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SISTEMATIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS Y COSTOS PARA LA VIGILANCIA ENTOMOLOGICA Y CONTROL DE

VECTORES DE LAS ENFERMEDADES METAXENICASLIMA, PERÚ –MAYO DEL 2002

SISTEMATIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS Y COSTOS PARA LA VIGILANCIA ENTOMOLOGICA Y CONTROL DE

VECTORES DE LAS ENFERMEDADES METAXENICAS.

La Dirección de Riesgos y Daños del Ministerio de Salud, reunió del 13 al 18 de mayo a personal profesional de las DISAs Sullana, Lambayeque, Ucayali y Arequipa y un asesor temporal de OPS, para elaborar un documento técnico que sirva como Directiva Nacional Con la finalidad de sistematizar y unificar criterios en los procedimientos y costos para la vigilancia entomológica y control de vectores de malaria, dengue, chagas, leishmaniosis y bartonellosis. Este documento ha sido elaborado teniendo en cuenta los diferentes escenarios y/o estratos epidemiológicos, Directivas, Informes, Publicaciones Científicas, documentos OPS y Experiencias Nacionales.

Para mejor comprensión el contenido del presente informe se ha organizado en tres capítulos: Vigilancia Entomológica, Control y Costos Operativos.

A.- VIGILANCIA VECTORIAL

1.- VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA DE MALARIA

OBJETIVO GENERAL

La Vigilancia entomológica de Malaria nos permitirá conocer la distribución de los vectores más relevantes como An. darlingi, An. albimanus y An. pseudopunctipennis, en el ámbito nacional y establecer los perfiles de riesgo de transmisión en las diferentes áreas, para orientar las estrategias de control y establecer las medidas de intervención oportuna, adecuada y eficiente.

AMBITO:

La Vigilancia entomológica de Malaria se realizará en todas las Direcciones Regionales de Salud, en distritos ubicados en áreas de niveles altitudinales hasta los 2,400 m.s.n.m.

ESTRATEGIAS:

La Vigilancia Entomológica se establece según los escenarios epidemiológicos teniendo en cuenta los criterios de Indice Parasitario Anual (IPAx1,000 hab.), Resistencia de Plasmodium falciparum a fármacos, resistencia de los mosquitos a los insecticidas, densidad vectorial, condiciones medioambientales favorables para la presencia del vector y migración de personas. De acuerdo a estas variables se tipifican los siguientes escenarios:

Escenario I: Sin riesgo de Malaria. IPA igual a 0 (sólo casos importados) y sin presencia de vectores.

Escenario II: Bajo riesgo de Malaria IPA menor de 1, sin resistencia de P. falciparum a los fármacos, susceptibilidad de los mosquitos a los insecticidas (98% al 100% de

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A

mortalidad), presencia de vectores secundarios y primarios, clima subtropical estacional y valle interandino (T° 10-20 °C).

Escenario III: Mediano riesgo de Malaria IPA mayor o igual a 1 y menor a 10, resistencia de P. falciparum a los fármacos menor al 12%, susceptibilidad disminuida de los mosquitos a los insecticidas (Mortalidad entre 80 y menor de 98%), presencia de vectores secundarios y vectores primarios.

Escenario IV: Alto riesgo de Malaria IPA mayor e igual a 10 y menor de 50, resistencia de P. falciparum a los fármacos de 12 - 29%, resistencia de los mosquitos a los insecticidas (mortalidad menor al 80%), presencia mayoritaria de vectores primarios y vectores secundarios.

Escenario V: Muy alto riesgo de Malaria IPA mayor o igual a 50, resistencia de P. falciparum a los fármacos mayor al 30%, resistencia de mosquitos a los insecticidas menor de 80%, presencia mayoritaria de vectores primarios y vectores secundarios.

ESCENARIOS PARA VIGILANCIA ENTOMOLÓGICASEGÚN CRITERIOS EPIDEMIOLÓGICOS

VIGILANCIA EN ESCENARIO I:

En los distritos comprendidos en estos escenarios se realizará la vigilancia anualmente, durante la época en el que las condiciones climáticas favorezcan la introducción del vector de la Malaria. Estas encuestas se harán en los Distritos ubicados en niveles altitudinales comprendidos entre los 2,000 y 2,400 m.s.n.m.

De encontrarse áreas positivas se ampliará a niveles altitudinales inmediatamente superiores.

En los distritos por debajo de los 2,000 m.s.n.m donde se identifican áreas sin riesgo se hará el mismo tipo de muestreo.

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CRITERIOS PARA DEFINIR ESCENARIOS PARA LA VIGILANCIA ENTOMOLOGICA EN MALARIA

ESCENARIOS ESTRATOS EPIDEMIOLOGICOS I.P.A x 1,000 PRESENCIA DEL VECTOR CASOS

ESCENARIOS I SIN RIESGO DE MALARIA CERO NO HAY VECTOR O ES

DESCONOCIDOSIN CASOS O CASOS

IMPORTADOS

ESCENARIO II BAJO RIESGO / MEDIANO RIESGO <10

VECTORES CONOCIDOS/PRINCIPALES

Y SECUNDARIOS CON CASOS

ESCENARIO III ALTO RIESGO / MUY ALTO RIESGO >10

VECTORES CONOCIDOS PREDOMINANTEMENTE

PRINCIPALES CON CASOS

Fuente: Equipo técnico

Se realizará búsqueda de Anofelinos reposando en refugios naturales, abrigo de animales e intradomicilio durante el día y capturas y colectas nocturnas en el intra y peridomicilio utilizando la metodología establecida por el manual de procedimientos OPS ( + ) y adoptados por el Ministerio de Salud.

Los especímenes colectados serán enviados al Laboratorio Central de la DISA y el 10% de las muestras al INS para su control de calidad.

VIGILANCIA EN EL ESCENARIO II Y III:

Para los fines de la vigilancia entomológica en estos dos escenarios de bajo y mediano riesgo de malaria, se procederá según los siguientes criterios:

a.- Reconocimiento y tipificación de criaderos.

Dependiendo de la tipificación de criaderos permanentes o temporales se seleccionaran dos criaderos de cada tipo, para el monitoreo de sus variaciones estacionales, teniendo en cuenta que los criaderos seleccionados se encuentren a menos de 2 Km. del centro de una localidad representativa del distrito; la frecuencia de muestreo será quincenal y se mantendrá mientras el criadero constituya un foco generador de mosquitos.

TIPIFICACIÓN DE CRIADEROS

FUENTE: OMS, 1975; Forattini, 1962.

b.- Identificación taxonómica de especies

Todos los especimenes colectados deberán ser identificados por estadio y especie, especialmente los de III y IV estadio larval. Los especímenes colectados serán enviados a laboratorio central de la DISAs para su identificación y el 10% de las muestras al INS para su control de calidad.

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TIPOS DE CRIADEROS SEGÚN CONDICIÓNTIPOS NATURAL ARTIFICIAL

CO

ND

ICIÓ

N

TOTORAL ESTANQUERIAS DE PISCIGRANJAS

PERMANENTE LAGUNAS O COCHAS REPRESAS

AGUAJAL

ESTA

CIO

NA

L LECHO DE RIOS ARROZALES

BRAZO DE RIO CANALETAS Y DRENES

AXILAS DE VEGETALES HUELLAS

OQUEDADES ROCOSAS CUNETAS

CHARCOS DE LLUVIAFILTRACIONES

c.- Búsqueda y colecta de adultos:

Para este tipo de actividad se procederá a la colecta de mosquitos en el intra, peri y extradomicilio con cebo humanos y trampas artificiales (Shannon, trampa de luz, etc.) durante la noche y durante el día en refugios naturales, abrigo de animales y otros lugares de reposo que nos permite conocer la fauna anofelínica y su distribución latitudinal y altitudinalmente.

d.- Indicadores entomológicos:

Los Indicadores entomológicos más relevantes en vectores de malaria son: Densidad larvaria x Cucharonada, el IPHN y el IPHH, que nos orientan para la aplicación y evaluación de las medidas de control vectorial.

d1.- EL INDICE DE DENSIDAD LARVARIA, es el número promedio de larvas por cucharonada, que nos permite evaluar las intervenciones contra las larvas de las especies vectoras y conocer las variaciones de sus poblaciones inmaduras.

El indicador entomológico será larvas / por cucharonada, debiendo considerarse un mínimo de 20 cucharonadas por criadero. Teniendo en cuenta el tamaño del criadero, se procederá de la siguiente manera:

Para determinar los rangos de la densidad larvaria se suman las larvas encontradas y se divide entre el número total de cucharonadas, obteniendo una media que nos determina los diferentes rangos de la densidad larvaria:

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PERIMETRO DEL CRIADERO (En metros) N° CUCHARONADAS

Menor o igual 20 m 1cucharonada cada/ metro De 21- 99 m 1cucharonada cada / 2 mts De 100- 1000 m 1cucharonada cada / 5 mts Mayor de 1000 m 1cucharonada cada / 10 mts** Máximo hasta 100 cucharonadas. Fuente: Equipo Técnico-

Total de larvas colectadasDENSIDAD LARVAS POR CUCHARONADA = -------------------------------------

Número de cucharonadas

d2.- INDICE DE PICADURA HOMBRE-NOCHE (IPHN):

Este indicador es útil para determinar el índice antropofílico de los vectores y establecer las variaciones horarias de invasividad al domicilio y establecer las variaciones estacionales de la población de mosquitos para determinar su importancia vectorial en la transmisión intra y peridomiciliar, así como evaluar el impacto de las intervenciones. Este índice será levantado mensualmente, en una localidad de cada escenario, debiéndose trabajar en 3 viviendas típicas del área, durante el periodo que va desde las 18.00 hasta las 06.00 hrs.. en el intradomicilio, en turnos de 3 hrs. consecutivas, utilizando 3 hombres por vivienda y en el peridomicilio utilizando un hombre de 18.00 a 22.00 hrs. y de 04.00 a 06.00 hrs. Las 3 viviendas seleccionadas serán trabajadas una por una en forma interdiaria, el promedio de IPHN de las 3 viviendas dará el IPHN de la localidad, este trabajo será replicado mensualmente durante un año..

Los criterios de selección de la localidad son:a.- Accesibilidadb.- Presencia de casos según estrato.c.- Antecedente de abundancia de vectores.d.- Densidad poblacionale.- Tipo de viviendaf.- Condición socioeconómica.

Los Criterios para la selección de la vivienda:a.- Proximidad de la vivienda a los criaderos b.- Viviendas del tipo predominante en la localidad.c.- Antecedentes de ocurrencia de casos de Malaria de preferencia en niños menores de 5 años d.- Aceptabilidad por parte del dueño de casa

Con los resultados se establece los rangos de nivel de picadura.

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NIVELES DE PICADURA IPHN

NULO 0 mosq. BAJA 1- 10 mosq. MEDIANA >10 <100 m. ALTA >100 <500 m. MUY ALTA >500 m. Fuente: Calderón et al, 1995

RANGOS DE LA DENSIDAD LARVARIA DE ANOPHELES ( Larva x Cucharonada)

MUY BAJA 0-1Larva / CucharonadaBAJA 2-5 Larva/ CucharonadaMEDIANA 6-20 Larva/CucharonadaALTA >21 Larva/ CucharonadaFuente:OPS-OMS / MOVIMONDO-MINSA / NIC

IPHN = Número de mosquitos que pican a un hombre durante una noche en el domicilio.

d3.- INDICE DE PICADURA HOMBRE/ HORA = MEDIA HORARIA (IPHH):

Establece la densidad poblacional horaria, permitiendo apreciar el comportamiento horario de la masa anofelínica, se expresa en el número de mosquitos colectados por hombre/hora. El IPHH sirve para medir la densidad y distribución de la fauna anofelínica, así como para justificar y evaluar una medida de intervención de control vectorial. El IPHH se efectuará en todas las localidades posibles, antes y después de la aplicación de un adulticida; esta actividad puede ser efectuada por un componente del equipo de rociamiento y/o por un responsable debidamente capacitado del nivel local, con apoyo de la comunidad.

MH = Media Horaria; H = Número de Horas de captura; C = Número de colectores; N = Número de mosquitos capturados

e.- Bioensayos de susceptibilidad, eficacia y residualidad:

Se realizarán estudios de eficacia, residualidad y susceptibilidad de los insecticidas (Larvicidas y adulticidas) en las zonas infestadas con Anopheles y con medidas de intervención. Se recomienda efectuar según especie vectora una prueba completa de susceptibilidad, efectividad y residualidad una vez al año por lo menos en una localidad de cada estrato epidemiológico.

e1.- BIOENSAYOS PARA EVALUAR LA EFICACIA O EFECTIVIDAD DE UN INSECTICIDA

Las Pruebas para medir la eficacia de un insecticida ( Larvicida o adulticida) se realizan teniendo en cuenta la fase de desarrollo del vector:

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NIVELES DE PICADURA IPHH

NEGATIVA 0 mosquitos. BAJA < 1mosquito MEDIANA < 10 mosquito ALTA < ó = 50 mosq MUY ALTA > 50 mosquitoFuente: Manual INS-OGE

N MH = ------------------------------

H x C

- EFICACIA DE LARVICIDAS

Las Pruebas serán efectuadas a 1, 2, 7 y 14 días después de la aplicación del larvicida, en condiciones de laboratorio, semicampo y campo. Las larvas para la prueba deben ser de III y IV estadio jóvenes de preferencia colectadas en campo, utilizando 20 a 25 larvas en 8 vasos de exposición al producto formulado y 4 usados como control o testigo sin larvicida. La prueba de efectividad aceptable debe ofrecer una mortalidad del 98 a 100 % de los ejemplares expuestos al larvicida.

- EFICACIA DE ADULTICIDAS

- Estas Pruebas se efectuarán en campo, tanto del rociado residual como de la aplicación espacial mediante el uso de conos y jaulitas respectivamente. Las técnicas para estos bioensayos se ejecutarán en localidades seleccionadas y por personal que garanticen la calidad del bioensayo para la correcta evaluación del producto, siguiendo los procedimientos técnicos recomendados por OMS - MINSA.

- Pruebas de eficacia de las aplicaciones residuales, se efectuarán mediante el uso de conos conforme se describe en el Manual de Lucha contra los Vectores de OMS. El número de mosquitos por cono será de 10 a 15 ejemplares bien alimentados con sangre expuestos durante 30 minutos o el tiempo que el investigador desee ensayar.- Las Pruebas deben ser efectuadas por cada tipo de superficie predominante de las

viviendas de la localidad representativa del área. Se procede a una lectura al final de la exposición de 30 minutos y a las 24 horas se efectuará una lectura final de mortalidad. Estas pruebas se efectuarán cada 4 semanas como máximo, mientras la mortalidad en los expuestos sea igual o mayor a 70 %.

- Pruebas de eficacia de la Aplicación espacial, para efectuar esta prueba de

eficacia o efectividad espacial de un insecticida debe ser efectuada por personal capacitado y de experiencia que garanticen la calidad de la aplicación del insecticida y ejecución del bioensayo con calidad y supervisión eficientes. Los bioensayos se ejecutarán en localidades seleccionadas, por el personal profesional y/ o técnico del nivel local, siguiendo los procedimientos técnicos recomendados por OMS y adoptados por MINSA. -

e2.- LOS BIOENSAYOS PARA EVALUAR LA RESIDUALIDAD

- Estos bioensayos tienen por finalidad valorar el tiempo de acción residual letal de un insecticida y la calidad de aplicación para el control de vectores. Para estas pruebas de residualidad debe trabajarse de preferencia con mosquitos colectados en campo. Para efectuar los trabajos de campo de valoración del efecto residual, se procederá a una aplicación de calidad y se acompañarán las pruebas mientras el producto aplicado mantenga mortalidad igual o mayor del 70%, que consideramos es la mortalidad mínima aceptable para los fines del programa de control. Arredondo et al, en México 1996, considera 75 % de mortalidad y Braga et al en Brasil, 1997 trabaja con 70 % de mortalidad como valor referencial para aceptar epidemiológicamente como residualidad aceptable. Debe hacerse antes de estas pruebas, la medición de la susceptibilidad de la especie a usar en el ensayo.

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E2.1 BIOENSAYOS PARA EVALUAR O MONITOREAR LA RESIDUALIDAD DE UN LARVICIDA

Se efectuarán de igual manera que la prueba de eficacia o efectividad, debiendo proceder a las evaluaciones a seis, doce, veinticuatro y cuarenta y ocho horas y posteriormente debe acompañarse a cada dos o cuatro semanas consecutivamente en condiciones de campo, mientras la mortalidad final sea igual o mayor al 70 %. El producto formulado usado en el ensayo debe ser identificado en su concentración, el lote, fecha de producción, nombre comercial, casa comercial que ofreció el producto y Registro Sanitario del MINSA.

E2.1 LOS BIOENSAYOS PARA EVALUAR LA RESIDUALIDAD DE UN ADULTICIDA

Deben ser efectuados sobre las paredes según tipo de superficie predominante en cada región de salud (Adobe, tabique, yeso, ladrillo, cemento, madera y otras) siguiendo el procedimiento preconizado por la OMS y MINSA. Se efectuarán a 24 horas después de la aplicación del insecticida, se registra el número de lote, dosis aplicada y tipo de superficie. Se deberán colocar los conos estandarizados por OMS conteniendo 10 a 15 mosquitos en cada uno y utilizando tres conos por casa a diferentes alturas y un mínimo de tres viviendas del mismo tipo de superficie de paredes; los mosquitos se expondrán durante 30 minutos, pudiendo aumentarse el tiempo a criterio del investigador de campo y observados para lectura final de mortalidad a 24 horas. Las pruebas se realizarán a cada dos semanas o cada 4 semanas consecutivamente mientras la mortalidad por efecto del insecticida sea igual o mayor al 70 %.

E3.- PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD A LOS INSECTICIDAS

e3.1.- PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD DE LAS LARVAS, se realizarán utilizando las soluciones y técnicas estandarizadas por OMS y adoptadas por MINSA y/ o INS. El procedimiento es similar al usado para larvas de Aedes aegypti. Las larvas para la prueba deben ser de III y IV estadio jóvenes de preferencia colectadas en campo o criadas en laboratorio, utilizando 20 a 25 larvas en 8 vasos de exposición al producto formulado y en 4 usados como control o testigo sin larvicida.

e3.2.- LAS PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD CON MOSQUITOS ADULTOS, se realizarán con papeles impregnados con insecticida grado técnico preparados por OMS y/o INS correspondiente a los pesticidas de uso por el programa de control de vectores del MINSA. Los papeles impregnados serán proporcionados al nivel local, por el INS y/o la Dirección de Riesgos y Daños del Ministerio de Salud. Las pruebas preliminares en el nivel regional serán ejecutadas por el nivel local y verificadas según resultados por el INS.

F.- CRITERIOS DE VALIDACIÓN DE LAS PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD

Para interpretar y validar los resultados de los ensayos, en una prueba de susceptibilidad, son adoptados los criterios de los trabajos de Davidson y Zahar, 1986 y WHO, 1998 y son los que se detallan:

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f-1.- Porcentaje de mortalidad en los expuestos:

98 a 100 % mortalidad indican susceptibilidad (SS)80 a < 98 % sugieren la posibilidad de resistencia que necesita verificación (VR)< de 80 % mortalidad sugiere resistencia presente. (RR)

f-2.- Porcentaje de mortalidad en el testigo o control

La mortalidad aceptable en los tubos o vasos de control es de un máximo de 20 % de mortalidad, por encima de este valor la prueba se desecha o invalida. Si la mortalidad en la prueba alcanza del 5 al 20 % la mortalidad en los expuestos debe ser corregida mediante la fórmula de Abbott:

f-3.- MONITOREO DE LA SUSCEPTIBILIDAD Y/O RESISTENCIA

Según los resultados de las pruebas efectuadas con población de vectores de campo, se procederá al monitoreo de la susceptibilidad y/o resistencia, cuyos rangos determinados por OMS son los que se detallan:

- ESPECIES SUSCEPTIBLES, ( 98 a 100% de mortalidad): Se realizará una prueba completa una vez al año.

- ESPECIES EN VIGILANCIA o que requieren verificación, ( 80 a menos de 98% de mortalidad): Se efectuarán pruebas completas cada seis meses.

- ESPECIES RESISTENTES (Mortalidad menor de 80%): Se realizarán pruebas para determinar el área afectada y se manejarán poblaciones F1 y F2 para complementar y convalidar con pruebas bioquímicas y biomoleculares en los tres primeros meses del hallazgo y se continuarán trimestralmente para monitorear su evolución en campo.

La notificación de pruebas resistentes obliga al envío de los sobrevivientes para producir la generación F1 y F2 en insectarios de alta seguridad y proceder a nuevas

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PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD / RESISTENCIA

MORTALIDAD (en %)

DIAGNOSTICO TIPO DE MONITOREO

De 98 a 100 SUSCEPTIBLES ANUAL De 80 a < 98 VIGILANCIA * TRIMESTRAL < de 80 RESISTENTES SEMESTRAL Fuente: OPS, 1986 y 1998

% Mort. en Exptos - % Mort. en ControlMORTALIDAD CORREGIDA = ------------------------------------------------------- x 100 100 - % Mort. en Control

pruebas tanto con papeles impregnados y/o soluciones, para realizar pruebas bioquímicas y biomoleculares, las cuales serían de responsabilidad del INS.

Las pruebas de susceptibilidad de las larvas, se realizarán con soluciones insecticidas preparadas y estandarizadas por OMS y las pruebas con adultos utilizando papeles impregnados con insecticida grado técnico, proporcionados por OMS, el INS y/o la Dirección de Riesgos y Daños del Ministerio de Salud.

Las pruebas preliminares en la jurisdicción de las DISA deberán ser ejecutadas por el nivel local que ya cuentan con los equipos para las pruebas, pero necesitan ser abastecidos oportunamente de soluciones o papeles con insecticidas estandarizados.

Todos los registros con los resultados de las diversas pruebas de susceptibilidad y/o resistencia deberán ser remitidos a INS, MINSA y OPS para su información, registro yverificación correspondiente de los resultados encontrados.

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2. VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA DEL DENGUE

2.1 OBJETIVO GENERAL:

Conocer el comportamiento, la distribución, densidad y su interrelación con el medio ambiente que permita obtener más información de calidad y oportuna sobre el Aedes aegypti, para proceder a su control y/o eliminación.

2.2 AMBITO:

La Vigilancia Entomológica será realizada en todas las localidades situadas hasta 2,000 m.s.n.m en las Regiones de salud. 2.3 ESTRATEGIAS:

La Vigilancia Entomológica se establece según los escenarios epidemiológicos:

Escenario I : Localidades sin vector y con riesgo de introducción.Escenario II : Localidades con vector y sin presencia de casos de DengueEscenario III: Localidades con vector y la presencia de casos de Dengue

2.4 INDICADORES ENTOMOLOGICOS:

Para conocer el grado o niveles de infestación del Aedes aegypti en un área, comúnmente se utilizan tres INDICES:

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Número de Viviendas con Larvas AedesINFESTACIÓN DE VIVIENDA = ----------------------------------------------------- x 100

Número de Viviendas Inspeccionadas

N° Recipientes con Larvas de AedesÍNDICE DE RECIPIENTES o DEPÓSITOS = ------------------------------------------------ x 100 N° Recipientes inspeccionados

Número de Recipientes con Larvas AedesINDICE DE BRETEAU = ------------------------------------------------------------ x 100 Número de Viviendas inspeccionados

Con fines de estratificar el riesgo de transmisión de dengue según el Índice de Infestación Aédica (OPS, 1995) se establecen los siguientes rangos:

< = Menor que ; > = Mayor que

2.5 VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA EN EL ESCENARIO I:

a.- Realizar muestreos trimestralmente al 10% del total de viviendas del distrito y además en los puntos críticos ó estratégicos: Cementerios, Terrapuertos, Aeropuertos, Mercados, Llanterias, Talleres metalmecánica, etc., dando prioridad a las localidades vecinas a áreas con infestación Aédica.

b.- Se instalarán ovitrampas y/o larvitrampas con bioregulador de crecimiento (Piriproxifen, Methoprene, etc), las que serán distribuidas dentro del 10% de las viviendas a inspeccionar y a más de 100 mts de los puntos estratégicos.

c.- El total de ovitrampas y/o larvitrampas a instalar será el 2% del total de viviendas a inspeccionar en el ámbito de los distrito seleccionados.

d.- Las ovitrampas y/o larvitrampas con bioregulador se inspeccionaran cada dos semanas y en las localidades donde no se cuente con el producto las inspecciones serán realizadas semanalmente.

e.- Las ovitrampas y/o larvitrampas serán colocadas en los distritos vecinos a áreas con infestación de Aedes aegypti.

f.- Las ovitrampas y/o larvitrampas serán instaladas en los sitios preferidos por el vector a menos de un metro del nivel del suelo, en lugares sombreados y silenciosos. Debe tenerse cuidado de ellas y protegerlo de la manipulación de las personas y animales. El número de trampas para la vigilancia será del 2 % de las viviendas que fueran seleccionadas para inspeccionar durante la vigilancia trimestral al 33 % del total de existentes en la localidad. g.- En el croquis o mapa de la localidad se señalará calle, número y propietario de la vivienda, de cada ovitrampa y/o larvitrampa instalada, debidamente codificada y rotulada para ubicación y monitoreo.

h.- Los especimenes y huevos encontrados en las larvitrampas y ovitrampas, serán remitidos al laboratorio referencial para su procesamiento e identificación pertinente y el 10% de las muestras al INS para su control de calidad.

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ESTRATIFICACION DE LOCALIDADES SEGÚN INDICE DE INFESTACIÓN DOMICILIARIA DEL AEDES AEGYPTI

INDICE INFESTACIÓN DE VIVIENDA NIVEL DE RIESGO

< 0.1 BAJO0.1 < 5.0 MEDIO

> 5.0 ALTO FUENTE: OPS –Public. N°548 pg 36

2.6 VIGILANCIA EN LOS ESCENARIOS II Y III:

En el escenario II teniendo en cuenta que existen altos índices de infestación aédica y el riesgo latente de importación de casos de áreas vecinas, se dará la misma estrategia de vigilancia que la del escenario III

a.- La vigilancia se hará simultáneamente a la intervención con tratamiento focal que será del 100 % de las viviendas del distrito.

b.- Esta actividad se realizará cada dos meses en el ámbito del distrito, hasta la ausencia de casos y los índices Aédicos se reduzcan a menos de 1%, luego se incorporará al sistema de vigilancia trimestral sujeta al 33 % de muestreo de viviendas.

c.- En el escenario II y III, se instalarán las ovitrampas y larvitrampas cuando se negativice la presencia del vector en dichos escenarios de acuerdo a lo especificado en el escenario I.

d.- Los estudios entomológicos incluirán la identificación microscópica de los especímenes con la finalidad de verificar la existencia del Aedes aegypti y/o el riesgo de la introducción de nuevas especies como es el Ae. albopictus..

e.- Se realizarán estudios de susceptibilidad del Aedes a los insecticidas, así como bioensayos de eficacia y residualidad de los plaguicidas antes de su aplicación en las zonas infestadas con Aedes.

2.6.1 LAS PRUEBAS DE EFICACIA DE LARVICIDAS

Serán efectuadas a 1, 2, 7 y 14 días después de la aplicación del larvicida, en condiciones de laboratorio, semicampo y campo. Las larvas para la prueba deben ser de III y IV estadio jóvenes de preferencia colectadas en campo, utilizando 20 a 25 larvas en 8 vasos de exposición al producto formulado y 4 usados como control o testigo sin larvicida. La prueba de efectividad aceptable debe ofrecer una mortalidad del 98 a 100 % de los ejemplares expuestos al larvicida.

a.- Los bioensayos para evaluar o monitorear la residualidad de un larvicida usado en el control del dengue se efectuarán de igual manera que la prueba de eficacia o efectividad, debiendo acompañarse a cada dos o cuatro semanas consecutivamente en condiciones de laboratorio, semicampo o campo mientras la mortalidad final sea igual o mayor al 70 %. El producto formulado usado en el ensayo debe ser identificado en su concentración, el lote, fecha de producción, nombre comercial, casa comercial que ofreció el producto y Registro San. del MINSA.

b.- Para realizar las pruebas de eficacia de las aplicaciones espaciales se utilizarán mosquitos hembras alimentadas, las mismas que se colocarán en jaulitas dentro de la vivienda a nebulizar a un metro del suelo, conteniendo 15-25 mosquitos, los cuales serán expuestos por un periodo de 60 minutos en la vivienda nebulizada, para luego observar el efecto Knock Down (KD) del insecticida y finalmente la mortalidad a 24 horas después de su exposición.

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c.- Las pruebas de susceptibilidad de las larvas se realizarán con soluciones insecticidas preparadas y estandarizadas por OMS y las pruebas con adultos utilizando papeles impregnados con insecticida grado técnico, proporcionados por OMS, el INS y/o la Dirección de Riesgos y Daños del Ministerio de Salud. Las pruebas preliminares en la jurisdicción de las DISA serán ejecutadas por el nivel local.

d.- Los criterios para interpretar y validar los resultados de los ensayos en una prueba de susceptibilidad, son adoptados de los trabajos de Davidson y Zahar, 1986 y WHO, 1998 y son los que se detallan:


e.- Los resultados de las pruebas serán remitidos a INS, para su registro nacional y proceder a la verificación y monitoreo según los resultados encontrados, especialmente en caso de reporte de resistencia.

f.- Ante reporte de resistencia de los vectores a un insecticida debe procederse a una evaluación de campo del producto formulado; si el producto no mata más del 50 % de los mosquitos expuestos a 24 o 48 horas de la aplicación del producto se confirma que existe el fenómeno con carácter alarmante y debe epidemiología determinar el retiro del uso del producto y otros afines previa verificación de campo.

g.- Si se reporta que un insecticida aplicado en campo no está teniendo el tiempo de acción letal esperado (residualidad) frente a los insectos vectores se debe proceder a efectuar nuevas pruebas con el lote del producto comercial existente en almacén, así como enviar muestras del stock al INS para determinar la concentración del ingrediente activo del producto, porque podría tratarse de problemas de formulación.

h.- Las pruebas de susceptibilidad, eficacia y residualidad se realizarán de acuerdo a los procedimientos preconizados y estandarizados por OMS, cualquier modificación a la prueba debe ser autorizada por el MINSA.

i.- Se aconseja utilizar el formato OMS para el registro y envío de los resultados al INS, MINSA y OPS.

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3.- VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA DE CHAGAS


Determinar la infestación y/o reinfestación de Triatominos de reconocida capacidad vectorial y domiciliación en el ámbito nacional, para conocer la distribución altitudinal y latitudinal de los Triatominos y determinar las áreas Tripanotriatomínicas, con la finalidad de orientar las medidas adecuadas para su control.

3.2 AMBITO:

La Vigilancia entomológica de Triatominos vectores de la enfermedad de Chagas, se realizará en todo el ámbito nacional en distritos ubicados por debajo de los 3200 metros sobre el nivel del mar.

3.3 ESTRATEGIAS:

a.-La Vigilancia Entomológica se establecerá según los escenarios epidemiológicos:

Escenario I : Localidades sin vector y/o con vectores no domiciliados y riesgo de introducción de especies de reconocida capacidad vectorial.

Escenario II: Localidades con vectores domiciliados y sin presencia de casos humanos de Tripanosonomiasis Americana (Mal de Chagas).

Escenario III: Localidades con vector y la presencia de casos de Triatoma infestans y/o Panstrongylus herreri, P. chinai, Rhodnius pictipes y presencia de casos humanos de Tripanosomiasis Americana (Mal de Chagas).

b.-Los indicadores entomológicos más relevantes recomendados y usados en las estrategias de control de Triatominos son los siguientes:

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Número de casa infestadas por TriatominosINDICE DE INFESTACION = ------------------------------------------------------------------------ x 100 Número de Casas inspeccionadas

Existen otros Índices que pueden ser considerados como el Índice de Hacinamiento, Índice de Densidad y el Índice de Infección Natural.

3.4 VIGILANCIA EN EL ESCENARIO I:

a.- La vigilancia será efectuada en las áreas de la Región Macrosur y en las Disas Jaén, Cutervo, Bagua y San Martín por los Servicios de Salud y por la comunidad. En el resto del país las regiones de salud harán campañas de divulgación para incentivar la participación comunitaria en la búsqueda, envío y notificación de estos vectores.

b.- La Vigilancia bajo responsabilidad de los Servicios de Salud será efectuada por el nivel local semestralmente al 10% del total de viviendas del distrito y por la comunidad por notificación según hallazgos.

c.- Los especímenes colectados serán enviados a laboratorio central de la DISA y el 10% de las muestras al INS para su control de calidad.

3.5 VIGILANCIA EN ESCENARIO II

a.- Para los fines de vigilancia se efectuarán encuestas trimestrales al 33% de viviendas positivas en localidades cuya infestación era mayor de 30% y en las otras localidades con Índice de Infestación por Vivienda o domiciliario menor de 30 %, se inspeccionarán todas las casas positivas identificadas..

b- Las viviendas que resulten positivas a la encuesta de vigilancia o por notificación de la población serán inmediatamente tratadas con insecticidas.

c- En las viviendas en las que se hace vigilancia se instalarán hojas de papel en las diferentes habitaciones, para la detección de huellas (deyecciones) de Triatominos.

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Número de casas infestadas por Ninfas INDICE DE COLONIZACION = ------------------------------------------------------------------------ x 100 Número de Casas con Triatominos

Número de Localidades infestadas INDICE DE DISPERSIÓN = ------------------------------------------------------------------------ x 100 Número de Localidades Inspeccionadas

d.- Los especímenes colectados serán enviados al laboratorio central de la DISA y el 10% de las muestras al INS para su control de calidad.

e.- En el escenario II se efectuarán pruebas para evaluar la susceptibilidad de los Triatominos a los insecticidas y de efectividad y residualidad de los productos antes de su adquisición y después de su primera aplicación; para efectuar estos bioensayos se seguirá el manual de procedimientos y/o técnicas estandarizadas por OMS. Cualquier modificación será previa norma o Directiva Nacional del INS y Dirección de Riesgos y Daños del MINSA.

3.6 VIGILANCIA EN EL ESCENARIO III:

En todas las localidades de este escenario se realizará lo siguiente.

a.- Al día siguiente de la aplicación del insecticida se procederá a visitar las viviendas con la finalidad de recolectar los Triatominos caídos o muertos por la acción letal del insecticida, lo cual servirá para el levantamiento real del índice de Infestación Domiciliaria por Triatominos y si fuera posible evacuar refrigerados en el menor tiempo posible los triatominos al laboratorio regional para el levantamiento de los diferentes estadios del vector y poder determinar el Indice de Colonización para comparar su dinámica poblacional de recuperación en las encuestas de vigilancia y mediante diagnóstico parasitológico conocer el Indice Tripano-Triatomínico.

b.- Todas las casas que resulten positivas a Triatominos serán marcadas con el signo más (+) con pintura en un lugar visible, para su identificación y evaluación y tratamiento posterior.

c.- En el croquis de la localidad serán marcadas las viviendas que resultaran positivas, para facilitar las encuestas de monitoreo de su reinfestación.

d.- Para los fines de vigilancia se efectuarán encuestas trimestrales al 33% de viviendas en localidades cuya infestación sea mayor de 30% y en las otras localidades con Índice de Infestación por Vivienda o domiciliario menor de 30 % se inspeccionarán todas las casas positivas identificadas..e.- En las viviendas en las que se hace vigilancia se instalarán hojas de papel tamaño A4, en las diferentes habitaciones, para la detección de huellas (Deyecciones) de Triatominos.

f.- Los especímenes colectados serán enviados a laboratorio central de la DISA y el 10% de las muestras al INS para su control de calidad.

g.- En el escenario III, se efectuarán pruebas para evaluar la susceptibilidad de los Triatominos a los insecticidas y de efectividad y residualidad de los productos empleados; para efectuar estos bioensayos se seguirá la Técnica preconizada por OMS y /o el manual de procedimientos y/o técnicas estandarizadas por el INS y/o adecuadas al nivel local y aceptadas por una norma o directiva Nacional. Los triatominos para los diferentes bioensayos deben haber sido colectados en campo en refugios animales en el intra y/o peridomicilio y alimentados una semana antes de ser sometidos a las pruebas

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h.- Las pruebas de Susceptibilidad con Triatominos se harán siguiendo las normas y procedimientos estandarizados por OMS, 1970. Ninfas de V estadio alimentadas una semana se distribuyen en número de 10 por cada uno de diez tubos con dos tiras de papel impregnado con insecticida grado técnico y dos tubos con papel sin insecticida, durante dos a tres días consecutivos, luego son transferidos a vasos de tecnopor o de papel con papel corrugado en su interior durante tres días consecutivos en condiciones de temperatura y humedad adecuadas y finalmente se procede a la lectura de mortalidad. Pruebas con Triatominos con adultos hembras y/o machos pueden también ser efectuadas a criterio del investigador. (OMS, 1970 y Nelson, M., 1994).

i.- Los criterios para interpretar y validar los resultados de los ensayos en una prueba de susceptibilidad, son adoptados de los trabajos de Davidson y Zahar, 1986 y WHO, 1998 y son los que se detallan:


3.6.1 BIOENSAYOS DE SUPERFICIE PARA VALORIZAR LA RESIDUALIDAD

Para la valoración de la residualidad de un producto insecticida frente a los Triatominos, se procede primero a su aplicación con personal de experiencia que garantice un rociado de calidad; se seleccionan por lo menos 5 viviendas de cada tipo de superficie predominante del distrito y sobre las paredes de tres de las casas se coloca en cada una de ellas, tres conos plásticos o placas descartables con 5 a 10 Triatominos (Ninfas y/o Adultos en diferentes placas), los ejemplares se exponen durante dos a tres días al insecticida, se transfieren después a vasos de tecnopor o papel y/ o placas y se mantienen en observación en buenas condiciones de temperatura y humedad durante tres días más en que se procede a su lectura final de mortalidad. Tres Conos o placas conteniendo 5 a 10 Ninfas o Adultos colocados sobre superficies sin insecticida en una casa sirven como Testigo o Control del ensayo. En la lectura final de mortalidad los ejemplares que no consiguen caminar sobre un papel filtro dentro de una bandeja por si mismo o estimulados tocándolos suavemente con un estilete o palito son considerados muertos. ( Oliveira Filho, 1998).

3.6.2 PRUEBA DE EFICACIA

Para determinar la eficacia de un insecticida residual en el control de Triatominos se procede a validar los resultados de las pruebas de residualidad efectuadas a uno o dos días después de la aplicación del insecticida. La mortalidad de 98 a 100 % califica al producto de eficaz en el control de triatominos.

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4.- VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA DE BARTONELOSIS y LEISHMANIOSIS

Como la transmisión de estas enfermedades es por los mismos vectores, se abordan los criterios de vigilancia en forma conjunta.

4.1 OBJETIVO:

Conocer e identificar el vector de Leishmaniosis y Bartonelosis a través de un sistema de vigilancia que incluya criterios de incriminación del vector en la transmisión de estas patologías.

4.2 AMBITO:

En todos los distritos en riesgo de Bartonelosis y Leishmaniosis según escenarios o estratos epidemiológicos identificados por el MINSA.

En el caso de Bartonelosis o enfermedad de Carrión, los distritos de la vertiente Centro- Nor - Occidental (Lima, Ancash, La Libertad, Piura) y en los valles interandinos y selva alta de Cajamarca, Amazonas y Cusco y en Leishmaniosis en los Departamentos de la Vertiente Occidental desde Piura hasta Lima entre los niveles altitudinales de 900 a 3200 sobre el nivel del mar, y los valles interandinos y selva.

4.3 ESTRATEGIAS

La vigilancia entomológica se realizará según escenarios epidemiológicos (no se recomienda el uso de cebos humanos para la colecta de estos vectores).

4.4 VIGILANCIA EN EL ESCENARIO- I: Es aquel en el que nunca se ha reportado la presencia del vector (Lutzomyia), ni presencia de casos autóctonos. En este escenario se justifica la vigilancia para determinar oportunamente la introducción del vector cuando existen áreas infestadas vecinas especialmente en el umbral altitudinal de 500 a 900 m sobre el nivel del mar

La vigilancia se efectuará muestreando el 10% de las viviendas de localidades seleccionadas utilizando trampas luminosas u otras dispuestas en el intra, peri y extra domicilio (cuevas, huecos de árboles y otros) Según las técnicas de colecta del manual de procedimientos MINSA. El material colectado será enviado al laboratorio Regional para su identificación y 10 % a INS para su verificación e identificación taxonómica.

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4.5 VIGILANCIA EN EL ESCENARIO -II: Es aquel con presencia de vectores pero sin presencia de casos; en este escenario se efectuará la vigilancia cada tres meses. Las actividades fundamentales a efectuar serán: la colecta y pruebas de susceptibilidad de los vectores a los insecticidas. En el primer caso las colectas serán efectuadas en todas las localidades y en algunas seleccionadas por su alta abundancia y especie vectora; se efectuará el ensayo de susceptibilidad por lo menos una vez al año utilizando los papeles impregnados con los diferentes insecticidas en uso para su control con el kit OMS empleado para pruebas con mosquitos previa adaptación de un tul o malla más tupida; los papeles impregnados serán los estandarizados por la OMS y/o INS preparados con ingrediente activo.

4.6 VIGILANCIA EN EL ESCENARIO - III: Corresponde a aquellos Distritos con presencia de casos y vectores. La vigilancia entomológica en este escenario es igual a la del escenario II, pero además se seleccionará localidades según riesgo para mensualmente evaluar las variaciones de la población vectora y las medidas de intervención, así mismo se efectuará bioensayos de campo para valorar la efectividad y residualidad según tipos de superficie de los diferentes insecticidas utilizados para el control de los vectores de Leishmaniosis y Bartonelosis los bioensayos de residualidad se efectuarán mensualmente mientras la mortalidad de las Lutzomyias sea igual o mayor al 70%. En cuanto a las pruebas de susceptibilidad estas serán monitoreadas teniendo en cuenta los resultados de las primeras pruebas tal como se detalla en la vigilancia de la sensibilidad de los vectores de malaria. Los procedimientos para ambas pruebas, son similares al descrito para vectores de malaria y dengue.

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SISTEMATIZACIÓN

DE

PROCEDIMIENTOS

PARA

CONTROL DE VECTORES

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II. SISTEMATIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS PARA EL CONTROL DE VECTORES

1.-CONTROL DE VECTORES DE MALARIA


El control del Anopheles se efectúa a través de intervenciones de ordenamiento del medio ambiente en el extradomicilio, el uso de tela o malla en las ventanas y puertas, el empleo diario de mosquiteros impregnados o no dentro de las viviendas, el tratamiento residual de las paredes y mobiliario del intradomicilio y las aplicaciones espaciales en emergencias por malaria en las áreas maláricas con vectores y transmisión, según estratos de los diferentes escenarios epidemiológicos.

1.2 AMBITO:

Las medidas de intervención para el control de Malaria se aplicarán en las áreas de los escenarios II y III que abarca todas las áreas con transmisión de casos, donde se efectuarán las siguientes estrategias:

1.3 ESTRATEGIAS DE CONTROL:

Solamente se aplicarán medidas de control del vector basado en el rociamiento con insecticidas, el uso de mosquiteros y ordenamiento del medio en las localidades del Escenario II y III.

1.3.1 TRATAMIENTO DE CRIADEROS DE ANOFELINOS

a.- El tratamiento con larvicidas en criaderos de Anofelinos, será realizado al 100% de todos las localidades que se encuentran en los escenarios II y III formados por los estratos epidemiológicos ya determinados por el Programa.

b.- Los ciclos de aplicación se harán trimestralmente mientras los casos se mantengan y epidemiológicamente se justifique.

c.- Larvicida: El larvicida de elección es el Temephos en su formulación granulada al 1% el cual se aplica a razón de 4 metros cuadrado de superficie, teniendo en cuenta el esquema nacional de “ 3 minas” amarradas a una estaca conteniendo cada una 20 gramos de Temephos.

d.- Consumo de larvicida por vivienda: Se estima que por hectárea se necesita 625 estacas, y con 1 875 “minas “ y un total de 3,750 gramos de Temephos por hectárea a tratar (3,75 Kg.)

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e.- Dosis: La cantidad de larvicida por deposito estará en función del volumen del recipiente, teniendo como referencia la aplicación de 20gr (1 cucharada) del larvicida por cada 200 litros, según la tabla de dosificación preconizada por OMS y asumida por el programa para el control de vectores del dengue.

1.3.2 TRATAMIENTO RESIDUAL DE VIVIENDAS CONTRA ANOFELINOS

a.- Para el control de los Anofelinos Vectores, se continuará utilizando las aplicaciones con insecticida residual utilizando la bomba Hudson –X Pert e insecticida en su formulación polvo mojable aplicado en el intradomicilio.

b.- Los insecticidas de elección para el tratamiento residual son los piretroides en su formulación polvo mojable los más adecuados por su efectividad y ser biodegradables. Las suspensiones se preparan fácilmente con agua. La aplicación residual es de muy fácil manejo. Se debe pesar bien las cargas en gramos para utilizar correctamente las dosis adecuadas, con el equipo y técnica de aplicación tradicional usada por varias décadas en el control de malaria, que debe reunir los siguientes requisitos:

Boquilla Teejet 8002 (80° y 0,2 galones por minuto)Descarga 0,2 galones por minuto (= 757 ml/min)Distancia de la boquilla a la pared 45 cm a la superficie tratadaSuperposición de fajas 5 cm de traslape entre fajas sucesivasVelocidad de aplicación 45 cm/ segundo ( 3 metros en 6,7 segundos)Presión interna útil de trabajo 25 libras por pulgada cuadradaHomogeneidad de la suspensión Agitación periódica de la bomba

c.- En la Tabla que se presenta a continuación podemos encontrar una relación de insecticidas, su formulación, dosis a emplear por metro cuadrado, así como el peso de la carga para bombas de 8 litros. d.- Los ciclos de aplicación de los insecticidas residuales estarán en función de la residualidad del producto usado y de la estacionalidad de las poblaciones vectores.(Aproximadamente cada tres a seis meses).

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PRINCIPALES INSECTICIDAS USADOS PARA LOS TRATAMIENTOS RESIDUALES EN EL CONTROL DE VECTORES DE LA MALARIA

NOMBRE OFICIAL

NOMBRE COMERCIAL

FORMU-LACIÓN

%

% FINAL DELA SUS-PENSIÓN

DOSISmg / m²

EFECTO

RESIDUALmeses

PESO DECARGASPara 8 lt

DL-50 mg/kg

FORMULADOVía Oral

Alfacyper- Methrina

Fendona, Fastac, Alfar, Bestox,

PM-10 0.0750% 30 3 m. 60 gr 1 053 333

Betacyfluthrin Responsar SC- 50 (5%)

0.0625 % 25 > 3 m 100 ml 400 000

Bendiocarb Ficam PM- 80 200 3 m 50 gr.Fenthrin Talstar PM- 10 0.125 % 50 3 m 120 gr. 45 833 Cyfluthrin Baytroid PM- 10 0.0625 % 25 3 m 50 gr. 400 000

CypermethrinaBarricade, Cymperator, Stockade

PM- 40 1.250 % 500 3 m. 250 gr. 24 240

Deltamethrina K-Othrine PM- 2.5PM- 5,0SC – 50

(5%)

0.0625 % 0.0625 % 0.0625 %

252525

3 m3 m

> 3 m

200 gr. 100 gr 100 ml

3 520 000

Etofenprox Vectron PM- 20 0.500 % 200 3 m 200 gr 42 880Lambdacy-Halothrin

Icon, Karate, Matador,

PM- 10 ME- 10

0.075 % 0.075 % 30 3 m 75 gr. 74 667

Malathion Fyfanon, Cythion,Galgothion

PM- 50 5.000 % 2 000 3 m 800 gr. 42 000

Permethrin Ambush, Imperator,

PM- 10 1.250 % 500 3 m 1 000 gr. 40 000

FUENTE: MOQUILLAZA, 2 000; WHO/WHOPES / 98.8 ( 1998.), CALDERON, 1999.

PM = Polvo Mojable; SC = Suspensión Concentrada o Floable; gr = gramos; ml = mililitrosmg/kg. = miligramos por kilo de peso

1.3.3 TRATAMIENTO ESPACIAL USADO EN EL CONTROL DE MALARIA

a.- Se usará este tratamiento en las localidades con brotes epidémicos de malaria o en situaciones de emergencia por malaria. No se recomienda aplicaciones espaciales como rutina.

b.- Para las aplicaciones espaciales se utilizarán las máquinas portátiles a ultrabajo volumen de preferencia para el intradomicilio y las termonebulizadoras portátiles se

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desempeñan muy bien para las áreas peridomiciliarias y bosque circundante de las viviendas.

c.- Los insecticidas recomendados para este tipo de aplicación espacial contra los mosquitos del género Anopheles, son los piretroides y/o fosforados en su formulación de Concentrados emulsionables en aplicación por termonebulización o ULV con aplicación de una emulsión final de 0.1 a 0.2% y corresponden a los mismos productos insecticidas utilizados para el control de otros mosquitos como el Aedes y que se indica aquí.

d.- Las máquinas pesadas montadas sobre vehículos para aplicación espacial como London Aire, tienen un rendimiento diario de 1,800 casas, con una descarga de 208 ml/min (Piretroides), depositando 499 ml por hectárea al trabajar el vehículo a la velocidad de 10 Km / Hora. Estas máquinas se recomiendan para áreas urbanas y en las calles no accesibles a este tipo de máquina se debe usar las portátiles y/o motomochila.

e.- La aplicación de los tratamientos espaciales contra el vector de malaria debe ejecutarse de preferencia de 17:00 a 22:00 horas de la noche, coincidiendo con la mayor actividad hematofágica e invasividad domiciliaria de los Anofelinos vectores, debiendo aplicarse una primera serie de 4 a 5 aplicaciones cada 3 días y una segunda serie de por lo menos tres a cuatro ciclos de mayor intervalo (una vez por semana) en cuanto dure el brote, con la finalidad de impactar sobre la población Anofelina vectora.

INSECTICIDAS UTILIZADOS PARA EL CONTROL DE ANOPHELES MEDIANTE APLICACIONES ESPACIALES EN AEROSOLES FRIOS Y TERMONEBULIZACIÓN CON MÁQUINAS PESADAS O PORTÁTILES

TIPO TRATAMIENTO NOMBRE INSECTICIDA

FORMULACIÓN Y CONCENTRACIÓN

% CONCENTRACIÓN FINAL EMULSIÓN

DOSIS MILILITROS

POR HECTÁREAQUÍMICO COMERCIAL TIPO %

ESPACIAL EN FRIO

ULV

DELTAMETRINA K-OTHRINE EC-25 2,5 0,2 0,5 A 1,0LAMBDACYHALOTHRIN ICON EC-2,5 2,5 0,2 1,0CYFLUTHRIN SOLFAC ULV-15 1,5 0,25 1,25CYPERMETHRINA STOCKADE EC- 25 0,25 1,25PERMETHRIN AMBUSH EC- 25 1,0 5,0ALFACYPERMETHRIN RENEGADE EC- 2,5 0,25 1,25ETOFENPROX VECTRON EC- 20 2,0 10,0

ESPACIALTERMONEBU-

LIZACIÓN

ETOFENPROX VECTRON EC- 20 2,0 10,0LAMBDACYHALOTHRIN ICON EC-2,5 2,5 0,2 1.0PERMETHRIN AMBUSH EC- 25 0,4 10,0CYFLUTHRIN SOLFAC ULV-15 1,5 0,4 2,0MALATHION GT CYTHIÓN SOL 98 4,0 150-200FENITROTHION-L- 50 SUMITHION EC- 50 3,0 150-200FENITROTHION- L-40 SUMITHION EC- 40 3,0 150-200PIRIMIFOS METILO-50 ACTELLIC EC- 50 2,0 150-200

FUENTE: WHO, 1984; MOQUILLAZA, 2000

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1.3.4 USO DE MOSQUITEROS IMPREGNADOS y/o REIMPREGNADOS

La introducción del uso de los mosquiteros como una medida complementaria para protección personal y reducir el contacto entre el hombre y el vector, está basado en el conocimiento de la transmisión domiciliaria de la malaria. En diversas áreas de varios países la comunidad ha venido usando el mosquitero para protegerse de la picada de los mosquitos, de tal manera que su uso ha sido difundido a otras áreas con éxito aquí y en otros países. Diferentes materiales han sido usados para la fabricación de mosquiteros. Actualmente mosquiteros preparados con fibra de sintética de polypropylene multifilamentoso, han tenido buena acogida. La selección para programas de control debe tener en consideración factores relevantes como el mesh, que corresponde al número de huequitos por pulgada cuadrada que debe estar en 156 (12 por 13 huecos) que ha sido considerado el estándar para mosquiteros; denier, que es la consistencia de la fibra que puede tener hasta tres opciones pero la que más se usa es el de denier 100.Los mosquiteros con mesh 156 y denier 100 son los que providencian mayor durabilidad al lavado y uso. El mosquitero más usado es el rectangular y en segundo lugar los cónicos. Los tamaños de mosquiteros estandarizados son:

TAMAÑO COMERCIAL DE LOS MOSQUITEROS RECTANGULARES

TAMAÑO ANCHO LONGITUD ALTURASIMPLE 70 180 150

DOBLE 100 180 150

FAMILIAR 130 180 150EXTRAFAMILIAR 190 180 150

FUENTE: WHO/CTD/MAL/AFRO/ 97.4

Estos mosquiteros cuando vienen impregnados de fábrica con insecticidas tienen una residualidad de cerca de un año después de la fecha de impregnación y de uso, y un promedio de tres lavadas; reimpregnaciones efectuadas en campo proporcionan una residualidad de 4 meses.

Para que el uso de mosquiteros tenga un mayor impacto como medida complementaria en la interrupción de la malaria, se recomienda su distribución en cobertura integral que cubra un mosquitero por cama; en las áreas donde no se usa cama y se duerme sobre el piso de madera se recomienda los mosquiteros extrafamiliares, y para aquellas áreas donde las casas no tienen paredes debe distribuirse los mosquiteros de color.

Los insecticidas modernos recomendados para la impregnación de mosquiteros, son los que se indican según la tabla propuesta por OMS en la Guía sobre el uso de mosquiteros tratados con insecticidas, 1997.

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INSECTICIDAS QUE PUEDEN SER UTILIZADOS PARAIMPREGNACIÓN DE MOSQUITEROS

INSECTICIDA FORMULACIÓN DOSISmg/ m2

Toxicidad OralDL 50 mg / kg.

peso corporal- ia.DELTAMETHRIN SC 15 – 25 135

ALFACYPERMETHRIN SC 20 – 40 79

BIFENTHRIN SC 25 55

LAMBDACYHALOTHRIN CS 10 – 20 56

CYFLUTHRIN EW 30 – 50 250

PERMETHRIN EC 200 – 500 500

ETOFENPROX EC 200 > 10 000

FUENTE: WHO/CTD/MAL/AFRO/ 97.4

SC = Suspensión Concentrada o Floable; EW = Macroemulsión o Emulsión en aceite y aguaCS = Microencapsulado o Suspensión en Cápsula; EC = Concentrado EmulsionablePueden existir otras formulaciones que pueden emplearse para impregnación de mosquiteros.

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SISTEMATIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS PARA EL CONTROL DE VECTORES

2.- CONTROL DE LOS VECTORES DEL DENGUE


El control del Aedes agypti se efectúa a través de intervenciones de ordenamiento ambiental en el intra y peridomicilio, tratamiento focal de depósitos con agua y el uso de adulticidas en las áreas de los diferentes escenarios epidemiológicos.

2.2 AMBITO:

Las medidas de intervención para el control del Dengue se aplicaran en las áreas de los escenarios II y III donde se efectuaran las siguientes estrategias:

2.3 ESTRATEGIAS:

Para garantizar las actividades de control vectorial del Dengue se efectuaran las siguientes acciones:

2.3.1 CONTROL EN EL ESCENARIO I

Las medidas de control es la eliminación y destrucción de depósitos o recipientes inservibles con una frecuencia semestral.

La medida de control es la eliminación y destrucción de depósitos inservibles con una frecuencia trimestral.

2.3.2 CONTROL EN EL ESCENARIO II Y III

A.- TRATAMIENTO FOCAL:

a.- El tratamiento focal se realizará al 100% de las localidades que se encuentran en los escenarios II Y III como lo indica el manual de normas y procedimientos del programa.

b.- Los ciclos de aplicación se harán trimestralmente mientras los índices y presencia de casos lo amerite.

c.- Larvicida: El larvicida de elección es el Temephos en su formulación granulada al 1%.

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d.- Consumo de larvicida por vivienda: Se estima 60 gramos por vivienda con fines de programación.

e.- Dosis: La cantidad de larvicida por deposito estará en función del volumen del recipiente, teniendo como referencia la aplicación de 20gr (1 cucharada) del larvicida por 200 litros, según tabla de dosificación preconizada por OMS y asumida por el programa; mientras en el ámbito local no se ofrezca el producto en bolsitas de 1, 5, 10 y 20 gr en bolsitas de papel tipo filtrante, deberá utilizarse el sistema de "minas" que consiste en disponer de 20 gr de Temephos, en bolsitas de tocuyo, organza o polyseda, las cuales no deben presentar el contenido muy ajustado.

B.- ELIMINACIÓN DE INSERVIBLES:

Durante la aplicación del tratamiento focal se procede a la eliminación de los recipientes que no son de utilidad para la comunidad debiendo ser enterrados, incinerados, huequeados o guardados bajo techo, esta actividad será también efectuada mediante la difusión sanitaria en las campañas masivas de recojo de inservibles con la participación de la comunidad organizada y los organismos públicos y privados.

C.- TRATAMIENTO ESPACIAL:

c,1.- Se efectuará en las localidades con casos y en las localidades con Infestación Aédica cuyo Índice sea mayor de 5%, tomando en cuenta la estratificación de la localidad

c,2.- En áreas con brote epidémico o situaciones de emergencia por brote de Dengue y/o Dengue Hemorrágico, deberá aplicarse una primera serie de 4 a 5 aplicaciones cada 3 días, y una segunda serie con ciclos de mayor duración (una semana) en cuanto dure el brote, con la finalidad de mantener la reducción de la población Aédica. No se recomienda aplicaciones espaciales como rutina en las áreas endémicas ni de alta infestación del vector, siendo el tratamiento focal y la eliminación de inservibles la estrategia de elección.

c,3.- Las máquinas pesadas montadas sobre vehículos para aplicación espacial como London Aire, tienen un rendimiento diario de 1,800 casas, con una descarga de 208 ml/min (Piretroides) y depositando 499 ml por hectárea al trabajar a la velocidad del vehículo de 10 Km / Hora. La concentración final del insecticida técnicamente bien aplicado se estima entre 0.1 a 0.2 %. Estas máquinas se recomiendan para áreas urbanas y en las calles no accesibles a este tipo de maquina se deben usar las de motomochila.

c,4.- Este tipo de tratamiento espacial se usa también para el control de vectores de malaria en emergencias por P. falciparum, pero nunca como medida de rutina. Se recomienda que para reducir las poblaciones del vector del dengue se deben aplicar 4 a 5 ciclos cada tres días, seguido de tres aplicaciones de frecuencia semanal como se esquematiza a continuación.

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D.- HORARIO y CICLOS DE APLICACIÓN DEL TRATAMIENTO ESPACIAL

La aplicación de los tratamientos espaciales contra el vector del dengue pueden hacerse durante todas las horas del día pero se recomienda el horario de 06:00 a 10:00 de la mañana y 17:00 a 22:00 horas de la noche para evitar la influencia de las altas temperaturas en la evaporación de la gota, especialmente cuando se trabaja con agua como solvente para el control de vectores del dengue

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TRATAMIENTOSEN CADA TRATAMIENTO ELNIVEL DE INFESTACION AEDICACAE TEORICAMENTE LA MITAD(ADULTOS)

1era Sem 2da Sem 3ra Sem 4ta Sem

ESQUEMA PARA LOS TRATAMIENTOS ESPACIALES ULV ADULTICIDAS CONTRA EL AEDES AEGYPTI ENSITUACIONES DE EMERGENCIA RECOMENDADO POR LA OMS.

APLICACIÓN INICIAL DE TRATAMIENTOSCONSECUTIVOS EN CICLOS MUY CORTOS,REPETIDOS CADA 2 O 3 DIAS, DURANTE 10 DIAS.

CONTINUACIÓN DE LOSTRATAMIENTOS EN CICLOS DE MAYORDURACIÓN (1 Ó 2 POR SEMANA) PARAMANTENER LA REDUCCIÓN AEDICA

E.- PREPARACIÓN DE SOLUCIONES PARA TRATAMIENTO ESPACIAL

Para conocer la cantidad o volumen a usar de un determinado producto a una concentración inicial conocida y concentración final deseada con relación al volumen o cantidad que deseamos preparar se dispone de las siguientes fórmulas:

FORMULAS PARA CALCULAR VOLUMEN O CANTIDAD INICIAL DEL PRODUCTO INSECTICIDA Y OBTENER LA CONCENTRACIÓN FINAL DE LA EMULSIÓN A PREPARAR.

Dependiendo de si deseamos saber el volumen inicial o final, o la concentración inicial o final, se despeja la incógnita que queremos saber.

-1.-

CE = Cantidad en litros de concentrado emulsionable a utilizarT o VD = Total de litros de emulsión a preparar o volumen deseadoCI = % de Concentración Inicial del producto CECF = % de Concentración Final que deseamos obtener la emulsión.

Ejemplo: Dispongo de 2 litros de Piretroide CE 25 y deseo preparar 6 litros de emulsión al 0.2 %. Reemplazo los valores en la fórmula y obtengo:

Es decir que debe tomar 0.48 litros de Piretroide CE 25 y preparar la emulsión completando con 5,520 litros de solvente para tener el volumen total de 6 litros que deseo preparar.

-2.-

Ci = Concentración inicialCf = Concentración finalVi = Volumen inicialVf = Volumen final

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T o VD x % CF CE = ----------------------

% CI

6 lts x 0.2 %CE = ------------------------- = 0.48 litros = 480 ml 2,5 %

Ci x Vi = Cf x Vf

Aplicando los datos del ejemplo anterior, remplazamos por los valores y obtenemos:

0.2 % x 6 litros Vi = ----------------------- = 0.48 Litros = 480 mililitros 2,5 %

Es decir que se debe tomar 0.48 litros de Piretroide CE 25 y preparar la emulsión completando con 5,52 litros de solvente para tener el volumen total de 6 litros que deseamos preparar.

F.- TABLA NEMOTÉCNICA PARA LA PREPARACIÓN DE EMULSIONES APARTIR DE UN PRODUCTO COMERCIAL AL 2,5 %

F.- TABLA NEMOTÉCNICA PARA LA PREPARACIÓN DE EMULSIONES A PARTIR DE UN PRODUCTO COMERCIAL CE 2,5 %

* SE DA TAMBIEN EL EQUIVALENTE DE LITROS A MILILITROS PARA FACILITAR PREPARAR LA EMULSIÓN.

FUENTE: WHO,1984; MOQUILLAZA, J., 2000

33

2.5 % x Vi = 0.2 % x 6 litros

%

CONCENTRACION

INICIAL PRODUCTO COMERCIA

L

% CONCENTR

ACION FINAL

DESEADA PARA

APLICACIÓN

CANTIDAD VOLUMEN PREPARAR EN LITROS

CANTIDAD A USAR DE INSECTICIDA Y SOLVENTE

LITROS MILILITROS

INSECTICIDA

SOLVENTE

INSECTICIDA

SOLVENTE

CE 25=

25 gr / Litro =

2, 5 %

0,1 ( 40 ml

insecticida por cada litro a preparar)

4 0,16 3.84 160 3 8406 0,24 5.76 240 5 760

10 0,40 9.60 400 9 60012 0,48 11.52 480 11 52020 0,80 19.20 800 19 20040 1,60 38.40 1 600 38 400

0,2 %( 80 ml


4 0,32 3.68 320 3 6806 0,48 5.52 480 5 520

10 0,80 9.20 800 9 20012 0,96 11.04 960 11 04020 1,60 18.40 1 600 18 40040 3,20 36.80 3 200 36 800

0,3 ( 120 ml


4 0,48 3.52 480 3 5206 0,72 5,28 720 5 280

10 1,20 8.80 1 200 8 80012 1,44 10.56 1 440 10 56020 2,40 17.60 2 400 17 60040 4,80 35,20 4 800 35 200

H.- MAQUINARIAS USADAS PARA LA APLICACIÓN ESPACIAL:

H-1.- MÁQUINAS PESADAS MONTADAS SOBRE UN VEHÍCULO

Este tipo de equipo es muy necesario especialmente por su alto rendimiento diario, ya que una de estas máquinas puede producir un rendimiento de 1800 casas día ( 84 manzanas por día), lo cual es altamente significativo en la atención de un brote o emergencia por casos de Dengue.

La descarga de esta máquina es de 208 ml de la emulsión preparada por minuto en el caso de piretroides y un total de 499 ml por hectárea a la velocidad de 10 Km por hora del vehículo transportador. La descarga promedio por casa de concentrado emulsionable es de 2 ml.

El sistema de descarga de la máquina pesada ULV lanza el chorro 8 metros hacia arriba, en ángulo de 45 grados y hacia la derecha, dirigiendo el chorro hacia las casas. Las concentraciones insecticidas se preparan de la misma manera que las portátiles y se utilizan tablas nemotécnicas como las antes señaladas para facilitar su preparación. Este tipo de máquinas existen también para aplicación de neblinas calientes o termonebulizadores.

H-2.- MAQUINAS PORTATILES-MOTOMOCHILA:

Este equipo de máquinas pueden ser para aplicaciones en frío (ULV) y en caliente (termonebulización).

El consumo Concentrado emulsionable por vivienda es de 3 ml y la descarga de la motomochila es de 70 ml / minuto de la emulsión, que corresponde al promedio usado por vivienda; la emulsión se aplica a la concentración final de 0.2%, la aplicación ULV con esta máquina se efectúa habitación por habitación y se aplica durante 3 segundos por cada habitación, levantando el sistema de descarga a 45 grados sobre la horizontal entre el techo y la pared, es decir con la boquilla dirigida hacia arriba y cuando se usa las termonebulizadoras la aplicación se hace desde la puerta de la calle, debiendo aplicar 5 segundos por cada habitación previamente contabilizadas, con la boquilla dirigida horizontalmente hacia el suelo. En ambos casos se aplica primero en los corrales.

I.- SOLVENTES PARA LOS CONCENTRADOS EMULSIONABLES

Para los concentrados emulsionables de los diferentes insecticidas se recomiendan los aceites vegetales o diesel. Los concentrados emulsionables aceptan agua como solvente, pero en los tratamientos al aire libre no debe usarse agua, pues las gotas de aerosoles por ser muy pequeñas dejan evaporar el agua con mucha rapidez y las gotas del insecticida por ser muy pequeñas no consiguen bajar de la altura a la que fue lanzado el chorro.

34

J.- TRATAMIENTO PERIFOCAL:

j,1.- Este es un método eficaz basado en que el vector es esencialmente domestico y reposa alrededor de los focos generadores y a menos de 1 metro de altura. Durante la aplicación de este tratamiento los depósitos tratados deben ser tapados para evitar contacto con el agua.

j,2.- Este tratamiento se efectúa en las superficies de los depósitos cercanas al recipiente cubriendo la superficie externa de los depósitos y en las paredes alrededor de un metro de donde esta ubicado el depósito, aproximada hasta un metro del nivel del suelo, utilizando insecticidas formulados en polvo mojable y aplicados con la bomba Hudson.

j,3.- Este tratamiento se utilizara en situaciones de emergencia de Dengue, como complemento de las otras medidas de intervención.

j,4.- El insecticida de elección para este tipo de tratamiento son los piretroides en uso en el mercado nacional, recomendados por la OMS y adoptados por el MINSA.

35

F-1 TABLA NEMOTÉCNICA PARA LA PREPARACIÓN DE EMULSIONES A PARTIR DE UN PRODUCTO

COMERCIAL 1,5 %

% CONCENTRACION

INICIALPRODUCTO

COMER-CIAL

% CONCENTRA

CION FINALDESEADA

PARAAPLICA-

CION

CANTIDAD O

VOLUMEN A

PREPARAREN LITROS

CANTIDAD A USAR DE INSECTICIDA Y SOLVENTE

EN LITROS MILILITROS

INSECTICIDA

*

SOLVENTE INSECTI-CIDA *

SOLVENTE

CE –15 =

15 gr / Litro =

1, 5 %

0,1 %( 67 ml


4 0,268 3,732 268 3 7326 0,402 5,598 402 5 59810 0,670 9,330 670 9 33012 0,804 11,196 804 11 19620 1, 340 18,660 1 340 18 66040 2,680 37,320 2 680 37 320

0,2 %( 134 ml


4 0,536 3, 464 536 3 4646 0,804 5 ,196 804 5 19610 1,340 8, 660 1 340 8 66012 1,608 10, 392 1 608 10 39220 2,680 17, 32 2 680 17 32040 5,360 34, 64 5 360 34 640

0,3 %( 200 ml


4 0,80 3, 20 800 3 2006 1,20 4,80 1 200 4 80010 2,00 8,00 2 000 8 00012 2,40 9,60 2 400 9 60020 4,00 16,00 4 000 16 00040 8,00 32,00 8 000 32 000

* SE DA TAMBIEN EL EQUIVALENTE DE LITROS A MILILITROS PARA FACILITAR PREPARAR LA EMULSIÓN.

36

MÉTODOS

E

INSECTICIDAS USADOS

PARA

CONTROL VECTORIAL

37

INFORMACIÓN RESUMIDA SOBRE LOS MÉTODOS DE CONTROL DEL AEDES AEGYPTI

TIPO DE TRATAMIENTO

INSECTICIDA Y FORMULACIÓN

EQUIPO P/ APLICACIÓN

TASA DEDESCARGA

CANTIDAD APLICADA

DURACIÓNDE CICLOS

APLICACIÓN EN:

TÉCNICA DE APLICACIÓN COMENTARIOS

FOCAL CON LARVICIDAS

-Temephos -Methoprene -BTI

Cucharas o medida calibrada --

- 1 ppm -0.1 ppm - 1 ppm

-60 a 90 d. -90 -120 d.-5 a 30 d.

Recipientes conagua, reales opotenciales.

A todo recipiente que no fue destruido

Está aparecien- do resistencia al Temephos

PERIFOCAL RESIDUAL

Piretroides uOrganofosforado En suspensión

Bombas apresión manual

757 ml/ minuto

Piretroides:25 mg/m² . Fos: 2gr/m²

3 meses

3 meses

En el exterior,e interior de

criaderos

A todo recipiente que no pudo ser destruido

Eficaz pero lento.

NEBULIZACIÓNTÉRMICA C/ E- QUIPO PESADO

Organofosforado o piretroides en diesel (gasoil)

Nebulizadoras térmicas pesadas

2 lt / min.a 8

km/hora

219 a 438 ml/ha de i.a. 3 a 5 días

Desde el nivelde la calle alas viviendas

Dirigir el chorro horizontalmente o hacia el suelo

Se emplea menos. Consumo excesivo de solventes

NEBULIZACIÓNTÉRMICA, EQUI PO PORTATIL

Organofosforado o piretroides en diesel (gasoil)

Termonebuliza- doras portátiles

250

ml / min.

70 ml / casa

semanal

Patio posterior.Interior desde

el exterior

Chorro horizon-tal, tratar el in te-rior desde exter .

Hay peligro de incendio. Consumo excesivo solventes

ULV CON EQUIPO PESADO NIVEL SUELO

Piretroides en Solución a bajo % Fosforados 30 %

Generadorespesados i stala

dos en vehículo

Piretroides :208 ml/min.Fosforados: 127 ml/min.

Piretroides: 499 ml/haFosforados: 304.8 ml/ha

3 a 5 días

Desde el nivelde la calle paraque penetre ala vivienda.

Rodear manzanas de casas. Lanzar chorro 45° hacia arriba

Aplicar sólo en emergencias en ciclos

cortos. Mata50% de los adultos

ESPACIAL ULVINTRADOMICI-LIARIO C/. EQU PO PORTÁTIL

Emulsiones de Piretroides o de Rganofosforados emulsionables

-Máquinas portá tiles ULV. -Motomochila neblinas frías

40 ml/min

70 a 100 ml/ minuto

-35 ml / casa

-70 ml casa semanal

Áreas libres einterior, habit.-por habitación.

Dirigir chorro 45° hacia arriba, 3 seg. por habit.

Calibrar descarga motomochila. No usar fosforados ° Técnico

TRATAMIENTO AÉREO POR AVIONES

Soluciones de piretroides. Fosfor. al 30%

Avión pequeño con boquillas Micronair

6 lt / minuto -Piretroides.

En soluc.-Fosfor 30%

3 a 5 días -Vuelos a 30 my 60 m. de

altura

-Fajas de 50 m y 100 m de ancho

Restringido. Sólo se usa cuando no hay equipo pesado

FUENTE: MOQUILLAZA, 2001; WHO-WHOPES ,1998; SCHOFIELD, 1994.

38

INSECTICIDAS UTILIZADOS PARA EL CONTROL DEL AEDES AEGYPTI MEDIANTE APLICACIONES ESPACIALES EN AEROSOLES FRIOS Y TERMONEBULIZACIÓN CON MÁQUINAS PESADAS O PORTÁTILES

TIPO TRATAMIENTO NOMBRE INSECTICIDA

FORMULACIÓN Y CONCENTRACIÓN

% CONCENTRACIÓN FINAL EMULSIÓN

DOSIS MILILITROS

POR HECTÁREAQUÍMICO COMERCIAL TIPO %

ESPACIAL EN FRIO

ULV

DELTAMETRINA K-OTHRINE EC-25 2,5 0,2 0,5 A 1,0

LAMBDACYHALOTHRIN ICON EC-2,5 2,5 0,2 1,0

CYFLUTHRIN SOLFAC ULV-15 1,5 0,25 1,25

CYPERMETHRINA STOCKADE EC- 0,25 1,25

PERMETHRIN AMBUSH EC- 1,0 5,0

ALFACYPERMETHRIN RENEGADE EC- 0,25 1,25

ETOFENPROX VECTRON EC- 2,0 10,0

ESPACIALTERMONEBU-

LIZACIÓN

ETOFENPROX VECTRON EC- 2,0 10,0

LAMBDACYHALOTHRIN ICON EC-2,5 0,2 1.0

PERMETHRIN AMBUSH EC- 0,4 10,0

CYFLUTHRIN SOLFAC ULV-15 0,4 2,0

MALATHION GT CYTHIÓN EC- 4,0

FENITROTHION-L- 50 SUMITHION EC- 3,0

FENITROTHION- L-40 SUMITHION EC- 3,0

PIRIMIFOS METILO-50 ACTELLIC EC- 2,0

FUENTE: WHO, 1984; MOQUILLAZA, 2000

39


3.- CONTROL DE LOS VECTORES DE CHAGAS:


Eliminación del Triatoma infestans en la Región Macro Sur, del Panstrongylus .herreri en la Región Nor Oriental y en otras áreas con especies de reciente domiciliación.

3.2 AMBITO:

En la Región Macro Sur que comprende los departamentos de Tacna, Moquegua, Arequipa, Ica, Huancavelica, Ayacucho y Apurimac, en la Región Nor Oriental del Perú Provincia de Jaén y Cutervo (Cajamarca), Bagua (Amazonas) y en los distritos afectados del Departamento de San Martín y otros departamentos con notificación focal con diferentes especies Triatominicas de reciente domiciliación. Como P. rufotuberculatus en Occobamba (Echarate -Cusco), R. ecuadoriensis en la Quebrada de Carmot (Valle Chicama-La Libertad), R. pictipes en la Quebrada de Huallobamba (Juanjui- San Martin) y P. chinai en Trust (Chepen -Jequetepeque).

3.3 ESTRATEGIAS:

El control de los Triatominos vectores de Chagas es altamente vulnerable a las medidas de intervención basado en su domesticidad, todos sus estadios son sensibles a los insecticidas modernos y tienen lenta reproducción; se han ensayado casi todas las clases de insecticidas contra los Triatominos (Clorados, fosforados, carbamatos y piretroides).

En la actualidad los piretroides más eficaces están siendo aplicados para el control de los vectores de la enfermedad de Chagas, según Schofield, 1,994 y 2,001 menciona los piretroides: Deltametrina, Ciflutrina y Lambda Cyhalotrina y OPS-OMS en una Asesoria externa de evaluación del Programa Nacional de Chagas en el Perú efectuada del 18 al 24 de Junio del 2,000, por expertos de diferentes países del cono sur, recomienda el uso de cuatro piretroides señalando además de los antes citados a Cypermethrina. Ensayos Nacionales efectuados en Ica y Arequipa con Betacifluthrina, Ciflutrina, Lambdacyhalotrina y Deltamethrina SC y PM demostraron residualidad mayor de 3 meses. Las dosis de ingrediente activo por m2 recomendadas se detallan a continuación:

40

a.- Todas las localidades de este escenario con infestación y con presencia de casos, detectada por encuestas al 100% de las viviendas del distrito serán vigiladas y se aplicará el tratamiento con insecticida al 100% de estas viviendas en intra y peridomiciliario.

b.- Las siguientes aplicaciones del insecticida se harán trimestral ó semestralmente dependiendo del producto aplicado, durante dos ciclos consecutivos al 100% de las casas que resultaron positivas.

c.- Las viviendas que resulten positivas a la encuesta semestral de vigilancia o por notificación de la población serán inmediatamente tratadas con insecticidas.

d.- En las localidades de este escenario donde la infestación Triatominica es del 10%, solamente se aplicará el insecticida de elección, en las viviendas positivas mediante rociamiento residual intra y peridomiciliario.

e.- En las localidades de este escenario con infestación mayor del 10% detectada por encuestas al 100% de las viviendas del distrito se aplicará el tratamiento con insecticida al 100% de estas viviendas intra y peridomiciliario.

INFORMACION TECNICA DE LOS PIRETROIDES MÁS EFICACES QUE PUEDEN SER UTILIZADOS PARA EL CONTROL DE VECTORES DE LA

ENFERMEDAD DE CHAGAS

PRODUCTO FORMULACIÓNCONCENTRA-

CION INICIAL(%)DOSIS

(mg / m2)PESO DE LA

CARGA (Para 8 lts)

CIFLUTRINA- PM POLVO MOJABLE

10.0 50 100 gr

BETACIFLUTRINA-SC-50

FLOABLE SUSP. CONC.

5.0 50 200 ml

CIPERMETRINA –PM POLVO MOJABLE

20.0 125 50 gr

DELTAMETRINAPM y SC-50

POLVO MOJABLE

2.55,0

2525

100 gr 50 gr

FLOABLE SUSP. CONC. 5.0 50 200 ml

LAMBDACIALOTRINAPM

POLVO MOJABLE 10.0 30 60 gr

FUENTE: OPS-ASESORIA EXTERNA JUN 2000 pag 16OTRAS FUENTES: SCHOFIELD 1,994 pag 53, CALDERON 1,999 Y MONTALVAN 1,993

41

f.- Al día siguiente de la aplicación del insecticida se procederá a visitar las viviendas con la finalidad de recolectar los Triatominos caídos o muertos por el producto, para el levantamiento real del Índice de Infestación Domiciliaria por Triatominos y el Índice Tripano-Triatomínico. Para continuar con las siguientes aplicaciones, las cuales se realizarán en el 100% de las viviendas que resultaron positivas.

g.- Todas las casas que resulten positivas serán marcadas con el signo más (+) con pintura en un lugar visible, para su identificación y tratamiento posterior. En el croquis de la localidad serán marcadas las viviendas que resultaron positivas,

h.- Las siguientes aplicaciones del insecticida se harán trimestral ó semestralmente dependiendo del producto aplicado, durante cuatro ciclos consecutivos al 100% de las casas que resultaron positivas.

i.- Las Técnicas de aplicación para el control de los vectores de Chagas es del uso de insecticidas de acción residual, utilizando la bomba Hudson-X- Pert, c de boquilla con disco dispersor T-8002,

j.- El producto será aplicado en el intra y peridomicilio, cubriendo primero las grietas y luego el rociado en fajas verticales siguiendo el procedimiento clásico de aplicación del control de la Malaria y Chagas. El rociamiento para el control de los vectores de Chagas incluye en el peridomicilio: las pircas, corrales, refugios de animales y otros.

k.- Para los fines de la eliminación del vector las coberturas de localidades infestadas demandarán el 100% de viviendas tratadas.

l.- La operación de control para la eliminación del vector más importante de Chagas consiste en:

Un ciclo de aplicación al 100% de localidades y viviendas de los escenarios II y III .

Dos ciclos de aplicación con frecuencia trimestral o semestral (según la

residualidad del producto utilizado), efectuados solamente a las casas positivas.

Posteriormente a los dos ciclos selectivos de casas positivas, se procederá al rociamiento residual inmediato de casas positivas detectadas por encuesta o notificación, previa verificación de la vivienda.

m.- El consumo promedio de insecticida formulado por vivienda es de 2.5 cargas por casa

n.- Se estima un rendimiento promedio de 5 casas hombre/ día para el tratamiento del intra y peridomicilio aplicando en grietas y rociado en fajas verticales.

42


4.- CONTROL DE VECTORES DE BARTONELOSISy LEISHMANIOSIS:

4.1 OBJETIVO:

Reducir las poblaciones de Lutzomyias, para disminuir el contacto hombre vector a fin de evitar la transmisión de ambas enfermedades.

4.2 AMBITO:

Las medidas de control se realizarán en el escenario III en los distritos que presenten casos y tengan vectores.

4.3 ESTRATEGIAS:

a.- Para el control de Lutzomyias se utilizará las aplicaciones con insecticida residual en el intra y peri domicilio y espacial en cuevas, huecos de árboles, pircas y otros hábitat silvestres, alrededor de las viviendas.

b.- Los insecticidas de elección para el tratamiento residual son los piretroides utilizados en el control de vectores de Malaria, empleando la misma dosis, equipo y técnica de aplicación.

c.- Para las aplicaciones espaciales se utilizarán las máquinas portátiles de preferencia termonebulizadoras, usando insecticidas en su formulación de concentrado emulsionable, con aplicación final a 0.1 a 0.2%.

d.- Para la preparación de estas diluciones se tendrá en cuenta las tablas nemotécnicas utilizadas para el control del Dengue, indicadas anteriormente.

e.- El tratamiento residual será de gran utilidad especialmente en las localidades con transmisión de la vertiente Occidental y Valles interandinos f.- Los ciclos de aplicación de los insecticidas residuales estarán en función de la residualidad del producto usado y de la estacionalidad de las poblaciones vectores.(Cada tres a seis meses)

g.- Las aplicaciones espaciales se realizaran en los meses de mayor abundancia para reducir las poblaciones en los hábitat silvestres alrededor de las viviendas.

43

h.- En las áreas selváticas los lugares de reposo del vector es en ecotopos (hábitat) silvestres, por lo tanto la medida de control de intervención contra el vector es la desmatización, es decir la tala del bosque 100 metros alrededor de las viviendas.

i.- Otra medida adicional en estas áreas seria la del uso de ropas manga larga e impregnadas con piretroides y/o el uso personal de repelentes de uso en el mercado local, especialmente dirigido para personal de actividades extractivas, caza, pesca y exploración.

44

III - SISTEMATIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS

COSTOS

III-1: CONSOLIDADO DE COSTOS PARA LA VIGILANCIA VECTORIAL

III-2: CONSOLIDADO DE COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL

1.-VIGILANCIA Y CONTROL VECTORIAL DE MALARIA

1.1 COSTOS PARA VIGILANCIA VECTORIAL DE MALARIA.

1.2 COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DE MALARIA

2.-VIGILANCIA Y CONTROL VECTORIAL DE DENGUE

2.3 COSTOS PARA LA VIGILANCIA VECTORIAL DEL DENGUE

2.3 COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DEL DENGUE

3.- VIGILANCIA Y CONTROL VECTORIAL DE CHAGAS

3.1 COSTOS PARA VIGILANCIA VECTORIAL DE CHAGAS.

3.2 COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DE CHAGAS

4.-VIGILANCIA Y CONTROL VECTORIAL DE LEISHMANIOSIS Y VERRUGA PERUANA.

4.1 COSTOS PARA LA VIGILANCIA VECTORIAL DE LEISHMANIOSIS Y VERRUGA PERUANA

4.2 COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DE LEISHMANIOSIS Y VERRUGA PERUANA

45

III. SISTEMATIZACIÓN DE PROCEDIMIENTOS

III-1: CONSOLIDADO DE COSTOS PARA LA VIGILANCIA VECTORIAL

46


III-2: CONSOLIDADO DE COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL

47


1.1.- COSTOS PARA LA VIGILANCIA VECTORIAL DE MALARIA

48


1.2.- COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DE MALARIA

49


2.1.- COSTOS PARA VIGILANCIA VECTORIAL DEL DENGUE

50


2.2.- COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DEL DENGUE

51


3.1 COSTOS PARA VIGILANCIA VECTORIAL DE CHAGAS

ACCIONESCRITERIOS PARA EL UNIDAD

DEMEDIDA

COSTOSOLES

OBSERVACIONESCALCULO COSTOSUNIDAD COSTO

SOLES

ENCUESTA TRIATOMINICA

RENDIMI-ENTO X DIA

HBE / DIAVIVIENDA

INSPECCIO-NADA

7,20

16-CASAS HOMBRE DIAJORNAL DIA s/. 20BOLSAS,GUANTES, CRAYOLAS,FICHAS, VESTUARIO

JORNAL DIA VIVIENDA

1,30

INSUMOS 3,70

IDENTIFICACIÓN TAXONOMICA

RENDIMI-ENTO X DIA

HBE / DIA MUESTRADIAGNOSTI

CADA 1,00

24 MUESTRAS DE VIVIENDAS EXAMINADASSALARIO x DIA TÉCNICOS/. 20,00; INSUMOS VARIOS PARA IDENTIFICACION.

JORNAL DIA VIVIENDA

0,83

INSUMOS 0,17

BIOENSAYOSUSCEPTIBI

LIDAD NINFAS V

VIATICO ENTOMOL.

HBE / DIA410,00

PRUEBA COMPLETA

SUSCEPTIBILID 566,30

5 DIASx s/,82 = s/ 410

PAPEL IMPREG OTROS INSUM

75,00 1,30

SET 8 PAPELES OMS=s/ 121 (5 POR PRUEBA)

JORNAL TEC COLECTOR

80,00 4 TECN x s/ 20 POR 1 DIA

BIOENSAYOS

CONNINFAS V

YADULTOS

EFECTIVI-DAD

VIATICO ENT 574,00PRUEBA

EFECTIVIDADAPLICACIÓN

RESIDUAL

885,50

S/,82 POR 7 DIAS=s/ 574COSTO CASAROCIADA

151,50 CASAS PRUEBA: 20COSTO ROCIAMIENTO:POR CASA : s/. 50,50 x 3 v4 TECN Xs/.20 dia X 2 d

JORNAL TECN ENTOM

160,00

RESIDUA-LIDAD

VIATICO ENT 574,00PRUEBA DE

RESIDUALIDADINSECTICIDA

885,50S/,82 POR 7 DIAS=s/ 574

COSTO CASAROCIADA

151,50 CASAS PRUEBA: 20 COSTO ROCIAMIENTO:POR CASA : s/. 50,50 x 3 v4 TECN Xs/.20 dia X 2 d:

JORNAL TECN ENTOM

160,00

52


3.2 COSTOS PARA EL CONTROL VECTORIAL DE CHAGAS

ACCIONES

CRITERIOS PARA EL CALCULO

DE COSTOS

UNIDADDE

MEDIDA

COSTOSOLES

OBSERVACIONESUNIDAD COSTO

VIVIENDATRATADA

CONINSECTICIDA

50,50TRATAMIENTORESIDUAL

RENDIMIENTO HBE / DIA5 CASAS HOMBRE / DIA

JORNAL CASA ROCIADA

4,00Jornal diario S/ 20,00

INSECTICIDA POR CASA

41,672,5 CARGAS x CASA = costo S/, 41,67 insectic x casa

OTROS INSU-MOS x CASA

4,83OTROS: pintura, fichas, etc

53

4.1.- COSTOS PARA LA VIGILANCIA DE LEISHMANIOSIS Y VERRUGA PERUANA

54

4.2. COSTOS PARA EL CONTROL DE LEISHMANIOSIS YVERRUGA PERUANA

55

RELACIÓN DE PARTICIPANTES ASISTENTES A LA REUNIÓN SOBRE SISTEMATIZACIÓN DE LOS PROCEDIMIENTOS PARA LA VIGILANCIA,

CONTROL Y COSTOS OPERACIONALES DE LAS ENFERMEDADES METAXÉNICAS, LIMA 13 AL 18 DE MAYO DEL 2002.

NOMBRES Y APELLIDOS

PROCEDENCIA FUNCIÓN

JUAN M. URETA TAPIA MINSA- LIMA DIRECTOR DE RIESGOS Y DAÑOS

LUIS M. LEÓN GARCÍA MINSA- LIMA DIRECTOR DEL PCETV

JENI HERRERA H. MINSA- LIMA ENFERMERA DE RIESGOS Y DAÑOS

JORGE VALLE TOLEDO MINSA- LIMA ENTOMÓLOGO NACIONAL DEL PCETV

EDUARDO VERGARA W. DISA LAMBAYEQUE MEDICO COORDINADOR PCET

LELY MERCADO C. DISA LAMBAYEQUE BIÓLOGO PCETV

SALVADOR VILLEGAS T. DISA SULLANA ENTOMÓLOGO DISA

LUIS SÁNCHEZ DAVILA DISA Ucayali BIÓLOGO RESPONSABLE DEL PCETV

OSCAR A. VALDIVIA DISA AREQUIPA ENCARGADO DE ENTOMOLOGIA DISA

GUILLERMO CALDERÓN F. OPS - LIMA BIÓLOGO ENTOMÓLOGO AT- PUNTUAL

56

REFERENCIAS

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MINSA

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INS

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2001. Circular sobre Técnicas para Aplicación de Deltametrina. DGSP N° 1602/04/01

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