universidad central del ecuador facultad de odontologÍa carrera de … · 2017-09-29 · la...

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE ODONTOLOGÍA

CARRERA DE ODONTOLOGÍA

“EFICACIA DE LA ESTERILIZACIÓN DE LAS CURETAS PERIODONTALES

EN CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”

Proyecto de investigación presentado como requisito parcial para aprobar el trabajo

de titulación, para optar el Título de Odontólogo

AUTOR:

CRISTIAN EDUARDO CHALCO LLUMIQUINGA

TUTOR:

Dra. MARINA ANTONIA DONA VIDALE

QUITO, ABRIL 2017

v

DEDICATORIA

Mi tesis la dedico con todo mi amor a mi hermosa hija Emily, por ser mi fuente de

motivación e inspiración en todo momento, por ser mi deseo de superación cada día.

A mi amada madre por haberme apoyado en todo momento, por sus consejos, sus valores,

por la motivación constante que me ha permitido ser una persona de bien, pero más que

nada, por su amor.

A mi padre, por los ejemplos de perseverancia y constancia que lo caracterizan y que me

ha infundado siempre, por el valor mostrado para salir adelante y por su amor.

A mis hermanos, por estar conmigo y apoyarme siempre, los quiero mucho.

Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga.

vi

AGRADECIMIENTO

Mi agradecimiento a Dios por ser quien cada día guía mi camino. A mis Padres, mis

Hermanos por ser mis compañeros en este camino y su cariño incondicional. A la

Universidad Central del Ecuador, por la educación impartida en estos años para mí

formación como profesional. A cada uno de mis Maestros por brindar sus

conocimientos.

Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga.

vii

ÍNDICE

DERECHOS DE AUTOR ...................................................................................................... ii

INFORME FINAL DE APROBACION DE TESIS ............................................................. iii

APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL ........................................ iv

DEDICATORIA ..................................................................................................................... v

AGRADECIMIENTO ........................................................................................................... vi

ÍNDICE ................................................................................................................................. vii

LISTA DE ANEXOS ........................................................................................................... xii

LISTA DE TABLAS .............................................................................................................. x

LISTA DE FIGURAS ........................................................................................................... xi

RESUMEN .......................................................................................................................... xiii

ABSTRACT ........................................................................................................................ xiv

INTRODUCCIÓN……………………………………………………………………………………1

CAPITULO I .......................................................................................................................... 2

1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ....................................................................... 2

1.1. OBJETIVOS ................................................................................................................ 3

1.2. JUSTIFICACION ........................................................................................................ 3

1.3. HIPOTESIS ................................................................................................................. 4

CAPITULO II ......................................................................................................................... 5

2. MARCO TEÓRICO ........................................................................................................ 5

2.1. Instrumentos para la Eliminación de Biofilm. ............................................................. 5

2.1.1. Instrumentos Utilizados para el Desbridamiento. .................................................... 5

2.1.2. Instrumentos Manuales ............................................................................................ 5

2.1.3. Curetas ..................................................................................................................... 6

2.1.4. VENTAJAS DEL USO DE INSTRUMENTOS MANUALES. ............................. 7

2.1.5. DESVENTAJAS DEL USO DE INSTRUMENTOS MANUALES. ..................... 7

2.2. Infección cruzada ......................................................................................................... 8

2.2.1. Control de la infección en la práctica odontológica................................................. 8

2.3. BIOSEGURIDAD EN ODONTOLOGIA .................................................................. 9

2.4. PROCESAMIENTO ADECUADO DEL INSTRUMENTAL ................................. 10

2.4.1. Prelavado: .............................................................................................................. 10

viii

2.4.2. Limpieza (lavado) .................................................................................................. 10

2.4.3. Secado, lubricación y acondicionamiento de los instrumentos ............................. 11

2.4.4. Acondicionamiento ................................................................................................ 11

2.4.5. El empaquetado: .................................................................................................... 11

2.5. ESTERILIZACION ................................................................................................... 11

2.5.1. ESTERILIZACIÓN DE CURETAS PERIODONTALES ESTUDIOS

COMPARATIVOS ............................................................................................................... 11

2.6. TÉCNICAS DE ESTERILIZACIÓN DE LOS INSTRUMENTOS ......................... 13

2.7. RIESGO BIOLÓGICO .............................................................................................. 13

2.7.1. 2.7.1 Tipos de agentes biológicos .......................................................................... 14

2.8. ESTAFILOCOCOS. .................................................................................................. 15

2.8.1. CARACTERISTICAS GENERALES. .................................................................. 15

2.8.2. CULTIVO Y CRECIMIENTO. ............................................................................. 16

2.8.3. ESTRUCTURA ANTÍGENA. ............................................................................... 16

2.8.4. ENZIMAS Y TOXINAS. ...................................................................................... 17

2.8.5. EPIDEMIOLOGÍA. ............................................................................................... 18

2.8.6. CLASIFICACIÓN. ................................................................................................ 18

2.8.6.1. STAPHYLOCOCCUS AUREUS. ..................................................................... 19

2.8.6.1.1. PATOGENIA. ................................................................................................ 20

2.8.6.1.2. MANIFESTACIONES CLÍNICAS. .............................................................. 20

2.8.6.1.3. INTOXICACIÓN ALIMENTARIA POR ESTAFILOCOCOS. ................... 20

2.8.6.1.4. SÍNDROME DE SHOCK TÓXICO. ............................................................. 20

2.8.6.1.5. SÍNDROME DE LA PIEL ESCALDADA ESTAFILOCÓCICA ................. 21

2.8.6.1.6. STAPHYLOCOCCUS SAPROFÍTICO. ....................................................... 22

2.9. MÉTODOS DE IDENTIFICACIÓN DE AGENTES BIOLÓGICOS...................... 22

2.9.1. CULTIVOS ............................................................................................................ 22

2.9.2. PLACAS PETRIFILM .......................................................................................... 24

2.9.3. HISOPOS QUICK SWAB DE .............................................................................. 24

CAPITULO III ..................................................................................................................... 25

3. METODOLOGÍA ......................................................................................................... 25

3.1. Diseño de la investigación ......................................................................................... 25

ix

3.2. Población, tamaño de muestra ................................................................................... 25

3.3. Tamaño de la muestra. ............................................................................................... 25

3.4. Criterios de inclusión y exclusión ............................................................................. 27

3.4.1. Criterios de inclusión. ............................................................................................ 27

3.4.2. Criterios de exclusión. ........................................................................................... 27

3.5. Variables .................................................................................................................... 27

3.5.1. Conceptualización de las variables: ....................................................................... 27

3.6. Estandarización .......................................................................................................... 29

3.7. TÉCNICAS E INSTRUMENTOS PARA RECOLECCIÓN DE DATOS ............... 29

3.8. Aspectos bioéticos ..................................................................................................... 38

3.9. Beneficios .................................................................................................................. 38

3.10. Autonomía. ............................................................................................................ 38

3.10.1. Beneficencia ....................................................................................................... 39

3.10.2. Voluntariedad ..................................................................................................... 39

3.10.3. Confidencialidad ................................................................................................ 40

3.11. Riesgos ................................................................................................................... 40

3.11.1. Población vulnerable .......................................................................................... 40

3.12. Idoneidad ética y experticia técnica ....................................................................... 41

3.13. Aspectos metodológicos ........................................................................................ 41

CAPITULO IV ..................................................................................................................... 43

4. RESULTADOS ............................................................................................................. 43

4.1. Presentación y análisis de resultados ......................................................................... 43

4.2. Discusión ................................................................................................................... 49

CAPITULO V ...................................................................................................................... 51

5. CONCLUSIONES T RECOMENDACIONES ............................................................ 51

5.1. Conclusiones .............................................................................................................. 51

5.2. Recomendaciones ...................................................................................................... 51

BIBLIOGRAFÍA .................................................................................................................. 53

ANEXOS .............................................................................................................................. 56

x

LISTA DE TABLAS

Tabla 1 Estado de fundas, luego de esterilización ................................................................ 43

Tabla 2 Niveles de Estafilococo presentes en las curetas analizadas .................................. 45

Tabla 3 Bacilo Gram (-)........................................................................................................ 46

Tabla 4 Estadísticas de muestra única ................................................................................. 47

Tabla 5 Prueba t estudent de muestra única ......................................................................... 48

xi

LISTA DE FIGURAS

Figura 1 Angulación de la cureta. ........................................................................................... 6

Figura 2. Clasificación de los microorganismos. ................................................................. 14

Figura 3 Clasificación de las bacterias de acuerdo a los criterios de: forma, agrupamiento,

forma de respiración y afinidad tintorial. Fuente: Romero (2007). ...................................... 15

Figura 4. Estructura de la pared de los microorganismos del género Staphylococcus. ........ 16

Figura 5 Colonia de Staphylococcus .................................................................................... 18

Figura 6. Colonia de Staphylococcus aureus ........................................................................ 19

Figura 7 Instrumental seleccionado ..................................................................................... 29

Figura 8 Selección de cureta 1-2 ......................................................................................... 30

Figura 9 Toma de muestra con hisopo estéril embebido en tioglicolato .............................. 30

Figura 10. Colocación de la muestra en el tubo con tioglicolato y sellado con algodón

estéril .................................................................................................................................... 31

Figura 11. Muestras llevadas al Laboratorio de Microbiología de la F.O de la UCE .......... 31

Figura 12 Colocación de la muestra en la Incubadora......................................................... 32

Figura 13 Caja Tetra-Petri codificada .................................................................................. 32

Figura 14 Estriado de la muestra en Agar sangre ................................................................. 33

Figura 15 Cajas Tetra-Petri en incubadora por 48h .............................................................. 33

Figura 16 Crecimiento bacteriano Cocos y Bacilos ............................................................. 34

Figura 17 Llevamos la muestra al porta objetos y lo fijamos ............................................... 35

Figura 18 Tinción Gram. Aplicación de violeta de genciana ............................................... 35

Figura 19. Tinción gram aplicación de lugol ........................................................................ 36

Figura 20. Tinción gram aplicación de alcohol acetona ...................................................... 36

Figura 21. Tinción gram aplicación de safranina ................................................................. 36

Figura 22. Observación al microscopio ................................................................................ 37

Figura 23. Tinción Gram. Observación a través del microscopio ....................................... 37

Figura 24.Firma del Consentimiento Informado. ................................................................. 39

Figura 25. Desechos Biológicos. Preparación de la Autoclave. ........................................... 42

xii

LISTA DE ANEXOS

Anexo 1 Oficio para el laboratorio de microbiología de la facultad de odontología. .......... 56

Anexo 2 Consentimiento informado y carta de confidencialidad ........................................ 57

Anexo 3 Oficio declaración de conflictos de interés ............................................................ 62

Anexo 4 Oficio declaración de conflictos de interés ............................................................ 63

Anexo 5. Idoneidad ética y experticia del investigador........................................................ 64

Anexo 6. Idoneidad ética y experticia del investigador........................................................ 65

Anexo 7 Oficio comité de ética ............................................................................................ 66

Anexo 8:Oficio para eliminación de desechos infecciosos .................................................. 67

Anexo 9: Ficha de registro de datos ..................................................................................... 68

Anexo 10:Manual para el manejo de desechos en establecimientos de salud ...................... 69

Anexo 11: Abstract ............................................................................................................... 71

xiii

TEMA: Eficacia de la esterilización de las curetas periodontales en Clínica Integral de la

Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador

Autor: Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga.

Tutora: Dra. Marina Antonia Dona Vidale.

RESUMEN

La finalidad de esta investigación fue determinar la Eficacia de la esterilización del

instrumental de periodoncia (curetas 1,2) de los estudiantes de Clínica integral de la Facultad

de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, en consideración de la inexistencia

de investigaciones sobre este tema en el Ecuador.

En el área de la odontología, una de las maneras para evitar la contaminación cruzada entre

pacientes es eliminando los residuos de sangre y otros fluidos que han sido obtenidos durante

la utilización de los instrumentos.

La investigación fue un estudio in vitro de tipo experimental. Se tomó 54 muestras del

instrumental de periodoncia (cureta 1-2) estéril antes de ser utilizadas para la atención

odontológica en Clínica Integral de 9no semestre, a las cuales se les realizó un frotis, estas

fueron sembradas en placas petris Agar Sangre y posteriormente incubadas. Obteniendo

como resultado Staphilococcus 16.7 %, Bacilo Gram (-) 9.3%, también se encontró un 5.6%

de fundas que a pesar de estar selladas, existían indicios de corrosión en las curetas que

contenían

Concluyendo de esta manera que no hubo eficacia de la esterilización de las curetas

periodontales al no alcanzar los parámetros buscados del 100% de esterilidad en este estudio.

PALABRAS CLAVE: ESTERILIZACIÓN / INFECCIÓN CRUZADA /

MICROORGANISMOS

xiv

TOPIC: Efficacy of the sterilization fo periodontal curettes at the School of Dentistry´s

……………………Integral Clinic fo Universidad Central del Ecuador.

Author: Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga

Supervising Professor: Dr. Marina Antonia Dona Vidale

ABSTRACT

The onjective of this research was to determine the sterilization of periodontology

instruments (curettes 1,2) belonging to students of the School of Dentistry´s Integral Clinic

of Universidad Central del Ecuador, considering the absence of research about this topic in

Ecuador.

In the field of Dentistry, one of the ways to avoid cross-contamination among patients is to

remove the blood waste and other fluids that have been obtained during the usage of these

instruments.

This research was an in vitro study, of an experimental type. It used 54 sterile samples of

periodontology instruments (curettes, 1-2) before being employed on patients at the Integral

Clinic of 9th semester, which were subjected to swabs, planted in blood-agar plates and

incubated. The results showed Staphilococcus 16.7%, Bacilo Gram (-) 9.3%, and 5.6% of

covers that, although were sealed, showed signs of corrosión in the curettes contained.

Thus, it can be concluded that there was no efficacy in the sterilization of periodontal curettes,

since the 100% sterility parameter could not be reached in this study.

KEY WORDS: STERILIZATION / INFECTION / CROSS-INFECTION /

MICROORGANISMS

1

INTRODUCCIÓN

La esterilización constituye una de las medidas para la prevención y control de infecciones

en Odontología. Es pertinente, al tratar este tema, dar una definición clara del término; se

entiende por esterilización el proceso mediante el cual se alcanza la muerte de todas las

formas de vida microbianas, incluyendo bacterias, esporas, hongos y virus.

Los pacientes en la actualidad están informados del peligro que implica ser atendidos con

instrumental contaminado, sin las debidas normas de bioseguridad, por ello como

profesionales estamos obligados a proteger a nuestros pacientes, a protegernos nosotros

mismos y a proteger al personal q trabaja a nuestro alrededor. Algunas veces, el

desconocimiento, la premura del tiempo para la atención al paciente dentro de la Clínica

Integral de la Facultad de Odontología nos puede llevar a cometer errores frente al campo de

bioseguridad, eludiendo ciertas normas o reglas, sin entender el beneficio que obtenemos al

tomarnos el tiempo y la molestia necesaria para evitar el contagio de infecciones cruzadas e

infecciones nosocomiales, además de evitar el riesgo de infectarnos o enfermarnos.

La cavidad bucal es un ecosistema que lo constituyen varios microorganismos y tejidos. Los

instrumentos manuales más utilizados en la práctica odontológica son las curetas, debido a

que son instrumentos con mayor acceso a la anatomía subgingival, y se utilizan para remover

depósitos de cálculos residuales, alisar la superficie de la raíz y el curetaje de tejidos blandos,

por esta razón es fundamental la desinfección y esterilización antes de su utilización con el

paciente (1).

2

CAPITULO I

1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

El campo de la Odontología es una profesión en la que se involucra una serie de riesgos

en la cual se recomienda considerar a todos los pacientes que acuden al consultorio dental

como portadores de agentes infecciosos. La “Bioseguridad” es un término que ha sido

utilizado para definir y congregar las normas de comportamientos y manejo preventivo, del

personal de salud, frente a microorganismos potencialmente infecciosos, con el objetivo de

disminuir la probabilidad de adquirir infecciones en el medio laboral (2) . Para que se

establezca la infección y el proceso patológico, sería indispensable que los microorganismos

penetren al huésped (3).

Las superficies han sido reservorios potenciales que albergan patógenos, conjuntamente con

la presencia de un huésped susceptible siendo componentes importantes para que se

produzcan infecciones cruzadas.

La infección cruzada se considera como la transmisión de agentes infecciosos entre paciente

y personal de la salud en el espacio clínico de trabajo (4).

Con el fin de subsanar estos inconvenientes se practica la esterilización, procedimiento que

consiste en destruir todos los gérmenes vivos que existan sobre los objetos o sustancias que

se desean libres de ellos (asépticos).

El proceso de esterilización es llevado a cabo diariamente en la Facultad de Odontología,

fundamentalmente para evitar la contaminación de pacientes, estudiantes, docentes y

personal, ya que las infecciones pueden transmitirse tanto por contacto directo con sangre o

secreciones por contacto con instrumentos contaminados, por tal motivo la Facultad de

Odontología cuenta con áreas específicas para esta finalidad.

La eficacia de dicho proceso conlleva al éxito de los tratamientos y por ende a una atención

de calidad.

3

DEBIDO A LA PROBLEMÁTICA EXPUESTA, SURGE LA SIGUIENTE

PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN:

¿La presencia de microrganismos en las curetas periodontales en Clínica Integral de la

Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, luego del proceso de

esterilización causa riesgo de infecciones cruzadas?

1.1.OBJETIVOS

a. Objetivo general

Evaluar la eficacia de la esterilización de las curetas periodontales (N 1,2) en Clínica

Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador

mediante un medio de cultivo

b. Objetivos específicos

i. Realizar estudios microbiológico de las curetas periodontales (N 1,2)

utilizando un medio de cultivo

ii. Verificar cintas testigos en fundas estériles donde se encuentran curetas

periodontales (N 1,2)

iii. Comprobar si existen residuos biológicos o microorganismos después del

proceso de esterilización.

1.2.JUSTIFICACION

La esterilización es una de las normas de bioseguridad que persigue la destrucción completa

de toda forma de microorganismos entre las cuales están las esporas, que son las más

resistentes.

Se hace necesario evaluar la eficacia de la esterilización de las curetas periodontales (N 1,2)

mediante un medio de cultivo para prevenir posibles infecciones cruzadas a la que están

4

expuestos los docentes, estudiantes, pacientes y personal por los instrumentales que no han

sido debidamente esterilizados.

Esta información facilitará a los estudiantes y encardados de realizar este proceso

resultados concretos mediante un análisis microbiológico, ya que se trata de un término

absoluto, donde un objeto está estéril o no lo está, sin rangos intermedios y de esta manera

promover una mejor atención al paciente y participar en la prevención de enfermedades.

Se realizará un estudio in vitro, experimental, de curetas periodontales (N 1,2) estas serán

inoculadas en una placa petris Agar-Sangre y posteriormente incubadas determinando

presencia o no de microorganismos después del proceso de esterilización.

Información que se obtendrán en 5 semanas y se realizará en Clínica Integral de IX semestre

de La Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador y posterior los

resultados en los Laboratorios de la misma Institución.

1.3.HIPOTESIS

a. Hipótesis de investigación Hi

Existe eficacia en la esterilización de curetas periodontales en Clínica Integral de la Facultad

De Odontología de la Universidad Central del Ecuador

b. Hipótesis Nula Ho

No existe eficacia en la esterilización de curetas periodontales en clínica integral de la

Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador

5

CAPITULO II

2. MARCO TEÓRICO

2.1. Instrumentos para la Eliminación de Biofilm.

Los instrumentos que vamos a comentar a continuación están diseñados para la eliminación

de biofilm, cálculos y bolsas supragingivales y subgingivales de los dientes, y deben

proporcionar comodidad al operador, disminuyendo la fatiga muscular y aumentando la

sensibilidad táctil (1).

2.1.1. Instrumentos Utilizados para el Desbridamiento.

La ubicación de los dientes en la arcada y el conocimiento anatómico de la raíz, será la pauta

principal para la elección de los instrumentos indicados para el desbridamiento, dentro de los

cuales podemos encontrar instrumentos manuales, ultrasónicos, rotatorios y láser (5).

2.1.2. Instrumentos Manuales

Los instrumentos manuales más utilizados en la práctica odontológica son las curetas, debido

a que son instrumentos con mayor acceso a la anatomía subgingival, y se utilizan para

remover depósitos de cálculos residuales, alisar la superficie de la raíz y el curetaje de tejidos

blandos (5).

Se encuentran gran variedad de curetas en el mercado, las más utilizadas son las curetas

universales, y las curetas Gracey específicas. La diferencia entre las curetas universales y las

curetas Gracey, es la menor frecuencia de utilización en tejidos blandos, además poseen dos

bordes filosos en forma de cuchara y su parte activa es angulada en 90º con respecto al cuello;

a diferencia de las curetas Gracey cuyo extremo de trabajo único tiene 70º (6).

Otros instrumentos utilizados para el detartraje con menor frecuencia, son los cinceles y

azadas, se usan como raspadores de empuje para el depósito supragingival interproximal

entre los incisivos inferiores y las limas periodontales con muchos bordes cortantes

6

manipulados para aplanar depósitos de cálculos o para retirar bordes de restauraciones que

sobresalen (7).

2.1.3. Curetas

Las curetas se usan para eliminar la placa y el cálculo supra y subgingival y alisar la raíz para

obtener superficies de cemento pulidas y eliminar el cemento necrótico. También se pueden

usar para realizar el curetaje del tejido blando de la bolsa periodontal. Para realizar un buen

raspado es importante establecer una correcta angulación de trabajo. Al insertar la cureta, el

frente de la hoja debe estar plano con la superficie dentaria estableciéndose una angulación

de 0˚. Una vez se ha alcanzado la base de la bolsa se establece una angulación de entre 45 y

90˚. Durante los movimientos de raspado se está tratando de eliminar el cálculo subgingival

que está firmemente adherido al diente, por ello, la angulación debe ser de 60-80˚. Una vez

se ha eliminado el cálculo se disminuye el ángulo hasta 45˚ para proceder al alisado radicular.

Si se establece una angulación igual o superior a 90˚ se realiza curetaje porque se elimina el

tejido blando de la bolsa periodontal (Fig. 1). Las curetas suelen tener dos extremos activos

y cada uno es la imagen en espejo del otro, de forma que cuando un extremo se adapta a las

superficies linguales o palatinas el otro extremo se adapta a las superficies vestibulares. (1)

Figura 1 Angulación de la cureta.

Fuente: Periodoncia para él (1).

7

Clasificación:

CURETAS UNIVERSALES

CURETAS ESPECÍFICAS.

CURETAS GRACEY ESPECÍFICAS

ÁREAS DE USO DE LAS CURETAS GRACEY.

1/2 Incisivos anteriores y caninos,

3/4 Incisivos anteriores y caninos,

5/6 Dientes anteriores y premolares,

7/8 Superficies vestibular y lingual de dientes posteriores,

9/10 Superficies vestibular y lingual de molares,

11/12 Superficie mesial de dientes posteriores,

13/14 Superficie distal de dientes posteriores (8).

2.1.4. VENTAJAS DEL USO DE INSTRUMENTOS MANUALES.

Percepción táctil del operador (6).

Tienen gran variedad de diseños para adaptarse a las superficies a ser tratadas (6).

2.1.5. DESVENTAJAS DEL USO DE INSTRUMENTOS MANUALES.

La desventajas sobre el uso de estos instrumentos, tiene que ver con el daño no

controlado a la superficie de la raíz que provoca perdida de sustancia radicular (6).

Mayor tiempo operatorio, dolor, sangrado, malestar en los pacientes (9).

Durante el tratamiento pueden ser poco efectivos en sacos profundos y estrechos,

sacos distales, pacientes con apertura bucal limitada, compromiso de furca, de la

misma forma los instrumentos desafilados o con desgaste pueden provocar

iatrogenias (9).

8

2.2.Infección cruzada

Infección es el proceso por medio del cual un microorganismo patógeno invade, crece y se

multiplica en el organismo (huésped), provocando como consecuencia daño en la estructura

y funcionamiento normal del hospedero. La infección cruzada se la define como la

transmisión de agentes infecciosos entre pacientes y personal del área de la salud en el

espacio clínico, pudiendo dar como resultado del contacto persona a persona o por medio de

objetos contaminados (fómites) (4).

Al realizar una atención dental, se debe prestar una rigurosa atención al cumplir todas las

normas referentes a Bioseguridad Odontológica. Por lo tanto el profesional como el paciente

tiene que estar protegido frente a cualquier infección (10).

Las enfermedades, en la práctica odontológica son transmitidas por medio de cualquier

mecanismo, en la que un agente infeccioso se propaga en el ambiente de una persona a otra

(4).

Esta transmisión puede ser:

Transmisión Directa, es decir el traspaso directo o inmediato de un agente infeccioso

a una puerta de entrada receptiva como la piel, mucosa oral, nasal, conjuntivas o

genitales.

Puede ocurrir por: contacto directo (tocar, morder, besar), gotitas de sangre, saliva o

secreciones y exposición al polvo contaminado proveniente de ropa de vestir, etc.

Transmisión Indirecta, siendo la transferencia de un agente infeccioso a un individuo

susceptible por medio de vehículos de transmisión como objetos, materiales o

instrumentos con sangre, secreciones o restos de tejidos contaminados.

2.2.1. Control de la infección en la práctica odontológica

El control de las infecciones cruzadas no sólo beneficia a los pacientes, acompañantes,

personal auxiliar y profesional, sino también a los familiares y contactos personales de los

que laboran y visitan los consultorios dentales. Se debe tomar las medidas de bioseguridad,

9

para proteger nuestra salud y la de quienes nos rodean, razón por la que a continuación se

mencionan las principales medidas de asepsia y antisepsia para el control de la infección en

la práctica Odontológica (10). :

Procesamiento adecuado del instrumental.

Limpieza y desinfección de las superficies y equipos.

Uso de barreras.

Eliminación adecuada de los residuos.

Inmunización del personal.

La mayor parte de la flora oral tiene la característica de ser transitoria y solo quedan especies

que por sí solas y en estado de equilibrio, son inofensivas; pero cuando estas se suman a

condiciones del ambiente oral, de los mecanismos de virulencia del microorganismo y de la

respuesta del huésped, estas bacterias, hongos se convierten en Enfermedad (11).

2.3.BIOSEGURIDAD EN ODONTOLOGIA

La bioseguridad es la aplicación de normas, procedimientos y cuidados que se deben realizar

al momento de prestar nuestros servicios a pacientes y/o al manipular instrumental

contaminado. Etimológicamente Bioseguridad viene de BIO = vida y SEGURIDAD = libre

o exento de riesgo (12).

Las normas de bioseguridad surgieron para controlar y prevenir la transmisión de

enfermedades infecto-contagiosas, las mismas que cobraron mayor importancia con la

aparición del virus de inmunodeficiencia humana (12).

Las medidas deben involucrar a todos los pacientes de todos los servicios,

independientemente de conocer o no su serología (3).

En el consultorio o en la clínica odontológica, se debe tener una atención minuciosa y

rigurosa con las normas de bioseguridad, esta protección debe abarcar tanto al paciente como

al profesional para de esta manera evitar que se arrastren microorganismos que nos conlleva

a la denominada infección cruzada (10).

10

Los profesionales, los estudiantes, los auxiliares, todos los involucrados en el área de la salud

y por ende en la Odontología están expuestos a una gran variedad de microorganismos desde

esporas, bacterias, hongos, virus y protozoarios que pueden estar en la sangre y saliva de los

pacientes, causantes desde la simple gripe hasta neumonía, hepatitis B, tuberculosis, herpes,

etc (10).

La bioseguridad incluye cuidados del personal asistencial, manipulación adecuada del

material, e instrumental, control del ambiente estomatológico, uso de barreras protectoras,

tratamiento de residuales contaminados y medidas básicas frente a accidentes de exposición

a sangre o fluidos corporales (13).

2.4.PROCESAMIENTO ADECUADO DEL INSTRUMENTAL

La desinfección considerada de alto nivel se destina a objetos involucrados en

procedimientos críticos (invasivos), que no toleran la esterilización (como por ejemplo los

instrumentos de plásticos, que no pueden ser autoclavados). En estos casos la desinfección

necesita ser precedida de una adecuada limpieza (prelavado para retirar la materia orgánica).

Entre los desinfectantes de alto nivel se encuentra el glutaraldehído al 2%.

La desinfección de nivel intermedio (medio) es indicada para la limpieza en condiciones

semicríticas (probabilidad pequeña de contaminación por esporas bacterianas y

microorganismos resistentes). Los agentes más recomendados como desinfectantes son

alcoholyodado, compuestos yodoformados, compuestos de cloro y compuestos fenólicos.

La desinfección de bajo nivel es usada para las situaciones no críticas. Los agentes más

recomendados son los compuestos cuaternarios de amonio (3).

2.4.1. Prelavado:

Evita que la sangre y la saliva se sequen y la limpieza resulte más difícil. Se sumerge el

instrumental en una solución desinfectante. El remojo no debe ser excesivo para evitar la

corrosión (3).

2.4.2. Limpieza (lavado)

Es muy importante tomar en cuenta que si se va a realizar un lavado manual, este deberá

llevarse a cabo con las protecciones específicas, portando guantes de caucho y protección

11

ocular. Actualmente se cuenta con sistema de lavado de ultrasonido que ofrece mayor

seguridad para el personal encargado, y resulta eficaz si se siguen las instrucciones del

fabricante (3).

2.4.3. Secado, lubricación y acondicionamiento de los instrumentos

Eel secado se lo puede realizar con toallas desechables limpias y secas o con aire caliente

(estufa a 60°), esto tiene el objeto de evitar la corrosión del instrumental. La lubricación que

es específica para los instrumentos rotatorios se realizara previa su esterilización en

autoclave, lo que favorece su vida útil (3).

2.4.4. Acondicionamiento

El acondicionamiento de los instrumentos clínicos en paquetes, cajas metálicas con agujeros

o vidrios con tapones de algodón o papel, sobres plásticos o papel Kraft (n° 80) favorece el

manejo clínico. Los sobres plásticos facilitan la visión del contenido, una vez que uno de los

dos lados es transparente (3).

2.4.5. El empaquetado:

El embolsado mantiene el instrumental en condiciones estériles durante periodos

relativamente largos, se debe tener en cuenta que los instrumentos no envasados no se

mantienen estériles y deben ser considerados instrumentos descontaminados (14).

2.5.ESTERILIZACION

Es el proceso químico o físico que destruye todas las vidas microbianas incluso las

endoesporas bacterianas (15).

2.5.1. ESTERILIZACIÓN DE CURETAS PERIODONTALES ESTUDIOS

COMPARATIVOS

Chávez y Fermín en 2013, en la Universidad Iberoamérica de Unibe en República

Dominicana, evaluaron la eficacia de la esterilización del instrumental odontológico, su

estudio consistía en tomar 60 muestras, a las cuales se les realizó un frotis; estas fueron

12

inoculadas en placas petris cromo-agar orientación y posteriormente incubadas. Se determinó

que el 60% de las limas, después de esterilizar, no estaba contaminado y que el 69%, para

ambos paños y fundas, no presentaba contaminación, el 40% tubo contaminación (16).

Lisbeth Zuriel Corleto Alvarez en Mayo del 2015 realizó un estudio el cual consistía en

evaluar la eficacia de los procesos de esterilización mediante indicadores biológicos Attest

3M, se evaluaron tres autoclaves de la Facultad de Odontología de la Universidad de San

Carlos de Guatemala, dos de la Unidad de Esterilización y uno de la Clínica de Cirugía y

Exodoncia. Los resultados obtenidos fueron favorables, ya que en su mayoría (77 pruebas de

indicadores biológicos de 78 pruebas realizadas) tuvieron resultado negativo (17).

J. Pumarola Suñé, A. Espías Gómez, C. Canalda Sahli, E. Brau Aguadé se realizó un

estudio en el cual determinaron los valores mínimos de la relación tiempo-temperatura

eficaces para la esterilización de limas k contaminadas por Bacillus subtilis, por diferentes

métodos de esterilización. La esterilización con calor seco y óxido de etileno fue absoluta,

por el contrario se observaron resultados diversos con calor húmedo (18).

Hoyos Serrano Maddelainne en 2014 realizaron un estudio es cual consistía en

usar diferentes métodos y técnicas existentes en estos tres tipos de procesos varían según la

naturaleza del agente utilizado para eliminar a los patógenos, de los cuales son más usados

los físicos como: el autoclave, el horno Pasteur, las radiaciones ionizantes y los filtros

microporos; entre los agentes químicos se encuentran los de alta, mediano y bajo nivel de

desinfección de modo tal que se encuentran: el óxido etileno, el glutaraldehído, el

formaldehído, el alcohol, etc. Cabe recalcar que existe mucha confusión entre los términos

de esterilización y desinfección porque muchos de los desinfectantes de alto nivel

funcionan como esterilizadores químicos, del mismo modo, muchos de esos desinfectantes

se utilizan como antisépticos a concentraciones diferentes. (19).

Herencia Chiclayo Dagy Fressia y Llatas Bazan Kelly Karina realizaron un estudio en

el cual determinaron que El tiempo que una carga puede ser considerada estéril depende del

tipo y configuración de los materiales de embalaje, del número de veces que un embalaje es

utilizado antes de su utilización, del número de personas que pueden haber manipulado el

13

embalaje, de si las estanterías están abiertas o cerradas y de las condiciones ambientales del

área de almacenamiento (20).

2.6.TÉCNICAS DE ESTERILIZACIÓN DE LOS INSTRUMENTOS

ESTERILIZACIÓN MEDIANTE CALOR

El calor es uno de los medios más antiguos utilizados para destruir microorganismos. Pasteur

empleó calor para reducir el número de patógenos, Koch fue el primero en utilizar este

método para la esterilización, al observar que calor seco a 100°C destruía todas las bacterias

vegetativas, pero que eran necesarias tres horas de calor seco a 140°C para eliminar las

esporas de las bacterias vegetativas y esporas de bacilos de carbunco (4).

Calor seco

Es un método de esterilización que puede ser empleado en la mayoría de las consultas

dentales porque el equipamiento necesario no es más complicado que un horno con control

termostático y un cronómetro. El calor seco se utiliza con más frecuencia para esterilizar

material de vidrio e instrumentos de gran tamaño que pueden soportar el calor pero se pueden

oxidar. Por tanto, deben considerarse tres factores cuando se realiza el calor seco:

1.- El tiempo de calentamiento del horno y los materiales que se van a esterilizar

2.- La conductibilidad térmica

3.- El flujo aéreo a través del horno y de los objetos que se están esterilizando (4).

Calor húmedo

Es el vapor saturado (vapor a altas temperaturas bajo presión) más efectivo para esterilizar

instrumental termo resistente. La acción germicida se produce por coagulación de las

proteínas celulares. Esta indicado como principal elemento de elección para la esterilización

de material textil, caucho y otros materiales que toleren temperaturas >120°C (4).

2.7.RIESGO BIOLÓGICO

14

Es la probabilidad de infectarse con un patógeno en la actividad laboral, y manifestaron que

este tipo de riesgo se deriva de la manipulación o exposición a agentes patógenos, que aunque

existe en todos los ambientes, tiene una mayor magnitud en hospitales centro de investigación

biomédica (17).

2.7.1. 2.7.1 Tipos de agentes biológicos

Los agentes biológicos son bacterias, virus, hongos, parásitos, sus toxinas, o todos ellos, los

cuales poseen ciertas características a considerar, como patogenicidad, virulencia y poder

antigénico (18).

2.1. MICROORGANISMOS

Son cultivos de células y endoparásitos humanos susceptibles de originar infección, alergia

o toxicidad. Por lo tanto, trata exclusivamente como agentes biológicos algunos altamente

peligrosos, capaces de causar alteraciones en la salud humana (17).

Clasificación de los microorganismos de acuerdo al nivel de organización celular

Pluricelulares

Artrópodos

Helmintos

Hongos

Unicelulares

Bacterias

Levaduras

Protozoos Figura 2. Clasificación de los microorganismos.

Fuente: De la Rosa, Prieto y Navarro (2011)

15

Acelulares

Virus

Priones

2.1.1. Bacterias

Microorganismos unicelulares que no tienen núcleo ni orgánulos metabólicos específicos y

que precisan un huésped para cubrir sus necesidades nutricionales y ambientales. (19)

Clasificación de las bacterias de acuerdo a su forma, agrupamiento, forma de

respiración y afinidad tintorial

Figura 3 Clasificación de las bacterias de acuerdo a los criterios de: forma, agrupamiento, forma de

respiración y afinidad tintorial. Fuente: Romero (2007).

2.8.ESTAFILOCOCOS.

2.8.1. CARACTERISTICAS GENERALES.

Estafilococos es una palabra que se deriva del griego que significa racimos de cocos porque

ellos tienden a agruparse de esa manera, aunque también se los encuentra de forma única, en

16

pareja o en cadenas cortas. Los estafilococos son cocos Gram positivos cuyo diámetro varía

de 0,5 a 1,5 um, aerobios facultativos, catalasa positivo, no móviles, son capaces de crecer

en un medio de 10 % de cloruro de sodio, en una temperatura de 18 a 40 °C. Se pueden

encontrar en la piel y las mucosas del ser humano (20).

Los estafilococos presentan un metabolismo muy activo, crecen rápidamente en varios

medios de cultivo y producen algunos pigmentos de color blanco y amarillo. Los

estafilococos patógenos producen coagulación del plasma y hemólisis, también fabrican

varias toxinas y enzimas extracelulares (21).

2.8.2. CULTIVO Y CRECIMIENTO.

Los estafilococos crecen de una forma efectiva en casi todos los medios bacteriológicos a

una temperatura de 37 °C. En los medios sólidos las colonias se presentan en formas

redondas, lisas, brillantes y prominentes. Además se habla de que los estafilococos producen

catalasa, ácido láctico y fermentan carbohidratos; son relativamente resistentes a la

desecación al calor (resisten 50 °C durante 30 min) y también al cloruro de sodio al 9 %, así

6 mismo pueden inhibirse con facilidad ante sustancia como el hexaclorofeno al 3 %. (21).

2.8.3. ESTRUCTURA ANTÍGENA.

Figura 4. Estructura de la pared de los microorganismos del género Staphylococcus.

Fuente: (Negroni, 2004).

17

Los estafilococos en la pared celular contienen polisacáridos, proteínas antígenas y otras

sustancias. El peptidoglucano que es un polímero polisacárido proporciona el exoesqueleto

rígido de la pared celular, cuando este se expone a un ácido fuerte o lisozima la destruye, de

aquí la importancia que este tiene para la patogénesis de la infección puesto que induce la

producción de interleucina-1 y de anticuerpos opsónicos en los monocitos, tienen una

actividad parecida a endotoxina y activa el complemento (21).

La mayoría de estafilococos producen una capa de limo o biopelícula que es hidrosoluble y

laxa formada por monosacáridos, proteínas y pequeños péptidos en una cantidad que es

dependiente de condiciones de crecimiento y factores genéticos. Esta sustancia une las

bacterias a cuerpos extraños (prótesis valvulares, injertos, catéteres) y tejidos, de ahí la

importancia de esta propiedad para la supervivencia de los estafilococos coagulasa negativos

(22).

Los ácidos teicoicos son polímeros de glicerol o fosfato que también forman parte de la pared

celular, mediante una unión lipofílica se unen al peptidoglucano estimulando la respuesta

humoral específica según explicó (23).

La proteína A también forma parte de la pared celular de muchas cepas de estafilococo esta

se une a la porción Fc de las moléculas IgG. La proteína A es un reactivo importante para

diagnóstico e inmunología porque la proteína A unida con moléculas IgG dirigidas contra un

antígeno bacteriano específico aglutinan las bacterias que poseen este antígeno (21).

2.8.4. ENZIMAS Y TOXINAS.

La enzima más conocida es la coagulasa que actúa formando un coágulo que hace que el

microorganismo se internalice, siendo de esta manera más fácil fagocitarlo, mediante

estudios se ha comprobado que la coagulasa aumenta la permeabilidad capilar y estimula la

contracción del músculo liso. La toxina α daña las células de la piel, el músculo liso, las

plaquetas y los macrófagos. La toxina β o esfingomielinasa C es tóxica para células que

tienen esfingomielina, La toxina γ actúa sobre los fosfolípidos de la membrana. La toxina δ

es tóxica para varias células polimorfonucleares, macrófagos, linfocitos y plaquetas (24).

18

2.8.5. EPIDEMIOLOGÍA.

Los staphylococcus son parásitos humanos q viven en continuo movimiento y en todas partes

formando parte de la biota habitual razón por la cual pueden originar infecciones endógenas

y exógenas. Los niños recién nacidos, los pacientes con quemaduras, los enfermos

quirúrgicos, los inmunodeprimidos, los individuos tratados con inmunosupresores, los

enfermos con virosis del aparato respiratorio y quienes tiene enfermedad granulomatosa

crónica son susceptibles a la contaminación con estafilococos (24).

Figura 5 Colonia de Staphylococcus Fuente: Cristian Chalco Elaborado: Cristian Chalco

2.8.6. CLASIFICACIÓN.

Los estafilococos comprenden 45 especies y 24 subespecies de las cuales los staphylococcus

capitis se reproducen en regiones con glándulas sebáceas como por ejemplo en las regiones

como la frente, los staphylococcus aureus coloniza las narinas anteriores, los staphylococcus

haemolyticus y hominis se encuentran en lugares donde hay glándulas apócrinas como las

axilas (22).

19

2.8.6.1. STAPHYLOCOCCUS AUREUS.

Figura 6. Colonia de Staphylococcus aureus

Fuente: (Ryan & Ray, 2010) (25).

El staphylococcus aureus también llamado staphylococcus dorado es el principal patógeno

de este grupo, la mayoría de personas alguna vez en su vida podrían presentar alguna

infección causada por este tipo de estafilococo que podría ir desde una intoxicación

alimentaria, infecciones cutáneas leves hasta infecciones complejas que pueden llegar a

poner en peligro la vida (21)

El staphylococcus aureus se encuentra presente mayoritariamente en las fosas nasales

humanas, pero también se localizan en el tracto gastrointestinal y urogenital, en heridas

infectadas, en quemaduras o en la piel simplemente se podría afirmar que este tipo de

estafilococo está presente en casi todo el cuerpo y sus secreciones. Se cree que entre 25% y

50% de seres humanos son portadores de Staphylococcus Aureus (26).

Uno de los microorganismos fundamentales en la medicina es el Staphylococcus aureus

porque es el responsable de desencadenar algunas de enfermedades, producidas por acción

directa o mediante la acción de sus toxinas (27).

20

2.8.6.1.1. PATOGENIA.

El staphylococcus aureus es hemolítico, produce coagulasa y un pigmento amarillo. La

capacidad patógena de este microorganismo tiene un efecto combinado de toxinas, factores

extracelulares y propiedades invasivas de las cepas, razón por la cual varia de gran manera

las enfermedades que llega a causar por un lado la intoxicación alimentaria estafilocócica por

ingestión de la toxina pre elaborada, por otro lado en cambio tenemos los abscesos

diseminados en los órganos y la bacteriemia estafilocócica (21).

2.8.6.1.2. MANIFESTACIONES CLÍNICAS.

2.8.6.1.3. INTOXICACIÓN ALIMENTARIA POR ESTAFILOCOCOS.

Es una enfermedad frecuente más grave que una infección, se debe a la acción de una toxina

bacteriana presente en los alimentos como por ejemplo las carnes curadas (cerdo curados con

sal, jamón), bollas rellenos con crema, helados y ensalada de patatas (20).

Al ingerir alimentos que están contaminados con enterotoxinas estafilococas se puede

producir síntomas como vómitos y diarrea agudos después de una a cinco horas.

Generalmente el paciente no presenta fiebre, pero si malestar corporal, la recuperación de

esta intoxicación es rápida, se puede complicar cuando afecta a personas ancianas o que

padecen alguna otra enfermedad (25).

El tratamiento de esta enfermedad se centra en aliviar los dolores abdominales, la diarrea y

reponer los líquidos perdidos. Los antibióticos no están indicados en este tipo de intoxicación

porque es causada por una toxina preformada y no por microorganismos en procesos de

replicación (20).

2.8.6.1.4. SÍNDROME DE SHOCK TÓXICO.

En 1928 en Australia es donde se produce el primer brote de este síndrome en niños, 50 años

más tarde aparecieron casos pero en mujeres menstruantes que padecían esta enfermedad

porque las cepas de staphylococcus aureus se multiplicaban rápidamente en tampones 12

21

superabsorbentes. Después de retirar estos tampones del mercado la incidencia de esta

enfermedad descendió de manera acelerada (23).

Esta enfermedad tiene la característica de presentar fiebres muy elevadas, vómitos, dolores

musculares, diarrea, irritación faríngea, existe la posibilidad de que el paciente pueda

desarrollar una erupción cutánea con descamación (25).

2.8.6.1.5. SÍNDROME DE LA PIEL ESCALDADA ESTAFILOCÓCICA

También llamada enfermedad de Ritter, que se caracteriza por un enrojecimiento e

inflamación se extiende por el resto del cuerpo en alrededor de 48 horas. Después se forman

ampollas y vesículas cutáneas que contienen líquido claro sin microorganismos ni leucocitos.

Al pasar 7 días más o menos se recupera el epitelio de una forma intacta, sin dejar cicatrices

porque solamente se desprende la capa superior de la epidermis (22).

Figura 7. Síndrome estafilocócico de la piel escaldada en un neonato Fuente: (Ryan & Ray, 2010) (25).

22

2.9.6.2.1.6. STAPHYLOCOCCUS EPIDERMIDIS.

El estafilococo epidermis es la causa menos común de infecciones oportunistas, su

crecimiento no produce hemólisis, es coagulasa negativo, puede inventar válvulas cardíacas

naturales (causada por la inoculación de microorganismos en una estructura valvular dañada)

o protésicas (los microorganismos son introducidos el momento de la cirugía) (20).

2.8.6.1.6. STAPHYLOCOCCUS SAPROFÍTICO.

El estafilococo saprofítico produce infecciones en el tracto urinario sobre todo de mujeres

que presentan síntomas como dolor al orinar, pus en orina y un gran número de bacterias en

la orina. Este tipo de infecciones responden rápido a los antibióticos apropiados (20).

2.9.MÉTODOS DE IDENTIFICACIÓN DE AGENTES BIOLÓGICOS

2.9.1. CULTIVOS

Es una población de microorganismos que crece en un medio artificial, y el soporte que

permite el crecimiento de las bacterias fuera de su hábitat se llama medio de cultivo. Este

método de identificación de microorganismos del cultivo se realiza a partir de una muestra o

microorganismos tomados de la superficie o lugar a analizar llamada inoculo el cual se

siembra poniendo en contacto con el medio de cultivo (28).

24

2.9.2. PLACAS PETRIFILM

Las Placas Petrifilm son un método confiable con análisis certificados por la FDA para su

utilización, la misma que permite detectar contaminación microbiana de forma fácil sobre

varios tipos de superficie y que permite la identificación en tiempos más cortos, así como

reducción de costos y espacio, en las cuales se puede efectuar la detección de

microorganismos como:

Aerobios totales, escherichia coli, hongos y levaduras, listeria, enterobacterias, estafilococos

aureus, entre otros (Cortesía de 3M).

2.9.3. HISOPOS QUICK SWAB DE

Los hisopos Quick Swap son instrumentos que permiten tomar una muestra de superficies

tanto seca como húmeda, ya que permite seguir dos tipos de procedimiento en dichas

superficies; cuyas partes son de arriba abajo un bulbo que contiene caldo letheen el mismo

que neutraliza sanitizantes y permite la combinación de diluyentes como solución salina al

0,9%, agua peptonas al o,1% e incluso agua destilada; una válvula separadora; un tubo en

cuyo interior se encuentra el swab o hisopo con el cual se tomara la muestra y el tubo que

cubre este permite medir los centímetros cúbicos que se añaden; por lo que este dispositivo

omite varias funciones como la función de las pipetas (Cortesía de 3M).

25

CAPITULO III

3. METODOLOGÍA

3.1.Diseño de la investigación

De acuerdo a los objetivos planteados es un estudio de tipo EXPERIMENTAL, IN VITRO.

3.2.Población, tamaño de muestra

Población.- El universo de este estudio fue finito, es decir se tomará 54 muestras de curetas

periodontales (N° 1,2) luego de haberse sometido al proceso de esterilización en Clínica

Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.

3.3.Tamaño de la muestra.

Calcular el tamaño de la muestra de una población de 62 elementos con un error de muestreo

del 5% y nivel de confianza del 95%.

Donde:

n: Tamaño de la población

p: Probabilidad a favor

q: Probabilidad en contra. q= (1-p)

Z: nivel de confianza, que al 95%, sugiere trabajar con el valor de 1,96

e: Error de estimación, en este caso un error del 5%.

N: Universo

26

VALORES A ESTIMAR FORMULA:

qpZeN

NqpZn

***

***22

2

𝒏 =(𝟏.𝟗𝟔)𝟐×(𝟎.𝟓)×(𝟏−𝟎.𝟓)×(𝟔𝟐)

(𝟔𝟐)×(𝟎.𝟎𝟓)𝟐+(𝟏.𝟗𝟔)𝟐×(𝟎.𝟓)×(𝟏−𝟎.𝟓)

𝒏 =(𝟑.𝟖𝟒𝟏𝟔)×(𝟎.𝟓)×(𝟎.𝟓)×(𝟔𝟐)

(𝟔𝟐)×(𝟎.𝟎𝟎𝟐𝟓)+(𝟑.𝟖𝟒𝟏𝟔)×(𝟎.𝟓)×(𝟎.𝟓)

𝒏 =(𝟑. 𝟖𝟒𝟏𝟔) × (𝟎. 𝟐𝟓) × (𝟔𝟐)

(𝟎. 𝟏𝟓𝟓) + (𝟎. 𝟗𝟔𝟎𝟒)

𝒏 =𝟓𝟗. 𝟓𝟒𝟒𝟖

𝟏. 𝟏𝟏𝟓𝟒

𝒏 =𝟓𝟗.𝟓𝟒𝟒𝟖

𝟏.𝟏𝟏𝟓𝟒

𝒏 =53.38

Tamaño de la muestra 𝒏 =54

n =?

e 5% = 0.05

Z 95% = 1.96

N 62

p 0.5

q (1 - 0.5) = 0.5

27

3.4.Criterios de inclusión y exclusión

3.4.1. Criterios de inclusión.

Instrumental del Área de periodoncia (curetas N° 1,2) de los estudiantes de 9no

semestre.

Instrumental luego de haber sido sometido al proceso de esterilización.

3.4.2. Criterios de exclusión.

Instrumental que este en mal estado.

3.5.Variables

3.5.1. Conceptualización de las variables:

VARIABLE DEPENDIENTE

AGENTES BIOLÓGICOS O MICROORGANISMOS.- Los agentes biológicos son

bacterias, virus, hongos, parásitos, sus toxinas, o todos ellos, los cuales poseen ciertas

características a considerar, como patogenicidad, virulencia y poder antigénico. (18)

VARIABLES INDEPENDIENTES

CURETAS PERIODONTALES ESTERILES.- Los instrumentos manuales más utilizados

en la práctica odontológica son las curetas, debido a que son instrumentos con mayor acceso

a la anatomía subgingival, y se utilizan para remover biofilm, depósitos de cálculos

residuales, alisar la superficie de la raíz y el curetaje de tejidos blandos(2).

28

Definición operacional de las variables

VARIABLE DEFINICION OPERACIONAL TIPO CLASIFICACIÓN INDICADOR

CATEGÓRICO

ESCALA DE

MEDICIONES

Curetas

periodontales

estériles

Son instrumentos con mayor acceso a la

anatomía subgingival, y se utilizan para

remover depósitos de cálculos residuales,

alisar la superficie de la raíz y el curetaje

de tejidos blandos.

Independientes Cuantitativa

Discreta

Hisopo humedecido en

tioglicolato

Cualitativa Ordinal

Agentes

biológicos o

microorganismos

Los agentes biológicos son bacterias,

virus, hongos, parásitos, sus toxinas, o

todos ellos, los cuales poseen ciertas

características a considerar, como

patogenicidad, virulencia y poder

antigénico

Dependientes Cualitativa Ordinal

- bacterias

- virus

- hongos

-parásitos

Cualitativa ordinal

1. presencia

2. ausencia

29

3.6.Estandarización

Previo al estudio, se llevará a cabo la estandarización en la cual el investigador será la misma

durante todo el estudio, entrenado y calibrado por la Dra. Marina Dona.

Los parámetros estandarizados fueron los siguientes:

a) Los medios de cultivo para realizar las pruebas.

pH

Humedad

b) El tiempo de incubación.

c) La temperatura de incubación.

3.7. TÉCNICAS E INSTRUMENTOS PARA RECOLECCIÓN DE DATOS

Para la recolección de datos, tomé en consideración el instrumental de periodoncia

mencionado y seleccionado anteriormente en el proyecto de investigación cureta 1/2 la cual

se usa para piezas dentales anteriores y caninos. (fig. 8).

Los instrumentos fueron tomados según los criterios de inclusión.

Figura 7 Instrumental seleccionado

Elaborado: Cristian Chalco

30

Luego de abrir la funda estéril procedí a tomar la cureta del mango y con un hisopo estéril

humedecido en caldo de cultivo estéril, tomé la muestra rotándolo sobre sí mismo y

recorriendo la superficie de la cureta 1-2 y lo pasé al caldo de cultivo (tioglicolato) al cual

lo cerré con una gasa estéril para incubarlo por 48 h y luego pasarlo al medio de cultivo

(agar sangre) (29).

Figura 8 Selección de cureta 1-2

Fuente: Cristian Chalco Elaborado: Cristian Chalco

Figura 9 Toma de muestra con hisopo estéril embebido en tioglicolato


31

Figura 10. Colocación de la muestra en el tubo con tioglicolato y sellado con algodón estéril


3.8.Almacenamiento y Transporte de Muestras.

Luego de tomar las muestras de la parte activa de las curetas 1-2 pertenecientes a los

estudiantes de Clínica Integral de 9no semestre, llevé las muestras al Laboratorio de

Microbiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.

Figura 11. Muestras llevadas al Laboratorio de Microbiología de la F.O de la UCE


32

3.9. Técnica de procesamiento

Al llegar laboratorio de microbiología coloqué los tubos de ensayo en la incubadora a una

temperatura de 32°C-38°C (35°C) por un tiempo de 48horas

Figura 12 Colocación de la muestra en la Incubadora


3.9.1. Siembra de microorganismos

Las muestras las sembré en agar sangre en una caja tetra-Petri para facilitarme mi estudio

la siembra la hice en la cámara de seguridad biológica estrié la muestra con el mismo

hisopo en los diferentes cuadrantes codificados anteriormente y lo incube por 48 h a 35°C

±2 (30).

Figura 13 Caja Tetra-Petri codificada


33

Figura 14 Estriado de la muestra en Agar sangre


Figura 15 Cajas Tetra-Petri en incubadora por 48h


34

3.9.2. Crecimiento de microorganismos

Luego de 48 h procedí a ver si existió crecimiento microbiano (30).

Figura 16 Crecimiento bacteriano Cocos y Bacilos


3.9.3. Identificación de microorganismos mediante pruebas Bioquímicas

Las colonias que crecieron en agar sangre fueron sometidas a varias pruebas bioquímicas

para identificar los microorganismos.

Ausencia de pigmentación en agar sangre (no hemolítica).

35

3.9.4. Prueba Tinción gram.

1. Con una punta llevé la colonia seleccionada al portaobjeto.

Figura 17 Llevamos la muestra al porta objetos y lo fijamos


1. Apliqué violeta de genciana

2. Lavé con agua

Figura 18 Tinción Gram. Aplicación de violeta de genciana


3. Apliqué lugol.

4. Lavé con agua.

36

Figura 19. Tinción gram aplicación de lugol


5. Apliqué alcohol acetona

Figura 20. Tinción gram aplicación de alcohol acetona


6. Apliqué safranina

7. Lavé y sequé

Figura 21. Tinción gram aplicación de safranina


37

8. Observé al microscopio óptico, es conveniente hacerlo con el lente de aumento

10x y con aceite inmersión

Figura 22. Observación al microscopio


Las bacteria Gram negativas se decoloraron y se tiñeron de rosado.

Las bacteria Gram positivas no se decoloraron y mantuvieron el color de cristal

violeta.

Figura 23. Tinción Gram. Observación a través del microscopio


38

3.8. Aspectos bioéticos

Respeto a persona y la comunidad

El trabajo de investigación se trata de un estudio in vitro, se tomó muestras de superficies

inertes, es decir no hubo riesgo alguno de la vida humana. Las personas que realizamos la

manipulación y estudio de las muestras hemos sido capacitados por el coordinador de

Laboratorio de Microbiología para el manejo y cuidado de acuerdo al protocolo de

bioseguridad del Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central del Ecuador (ANEXO A)

Esta investigación se realizó en absoluta confidencialidad sobre la identidad de cada uno de

los participantes, porque a cada una de las muestras se le asignó un código que fue manejado

exclusivamente por los investigadores. (Anexo B).

3.9.Beneficios

Beneficiar a la comunidad científica al aportar con datos inéditos, al no haber

estudios a nivel nacional sobre la Presencia de Microorganismos en instrumental

de periodoncia luego del proceso de esterilización mediante un estudio

microbiológico

Aportar con el presente estudio científico a los estudiantes de la Facultad de

Odontología de la Universidad Central del Ecuador, sobre la presencia de

microorganismos potencialmente patógenos para nuestros pacientes y así como

fuente de contaminación hacia nosotros como profesionales de la salud.

Crear un precedente para que defina una normativa de control y revisión de

instrumentos odontológicos en los periodos académicos de los estudiantes de

Odontología, para mantener la bioseguridad y asepsia en el campo clínico

odontológico.

3.10. Autonomía.

El Principio de Autonomía exige el respeto a la capacidad de decidir de las personas, en este

caso del estudiante participante, y quien tiene el derecho a que se respete su voluntad.

La participación en este estudio es voluntario siendo así una alternativa para el estudiante de

Clínica Integral de 9no Semestre de la Facultad de Odontología que decida si desea participar

39

en el estudio, para ello debe firmar la Autorización y el Consentimiento Informado

respectivo, para la toma de la muestra de su instrumental de periodoncia (curetas). (Anexo

B)

Figura 24.Firma del Consentimiento Informado.

Fuente: Cristian Chalco. Elaboración: Cristian Chalco

3.10.1. Beneficencia

Asegurar una atención odontológica de calidad a nuestros pacientes, al aportar

con el presente estudio tanto para los estudiantes de odontología como para el

personal de salud.

Concientizar a los estudiantes de odontología, de los microorganismos presentes

en su instrumental de periodoncia (curetas), que se convierten en potenciales

focos de infecciones cruzadas.

Evitar complicaciones de Salud en los pacientes inmunodeprimidos los cuales

corren un alto riesgo de contaminación.

3.10.2. Voluntariedad

La participación en este estudio es voluntario por lo tanto es una alternativa para el estudiante

de Clínica Integral de la Facultad de Odontología que decidir si desea participar en el estudio,

para ello deberá firmar el Consentimiento Informado y la Autorización respectiva para la

toma de la muestra del instrumental de periodoncia (curetas N-°1,2). (Anexo B)

40

3.10.3. Confidencialidad

Se guardó absoluta confidencialidad sobre la identidad de cada uno de los estudiantes

participantes de Clínica integral de 9no semestre de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central del Ecuador, porque a cada una de las muestras se le asignó un código

que sustituyó los datos personales de identificación del estudiante, que fueron manejados

exclusivamente por los investigadores, va a ser desde el 01, eliminándose así datos como el

nombre, apellidos, de tal modo que no fue posible determinar la identidad del dueño del

instrumental de periodoncia (curetas).

Por lo tanto, el estudiante no se preocupa sobre los resultados personales relacionados a la

presencia de microorganismos en sus instrumental y tampoco que será divulgado a terceras

personas, concediéndoles la seguridad de que ningún individuo, ni institución, ni la propia

Facultad de Odontología, pueda conocer sus datos obtenidos tanto como por especialidad o

de forma individual, de modo que no se sepa a quién está vinculada la misma. (Anexo B).

3.11. Riesgos

En la investigacion se tomó muestras de superficies inertes, del instrumental de periodoncia

(curetas), por lo que no representa ningún riesgo para el estudiante, siguiendo los

lineamientos de Bioseguridad de acuerdo a las normas establecidas y especificadas en el

Reglamento de “Manejo de los Desechos Infecciosos”. (Anexo H).

3.11.1. Población vulnerable

No hubo población vulnerable en el desarrollo de la investigación.

La cooperación del estudiante de Clínica Integral de 9no Semestre de la Facultad de

Odontología de la Universidad Central del Ecuador, en este estudio fue voluntario, la

población con la que se realizó la investigación tuvo la plena libertad de decidir su

colaboración en el proyecto de tesis, quienes nos facilitaron sus Instrumental Odontológico,

objeto en nuestro estudio, que nos determinará las presencian o no de microorganismos.

41

3.12. Idoneidad ética y experticia técnica

Nos sentimos en la capacidad y seguridad que la experiencia obtenida en la Institución de

formación, nos permitió desarrollar en forma oportuna, limpia y transparente todas las

actividades que hemos realizado de forma pública y privada. Académicamente, las buenas

relaciones interpersonales y la capacitación de los profesionales; que consideramos docentes

éticos y sabios, que ponen énfasis, alma y vida en lo que realizan, con mucha fortaleza e

inteligencia con los que cuenta la Facultad de Odontología de la Universidad Central

Ecuador, para que como estudiantes nos sea el aprendizaje beneficioso e impulsarnos a ser

mejores personas y profesionales de la salud.

La idoneidad ética es una práctica cotidiana de los valores, diaria y continua, que nos hace

líderes, para alcanzar un todo de superación individual y colectiva. El proyecto planteado

busca un interés académico único, orientada a la obtención de nuevos conocimientos y su

aplicación para la solución a problemas o interrogantes de carácter científico que nos permita

ver más allá de escritos buscando resultados que nos lleve a la conciencia de responsabilidad

para con seres humanos, ese es nuestro trabajo, estamos comprometidos a cumplir con las

normas y reglas para con la sociedad y así, tener prácticas sanas al exponer una vida. (Anexo

D-1). (Anexo D-2)

3.13. Aspectos metodológicos

Se realizó el adecuado procedimiento para la obtención de las muestras con todas las normas

de bioseguridad que requiere el presente estudio (uso de gorro, guantes, mascarilla y bata

desechable) no se expuso al estudiante a ningún riesgo de contaminación, se recolectó la

muestra con un hisopo previamente esterilizado para luego ser colocado dentro del tubo de

ensayo, posteriormente la muestra se llevó al Laboratorio de Microbiología de la Facultad de

Odontología de la Universidad Central del Ecuador en la cámara de seguridad biológica.

Todos los materiales de bioseguridad como guantes, mascarillas, gorro desechables, fueron

depositados en una funda roja (para desechos infecciosos y especiales). (Anexo F). En el

Laboratorio de Odontología las muestras no representaron ningún riesgo para el personal de

salud que labora en el laboratorio, los tubos de ensayo fueron codificados (enumeradas).

Para el procedimiento restante y para el manejo adecuado de desecho infecciosos se siguió

el manejo interno de desechos biológicos dentro del establecimiento, ellos trabajan

42

conjuntamente con la Empresa Pública Metropolitana Integral de Residuos Sólidos.

“EMGIRS-EP”. (Anexo H)

Desechos infecciosos

“Los desechos de laboratorio son aquellos que contienen gérmenes patógenos y, por tanto

son peligrosos para la salud humana, los cultivos de agentes infecciosos y desechos

biológicos, cajas Petri, placas de frotis y todos los instrumentos para manipular, mezclar o

inocular microorganismos”. (31)

Los desechos serán clasificados y separados por los responsables.

Las cajas Petri se colocaron en autoclave Parámetros usados 134° C a 1,1 atmósferas, por un

periodo de 30 min (mediante la combinación de calor y presión proporcionada por el vapor

de agua, en un tiempo determinado) y posterior a ello se colocó en funda roja respectivamente

rotulada. El resto de materiales como Hisopos, serán colocados en fundas rojas rotuladas.

Figura 25. Desechos Biológicos. Preparación de la Autoclave.

Fuente: Andrea Bastidas. Elaboración: Cristian Chalco

Posteriormente el manejo externo de desechos biológicos será, llevados al área de Depósito

Intermedio de Desechos Infecciosos “área de almacenamiento Final”. El manejo externo de

desechos biológicos, será efectuado por la Empresa Pública Metropolitana Integral de

Residuos Sólidos. “EMGIRS-EP”.

43

CAPITULO IV

4. RESULTADOS

4.1.Presentación y análisis de resultados

Para el análisis estadístico de la prueba de laboratorio que sustenta la presente

investigación, se han utilizado las herramientas tecnológicas como Excel 2016 y SPSS

V.23, con las cuales se ha procesado la información obtenida del laboratorio y cuyo análisis

se pone a consideración en las siguientes tablas y gráficos, que permitan demostrar los

objetivos e hipótesis de la investigación.

Se realizaron estudios microbiológicos de las curetas periodontales (N 1,2) utilizando un

medio de cultivo compuesto por agar sangre. Para la verificación de cintas testigos en

fundas estériles, donde, se encontraban las curetas periodontales (N 1,2), se tomó de las 54

fundas existentes, 1 cureta (N1-2) de cada una (cada funda contenía 4 curetas de diferente

numeración), verificando el cambio de color de la cinta testigo de un color blanquecino al

inicio, a uno obscuro (café o pardo), luego del proceso de esterilización.

Tabla 1Estado de fundas, luego de esterilización

Frecuencia

Porcentaje

válido

Porcentaje

acumulado

Selladas sanas 35 64.8% 64.8%

Selladas con indicios de

corrosión 3 5.6% 70.4%

Abiertas o rotas 16 29.6% 100.0%

TOTAL 54

Fuente: Cristian Chalco

Elaboración: Ing. Fernando Guerrero (2017)

44

Gráfico 1

Estado de fundas estériles, luego de un tiempo del procedimiento

En la tabla y gráfico 1 se detalla el estado en que se encontraron las fundas de esterilización

pasados unos días de haber realizado el procedimiento, teniendo un 64.8% de fundas

completamente selladas y sanas, un 29.6% de fundas se encontraban abiertas o rotas,

poniendo en riesgo de contaminación a la cureta, también se encontró un 5.6% de fundas

que a pesar de estar selladas, existían indicios de corrosión en las curetas que contenían, lo

cual también genera un grado de contaminación del instrumental.

En el caso de las fundas abiertas es posible atribuir el suceso a la mala aplicación de los

protocolos en el manejo del instrumental por parte de quienes los manipulan, teniendo

como resultado la presencia de microorganismos a pesar de haber sido esterilizados, lo cual

pone en riesgo la salud del paciente. En el caso de las fundas selladas con herramientas con

indicios de corrosión, es posible atribuir el hecho a una inadecuada limpieza antes de

realizar la esterilización.

Para la comprobación de la existencia de residuos biológicos o microorganismos después

del proceso de esterilización, a continuación, se presentan los siguientes resultados:

0,0%

20,0%

40,0%

60,0%

80,0%

Selladas sanas Selladas con corrosión Abiertas o rotas

64,8%

5,6%

29,6%

Estado de fundas estériles, pasado un tiempo del procedimiento

45

Tabla 2 Niveles de Estafilococo presentes en las curetas analizadas

Frecuencia

Porcentaje

válido

Porcentaje

acumulado

Válido Ausencia 45 83.3% 83.3%

Presencia 9 16.7% 100.0%

Total 54 100%



Gráfico 2


En la tabla y gráfico 2 se presentan los resultados luego de la esterilización de las curetas y

se ha establecido que un 83.33% de ellas se encuentra completamente estériles, es decir

presentan ausencia de microorganismos, sin embargo existe un 16.7% que tiene presencia

de estafilococo, lo cual implica a simple vista una ineficiencia en el procesos de

esterilización; sin embargo es posible que existan otros factores como el incumplimiento de

protocolos en el manejo del instrumental que puedan incidir en la presencia o no de

contaminantes.

0,0%

50,0%

100,0%

Ausencia Presencia

83,3%

16,7%

Niveles de Estafilococo presentes en las curetas analizadas

46

Tabla 3 Bacilo Gram (-)

Frecuencia

Porcentaje

válido

Porcentaje

acumulado

Válido Ausencia 49 90.7% 90.7%

Presencia 5 9.3% 100%

Total 54 100.0%



Gráfico 3


De la misma forma en la tabla y gráfico 3, se presentan los resultados luego de haber

esterilizado las 54 curetas (N 1-2), en donde se tiene un 90.7% de ellas completamente

esterilizadas, es decir que no presentan contaminación alguna; mientras que, en un 9.3%

existe la presencia de Bacilo Gram (-), lo cual también hace presumir ineficacia en el

proceso de esterilización.

Para la evaluación de la eficacia de la esterilización de las curetas periodontales (N 1,2) en

Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador

mediante un medio de cultivo, se realizó la prueba estadística de t estudent para muestra

0,0%

20,0%

40,0%

60,0%

80,0%

100,0%

Ausencia Presencia

90,7%

9,3%

NIvel de Presencia de Bacilo Gram (-)

47

única, mediante la cual se realiza una comparación entre la media estándar que debe existir

en todas las curetas (en este caso X =1, sin contaminación), versus las medias obtenidas en

las distribuciones que presentan un grado de contaminación esto es Presencia de

estafilococos X = 1.17 y presencia de Bacilo Gram X = 1.09, si p-valor < 0.05 (5% de error

permitido), entonces existe una diferencia significativa entre las variables y el estándar.

Tabla 4 Estadísticas de muestra única

N Media

Desviación

estándar

Media de

error

estándar

Estafilococo 54 1.17 0.376 0.051

Bacilo Gram (-) 54 1.09 0.293 0.040



La tabla 4 presenta los valores estadísticos de las variables a ser contrastadas con el valor

estándar 1, que representan el valor para cuando todas las curetas se encuentran sanas o no

infectadas, luego del proceso de esterilización.

Gráfico 4


1,05

1,10

1,15

1,20

Estafilococo Bacilo Gram (-)

1,17

1,09

Comparación de medias de micrororganismos

48

En el gráfico 4 se realiza una comparación entre las medias de las variables contrastadas

para describir la diferencia existente, la cual debemos definir si es estadísticamente

significativa.

Tabla 5 Prueba t estudent de muestra única

Valor de prueba = 1

t gl

p-valor

Sig.

(bilateral)

Diferencia de

medias

95% de intervalo de

confianza de la

diferencia

Inferior Superior

Estafilococo 3.256 53 0.002 0.167 0.06 0.27

Bacilo Gram

(-) 2.326 53 0.024 0.093 0.01 0.17



En la tabla 5, se presenta el resultado de la prueba estadística, en la cual se ha obtenido un

p-valor = 0.002 < 0.05 (5% de error permitido) para la presencia de estafilococo, con lo

cual es posible afirmar que existe una diferencia estadísticamente significativa respecto al

estándar; así mismo, se tiene un p-valor = 0.024 < 0.05 (5% de error permitido), para la

presencia de Bacilo Gram (-); es quiere decir que existe una diferencia estadísticamente

significativa respecto al estándar, en otras palabras, el resultado de la prueba estadística

permite afirmar que la presencia de microorganismos en las curetas luego de la

esterilización son significativas, esto quiere decir que la esterilización no resultó eficiente,

que esta presencia si representa un peligro para los pacientes, en caso de utilizar el

instrumental.

Luego del análisis realizado es posible afirmar entonces que no existe eficacia en la

esterilización de curetas periodontales en Clínica Integral de la Facultad de Odontología de

la Universidad Central del Ecuador.

49

4.2. Discusión

El control de la esterilización mediante un estudio microbiológico es un tema poco difundido

entre los profesionales y estudiantes, por lo que resulta muy importante dar a conocer la

utilidad de estos en la verificación del cumplimiento adecuado luego del proceso de

esterilización, ya que resulta ser un método confiable y que se encuentra disponible en el

mercado; recalcando además que el control de la esterilización debe ser un procedimiento de

rutina que ayuda a reducir el riesgo de transmisión de enfermedades en la consulta

odontológica

Al no haber llegado al 100% de efectividad de esterilización de las curetas periodontales

encontramos 64,8 % de instrumental estaba estéril a más de esto se encontró 5,6% de

instrumental con corrosión, 29.6% de fundas estériles abiertas o rotas estos resultados

coinciden con los hallados por (16) que al no alcanzar el 100% de efectividad en la

esterilización encontraron 60% de las limas, después de esterilizar, no estaba contaminado

y que el 69%, de instrumental de periodoncia, no presentaba contaminación,

Herencia Chiclayo Dagy Fressia (2016) concuerdan con nuestra investigación en que un

instrumental para considerarse estéril debe sacarse de su empaque totalmente sano ya q de

no ser así estaría contaminado, en nuestra investigación encontramos empaques rotos y en

mal estado e incluso instrumental oxidado.

En la tesis de María Orquera (2015) encontró contaminación con Estafilococo 20%;

Enterococo 0%; y Estreptoco 6.67% en instrumental odontológico esto quiere decir q al

encontrar 16.7% de Stafilococo; 9.3 de Bacilo gram(-) en nuestro estudio estamos

confirmando que el microorganismo de preferencia y más común en nuestro instrumental

odontológico por mal uso de los procesos de desinfección y esterilización es el Stafilococo.

Esta afirmación lo corrobora la investigación de Andrea Bastidas (2016) al encontrar

Staphilococcus aureus 96%, Moraxella catarrhalis 36%, Staphilococcus epidermidis 20%, y

Actynomyces israeli 10%.

50

Kramer A. et al. (2010), aportaron que la persistencia de diferentes agentes patógenos

nosocomiales en superficies inanimadas, nos indica que la mayoría de los

microorganismos Gram-positivos tales como Staphilococcus aureus, Enterococcus

spp o Streptococcus pyogenes, Gramnegativos como Acinobacter spp., Escherichia

coli, Klebsiella spp y algunas Micobacterias pueden sobrevivir durante días y meses

en superficies secas. Lo cual se confirma los resultados obtenidos en este estudio, al

evidenciar la presencia de microorganismos en superficies inanimadas y que al no

realizar un adecuado cuidado de los instrumentos odontológicos antes y después de

su proceso de esterilización causan riesgo para el paciente y para todos los

profesionales de salud.

51

CAPITULO V

5. CONCLUSIONES T RECOMENDACIONES

5.1.Conclusiones

Se determinó la presencia de microorganismos en el instrumental de

periodoncia (curetas 1,2) de los estudiantes de Clínica Integral de 9no

semestre de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del

Ecuador. luego del proceso de esterilización.

Estafilococo 16,3%

Bacilo gram (-) 9.3% del 100% de las muestras tomadas.

Se estableció negligencia de los estudiantes al no presentar normas de

bioseguridad en el cuidado de su instrumental

Se concluyó que el Estafilococo al ser un microorganismo que se encuentra

en todo lugar forma parte de la biota habitual razón por la cual pueden

originar infecciones endógenas y exógenas.

5.2.Recomendaciones

Se recomienda dar inicio a futuras líneas de investigación en el campo de

Bioseguridad que permita concientizar sobre las posibles infecciones cruzadas en la

práctica odontológica.

Seria de mucha utilidad realizar charlas y conferencias sobre el tema de

bioseguridad, para enfatizar su importancia y garantizar una atención de calidad.

Realizar más estudios microbiológicos en las diferentes áreas odontológicas ya que

no existen investigaciones como la presente en este estudio.

52

Con este precedente se cree una normativa para el control y revisión periódica de

todo el instrumental de odontología de los estudiantes de Odontología tanto de

Pregrado como de Posgrado, a fin de mantener la bioseguridad y asepsia en este

campo clínico-odontológico.

53

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56

ANEXOS

Anexo 1 Oficio para el Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología.

57

Anexo 2 CONSENTIMIENTO INFORMADO Y CARTA DE CONFIDENCIALIDAD

Autorización del Estudiante.

1. TEMA: “EFICACIA DE LA ESTERILIZACIÓN DE LAS CURETAS

PERIODONTALES EN CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE

ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”.

2. INVESTIGADORES TUTORES Y/O RESPONSABLES:

Dra. Marina Dona.

Estudiante Cristian Chalco.

PROPÓSITO DEL ESTUDIO: Con esta investigación, se pretende dar la información

necesaria con los datos obtenidos de la existencia de microorganismos luego del proceso de

esterilización, y de esta manera dar la importancia a eliminación de microorganismos

patógenos que abarca diariamente nuestras herramientas de trabajo. Por esta razón, se

requiere su aporte, para cumplir con esta investigación y de esta manera se nos permita

concientizar sobre las posibles infecciones cruzadas en la práctica odontológica, según los

datos o con obtenidos con la presente investigación.

3. PROCEDIMIENTO A SEGUIR: Si usted participa en este estudio, procederemos de la

manera siguiente:

a) Recolección de datos: Las curetas periodontales Serán llevados al Laboratorio de

Microbiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.

b) Se tomará la muestra de la parte activa del instrumental de periodoncia (curetas),

utilizando un hisopo previamente esterilizado.

58

c). Se guardará una vez tomada la muestra en los tubos de ensayo, cerrados con sus

respectivas tapas.

d) Se procederá a la siembra del cultivo, que luego serán sometidas a pruebas microbiológicas

para identificar presencia o ausencia de microorganismo.

RIESGOS: En este trabajo se tomaran muestras de superficies inertes, por lo que no

presenta ningún riesgo.

BENEFICIOS: Aportar en el estudio científico sobre la presencia de microorganismos

potencialmente patógenos para nuestros pacientes y así como fuente de contaminación hacia

nosotros como profesionales de la salud. La información recopilada en este estudio espera

incentivar a nuevas investigaciones en la presencia de microorganismos en el instrumental

odontológico logrando realizar un correcto proceso de esterilización, que garantice la

atención odontológica.

4. VOLUNTARIEDAD: La participación en este estudio es voluntario por lo tanto es una

alternativa que usted decida participar en el estudio.

5. COSTOS: Todo procedimiento será absolutamente gratuito, por tanto usted no debe pagar

absolutamente nada.

6. CONFIDENCIALIDAD: Se guardará absoluta confidencialidad sobre la identidad de

cada uno de los participantes, porque a cada una de las muestras se le asignará un código que

será manejado exclusivamente por los investigadores. Por tanto Usted no debe preocuparse

sobre si otras personas podrán conocer sus datos.

NÚMERO DE TELÉFONO DE LOS INVESTIGADORES TUTORES Y/O

RESPONSABLES

Yo comprendo que si tengo alguna pregunta o problema con esta investigación, puedo llamar

a los doctores:

Dra. Marina Dona TLF: 0994601483.

Estudiante: Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga. TLF: 0979176157

59

DECLARACIÓN DEL PARTICIPANTE

YO, ……………………………………………………………………………………… ….

he leído este formulario de consentimiento y he discutido con los doctores los procedimientos

descritos anteriormente. Se me ha dado la oportunidad de hacer preguntas, las mismas que

han sido contestadas a mi entera satisfacción.

Yo comprendo que se me informará de cualquier nuevo hallazgo que se desarrolle durante el

transcurso de este estudio de investigación. Yo comprendo que la participación es voluntaria

y que me puedo retirar del estudio, y esto no tendrá ninguna consecuencia.

Yo comprendo que en este trabajo se tomaran muestras de superficies inertes, por lo que no

presenta ningún riesgo para mi persona. Si tengo preguntas concernientes a mis derechos

como sujeto de investigación en este estudio, puedo contactar a la Dra. Marina Dona o al

Estudiante Cristian Chalco.

Se me ha informado ampliamente del estudio antes mencionado, con sus beneficios, y por

medio de este consiento que se realicen los procedimientos antes descritos. Yo entiendo que

la identidad y los datos relacionados con el estudio de investigación se mantendrán

confidenciales.

Por lo tanto CONSIENTO que mi persona

………………………………………………………………………………., PARTICIPE

EN EL ESTUDIO.

……………………….

FIRMA DEL ESTUDIANTE

60

Fecha: Quito,…….,…………….., del 2016.

Yo he explicado completamente

a………………………………………………………………………………….. La

naturaleza y propósito del estudio antes mencionado y los riesgos y beneficios que están

involucrados en el desarrollo del mismo.

---------------------------------------------------

Dra. Marina Dona

---------------------------------------------------

Estudiante. Cristian Chalco

61

AUTORIZACIÓN DEL ESTUDIANTE.

Quito,…….,…………….., del 2016.

Yo,………………………………….………………número de cédula……….……….,

estudiante del Pregrado de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador,

autorizo que el estudiante egresado Cristian Chalco, pueda tomar la muestra de mi

instrumental de periodoncia utilizando un hisopo previamente esterilizado, para que realice

su investigación con el siguiente tema “EFICACIA DE LA ESTERILIZACIÓN DE LAS

CURETAS PERIODONTALES EN CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE

ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, el mismo

que me fue explicado e informado ampliamente la naturaleza y propósito del estudio antes

mencionado, los beneficios que están involucrados en el desarrollo del mismo, y que el

presente trabajo se tomarán muestras de superficies inertes, por lo que no presenta ningún

riesgo para mi persona.

Yo, comprendo que se guardará absoluta confidencialidad sobre mi identidad en la

participación del presente estudio, porque a cada una de las muestras se le asignará un código

que será manejado exclusivamente por los investigadores, Si tengo alguna pregunta o

problema con esta investigación, puedo llamar a los responsables:

Dra. Marina Dona TLF: 0994601483.

Estudiante: Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga. TLF: 0979176157.

……………………

FIRMA DEL ESTUDIANTE

CERTIFICADO DE NO COINCIDENCIA DEL TEMA

62

Anexo 3 Oficio Declaración de conflictos de interés Quito, 11 de abril de 2017

DECLARACION DE CONFLICTO DE INTERES

Yo Dra. Yo Dr. Dona Vidale Marina Antonia, catedrática de la Facultad de

Odontología de la Universidad Central del Ecuador y con número de cédula

1708884412. Declaro que durante el tiempo que me encuentre desarrollando las

funciones como tutor del proyecto de investigación. “EFICACIA DE LA

ESTERILIZACIÓN DE LAS CURETAS PERIODONTALES EN CLÍNICA

INTEGRAL DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”. Que estará a cargo del Señor

estudiante egresado de la Facultad de Odontología Cristian Eduardo Chalco

Llumiquinga con el número de cédula 1722308747, no tiene ninguna relación

comercial o particular para la realización del mismo.

Atentamente

………………….

Dra. Marina Dona

Tutora

63

Anexo 4 Oficio Declaración de conflictos de interés

Quito, 10 de abril de 2017

DECLARACION DE CONFLICTO DE INTERES

Yo Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga, como estudiante egresado de la Facultad de

Odontología de la Universidad Central del Ecuador y con número de cédula 1722308747.

Declaro que durante el tiempo que me encontré desarrollando las funciones como

investigador del proyecto de investigación. “EFICACIA DE LA ESTERILIZACIÓN DE

LAS CURETAS PERIODONTALES EN CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD

DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”. No

tengo ninguna relación comercial o privada para la realización del mismo.

Atentamente,

……………………………..

Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga

Investigador

64

Anexo 5. Idoneidad ética y experticia del investigador


CARTA DE IDONEIDAD ÉTICA Y EXPERTICIA

Yo Dr. Dona Vidale Marina Antonia, catedrática de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central del Ecuador y con número de cédula 1708884412. He realizado trabajos

de tutoría que me permiten ser un profesional idóneo para guiar la tesis del Sr. Cristian

Eduardo Chalco Llumiquinga, estudiante egresado de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central Ecuador.

Atentamente,

Dra. Marina Dona

Tutora

65

Anexo 6. Idoneidad ética y experticia del investigador


CARTA DE IDONEIDAD ÉTICA Y EXPERTICIA

Yo Cristian Eduardo Chalco Llumiquinga, como estudiante egresado de la Facultad de

Odontología de la Universidad Central del Ecuador y con número de cédula 1722308747.

Declaro que es la primera vez que realizo un proyecto de investigación como requisito para

el proceso de titulación pero durante mi carrera he recibido conocimientos teóricos que me

permiten realizar este estudio.

Atentamente,


Investigador

66

Anexo 7 OFICIO COMITÉ DE ÉTICA

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE ODONTOLOGÍA

UNIDAD DE GRADUACIÓN, TITULACION E INVESTIGACIÓN

OFICIO N°


Sr. Dr.

FERNANDO SALAZAR

PRESIDENTE DEL COMITÉ DE ÉTICA

Presente.-

De mis consideraciones:

Yo el Sr. CRISTIAN EDUARDO CHALCO LLUMIQUINGA, egresado de la facultad de

odontología, cuyo tema es, “EFICACIA DE LA ESTERILIZACIÓN DE LAS

CURETAS PERIODONTALES EN CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE

ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”. Requisito

previo para la obtención del título de Odontólogo, declaro que no existe ningún tipo de

conflicto de interés en el presente tema investigación.

Por la favorable atención que se digne a la presente, anticipo mi agradecimiento

Atentamente


Estudiante de la Facultad de Odontología

67

Anexo 8:oficio para eliminación de desechos infecciosos

68

Anexo 9: Ficha de registro de datos

Ficha de registro de datos

Curetas Periodontales

Microorganismos

Presencia Ausencia

01

02

03

04

05

06

07

08

09

Etc...

TOTAL

69

Anexo 10:Manual para el Manejo de Desechos en Establecimientos de Salud

71

Anexo 11: Abstract

universidad central del ecuador facultad de odontologÍa carrera de … · 2017-09-29 · la...

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