UNIVERSIDAD AUSTRAL DE CHILE Facultad de Ciencias Agrarias

Escuela de Agronomía

Efecto del sustrato y del tamaño de la escama en la inducción de bulbillos de siete cultivares de Lilium x hybridum Hort

Tesis presentada como parte de los requisitos para optar al grado de Licenciado en Agronomía.

Germán Esteban García Cabrera

Valdivia Chile 2002

PROFESOR PATROCINANTE: Sr. Peter Seemann F. Ing. Agr. Dr. rer. hort _______________________ PROFESORES INFORMANTES: Sra. Nancy Andrade S. Ing. Agr. M. Sc. _______________________ Sr. Ricardo Fuentes P. Ing. Agr. M. Sc. _______________________

INSTITUTO DE PRODUCCION Y SANIDAD VEGETAL

I

INDICE DE MATERIAS

Capítulo Página

1 INTRODUCCIÓN 1

2 REVISIÓN BIBLIOGRAFICA 4 2.1 Aspectos generales 4 2.2 Plantas bulbosas 4 2.2.1 Estructura y tipo de bulbos 5 2.3 Métodos de multiplicación para bulbos tunicados

y no tunicados 7 2.3.1 División de bulbos jovenes 7 2.3.2 Escamado 7 2.3.3 Cultivo in vitro 7 2.4 Cultivo del Lilium 8 2.4.1 Descripción botánica 8 2.4.2 Requerimientos básicos para el cultivo del Lilium 9

2.4.2.1 Temperatura 10 2.4.2.2 Luz 11 2.4.3 Principales plagas y enfermedades 12 2.4.3.1 Plagas 12 2.4.3.2 Enfermedades 13 2.4.3.3 Accidentes fisiológicos 14 2.5 Propagación de bulbos de Lilium 14 2.5.1 Cultivo in vitro de Lilium 16

2.5.2 Propagación masiva por escamas in vivo 17 2.5.2.1 Temperatura antes del escamado 18 2.5.2.2 Momento del escamado y que escamas usar 19 2.5.2.3 Sustratos 22 2.5.2.4 Tiempo y temperatura en cámaras de crecimiento 24

II

Capítulo Página

3 MATERIAL Y METODO 26 3.1 Materiales 26 3.1.1 Descripción de variedades 26 3.2 Metodología de trabajo 31 3.2.1 Escamado 31 3.2.2 Preparación de mezclas de sustrato 31

3.2.3 Establecimiento del ensayo 32 3.3 Tipo de mediciones y factores a evaluar 32 3.4 Diseño experimental 33 3.5 Análisis estadístico 33

4 PRESENTACIÓN Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS 37 4.1 Número de bulbillos 38

4.1.1 Tamaño de escamas 38 4.1.2 Tipo de sustrato 40 4.1.3 Interacción, tamaño de escamas x sustrato 40 4.2 Diámetro de bulbillos 41 4.2.1 Tamaño de escamas 42 4.2.2 Tipo de sustrato 44 4.2.3 Interacción, tamaño de escamas x sustrato 44 4.3 Peso de bulbillos 48

4.3.1 Tamaño de escamas 48 4.3.2 Tipo de sustrato 50 4.4 Número de raíces 50 4.4.1 Tamaño de escamas 51 4.4.2 Tipo de sustrato 52 4.5 Largo de raíces 52 4.5.1 Tamaño de escamas 53

4.5.2 Tipo de sustrato 53 4.5.3 Interacción, tamaño de escamas x sustrato 53

III

Capítulo Página

5 CONCLUSIONES 59

6 RESUMEN 61

SUMMARY 62

7 BIBLIOGRAFÍA 63

ANEXOS 68

IV

INDICE DE CUADROS

Cuadro Página

1 Porosidad, densidad aparente y retención de humedad de algunos sustratos

23

2 Efecto de anidado en análisis de varianza

34

3 Promedios totales por variedad, para los parámetros en análisis, número, diámetro y peso de bulbillos, número de raíces y largo de raíces

37

4 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el número de bulbillos en siete variedades de Lilium, a las doce semanas del periodo en cámara

38

5 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el diámetro de bulbillos (mm) en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara

42

6 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el peso de bulbillos (g) en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara

48

7 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el número de raíces en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara

51

8 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el largo de raíces (cm) en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara

52

V

INDICE DE FIGURAS

Figura Página

1 Aspecto externo e interno de un bulbo no tunicado de Lilium

6

2 Producción comercial de bulbos, provenientes de bulbillos de tallo (hipogeos y epigeos) y de las escamas

15

3 Emisión de bulbillos de escamas en multiplicación

19

4 Tipo de plantas desarrolladas durante la propagación por escamas

21

5 Lilium variedad Merostar

27

6 Lilium variedad Stargazer

28

7 Lilium variedad Compass

28

8 Lilium variedad Elite

29

9 Lilium variedad Montreux

29

10 Lilium variedad Polyanna

30

11 Lilium variedad Sancerre

30

12 Escamas utilizadas en el ensayo pertenecientes a variedades asiáticas

35

13 Escamas utilizadas en el ensayo pertenecientes a variedades orientales

35

14 Tratamientos en bolsas negras con su correspondiente clasificación

36

VI

Figura Página

15 Tratamientos en cámara de incubación a temperatura controlada

36

16 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el número de bulbillos en la variedad Elite

41

17 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el diámetro de bulbillos (mm) en la variedad Stargazer

45

18 Desarrollo del bulbillo sobre escama de bulbo oriental 46

19 Desarrollo del bulbillo sobre escama de bulbo asiático

46

20 Desarrollo del bulbillos y de raíces en escamas de bulbos orientales, a las doce semanas de incubación en cámara

47

21 Desarrollo del bulbillos y de raíces en escamas de bulbos asiáticos, a las doce semanas de incubación en cámara

47

22 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el largo de raíces (cm) en la variedad Elite

55

23 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el largo de raíces (cm) en la variedad Montreux

55

24 Bulbillo obtenido de escama grande (variedad Compass), desarrollado en sustrato perlita – vermiculita

56

25 Bulbillo obtenido de escama pequeña (variedad Compass), desarrollado en sustrato perlita – vermiculita

56

26 Bulbillo obtenido de escama grande (variedad Stargazer), desarrollado en sustrato arena – turba

57

27 Bulbillo obtenido de escama grande (variedad Stargazer), desarrollado en sustrato perlita – vermiculita

57

VII

Figura Página

28 Bulbillo obtenido de escama pequeña (variedad Stargazer), desarrollado en sustrato perlita – vermiculita

58

29 Comparación de tamaño de bulbos desarrollados de escamas pequeñas y grandes (variedad Gran Paraíso), en un mismo sustrato (arena . turba)

58

VIII

INDICE DE ANEXOS

Anexo Página

1 Promedios de pesos y largos de escamas utilizadas 69

2 Análisis químico del sustrato. Arena – Turba 71

3 Análisis químico del sustrato. Perlita – Vermiculita 72

4 Análisis de varianza sobre el número de bulbillos 73

5 Análisis de varianza sobre el diámetro de bulbillos 74

6 Análisis de varianza sobre el peso de bulbillos 75

7 Análisis de varianza sobre el número de raíces 76

8 Análisis de varianza sobre el largo de raíces 77

9 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el número de bulbillos

78

10 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el número de bulbillos

79

11 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el peso de bulbillos (g)

80

12 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el peso de bulbillos (g)

81

13 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el diámetro de bulbillos (mm)

82

14 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre diámetro de bulbillos (mm)

83

15 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el número de raíces

84

16 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el número de raíces

85

IX

Anexo Página

17 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el largo de raíces (cm)

86

18 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el largo de raíces (cm)

87

1

1 INTRODUCCIÓN

Hace unos 25 años que la importancia de Lilium como cultivo ha

aumentado enormemente en el mundo. En Chile este desarrollo se ha

producido en los últimos 10 años.

Esto se debe al progreso en el mejoramiento de Lilium, especialmente en

los tipos de híbridos asiáticos y orientales, aumentando las posibilidades para la

producción de bulbos y la rápida propagación clonal que tienen.

Las actividades de hibridadores privados resultan en nuevos cultivares

de Lilium cada año. Como un ejemplo, en la última década se han desarrollado

más de 100 cultivares al año.

El Lilium estos últimos años ha obtenido un lugar privilegiado dentro de

las exportaciones de flores en Chile, llegando a valores el año 1999 de US$

1,99 millones FOB y el año 2000 con US$ 2,26 millones FOB por entrada de

divisas. Actualmente Chile exporta bulbos al hemisferio norte y existe un

creciente interés de parte de grandes compañías por constituir “joint ventures”

con empresas chilenas.

Debido a la gran importancia que rodea a esta especie y por lo

anteriormente descrito, se hace necesario conocer todos sus aspectos de

desarrollo y fisiología. Dentro de los sistemas de propagación hoy en día el mas

utilizado es el método de propagación mediante escamas, esta actividad

generalmente está desarrollada por grandes empresas comercializadoras de

2

bulbos, siendo para los agricultores muchas veces un tema desconocido, es por

ello, que la gran mayoría de los productores de Lilium consideran dentro de sus

costos de producción la compra del bulbo, siendo este un punto importante a

considerar a la hora de tomar la decisión de producir por los costos que esto

significa.

Este método de propagación por escamas puede llegar a ser una muy

buena alternativa para los agricultores, de esta manera ellos serían capaces de

producir sus propios bulbos. Por esta razón, se hace necesario dar a conocer

las características de este método de propagación por escamas y poder

determinar, cuales son los factores que podemos manejar para la obtención de

los mejores resultados.

En relación a esto, se plantean las siguientes hipótesis de trabajo:

− A) Existen diferencias significativas en la propagación por escamas de

bulbillos de Lilium, dependiendo del tipo de escamas (tamaño) que se

utilicen para este propósito.

− B) El buen desarrollo de bulbillos de Lilium mediante propagación por

escamas, tiene relación con el tipo de sustrato que se utilice para este

proceso.

3

Para demostrar el cumplimiento de las hipótesis planteadas se establece

como objetivo general :

− Determinar la aptitud de inducción de bulbillos en las variedades en

estudio y el desarrollo de estos en sustratos inertes.

y como objetivos específicos :

− Determinar la relación entre características de los bulbillos desarrollados

versus tamaño y peso de la escama.

− Establecer la diferencia en el uso de dos sustratos diferentes.

4

2 REVISIÓN BIBLIOGRAFICA

2.1 Aspectos generales. Según SEEMANN y ANDRADE (1999), las principales áreas de

producción florícola del país son las Regiones Quinta y Metropolitana y en

menor grado en la IV y VI Región, además señalan que las plantas bulbosas se

han incorporado en la producción de flores y estructuras vegetativas en zonas

más australes del país aprovechando las condiciones edafoclimáticas optimas

para su cultivo, en áreas comprendidas entre la VIII y XII Regiones.

2.2 Plantas Bulbosas. Las plantas bulbosas representan dentro del Reino Vegetal una de las

divisiones más características y enigmáticas que se pueda imaginar (SORIANO,

1991a).

El concepto de plantas bulbosas se aplica a todas aquellas plantas cuyo

órgano vegetativo corresponde a un bulbo, cormo, rizoma, túbero o tubérculo,

tallo tuberoso, pseudobulbo o a una raíz tuberosa (SEEMANN y ANDRADE,

1999).

Según SORIANO (1991a), un bulbo no es nada más que el resultado

final de una evolución biológica de un vegetal en unas determinadas

condiciones, en la que se adapta tras un proceso de evolución. Existe además

dentro de estas plantas otra característica que reside en su tipo de

multiplicación ya que para perpetuar su especie, lo hacen por medio de unos

órganos de reserva que ellas mismas producen en diferentes zonas de su

5

vegetación, siendo en la mayoría de los casos de aparición en sus axilas

foliares (SORIANO, 1991a).

2.2.1 Estructura y tipos de bulbos. El bulbo es una estructura que consiste

en un tallo axial corto, carnoso, usualmente vertical, que lleva en su ápice un

meristema o primordio floral encerrado por escamas gruesas y carnosas. Es un

órgano de reserva y es producido por plantas monocotiledóneas (HARTMANN y

KESTER, 1997).

Estos mismos autores señalan además que las escamas exteriores del

bulbo, por lo general, son carnosas y contienen nutrientes de reserva, mientras

que las más internas actúan menos como órganos de almacenamiento. En las

axilas de las escamas se desarrollan meristemas que producen bulbos en

miniatura, llamados bulbillos, que cuando alcanzan su tamaño completo son

llamados hijuelos.

Existen diversos tipos de bulbos, entre los cuales se encuentran los

bulbos tunicados o laminados, que tienen escamas exteriores secas y

membranosas, esta túnica protege a los bulbos contra golpes y lesiones, las

escamas se encuentran en capas continuas, concéntricas o láminas, de manera

que la estructura es más o menos sólida (HARTMANN y KESTER, 1997).

Además, existen los bulbos no tunicados o bulbos escamosos. Estos poseen

hojas transformadas, denominadas escamas, estas protegen la yema central.

En este caso el bulbo se dice desnudo ya que no está protegido (BOUTHERIN

y BRON, 1989).

HARTMANN y KESTER (1997), señalan que este tipo de bulbos no

poseen una cubierta seca envolvente, las escamas están separadas y

adheridas a la placa basal. Los bulbos no tunicados se dañan con mayor

facilidad por lo que deben ser manejados cuidadosamente, debiéndose

6

conservar húmedos debido a que los perjudica la desecación. El genero Lilium

posee este tipo de bulbos no tunicados, en ellos se producen raíces a mediados

de verano o después y persisten durante el año siguiente, en la mayoría de las

especies de Lilium también se forman raíces en el tallo, arriba del bulbo. Estos

autores señalan además que en muchas especies presentan raíces contráctiles

que se acortan y jalan al bulbo en el terreno dándole una mayor firmeza a la

planta. En el caso de bulbos tunicados no se desarrollan este tipo de raíces sino

que generan estructuras de tipo estolón que crecen del bulbo. En la Figura 1

se esquematiza la estructura interna y externa de este tipo de bulbos no

tunicado.

FIGURA 1 Aspecto externo e interno de un bulbo no tunicado de Lilium. FUENTE: HARTMANN y KESTER (1997).

7

2.3 Métodos de multiplicación para bulbos tunicados y no tunicados.

A continuación se presentan los métodos mas comunes de propagación

masiva para bulbos tunicados y no tunicados:

2.3.1 División de bulbos jóvenes. Al ser cosechados muchos bulbos se

encuentran acompañados de pequeños bulbos cuyo número es muy variable.

Según HARTMANN y KESTER (1997), si los bulbillos no son removidos,

permanecerán adheridos al bulbo madre por varios años. También comentan

que estos pueden ser removidos y plantados en camas en viveros para que

crezcan hasta un tamaño adecuado o calibre floral.

Este método puede ser utilizado en varios géneros cuyo número de

bulbillos es suficiente (Tulipan, Lilium, Narcissus) teniendo lugar la floración

uno o dos años tras la división (BOUTHERIN y BRON, 1989).

2.3.2 Escamado. El escamado es otro método importante de propagación de

bulbos, principalmente para los no tunicados, que consiste en utilizar escamas

aisladas o escamas gemelas como propágulo. Este método será descrito con

mayor detalle en un capitulo posterior.

2.3.3 Cultivo in vitro. El cultivo de tejidos vegetales in vitro tiene una amplia

gama de aplicaciones, según el objetivo que se desee lograr, e involucra la

utilización de diversos órganos o tejidos de la planta, incluso la utilización de

células. La micropropagación actualmente se está aplicando con gran éxito en

una gran gama de cultivos hortícolas, frutales, forestales y ornamentales

(SEEMANN, 1993).

8

Este ultimo con gran éxito, debido a su uso en el mejoramiento y la

propagación masiva en plantas de importancia ornamental y en la obtención de

nuevas variedades de flores y su rápida masificación.

2.4 Cultivo del Lilium. El Lilium, según SORIANO (1991a), ha constituido desde hace muchos

años, un signo de nobleza, así como la pureza en la religión cristiana. Ha sido

también una de las plantas bulbosas más representadas en los cuadros por los

célebres pintores desde el renacimiento.

Los Lilium son cultivados como flores de jardín, pero principalmente para

flor de corta y como plantas en macetas (SCHIAPPACASSE, 1999a).

2.4.1 Descripción botánica . El género Lilium pertenece a la familia

Liliaceae, subclase monocotiledónea, esta conformado por aproximadamente

100 especies y un gran número de ellas se cultivan para flor de corta o para

planta en maceta o de jardín. Las más interesantes son Lilium longiflorum

Thunb. , de flores blancas y los híbridos producidos por cruzamientos entre

varias especies, principalmente L. speciosum Thunb. y L. auratum Lindl.

(BEATTIE y WHITE, 1993).

El Lilium tiene distintas formas de flores, colores, tamaños y morfología

de bulbos. Casi una docena de especies crecen en Europa, casi dos docenas

en Norte America y aproximadamente 50-60 especies son de Asia, solo L.

martagon L. es distribuido por Asia y Europa. Cerca de 12 especies son

usadas para realizar algunas hibridaciones de cultivares asiáticos, tales como,

L. amabile Palib. , L. bulbiferum L. , L. concolor Salisb. , L. dauricum Ker. , L.

davidii Duch., L. x hollandicum Berg. , L. x maculatum Thunb. , L. leichtlinii

Hook. f. , L. pumilum Del. y L. tigrinum Ker-Gawl. Las especies usadas en el

grupo de los lilium asiáticos tienen una diversidad de colores y formas de flores,

9

además de un amplio rango de tiempos de floración, el primero en florecer

es L. pumilum y el último es L. tigrinum (BEATTIE y WHITE, 1993).

Lilium proviene de Li = blancura, en Celta. Dentro del punto de vista del

cultivo por parte de aficionados, los Lilium se dividen en: híbridos asiáticos,

híbridos orientales híbridos matargon, híbridos candidum, híbridos americanos,

híbridos longiflorum (SORIANO,1991a).

Para otros autores los grupos de Lilium serán los híbridos asiáticos,

híbridos orientales, tipo longiflorum y tipo speciosum, siendo estos los más

utilizados para la producción de flores de corta (BAÑON et al., 1993).

Dentro de las diferentes divisiones, los híbridos asiáticos y los híbridos

orientales distinguen dentro de las flores cortadas, ambos son resultado de

cruzamientos realizados a partir de especies nativas de China y Japón.

También existen los híbridos L/A, que son híbridos de longiflorum con asiáticos,

e incluso A/O, provenientes del cruce de asiáticos con orientales

(SCHIAPPACASSE, 1999a).

Con unos cuantos Lilium, se puede dar un aire de buen gusto al jardín,

ya que suelen ser las plantas bulbosas más refinadas por sus formas y sus

colores (SORIANO, 1991a).

BUSCHMAN (1991), hace mención a lo nuevo del cultivo del Lilium como

flor de corta, generando la aparición continua de nuevas variedades en el

mercado, esto dificulta la decisión de cual de ellas interesan al productor de

flores.

2.4.2 Requerimientos básicos para el cultivo del Lilium. Los Lilium tienen

tres importantes exigencias; drenaje, protección del viento y del calor excesivo,

10

especialmente a los bulbos, y una buena protección de las plagas en particular

las de áfidos y de las enfermedades, el suelo debe ser ligeramente ácido, con

un nivel moderado de los nutrientes principales, siendo indeseables elevadas

cantidades de nitrógeno (SALINGER, 1991).

2.4.2.1 Temperatura. SCHIAPPACASSE (1999a), señala que el Lilium necesita

temperaturas óptimas para su desarrollo de 10 a 12º C en la noche y de 18 a

21º C en el día, se debe cultivar libre de heladas, por lo que se hace necesario

el cultivo bajo plástico para plantaciones invernales. BAÑON et al. (1993),

mencionan que al igual que cualquier planta la temperatura adecuada para

cada grupo es diferente y presenta ciertas peculiaridades varietales. La planta

presenta una temperatura crítica a –2 ºC, con la cual se hiela y muere. En

aquellas localidades en donde las temperaturas sobrepasan las óptimas se

recomienda utilizar malla sombreadora 50% de sombra, no se debe sombrear

demasiado, por lo general los híbridos orientales son mas tolerantes a la falta

de luz que los asiáticos (SCHIAPPACASSE, 1999a).

Para el desarrollo de los híbridos orientales la temperatura óptima de

crecimiento es de 15ºC – 17ºC, temperatura que se debe mantener constante

durante las 24 hrs del día, pudiendo aumentar hasta los 25ºC, bajo 15ºC se

pueden producir caída de hojas (Centro Internacional de Bulbos de Flor s.f.,

citado por MILANO, 1998).

Para el desarrollo de los híbridos asiáticos la temperatura se debe

mantener entre 14ºC a 17ºC durante las 24 hrs, la temperatura puede

aumentar hasta los 20 ºC - 25 ºC, así también la temperatura nocturna puede

llegar a mantenerse entre los 8ºC a 10ºC . Para un buen desarrollo de la planta

de Lilium es necesario una buena formación de raíces, por lo que es necesario

mantener una temperatura baja al inicio del cultivo, de 12 a 13 ºC (Centro

Internacional de Bulbos de Flor s.f., citado por MILANO, 1998).

11

Según Wilson y Peterson (1982), citado por MILANO (1998), la actividad

radical es proporcional a los incrementos de temperaturas del suelo, lo que se

manifiesta por un crecimiento de las raíces en longitud y no en grosor, que

acompañan al bulbo al momento de su plantación. BAÑON et al. (1993),

señalan además que temperaturas elevadas, inducen una precocidad al botón

floral antes de su aparición (24ºC a 30ºC), sin que las temperaturas ambientales

intervengan.

BAÑON et al. (1993), señalan una serie de daños producidos por

temperaturas elevadas, como lo son, un mal desarrollo de las raíces

adventicias, reducción de la longitud del tallo, aborto y abscisión con perdidas

de botones florales.

2.4.2.2 Luz. Es un factor importante a considerar debido a que su insuficiencia

puede causar la caída de botones, un follaje pálido y una vida post-cosecha

mucho menor (SCHIAPPACASSE, 1999b).

GUDE (1991), hace mención de la importancia de la luz como fuente

energética para la fotosíntesis, en este proceso se producen azúcares que

cumplen el papel de proveer la energía y los elementos necesarios para el

crecimiento de la planta. La planta utiliza todo el espectro de la luz visible desde

400 a 700 mm, a excepción del rojo oscuro que va desde los 700 – 800 mm.

VIDALIE (1992), señala que al aplicar luz artificial esta debería ser de

2.000 a 3.000 lux durante 6 horas después de las 22 horas; la iluminación se

aplica a partir de la formación de yemas florales hasta la floración (3 a 4

semanas), se disminuye así el riesgo de aborto de flores y la caída de yemas.

Según GUDE (1991), las plantas bulbosas se clasifican según su

necesidad de luz, es así como tenemos plantas de bulbo que requieren luz para

12

lograr un buen desarrollo de la flor como el Lilium, iris y gladiolo. El otro grupo

es aquel que no requiere de luminosidad para el buen desarrollo de su botón

floral, debido a las grandes reservas contenidas en el bulbo, en este grupo

encontramos al tulipán, narciso y jacinto. Estas plantas pueden desarrollar una

planta completa con flor aun sin contar con luminosidad.

Las posibilidades de cultivar Lilium por todo el año dependerán

exclusivamente de las condiciones ambientales, especialmente temperatura y

luminosidad, es por esto, que en zonas donde no se alcance con la luminosidad

necesaria será indispensable el uso de iluminación artificial para sustituir o

complementar la luz natural (SORIANO, 1991b).

2.4.3 Principales plagas y enfermedades. A continuación se presentan

diversas plagas y enfermedades que afectan el cultivo del Lilium.

2.4.3.1 Plagas. Afidos y Trips: Ambos son agentes vectores de virus y

provocan daños directos. Los ataques de los afidos se localizan en la parte

apical de la planta, en la brotación más tierna. Ataques importantes pueden

provocar deformaciones foliares y en los botones florales. Los Trips son

insectos que se presentan normalmente en la inflorescencia de las plantas,

afectando en forma directa la calidad de las flores y en otros casos dada por su

carácter cuarentenario. Frankliniella occidentalis (Pergande), es unos de los

principales trips que atacan al Lilium, es agente transmisor de virosis y también

provocan daños directos como son picaduras y manchado de los botones

florales, acortamiento de entrenudos y malformaciones florales (CARRILLO,

1999).

Acaro del bulbo: Rhizoglyphus echinopus (Fumouzone y Robin), desarrolla su

actividad parasitaria en el interior del bulbo e incluso puede afectar a las raíces.

Provoca una serie de heridas por las que pueden penetrar posteriores

13

enfermedades criptogámicas que aceleran la pudrición del bulbo y pérdida de la

planta. En Chile se extiende desde la IV a la XI Región (CARRILLO, 1999).

2.4.3.2 Enfermedades. Dentro de las principales enfermedades posibles de

atacar el cultivo se encuentran: Fusarium: El hongo penetra al bulbo por medio de heridas, causando

pudriciones, por ende, se debe prevenir mediante desinfección del material a

plantar (bulbos) y eliminación de todos aquellos ya infectados. Para aquellos

suelos infectados se recomienda realizar una desinfección, agente causal

Fusarium oxysporum f.sp. lilii (SEEMANN y ANDRADE, 1999).

Pythium: Las plantas no se desarrollan adecuadamente, en las raíces aparecen

unas manchas de color marrón debido a la putrefacción , por donde se rompen

con facilidad. Agente causal Pythium spp. (BUSCHMAN, 2000).

Rhizoctonia: En las hojas aparecen manchas de color marrón claro que tienen

un aspecto roído, produce podredumbre blanda de color marrón en el bulbo y

en caso de infección grave las plantas salen con mucho retraso y suelen

florecer mal. Agente causal Rhizoctonia solani (Kühn) (BUSCHMAN, 2000).

Botrytis o Moho gris : En períodos húmedos la planta puede ser atacada por el

hongo Botrytis elliptica (Berk.) Cooke. En caso de tal ataque se producen

puntos y manchas marrones en la hoja y en los botones florales (BUSCHMAN,

2000).

Virosis: Enfermedad transmitida principalmente por insectos vectores,

provocando principalmente, manchado de hojas y de los botones florales,

acortamiento de entrenudos y malformaciones florales (BUSCHMAN, 2000).

14

Dentro de los principales virus que atacan al Lilium podemos encontrar a los

siguientes:

LSV: Virus asintomático del Lilium

CMV: Virus del mosaico del pepino

LVX: Virus X del Lilium

TBV: Tulip breaking virus

Otra forma de diseminación de los virus es mediante el material

vegetativo, el cual reduce el vigor de las plantas y tamaño de los bulbos

(SCHIAPPACASSE, 1999a).

2.4.3.3 Accidentes fisiológicos. Quema de las hojas: A partir de los 20

centímetros de altura de la planta pueden darse en las hojas más jóvenes del

follaje manchas blanquecinas, estas manchas pueden volverse de color marrón,

provocando un arrugamiento en el sitio dañado de la hoja. En casos muy graves

pueden morir todas las hojas e incluso los jóvenes botones florales (VIDALIE,

1992).

2.5 Propagación de bulbos de Lilium. Según SALINGER (1991), la propagación por semillas es un método

utilizado en mejoramiento. El método natural de propagación vegetativa es la

producción de pequeños bulbos en el suelo, en la base del tallo. Estos solo se

forman durante el período de crecimiento, si no que además llegan a producir

raíces contráctiles y pequeñas hojas iniciales antes de que el tallo original

alcance la senescencia. Estos bulbillos pueden separarse y cultivarse en un

medio de propagación al aire libre (Figura 2). En el caso de L. tigrinum se

producen bulbillos negros en las axilas de las hojas.

15

FIGURA 2 Producción comercial de bulbos, provenientes de bulbillos de tallo (hipogeos y epigeos) y de

las escama. FUENTE: GRASSOTTI y MAGNANI (1988).

16

2.5.1 Cultivo in vitro de Lilium. Se han descrito dos métodos de propagación

in vitro de Lilium utilizando las técnicas de cultivo de tejidos vegetales. En el

primer caso, pequeños bulbos son producidos en medio sólido in vitro a partir

de escamas o bulbos, en el segundo caso, pequeños bulbos son producidos a

través de la formación de callo. Aunque la tasa teórica de propagación puede

ser más alta usando la formación de callo que usando escamas de bulbos como

forma de propagación, es esta última (la utilización de escamas de bulbos) la

mas ventajosa para la propagación masiva de Lilium (Takayama y Misawa

1983, citado por FEHLANDT, 1998).

Las razones son:

− El tiempo requerido para la regeneración de bulbillos a partir de escamas es

menor que a partir de callo.

− Ocurren significativos cambios cromosomales, principalmente en callos de-

diferenciados.

− Los callos pierden su habilidad regenerativa durante largo tiempo de sub-

cultivos, mientras que las escamas de los bulbos tienen una habilidad

regenerativa estable durante sub-cultivos seriados.

Jan De Klerk (1992), citado por FEHLANDT (1998), realizó ensayos de

regeneración de plantas a partir de escamas de Lilium speciosum, utilizando

medio basal de Murashige y Skoog, enriquecido con 0.05 mg/L de ácido

naftalenacético ANA y 3% de sucrosa, se incubaron a 20 ºC y un fotoperiodo de

16 horas, luego de 11 semanas de cultivo el peso seco aumentó linealmente

hasta las veinte semanas desde el comienzo del cultivo. En cuanto al factor

nutricional, la adición de ácido abscísico (ABA) es un factor clave para la

17

formación de bulbos y bloquea la formación de hojas, sin embargo, la adición de

fluoridona, inhibidor de la síntesis de ABA, inhibe la formación de bulbos.

Niimi (1995), citado por FEHLANDT 1998), realizó ensayos para

comparar el cultivo in vitro de escamas completas, con trozos de escamas (2 ó

3 trozos transversales por escamas) de bulbos . Las escamas completas se

cultivaron por 12 semanas en un medio basal MS, enriquecido con diferentes

concentraciones de ANA y BA bajo luz fluorescente continua a 1.000 – 1.200

lux. En cambio los trozos de escamas se cultivaron por el mismo periodo, pero

el medio basal MS enriquecido con 0,1 mg/L ANA y 0,01 mg/L BA y en

completa oscuridad. Los resultados mostraron que los trozos de escamas ya

sea estos bi o triseccionados, los segmentos básales formaron más de 2,2

bulbillos, mientras los trozos del medio o terminales escasamente formaron

bulbos, por lo que este método tiene bajo impacto en el incremento de bulbillos

formados.

Takayama y Misawa (1983), citado por FEHLANDT (1998), presentaron

un estudio para la propagación masiva de Lilium usando técnicas de cultivo en

agitación y medio liquido, técnicas que presentaron una mayor razón de

crecimientos que los métodos tradicionales de cultivo de tejido, esto por una

mayor superficie de contacto con el medio. Este método se caracterizó por: a)

regeneración de múltiples escamas de bulbos mediante altos niveles de

citoquininas en el medio de cultivo, b) crecimiento rápido mediante cultivo de

tejido en agitación. El proceso de multiplicación de escamas de bulbos puede

ser reciclado para producir numerosas escamas de bulbos luego de un año.

2.5.2 Propagación masiva por escamas in vivo. De acuerdo al método que

se utilice podemos encontrar dos tipo de propagación, uno al aire libre, y otro en

cámaras de crecimiento.

18

El Lilium al poseer un bulbo escamoso no tunicado, su sistema de

propagación artificial más comúnmente utilizado, es el de formación de bulbillos

mediante escamas.

2.5.2.1 Temperatura antes del escamado. Una vez cosechado los bulbos

son llevados a temperaturas de 2ºC para inhibir la brotación en tránsito, que

causaría un deterioro de la flor, por aborto de la yema. Nunca se deben

almacenar a temperaturas inferiores a –2ºC, porque se dañan

(SCHIAPPACASSE, 1999b).

MATSUO y ARISUMI (1979), también señalan la importancia de la

aplicación de frío a los bulbos, ya que promueven el desarrollo de hojas

tempranamente, a partir de los bulbillos desarrollados de las escamas.

Posteriormente MATSUO y VAN TUYL (1986), realizaron distintos ensayos de

temperaturas a los bulbos madres, concluyendo que a mayor tiempo de

almacenaje a temperaturas bajas, se reduce el peso a la cosecha de los nuevos

bulbos que se generan.

Estos mismos autores señalan que a mayor duración del almacenaje y

con escamas obtenidas de zonas internas del bulbo madre, la producción de

bulbos comerciales es menor.

MATSUO y VAN TUYL (1984), señalan que los bulbos debieran ser

almacenados a bajas temperaturas < 10ºC. Esta práctica es beneficiosa para la

propagación por escamas por las siguientes razones:

a) No hay pérdida de nutrientes por las escamas a través de las

translocaciones, por el almacenamiento de estos desde la escama a las

raíces.

19

b) Los brotes de hojas y raíces son una desventaja para la maquinaria de

plantación y/o los bulbillos de las escamas.

2.5.2.2 Momento del escamado y tipo de escamas a usar. HARTMANN y

KESTER (1997), indican que el escamado consiste en separar del bulbo madre

las escamas individuales, que se colocan en condiciones de crecimiento

adecuadas, formándose bulbillos adventicios en la base de cada escama

(Figura 3).

FIGURA 3 Emisión de bulbillos de escamas en multiplicación. FUENTE: GRASSOTTI y MAGNANI (1988).

La producción de bulbillos está influenciada por factores como

temperaturas de almacenamiento del bulbo madre, antes del escamado,

especie y variedad (BAÑON et al.,1993).

20

Estos mismos autores, señalan que además es importante considerar

el tamaño de la escama junto con la posición de esta en el bulbo madre y

condiciones climáticas como temperatura, luminosidad y aireación.

Sobre este mismo tema MATSUO y VAN TUYL (1986), también señalan

la importancia de qué escamas del bulbo madre usar y además, hacen mención

al momento que debe comenzar la propagación.

Estos mismos autores, sugieren que las escamas internas no son útiles

para la propagación, por el bajo porcentaje de emergencia tipo ETP

(Emergencia tipo epigea), siendo este el más deseado, para una rápida

obtención de un bulbo madre.

GRASSOTTI y MAGNANI (1988), explican los diferentes tipos de

brotación de los bulbillos, llamado carácter del bulbo. Estos autores señalan

cuatro diferentes tipos de brotación. ETP, o planta tipo epigea, carácter mas

deseado, donde el bulbo emite un solo tallo, HTP , o planta tipo hipogea, donde

el bulbillo genera una corona de hojas quedando de esa manera, HETP,. o

planta tipo hipogea-epigea, en el cual se emite una corona y luego produce un

tallo. Por último existen las NLB. En este caso el bulbo no genera una hoja,

quedando latentes. En ellas no se encuentran primordios foliares por un buen

tiempo (Figura 4).

21

FIGURA 4 Tipo de plantas desarrolladas durante la propagación por

escamas. ETP : Planta tipo epigea

HETP : Planta tipo hipo-epigea HTP : Planta tipo hipogea

NLB : Ningún desarrollo de hoja verde FUENTE: GRASSOTTI y MAGNANI (1988).

BONNIER et al. (1994), hacen mención sobre la conductividad eléctrica

de la escama, la cual incrementa significativamente con la duración del

almacenaje en las escamas externas del bulbo de todos los cultivares de Lilium.

Esto nos permite medir la conductividad del exudado de las escamas y poder

determinar si estas son lo suficientemente viejas o han estado por muy largo

tiempo en periodo de almacenaje, lo que se traduciría en una baja producción

de bulbillos.

Un tiempo mayor del almacenaje, está acompañado por un

decrecimiento en la habilidad de las escamas para la formación de nuevos

bulbillos. Esto se ve expresado principalmente en las escamas externas, ya que

22

estas son formadas antes que las escamas medias e internas y serian las más

antiguas. Las escamas externas están más expuestas a condiciones

ambientales y microorganismos (BONNIER et al., 1994).

El número de escamas removidas usualmente es de entre 25 a 75

escamas por bulbo o 75% del número total. Estas son tratadas con funguicidas

para un número pequeño de escamas, estas pueden ser colocadas en bolsas

de polietileno con funguicidas, para grandes cantidades estas se pueden

sumergir en solución para luego secarlas (BEATTIE y WHITE, 1993).

Se recomienda remojar las escamas en agua a temperatura de 45ºC y

secarlas para así eliminar los nematodos existentes, y luego someterlas a

desinfección con funguicidas, Benomyl al 1% y 2% de Diforatan (MILLER,1992).

SALINGER (1991), señala además, que una vez arrancadas la escamas

de los bulbos, estos deberán ser dejados por un día para permitir que la herida

en la base de la escama se seque.

El escamado se puede realizar casi en cualquier época del año, pero se

realiza normalmente en invierno y en otoño, después que los bulbos hayan sido

almacenados (BEATTIE y WHITE, 1993).

SUH et al. (1995); (OKUBO, 1992), señalan que en variedades asiáticas

es recomendable realizar el escamado durante el periodo de mayor actividad

hormonal del ácido abscísico ABA endógeno en los bulbos madres, ya que este

inhibe la formación de hojas y estimula el desarrollo de bulbillos.

2.5.2.3 Sustratos. Una buena definición de sustrato es aquella que hace

mención a todo material sólido distinto del suelo, natural o sintético, mineral u

orgánico, que colocado en un contenedor, en forma pura o mezclada, permite el

23

anclaje del sistema radicular, cumpliendo un papel de soporte, este puede o no

intervenir en la nutrición vegetal (ABAD,1991).

El sustrato con fines de propagación en escamas, debe tener ciertas

características, tales como una buena porosidad y por sobre todo ser capaz de

mantener un buen porcentaje de humedad. HONORATO y BONOMELLI

(1999a), dan a conocer que dentro de los sustratos que aportan porosidad y

retención de humedad se encuentran sustratos orgánicos, tales como turbas y

los compost urbanos o derivados de la industria maderera (Cuadro 1).

Otro autor recomienda corteza de pino, aserrín, gravas, porcelanas,

arenas, lana de roca, corcho, roca volcánica, perlita y poliuretano. (POKORNY,

1984),

CUADRO 1 Porosidad, densidad aparente y retención de humedad de algunos sustratos.

Sustrato Densidad Porosidad Retención aparente g/cc total % de agua % Turbas 0,03 - 0,14 85 - 95 60 - 90 Turbas rubias 0,08 90 - 95 60 - 80 Turbas pardas 0,15 - 0,25 85 - 90 65 - 85

Gravas 1,5 - 1,7 40 0 - 5

Arenas 1,5 - 1,7 88 5 - 15

Perlita 0,08 - 0,21 95 20 - 35 Vermiculita 0,08 - 0,09 95 40 - 65 FUENTE: HONORATO y BONOMELLI (1999b).

24

Según BEATTIE y WHITE (1993), las escamas deben ser colocadas en

cajas en capas de vermiculita. SALINGER (1991), sugiere un sustrato inerte,

ligeramente húmedo, tal como piedra pómez o aserrín. BOUTHERIN Y BRON

(1989), recomiendan el uso de arena y turba.

Estos mismos autores recomiendan utilizar como medio de escamado un

volumen de 2 L de agua x 10 L de vermiculita o alrededor de 2 volúmenes de

escamas usadas en 5 volúmenes de vermiculita húmeda. REES (1992),

también recomienda el uso de vermiculita en cinco partes, por una parte de

agua.

Otros autores dan a conocer que un buen sustrato es una mezcla de

40% de turba más un 60% de perlita, ideal para el crecimiento de bulbos

(IAPICHINO et al., 1994). BRICKELL (1994), en cambio, propone el uso de

once partes de vermiculita por una parte de agua.

Las escamas deben colocarse uniformemente en el sustrato procurando

que ellas no se toquen. Son colocados en oscuridad, en donde se mantiene la

temperatura (BEATTIE y WHITE, 1993).

2.5.2.4 Tiempo y temperatura en cámaras de crecimientos. BAÑON et al.

(1993), señalan que la temperatura es un factor importante a considerar en el

momento de la propagación de bulbillos, ya que esta influye claramente en el

número de bulbillos producidos. VAN TUYL (1983), además, señala que la

temperatura durante el periodo de crecimiento en cámara es importante para el

posterior desarrollo de los bulbillos, relacionados con el tipo de brotación de

estos, siendo el tipo ETP (Planta tipo epigea) el más deseado .

Temperaturas de 25 a 30 ºC favorecen la formación rápida de callo en

las escamas, que da origen a los bulbillos (BAÑON et al., 1993).

25

Se ha demostrado que hay una fuerte influencia de las temperaturas en

la formación y crecimiento de los bulbos en escamas de Lilium. Gracias a la

realización de un sinnúmero de ensayos de crecimiento a diferentes

temperaturas, se pudieron establecer cuales serian las temperaturas mas

adecuadas para este fenómeno. Estas están en rangos de 23-30ºC. Este

método de crecimiento parece menos adecuados para L. longiflorun (VAN

TUYL, 1983).

El método comercial usado en propagación por escamas en Holanda

corresponde a 6 semanas a 23ºC, 4 semanas a 17ºC y 12 semanas a 5ºC.

Durante las altas temperaturas de incubación los bulbillos son formados en las

escamas, los 17ºC son un periodo de transición para las temperaturas frías que

necesita el bulbo para la elongación del tallo (VAN TUYL, 1983).

VAN TUYL (1983), señala que después de una buena desinfección de

las escamas, con una solución desinfectante (fungicidas), las escamas deberán

ser colocadas en bolsas plásticas, en una pieza oscura a una humedad del

85%.

El tratamiento térmico al cual son sometidas las escamas ha sido

modificado gradualmente con diferentes ensayos, resultando dentro de estos el

mejor 8 semanas a 23ºC, 4 semanas a 17ºC y 8 semanas a 5ºC (VAN TUYL,

1983).

26

3 MATERIAL Y METODO

Para la realización de este trabajo se ha utilizado el siguiente material y método.

3.1 Material.

Los bulbos utilizados para el ensayo de propagación, fueron obtenidos de

distintas agrupaciones de pequeños agricultores productores de flores, de la

localidad de Paillaco.

Otros materiales que se utilizaron son: una cámara de aire caliente

forzado con ventilador y termostato, el cual permite mantener las diferentes

temperaturas de tratamiento de las escamas; bolsas de polietileno negro y

fungicidas para una buena desinfección de las escamas antes de su periodo de

almacenamiento en cámara, otro material que se utilizó fue sustrato inerte

(perlita, vermiculita, arena y turba).

3.1.1 Descripción de variedades. Se utilizaron bulbos de calibres comerciales,

es decir, 10/12 para híbridos asiáticos (10 -12 cm de circunferencia) y 12/14

para híbridos orientales (12-14 cm de circunferencia), utilizados por los

productores, por ser este el calibre adecuado para la obtención de una buena

flor.

27

Las variedades utilizadas son híbridos de tipo oriental (O). y asiático (A).

Estas se presentan en las Figuras 5,6,7,8,9,10 y 11 respectivamente

− Merostar (MER) O.

− Stargazer (SG) O.

− Compass (COMP) A.

− Elite (ELI) A.

− Montreux (MONT) A.

− Polyanna (POL) A.

− Sancerre (SANC) A

Grupo: Oriental Variedad: Merostar Color: Rosado/Rojo/Blanco Clima: Mediterráneo Largo de vara: 80 a 130 cm Información general

Perímetro de bulbos (cm) 12/14 14/16 16/18 18/20

Nº de botones 2-4 3-5 4-6 6-9

Bulbos por m2 54 40 32 30

FIGURA 5 Lilium variedad Merostar FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

28

Grupo: Oriental Variedad: Stargazer Color: Rojo/Blanco Clima: Mediterráneo Largo de vara: 85 a 90 cm Información general

Perímetro de bulbillos (cm) 12/14 14/16 16/18 18/20

Nº de botones 2-4 3-5 4-7 5-8

Bulbos por m2 60 56 52 46

FIGURA 6 Lilium variedad Stargazer FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

Grupo: Asiático Variedad: Compass Color: Naranja Clima: Mediterráneo Largo de vara: 85 cm Información general

Perímetro de bulbos (cm) 10/12 12/14 14/16 16/18

Nº de botones 5 7 8 10

Bulbos por m2 72 64 56 48

FIGURA 7 Lilium variedad Compass FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

29

Grupo: Asiático Variedad: Elite Color: Naranja Clima: Mediterráneo Largo de vara: 115 cm Información general

Perímetro de bulbos (cm) 10/12 12/14 14/16 16/18

Nº de botones 4-6 5-8 7-10 9-12

Bulbos por m2 65 65 55 50

FIGURA 8 Lilium variedad Elite FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

Grupo: Asiático Variedad: Montreux Color: Rosado Clima: Mediterráneo Largo de vara: 100 cm Información general

Perímetro de bulbos (cm) 10/12 12/14 14/16 16/18

Nº de botones 3-5 5-7 6-9 8-10

Bulbos por m2 65 65 55 50

FIGURA 9 Lilium variedad Montreux FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

30

Grupo: Asiático Variedad: Polyanna Color: Amarillo Clima: Mediterráneo Largo de vara: 110 a 115 cm Información general Perímetro de bulbos (cm) 12/14 14/16 16/18 Nº de botones 4-6 5-8 6/9

Bulbos por m2 65 55 50

FIGURA 10 Lilium variedad Polyanna FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

Grupo: Asiático Variedad: Sancerre Color: Blanco Clima: Mediterráneo Largo de vara: 90 cm Información general

Perímetro de bulbos (cm) 10/12 12/14 14/16 16/18

Nº de botones 3-4 4-6 6-8 8/+

Bulbos por m2 65 65 55 50

FIGURA 11 Lilium variedad Sancerre FUENTE: MOOLENAR S.A. (2000).

31

3.2 Metodología de trabajo. Los bulbos fueron limpiados, lavados y desinfectados con hipoclorito de

sodio al 1% de producto comercial y con solución de benomilo y captan en

dosis de 1,8 g/L y 2,7 g/L respectivamente.

3.2.1 Escamado. El escamado se realizó en forma manual, eliminando las

escamas defectuosas o con posibles contaminaciones, posteriormente las

escamas obtenidas fueron separadas de acuerdo a su tamaño y peso, de esta

manera se obtuvieron diferentes escamas: grandes o mayores de 1g (T1) y

otras más pequeñas, menores o iguales a 1g (T2), necesarias para su posterior

evaluación.

Generalmente las escamas de mayor tamaño pertenecen a las más

externas, no así las pequeñas que pertenecen a una posición más interna del

bulbo (Figura 12 y 13). Promedios de largo y peso de escamas para cada

variedad se muestran en Anexo 1.

Una vez seleccionadas las escamas fueron desinfectadas con una

solución fungicida de captan 2.7 g/L y benomilo 1.8 g/L por 10 minutos, luego se

dejaron secar por 24 hrs.

3.2.2 Preparación de mezclas de sustrato. Se evaluaron dos tipos de

sustratos, el primero corresponde a una mezcla de perlita - vermiculita (S1) en

razón 1:1 y el segundo corresponde a una mezcla de arena - turba (S2)

también en razón 1:1. Una vez realizada las mezclas se procedió a una

pasteurización en un autoclave a 121ºC x 30 minutos a 1,2 atmósfera, de esta

manera se trabaja con material limpio y sano, eliminando la posibilidad de

contaminación de las escamas.

El análisis químico de ambos sustratos se muestran en los Anexos 2 y 3.

32

3.2.3 Establecimiento del ensayo. Una vez desinfectadas las escamas, se

prepararon las bolsas de polietileno negras, con un volumen aproximado de 500

cc de sustrato, que fueron humedecidas con un 10% (v/v) del volumen en agua.

En cada bolsa se introdujeron 9 escamas por tratamiento. Cada bolsa

fue identificada con la variedad, el tamaño de la escama y el tipo de sustrato

que correspondía. Posteriormente las bolsas fueron selladas con el objeto de

mantener la humedad cercana al 85 a 90%.

Cada unidad experimental identificada fue llevada a una cámara donde

se mantuvieron por 12 semanas a 26 ºC (para el desarrollo de los bulbillos),

luego se bajó la temperatura a 17 ºC la cual se mantuvo por 4 semanas

(elongación de raíces) (Figura 14 y 15).

3.3 Tipo de mediciones y factores a evaluar. Una vez cumplida la primera etapa de 12 semanas a 26 ºC se midieron:

− El número de bulbillos formados por escamas.

Luego, las escamas con sus respectivos bulbillos fueron nuevamente

colocados en la cámara para su segundo periodo de temperatura. La segunda

medición se realizó 4 semanas después, en donde se separaron los bulbillos de

la escama madre para obtener:

− Peso individual de los bulbillos

− Diámetro de los bulbillos

− El número de raíces, y

− El largo de la raíz con mayor crecimiento

33

3.4 Diseño experimental. El ensayo se estableció en un diseño completamente al azar, ordenado

como ensayo factorial 7 x 2 x 2 (7 variedades, 2 sustratos y 2 tamaños de

escamas), esto determina un total de 28 tratamientos con 3 repeticiones y

nueve escamas en cada una de ellas.

3.5 Análisis estadístico. Una vez que se obtuvieron las mediciones respectivas (todas

paramétricas), se realizó un análisis de varianza según Fisher, de los cuales se

determinó la existencia o no, de diferencias significativas entre tratamientos.

Este análisis se descompuso por variedad realizando un análisis de

varianza con efecto de anidado, donde cada variedad fue analizada en forma

independiente dentro de una misma andeva (Cuadro 2), para el tamaño de las

escama, tipo de sustrato y sus interacciones.

Sólo para las interacciones que presentaron diferencias significativas en

el análisis, se les realizó una prueba de Duncan para contrarrestar los

promedios. Para los parámetros tamaño de escama y tipo de sustrato al

presentar diferencias significativas en el análisis de varianza, no fue necesaria

la prueba de Duncan.

Los supuestos para un análisis de varianza son la homogeneidad y

normalidad de los datos, para todos los parámetros cuyos datos no

presentaron esta condición, fueron normalizados mediante la siguiente

formula, 1/(x+1). (3. 1)

34

CUADRO 2 Efecto de anidado en el análisis de varianza.

Fuente de variación Grados de libertad

Tratamiento (27)

Dentro de Merostar (V1)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

Dentro de Stargazer (V2)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

Dentro de Compas (V3)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

Dentro de Elite (V4)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

Dentro de Montrealx (V5)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

Dentro de Polyanna (V6)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

Dentro de Sancerre (V7)

Tamaño 1

Sustrato 1

Tamaño * Sustato 1

V1*V2*V3*V4*V5*V6*V7 6

Error 56

Total 83

35

FIGURA 12 Escamas utilizadas en el ensayo pertenecientes a variedades

asiáticas.

FIGURA 13 Escamas utilizadas en el ensayo pertenecientes a variedades

orientales.

36

FIGURA 14 Tratamientos en bolsas negras con su correspondiente

clasificación.

FIGURA 15 Tratamientos en cámara de incubación a temperatura

controlada.

37

4 PRESENTACIÓN Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS

En los siguientes puntos se discuten los resultados obtenidos en los

ensayos de propagación masiva de bulbos de Lilium, mediante escamas.

A continuación se presentan los resultados obtenidos para los

parámetros analizados (Cuadro 3) en las siete variedades de Lilium, de esta

manera se pueden visualizar en general los resultados obtenidos, no siendo

objetivo de esta investigación, realizar una comparación entre las variedades.

CUADRO 3 Promedios totales por variedad, para los parámetros en análisis, número, diámetro y peso de bulbillos, número de raíces y largo de raíces.

Parámetros

VARIEDADES Nº de bulbillos Diámetro

(mm) Peso de bulillos (g)

Nº de raíces Largo de raíces (cm)

Merostar 1,59 b* 8,65 a 0,53 a 2,97 a 7,24 ab

Stargazer 1,59 b 8,16 abc 0,52 ab 2,86 a 6,61 ab

Compass 1,67 b 8,21 ab 0,47 abc 3,58 a 7,17 ab

Elite 2,45 a 6,47 d 0,35 cd 2,41 a 5,28 b

Montreux 2,02 ab 7,10 cd 0,31 d 2,33 a 6,30 ab

Polyanna 1,64 b 7,69 abcd 0,40 bcd 3,02 a 7,09 ab

Sancerre 1,62 b 7,50 abcd 0,42 abcd 3,18 a 10,25 a

* letras distintas en la columna, indican diferencias estadísticas significativas al 5% ,(DUNCAN)

38

4.1 Número de bulbillos. A continuación se presenta la influencia de los diferentes tamaños de

escamas, grandes y pequeñas, y para los diferentes sustratos, perlita -

vermiculita y arena - turba, para la variable número de bulbillos, cada uno de

ellos para las diferentes variedades en estudio (Análisis de varianza en Anexo

4).

CUADRO 4 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el número de bulbillos en siete variedades de Lilium, a las doce semanas del periodo en cámara.

Variedades

Merostar Stargazer Compass Elite Montreux Polyanna Sancerre

Tamaño de escamas

Grandes 1,85 a* 2,15 a 1,85 a 2,90 a 1,89 a 2,06 a 1,99 a

Pequeñas 1,32 b 1,04 b 1,48 a 2,01 b 2,14 a 1,22 b 1,25 b

Sustratos

Perlita - Vermiculita 1,43 a 1,35 b 1,58 a 2,42 a 1,90 a 1,54 a 1,65 a

Arena - Turba 1,74 a 1,83 a 1,75 a 2,49 a 2,13 a 1,74 a 1,58 a

* letras distintas en la columna, indican diferencias estadísticas significativas al 5%.

La representación grafica de los resultados obtenidos se muestra en los

Anexos 9 y 10.

4.1.1 Tamaño de escamas. Según el Cuadro 4, las variedades Stargazer,

Elite, Merostar, Polyanna y Sancerre (74.4% de las variedades), presentaron

diferencias estadísticas significativas sobre el número de bulbillos para el

tamaño de escamas.

La variedad SG obtuvo mayor número de bulbillos en las escamas de

mayor tamaño (2,15 bulbos/escama), mas del doble del número obtenido en

las escamas pequeñas (1,04 bulbos/escama) (Figura 18 y 20).

39

Si esto se compara con los resultados obtenidos por IAPICHINO et al.,

(1994) de 1,7 bulbillos por escamas, en variedades como Stargazer y

Enchantment, cuyos resultados también fueron obtenidos con las escamas de

mayor tamaño del bulbo (externas), son claramente inferiores en numero, a los

obtenidos en este ensayo.

En las variedades ELI, MER, POL, y SANC, el número de bulbillos

desarrollados fue siempre mayor en las escamas de mayor tamaño, la variedad

POL del tipo asiática obtuvo un promedio (2,06 bulbos/escama), casi el doble

en comparación a las escamas de menor tamaño (1,22 bulbos/escama) en la

misma variedad (Figura 19 y 21).

MILLER (1992), señala que por una serie de factores fitopatológicos o

solo por que las escamas son muy pequeñas para producir una nueva planta, el

número real de bulbillos que se produciría no sería mayor a 0,5 bulbillos por

escamas, número muy por debajo de lo obtenido en todas las variedades

(Cuadro 4), tanto para las escamas de mayor tamaño como las mas pequeñas.

Esto contradice también a lo señalado por HARTMANN y KESTER

(1997), quienes señalan en sus publicaciones que una escama sería capaz de

producir de tres a cinco bulbillos.

Las variedades Montreux y Compass, no presentaron diferencias

significativas, sobre el número de bulbillos para el tamaño de escamas.

La obtención de un mayor número de bulbillos en las escamas de mayor

tamaño se debería exclusivamente, a que estas poseen una mayor cantidad

de nutrientes y carbohidratos de reserva que las hacen ser capaz de

formar nuevas plantas, no así las escamas pequeñas cuyas reservas serían

insuficientes, por ende actuarían menos como órganos de almacenamiento.

40

BAÑON et al. (1993), establecen una asociación entre las escamas

externas e internas relacionándolas con escamas de mayor tamaño y de menor

tamaño respectivamente. Señalan que mientras mayor edad de las escamas y

mayor tamaño (externas) mayor será la producción de bulbillos con interés

comercial (ETP, planta tipo epigea).

4.1.2 Tipo de Sustrato. Analizando la influencia del tipo de sustrato para el

número de bulbillos, se encontró diferencia significativa en la variedad SG

(14.2% de las variedades analizadas), en la cual se desarrolló un número de

bulbillos mayor en la mezcla arena - turba (1,83 bulbos/escama), levemente

superior al obtenido en la mezcla perlita - vermiculita (1,35 bulbos/escama).

Para las restantes variedades ELI, MER, POL, SANC, MONT y COMP no

se obtuvieron diferencias significativas para el tipo de sustrato (85.8% de las

variedades analizadas). Esto pudiera tener relación con un buen manejo de

ambos sustratos (perlita – vermiculita y arena – turba), con una buena

desinfección, y una buena humedad (no excesiva que pudiera causar

pudriciones), el cual permitiría que el desarrollo de los bulbillos sea de exclusivo

efecto del tamaño de las escamas, y no del tipo de sustrato que se utilice.

4.1.3 Interacción, Tamaño de escamas x Sustrato. En los análisis para el

número de bulbillos, se encontró diferencia estadística significativa en la

variedad ELI para la interacción tamaño de escamas x sustrato. Los resultados

obtenidos nos señalan, que en el caso de utilizar el sustrato perlita - vermiculita,

independiente de que tipo de escama se utilice (grandes o pequeñas) no se

encontraran diferencias significativas en el número de bulbillos producidos por

escamas, por el contrario si el sustrato a utilizar es del tipo arena – turba, se

obtendría un mayor número de bulbillos por escamas en aquellas de mayor

tamaño (Figura 16).

41

Del punto de vista de la utilización del tamaño de la escama se observa

que, al utilizar solamente escamas de gran tamaño o solo escamas pequeñas,

el tipo de sustrato que se utilice no representará un factor de diferencia en los

resultados, siendo de uso opcional la mezcla perlita – vermiculita o arena - turba

(Figura 16).

FIGURA 16 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el número de bulbillos en la variedad Elite.

4.2 Diámetro de Bulbillos.

En el Cuadro 5 se presenta la influencia de los diferentes tamaños de

escamas, grandes y pequeñas, y para los diferentes sustratos, perlita -

vermiculita y arena - turba, para el diámetro de bulbillos, cada uno de ellos para

las diferentes variedades en estudio (Análisis de varianza en Anexo 5).

42

CUADRO 5 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el diámetro de bulbillos (mm) en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara.

Variedades

Merostar Stargazer Compass Elite Montreux Polyanna Sancerre

Tamaño de escamas Grandes 10,47 a* 10,06 a 8,48 a 6,63 a 8,27 a 8,25 a 8,44 a Pequeñas 6,85 b 6,26 b 7,94 a 6,31 a 5,93 b 7,13 b 6,56 b Sustratos Perlita – Vermiculita 8,61 a 8,61 a 8,21 a 5,75 b 6,81 a 7,95 a 7,52 a Arena - Turba 8,70 a 7,72 b 8,22 a 7,19 a 7,39 a 7,43 a 7,48 a

* letras distintas en la columna, indican diferencias estadísticas significativas al 5%.

La representación grafica de los resultados obtenidos se muestra en los

Anexos 11 y 12.

4.2.1 Tamaño de escamas. Para el diámetro de bulbillos en este factor

(tamaño de escamas) presentaron un nivel de respuesta las variedades MER,

SG, MONT, POL y SANC, las variedades SG y MER obtuvieron diferencias

estadísticas significativas, arrojando ambas promedios mayores en las escamas

grandes (10,06 mm y 10,47 mm respectivamente), a su vez los promedios de

ambas variedades son muy superiores de los promedios obtenidos en las

escamas pequeñas (6,26 y 6,85 respectivamente) (Figura 27- 28).

En el caso de las variedades POL, SANC y MONT, se encontraron

diferencias estadísticas significativas, siendo los mejores promedios aquellos

correspondientes a los bulbillos desarrollados de las escamas de mayor tamaño

para cada una de las variedades analizadas, los promedios que se obtuvieron

fueron 8,25mm, 8,44mm y 8,27mm de diámetro respectivamente. Sin duda que

los resultados obtenidos, favoreciendo a las escamas de mayor tamaño para la

variable diámetro de bulbillos, tendrían muchísima relación con el número de

bulbillos, refiriéndose puntualmente a la cantidad de reservas que estas poseen

43

(escamas), lo que se traduce en la obtención de mejores resultados para ambas

variables.

SUH et al. (1995), describen que en híbridos asiáticos, se desarrollan un

mayor número de bulbillos, de mayor peso y mayor diámetro si las escamas

corresponden a las ubicadas externamente (mayor tamaño).

Los bulbillos que se desarrollaron a partir de las escamas de menor

tamaño para estas mismas variedades (POL, SANC y MONT), fueron de

diámetro menor que las desarrolladas en escamas grandes con 7,13 mm, 6,56

mm y 5,93 mm respectivamente (Cuadro 5).

Ensayos de propagación de bulbos de Lilium longiflorum , realizados por

VAN TUYL (1983), mediante escamas y cámaras de incubación, arrojaron

buenos resultados en cuanto a la producción de bulbillos, encontrándose entre

ellos diferentes tamaños, la mayoría en rangos de entre 19 mm de diámetro y

menos.

A su vez, similares ensayos de propagación realizados por GRASSOTTI

(1997), con Lilium x Polyanna y Lilium longiflorum , dieron como resultado un

mayor número de bulbillos en rangos de calibres, entre 6-12 mm de diámetro y

menores a éste. Los resultados señalados por este autor, son muy similares a

los obtenidos en este ensayo de propagación masiva de bulbos de Lilium

mediante escamas, los cuales se encuentran justamente en los rangos ya

mencionados (Cuadro 5).

Para las variedades ELI y COMP, no se encontraron diferencias

estadísticas significativas (Figura 24 Y 25).

44

4.2.2 Tipo de Sustrato. Para la influencia del tipo de sustrato sobre el diámetro

de bulbillos, presentaron diferencias significativas las variedades SG y ELI.

Para SG, los diámetros mayores corresponde a los bulbillos

desarrollados en perlita - vermiculita (8,61mm). Sin embargo el promedio que

muestran los bulbillos desarrollados en arena - tuba, aunque es

significativamente distinto, este no es un diámetro despreciable (7,72mm)

(Cuadro 5).

Esto afirma las opiniones vertidas por SUH et al. (1995) y IAPICHINO et

al. (1994), quienes aseguran que un buen sustrato para el crecimiento de los

bulbillos, es aquel cuya mezcla contenga partes de perlita (60%) y/o vermiculita.

Para la variedad ELI, los bulbillos con mayor tamaño, se obtuvieron en el

sustrato arena - turba con 7,19 mm de diámetro, promedio significativamente

mayor con respecto a los desarrollados en perlita - vermiculita con 5,7 mm

(Cuadro 5).

Las restantes variedades en estudio MER, POL, SANC, MONT y COMP,

no presentan diferencia estadística significativa, para la influencia del tipo de

sustrato en el factor diámetro de bulbillos.

4.2.3 Interacciones, Tamaño de escamas x Sustrato. En los análisis sobre el

diámetro de bulbillos, se encontró diferencia significativa en la interacción

tamaño de escama x sustrato en la variedad SG. Los resultados señalan que,

independiente del tipo de mezcla a utilizar, ya sea, perlita - vermiculita o arena -

turba, siempre se obtendrán un mejor resultado, utilizando escamas de mayor

tamaño.

45

Ahora, si se analiza desde el punto de vista del tipo de escama (tamaño)

a utilizar, los resultados muestran que en el caso de utilizar solamente escamas

grandes se obtendrá un mejor diámetro de bulbillos en el sustrato perlita -

vermiculita, a su vez si se utilizan solo escamas pequeñas el resultado seria

igual en ambos sustratos (Figura 17).

FIGURA 17 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el

diámetro de bulbillos (mm) en la variedad Stargazer.

46

FIGURA 18 Desarrollo del bulbillo sobre escama de bulbo oriental.

FIGURA 19 Desarrollo del bulbillo sobre escama de bulbo asiático.

47

FIGURA 20 Desarrollo de bulbillos y de raíces en escamas de bulbos

orientales, a las doce semanas de incubación en cámara.

FIGURA 21 Desarrollo de bulbillos y de raíces en escamas de bulbos

asiáticos, a las doce semanas de incubación en cámara.

48

4.3 Peso de bulbillos. La influencia de los diferentes tamaños de escamas, grandes y

pequeñas, y de los diferentes sustratos, perlita - vermiculita y arena - turba,

sobre la variable peso de bulbillos (Análisis de varianza en Anexo 6).

CUADRO 6 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato,

sobre el peso de bulbillos (g) en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara.

Variedades

Merostar Stargazer Compass Elite Montreux Polyanna Sancerre Tamaño de escamas Grandes 0,77 a* 0,81 a 0,49 a 0,33 a 0,40 a 0,45 a 0,54 a Pequeñas 0,29 b 0,23 b 0,45 a 0,36 a 0,22 b 0,36 a 0,31 b Sustratos Perlita – Vermiculita 0,59 a 0,53 a 0,45 a 0,23 b 0,26 a 0,41 a 0,44 a Arena - Turba 0,47 a 0,52 a 0,49 a 0,46 a 0,36 a 0,40 a 0,41 a * letras distintas en la columna, indican diferencias estadísticas significativas al 5%.

La representación grafica de los resultados obtenidos se muestra en los

Anexos 13 y 14.

4.3.1 Tamaño de escamas. Se puede apreciar (Cuadro 6) que las variedades

SG y MER presentan diferencias significativas, para la influencia del tamaño de

la escama al igual que las variedades SANC y MONT. Para cada una de ellas el

mejor promedio de pesos de bulbillos se encuentra en las escamas de mayor

tamaño.

El peso de los bulbillos debiera tener relación con el diámetro de

estos (> diámetro, > peso de bulbillos) , por ende, si los resultados obtenidos

sobre diámetro de bulbillos, fueron superiores en aquellas provenientes de

escamas grandes, es indudable que para el peso se esperarían resultados

similares.

49

Para las variedades orientales, el peso de los bulbillos obtenidos de las

escamas grandes es cuatro veces mayor que el de las escamas pequeñas,

(0,81g para SG y 0,77g para MER). Estas variedades, SG y MER obtuvieron

por lo tanto 0,23 g y 0,29 g para las escamas pequeñas respectivamente. Para

las variedades SANC y MONT, los promedios obtenidos en las escamas

grandes son 0,55 g y 0.4 g respectivamente mayores que los obtenidos en las

escamas pequeñas 0,31g y 0.22 g respectivamente.

Este suceso tiene mucha relación con las experiencias que reportan

MATSUO y VAN TUYL (1986); MATSUO y ARISUMI (1979) y SUH et al.

(1995), quienes concluyen que la utilización de escamas de mayor peso o

tamaño, vale decir, utilización de escamas externas e intermedias, a diferencia

de las escamas internas (mas pequeñas), producen mayor número de bulbos

comerciales y de mayor peso.

En los ensayos de VAN TUYL (1983), además de la determinación del

diámetro de los bulbillos, este autor también tomó en cuenta el peso de éstos,

obteniendo la gran mayoría de sus bulbillos en pesos promedios de 1g para los

de calibre < 4 cm de circunferencia y un promedio de 3 g para los de calibre

entre 4-6 cm de circunferencia, pesos bastante superiores a los promedios

obtenidos en este ensayo (Cuadro 6).

Sin embargo, los promedios mostrados por GRASSOTTI (1997), en

ensayos de Lilium x Polyanna y Lilium longiflorum se asemejan bastante a los

resultados obtenidos en esta investigación (Cuadro 6), los ensayos de este

autor muestran un promedio de peso de 0,3 g para los calibre < de 6 mm y 1g

para calibres entre 6-12 mm de diámetro.

50

ELI, POL y COMP son las variedades que no presentan diferencias

estadísticas significativas para la variable peso de bulbillos, analizando la

influencia del tamaño de escamas.

4.3.2 Tipo de Sustrato. Al analizar la influencia del sustrato sobre el peso de

bulbillos, se puede observar (Cuadro 6) que ELI muestra diferencias

significativas para el peso de bulbillos.

ELI presenta un mejor peso de bulbillos para el sustrato arena -turba

(0,46 g), el doble del obtenido en la misma variedad para el sustrato perlita -

vermiculita (0,23 g). De acuerdo a IAPICHINO et al. (1994), un buen sustrato

para el crecimiento de los bulbillos es una mezcla con 40 % de turba, como

mínimo.

Este resultado contradice las observaciones de SUH et al. (1995), quien

determina que el peso de bulbillos de las escamas ubicadas en vermiculita,

aumenta mucho más respecto a otros sustratos.

4.4 Número de raíces.

En el Cuadro 7 se presenta la Influencia de los diferentes tamaños de

escamas, grandes y pequeñas, y los diferentes sustratos, perlita - vermiculita y

arena - turba, para la variable número de raíces, cada uno de ellos para las

diferentes variedades en estudio (Análisis de varianza en Anexo 7).

51

CUADRO 7 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el número de raíces en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara.

* letras distintas en la columna, indican diferencias estadísticas significativas al 5%.

La representación grafica de los resultados obtenidos se muestra en los

Anexos 15 y 16. 4.4.1 Tamaño de escamas. La influencia del tamaño de la escama, en el

número de raíces muestra diferencias estadísticas significativas en SG y MER,

estas variedades presentaron mejores promedios en las escamas grandes (3,79

y 3,45 raíces respectivamente) (Figura 26). Para las escamas pequeñas los

promedios fueron claramente inferiores, 1,94 raíces para SG y 2,5 raíces para

MER.

Otra variedad que obtuvo diferencias significativas fue MONT, lo que

representa un nivel de respuesta solo del 20%, respecto a las variedades

asiáticas. MONT presento un mejor promedio en las escamas grandes (3,03

raíces), tres veces mas que el presentado en las escamas pequeñas dentro de

la misma variedad con solo 1,62 raíces.

Las variedades ELI, POL, SANC y COMP, no presentaron diferencias

estadísticas significativas, respecto del número de raíces. El mayor número de

raíces que se obtuvo en las escamas de mayor tamaño, puede tener relación

con la producción de bulbillos de mayor tamaño (peso y diámetro) que estas

Variedades

Merostar Stargazer Compass Elite Montreux Polyanna Sancerre

Tamaño de escamas

Grandes 3,45 a* 3,79 a 3,31 a 2,00 a 3,03 a 2,88 a 3,57 a

Pequeñas 2,50 b 1,94 b 3,85 a 2,82 a 1,64 b 3,17 a 2,80 a

Sustratos

Perlita – Vermiculita 2,71 a 2,60 a 3,67 a 1,67 b 2,21 a 2,95 a 3,24 a

Arena - Turba 3,23 a 3,12 a 3,49 a 3,16 a 2,46 a 3,09 a 3,13 a

52

escamas producen, por ende son bulbillos con una capacidad mayor para la

generación de raíces.

4.4.2 Tipo de Sustratos. Para la influencia del sustrato en el número de raíces

se encontraron diferencias estadísticas significativas en la variedad ELI, la cual

pertenece al grupo de los Lilium asiáticos, es decir, solo un 14,2% de las siete

variedades en estudio (Cuadro 7). En esta variedad (ELI), el mejor promedio

para el número de raíces fue obtenido en arena - turba (3,16 raíces), el doble

del promedio obtenido en perlita - vermiculita para la misma variedad (1,67

raíces).

Los promedios de las variedades SG, MER, POL, SANC, MONT y

COMP, no presentaron diferencias estadísticas significativas.

4.5 Largo de raíces.

Influencia de los diferentes tamaños de escamas, grandes y pequeñas, y

los diferentes sustratos, perlita - vermiculita y arena - turba, para la variable

largo de raíces, cada uno de ellos para las diferentes variedades en estudio

(Análisis de varianza en Anexo 8).

CUADRO 8 Efecto principal del tamaño de escamas y tipo de sustrato, sobre el largo de raíces (cm) en siete variedades de Lilium, a las dieciséis semanas del periodo en cámara.

Variedades

Merostar Stargazer Compass Elite Montreux Polyanna Sancerre

Tamaño de escamas

Grandes 7,35 a* 8,14 a 7,40 a 3,67 b 7,20 a 5,55 b 10,96 a

Pequeñas 7,13 a 5,08 b 6,93 a 6,89 a 5,40 a 8,64 a 9,54 a

Sustratos

Perlita – Vermiculita 7,35 a 5,38 a 7,39 a 4,04 a 6,44 a 6,99 a 10,98 a

Arena - Turba 7,14 a 7,84 a 6,95 a 6,52 a 6,17 a 7,21 a 9,51 a

* letras distintas en la columna, indican diferencias estadísticas significativas al 5%.

53

La representación grafica de los resultados obtenidos se muestra en los

Anexos 17 y 18.

4.5.1 Tamaño de escamas. El Cuadro 8 muestra que existieron diferencias

estadísticas significativas en tres de las variedades en estudio. En los Lilium

orientales se encontraron diferencias significativas en la variedad SG, con un

mayor largo de raíces en las escamas grandes (8,14 cm), superior al obtenido

en las escamas pequeñas (5,08 cm). Para las variedades asiáticas se

encontraron diferencias en los promedios de ELI y POL, cada una de ellas

presentaron mejores promedios de largo de raíces en las escama pequeñas,

siendo en el caso de ELI casi el doble (6,89 cm) que la obtenida en las escamas

grandes (3,67 cm), POL también arrojó mejores promedios en la escama

pequeñas (8,64 cm), teniendo sólo un promedio de 5,55 cm para la escama

grandes.

Las otras variedades (MER, SANC, MONT y COMP) no mostraron

diferencia estadística significativa en sus promedios para la influencia del

tamaño de escamas sobre el largo de raíces. 4.5.2 Tipo de Sustratos. El tipo de sustrato mostró no ser influyente sobre el

largo de raíces. El Cuadro 7 muestra, que no existieron una diferencias

estadísticas significativas del sustrato en ninguna de las variedades analizadas

(Figura 29).

4.5.3 Interacción Tamaño de escamas x Sustrato. En los análisis para la

variable largo de raíces, solo se encontraron diferencias estadísticas

significativas en la variedad ELI y MONT para la interacción tamaño de

escamas x sustrato. La variedad ELI, en la interacción tamaño escamas x

sustrato sobre el largo de raíces, presentó una diferencia en los resultados.

54

Para el uso exclusivo de perlita - vermiculita, los promedios para el largo

de raíces fueron mayores en las escamas de menor tamaño, en comparación a

las escamas grandes en el mismo sustrato. Sin embargo, si el sustrato utilizado

fuera arena - turba, el tamaño de la escama no sería influyente, ya que sus

resultados no presentaron una diferencia estadística significativa (Figura 22).

Con respecto al uso de uno u otro tamaño de escama (grandes o

pequeñas), también se presentaron diferencias entre ellas. Es decir, en la

propagación sólo con escamas grandes, los mejores resultados se presentaron

en el sustrato arena - turba. Ahora bien, al utilizar solo escamas pequeñas, no

se presentaron diferencias estadísticas significativas para el largo de raíces,

pudiendo utilizar indistintamente uno u otro sustrato.

Los resultados obtenidos, nos señalan que en el caso de la variedad

MONT, (Figura 23) al utilizar perlita - vermiculita, independiente de que tipo de

escama se utilice (grandes o pequeñas), no se encontraron diferencias

significativas en el largo de raíces producidas por los bulbillos. Por el contrario,

si el sustrato a utilizar es arena - turba se obtuvo un mayor largo de raíces en

aquellas escamas de mayor tamaño.

55

FIGURA 22 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el largo de raíces (cm) en la variedad Elite.

Ahora, si se analiza desde el punto de vista de la utilización del tamaño

de la escama, se observa que, si hay un uso exclusivo de las escamas de gran

tamaño o solo escamas pequeñas, el tipo de sustrato que se utilice, no

representa un condicionante en el desarrollo de raíces, por lo que el uso de

mezcla perlita – vermiculita o arena - turba, puede ser opcional (Figura 23).

FIGURA 23 Interacción tamaño de escama x tipo de sustrato sobre el largo de raíces (cm) en la variedad Montreux.

56

FIGURA 24 Bulbillo obtenido de escama grande (variedad Compass) , desarrollado en sustrato perlita – vermiculita.

FIGURA 25 Bulbillo obtenido de escama pequeña (variedad Compass) , desarrollado en sustrato perlita – vermiculita.

57

FIGURA 26 Bulbillo obtenido de escama grande (variedad Stargazer) ,

desarrollado en sustrato arena – turba.

FIGURA 27 Bulbillo obtenido de escama grande (variedad Stargazer) ,

desarrollado en sustrato perlita – vermiculita.

58

FIGURA 28 Bulbillo obtenido de escama pequeña (variedad Stargazer) ,

desarrollado en sustrato perlita – vermiculita.

FIGURA 29 Comparación de tamaño de bulbos desarrollados de escamas

pequeñas y grandes (variedad Gran Paraiso) , en un mismo sustrato (arena- turba).

59

5 CONCLUSIONES

Con respecto a la aptitud de inducción de bulbillos en las variedades en estudio

se concluye lo siguiente:

La aptitud de inducir el crecimiento de bulbillos mediante escamas,

durante un periodo en cámara, resultó ser una práctica segura y

eficiente.

Del total de las escamas utilizadas en los ensayos, el 100% de

ellas desarrollaron de 1 – 5 bulbillos, todos estos con muy buenas

características para transformarse posteriormente en un bulbo

comercial.

Características de bulbillos versus tamaño de escamas:

En general las variedades analizadas obtuvieron una mejor

respuesta en el desarrollo de los bulbillos con la utilización de

escamas de mayor tamaño, obteniendo un mayor número, peso y

diámetro de estos.

El número, diámetro y peso de bulbillos fueron los factores que

presentaron una mayor respuesta por parte de las variedades, no

así para el número y largo de raíces, siendo estos factores

secundarios a considerar.

60

Según los resultados obtenidos se aprueba la hipótesis A), la cual

señala que existen diferencias significativas en la propagación por

escamas de bulbillos de Lilium, dependiendo del tipo de escamas

(tamaño) que se utilicen para este propósito.

Tipo de sustratos:

Ambos sustratos analizados permiten una buena formación y

desarrollo de los bulbillos desde las escamas, esto permite deducir

que ambas mezclas (perlita-vermiculita y arena-turba) presentan

buenas características físicas y químicas para ser utilizados.

El largo de raíces fue el único factor analizado que no presentó

diferencias por parte de ninguna variedad analizada.

Según los resultados obtenidos se rechaza la hipótesis B), la cual

señala que el buen desarrollo de bulbillos de Lilium mediante

propagación por escamas, tiene relación con el tipo de sustrato

que se utilice para este proceso.

61

6 RESUMEN

El Lilium como flor de corta en Chile ha tenido un gran desarrollo en los

últimos 10 años, debido al permanente mejoramiento de la especie, que ha

generado nuevas e interesantes variedades, todas ellas con un gran potencial,

que lleva a ganar nuevos mercados.

El objetivo general de este trabajo es poder determinar la aptitud de

inducción de bulbillos mediante escamas, en siete variedades de Lilium x

hybridum, y a su vez determinar la relación entre las características de los

bulbillos desarrollados y el tamaño de escamas utilizadas y determinar el efecto

del uso de dos sustratos distintos.

Para el establecimiento del ensayo, se desescamaron bulbos de calibre

comercial (10 –12 cm de circunferencia) de siete variedades de Lilium,

separando escamas pequeñas de escamas grandes. Se colocaron en bolsas

plásticas negras (según tamaño de escamas) con dos mezclas de sustratos

diferentes (perlita-vermiculita y arena-turba) y se llevaron a cámara por doce

semanas a 26ºC y cuatro semanas a 17ºC. Durante este periodo se evaluó el

número de bulbillos, diámetro de bulbillos, peso de bulbillos, número de raíces y

largo de raíces.

Los resultados obtenidos demostraron que el tamaño de escama influye

en un mejor desarrollo de bulbillos para aquellas de mayor tamaño (mayor

peso). Ambas mezclas de sustratos poseen buenas características físicas para

la propagación de bulbillos de Lilium mediante escamas, encontrándose

diferencias solo en dos de las siete variedades en análisis (Elite y Stargazer).

62

SUMMARY

Lilly is a cut flower crop with a great development in the last ten years in

Chile, due to the permanent improvement of the species, wich has generated

new and interesting cultivars, all of them having a great potential to get into new

markets.

The general objetive of this work was to determine the aptitude of bulblet

induction using bulbscales of seven cultivers of Lilium x hybridum, to determine

the relation among the characteristics of developed bulblets and the scale size,

and to determine the effect of using different substrates.

To establish the experiment, seven cultivars of Lilium were scaled,

separating small scales from large scales. Scales were placed in black plastic

bags (depending on the size of scale) containing two different sustrate mixes

(perlite – vermiculite and sand – peat) and transferred to a culture chamber for

twelve weeks at 26 ºC and four weeks at 17 ºC. During this period the bulblet

number, bulblet diameter, bulblet weight, number of roots and length of roots

was evaluated.

This method and the variables evaluated show that scale size affects the

development of the bulblets from scales. Those of large size (higher weight) and

both mixtures are very efficient due to their physical characteristics, for

propagation of Lilly bulblets through scales, finding differences only in two of the

seven analysed cultivars (Elite and Stargazer).

63

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68

ANEXOS

69

ANEXO 1 Promedios de pesos y largos de escamas utilizadas.

PESO (gr) LARGO (cm) VARIEDADES grande chico grande chico

4,55 1,00 3,50 2,00 Merostar 2,97 1,00 3,00 2,00 3,61 0,48 3,20 2,00 3,84 0,49 3,00 2,00 3,00 0,52 3,00 2,00 Promedio 3,594 0,698 3,14 2 3,18 1,00 3,00 2,00 Stargazer 3,85 0,80 3,00 2,00 5,92 0,90 3,20 2,00 2,71 0,90 3,10 2,30 2,00 1,00 3,40 2,00 Promedio 3,532 0,92 3,14 2,06 1,50 0,50 2,50 1,80 Compass 1,98 0,30 3,00 2,00 1,33 0,50 3,00 2,00 1,37 0,30 2,50 1,80 1,47 0,29 3,00 2,00 Promedio 1,53 0,378 2,8 1,92 2,37 0,68 3,00 1,50 Elite 1,29 0,93 2,80 1,50 1,98 0,52 2,60 1,50 1,37 0,83 3,00 2,00 2,05 0,44 3,30 2,00 Promedio 1,812 0,68 2,94 1,70

(Continúa)

70

Continuación Anexo 1 PESO (gr) LARGO (cm) VARIEDADES grande chico grande chico 1,37 0,30 3,10 2,00 Montrealx 1,87 0,62 2,50 1,90 1,35 0,73 2,40 2,00 1,42 1,00 2,30 2,00 1,41 0,37 2,50 2,00 Promedio 1,484 0,604 2,56 1,98 1,76 0,73 3,00 2,00 Polyanna 1,79 0,78 3,80 1,60 1,55 0,40 3,00 2,00 2,24 0,34 3,00 2,20 1,23 0,70 3,20 2,20 Promedio 1,714 0,59 3,2 2 2,86 0,52 3,50 2,2 Sancerre 3,81 0,67 3,70 2,00 3,07 0,53 3,00 2,00 2,20 0,66 3,80 2,00 1,94 0,92 3,70 2,00 Promedio 2,776 0,66 3,54 2,04 Promedio total muestra 2,35 0,65 3,05 1,96

71

ANEXO 2 Análisis químico del sustrato Perlita – Vermiculita

FUENTE: INSTITUTO DE INGENIERÍA AGRARIA Y SUELOS,

UNIVERSIDAD AUSTRAL DE CHILE (2001).

pH (1:2.5) agua = 9,6

pH (1:2.5) CaCl2 0.01M = 8,8

Materia orgánica (%) = 0,0

Nitrógeno mineral (ppm) = 56

Fósforo aprovechable (ppm) = 1,1

Potasio intercambiable (ppm) = 587

Sodio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 0,85

Calcio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 3,43

Magnesio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 3,3

Suma de bases intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 9,08

Aluminio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 0,01

Saturación de aluminio (%) = 0,1

72

ANEXO 3 Análisis químico del sustrato Arena – Turba.

FUENTE: INSTITUTO DE INGENIERÍA AGRARIA Y SUELOS,

UNIVERSIDAD AUSTRAL DE CHILE (2001).

pH (1:2.5) agua = 5,2

pH (1:2.5) CaCl2 0.01M = 4,1

Materia orgánica (%) = 5,5

Nitrógeno mineral (ppm) = 26,6

Fósforo aprovechable (ppm) = 6,5

Potasio intercambiable (ppm) = 149

Sodio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 0,21

Calcio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 0,77

Magnesio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 1,73

Suma de bases intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 3,09

Aluminio intercambiable (meq/100 g.s.s.) = 0,49

Saturación de aluminio (%) = 13,7

73

ANEXO 4 Análisis de varianza sobre el número de bulbillos. Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio F - calculado Valor de F

Tratamiento (27) 21,856 (0,809) 4,02 (0,05) 7,13 (0,01)

Dentro de Merostar (V1)

Tamaño 1 0,832 0,832 5,808 x

Sustrato 1 0,288 0,288 2,011 NS

Tamaño * Sustato 1 0,193 0,193 1,347 NS

Dentro de Stargazer (V2)

Tamaño 1 3,685 3,685 25,725 xx

Sustrato 1 0,677 0,677 4,726 x

Tamaño * Sustato 1 0,004 0,004 0,028 NS

Dentro de Compas (V3)

Tamaño 1 0,426 0,426 2,974 NS

Sustrato 1 0,087 0,087 0,607 NS

Tamaño * Sustato 1 0,062 0,062 0,433 NS

Dentro de Elite (V4)

Tamaño 1 2,341 2,341 16,343 xx

Sustrato 1 0,015 0,015 0,105 NS

Tamaño * Sustato 1 0,875 0,875 6,108 x

Dentro de Montrealx (V5)

Tamaño 1 0,18 0,18 1,257 NS

Sustrato 1 0,166 0,166 1,159 NS

Tamaño * Sustato 1 0,337 0,337 2,353 NS

Dentro de Polyanna (V6)

Tamaño 1 2,083 2,083 14,542 xx

Sustrato 1 0,124 0,124 0,866 NS

Tamaño * Sustato 1 0,001 0,001 0,007 NS

Dentro de Sancerre (V7)

Tamaño 1 1,643 1,643 11,470 xx

Sustrato 1 0,013 0,013 0,091 NS

Tamaño * Sustato 1 0,124 0,124 0,866 NS

2,27 (0,05) 3,17 (0,01)

V1*V2*V3*V4*V5*V6*V7 6 7,70 1,283 8,959 xx

Error 56 8,022 0,143

Total 83 29,878

74

ANEXO 5 Análisis de varianza sobre el diámetro de bulbillos. Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio F - calculado Valor de F

Tratamiento 27 170,247 (6,305) 4,02 (0,05) 7,13 (0,01)

Dentro de Merostar (V1)

Tamaño 1 39,2047 39,2047 66,986 xx

Sustrato 1 0,0271 0,0271 0,046 NS

Tamaño * Sustato 1 0,7651 0,7651 1,307 NS

Dentro de Stargazer (V2)

Tamaño 1 43,2820 43,2820 73,952 xx

Sustrato 1 2,3670 2,3670 4,044 x

Tamaño * Sustato 1 2,9502 2,9502 5,041 x

Dentro de Compas (V3)

Tamaño 1 0,8856 0,8856 1,513 NS

Sustrato 1 0,0001 0,0001 0,000 NS

Tamaño * Sustato 1 0,8321 0,8321 1,422 NS

Dentro de Elite (V4)

Tamaño 1 0,3008 0,3008 0,514 NS

Sustrato 1 6,2785 6,2785 10,728 xx

Tamaño * Sustato 1 0,1008 0,1008 0,172 NS

Dentro de Montrealx (V5)

Tamaño 1 16,3800 16,3800 27,987 xx

Sustrato 1 0,9976 0,9976 1,705 NS

Tamaño * Sustato 1 0,6816 0,6816 1,165 NS

Dentro de Polyanna (V6)

Tamaño 1 3,7408 3,7408 6,392 x

Sustrato 1 0,8216 0,8216 1,404 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0320 0,0320 0,055 NS

Dentro de Sancerre (V7)

Tamaño 1 10,6032 10,6032 18,117 xx

Sustrato 1 0,0048 0,0048 0,008 NS

Tamaño * Sustato 1 0,4256 0,4256 0,727 NS

2,27 (0,05) 3,17 (0,01)

V1*V2*V3*V4*V5*V6*V7 6 39,5658 6,5943 11,267 xx

Error 56 32,775 0,585

Total 83 203,022

75

ANEXO 6 Análisis de varianza sobre el peso de bulbillos. Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio F - calculado Valor de F

Tratamiento 27 0,587 0,022 4,02 (0,05) 7,13 (0,01)

Dentro de Merostar (V1)

Tamaño 1 0,1250 0,1250 30,435 xx

Sustrato 1 0,0030 0,0030 0,730 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0070 0,0070 1,704 NS

Dentro de Stargazer (V2)

Tamaño 1 0,2080 0,2080 50,643 xx

Sustrato 1 0,0001 0,0001 0,024 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0040 0,0040 0,974 NS

Dentro de Compas (V3)

Tamaño 1 0,0008 0,0008 0,195 NS

Sustrato 1 0,0009 0,0009 0,219 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0040 0,0040 0,974 NS

Dentro de Elite (V4)

Tamaño 1 0,0002 0,0002 0,049 NS

Sustrato 1 0,0400 0,0400 9,739 xx

Tamaño * Sustato 1 0,0001 0,0001 0,024 NS

Dentro de Montrealx (V5)

Tamaño 1 0,0320 0,0320 7,791 xx

Sustrato 1 0,0050 0,0050 1,217 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0050 0,0050 1,217 NS

Dentro de Polyanna (V6)

Tamaño 1 0,0060 0,0060 1,461 NS

Sustrato 1 0,0001 0,0001 0,024 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0020 0,0020 0,487 NS

Dentro de Sancerre (V7)

Tamaño 1 0,0390 0,0390 9,496 xx

Sustrato 1 0,0005 0,0005 0,122 NS

Tamaño * Sustato 1 0,0030 0,0030 0,730 NS

2,27 (0,05) 3,17 (0,01)

V1*V2*V3*V4*V5*V6*V7 6 0,1013 0,0169 4,111 xx

Error 56 0,230 0,004

Total 83 0,817

76

ANEXO 7 Análisis de varianza sobre el número de raíces. Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio F - calculado Valor de F

Tratamiento (27) 50,761 (1,880) 4,02 (0,05) 7,13 (0,01)

Dentro de Merostar (V1)

Tamaño 1 2,708 2,708 5,116 x

Sustrato 1 0,822 0,822 1,553 NS

Tamaño * Sustato 1 1,281 1,281 2,420 NS

Dentro de Stargazer (V2)

Tamaño 1 10,231 10,231 19,328 xx

Sustrato 1 0,801 0,801 1,513 NS

Tamaño * Sustato 1 0,112 0,112 0,212 NS

Dentro de Compas (V3)

Tamaño 1 0,848 0,848 1,602 NS

Sustrato 1 0,103 0,103 0,195 NS

Tamaño * Sustato 1 0,114 0,114 0,215 NS

Dentro de Elite (V4)

Tamaño 1 2,034 2,034 3,843 NS

Sustrato 1 6,631 6,631 12,527 xx

Tamaño * Sustato 1 2,117 2,117 3,999 NS

Dentro de Montrealx (V5)

Tamaño 1 5,797 5,797 10,951 xx

Sustrato 1 0,193 0,193 0,365 NS

Tamaño * Sustato 1 0,93 0,93 1,757 NS

Dentro de Polyanna (V6)

Tamaño 1 0,252 0,252 0,476 NS

Sustrato 1 0,062 0,062 0,117 NS

Tamaño * Sustato 1 0,002 0,002 0,004 NS

Dentro de Sancerre (V7)

Tamaño 1 1,771 1,771 3,346 NS

Sustrato 1 0,04 0,04 0,076 NS

Tamaño * Sustato 1 0,46 0,46 0,869 NS

2,27 (0,05) 3,17 (0,01)

V1*V2*V3*V4*V5*V6*V7 6 13,452 2,242 4,235 xx

Error 56 29,643 0,529

Total 83 80,404

77

ANEXO 8 Análisis de varianza sobre el largo de raíces. Fuente de variación

Grados de libertad

Suma de cuadrados

Cuadrado medio F - calculado Valor de F

Tratamiento (27) 386,231 (14,305) 4,02 (0,05) 7,13 (0,01)

Dentro de Merostar (V1)

Tamaño 1 0,139 0,139 0,025 NS

Sustrato 1 0,126 0,126 0,023 NS

Tamaño * Sustato 1 0,5 0,5 0,090 NS

Dentro de Stargazer (V2)

Tamaño 1 27,969 27,969 5,032 x

Sustrato 1 18,253 18,253 3,284 NS

Tamaño * Sustato 1 2,288 2,288 0,412 NS

Dentro de Compas (V3)

Tamaño 1 0,682 0,682 0,123 NS

Sustrato 1 0,599 0,599 0,108 NS

Tamaño * Sustato 1 5,441 5,441 0,979 NS

Dentro de Elite (V4)

Tamaño 1 31,202 31,202 5,614 x

Sustrato 1 18,377 18,377 3,306 NS

Tamaño * Sustato 1 24,51 24,51 4,410 x

Dentro de Montrealx (V5)

Tamaño 1 9,684 9,684 1,742 NS

Sustrato 1 0,208 0,208 0,037 NS

Tamaño * Sustato 1 32,013 32,013 5,760 x

Dentro de Polyanna (V6)

Tamaño 1 28,49 28,49 5,126 x

Sustrato 1 0,143 0,143 0,026 NS

Tamaño * Sustato 1 0,139 0,139 0,025 NS

Dentro de Sancerre (V7)

Tamaño 1 6,078 6,078 1,094 NS

Sustrato 1 6,512 6,512 1,172 NS

Tamaño * Sustato 1 3,521 3,521 0,633 NS

2,27 (0,05) 3,17 (0,01)

V1*V2*V3*V4*V5*V6*V7 6 169,357 28,226 5,078 xx

Error 56 311,253 5,558

Total 83 697,484

78

ANEXO 9 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el número de bulbillos.

(T1) : Tamaño de escamas grandes (T2) : Tamaño de escamas pequeñas

79

ANEXO 10 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el número de bulbillos.

(S1) : Sustrato perlita/vermiculita (S2) : Sustrato arena/turba

80

ANEXO 11 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el peso de bulbillos (g).

(T1) : Tamaño de escamas grandes (T2) : Tamaño de escamas pequeñas

81

ANEXO 12 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el peso de bulbillos (g).

(S1) : Sustrato perlita/vermiculita (S2) : Sustrato arena/turba

.

82

ANEXO 13 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el diámetro de bulbillos (mm).

(T1) : Tamaño de escamas grandes (T2) : Tamaño de escamas pequeñas

83

ANEXO 14 Efecto del sustrato y de la variedad de Lilium sobre el diámetro de bulbillos (mm).

(S1) : Sustrato perlita/vermiculita (S2) : Sustrato arena/turba

84

ANEXO 15 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el número de raíces.

(T1) : Tamaño de escamas grandes (T2) : Tamaño de escamas pequeñas

85

ANEXO 16 Efecto de sustrato y de la variedad de Lilium sobre el número de raíces.

(S1) : Sustrato perlita/vermiculita (S2) : Sustrato arena/turba

86

ANEXO 17 Efecto del tamaño de escamas y de la variedad de Lilium sobre el largo de raíces (cm).

(T1) : Tamaño de escamas grandes (T2) : Tamaño de escamas pequeñas

87

ANEXO 18 Efecto de sustrato y de la variedad de Lilium sobre el largo de raíces (cm).

(S1) : Sustrato perlita/vermiculita (S2) : Sustrato arena/turba