 3,2 +++ 8 3,2
Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 57,2% de los adolescentes estudiados presentan una cruz de células epiteliales en sedimento, mientras que el 3,2% presentan tres cruces de células.
Gráfico No.34
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 132
Fuente: Cuadro No. 34
Cuadro No.35
HEMATIES EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA - 2011.
Hematíes en sedimento Frecuencia Porcentaje
Ausentes 121 48,2 0 – 2 114 45,4 3 – 5 7 2,8 6 – 8 8 3,6 Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 48,2 % no presentaron eritrocitos por campo, y el 3,6% presentan de 6 - 8 eritrocitos por campo.
Gráfico No.35
Fuente: Cuadro No.35
Cuadro No. 36
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 133
BACTERIAS EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA - 2011.
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 51,0% no presentan bacterias en sedimento urinario, mientras que el 0,4% presentan 3 cruces de bacterias.
Gráfico No.36
Fuente: Cuadro No. 36
Cuadro No.37
CRISTALES EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.
CUENCA 2011
Cristales en sedimento Frecuencia Porcentaje
Ausentes 223 89,2
Oxalato de calcio 8 3,2
Acido úrico 7 2,8
Uratos amorfos 12 4,8
Total 250 100
Bacterias en Sedimento
Frecuencia Porcentaje
Ausentes 127 51,0
+ 120 47,8
++ 2 0,8
+++ 1 0,4
Total 250 100,0
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 134
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 89,2 % no presentaron cristales en el sedimento urinario, y el 10,8% presentan cristales de varias tipos.
Gráfico No. 37
Fuente: Cuadro No. 37
Cuadro No.38
PRESENCIA DE PARÁSITOS EN HECES DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN
NOCTURNA. CUENCA 2011
PARASITOS Frecuencia Porcentaje
Positivo 87 34,8
Negativo 163 65,2
Total 250 100
Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 65,2% no presentaron parásitos.
Gráfico No. 38
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 135
Fuente: Cuadro No. 38
Cuadro No.39
QUISTES DE PARASITOS EN HECES DE LOS ESTUDIANTES DEL
COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.
QUISTES Frecuencia Porcentaje
Ausente 179 71,6 Ameba Histolítica 60 24,0
Ameba Cóli 10 4,0 Giardia Lamblia 1 0,4
Total 250 100,0
Fuente: Datos obtenidos Autores: Los investigadores De los 250 adolescentes estudiados el 71.6% no presentan parásitos, el 28% presenta quistes de amebas Cóli e Histolítica, y el 0,4% quiste de Giardia Lamblia.
Gráfico No. 39
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 136
Fuente: Cuadro No. 39
Cuadro No. 40
RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉNICO REPÚBLICA
DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA-2011.
G. ROJOS – EDAD
GLÓBULOS ROJOS
<4.000.000 4.000.000 –
4.499.999
4.500.000 –
4.999.999
5.000.000 –
5.499.999
5.500.000 –
5.999.999
>5.999.999 Total
EDAD (años)
# % # % # % # % # % # % # %
12 0 0 1 11,1 2 22,2 5 55,5 1 11,2 0 0 9 100
13 0 0 2 11,7 2 11,7 9 52,9 4 23,7 0 0 17 100
14 1 3,3 3 10.0 7 23,3 14 46,6 5 16,8 0 0 30 100
15 2 4,4 3 6,6 18 40.0 15 33,3 5 11,1 2 4,6 45 100
16 3 4,6 5 7,6 19 29,2 23 35,3 14 21,5 1 1,5 65 100
17 1 1,5 5 5,9 24 28,5 37 44,0 14 16,6 3 3,5 84 100
Total 7 2,8 19 7,6 72 28,8 103 41,2 43 17,2 6 2,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 55,5 % de los adolescentes estudiados tienen 12 años de edad, tienen un valor de glóbulos rojos de 5.000.000 –5.499.000 x mm3, el 2,8% un
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 137
valor de glóbulos rojos menor a 4.000.000 x mm3, y el 2,4% un valor mayor a 5.999.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,924 (No Significativo).
Gráfico No. 40
Fuente: Cuadro No. 40
Cuadro No. 41
RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA
DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
G. ROJOS – TALLA
GLÓBULOS ROJOS
<4.000.000 4.000.000 4.499.999
4.500.000 4.999.999
5.000.000 –
5.499.999
5.500.000 5.999.999
>5.999.999 Total
TALLA(metros) # % # % # % # % # % # % # %
1.32 – 1.40 0 0 1 9.0 6 54,5 3 27,2 1 9.0 0 0 11 100
1.41 - 1.50 3 4,1 6 8,3 19 26,3 30 41,6 14 19,4 0 0 72 100
1,51 - 1,60 2 1,6 11 9,3 42 35,5 43 36,4 18 15,2 2 1,6 118 100
>1.60 2 4 1 2.0 5 10,2 27 55,1 10 20,4 4 8,1 49 100
Total 7 2,8 19 7,6 72 28,8 103 41,2 43 17,2 6 2,4 250 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 138
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 54,5 % de los adolescentes estudiados miden entre 1,32 a 1,40 metros, con un valor de glóbulos rojos de 4.500.000 - 4.999.999 x mm3, el 2,8% de los estudiantes presentan un valor de glóbulos rojos menor a 4.000.000 x mm3, y el 2,4% un valor superior a 5.999.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0 ,020 (Significativo).
Gráfico No. 41
Fuente: Cuadro No. 41
Cuadro No. 42
RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÈCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
G. ROJOS – PESO
GLÓBULOS ROJOS
<4.000.000 4.000.000
4.499.999
4.500.000
4.999.999
5.000.000
5.499.999
5.500.000 5.999.999
>5.999.999 Total
PESO(kg) # % # % # % # % # % # % # %
30 – 40 0 0 0 0 0 0 2 50.0 2 50.0 0 0 4 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 139
41 – 50 4 5.0 9 11,2 21 26,2 35 43,7 11 13,7 0 0 80 100
51 – 60 2 2,1 5 5,3 30 32,2 36 38,7 18 19,3 2 2,1 93 100
>60 1 1,3 5 6,7 21 28,7 30 16,4 12 16,4 4 5,4 73 100
Total 7 2,8 19 7,6 72 28,8 103 41,2 43 17,2 6 2,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 50,0% de los adolescentes estudiados con un peso de 30 a 40 kg, tienen un valor de glóbulos rojos de 5.000.000 - 5.999.999 x mm3, el 2,8% con un valor menor a 4.000.000 x mm3, y el 2,4% un valor superior a 5.999.999 x mm
3.
Chi – cuadrado: 0,430 (Significativo).
Gráfico No. 42
Fuente: Cuadro No. 42
Cuadro No. 43
RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÈCNICO REPÙBLICA
DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
GLÓBULOS BLANCOS – EDAD
GLÓBULOS BLANCOS
<4.000 4.000 - 6.000 - 8.000 - >9.999 Total
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 140
5.999 7.999 9.999
EDAD (años) # % # % # % # % # % # %
12 0 0 1 11,1 4 44,4 3 33,3 1 11.1 9 100
13 0 0 2 11,7 10 58,8 3 17,6 2 11,7 17 100
14 1 3,3 2 6,6 14 46,6 8 26,6 5 16,6 30 100
15 1 2,2 9 20.0 16 35,5 11 24,4 8 17,7 45 100
16 1 1,5 18 27,6 23 35,3 14 21,5 9 13,8 65 100
17 0 0 9 10,7 39 46,4 28 33,3 8 9,5 84 100
Total 3 1,2 41 16,4 106 42,4 67 26,8 33 13,2 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 58,8% de los adolescentes de 13 años tienen un valor de glóbulos blancos de 6.000 – 7.999 x mm3 , el 1,2% de los adolescentes tienen un valor de glóbulos blancos inferior a 4.000 x mm3, y el 13,2% un valor superior a 9.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,484 (No Significativo).
Gráfico No. 43
Fuente: Cuadro No. 43
Cuadro No.44
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 141
RELACION DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
GLÓBULOS BLANCOS – TALLA
GLÓBULOS BLANCOS
<4.000 4.000 - 5.999
6.000 - 7.999
8.000 - 9.999
>9.999 Total
TALLA(metros) # % # % # % # % # % # %
1.32 – 1.40 0 0 1 9.0 3 27,2 5 45,4 2 18,1 11 100
1.41 - 1.50 0 0 6 8,3 34 47,2 21 29,1 11 15,2 72 100
1,51 - 1,60 2 1,6 26 22.0 44 37,2 32 271 14 11,8 118 100
>1.60 1 2.0 8 16,3 25 51.0 9 18,3 6 12,2 49 100
Total 3 1,2 41 16,4 106 42,4 67 26,8 33 13,2 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Las autoras. El 51,0 % de los adolescentes con una talla mayor a 160 metros mantienen un valor de glóbulos blancos de 6.000 - 7.999 x mm3, el 1,2% tienen un valor de glóbulos blancos menor a 4.000 x mm3, y el 13,2% un valor superior a 9.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,361 (No Significativo).
Gráfico No. 44
Fuente: Cuadro No. 44
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 142
Cuadro No.45 RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA
DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.
GLÓBULOS BLANCOS – PESO
GLÓBULOS BLANCOS
<4.000 4.000 - 5.999
6.000 - 7.999
8.000 - 9.999
>9.999 Total
PESO(kg) # % # % # % # % # % # %
30 – 40 0 0 0 0 1 25.0 2 2,9 1 25.0 4 100
41 – 50 2 2,5 15 18,7 32 40.0 23 28,7 8 10.0 80 100
51 – 60 0 0 15 16,1 48 51,6 18 19,3 12 12,9 93 100
>60 1 1,3 11 15.0 25 34,2 24 32,8 12 16,4 73 100
Total 3 1,2 41 16,4 106 42,4 67 26,8 33 13,2 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Las autoras. El 51,6 % de los adolescentes con un peso de 51 - 60 kg, tienen un valor de glóbulos blancos de 6.000 - 7.999 x mm3, el 1,2% tienen un valor de glóbulos blancos inferior a 4.000 x mm3, y el 13,2% un valor superior a 9.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,430 (No Significativo)
Gráfico No. 45
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 143
Fuente: Cuadro No.45
Cuadro No. 46
RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
HEMATOCRITO – EDAD
HEMATOCRITO
<35 35 – 39 40 – 44 45 - 49 50 - 54 >54 TOTAL
EDAD (años) # % # % # % # % # % # % # %
12 0 0 2 22,2 5 55,5 2 22,2 0 0 0 0 9 100
13 0 0 3 17,6 9 52,9 3 17,6 2 11,7 0 0 17 100
14 1 3,3 4 13,3 15 50 9 30 1 3,3 0 0 30 100
15 3 6,6 5 11,1 19 42,2 16 35,5 2 4,4 0 0 45 100
16 3 4,6 8 12,3 22 33,8 30 46,1 1 1,5 1 1,5 65 100
17 3 3,5 10 11,9 36 42,8 27 32,1 8 9,5 0 0 84 100
Total 10 4,0 32 12,8 106 42,4 87 34,8 14 5,6 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 55,5% de los adolescentes de 12 años, tienen un valor de Hematocrito de 40 - 44%, el 4% de los estudiantes presentan un valor de hematocrito inferior a 35%, y el 0,4% un valor superior a 54%.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 144
Chi – cuadrado: 0,789 (No Significativo)
Gráfico No. 46
Fuente: Cuadro No. 46
Cuadro No. 47
RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON TALLA EN
ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÒN NOCTURNA, CUENCA 2011.
HEMATOCRITO – TALLA
HEMATOCRITO
<35 35 – 39 40 – 44 45 - 49 50 - 54 >54 TOTAL
TALLA(metros) # % # % # % # % # % # % # %
1.31 – 1.40 0 0,0 2 18,1 6 54,5 2 18,1 1 9,0 0 9,0 11 100
1.41 - 1.50 3 4,1 11 15,2 33 45,8 22 30,5 3 4,1 0 4,1 72 100
1,51 - 1,60 5 4,2 17 14,4 53 44,9 39 33,0 4 3,3 0 3,3 118 100
>1.60 2 4,0 2 4,0 14 28,5 24 48,9 6 12,2 1 12,2 49 100
Total 10 4,0 32 12,8 106 42,4 87 34,8 14 5,6 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 145
El 54,5 % de los adolescentes con una talla de 1,31 - 1,40 metros, tienen un valor de hematocrito de 40 - 44%, el 4% de los estudiantes presentan un valor de hematocrito inferior a 35%, y el 0,4% un valor superior a 54%. Chi – cuadrado: 0,142 (No Significativo)
Gráfico No. 47
Fuente: Cuadro No. 47
CUADRO No. 48
RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
HEMATOCRITO – PESO
HEMATOCRITO
<35 35 – 39 40 – 44 45 – 49 50 - 54 >54 TOTAL
PESO(kg) # % # % # % # % # % # % # %
31 – 40 0 0 0 0 2 50 2 50 0 0 0 0 4 100
41 – 50 6 7,5 9 11,2 39 48,7 24 30 2 2,5 6 7,5 80 100
51 – 60 2 2,1 11 11,8 38 40,8 35 37,6 7 7,5 2 2,1 93 100
>60 2 2,7 12 16,4 27 36,9 26 35,6 5 6,8 1 1,3 73 100
Total 10 4,0 32 12,8 106 2,4 87 34,8 14 5,6 1 0,4 250 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 146
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 50 % de los adolescentes con un peso de 31 - 40 kg, tienen un valor de hematocrito de 40 – 44%, el 4% de los estudiantes presentan un valor de hematocrito inferior a 35%, y el 0,4% un valor superior a 54%. Chi – cuadrado: 0,647 (No Significativo)
Gráfico No. 48
Fuente: Cuadro No. 48
CUADRO No. 49
RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
HEMOGLOBINA – EDAD
HEMOGLOBINA
8 – 10 11 – 13 14 – 16 17 – 19 >19 TOTAL
EDAD (años) # % # % # % # % # % # %
12 1 11,1 1 11,1 6 66,6 1 11,1 0 0 9 100
13 0 0 3 17,6 12 70,5 2 2 0 0 17 100
14 0 0 7 23,3 21 70 2 6,6 0 0 30 100
15 2 4,4 9 20 31 68,8 3 6,6 0 0 45 100
16 2 3 13 20 46 70,7 4 6,1 0 0 65 100
17 1 1,1 15 17,8 60 71,4 8 9,5 0 0 84 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 147
Total 6 2,4 48 19,2 176 70,4 20 8,0 0 0 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 71.4 % de los adolescentes de 17 años, presentan un valor de hemoglobina de 14 - 16 gr%, el 2,4% de los adolescentes presentan un valor de hemoglobina de 8 - 10 gr%. Chi – cuadrado: 0,950 (No Significativo).
Gráfico No. 49
Fuente: Cuadro No. 49
CUADRO No. 50
RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON TALLA EN
ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
HEMOGLOBINA – TALLA
HEMOGLOBINA
8 – 10 11 – 13 14 – 16 17 – 19 >19 TOTAL
TALLA(metros) # % # % # % # % # % # %
1.31 – 1.40 0 0 3 27,2 7 63,6 1 9 0 0 11 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 148
1.41 - 1.50 2 2,7 15 20,8 52 72,2 3 4,1 0 0 72 100
1,51 - 1,60 4 3,3 26 22 81 68,6 7 5,9 0 0 118 100
>1.60 0 0 4 8,1 36 73,4 9 18,3 0 0 49 100
Total 6 2,4 48 19,2 176 70,4 20 8,0 0 0 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 73,4 %de los adolescentes con una talla superior a 1.60 metros, mantienen un valor de hemoglobina de 14 - 16 gr%, el 2,4% de los adolescentes presentan un valor de hemoglobina de 8 - 10 gr%. Chi – cuadrado: 0,096 (No Significativo).
Gráfico No. 50
Fuente: Cuadro No. 50
CUADRO No. 51
RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON PESO EN
ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
HEMOGLOBINA – PESO
HEMOGLOBINA
8 - 10 11 – 13 14 – 16 17 - 19 >19 TOTAL
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 149
PESO(kg) # % # % # % # % # % # %
31 – 40 0 0 0 0 4 100 0 0 0 0 4 100
41 – 50 4 5 20 25 54 67,5 2 2,5 0 0 80 100
51 – 60 1 1 15 16,1 67 72 10 10,7 0 0 93 100
>60 1 1,3 13 17,8 51 69,8 8 10,9 0 0 73 100
Total 6 2,4 48 19,2 176 70,0 20 8,0 0 0,0 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 100,0% de los adolescentes con un peso de 31 - 40 kg, mantienen un valor de hemoglobina de 14 - 16 gr%, el 2,4% de los adolescentes presentan un valor de hemoglobina de 8 - 10 gr%. Chi – cuadrado: 0,230 (No Significativo).
Gráfico No. 51
Fuente: Cuadro No. 51
CUADRO No. 52
RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
GLUCOSA – EDAD
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 150
GLUCOSA
<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL
EDAD (años) # % # % # % # % # % # %
12 0 0 3 33,3 3 33,3 3 33,3 0 0 9 100
13 0 0 5 29,4 4 23,5 8 47,0 0 0 17 100
14 0 0 8 26,6 8 26,6 14 46,6 0 0 30 100
15 0 0 19 42,1 11 24,4 14 31,1 1 2,2 45 100
16 2 3 2 3,0 20 30,7 20 30,7 0 0 65 100
17 1 1,1 29 34,5 22 26,1 32 38,0 0 0 84 100
Total 3 1,2 87 34,8 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 47,0% de los adolescentes de 13 años mantienen un valor de glucosa de 91 - 100mg/dl, el 1,2% de los adolescentes presentan un valor de glucosa inferior a 71mg/dl, y el 0,4% presentan un valor superior a 110mg/dl. Chi – cuadrado: 0,909 (No Significativo).
Gráfico No. 52
Fuente: Cuadro No. 52
CUADRO No. 53
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 151
RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
GLUCOSA – TALLA
GLUCOSA
<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL
TALLA(metros) # % # % # % # % # % # %
1.32 – 1,40 0 0 3 27,2 3 27,2 5 45,4 0 0 11 100
1.41 - 1.50 1 1,3 26 26,6 18 25 27 37,5 0 0 72 100
1,51 - 1,60 2 1,6 39 33 32 27,1 45 38,1 0 0 118 100
>1,60 0 0 19 38,7 15 30,6 14 28,5 1 2 49 100
Total 18 7,2 72 87,0 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 45,4% de los adolescentes con una talla de 1,32 - 1,40 mantienen un valor de glucosa de 91 - 100mg/dl, el 7,2% de los adolescentes presentan un valor de glucosa inferior a 71mg/dl, y el 0,4% presentan un valor superior a 110mg/dl. Chi – cuadrado: 0,846 (No Significativo)
Gráfico No. 53
Fuente: Cuadro No. 53
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 152
CUADRO No. 54
RELACIÓN DE VALORES DE GLUCOSA CON PESO EN
ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
GLUCOSA – PESO
GLUCOSA
<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL
PESO(kg) # % # % # % # % # % # %
30 – 40 0 0 2 50 2 50 0 0 0 0 4 100
41 – 50 0 0 26 32,5 25 31,2 29 36,2 0 0 80 100
51 – 60 2 2,1 30 32,2 27 29 34 36,5 0 0 93 100
>60 1 1,3 29 39,7 14 19,1 28 38,3 1 1,3 73 100
Total 3 1,2 87 34,8 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos Autores: Los investigadores. El 100,0 % de los adolescentes con un peso de 30 - 40kg, mantienen un valor de glucosa de 71 - 90mg/dl, el 1,2% de los adolescentes presentan un valor de glucosa inferior a 71mg/dl, y el 0,4% presentan un valor superior a 110mg/dl. Chi – cuadrado: 0,630 (No Significativo).
Gráfico No. 54
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 153
Fuente: Cuadro No. 54
CUADRO No. 55
RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
ASTO – EDAD
ASTO
<200 200 >200 TOTAL
EDAD (años) # % # % # % # %
12 7 77,7 0 0 2 22,2 9 100
13 14 82,3 0 0 3 17,6 17 100
14 26 86,6 0 0 4 13,3 30 100
15 37 82,2 0 0 8 17,7 45 100
16 61 93,8 0 0 4 6,1 65 100
17 73 86,9 1 1,1 10 11,9 84 100
Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos Autores: Los investigadores. El 93,8 % de los adolescentes de 16 años tienen un valor de ASTO menor a 200U/L, y el 22,2% de estudiantes de 12 años un ASTO mayor a 200 U/l.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 154
Chi – cuadrado: 0,745 (No Significativo).
Gráfico No. 55
Fuente: Cuadro No. 55
CUADRO No. 56
RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
ASTO – TALLA
ASTO
<200 200 >200 TOTAL
TALLA(metros) # % # % # % # %
1.32 - 1.40 10 90,9 0 0 1 9 11 100
1.41 - 1.50 62 86,1 1 1,3 9 12,5 72 100
1,51 - 1,60 103 87,2 0 0 15 12,7 118 100
>1.60 43 87,5 0 0 6 12,2 49 100
Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 155
El 100% de los adolescentes con un peso de 30 - 40 kg, tienen un valor de ASTO menor a 200 UI/l, el 13,7% de los estudiantes con un peso de 41 - 50 kg, un valor de ASTO mayor a 200 UI/l. Chi – cuadrado: 0,590 (No Significativo).
Gráfico No. 56
Fuente: Cuadro No. 56
CUADRO No. 57
RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON TALLA EN
ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
ASTO – TALLA
ASTO
<200 200 >200 TOTAL
TALLA(metros) # % # % # % # %
1.32 - 1.40 10 90,9 0 0 1 9 11 100
1.41 - 1.50 62 86,1 1 1,3 9 12,5 72 100
1,51 - 1,60 103 87,2 0 0 15 12,7 118 100
>1.60 43 87,5 0 0 6 12,2 49 100
Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 156
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 90,9% de los adolescentes con una talla de 1.32 - 1.40 metros tienen un valor de ASTO menor a 200 UI/l, y el 12,7% de los estudiantes con una talla de 1.41 - 1.50 un valor de ASTO mayor a 200 UI/L. Chi – cuadrado: 0,856 (No Significativo).
Gráfico No. 57
Fuente: Cuadro No. 57
CUADRO No. 58
REALCIÓN DE VALORES DE GLUCOSA CON SEXO EN
ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
GLUCOSA – SEXO
GLUCOSA
<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL
SEXO # % # % # % # % # % # %
Masculino 1 0,7 46 34,3 38 28,3 48 35,8 1 0,7 134 100
Femenino 2 1,7 41 35,3 30 25,8 43 37,0 0 0 116 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 157
Total 3 1,2 87 34,8 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 37% de los adolescentes de sexo femenino tienen un valor de glucosa de 91 - 100 mg/dl, y el 0,7% de los adolescentes de sexo masculino un valor de glucosa mayor a 110 mg/dl. Chi – cuadrado: 0,817 (No Significativo).
Gráfico No. 58
Fuente: Cuadro No. 58
CUADRO No. 59
REALCIÓN DE VALORES DE ASTO CON SEXO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL,
SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
ASTO – SEXO
ASTO
<200 200 >200 TOTAL
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 158
SEXO # % # % # % # %
Masculino 118 88,0 1 0,7 15 11,1 134 100
Femenino 100 86,2 0 0 16 13,7 116 100
Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 88% de los adolescentes de sexo masculino tienen un valor de ASTO inferior a 200 UI/l, el 13,7% de los estudiantes de sexo femenino tienen un valor de ASTO mayor a 200 UI/l. Chi – cuadrado: 0,540 (No Significativo).
Gráfico No. 59
Fuente: Cuadro No. 59
CUADRO No. 60
REALCIÓN DE VALORES DE SANGRE EN ORINA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2001.
SANGRE EN ORINA - EDAD
SANGRE EN ORINA
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 159
Positivo Negativo TOTAL
EDAD (años) # % # % # %
12 0 0 9 100 9 100
13 0 0 17 100 17 100
14 1 3,3 29 96,6 30 100
15 2 4,4 43 95,5 45 100
16 1 1,5 64 98,4 65 100
17 4 4,7 80 95,2 84 100
Total 8 3,2 242 96,8 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 3,2% de los adolescentes de 12 - 17 años de edad, presentan un resultado positivo para sangre en orina. Chi – cuadrado: 0,802 (No Significativo).
Gráfico No. 60
Fuente: Cuadro No. 60
CUADRO No. 61
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 160
REALCIÓN DE VALORES DE BACTERIAS EN ORINA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.
BACTERIAS EN SEDIMENTO - EDAD
BACTERIAS EN SEDIMENTO
Ausentes + ++ + + + TOTAL
EDAD (años) # % # % # % # % # %
12 3 33,3 5 55,5 1 11,1 0 0 9 100
13 7 41,1 10 58,8 0 0 0 0 17 100
14 14 46,6 16 53,3 0 0 0 0 30 100
15 23 51,1 22 48,8 0 0 0 0 45 100
16 40 61,5 25 38,4 0 0 0 0 65 100
17 40 47,6 42 50 1 1,1 1 1,1 84 100
Total 127 50,8 120 48 2 0,8 1 0,4 250 100
Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 0,4% de los adolescentes de 12 - 17 años de edad, presentan tres cruces de bacterias en sedimento urinario. Chi – cuadrado: 0,173 (No Significativo).
Gráfico No. 61
Fuente: Cuadro No. 61
5.2. DISCUSIÓN.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 161
Se determinaron valores bioquímicos, hematológicos, elemental
microscópico de orina y examen coproparasitario en 23.607 estudiantes
de 12 a 17 años pertenecientes al área de influencia del Centro de Salud
No.2 de la ciudad de Cuenca de diferente sexo, edad, peso y talla,
obteniéndose los siguientes resultados:
Dentro del estudio Hematológico se observó la relación de varios
parámetros, obteniéndose los siguientes valores:
El valor promedio de glóbulos rojos obtenidos en nuestra investigación
varía de 5.0 - 5.5 millones x mm3,en relación a la edad, talla y peso
considerados, mientras que los valores de Glóbulos Rojos obtenidos en
otras realidades son los siguientes: en Perú determinaron los valores
referenciales de glóbulos rojos en hombres: 4.5 - 5.8 millones x mm3; en
Perú se registran valores de 3,9 - 6,0 millones x mm3, mujer de 3,3 - 4,7
millones x mm3; en Venezuela hombres de 4,3 - 5,6 millones x mm3,
mujeres de 3,9 - 5,2 millones x mm3.
El valor promedio de glóbulos blancos obtenidos en la presente
investigación en relación a la edad, talla y peso de los adolescentes
estudiados varía entre 6.000 - 7.999 x mm3, mientras que en
investigaciones realizadas en otros países se considera valores inferiores
como rango referencial.
EL recuento de glóbulos blancos en Venezuela va de 3.800 - 10.100 x
mm3, en México de 3.500 - 7.500 x mm
3, en Chile 4.000 - 9.000 x mm
3 en
Argentina de 5.000 - 8.000 x mm3, en Perú de 5.000 - 10.000 x mm3, en
Brasil de 3.500 - 9.000 x mm3, en Bolivia de 4.800 - 10.800 x mm3, en
Colombia de 3.500 - 11.000 x mm3, en España de 4.500 - 7.500 x mm3 y
en Nueva York - Estados Unidos de 3.480 - 10.500 x mm3.
El valor promedio de hemoglobina en nuestro estudio en relación a la
edad, talla y peso, varía entre 14 - 16 g% mientras que el valor promedio
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 162
de Hemoglobina en Estados Unidos es de 13,0 – 18,0 g/dl, mientras que
en mujeres va de 12 – 16 g/dl. En Brasil se encontraron valores en
mujeres 14,2 – 18,0 g/dl, y en varones de 16 a 20 g/dl, En Argentina de
13,6 – 17,2 g%, en Colombia es de 16,3 g/dl, en nuestro medio se
manejan valores inferiores a estos rangos.
El valor promedio de hematocrito en la presente investigación en relación
a la edad, talla y peso, varía entre 40 - 44%, En el Perú se observan los
siguientes valores para hematocrito: hombres de 43 - 53%. En Medellín -
Colombia el valor referencial de hematocrito es 43 - 49%. En la mayoría
de los casos los valores dependen de la edad y del sexo, así como de la
altitud. Se observó que existen diferencias significativas al compararse
con los resultados obtenidos en nuestra investigación.
Los valores obtenidos de Neutrófilos en esta investigación varían entre 51
- 60%, Linfocitos 31 - 40%, Monocitos menor a 4%, Basófilos 1 - 2%,
Eosinófilos menor al 2%, mientras que en Argentina los valores
referenciales son: Linfocitos 25 – 35%; Monocitos 4 – 8%; Neutrófilos 55 –
65%; Eosinófilos 0,5 – 4,0% y Basófilos 0,2%, en Perú Linfocitos 25 –
33%; Monocitos 3 – 7%; Neutrófilos 45 – 62%; Eosinófilos 1 – 2% y
Basófilos 0 – 1%; en Chile Linfocitos 30 – 45%; Monocitos 5 – 7%;
Neutrófilos 50 – 65%; Eosinófilos 1 – 5% y Basófilos 0 – 1% ; en España
Linfocitos 20 – 40%; Monocitos 2 – 8%; Neutrófilos 55 – 70%; Eosinófilos
1 – 4,0% y Basófilos 0,5 – 1% ; en Nueva York – Estados Unidos
Linfocitos 22 – 44%; Monocitos 0 – 7%; Neutrófilos 40 – 60%; Eosinófilos
0 – 4,0% y Basófilos 0–1%, se observa similitud con los valores
encontrados en la presente investigación.
El valor promedio de glucosa obtenido es de 91 - 100 mg/dl en relación a
la edad, talla y peso, el cual al comparar con un estudio realizado en
Talca - Chile el promedio fue de 74 ± 10 mg/dl; en Argentina fue 76 ± 11
mg/dl; en la ciudad de México se obtuvo un promedio de 81 ± 24,4 mg/dl;
y en Perú de 75,9 ± 2,1 mg/dl. Con lo que se demuestra que dichos
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 163
valores no difieren significativamente con los obtenidos en nuestra
investigación.
En relación al examen de orina en su mayoría se presenta de color
amarillo, ligeramente turbio, con un pH ácido que varía de 5,0 - 6,0, una
densidad urinaria que va de 1.011 - 1.020, en el examen químico
presenta un índice bajo de positividad para sangre y leucocitos, en el
sedimento urinario baja cantidad de células epiteliales (+), bacterias (+),
leucocitos (0 - 2), eritrocitos (0 - 2), y cristales se observaron de manera
ocasional.
En esta investigación en el examen coproparasitario se observo la
presentan quistes de ameba (Cóli e Histolítica) 28%, y el 0,4% quiste de
Giardia Lamblia.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 164
CAPÍTULO VI
6.1. CONCLUSIONES.
Como conclusión final se comprueba que existe una leve variación entre
los valores existentes con los valores encontrados en la presente
investigación.
El 59,6% de los estudiantes tienen entre 16 y 17 años de edad, el 47,2%
una talla entre 1.51 – 1.60 m, el 69,2% un peso entre 41 – 60 kg.
El 84,8% de los adolescentes pertenecen al área urbana, el 100% colegio
fiscal mixto.
El 70% con un valor promedio de hemoglobina de 14 - 16 g/dl, el 2,4%
con un valor mínimo de 8 - 10 g/dl, y el 0,4% con un valor superior a 19
g/dl.
El 42,4% con un valor promedio de Hematocrito de 40 - 44%, el 4%
menor a 35%, y el 0,4% con un valor mayor a 54%.
El 70% con un valor promedio de Glóbulos Rojos de 4.500.000 -
5.499.000 x mm3, el 2,8% menor a 4.000.000 x mm3 y el 2,4%, un valor
mayor a 5.999.999 x mm3.
El 42,4% con un valor promedio de Glóbulos Blancos de 6.000 - 7.999 x
mm3, el 1,2% un valor menor a 4.000 x mm3, y el 13,2% mayor a 9.999 x
mm3.
El 60,4% con un valor promedio de plaquetas de 250.000 - 349.999 x
mm3.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 165
El 36% con un valor promedio de neutrófilos de 51 - 60%, el 40,8% con un
valor promedio de linfocitos de 31 - 40%, el 55,6% con un valor de
basófilos de 1 a 2%, y el 51,2% con un valor de eosinófilos mayor al 2%.
El 36,4% con un valor de glucosa de 91 - 100 mg/dl, el 1,2% con un valor
inferior a 71 mg/dl.
El 87,2% con un valor promedio de ASTO de menor a 200 UI/l, y el 12,4%
con un valor superior a 200 UI/l.
El 93,6% con orina de color amarillo, transparente, 81,6% con una
densidad de 1.011 - 1.020, 87,4% pH ácido de 5 - 6, en el exámen
químico el 3,2% positivo para sangre.
El 1,2% positivo para leucocitos, en el sedimento el 39% leucocitos 0 - 2
por campo, el 57,2% (+) de células epiteliales, el 45,4% de 0 - 2 eritrocitos
por campo, el 47,8 (+) de bacterias, y en el 89,2% ausencia de cristales.
El 28% presentan quistes de ameba Cóli e Histolítica, y el 0,4% quiste de
Giardia Lamblia.
6.2 RECOMENDACIONES
Recomendamos realizar investigaciones similares a la actual en otros
grupos etarios, especialmente en niños y adultos mayores.
En futuras investigaciones en donde se necesite constatar el estado de
salud de las personas, recomendamos realizar una valoración más
profunda tanto del historial clínico como del examen físico, de tal manera
que los investigados sean verdaderamente sanos.
Debería aplicarse normas más rigurosas para un mejor control de calidad
de los exámenes realizados.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 166
Se recomienda además difundir los resultados a nivel local, nacional e
internacional a través de publicaciones de texto, internet y otros medios
de difusión.
CAPITULO VII
7. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS.
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http://www.sap.org.ar/staticfiles/actividades/congresos/congre2006/conarp
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Edición;
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12. Anónimo. Normal reference Laboratory values. N Engl J Med 1986;
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13. RACHED Ingrid y colaboradores. Pruebas Hematológicas y
Bioquímicas. Medellín / Colombia.2002. Disponible en:
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gktzlx47qrjjw8tPXvFzvTrEAeTxr_wLGA39T_jZiXk8cP-
nQdhNZCIgaX0t79Spmr64bIMc0ejfyUGfnZx8Hd5gM4sNWzxeoaBg39hw
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33.http://www.articulo.org/articulo/24341/que_son_las_plaquetas.htmlhttp:
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34. http://www.misrespuestas.com/que-es-la-glicemia.html
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36.- http://www.ferato.com/wiki/index.php/Glucosa
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38. José y Piña E. Bioquímica. Segunda Edición, Editorial Fournier S.A;
México D.F.
39. ANÁLISIS DE ORINA, GRAFF, Editorial Médica PANAMERICANA, 1a
edición
40. Dr. Gil Flores Garcia, Analisis Biologico, Universidad de Cuenca
Facultad de Ciencias Quimicas. Pag. 395, 396, 397..
41. ANÁLISIS DE ORINA Y DE LOS LÍQUIDOS CORPORALES.
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44. Maldonado, A y Colaboradores. Prácticas de Parasitología. 2da. Ed.
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Disponible
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http://es.wikipedia.org/wiki/Cuenca_(Ecuador)
48. 12Lic. En Sociología Marcelo Tardy. “Salud - Diferentes miradas sobre
el concepto de Salud”.Copyright ® 2007-2009 - Psico-web.com –
Argentina. Página 3 de 6 Disponible en: http://www.psico-
web.com/salud/concepto_salud_03.htm .
49. Azuay Cuenca wikipedia enciclopedia libre
50. www.el mercurio.com.ec.
51. Ídem 49
CAPITULO VIII
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 172
8. ANEXOS
8.1 CONSENTIMIENTO INFORMADO
“REALIZACIÓN DE PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLINICO
EN ESTUDIANTES SECUNDARIOS DEL COLEGIO REPÚBLICA DE
ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2010 – 2011”
Nosotros:,Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega estudiantes del
Área de Laboratorio Clínico, Escuela de Tecnología Médica, de la
Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca, por medio de
la presente nos es grato informarle que se lleva a cabo un estudio cuyo fin
es la realización de nuestro trabajo investigativo – Tesis, en los
estudiantes de este Plantel, mediante la determinación de pruebas
básicas de laboratorio que proporcionará información sobre el estado
funcional del organismo para el diagnóstico, prevención y tratamiento de
los diversos cuadros de anemia, diabetes, infecciones, parasitismo,
enfermedades que pueden aparecer como resultados de alteraciones en
los valores de las pruebas a realizarse.
Le hacemos conocer, que el Centro Educativo en donde su hija/o estudia,
ha sido seleccionado para formar parte de una línea de investigación.
En este lugar se le pesará, medirá y se obtendrá una muestra de sangre;
con los directivos acordaremos una fecha y hora para la toma de la
misma, debiendo el estudiante tener un ayuno previo de 10 horas.
El mismo día deberá llevar una muestra de heces y una de orina las
cuales será recolectadas en casa por la mañana antes de acudir al
colegio.
Para la toma de muestra de sangre se utilizara guantes quirúrgicos
estériles y descartables, se extraerá la sangre de una vena del antebrazo
porque resulta de fácil acceso.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 173
Se desinfectara la zona con un algodón humedecido en alcohol
antiséptico, aplicando un torniquete unos 5cm por encima del sitio
escogido. Se indicará al estudiante que abra y cierre el puño varias veces
con el fin de palpar la vena distendida y se introducirá la aguja que debe
penetrar la piel y la pared de la vena. Al momento que comience a salir la
sangre se recolectara en los tubos indicados. Se retirara el torniquete y
la aguja al mismo tiempo, colocando el algodón con alcohol, luego se
colocara una cinta adhesiva estéril en el sitio de punción.
Para la obtención de la muestra de heces y orina, deberá recolectarse en
un recipiente estéril, una cantidad adecuada de la muestra sin exceder la
capacidad del recipiente.
Para la muestra de orina, deberá ser la primera de la mañana de la cual
se recolectará “solo” el chorro medio en un frasco recolector. Nosotros
facilitaremos los frascos recolectores tanto para la muestra de heces y de
orina.
Garantizamos que la información obtenida, se manejará de forma
profesional y únicamente serán de uso estadístico para nuestro estudio
científico.
Riesgos:
Las molestias (efectos secundarios) que pudieran ocurrir son mínimos,
como un leve dolor al momento del pinchazo, un ligero moretón en el
lugar de la extracción y con una posible sensación de mareo.
La cantidad de sangre que se le extraerá al estudiante es de 10 ml de los
cuales, 5 ml son para las pruebas hematológicas y los otros 5ml serán
para las pruebas bioquímicas, lo cual no afectará el estado de salud. Los
materiales a utilizarse como agujas y tubos serán estériles y descartables
por lo que no corre el riesgo de adquirir alguna enfermedad durante el
proceso.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 174
Las muestras serán procesadas en el Centro de Diagnóstico de la
Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca.
Beneficios:
Una vez obtenido el resultado de las muestras de los estudiantes, estos
aportarán información a esta línea de investigación científica, a través de
la cual se podrá conocer el estado de salud del adolescente; a la vez
usted contará con exámenes sin costo alguno; los resultados serán
entregados de forma personal por los investigadores.
¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨ ¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨
FIRMA DE PADRE/MADRE FIRMA DEL
REPRESENTANTE CI…………………………………
CI…………………………………………….
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8.2 ASENTIMIENTO FIRMADO
UNIVERSIDA DE CUENCA
FACULTAD DE COENCIAS MÉDICAS
ESCUELA DE TECNOLOGIA MÉDICA
ASENTIMIENTO INFORMADO DEL Y LA ADOLESCENTE
Nosotros: Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega, estudiantes del
Área de Laboratorio Clínico, Escuela de Tecnología Médica, estamos por
realizar nuestro tesis con una línea investigativa con el tema:
“REALIZACIÓN DE PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLÍNICO
EN ESTUDIANTES SECUNDARIOS DEL COLEGIO REPUBLICA DE
ISRAEL SECCION NOCTURNA, CUENCA 2010 – 2011.
Con el objetivo de contar plenamente con el consentimiento y
conocimiento del o la adolescente para la realización de dicho estudio.
Muestra de sangre:
Para la toma de muestra de sangre se utilizara guantes quirúrgicos
estériles y descartables, se extraerá la sangre de una vena del antebrazo
porque resulta de fácil acceso. Se desinfectara la zona con un algodón
humedecido en alcohol antiséptico, aplicando un torniquete unos 5cm por
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 176
encima del sitio escogido. Se pedirá al estudiante que abra y cierre el
puño varias veces con el fin de palpar la vena distendida y se introducirá
la aguja que debe penetrar la piel y la pared de la vena. Al momento que
comience a salir la sangre se recolectara en los tubos indicados. Se
retirara el torniquete y la aguja al mismo tiempo, colocando el algodón
con alcohol, luego se colocara una cinta adhesiva estéril en el sitio de
punción.
Para la obtención de la muestra de heces y orina, deberá recolectarse en
un recipiente estéril, una cantidad adecuada de la muestra sin exceder la
capacidad del recipiente. Para la muestra de orina, deberá ser la primera
de la mañana de la cual se recolectará “solo” el chorro medio en un frasco
recolector. Nosotros facilitaremos los frascos recolectores tanto para la
muestra de heces y de orina.
Garantizamos que la información obtenida, se manejará de forma
profesional y únicamente serán de uso estadístico para nuestro estudio
científico.
Riesgos:
Las molestias (efectos secundarios) que pudieran ocurrir son mínimos,
como un leve dolor al momento del pinchazo, un ligero moretón en el
lugar de la extracción y con una posible sensación de mareo.
La cantidad de sangre que se le extraerá al estudiante es de 10 ml de los
cuales, 5 ml son para las pruebas hematológicas y los otros 5ml serán
para las pruebas bioquímicas, lo cual no afectará el estado de salud. Los
materiales a utilizarse como agujas y tubos serán estériles y descartables
por lo que no corre el riesgo de adquirir alguna enfermedad durante el
proceso.
Las muestras serán procesadas en el Centro de Diagnóstico de la
Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca.
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Beneficios:
Una vez obtenido el resultado de las muestras de los estudiantes, estos
aportarán información a esta línea de investigación científica, a través de
la cual se podrá conocer el estado de salud del adolescente; a la vez
usted contará con exámenes sin costo alguno; los resultados serán
entregados de forma personal por los investigadores.
Yo:
………………………………………………………………………………………
……….
Curso:
………………………………………………………………………………………
…
8.3 FICHA DEL ESTUDIANTE
Universidad de Cuenca Facultad de Ciencia
Médicas
Escuela de Tecnología Médica Área Laboratorio Clínico
Formulario # ________
Nombre Estudiante ______________________________________
Edad: _____ Sexo: ____ Talla: ______ Peso: ____
Domicilio: Urbano ___________ Rural ____________
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Dirección: Calle _____________________ Teléfono _________
Colegio: _______________________________________________
Varones Mujeres Mixto
Dirección del Colegio: __________________Teléfono _________
Fecha:…………………………………………
Firma de Responsabilidad:…………………………………………….
8.4 HOJA DE REPORTE DE RESULTADOS.
Universidad de Cuenca Facultad de Ciencias Médicas
Escuela de Tecnología Médica Área Laboratorio Clínico
Ficha de Resultados
Hemograma: Resultado Unidad
Leucocitos xmm3
Eritrocitos xmm3
Hematocrito %
Hemoglobina g/dl
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Neutrófilos %
Linfocitos %
Monocitos %
Eosinófilos %
Basófilos %
QUIMICOS: Resultado Unidad
GLUCOSA: mg/dl
ASTO: UI/l
EXAMEN DE
ORINA: SEDIMENTO: Resultado
EXAMEN DE
HECES: Resultado
Color
Cél.
Epiteliales Color:
Aspecto Hematíes Olor:
pH Cristales Consistencia:
Densidad Cilindros Moco:
Glucosa Bacterias Restos
Acido Ascórbico Macroscópicos
Cuerpos
Cetónicos
Ex.
Microscópico Resultado
Nitritos
Proteínas
Bilirrubinas
Urobilinógeno
Sangre
8.5. RECURSOS Y FINANCIAMIENTO.
RECURSOS HUMANOS.
DIRECTOS:
Autores: Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega.
Director: Lcdo. Mauricio Baculima.
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Asesores Metodológicos: Dr. José Cabrera Vicuña.
Dr. Hugo Cañar.
INDIRECTOS:
Todas las personas que salieron favorecidas en este estudio.
RECURSOS MATERIALES.
Reactivos 300,00
Materiales 360,00
Papelería y limpieza 75,00
Hemogramas 400,00
Otros 30,00
TOTAL 1.165,00
8.6. FINANCIAMIENTO.
El costo de este estudio será financiado en un 100% por parte de las
investigadoras, de igual manera se contará con el apoyo de equipos por
parte del Hospital Vicente Corral Moscoso.
8.7. MAPA DE LA CIUDAD DE CUENCA – ECUADOR.
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