plagas cuarentenarias final frutales

Plagas cuarentenarias de frutales de la República Argentina

Coordinadores:Mirta N. RossiniDelia M. DummelJuan P. Agostini

Avances en los resultados

mä~Ö~ë=`ì~êÉåíÉå~êá~ë=ÇÉ=cêìí~äÉë=ÇÉ=ä~=oÉé∫ÄäáÅ~=^êÖÉåíáå~^î~åÅÉë=Éå=äçë=êÉëìäí~Ççë 1

Plagas Cuarentenariasde Frutales de la

República ArgentinaAvances en los resultados

Coordinadores:Mirta N. Rossini, Juan P. Agostini y Delia M. Dummel

fåëíáíìíç=k~Åáçå~ä=ÇÉ=qÉÅåçäçÖ∞~=^ÖêçéÉÅì~êá~

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Plagas Cuarentenarias de Frutales de laRepública Argentina

mìÄäáÅ~Çç=ÉåInstituto Nacional de Tecnología AgropecuariaCentro Regional Patagonia NorteEstación Experimental Agropecuaria Alto ValleRuta Nac. OO, km NNVM, Allen, Río Negro, Argentina.ÅÅ=TUO=EUPPOF General Roca, Río Negro, Argentina.Tel. HRQJOVUJQQPVMMMwww.inta.gob.ar/altovalle

1a Edición, RMM ejemplares.«OMNRI=Ediciones áåí~. áëÄå=VTUJVUTJRONJSOTJP

`ççêÇáå~ÇçêÉëMirta N. Rossini* - [email protected] P. Agostini** - [email protected] M. Dummel** - [email protected]*áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle**áåí~=J=ÉÉ~ Montecarlo

bÇáÅáμå=C=aáëÉ¥çSección Comunicaciones de la ÉÉ~ Alto Valle del áåí~K

cçíçÖê~Ñ∞~ëInstituto Nacional de Tecnología AgropecuariaK

Todos los derechos reservados. No se permite la reproducción total o par-cial, la distribución o transformación de esta publicación, en ningunaforma o medio, ni el ejercicio de otras facultades sin el permiso previo yescrito del editor. Su infracción está penada por las leyes vigentes.


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Índice General

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8

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17

19

31

45

57

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Agradecimientos

Prólogo

Introducción

Autores

fåëÉÅíçë=Åì~êÉåíÉå~êáçë=éêÉëÉåíÉë=Éå=^êÖÉåíáå~

Å~é∞íìäç=NW=îáÇLobesia botrana Den. et Schiff. (polilla europea del racimo)

Å~é∞íìäç=OW=~ê•åÇ~åçë=ó=Å∞íêáÅçëAnastrepha fraterculus (Wied.) y Ceratitis capitata (Wied.) (moscas de la fruta)

Å~é∞íìäç=PW=Å∞íêáÅçëAleurocanthus woglumi Ashby (mosca negra)

Å~é∞íìäç=QW=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~Pseudococcus viburni Signoret (cochinilla harinosa) Cydia pomonella (L.) (gusano de la pera y la manzana o carpocapsa)


m~íμÖÉåçë=Åì~êÉåíÉå~êáçë=éêÉëÉåíÉë=Éå=^êÖÉåíáå~

Å~é∞íìäç=RW=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòçPlum pox virus (sharka) Monilinia fructicola (Winter) Honey (podredumbre morena)Xylella fastidiosa Wells et al. (escaldadura de las hojas del ciruelo)

Å~é∞íìäç=SW=Å∞íêáÅçëGuignardia citricarpa (Kiely) (mancha negra de los cítricos)Xanthomonas axonopodis pv. citri (Hasse) Vaut (cancrosis de los cítricos)Huanglongbing (ÜäÄ) ex greening

m~íμÖÉåçë=Åì~êÉåíÉå~êáçë=åç=éêÉëÉåíÉë=Éå=^êÖÉåíáå~

Å~é∞íìäç=TW=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al. (tizón de fuego o fuego bacteriano)

Å~é∞íìäç=UW=Ä~å~åçMycosphaerella fijiensis Morelet (sigatoka negra)

Å~é∞íìäç=VW=îáÇFitoplasmas

ÑçíçÖê~Ñ∞~ë

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139

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A Luis Acuña, Marcela González, Maria Eu-genia Herrera, Graciela Mendoza, y JuanManuel Raigón por las Fotos utilizadas en elcapítulo referido a plagas en la vid.

A Susana López, Javier Orzuza y MirtaMedvescic del Área Cartográfica DirecciónNacional de Protección Vegetal-ëÉå~ë~, porsu valiosa colaboración en el desarrollo deltrabajo relacionado al modelo de la probabi-lidad de incidencia de Diaphorina citri en lasáreas citrícolas del país.

Los técnicos de áåí~=ÉÉ~ Alto Valle quedesarrollaron el trabajo sobre Pseudoccocus vi-burni agradecen a los que hicieron posible elmismo a: Guillermo Rossi, Ricardo Sánchez,Eduardo Pagella, Alba Briano e Ignacio Du-moise (ëÉå~ë~), Ricardo Ajo Usle (ÅçéÉñÉì),Cristina Willink (ÅçåáÅÉí), Penny Gullan ySteven Gaimari (ÉÉìì), Juan Manuel Vane-gas-Rico (México), Renato Ripa (Chile), Da-niel Aquino (La Plata), Gustavo Batisttoni,Susana Uno, Roxana Riquelme y Karina La-vezini (Expofrut), Jose Ginnobili (Dole),Clarisa Alonso (Moño Azul), Pedro Otonne(Primera Cooperativa), Fernando Somoza yAgustín Cabana (Kleppe ë~).

Agradecimientos


Prólogo

Mucha de la información técnica científicaaquí recopilada es un aporte esencial paralas actividades que desarrollamos en la Direc-ción Nacional de Protección Vegetal de ëÉJå~ë~.

Por un lado, los programas fitosanitariosde control de plagas que llevamos adelante,necesitan para la toma de decisiones, de la in-formación científica referida a la plaga en sí ysu relación con los hospedantes y el ambiente,como también de la tecnología disponiblepara el control de la plaga a través de la in-corporación de herramientas eficaces endicho control y a la vez que tengan en cuentael cuidado del ambiente.

Por otro lado, para el mantenimiento delos mercados compradores de nuestras frutas,como así también en la apertura de nuevosdestinos importadores resulta fundamental, almomento de la negociación de las medidas fi-tosanitarias a ser implementadas, contar conun fuerte aval técnico-científico para compar-tirlo con la Organización Nacional de Pro-tección Fitosanitaria de la contraparte.

En este contexto, es clave para el ëÉå~ë~el trabajo conjunto y complementario que re-alizamos con áåí~, ambos organismos depen-

dientes del ã~Öyé, concerniente a las plagasde mayor relevancia para la fruticultura ar-gentina y por eso es que apoyamos este va-lioso documento que tiende a difundir losresultados de los proyectos en ejecución denuestra organización hermana. Asi es queaprovecho este espacio para felicitar a todoslos autores de estos trabajos, ya que su desta-cada labor aporta un importante valor agre-gado a la cadena productiva frutícola deArgentina.

Diego QuirogaDirector Nacional Sanidad VegetalëÉå~ë~

La producción argentina de frutas sufrió ungran impulso a partir del año OMMO partici-pando en aproximadamente el NRB del Pro-ducto Bruto Agrícola Nacional. En NVVU lasexportaciones no superaban las USQKPMM tnmientras que en la actualidad las mismas au-mentaron a casi el doble de dicho valor(NKROUKMRP tn) con una produccion que su-pera los T millones de toneladas. La vastedadde nuestro territorio, con su diversidad declimas, permite cultivar todo tipo de frutassiendo las principales: uva con P millones; cí-tricos: OIT millones; frutas de pepita: NIR mi-llones; carozos: QMMKMMM aproximadamente;olivo: QRKMMM; perteneciendo el resto de laproduccion a los cultivos tropicales (palto,banana, mango), frutos secos y frutas finas(arándano y cereza). Otro punto de gran im-portancia es la gran cantidad de mano deobra capacitada requerida para las laboresculturales y la cosecha (PRMKMMM personal per-manente), sin tener en cuenta aquella emple-ada en los procesos de valor agregado(empaque, vino, jugos, aceite, etc.), trans-porte y logística de la producción. Además, laparticipación de aproximadamente OMKMMMproductores siendo en muchas provincias

estos cultivos los que sostienen las economíasregionales.

El sector frutícola argentino es una pro-ducción plurianual o perenne que debeafrontar situaciones económicas y culturalesmuy distintas de los cultivos anuales presen-tando una historia, logística, infraestructura,experiencia comercial, mercados establecidosque se deben aprovechar e incluso aumentarsu eficiencia. En la presente situación socioe-conómica mundial la sanidad, inocuidad y ca-lidad seguirán siendo los pilares que mejorposicionarán a la producción argentina endicho contexto.

La adopción de tecnología evaluada me-diante procesos de experimentación adapta-tiva, así como los desarrollos tecnológicoslocales abriran una ventana de oportunidaden cuanto a la comercialización a fin de hacera la producción frutícola argentina mas com-petitiva frente a las presiones impuestas lascuales incluyen a barreras fitosanitarias parala comercialización. Esto obliga a poseer unpreciso conocimiento de las exigencias oficia-les de los países compradores en cuanto aplagas y enfermedades cuarentenarias (identi-ficación, biología, etiología, epidemiología,

Introducción


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métodos de diagnóstico y predicción, manejosanitario), registro y tolerancias de plaguici-das en frutos y/o sus procesos. Por otra parteexisten a su vez las denominadas exigenciascomerciales que son impuestas por las gran-des cadenas de supermercado y que comun-mente son muy superiores a las oficiales decada país.

El áåí~ posee una “masa crítica” en eltema sanitario con un gran número de profe-sionales de experiencia, capaz de liderar cam-bios tecnológicos que provoquen beneficiosimportantes para el sector frutícola dentro deun marco de sostenibilidad económica, social,y ambiental de los agroecosistemas. El áåí~ através de su cartera de Proyectos desde el añoOMMS hasta la actualidad ha fomentado la par-ticipación de investigadores, extensionistastanto de la Institución como desde otras or-ganizaciones oficiales o privadas en ProyectosIntegrados que contemplan determinadas te-máticas. Dentro del Programa Nacional Fru-tales (éåÑêì) se ha implementado unProyecto integrado sobre la caracterizaciónde plagas que afectan a los diversos frutalesque se producen a lo largo y a lo ancho delpaís, para establecer protocolos de monitoreo

a campo, y de diagnósticos de laboratorio quese elaboran en forma conjunta con técnicosde ëÉå~ë~ y de esa manera complementar losprocesos de fiscalización con el de generaciónde tecnología que involucran a no menos de16 Estaciones Experimentales y sus respecti-vas Agencias de Extensión como asi a las di-ferentes regionales que posee ëÉå~ë~ a nivelnacional.

El objetivo del presente libro es comuni-car y difundir los avances de los resultadoslogrados en el conocimiento de la epidemio-logía, biología y manejo de diversas plagascuarentenarias que afectan a la producciónfrutícola con el fin de obtener frutos de altacalidad, sanidad e inocuidad. Estos saberesserán aprovechados por el sector productivoy darán sustento técnico cientifíco en las ne-gociaciones para el comercio internacional defrutas por parte de las autoridades correspon-dientes.

Liliana CichónCoordinadora Proyecto Integrado – Programa Nacional Frutalesáåí~


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^ÖçëíáåáI=gì~å=mÉÇêçK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Ciencias Agrarias de Corrien-tes, de la Universidad Nacional del Nordeste (ìååÉ). Ph.D., Universidad de Florida, ÉÉìì. Investi-gador en el área Frutales en áåí~ - ÉÉ~ Montecarlo, Misiones. Profesor de Protección Forestal de laFacultad de Ciencias Forestales de la Universidad Nacional de Misiones, Eldorado, Misiones.

^åÖìá~åçI=läÖ~K Profesora de Química. Magister en Ciencias Químicas orientación Química Biológica.Trabaja en el Instituto de Investigación y Desarrollo de la Patagonia Norte (áÇÉé~) (ÅçåáÅÉí=Ó=ìåÅo)Dpto. de Química, Facultad de Ingeniería, Universidad Nacional del Comahue, Neuquén. ProfesoraAdjunta Regular en el área Química-Física, orientación Química General e Inorgánica.

^êêçóçI=iìáë=bK Ingeniero Agrónomo. Fitotecnista. Investigador en áåí~ - ÉÉ~ Montecarlo, Misiones,entre NVUM y NVVM; áåí~ - ÉÉ~ San Pedro, Bs. As., desde NVVM, en las secciones Fruticultura y Virolo-gía frutal. Profesor de la Catedra de Fruticultura de la Universidad Nacional de Buenos Aires en elperíodo NVVRJOMMN.

_ÉÅÉêê~I=sáçäÉí~K Ingeniera Agrónoma y MSc., egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Uni-versidad Nacional de Cuyo. Responsable Centro de Estudios de Fitofarmacia áåí~ - ÉÉ~ Mendoza,Mendoza. Especialista en Manejo Integrado de Plagas y Residuos de Pesticidas. Docente de lasMaestrías Viticultura y Enología y Horticultura de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universi-dad Nacional de Cuyo.

_çííçI=bÇì~êÇçK Doctor en Ciencias Biológicas, egresado de la Facultad de Ciencias Exactas, Físicas yNaturales (ÑÅÉÑyå) de la Universidad Nacional de Buenos Aires. MSc. Entomology. Universidad deCalifornia, Riverside. ÉÉìì. Especialidad: Control Biológico y Manejo Integrado de Plagas Agrícolasy Forestales. áåí~ - Instituto de Microbiología y Zoología Agrícola (áãyò~) del Centro de Investiga-ción en Ciencias Veterinarias y Agronómicas (ÅáÅîy~), Castelar, Insectario de investigaciones enLucha Biológica, desde NVTM. Coordinador del Área Manejo Integrado Plagas del áãyò~ del áåí~desde OMNO. Coordinador del Proyecto Especifico Manejo Integrado de Plagas Forestales del Pro-grama Nacional Forestales desde OMMS hasta OMNP. Facilitador del Proyecto Especifico ProtecciónForestal desde mayo de OMNP.

_çìîÉíI=gì~å=mÉÇêç=oK Biólogo egresado de la Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales de laUniversidad Nacional de Córdoba y MSc. en Protección Vegetal de la Facultad de Ciencias Agrariasy Forestales de la Universidad Nacional de La Plata. Desarrolla sus actividades en la Sección Ento-mología de áåí~=J=ÉÉ~ Concordia, Entre Ríos, desde el año OMMO. Trabaja en manejo integrado deplagas en los cultivos de cítricos, eucalipto y otros frutales como el arándano. Su trabajo se basa prin-cipalmente en el estudio de la biología de las plagas y el control que ejercen sus enemigos naturales.

`~åíÉêçëI=_ä~åÅ~=fK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de Corrientes(ÑÅ~), de la Universidad Nacional del Nordeste (ìååÉ) en NVTT. Ph.D., Universidad de Florida,ÉÉìì, NVVM. Profesional Investigador referente de áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vista, Corrientes. Fitopatología.Especialista en enfermedades cuarentenarias en citrus, especialmente cancrosis de los citrus y otrasenfermedades bacterianas y fúngicas. Profesora de postgrado en la ÑÅ~JìååÉ. Directora de tesinas,tesis de maestrías y de doctorado de diversas universidades. Coordinadora de proyectos áåí~ yãáåÅyí. Participante en proyectos nacionales y regionales.

`~òÉå~îÉI=dê~ÅáÉä~=oK Técnica en planta permanente en el área de Agro meteorología (base de datos).Instituto de Clima y Agua. Centro de Investigaciones en Recursos Naturales de áåí~.

Autores


`áÅÜμåI=iáäá~å~K Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de la UniversidadNacional del Sur y Doctora en Ciencias Biológicas de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Uni-versidad de Buenos Aires. Jefe del Área de Sanidad Vegetal de áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro y fa-cilitadora del Integrador “Desarrollo de estrategias de intervención sistémicas que aseguren sanidad,inocuidad, competitividad y sustentabilidad de la producción frutícola argentina” perteneciente alPrograma Nacional Frutales. Sus investigaciones se centran en el uso de semioquímicos y otras he-rramientas para el monitoreo y manejo sustentable de plagas de frutales de pepita.

`çåÅáI=iìáë=oK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universi-dad Nacional de Córdoba, NVUP. Doctor en Biología en la Facultad de Ciencias Exactas, Físicas yNaturales de la Universidad Nacional de Córdoba, NVVT. Investigador en el área de Micología y Bac-teriología del Instituto de Patología Vegetal del Centro de Investigaciones Agropecuarias del áåí~,Córdoba, en enfermedades causadas por fitoplasmas. Profesor Titular en la Facultad de CienciasAgropecuarias de la Universidad Católica de Córdoba.

`çåíáI=eìÖç=^åÖÉäK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Agronomía de la UniversidadNacional de Buenos Aires. Investigador de áåí~ - Instituto de Clima y Agua del Centro de Investiga-ciones en Recursos Naturales, Castelar.

`çêíÉëÉI=m~ÄäçK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacio-nal de Buenos Aires. MSc. en Protección Vegetal de la Universidad Nacional de la Plata. Actual-mente es Director de Vigilancia Fitosanitaria en el Servicio Nacional de Sanidad y CalidadAgroalimentaria (ëÉå~ë~).

a~Ö~ííáI=`~êä~=sK Profesora y Licenciada en Biología, egresada de la Universidad del Aconcagua. Ac-tualmente se encuentra cursando la Maestría en Entomología en el Instituto Superior de Entomolo-gía dependiente de la Facultad de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Tucumán,Argentina. Investigadora participante de proyectos. Desde el año OMMV es Subresponsable del Labo-ratorio de Nematodos y desde OMNP. Responsable del Laboratorio de Plagas, pertenecientes al Cen-tro de Estudios de Fitofarmacia en áåí~=Ó=ÉÉ~ Mendoza, Mendoza.

a~ä=wçííçI=^åÖ¨äáÅ~=ÇÉä=s~ääÉK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agropecua-rias de la Universidad Nacional de Córdoba, NVUS. Doctora en Ciencias Agropecuarias de la Facul-tad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Nacional de Córdoba, OMMU. Investigadora de áåí~,del área de virología del Instituto de Patología Vegetal del Centro de Investigaciones Agropecuarias,Córdoba, en virosis de frutales.

aìããÉäI=aÉäá~=jK Ingeniera Forestal, egresada de la Facultad de Ciencias Forestales de la UniversidadNacional de Misiones, OMMQ. MSc. en Producción Vegetal de la Facultad de Ciencias Agrarias de laUniversidad Nacional del Nordeste, OMNO. Trabaja en áåí~=J=ÉÉ~ Montecarlo, Misiones, en el áreaFrutales y participa de proyectos nacionales y provinciales en el área cítricos y cultivos industriales.

cÉêå•åÇÉòI=a~êáçK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universi-dad Nacional del Comahue. MSc. en Entomología, en el Departamento de Entomología, Universi-dad del Estado de Washington, Estados Unidos. Obtuvo su Diploma de Estudios Avanzados (ÇÉ~),en la Universidad de Lleida, España, doctorándose en la misma casa de estudios. Investigador deláåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro.

cäçêÉëI=`ÉÑÉêáåç=oK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universi-dad Nacional de Jujuy con mención de honor al mejor promedio, OMMP. MSc. en Ciencias Agrarias,Área Producción Vegetal, Ciclo OMMRLOMMT, Unidad integrada Universidad Nacional de Mar delPlata - áåí~ Balcarce. Tesis de maestría: “Supresión de la pudrición radicular del palto en un suelo deJujuy”. En la actualidad se desempeña como responsable del Laboratorio de Fitopatología de áåí~=JÉÉÅí de Yuto, Jujuy.

d~êê•åI=pÉêÖáç=jK Ingeniero Agrónomo, orientación Fitotecnia, egresado de la Facultad de Agronomíade la Universidad Nacional de Buenos Aires, NVTS. MSc. en Fitopatología, Universidad de Florida,ÉÉìì, NVUV. Investigador en áåí~=J=ÉÉ~ Concordia, Entre Ríos, desde NVTU. Trabaja en cancrosis yenfermedades fúngicas de pre y poscosecha del cultivo cítrico, desde NVVM hasta la fecha. A cargo dela sección Agro meteorología de áåí~=J=ÉÉ~ Concordia.

Autores


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d~êêáÇçI=páäîáå~K Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de la UniversidadNacional del Comahue. Magister en Entomología de la Universidad Nacional de Tucumán. Se des-empeña como investigadora en el Área de Sanidad Vegetal de áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro. Esfacilitadora del “modulo pepita, frutos secos y carozo” del Proyecto NNMRMTQ del Programa Nacionalfrutales. Sus principales líneas de investigación se basan en el manejo de plagas con enfoque agroeco-lógico.

dá~óÉííçI=^äÉà~åÇêç=iK Biólogo, egresado de la Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales de laUniversidad Nacional de Córdoba (ÑÅÉÑyåJìåÅ), NVVO. Dr. en Ciencias Biológicas de (ÑÅÉÑyåJìåÅ),OMMR. Docente (àíé) de la Catedra de Parasitología NVVPJNVVU, ÑÅÉÑyåJìåÅ. Docente (àíé). Catedrade Microbiología y Parasitología de la Facultad de Medicina de la Universidad Nacional del Coma-hue, NVVVJOMMQ. Profesor Titular Catedra de Biologia de la Facultad de Medicina- de la UniversidadNacional del Comahue, OMMRJOMMT. Profesional Investigador áåí~=Ó=ÉÉ~ Alto Valle en el área Sani-dad Vegetal- Fitopatología, OMMRJOMNN.

dçãÉò=q~äèìÉåÅ~I=pÉÄ~ëíá•åK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Ciencias Agrarias de laUniversidad Nacional de Cuyo, en el año OMMM y Doctorado por la Facultad de Ciencias Exactas dela Universidad Nacional de La Plata, en el año OMNO. Investigador en virología vegetal y selecciónclonal y sanitaria de vid en áåí~=Ó=ÉÉ~ Mendoza desde el año OMMQ.

dçåò•äÉòI=j~êÅÉä~=c~Äá~å~K Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de laUniversidad Nacional de Cuyo. Magister en Entomología de la Universidad Nacional de Tucumán.Actualmente se encuentra cursando el Doctorado en Ciencias Naturales en la Universidad de LaPlata. Trabaja en áåí~ desde OMMQ. Desde el OMMR al OMNP se desempeñó como Responsable del La-boratorio de Plagas Cuarentenarias de la ÉÉ~ Mendoza, Mendoza. Se integró a áåí~ en el OMMU comoInvestigadora Participante de proyectos en tareas vinculadas a insectos y manejo integrado de plagas.Desde abril de OMNP desarrolla sus actividades en áåí~ - Instituto de Microbiología y Zoología Agrí-cola (áãyò~), Castelar.

e®ÄÉêäÉI=qçã•ë=gK Técnico Agrónomo del Departamento Frutales de áåí~=J=ÉÉ~ Montecarlo, Misiones,Jefe a cargo del Campo Anexo Laharrague, con participación de la red de ensayos de cítricos, conénfasis en la aplicación de agroquímicos y ajuste de técnicas para un mejor uso del recurso agua y delos insumos utilizados por unidad de superficie.

e~ÉäíÉêã~ååI=o~èìÉäK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de laUniversidad Nacional de Córdoba. Doctora en Ciencias Agropecuarias de la Universidad Nacionalde Córdoba. Se desempeñó como Profesional Superior del ÅçåáÅÉí y desde OMMV es Investigadoradel áåí~, área Micología y Bacteriología del Instituto de Patología Vegetal (áé~îÉJ=Åá~é), Córdoba.Desarrolla trabajos de investigación en enfermedades cuarentenarias de cítricos, y en NR bacteriasfastidiosas limitadas al xilema (Xylella fastidiosa y Leifsonia xyli subps xyli).

eÉáíI=dìáääÉêãç=bK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Agronomía de la UniversidadNacional de Buenos Aires. Magister en Control de Plagas y su Impacto Ambiental de la UniversidadNacional de San Martín. Docente e Investigador de las Cátedras de Zoología Agrícola y ProtecciónVegetal de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacional de Buenos Aires. Inspector en con-trol de gestión, Dirección de Vigilancia y Monitoreo, ëÉå~ë~.

eÉêå•åÇÉòI=`~êãÉåK Licenciada en Ciencias Biológicas egresada de la Facultad de Ciencias Exactas yNaturales de la Universidad Nacional de Buenos Aires (ÑÅÉåJìÄ~). Becaria de especialización delInstituto de Microbiología y Zoología Agrícola (áãyò~) del áåí~. Tema: “Control Biológico de Pla-gas en Frutales” en el período OMMRJOMNN. Doctorando en Ciencias Biologicas de la ÑÅÉåJìÄ~. Inves-tigadora del áåí~ – Instituto de Microbiología y Zoología Agrícola (áãyò~) del Centro deInvestigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas (ÅáÅîy~), Castelar, desde OMNN a la fecha. Par-ticipante de proyectos de investigación del áåí~ y extra-áåí~ en temas relacionados al control bioló-gico en frutales de pepita y al manejo integrado en cultivos forestales, OMMRJOMNP.

eÉêêÉê~I=j~ê∞~=bK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de la UniversidadNacional de Cuyo, OMMM. Actualmente se encuentra cursando la Maestría en Protección Vegetal de laFacultad de Ciencias Agrarias y Forestales de la Universidad Nacional de La Plata. Se desempeñacomo investigadora participante de proyectos en áåí~=J=ÉÉ~ Mendoza, Mendoza. Desde el año OMMPes Responsable del Laboratorio de Nematodos y desde OMMS Subresponsable del Laboratorio de Pla-gas. Ambos funcionan en el Centro de Estudios de Fitofarmacia de áåí~=J=ÉÉ~ Mendoza.


hçêåçïëâáI=j~êÅÉä~=sK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Agronomía de la Universidadde El Salvador Virasoro, Corrientes, OMMR. Investigadora del áåí~=J=ÉÉ~ Montecarlo, Misiones, De-partamento Frutales. Participa en Proyectos Nacionales y Regionales en frutales cítricos y tropicales.

i~ÖçI=gçå~í•åK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Ciencias Agrarias de la UniversidadNacional del Comahue. Es investigador de áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro, área de sanidad vegetal,siendo sus principales líneas de investigación el Manejo Integrado de Plagas de frutales de pepita.

j~êáåáI=aá~å~=_É~íêáòK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Agronomía de la UniversidadNacional del Sur. MSc. in Plant Pathology, ìÅ Davis, California, ÉÉìì, NVVTJNVVV. Ph.D. in Plantand Environmental Sciencies, Clemson University, South Carolina, ÉÉìì, OMMQJOMMT. Especialistaen Fitopatología y Virología en frutales de carozo. Investigador de áåí~=Ó=ÉÉ~ Junín, Mendoza, desdeNVVP. Responsable por áåí~ del primer sistema de certificación sanitaria en frutales de carozo delpaís.

j~êí∞åÉòI=j~äîáå~=fêÉåÉK Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de laUniversidad de Concepción del Uruguay. Magister en Producción vegetal de la Facultad de Agrono-mía de la Universidad Nacional de Buenos Aires. Investigadora de áåí~ - Instituto de Clima y Aguadel Centro de Investigaciones en Recursos Naturales, Castelar.

jÉåÇçò~I=dê~ÅáÉä~K=Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universi-dad Nacional de Cuyo. Investigadora de áåí~=J=ÉÉ~ Mendoza, Mendoza. Responsable del Sistema deGestión de Calidad del Centro de Estudios de Fitofarmacia, colaboradora en la redacción del Ma-nual de Tratamientos Fitosanitarios para cultivos de clima templado bajo riego.

jÉååáI=j~ê∞~=cÉêå~åÇ~K Licenciada en Economía, se especializó en Estadística aplicada MSc. actual-mente trabaja en el áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro, en el Área de Estadística. Participa de las líneasde investigación vinculadas a la modelización de las poblaciones de plagas, entre otras. Docente en laUniversidad Nacional de Río Negro (ìåêå) en las asignaturas de Estadística y Matemática á.

jÉëëáå~I=jáÖìÉä=žåÖÉäK Licenciado en Ciencias Naturales y Doctor en Ciencias Naturales, egresadode la Universidad Nacional de La Plata. Especialidad Microbiología. Investigador de áåí~=J=ÉÉ~Concordia, Entre Ríos, desde NVST hasta OMNN, área Protección Vegetal de Citrus. Actividades: Estu-dio cancrosis cítrica en Argentina. Los biotipos actuantes a través de la inmunoquímica; microscopiaelectrónica. Control biológico y técnicas de prevención en el campo. Incorporación y asesoramientoen la agricultura ecológica u orgánica para los citrus en las provincias de Corrientes y Entre Ríos.Jefe del equipo Proyecto ÄáÇJéêçÇ~çJáåí~.

jáíáÇáÉêáI=j~êáÉä=pK Ingeniera Agrónoma, Doctora en Ciencias Agropecuarias Mención: ProducciónVegetal, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Córdoba. A cargo del laboratoriode fitopatología de áåí~=J=ÉÉ~ San Pedro, Bs. As. Desarrolla investigación sobre manejo integrado depodredumbre morena en duraznero en pre y poscosecha, evaluación de productos químicos de bajoimpacto ambiental, agentes biológicos de control y sustancias alternativas a los fungicidas de síntesis.

jçåí~Öå~I=`êáëíáå~K Licenciada en Ciencias Biológicas, egresada de la Facultad de Ciencias ExactasFísico Químicas y Naturales de la Universidad Nacional de Río Cuarto. Master en Entomología dela Universidad de California, Riverside (ÉÉìì). Doctora en Biología, Universidad Nacional del Co-mahue, Centro Regional Bariloche. Profesor Asociado Regular con dedicación exclusiva en las cáte-dras de Toxicología Ambiental y Seminario Plaguicidas y efectos en el ambiente de la Licenciaturaen Saneamiento y Protección Ambiental para el área Ambiente. Director del Proyecto “Determina-ción de mecanismos de resistencia a insecticidas en poblaciones blanco (Cydia pomonella) y no blanco(Simulium spp.) y evaluación de la toxicidad de insecticidas alternativos”.

jçëÅÜáåáI=oáÅ~êÇç=`K Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Agronomía de la UniversidadNacional de Bs. As., NVTV. MSc. en Meteorología Agrícola, Universidad de Reading, Inglaterra.NVVM. Doctor de la Universidad de Buenos Aires en el área de Ciencias de la Atmósfera y los Océa-nos, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales de la Universidad Nacional de Bs. As., OMNN. Investi-gador del áåí~ - Instituto de Clima y Agua (Åáêå), Castelar.

lìíáI=v~åáå~K Ingeniera Agrónoma, egresada de la Universidad de Morón. Actualmente se desempeñaen la Dirección de Vigilancia Fitosanitaria en el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroali-mentaria (ëÉå~ë~).

Autores


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mÉê~äí~I=`~êãÉå=lK Licenciada en Botánica, egresada de la Facultad de Ciencias Exactas, Naturales yAgrimensura de la Universidad Nacional del Nordeste. Especialista en Citricultura, Universidad Po-litécnica de Valencia, España/Centro de Extensión La Granja-ìåíJÉÉ~çÅ Las Talitas, Tucumán. Ma-gister en Entomología Aplicada, OMMV.- Desde OMMQ hasta la fecha trabaja en áåí~=J=ÉÉ~ El Colorado,Formosa. Representante por áåí~ en la Comisión Regional de Sanidad Citrícola (con énfasis enÜäÄ); Referente Regional Chaco-Formosa de frutales; Capacitador de profesionales, técnicos, estu-diantes universitarios y de escuelas técnicas, productores de la región Chaco-Formosa en Frutales cí-tricos, plagas y enfermedades de importancia económica en la región.

mçêÅÉäI=i~ìê~=_K Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Ciencias Agrarias de la UniversidadNacional de Cuyo. Investigadora del áåí~=J=ÉÉ~ Rama Caída. Tema: Virología en frutales de carozo,vid y papa. Participante de Proyectos Regionales y Nacionales. Directora técnica del Laboratorio deProtección Vegetal de la ÉÉ~ Rama Caída, Mendoza, habilitado por áå~ëÉ para la detección de virus ynematodos en papa-semilla. Docente en áÉëîì=VJMNR, Tecnicatura Superior Agronómica, orientaciónAgroecología, dictando “Plagas y Enfermedades, diagnóstico, monitoreo y control”, San Rafael,Mendoza.

mêÉìëëäÉêI=`Éë~êK Licenciado en Genética de la Facultad de Ciencias Exactas Químicas y Naturales dela Universidad Nacional de Misiones, OMMU. Desde el año OMNM hasta la actualidad se desempeñacomo técnico investigador en diagnóstico de ÜäÄ y estudios de Variabilidad en peces por técnicasMoleculares en el Laboratorio de Genética Molecular de áåí~=J=ÉÉ~ Montecarlo, Misiones.

oçëëáåáI=jáêí~K Ingeniera Agrónoma, egresada de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacio-nal de La Plata, NVTT. Doctora en Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Córdoba, OMMT.Docente de la Catedra de Fruticultura de la Facultad de Agronomía de La Plata desde NVTT a NVTV.Ingresó a áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro, en NVTV donde se desempeña como investigadora enetiología, epidemiología y manejo de enfermedades de frutales de hoja caduca. Coordinadora de pro-yectos de áåí~ y extra-áåí~, directora de tesis de grado y posgrado, autora de trabajos científicos ycapítulos de libros. Directora Técnica del Laboratorio de Fitopatología y Nematología de PatagoniaNorte, êåÅÑë número STOOLá.

pÉÖ~ÇÉI=dçåò~äçK Licenciado en Ciencias Biológicas, egresado de la Facultad de Ciencias Exactas y Na-turales de la Universidad Nacional de Bs. As., NVVP. Tesis doctoral en Ciencias Biológicas en prepa-ración (ÑÅÉyå=ìÄ~). Entomólogo áåí~=J=ÉÉ~ San Pedro, Bs. As. Trabaja en temas relacionados amanejo sustentable de insectos perjudiciales en frutales de carozo, citricos, batata y plantas ornamen-tales. Participa en proyectos nacionales y regionales de áåí~ y es facilitador del éåÑêìNNMRMTP “Ge-neración y desarrollo de tecnologías para la detección, seguimiento, predicción, prevención y controlde vectores, plagas emergentes y/o limitantes de la producción frutícola argentina”.

pçäÉ¥çI=gáãÉå~K Profesora en Química, egresada de la Facultad de Ingeniería de la Universidad Nacio-nal del Comahue. Magister en Ciencias Químicas, Orientación Química Biológica, egresada de laUniversidad Nacional del Comahue. Actualmente se desempeña como asistente de docencia con de-dicación exclusiva en el área Química-Física de la Facultad de Ingeniería de la Universidad Nacionaldel Comahue, Neuquén y es integrante del Proyecto “Determinación de mecanismos de resistenciaa insecticidas en poblaciones blanco (Cydia pomonella) y no blanco (Simulium spp.) y evaluación de latoxicidad de insecticidas alternativos”.

qáíçI=j~ê∞~=gçëÉÑáå~K Licenciada y Magister en Ciencias y Matemáticas Aplicadas, egresada de la Uni-versidad Nacional de Entre Ríos. Profesora de Análisis Matemático, Licenciatura en Sistemas de lamisma Universidad desde NVVP. Ha trabajado en diversos proyectos de investigación en cuanto a ela-boración de diseños de experimentos, bases de datos, procesamientos estadísticos de los mismos ytambién como directora de proyectos.

s•òèìÉòI=a~åáÉä=bÇì~êÇçK Ingeniero Agrónomo, egresado de la Facultad de Agronomía de la Univer-sidad Nacional de Bs. As. Doctor-Ingeniero Agrónomo, Universidad Politécnica de Valencia. Inves-tigador de Poscosecha en áåí~=J=ÉÉ~ Concordia, Entre Ríos, desde NVUT. Director de la ÉÉ~Concordia entre OMMP y OMMV. Ha desarrollado actividades en cuanto a condiciones adecuadas delínea de empaque, manejo integrado de enfermedades poscosecha de frutas cítricas frescas y evalua-ción de sustancias amigables con el ambiente.


sÉê~I=iìáë=j~ê∞~K Contador y Magister, egresado de la Facultad Ciencias Económicas de la UniversidadNacional de Buenos Aires. Investigador en áåí~=J=ÉÉ~ Concordia, Entre Ríos, desde OMMP. Temas:Estudio de Economía Agraria, estimación de costos y beneficios de la aplicación de tecnologías, enforestaciones de eucalipto y en plantas cítricas.

sÉê~=j~Å~ó~I=aá~å~=içêÉå~K Ingeniera en Biotecnología Molecular, egresada de la Universidad deChile. Actualmente se desempeña como investigadora en áåí~=Ó=ÉÉ~ Alto Valle, Río Negro, en enfer-medades virales de frutales de pepita en donde enmarca su trabajo de tesis doctoral en la UniversidadNacional de Quilmes. Participa de proyectos de investigación que tienen relación con la detecciónmolecular de Pseudococcus viburni, Monilinia spp. y enfermedades bacterianas.

sáëÅ~êêÉíI=j~êá~å~=jK Doctora en Ciencias Biológicas, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Uni-versidad Nacional de Bs. As. Trabaja en el Insectario de Investigaciones para Lucha Biológica deáåí~ - Instituto de Microbiología y Zoología Agrícola (áãyò~) del Centro de Investigación en Cien-cias Veterinarias y Agronómicas (ÅáÅîy~), Castelar. Participante y Coordinadora de proyectos áåí~ yextra-áåí~ (Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, International Atomic EnergyAgency). Área temática: Manejo Integrado de Plagas (hortalizas y frutales). Auditora Interna áåí~Norma áê~ã=PMNWOMMR=EáëçLáÉÅ=NTMORWOMMRF Requisitos generales para la competencia de los labora-torios de ensayo y de calibración.

Autores


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Insectos cuarentenariospresentes en Argentina


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Lobesia botrana Den et Schiff. (Polilla europea del racimo)

Becerra, V.; Herrera, M. E.; González, M.; Mendoza, G. y C. Dagatti

IntroducciónNombre de la plagaHospedantes Descripción morfológica Ciclo biológico Daños Distribución geográfica en otros paises y en

Argentina Monitoreos y programas cuarentenarios Antecedentes. Aparición en Argentina.

Reglamentaciones Manejo de la plagaControl cultural Control biológico con enemigos naturalesControl con bioinsecticidas Control etológico o semioquímico Control químico Bibliografía

Å~é∞íìäç=N

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Introducción

La polilla europea del racimo, Lobesia botranaDen et Schiff. es un insecto cuarentenariopara Argentina que afecta seriamente la pro-ducción de la vid. Se considera plaga clave delos viñedos de la zona mediterránea de Eu-ropa, donde se encuentra desde NTTS y desdedonde se extendió a viñedos de otros conti-nentes, tales como Asia y África (Torres Vila,OMNM). Sin embargo, no estuvo presente enAmérica hasta el año OMMU, en que fue detec-tada por primera vez en Chile, en OMMV enEstados Unidos y en OMNM en Argentina(González, OMMU; González, OMNM; Varela etal., OMNM). En los distintos países se han ini-ciado planes nacionales para lograr su erradi-cación y así mantener el estatus de plagacuarentenaria.

Su presencia ocasiona daños directos e in-directos. Los primeros están relacionadoscon la disminución de la producción, tantoen cantidad como en calidad, los segundoscon la restricción y hasta el cierre de algunosmercados, regulaciones y exigencias de trata-mientos cuarentenarios para la comercializa-ción de la fruta en fresco. Además, el ataquede este insecto al viñedo exige una mayor in-tervención con insecticidas que podrían ge-nerar posibles rechazos por presencia deresiduos en la fruta o sus productos.

Nombre de la plaga

Fue descrita por primera vez por Denis yShiffermüller en Austria, como Phalaena Tor-trix botrana (Denis & Schiffermuller), enNTTR. Su nombre actual es Lobesia botranaDen et Schiff. Pertenece a: Orden Lepidop-tera, Superfamilia Tortricoidea, Familia Tor-tricidae, Subfamilia Oletreutinae. Sinonimias:Eudemis, Grapholita, Polychrosis, entreotras.

Hospedantes

Su hospedante principal es la vid.

Descripción morfológica

El reconocimiento a campo de todos los esta-dos de desarrollo es de fundamental impor-tancia ya que su identificación temprana enviñedos es crucial para las aplicaciones en elmomento oportuno de control. Por ello, de-bido a la importancia de brindar conocimien-tos a productores y profesionales y con elobjeto de evitar su expansión hacia zonas vití-colas no afectadas en el país, el áåí~=J=ÉÉ~Mendoza ha desarrollado una intensa activi-dad de capacitación (Herrera et al., OMNN; He-rrera et al., OMNO).

Las etapas del ciclo biológico del insectoson huevo, larva, pupa y adulto. Huevo: de forma lenticular, su tamaño es de

MKS por MKT mm. Tiene aspecto traslúcido,con tonalidades amarillentas. En su inte-rior es posible ver el desarrollo del em-brión a medida que avanza su crecimiento(Fotos NI=OI=P).

Larva: cuando recién ha emergido del huevo,mide aproximadamente 1 mm de longi-tud. La cabeza es negra y el cuerpo amari-llo claro. Tiene cinco estadios larvales: äNa äR. A partir del segundo estadio pre-senta la cabeza y el escudo protorácico decolor pardo más claro, el cuerpo con to-nalidades variables: amarillo, verde azuladoy verde, dependiendo de la alimentación.A medida que va pasando de äN a äR au-menta notablemente de tamaño llegandoa medir de NM a NR mm. (Foto Q).

Pupa: el tamaño varía con el sexo, siendo lahembra de RJV mm y el macho de QJT mm.La coloración es variable, habiéndose ob-servado desde verde intenso a café muyoscuro (Foto R).

Adulto: mide NMJNP mm de envergadura alar.Las alas anteriores tienen el aspecto demosaico con manchas marrones oscurasalternado con zonas claras grises, desta-cándose una banda en la zona media.Contrastan con el tinte grisáceo más omenos uniforme de las posteriores queestán provistas de flecos (Foto S).

Å~é∞íìäç=N=J=îáÇ=J Lobesia botrana


Ciclo biológico

Los estudios bioecológicos en la zona vitícolade Mendoza, provincia donde se halla laplaga, son de primordial importancia para elmanejo de este insecto. En este marco se des-arrollaron en el laboratorio de áåí~=J=ÉÉ~Mendoza, dos líneas de estudios biológicos: acampo (González, OMNO) y en laboratorio(Herrera, OMNO). Los resultados obtenidos acampo indican que L. botrana pasa el inviernoen estado de pupa bajo la corteza o ritidomisde la vid, encerrada dentro de un capullo decolor blanco. En primavera, en coincidenciacon la brotación y floración de la vid, co-mienzan a emerger los adultos provenientesdel estado de pasaje invernal. La oviposiciónse realiza posteriormente sobre los primor-dios de inflorescencias, y a medida que éstasse desarrollan la postura es efectuada entodas las partes del racimo, con preferenciasobre el cáliz y la caliptra de la flor. Una vezemergidas las larvas de los huevos, comien-zan su alimentación sobre los tejidos florales,perforando la caliptra y además el androceo ygineceo. Una larva se alimenta de varias flo-res, pasando de una a otra tejiendo sedosida-des que van uniendo los tejidos dañados,formando una especie de nido llamado glo-mérulo. El pasaje a pupa puede suceder en elmismo racimo floral, en hojas, o bajo la cor-teza y luego emerge la segunda generación deadultos desde fines de noviembre hasta prin-

cipios de diciembre. La misma daña granosverdes, mientras que la tercera aparece enenero y afecta granos en maduración hastacosecha. Puede haber una cuarta generación,quedando la plaga en estado de pupa parapasar el invierno bajo la corteza (Fig.NKN). Elestado pupal suele ocurrir también durante latemporada primavero-estival dentro de losgranos, ya sea verdes o en maduración.

En laboratorio se determinaron los pará-metros biológicos de la polilla de la vid, paralo cual se establecieron por un lado Q cohor-tes, cada una formada por OM parejas de adul-tos, registrando la duración de los períodosde preoviposición, oviposición y númerototal de huevos colocados por hembra. Losinsectos se ubicaron en botellas plásticastransparentes como cámaras de reproduccióny fueron alimentados con una solución lí-quida especial. Se determinó en condicionesde temperatura OUœO=⁄`, luminosidad NSWUäLç y PMB de humedad relativa, un períodode preoviposición de un día; el de oviposiciónfue de SIOR=œ=MISOV días y el número total dehuevos/hembra de SMIOOR=œ=SITP huevos. Sedetecta además que el mayor promedio deposturas/hembra se presentó el día tercero ycuarto desde el inicio de la puesta. Por otraparte se obtuvieron los días correspondientesa cada estado. Los mismos se observan enTabla NKN (Dagatti & Herrera, OMNO; Romero& Herrera, OMNO).

Figura 1.1. Capturas de machos de Lobesia botrana en trampa de feromona en un viñedo de Lunlunta,Luján de Cuyo, Mendoza (año OMNNLOMNO).

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17/8/2011

7/9/2011

28/9/2011

19/10/2011

9/11/2011

30/11/2011

21/12/2011

11/1/2011

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22/2/2012

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Nº

de c

aptu

ras

de m

acho

s



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Tabla 1.1. Total de días transcurridos para cada es-tado y estadio de Lobesia botrana en condiciones delaboratorio a OUœO=⁄`, luminosidad NSWU=äLç y PMBde humedad relativa.

Se determinaron también en este trabajo,los porcentajes de mortalidad por estado yestadio. Los datos más elevados se presenta-ron durante huevo y larva N, con valores deTUB y QVB respectivamente; mientras queen los estados de äOI=äPI=äQ fue de MB; RB enäR y OMB en estado pupal. No hubo mortali-dad de adultos una vez emergidos en este es-tudio. Se calculó además la tasa reproductivaneta (êM (lx*mx)); con un valor de QKUN; siendolx=åx/åM, es decir la proporción de la cohorteoriginal (åx=número de individuos observa-dos al inicio de cada estadio) y mx el númerode huevos producidos por cada hembra so-breviviente (Romero & Herrera, OMNO).

Daños

Los perjuicios ocasionados por este insectoson producidos por las larvas al alimentarsede flores y frutos desde cuaje hasta maduración,con la consecuente disminución de rendimien-tos y pérdida de calidad en uvas, sobre todocuando la misma es destinada a consumo enfresco. Los daños indirectos corresponden ala posibilidad de ingreso que ofrecen lasperforaciones y galerías generadas por esteinsecto para los hongos causantes de la po-dredumbre del racimo, originadas principal-mente por Botrytis cinerea y el complejo dehongos de la podredumbre del racimo. Envid no se alimenta de hojas ni de otras partesde la planta (Roerich, NVTU; Lucchi et al.,OMNN; Mendoza, OMNN; Mendoza, OMNO)(Fotos T a NP).

Distribución geográfica en otros países yen Argentina

Su origen es paleártico, posiblemente de Ita-lia. En Europa hubo una dispersión progre-siva desde mediados del siglo ñáñ hastaprincipios del siglo ññ: Austria, Alemania,Rusia, Hungría, Italia, Suiza, Francia, Es-paña, Portugal, Luxemburgo. Se extendiótambién al sur de Rusia, norte de África hastaEgipto, Medio Oriente, Israel, borde orientalde África, principalmente Kenia.

En Argentina ha sido detectada solamenteen la provincia de Mendoza, en los oasisCentro y Norte, en PP distritos de los depar-tamentos de Luján, Maipú, Godoy Cruz,Guaymallén, Junín, San Martín, Rivadavia yLavalle (ëÉå~ë~1, Res.NOOLOMNM). Los mismosse consideran como zona cuarentenada, es-tando obligados a realizar aplicaciones deagroquímicos para disminuir las poblacionesde la plaga y a realizar todas las medidas queëÉå~ë~ considere necesarias para la erradica-ción de la misma. En este momento se hallaen vigencia el Plan Nacional de Prevención yErradicación de Lobesia botrana por Resolu-ción TOVLOMNM (ëÉå~ë~, OMNM).

jçåáíçêÉçë=ó=mêçÖê~ã~ë=`ì~êÉåíÉå~êáçë=

Antecedentes. Aparición en Argentina.Reglamentaciones

La plaga no se hallaba presente en Américahasta OMMU, año que fue declarada en Chile,en OMMV en California, ÉÉìì y en OMNM en Ar-gentina. Los antecedentes en el país comen-zaron en mayo de OMMV, cuando ëÉå~ë~recibe mariposas capturadas en trampas paraL. botrana colocadas en un viñedo de Lujánde Cuyo (Mendoza) en la temporadaOMMULOMMV. Ante la sospecha de presencia deL. botrana, se realizaron preparados de geni-talia masculina para su identificación. Sehalló que no era L. botrana, sino Crosidosemaorfilai (Tortricidae), plaga que no afecta el vi-ñedo y que se halla citada atacando una ma-leza, Malva sp. Sin embargo, a pesar de ello,se declaró estado de alerta fitosanitaria entodo el territorio nacional de la RepúblicaArgentina por Resolución PSOLOMMV.

Estado/Estadio Total días x±sd

Huevo 2.82±0.145

L1 3.11±0.198

L2 2.3±0.194

L3 3±0.353

L4 2.11±0.25

L5 3.08±0.379

Pupa 6.57±0.218

Adulto 8.25±0.629


1- Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria.


En julio de OMMV, ëÉå~ë~ recibió ejemplaresconservados en alcohol de L. botrana prove-nientes de Francia, para ser usados como ma-terial de referencia en identificación. Endiciembre-enero OMNM se comenzó la pros-pección lanzando un plan de vigilancia. Paraello, se colocaron trampas en cuadrículas de-terminadas por ëÉå~ë~ en las provincias deMendoza, San Juan, La Rioja y Río Negro.En febrero de OMNM se detectaron ejemplaresde L. botrana en Cruz de Piedra, Maipú,Mendoza.

Debido a ello aparecieron por ëÉå~ë~, áåî2

e áëÅ~ãÉå3, una serie de resoluciones que es-tablecieron áreas controladas y cuarentenadasy procedimientos fitosanitarios para evitar ladispersión de esta plaga del lugar donde seubicó por primera vez, entre las cuales semencionan a continuación las de mayor im-portancia y pueden ser consultadas en la pá-gina web de ëÉå~ë~ (www.senasa.org.ar):Resolución NOOLNM, Resolución OVNLOMNM,Resolución RMQLOMNM y Resolución TOVLOMNM.

Manejo de la plaga

Para establecer una estrategia de manejo in-tegrado de esta plaga es necesario conocer subioecología a través del año, la presencia deenemigos naturales, las posibles medidas cul-turales y finalmente las herramientas quími-cas, biológicas o biotécnicas eficaces paradisminuir los daños por debajo de los niveleseconómicos (Perez Moreno, NVVT). Con laayuda de esta base de conocimientos, se pue-den establecer estrategias sustentables de in-tervención fitosanitaria. Es necesario, por lotanto, conocer en profundidad cada una delas herramientas indicadas anteriormentepara diseñar las estregias de intervención másapropiadas según el tipo de producción quese implemente (agroecológica, orgánica, resi-duo cero, etc.).

Control cultural

Antiguamente se utilizaron gran cantidad demétodos para el manejo de este insecto de-bido a la gravedad de sus perjuicios. Se citanen la bibliografía técnicas difíciles de aplicar,

pero que eran realizadas ante la gravedad dela situación y la falta de alternativas, ya seainsecticidas de síntesis química ó bioinsectici-das industriales (García López, NVOV; Gonzá-lez de Andrés, NVPR). Se pueden mencionar,de modo informativo, las siguientes prácticas:á) Destrucción de larvas de primera genera-ción con los dedos o con pinzas, o cortandodirectamente las mismas o los granos reciéncuajados con presencia del insecto; áá) Méto-dos de captura masiva con trampas de luz queatrapaban adultos en recipientes con aceites osustancias pegajosas; ááá) Trampas alimenticiaspara atraer las mariposas hacia recipientescon líquidos; áî) Descortezado de troncos eninvierno con rascadores o guantes metálicospara destruir pupas; î) Fumigación ó sulfuri-zación de las planta; îá) Pintado de las cepascon lechadas de cal o con sulfato de cobre.

Algunos autores sostienen que estos mé-todos de control cultural no han sido eficacesen general y citan otros datos que pueden serde ayuda para reducir poblaciones del in-secto, tales como: N) Eliminación de racimoso cosecha adelantada para eliminar larvas detercera generación, que no abandonan los ra-cimos para empupar; O) Elección de varieda-des menos susceptibles, de acuerdo a lacompacidad del racimo; P) Eliminación demalezas que pueden albergar a la plaga (To-rres Vila, OMMN).

Control biológico con enemigos naturales

El control biológico de L. botrana puede sernaturalmente llevado a cabo en el viñedo porpredadores, parasitoides, bacterias, hongos,nematodos y virus. Entre los primeros se en-cuentran arañas, coccinélidos, crisópidos ypájaros, entre otros. En relación a parasitoi-des, los microhimenópteros de diferentes es-pecies del género Trichogramma hanresultado eficaces como parásitos de huevos,por lo cual se ha trabajado en la cría y libera-ción a campo de este parasitoide en varios pa-íses (Babi, NVVM; Rossi, NVVP). Se cita a T.evanescens y T. cacoeciae como las especies másutilizadas para este objetivo.


2- Instituto Nacional de Vitivinicultura.3- Instituto de Sanidad y Calidad Agropecuaria Mendoza.


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Se mencionan también microhimenópterosde la familia Pteromalidae (Dybrachus cavus),Ichneumonidae (Coccygominus spp.). Ademásse han identificado dos hiperparasitoidesChalcididae, Brachimeria panamensis y Conurasp. (González & Lanati, OMNN).

Otros enemigos naturales de interés utili-zados en el mundo son los virus, pero éstos sehan investigado muy poco. Chkhubianishili yMalaniya en NVUS realizaron estudios de con-trol con Baculovirus orana, con resultados demortalidad que oscilan entre SMJNMMB. Enrelación a hongos, está citado Bauveria bas-siana. Existen nematodos parásitos de L. bo-trana de la familia Mermitidae. También sonconocidos microsporidios como enemigos deL. botrana, parásitos intracelulares llamadosasí por las pequeñas esporas que producen.En OMMP, se aisló Cystosporogenes legeri nov.comb., que causa importantes infeccionessobre este lepidóptero (Kleespies et al.,OMMP).

Control con bioinsecticidas

Los bioinsecticidas son productos para elcontrol de plagas agrícolas, formulados conorganismos vivos, bacterias, hongos, virus,entre otros, para el control de agentes perju-diciales a los cultivos agrícolas comerciales.El más utilizado para el control de este in-secto en viñedos afectados es Bacillus thurin-giensis. El mismo es un bacilo gram positivode la familia Bacillaceae tóxico para diversosgéneros de insectos y tiene la propiedad deformar esporas de resistencia. La principalcaracterística toxicológica de B. thuringiensises que al esporular produce una inclusiónformada por uno o más cuerpos cristalinos denaturaleza proteica que son tóxicos para lar-vas de insectos. Los cristales de la bacteriason ingeridos y luego solubilizados en el in-testino medio del insecto, tras lo cual se libe-ran las proteínas cristalinas en forma deprotoxinas. Estas no producen el daño por símismas, ya que son luego procesadas porproteasas intestinales para formar las toxinasactivas que matan a la larva del insecto. Seconocen UQ serovares de esta bacteria con vi-rulencia específica para cada tipo de insectos.Los más utilizados para el control de L. bo-

trana son kurstaki y aizawai (Sauka & Benin-tende, OMMU).

En Mendoza, los ensayos realizados du-rante las temporadas OMNMLOMNN y OMNNLOMNOdemostraron que existen tres épocas adecua-das para el control: N) floración, cuando laslarvas se hallan afectando las inflorescencias ygenerando los glomérulos, se deben realizaral menos dos a tres aplicaciones cada sietedías; O) en la segunda generación, en el mesde diciembre; P) en enero, en tercera genera-ción, se deben realizar dos a tres intervencio-nes durante el estado larval. En todos loscasos, las pulverizaciones se deben realizar almomento de eclosión de los huevos, antesque las larvas neonatas penetren los granos.Existen formulaciones líquidas y sólidas. Lasdosis a utilizar están entre N y NKR litros óâg/ha. Se debe acidificar el caldo a pÜ RKRJSKMpara que el producto sea eficiente (Becerra etal., OMNN c). Este producto es una herra-mienta de utilidad para el control de este le-pidóptero en cultivos de vid, en especial en laproducción orgánica.

Control etológico o semioquímico

En el caso de L. botrana, el mensaje de comu-nicación sexual para llamar al apareamientopor parte de la hembra no está formado poruna sola sustancia. Se han hallado por lomenos NR compuestos, siendo el que se en-cuentra en mayor proporción el cis T trans Vacetoxi-N-dodecadieno ó ÉTJ=òV dodecadienilacetato (Ioratti et al., OMNN).

Estas sustancias se presentan comercial-mente de dos maneras: para el monitoreo ypara el control de las poblaciones. En el pri-mer caso se trata de trampas de feromonas,que consisten en dos tapas de cartón, la deabajo con una impregnación engomadadonde se coloca una cápsula con feromonafemenina para atrapar machos de la especie.Para reducir los apareamientos y la reproduc-ción se utilizan los dispensers, emisores ó di-fusores (Fotos NQ y NR). Estos son diseñadosde manera diferente según la marca comer-cial, pero básicamente son dispositivos quellevan en su interior la feromona en forma lí-quida, para ser emitida y volatilizada al medioambiente del cultivo en forma progresiva



durante un tiempo determinado (Lanati,OMMN). Para la polilla europea del racimo laduración de esta emisión es de hasta NUM díasen general.

El método de control se basa en la coloca-ción de emisores en el cultivo en número va-riable según marcas comerciales, pero queoscila para esta plaga entre PRM y RMM disposi-tivos por ha. Por lo general se colocan en losalambres del sistema de conducción de la vid,o, según el modelo, en el pitón ó cargador.Estos difunden la feromona volátil al medioambiente, saturando el mismo y formandouna especie de nube aromática. Los machos,debido a este exceso de estímulos, no puedendetectar la presencia real de las hembras pro-duciéndose una disminución drástica del aco-plamiento y consecuentemente de lasoviposiciones. De esta manera se produceuna disminución de la densidad poblacionalde la plaga y de los daños en el cultivo. Elmétodo presenta desventajas, tales como ma-yores daños en los bordes del cultivo, y de-fectos de efectividad según la forma y tamañode parcelas (es necesario un mínimo de su-perficie para que sea efectiva), la dirección yvelocidad de los vientos, que podría llevar lanube de feromonas hacia otro lugar, etc. Engeneral, es de fundamental importancia de-terminar el momento de colocación de losemisores en el campo. Se considera que elmismo debe efectuarse de manera temprana,inclusive antes de brotación. No hay incon-venientes por la duración de la emisión, yaque al colocarlos temprano, debido a las tem-peraturas primaverales frescas, la emisión esmenor. Es decir, la difusión de la feromonavolátil es proporcional a las temperaturas,por lo cual la colocación temprana no afectala duración total de la emisión, ya que lastemperaturas medias en ese momento sonbajas. Se deben colocar trampas para el mo-nitoreo de machos en los viñedos en lugaresdonde no se hallen las feromonas, ya que lanube generada por la colocación de los difu-sores en el campo impide también el normalfuncionamiento de la trampa.

En la provincia de Mendoza, las estrate-gias de manejo de L. botrana se han desarro-llado en base a los estudios bioecológicospresentados con anterioridad. Se han reali-

zado ensayos en las temporadas OMNMJOMNN yOMNNJOMNO, durante las cuales se evaluarontres marcas comerciales de difusores de fero-monas. Se experimentaron dos dosis: PRM yRMM emisores por ha. Se efectuaron estrate-gias combinando uso de feromonas con pro-ductos químicos de distintas familias, talescomo organofosforados, reguladores de cre-cimiento, inhibidores de quitina, diamidasantranílicas y B. thuringiensis. En relación adichos ensayos, ambas dosis resultaron efi-cientes, por lo que se aconseja usar la menordosis ensayada (PRM difusores /ha). Todos losensayos demostraron que esta herramienta eseficaz en el control de la plaga, comprobandouna importante disminución de daños en par-celas tratadas, en especial luego del segundoaño de la estrategia de feromonas de confu-sión más químicos (Becerra et al., OMNN a; Be-cerra et al., OMNO b).

Control químico

En los diversos países donde este lepidópteroafecta los viñedos, el manejo es planteadoconsiderando su incidencia económica. Éstapuede variar según diferentes factores, talescomo el cultivar de vid, la fertilización connitrógeno, las épocas de cosecha, las condi-ciones climáticas y el número de generacio-nes del insecto, entre otras (Ioratti et al.,OMNN). Sin embargo en zonas donde ha inva-dido y está en proceso de erradicación comoen Argentina, se hacen necesarias en formaobligatoria las intervenciones con agroquími-cos para disminuir sus poblaciones en las pri-meras generaciones (ëÉå~ë~, ResoluciónTOVLOMNM).

El control químico genera numerosos in-convenientes, tales como contaminación am-biental y de alimentos, impacto sobreorganismos no blanco (pájaros, aves, peces,abejas), exigencias crecientes a nivel de resi-duos de plaguicidas de países compradores dela producción argentina, toxicidad hacia ene-migos naturales y posible inducción de plagassecundarias, entre otros. Sin embargo, hasido y continúa siendo el método más utili-zado por los productores por su practicidady/o por sus costos, dependiendo de los pro-ductos utilizados (Cucchi & Becerra, OMMV).



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El cultivo de la vid en Argentina y espe-cialmente en la provincia de Mendoza, dondese concentra la mayor superficie implantadadel país, ha tenido históricamente una exce-lente sanidad (Strafile & Becerra, OMMN).Efectivamente, la presencia de insectos gene-rando niveles económicos de daño en vides,ha sido prácticamente nula. Esta situación semantuvo hasta el año OMMM, en que lenta-mente empezaron a aumentar las poblacionesdel cóccido, Planococcus ficus, “cochinilla hari-nosa de la vid” (Becerra et al., OMMS) queobligó a utilizar insecticidas en este cultivo.Debido a ello, el cultivo de la vid, carecía, enel momento de aparición de L. botrana deplaguicidas registrados en ëÉå~ë~ para sucontrol. Para solucionar este problema, se es-tableció en OMNM un registro de plaguicidasen forma emergencial (ëÉå~ë~, ResoluciónRMQLOMNM). Los plaguicidas incluidos en dichareglamentación se hallan actualmente en pro-ceso de registro (Becerra et al., OMNN a; Bece-rra et al., OMNN b). Los productos reunidos enla mencionada resolución, pueden dividirseen sus grupos químicos correspondientes,ubicándose aquellos tradicionales como losorganofosforados, carbamatos y piretroides yotros novedosos en sus modos de acción talescomo los neonicotinoides, reguladores de

crecimiento, avermectinas, diamidas antraní-licas, productos naturales o biológicos y fero-monas de confusión sexual.

Se recomienda, de acuerdo a lo expuesto,realizar los tratamientos en viñedos afecta-dos, considerando como métodos más efica-ces, el uso de feromonas en combinación conquímicos, en un principio para evitar el au-mento poblacional del insecto y su difusión,ya que es una plaga cuarentenaria y es necesa-ria su erradicación. Por otra parte es impor-tante realizar las aplicaciones fitosanitariaspara evitar las posibles pérdidas por podre-dumbre de los racimos (Becerra et al., OMNOa). Incluir feromonas más productos quími-cos y/o B. thuringiensis, considerando plazossuficientemente largos antes de cosecha paraevitar residuos en uvas y vinos.

Cuando la densidad de población de L.botrana es baja a mediana se recomienda em-plear feromonas solas o combinadas con pla-guicidas durante la primera generación,respectivamente. Las estrategias químicaspara ser eficaces deben regirse por el Sistemade Alarma implementado por el ëÉå~ë~. Si elcultivo está afectado además por cochinillaharinosa se sugiere emplear el insecticidaclorpirifos durante la primera generación deambas plagas.



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Anastrepha fraterculus (Wiedemann)y Ceratitis capitata (Wiedemann) (Moscas de la fruta)

Bouvet, J.P. y G. Segade

Introducción Nombre de la plaga Descripción de los insectos Mosca del Mediterráneo Ciclo biológico Mosca sudamericana Hospedantes Daños Situación en Argentina Monitoreo Manejo de la plaga Control biológico Control cultural Control químico Control legal Monitoreo y control en arándano Efectividad de las trampas Vuelo de moscas adultas Daños en fruta Algunas conclusiones Bibliografía

Å~é∞íìäç=O

Arándanos y Cítricos

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Introducción

Los arándanos cultivados son arbustos nati-vos del este de Norte América, pertenecen ala familia de las Ericáceas y al género Vacci-nium, siendo las especies cultivadas en nues-tro país V. corymbosum (highbush o arándanoalto) y V. ashei (rabbiteye u ojo de conejo) ehíbridos. Esta especie frutal fue introducidaen la Argentina a fines de la década del UMcon la finalidad de evaluar su potencial pro-ductivo. Recién en la década del VM se co-menzó a plantar comercialmente, efectoproducido por la existencia de una demandainsatisfecha en el Hemisferio Norte y losbuenos precios del mercado. La produccióndel noroeste y especialmente del nordeste ar-gentino cuenta con ventajas competitivas alanticipar la cosecha respecto a otros paísesdel hemisferio sur, lo que favorece su expor-tación (Anderson, OMMT). Las plantaciones dearándano están ubicadas principalmente enlas provincias de Buenos Aires, Entre Ríos yTucumán, debido a las condiciones agroeco-lógicas excepcionales y la tradición frutícolade la zona (Fabiani et al., OMMN; Vera, OMMR).

Es una fruta de gran valor ya que es alta-mente requerida por los mercados interna-cionales, con una demanda creciente deproductos sanos y de calidad. La concientiza-ción de los consumidores acerca del valor nu-tricional de los alimentos ha aumentado enlas décadas pasadas, incrementando la popu-laridad de los arándanos. Este berri es cono-cido por su alta actividad antioxidante y porsus propiedades nutracéuticas, siendo losarándanos frescos muy aceptados para el con-sumo (Vicente et al., OMMT).

El aspecto sanitario de la planta mereceuna atención especial. Hay plagas y enferme-dades que atacan el cultivo y que pueden pro-ducir un nivel de daño importante tanto en lacantidad como en la calidad de la fruta (Klein& Waterhouse, OMMM; DeFrancesco, OMMQ;Hepp Gallo, OMMS; Hongn, OMMS). El uso deproductos químicos para controlar adversida-des se realiza con mucha precaución debido aque el arándano es sensible a la mayoría delos principios activos, pudiendo provocar lamuerte de la planta. Existe una gran diversi-

dad de insectos asociados al cultivo del arán-dano en otros países. Si bien muchas de estasespecies son propias de cada país, pueden en-contrarse coincidencias en la forma de pro-ducir daños o en los órganos de la planta queson afectados. Estudios realizados en cultivosde arándano de la provincia de Entre Ríosmostraron que las especies de artrópodospresentes coinciden con aquellas que se en-cuentran frecuentemente en los cítricos en laregión (Vaccaro & Bouvet, OMMS; Rivadeneira& Bouvet, OMMT; Wright, OMMV; Santillán etal., OMNM).

A continuación nos referiremos especial-mente a las moscas de la fruta, insectos degran importancia cuarentenaria y de gran pe-ligrosidad en cultivos como el de los cítricosy el arándano (Ñ~çI=NVUV), cuya producciónen gran medida se exporta.

Nombre de las plagas

Las moscas de la fruta son dos especies:mosca del Mediterráneo, Ceratitis capitata(Wiedemann), NUOQ; Mosca sudamericana,Anastrepha fraterculus (Wiedemann), NUPM.Pertenecen a la familia Tephritidae del ordenDiptera.

La importancia de estas plagas no radicaúnicamente en el daño directo que ocasionansino que son también especies cuarentenariasy su sola presencia influye negativamente enla comercialización

aÉëÅêáéÅáμå=ÇÉ=äçë=áåëÉÅíçë=

Mosca del Mediterráneo

Es de tamaño pequeño a mediano. Las hem-bras depositan uno o dos huevos por fruta.La larva eclosiona y se desarrolla dentro de lapulpa, haciendo que el fruto se ablande. Lasplantaciones de arándano que se encuentranen cercanías de otros hospederos (cítricos,duraznos, guayaba, etc.) presentan mayoresposibilidades de ser atacadas por moscas de lafruta.

Å~é∞íìäç=O=J=~ê•åÇ~åçë=ó=Å∞íêáÅçë=J Anastrepha fraterculus y Ceratitis capitata


Ciclo biológico

La mosca del Mediterráneo pasa por cuatroestados de desarrollo: huevo, larva, pupa yadulto. Los huevos son alargados, de colora-ción blanca, miden aproximadamente N mmde largo (Foto NS). Las larvas pasan por tresestadios, que se diferencian por el tamaño ylas piezas bucales. Son de color blanco, noposeen patas, el extremo anterior del cuerpoes aguzado y el posterior ensanchado. Unalarva del último estadio mide de U a NM mm(Foto NT). Las pupas tienen forma de un pe-queño barril, miden aproximadamente R mmde largo y son de color castaño oscuro (FotoNU). El adulto mide de QJR mm de largo, porNMJNR mm de envergadura alar. Es de colorpredominantemente castaño, con ojos decolor verde y reflejos rojizos. El tórax es decolor negro en la parte superior, con peque-ñas manchas blancas. El abdomen es castañooscuro, con franjas transversales más claras.Las alas son transparentes, con manchas decolor castaño claro y oscuro (Foto NV). Elmacho presenta dos cerdas en forma de espá-tulas en la región de la frente, entre los ojos(Foto OM).

Los adultos alcanzan la madurez sexual enQ días. Luego de aparearse y tras un períodode QJR días, durante el cual los huevos madu-ran en su interior, las hembras inician la pos-tura. Seleccionan la fruta según el color y elolor, por lo general cuando están “pintonas”.Una vez sobre la fruta, la hembra caminasobre su superficie hasta encontrar un sitioadecuado para depositar sus huevos, luego in-troduce el ovipositor hasta alcanzar el meso-carpio u hollejo y moviéndolo, forma unacámara donde coloca los huevos. Depen-diendo del tamaño de la fruta, puede ponerde N a NM huevos, y a lo largo de su vida unahembra puede colocar aproximadamente UMMhuevos. Después del nacimiento, la larva seintroduce en el endocarpio o pulpa haciendogalerías, hasta llegar al centro de la fruta.Cuando termina el período larval, la larvaabandona el fruto y se entierra en el suelo apoca profundidad, para transformarse enpupa. Una de las características de las larvasde esta especie es que cuando busca lugar

para empupar se encorva y realiza pequeñossaltos. Al finalizar el período pupal, emergenlos adultos.

La temperatura óptima de desarrollo esde OQJOTø`. En esas condiciones, el ciclobiológico dura alrededor de NTJOV días: huevo,de O a T días; larva, de S a NN días y pupas, deV a NN días (Vaccaro & Mousqués, NVVS). Unadulto puede vivir de uno a seis meses segúnlas condiciones climáticas. En la zona esta es-pecie puede llegar a tener de S a U generacio-nes anuales (Vaccaro & Bouvet, OMMU).

Mosca sudamericana

Tiene mayor tamaño que la anterior; eladulto mide aproximadamente SIR mm delargo; su cuerpo es de color amarillo conmanchas castaño claro; posee una manchaamarillo oscuro (castaña) en forma de S en lasalas, cruzándola en forma oblicua, y otra delmismo color en forma de V invertida en laparte posterior del ala. Las hembras tienen elovipositor largo y los machos no poseen setasmodificadas (Fotos ONJOO). Los huevos sonelípticos de coloración blanca y miden apro-ximadamente NIR mm de largo (Foto OP). Laslarvas también pasan por tres estadíos, dife-renciándose fácilmente de las larvas de lamosca del Mediterráneo por los dígitos de losespiráculos anteriores y además no saltacuando busca un lugar para empupar. Unalarva del último estadío puede medir hasta NRmm (Foto OQ). Las pupas son de color ma-rrón oscuro pudiendo medir NM mm (FotoOR). El ciclo biológico de la mosca sudameri-cana es similar a la mosca del Mediterráneo,aunque suele ser más prolongado (RM días),dependiendo de las condiciones climáticas.

La mosca sudamericana es originaria deAmérica del Sur y se la encuentra desde elcentro de Argentina hasta el Sur de los Esta-dos Unidos. Se distribuye en las regiones conclima tropical y subtropical (Malavasi et al.,OMMM). En Argentina está presente principal-mente en regiones húmedas del noroeste(åç~) y noreste (åÉ~) del país (Vaccaro &Mousqués, NVVS).



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Hospedantes

Ambas moscas son polífagas, atacando a di-versas familias de especies frutales. A nivelmundial se citan unas PMM especies de frutaleshospedantes para la mosca del Mediterráneoy unas UM especies de frutales hospederospara la mosca sudamericana (Putruele, NVVS;Oroño et al., OMMS; Bouvet, OMNN; Segade,OMNN). Dentro de los frutales cultivados, seregistran ataques en todas las especies cítricascomerciales, arándanos, higos, duraznos, ci-ruelos, peras, manzanas, guayabas, etc. Entrelos hospedantes silvestres se la puede encon-trar alimentándose de fruta de mburucuyá,ubajay, pitanga y fumo bravo, entre otras(Putruele, NVVS; Bouvet, OMNN).

En lo que respecta a Argentina, se cuentacon algunos listados confeccionados por di-versos autores en los cuales se citan las distin-tas especies hospederas tanto para C. capitata(Tabla OKN) como para A. fraterculus (TablaOKO) (Putruele, NVVS; Oroño et al., OMMS; Se-gade, OMNN). Dichos listados brindan, en con-junto, un panorama de los hospedantesconocidos hasta el momento. Los autores alos que se hace referencia han consideradocomo hospedantes a aquellas especies vegeta-les para las que: á) la infestación haya ocu-rrido en forma natural (condiciones decampo); áá) la especie vegetal (y/o variedad) ylos ejemplares de mosca recuperados a partirde los frutos infestados hayan sido identifica-dos por taxónomos idóneos; ááá) se cuente coninformación de los niveles de infestación (lar-vas por fruto o por kg de fruta) y de la feno-logía de la especie hospedante.

Daños

El daño directo producido es similar paraambas especies y consiste en la pérdida de lafruta como consecuencia de la alimentaciónde las larvas y del ingreso de agentes de pu-trefacción (bacterias y hongos) que descom-ponen la pulpa.

Los daños indirectos están relacionadosprincipalmente con su estatus de plagas cua-rentenarias, lo que reduce las posibilidades decomercialización. Por otro lado, la aplicación

de insecticidas para su control ocasiona unaumento en los costos de producción, pro-duce daños al medio ambiente e incrementael riesgo de presencia de residuos de plaguici-das en fruta. Existen normativas de ëÉå~ë~tendientes a mejorar las posibilidades de co-mercialización de la fruta, tales como listadosde hospedantes de estas plagas y pautas parael manejo que debe realizarse si se pretendecomercializar estos productos entre regionesdel país o hacia el exterior (ëÉå~ë~, OMMN; ëÉJå~ë~, OMMP).

Situación en Argentina

En nuestro país, las mayores poblaciones deestas plagas se registran en el nordeste de laprovincia de Ente Ríos y el sur de la provin-cia de Corrientes. Esto se debe a las condi-ciones climáticas adecuadas para sudesarrollo y al gran número de hospedantespresentes, tanto cultivados como silvestres.Puede encontrarse a estos insectos activostodo el año cuando los inviernos son cálidos.En la zona de Concordia, durante años nor-males, las variedades más afectadas son lasnaranjas de verano (Valencia Late) y las man-darinas tempranas (Satsumas). Las poblacio-nes de moscas de la fruta comienzan aincrementarse en setiembre-octubre y conti-núan aumentando hasta marzo-abril, dismi-nuyendo luego durante los meses de invierno(Vaccaro & Bouvet, OMMU).

La situación en las restantes regiones dela Argentina es diferente. Las poblaciones enel åç~ por lo general son menores, no pre-sentando mayores dificultades en el control.En la Patagonia y en parte de la región deCuyo se ha logrado controlar estas especiesde mosca de la fruta mediante el Programade Control y Erradicación (éêçÅÉã) que seestá implementando en dichas regiones.

En la zona de Concordia, la mosca sud-americana se encuentra mayormente ata-cando pomelos y sus picos poblacionales seproducen con anterioridad a los de la moscadel Mediterráneo (agosto-septiembre).


Especies hospederas de Ceratitis capitata

Nombre científico Nombre vulgar Res. 601/2001 y352/2003 SENASA FAO 1989 Putruele, 1996 Oroño et al., 2006 Bouvet et al.,

2010 Segade, 2011

Acca sellowiana feijoa x x x

Actinidia deliciosa kiwi x x x

Annona cherimolia chirimoya x

Annona muricatum guanabana x

Averrhoa carambola carambola x

Blepharocalyx salicifolius anacahuita x

Capsicum annuum pimiento x x x

Capsicum frutescens locoto x

Carica papaya papaya x x

Carica pentagona babaco x

Chrysophyllum gonocarpum aguaí x

Citrus aurantifolia lima x x x

Citrus aurantium naranja agria x x x x x

Citrus japónica calamondin x x

Citrus medica cidra x

Citrus paradisi pomelo x x x x x x

Citrus reticulata mandarina x x x x x x

Citrus sinensis naranja x x x x x x

Cydonia oblonga membrillo x x x x

Cyphomandra betacea tomate de arbol x

Diospyros kaki kaki x x x

Eriobotrya japónica níspero x x x x x

Eugenia uruguayensis guayabo blanco x

Ficus carica higo x x x x x x

Fortunella margarita kumkuat x x x

Fragaria vesca frutilla silvestre x

Híbrido Pomelo x Mandarina mineola x

Inga uruguayensis inga x

Litchi chinensis litchi x

Malus domestica manzana x x x x x x

Mangifera indica mango x x x

Myrcianthes pungens guaviyú x

Olea europea olivo x

Opuntia ficus indica tuna x x

Pasiflora edulis maracayu x

Passiflora spp. (caerulea) pasionaria x x x x x

Persea americana palta x x x

Phoenix dactilifera dátil x

Physalis peruviana uchuva x x

Prunus armeniaca damasco x x x

Prunus avium cerezo x

Prunus domestica ciruelo x x x x x x

Prunus dulcis almendro x

Prunus persica duraznero x x x x x x

Prunus persica var. nucipersica nectarina x x

Psidium guayava guayaba x x x x x

Punica granatum granada x x

Pyracantha coccinea crategus x

Pyrus conmunis pera x x x x x x

Pyrus pyrifolia pera asiatica x

Rubus ideaus frambuesa x x x x x

Salpichroa origanifolia huevo de gallo x x

Solanum glaucophyllum duraznillo blanco x x

Solanum muricatum pepino dulce x

Spondiasmombim jobo x

Vaccimum corymbosum arandano x x

Vitisvinifera uva x x x x

Ximenia americana albaricoque x

Tabla 2.1. Hospedantes de Ceratitis capitata citados para la República Argentina


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Especies hospederas de Anastrepha fraterculus

Nombre científico Nombre vulgar Res. 601/2001 y

352/2003 SENASAPutruele 1996 Oroño et al., 2006 Bouvet et al., 2010 Segade 2011

Acca sellowiana falso guayabo x x x

Annona cherimolia chirimoya x

Annona muricatum guanabana x

Averrhoa carambola carambola x

Campomanesia crenta mirtacea x

Carica papaya papaya x x

Citrus aurantifolia lima x

Citrus aurantium naranja agria x x x x

Citrus medica cidra x

Citrus paradisi pomelo x x x x x

Citrus reticulata mandarina x x x

Citrus sinensis naranja x x x x x

Cydonia oblonga membrillo x x x

Cyphomandra betacea tomate de arbol x

Diospyros kaki kaki x

Eriobotrya japónica níspero x x x x

Eugenia retusa cerlha x

Eugenia uniflora pitanga x

Ficus carica higo x x x

Fortunella margarita kumquat x x

Hexachlamys edulis ubajay x x x

Híbrido Pomelo x Mandarina mineola x

Inga marginata pacay x

Juglans australis nogal criollo x

Litchi chinensis litchi x

Lucuma abovata lucuma x

Malus domestica manzana x x x

Mangifera indica mango x

Myrcia selloi guaminí x

Myrcianthes pungens guaviyú x x

Passiflora spp. (caerulea) pasionaria x x x

Persea americana palta x x

Physalis peruviana uchuva x

Prunus armeniaca damasco x x x

Prunus avium cerezo x

Prunus domestica ciruelo x x x x x

Prunus dulcis almendro x

Prunus persica durazno x x x x x

Prunus persica var. nucipersica nectarina x x

Psidium guayava guayaba x x x x

Punica granatum granada x x x

Pyrus conmunis pera x x

Rubus ideaus frambuesa x

Rubus spp. zarzamoras x

Vaccimum corymbosum arandano x

Vitis vinifera uva x x x

Tabla 2.2. Hospedantes de Anastrepha fraterculus citados para la República Argentina



Monitoreo

Se realiza por medio de trampas, las cualesdeben ser colocadas un mes antes de la cose-cha. En el caso de la mosca del Mediterráneose utilizan trampas Jackson® (Foto OS) ceba-das con un atrayente sintético (Trimedlure®),que se asemeja a feromonas que atraen sólo amachos de esta especie, los cuales al entrar ala trampa quedan atrapados en el piso de lamisma que tiene pegamento. Tiene un radiode acción de NMM metros y se recomienda co-locar un mínimo de N trampa cada Q ha enlotes de una misma variedad. La ubicacióndebe ser en la primera fila cerca de una cor-tina rompeviento a una altura mínima de NIRm de altura (para que no se ensucie) y en elborde de la copa. Esta trampa debe ser revi-sada semanalmente, cambiando los pisos encada oportunidad y llevando el registro de losejemplares capturados.

Para el monitoreo de ambas especies demoscas de la fruta, tanto machos como hem-bras, se utilizan trampas Mc Phail® (Foto OT),las cuales se ceban con Torula®, que atrae alos insectos por ser una fuente alimenticia(proteína). La trampa tiene un embudo en subase, lo que imposibilita que las moscas queentraron escapen. Además, una vez dentro,los insectos se ahogan en el agua donde se di-luye el cebo. Tiene un radio de acción de PMm y debe colocarse como mínimo N trampacada Q ha en lotes de una misma variedad. Secolocan Q pastillas de Torula® en ORM cm3 deagua y se renueva una vez a la semana, mo-mento en el cual también se realiza el conteode los ejemplares capturados.

j~åÉàç=ÇÉ=ä~=éä~Ö~

Control biológico

Para el control biológico de las moscas de lafruta comúnmente se emplean parasitoides yla Técnica del Insecto Estéril (íáÉ). Los para-sitoides son insectos que en sus estadios in-maduros se alimentan de otros insectos. En laprovincia de Entre Ríos existen al menoscuatro especies de himenópteros parasitoidesque atacan larvas de moscas de la fruta: Utetesanastrephae (Viereck), Doryctobracon brasiliensis(Szépligeti), Doryctobracon areolatus (Szépli-geti) y Ganaspis pelleranoi (Brèthes). No obs-tante, el control alcanzado por estas especiesno es suficiente para reducir las poblacioneshasta niveles por debajo del umbral econó-mico (Ovruski et al., OMMU; Bouvet & Vac-caro, OMMV b; Bouvet, OMNN). Por esta razón,fueron introducidas otras tres especies de hi-menópteros parasitoides de larvas: Diachami-morpha longicaudata (Ashmead),Aceratoneuromyia indica (Silvestri) y Tetrasti-chus giffardianus (Silvestris). Estas especiesexóticas, si bien han sido utilizadas con éxitoen programas de control de moscas de lafruta en otros países, no se han adaptado anuestra región o se desconoce su comporta-miento (Turica, NVSU; Ovruski et al., NVVV;Ovruski et al., OMMM).

Existen diferentes reportes en otros paísesdonde se evidencia que la liberación de para-sitoides pueden suprimir exitosamente las po-blaciones de moscas de la fruta, y es efectivoaún cuando las poblaciones de la plaga sonaltas (Carvalho et al., OMMM). El método decontrol biológico que se utiliza es el aumen-tativo, que consiste en liberar grandes canti-dades de estos insectos benéficos en formaperiódica. Este método requiere la imple-mentación y mantenimiento de crías artificia-les de parasitoides.

En nuestro país, en lo que respecta acontrol biológico de moscas de la fruta enarándano, se están desarrollando líneas de in-vestigación para el estudio de la biodiversidadde parasitoides (tanto nativos como exóticos)y de su comportamiento de oviposición, fo-rrajeo y sexual.



38

Estos estudios permitirán seleccionar el olos mejores candidatos para ser utilizadoscomo agentes de control y, posteriormente,determinar cuál es la mejor estrategia para suutilización en sistemas de manejo integradode plagas. Por otro lado, la íáÉ consiste en laliberación masiva y permanente de ejempla-res estériles de la especie plaga para reducirprogresivamente su población. En el caso dela mosca del Mediterráneo se liberan sola-mente machos, los cuales son criados en con-diciones artificiales y esterilizados conradiación previamente a su liberación. Labase de esta técnica es que las hembras silves-tres, al aparearse con machos estériles, no de-jarán descendencia. Para que el sistemafuncione deben liberarse suficientes machosestériles que compitan con los machos silves-tres, por lo cual es necesario que la poblaciónsilvestre sea muy baja.

También se han realizado algunas expe-riencias con hongos entomopatógenos yotros productos biológicos con buenos resul-tados. Estas herramientas aún no han sidoimplementadas a gran escala pero constituyenalternativas promisorias debido a su bajo im-pacto sobre la salud humana y el ambiente.

Control cultural

El control cultural es un complemento nece-sario para todos los tipos de control ya quecontribuye a reducir las poblaciones demosca de la fruta. Básicamente consiste enrecolectar la fruta caída atacada por mosca yenterrarla en pozos de MIS m a N m de pro-fundidad para evitar el nacimiento de adultos.Por encima de la fruta se coloca una capa decal viva de NM cm de espesor, se cubre contierra y se apisona. No se deben usar produc-tos insecticidas ya que se corre el riesgo deque los mismos se filtren hacia las napas freá-ticas.

Control químico

Existe una lista de insecticidas registradospara aplicar en cada especie frutal. Por lo ge-neral, la tendencia actualmente es la utilizarplaguicidas selectivos para las moscas de la

fruta y que no afecten a otros organismos.Otra cualidad deseada es que no afecten lasalud humana ni al medioambiente.

La decisión de realizar control químicodebe tomarse teniendo en cuenta las capturasregistradas en las trampas Jackson y McPhail®utilizadas para monitoreo. Se utiliza un índicellamado ãíÇ que es la relación entre las mos-cas de la fruta capturadas por trampa por día:

ãíÇ=Z==== ãí=×=Ç

Siendo ã = número total de moscas de lafruta, í = número de trampas examinadas y Ç= número de días en que las trampas estuvie-ron expuestas en el campo.

El umbral de daño de las moscas de lafruta es igual a N mosca en N trampa en T días(ãíÇZMKNQ), con lo cual, alcanzado este valor,debe aplicarse algún tipo de control. Actual-mente el control químico se efectúa medianteaplicaciones de insecticida-cebo (o cebos tó-xicos) dirigidos al follaje. Al combinarse uninsecticida con un atrayente, pueden lograrseaplicaciones selectivas y no generalizadas (co-bertura total). Las pulverizaciones se realizande forma terrestre o en forma aérea. En fru-tales como los cítricos, deben concentrarseen las cortinas rompevientos y las primerasfilas del lote en frutales, pues en estas zonases donde se concentran las poblaciones de lamosca. Tanto en aplicaciones terrestres comoaéreas, se recomienda pulverizar en franjasalternadas para reducir el impacto sobre laspoblaciones de insectos benéficos presentesen el cultivo.

En determinadas circunstancias se reco-mienda realizar control de pupas en el suelo(por ejemplo, si al iniciar el período inver-nante la población ha sido alta y no fue biencontrolada).

Existe una forma alternativa de utilizar losproductos químicos sin necesidad de realizarpulverizaciones. Esta modalidad, conocidacomo estaciones de cebado, consiste en colo-car en las plantas dispositivos conteniendouna matriz embebida en un atrayente y un in-secticida, de manera que las moscas seanatraídas y mueran al alimentarse o al entrar



en contacto con esta mezcla. Las estacionesde cebado más utilizadas son elaboradas conmaterial esponjoso o algodón revestido conalgún tipo de tela. Otra modalidad más eco-nómica consiste en utilizar marlos del maízimpregnados con cebo tóxico.

Una técnica de control considerada demenor impacto aún es la conocida comotrampeo masivo. Como su nombre lo indica,consiste simplemente en la utilización detrampas colocadas sobre las plantas en unadensidad elevada, de manera que capturen ungran número de las moscas de la fruta que seencuentren en el lugar. Igual que en el casode las estaciones de cebado, para este métodotambién se utiliza un atrayente y un insecti-cida. Las moscas al ingresar a la trampa soncapturadas el tiempo suficiente para quemueran. En este caso puede evaluarse más fá-cilmente la efectividad ya que los individuosmuertos son retenidos y puede realizarse unrecuento. Estos dispositivos están disponiblesa escala comercial, pero también existen ver-siones más económicas que pueden fabricarsea partir de botellas plásticas transparentescon perforaciones a los lados, colocando ensu interior vinagre de vino disuelto en agua(ORB) o levadura de cerveza con ácido bóricoy agua. El agregado de una pequeña cantidadde detergente neutro a la solución contribuyea mejorar la capacidad de captura de la trampa(disminución de la tensión superficial).

Control legal

Constituye el desarrollo, aprobación y aplica-ción de un conjunto de leyes, normativas, re-glamentos y procedimientos encaminados aevitar la propagación o introducción de pla-gas (insectos, hongos, virus, malezas, etc.) através del movimiento de productos vegetalesinfestados, hacia zonas dentro de un país ohacia países donde no están presentes. En Ar-gentina, este tipo de acciones son llevadas acabo por el ëÉå~ë~.

Monitoreo y control en arándano

Como ya se mencionó, las moscas de la frutatienen gran importancia cuarentenaria y lospaíses compradores libres de estos insectosimplementan/exigen medidas cuarentenariastales como tratamientos con bromuro de me-tilo o de frío que acortan la vida útil del pro-ducto o lo encarecen. En el caso particulardel arándano, la producción en fresco se ex-porta principalmente a los Estados Unidos,país que exige para moscas de la fruta trata-mientos con bromuro de metilo o de frío(ìëÇ~I=OMNR a y b). Para determinar si estostratamientos eran realmente necesarios, en elaño OMMO se iniciaron estudios de monitoreoen Tucumán con el objetivo de establecer elstatus de hospedante del arándano con res-pecto a las moscas de la fruta. No habiéndoseregistrado fruta infestada en los cultivos bajoestudio, surgió la inquietud por parte de losproductores de esa provincia de solicitar a ëÉJå~ë~ que elevara un pedido formal a ìëÇ~J~éÜáë para eliminar los tratamientos conbromuro de metilo.

Con la finalidad de analizar mejor esta si-tuación, en el año OMMP se realizó un convenioentre la Cámara Argentina de Productores deArándanos y otros Berries (Å~é~Ä), el áåí~, laEstación Experimental Obispo Colombres(ÉÉ~çÅ), la Universidad de Luján y el ëÉå~ë~.El objetivo de dicho convenio fue realizar es-tudios de monitoreo en los distintos sitios deproducción de arándanos de la Argentina queregistraran elevada población de moscas de lafruta y observar el comportamiento de lamosca del Mediterráneo y de la mosca sud-americana en ese cultivo. Ese mismo año, seiniciaron los trabajos de trampeo y muestreode frutos en las zonas de Tucumán, Luján(Buenos Aires) y Concordia (Entre Ríos).

En el año OMMR, en el muestreo de frutosen la zona de Concordia, se colectaron másde NMM kilos de fruta, de los cuales eclosiona-ron alrededor de UMM ejemplares adultos bienformados de ambas especies de moscas. Deesta forma, se confirmó que el arándano eshospedante tanto de la mosca del Mediterrá-neo como de la mosca sudamericana.



40

En el año OMMS, se iniciaron estudiossobre alternativas de control que incluyeran alas dos especies de moscas de la fruta y que seadecuaran a las características y exigencias delcultivo, para lo cual se decidió utilizar la me-todología de control por trampeo masivo(Bouvet & Vaccaro, OMMV a; Bouvet & Vac-caro, OMNO). Los ensayos fueron llevados acabo en lotes comerciales de arándano. Entodos los casos, se seleccionaron lotes y se di-vidieron en parcelas de ¼ o ½ ha, donde seinstalaron las trampas, dejando siempre unaparcela testigo (sin trampas) por lote. Lastrampas fueron ubicadas en los postes de as-persión antiheladas, a una altura de aproxi-madamente NITR m, se concentraron en elcentro de cada parcela para que los trata-mientos no interfieran entre si y se instalaronpor lo menos dos semanas antes de la cosecha.Se realizaron diferentes tratamientos detrampeo masivo, evaluando diferentes densi-dades, recipientes y productos. Se probarontres densidades de trampas, RM, SR y UM tram-pas/ha.

Inicialmente, se usaron las trampas McPhail® para los ensayos, pero debido a loscostos que implican, se probaron otros dosrecipientes más económicos, que consistieronen potes plásticos de color amarillo y blancocon perforaciones laterales para permitir elingreso de las moscas.

En los primeros ensayos, se utilizaron losproductos disponibles en el país: tarjeta só-lida embebida con cebo en base a aminas ali-fáticas y sales orgánicas de amonio (íã~)como atrayente alimenticio y vapona (îé~)como insecticida. Esta tecnología, posterior-mente, fue comparada con otro producto enbase a aminas heterocíclicas y con íã~ lí-quido.

bÑÉÅíáîáÇ~Ç=ÇÉ=ä~ë=íê~ãé~ë=

Vuelo de moscas adultas

En forma simultánea al trampeo masivo, seinstalaron trampas adicionales para conocerla fluctuación poblacional de las moscas de lafruta durante los ensayos en las distintas par-celas. Se utilizaron trampas del tipo Mc Phail®y Jackson®, reconocidas internacionalmentepara este fin. Las trampas se distribuyeron enlos sectores del establecimiento donde no serealizó el ensayo para evitar que interfirierancon la efectividad de los atrayentes del tram-peo masivo. A partir de las capturas en estastrampas, se calcularon los valores de ãíÇ y segraficaron.

Daños en fruta

Para determinar el nivel de infestación demoscas de la fruta sobre los arándanos, sema-nalmente se colectó fruta en cada parcela. Lamisma se llevó al laboratorio, se acondicionóen bandejas con arena y posteriormente se lasmantuvo en una cámara con temperaturacontrolada, para que eclosionaran los insec-tos. Luego se contabilizaron los ejemplares,diferenciando las especies y los sexos. Elmuestreo de fruta se realizó semanalmentedesde el inicio hasta el final de la campaña decosecha.



Algunas conclusiones

El trampeo convencional es una herramientaimportante para conocer el comportamientode las moscas de la fruta en el cultivo delarándano, permitiendo registrar las fluctua-ciones poblaciones de estos insectos y tomardecisiones sobre medidas de manejo y con-trol.

Las trampas utilizadas en el ensayo de-mostraron que las moscas de las frutas se dis-tribuyen dentro del lote de forma más omenos uniforme, no permaneciendo en lasborduras como sucede en otros cultivos talescomo los cítricos.

Por la estructura del cultivo de arándano,las trampas se encuentran muy expuestas a laradiación solar, lo que posiblemente produzcaun deterioro prematuro de los atrayentes.

Si bien, la fluctuación de la población delas moscas de la fruta varía según las condi-ciones climáticas de cada año y el lugar, engeneral, en el cultivo de arándano se comien-zan a registrar estas plagas a fines de octubre,observándose un pico poblacional en el mesde diciembre.

No se ha encontrado una densidad detrampas insecticida apropiada efectiva para elcultivo de arándano. Ésto podría estar indi-cando que, al contener atrayentes alimenticios,si las moscas ingresan al cultivo previamentealimentadas, primero ovipondrán y luegoirán a la trampa. Si este fuera el caso, la téc-nica del trampeo masivo debería complemen-tarse con otras herramientas de control.

Los mejores recipientes para utilizar en el

trampeo masivo son los de tipo Mc Phail®, yaque el sistema es efectivo y no permite quelas moscas se escapen.

Los atrayentes utilizados hasta el mo-mento no han sido totalmente efectivos, estose debe a que son alimenticios y no-específi-cos. Por otro lado, la mayoría de los cebos sedesarrollan para utilizarlos en el control de lamosca del Mediterráneo, sin considerar a lamosca sudamericana, la cual tiene mayor im-portancia cuarentenaria.

La técnica del trampeo masivo siguesiendo una de las pocas alternativas para elcontrol de moscas de la fruta en el cultivo dearándano en la Argentina, aunque no se ob-tiene el NMMB de los frutos libres de daño,puede reducir significativamente la poblaciónde esta plaga. Se debe continuar con los ensa-yos para poder ajustar mejor esta técnica enel cultivo.



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mä~Ö~ë=`ì~êÉåíÉå~êá~ë=ÇÉ=cêìí~äÉë=ÇÉ=ä~=oÉé∫ÄäáÅ~=^êÖÉåíáå~^î~åÅÉë=Éå=äçë=êÉëìäí~Ççë

Aleurocanthus woglumi Ashby (Mosca negra)

Peralta, C.

Introducción Nombre de la plaga y sinonimias Hospedantes Identificación morfológica Ciclo biológico Daños DispersiónDistribución en el país Distribución en otros países Monitoreo Manejo de la plagaControl químico Control biológicoBibliografía

Å~é∞íìäç=P

Cítricos

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47

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48

50

50

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53

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46

Å~é∞íìäç=P=J=Å∞íêáÅçë=J Aleurocanthus woglumi

Introducción

La mosca negra afecta aproximadamente aPMM plantas hospederas, pero en los cítricoses donde mayor densidad de población desa-rrolla. Es de origen asiático y fue descubiertaen Jamaica en NVNP y en Cuba en NVNS. Seestableció como plaga sobre los cítricos en elaño NVPQ en México y en NVPR, en ÉÉìì. Al-gunos autores sostienen que su origen y dis-tribución en el mundo, está estrechamenterelacionada con la introducción de plantas cí-tricas desde Asia; a partir de allí cada uno delos países afectados iniciaron, tarde o tem-prano, una lucha por bajar la población ba-sándose en el control biológico, dado que seestablece precisamente en frutales de la zonaurbana. La mayoría de los investigadorescoinciden que los focos se dan en lugarespróximos a cultivos de alto grado de controlquímico (Nguyen et al., NVVU).

En los cítricos, la importancia económicade la plaga radica en que al ser un insecto pi-cador-suctor, extrae nutrientes de la hoja.Cuando la densidad poblacional es elevada,las hojas se cubren de fumagina por la secre-ción de sustancias ricas en hidratos de car-bono que produce el insecto (Foto OU=a y b).Esta fumagina da una apariencia negra a lahoja e impide la respiración y la fotosíntesis.En ataques intensos, afecta a los frutos pro-vocando caída de los mismos y defoliación(Varela Fuentes et al., OMMT).

Nombre de la plaga y sinonimias

El nombre científico es Aleurocanthus woglumiAshby, NVNR (Hemiptera: Aleyrodidae). EnMéxico y Brasil se la conoce como moscaprieta de los cítricos (ãéÅ); en Paraguay y Ar-gentina es más conocida como mosca negrade los cítricos (ãåÅ) (Nguyen et al., NVVU;Lopez et al., OMNN).

Hospedantes

Hay más de PMM plantas citadas como hospe-dantes de la mosca negra, entre ellas las si-guientes: Palto (Persea americana Mill.), Álamo(Populus spp. L.), Morera (Morus spp. L.), Ar-disia (Ardisia swartz Swartz.), Banano (Musaspp. L.), Buxus (Buxussem pervirens Saba-miki), Café (Coffea arabica L.), Caju (Anacar-dium occidentale L.), Carambola (Averrhoacarambola L.), Chirimoya (Annona cherimolaMill.), Dama de noche (Cestrum nocturnumL.), Jengibre (Zingiber officinale Roscoe),Guayaba (Psidium guajava L.), Graviola (An-nona muricata L.), Grumixama (Eugenia brasi-liensis Lam.), Hibisco (Hibiscus rosasinensis L.),Jazmín-mango (Plumeria rubra L.), Lichi(Litchi chinensis Sonn.), Laurel (Laurus nobilisL.), Mamón o Papaya (Carica papaya L.),Mango (Mangifera indica L.), Maracujá (Passi-flora edulis Sims.), Membrillero (Cydoniaoblonga Mill.), Mirto (Murraya paniculata (L.)Jack.), Peral (Pyrus spp.), Piña (Annonas qua-mosa L.), Granada (Punica granatum L.),Rosal (Rosa spp.), Sapote (Manilkara zapotaL.) y Vid (Vitis vinifera L.) (ã~é~I=OMNN).

En México se cita una como hospedantede las especies de Sapindaceae, el mamoncillo(Melicoccus bijugatus Jacq. Syn. Melicocca bijugaL.) (Nguyen et al., NVVU; Varela et al., OMMT).

Teniendo en cuenta las evaluaciones reali-zadas en laboratorio sobre tres hospederosdiferentes, la mayor ovoposición y supervi-vencia de la fase inmadura de la mosca negrase observó en lima ácida Tahití, por tal mo-tivo esta puede ser considerada el hospederomás favorable para A. woglumi (Pena et al.,OMMV).



Identificación morfológica

Los estados de desarrollo de la especie son:Adulto: de color azul oscuro y grisáceo (Foto OV).Huevo: ovalado, amarillo-cremoso (Foto PM). Ninfa I: elongada negruzca, con S patas, con

O filamentos espinosos largos y varios máscortos.

Ninfa II: ovalada-convexa, de color marrónoscuro a pálido, sin patas, con filamentosen todas direcciones.

Ninfa III: ovalada, de color negro con man-chas verdosas redondeadas sobre la parteanterior del abdomen y filamentos bienvisibles.

Ninfa IV o Pupa: de forma ovalada, de colornegro brillante, las hembras miden NIOQ ×MITT mm y los machos, MIVV × MITM mm.Se encuentran rodeadas por un margenblanco de secreción serosa, con filamentosdorsales aun visibles sobre el dorso.

Ciclo biológico

Los factores más importantes que influyen enla duración del ciclo de vida de la moscanegra son humedad relativa ambiente y pre-cipitaciones (Jimenez & Maltby, NVSP; Del-gado, NVUO).

En general, el ciclo dura entre U y NS se-manas, según las condiciones climáticas rei-nantes. En Malasia se suceden R generacionespero pueden producirse S al año bajo condi-ciones óptimas de campo; en laboratorio elciclo de vida se completa en dos meses. EnMéxico, Cuba y Panamá el comportamientode la mosca negra es similar y el ciclo puededurar S semanas (Boscán de Martínez, NVUO).En Pakistán la duración de los diferentes es-tados de desarrollo de la mosca negra varíande acuerdo con los meses del año (Clausen &Berry, NVPO; Boscán de Martínez & Ángeles,NVTU; Boscán de Martínez, NVUO).

En un estudio realizado en Brasil, sobrecomportamiento de mosca negra en distintoshospederos cítricos y, en condiciones de la-boratorio con temperatura promedio y Üê deOTIQø`=œ=NINø` y TVIQ=œ=QISB arrojaron comoresultado que la duración promedio del ciclode A. woglumi desde huevo a adulto es de TMdías para tres hospederos observados (Citrussinensis, C. latifolia, Mangifera indica) (Pena etal., OMMV).

En Maracay, Venezuela, se realizaron es-tudios a campo bajo condiciones de tempera-tura promedio de ORø` y a una humedadrelativa de TPISSB, para observar la duracióndel ciclo biológico y comparar con los resul-tados de laboratorio. Los mismos demostra-ron que el ciclo biológico de la mosca negrano difiere con los obtenidos en laboratorio,es decir ocurre entre los RP a los NMP días. Sinembargo, si se pudieron demostrar que exis-ten diferencias significativas en el porcentajede individuos que desde la fase de huevo al-canzan el estado adulto: en laboratorio elQQB llega a estado adulto, sin embargo, sóloel NSIUUB de los huevos observados a campollegaron a adulto. Estas observaciones hacendeducir a que la diferencia puede estar condi-cionada por la presencia de depredadores yparasitoides, que inciden en la población dela plaga (Boscán de Martínez, NVUO).

Hay información sobre los grados díasque requiere la mosca negra para lograr unageneración; según estos autores el desarrollode esta plaga requiere VUT días grados ø` oUVKT días bajo las condiciones promedio deLeón (Nicaragua); de esta manera se cum-plen Q generaciones anuales completas. Losregistros de temperatura en dicha ciudad in-dican que la región acumula aproximada-mente NN días grados ø` diarios por encimadel umbral de desarrollo (NPKTø`) (Cano &Swezey, NVVO).


48


Daños

Durante el proceso de alimentación, nume-rosas ninfas de A. woglumi en el envés de lashojas extraen savia de la planta y segregangrandes cantidades de mielecilla. Las hojas,ramas y frutos son cubiertos por fumagina,de manera que las partes afectadas toman unaspecto sucio (Agrios, OMMN). Se retrasa elcrecimiento de las plantas, se dañan los brotesy a menudo los frutos no alcanzan el tamañoni el color habitual. En Brasil la presencia deA. woglumi redujo hasta un UMB la fructifica-ción (Pratt, NVTS).

Produce un retraso en el desarrollo de-bido a una inhibición de la actividad estomá-tica, la cual produce la disminución de larespiración y la fotosíntesis, la reducción deltamaño del fruto y la caída prematura de losmismos (Varela et al., OMMT).

Trabajos realizados en México dan cuentade que más del VMB de la reducción en laproducción sucede cuando las infestacionesexceden R a T ninfas/cm2/hoja (Gonçalves daSilva, OMNM). De RM a NMM ninfas por hoja sonnecesarias para reducir los niveles de nitró-geno por debajo de OIOB (Summy et al., NVUP).Entre R y NM ninfas por centímetro cuadradoproducen una deficiente fructificación en na-ranja (Cunha, OMMP).

Dispersión

La mosca negra de los cítricos es una plagacapaz de trasladarse entre QMM a SMM m porgeneración sin la ayuda del hombre y losadultos pueden distanciarse de su planta deorigen hasta los RM metros por día (Dowell &Fitzpatrick, NVTU).

La dispersión horizontal puede llegar hastalos NUT m por día (Oliveira et al., OMMN) y,según las estimaciones teóricas, la disemina-ción natural de la plaga puede alcanzar unavelocidad de OMM a PMM km por año (Correiaet al., OMNN).

Según estudios realizados en Brasil, laprincipal forma de dispersión de la moscanegra sucede de forma antrópica, a través deplatines o plantas ornamentales infestadosque son transportadas por el hombre. Pero

también puede ocurrir naturalmente a travésde hojas infestadas que son transportadas porel viento o por el crecimiento poblacional dela plaga (Silva, OMMR).

Distribución en el país

En la Argentina, fue detectada la presencia deesta plaga a fines de OMNM, afectando pomelosde un lote comercial en el Departamento Pi-lagá, en la provincia de Formosa. Tambiénfue encontrada afectando otros frutales talescomo mango, guayaba, chirimoya y banano,pero con niveles muy bajos de infestación.Posteriormente, se observaron ninfas en po-melos, limones, mandarinos en otras locali-dades del mismo Departamento y hacia finesdel año OMNN se detectaron focos aislados enlos Departamentos Pilcomayo, Formosa y Pi-rané (Sur). En la actualidad, la plaga se cir-cunscribe a los departamentos mencionados,en la provincia de Formosa; hasta OMNN no seregistraban focos de mosca negra en otrasprovincias (López et al., OMNN).

Distribución en otros países

A. woglumi ha estado presente por más de RMaños en Tamaulipas (México), causando dañoeconómico sólo en algunas temporadas. Apartir del OMMM, las poblaciones se han mante-nido altas en muchos huertos, llegando a estarinfestadas hasta ORMM ha en OMMQ; en el Estadode Nuevo León, México y en el de Texas,ÉÉìì, también se produjeron daños económi-cos en este período (Nguyen et al., NVVU).

En Brasil, A. woglumi fue hallada en el es-tado de Pará en OMMN, desde donde se exten-dió a otros estados hacia el sur del país(Correia et al., OMNN). En Paraguay, se regis-tró su presencia en los alrededores de Asun-ción a fines de OMMU (López et al., OMNN).

Monitoreo

Existen varios tipos de monitoreo que fueronadaptados según los diferentes países. Mé-xico, adoptó el sistema de muestreo estable-cido por ë~Ö~ê (NVVS) en su Guía Técnica(Reyes, NVUR).



Según esta metodología se seleccionan NMárboles al azar del lote, de los cuales se ex-traen NM hojas maduras/árbol que se colocanen bolsas de polietileno con papel de estrazay se conservan en heladera hasta su observa-ción en laboratorio. Del total, se toman OMhojas al azar y se establecen los niveles de in-festación de la mosca negra de acuerdo alpromedio de individuos por hoja. Se consideraque una densidad inferior a QR ninfas/hojacorresponde a una infestación leve, una den-sidad entre QR y TR individuos se determinacomo infestación media y una densidadmayor a TR, infestación fuerte.

Para el caso de Formosa, se siguió unametodología similar a la de Reyes (NVUR), conalgunas modificaciones: en la primera etapa,las muestras eran procesadas en laboratorio yse realizaba el recuento de espirales de hue-vos/hoja; huevos/espiral; número de ninfasen los estados NI=OI=PI y Q. A fin de facilitar latarea de recuento, a las hojas se las dividieronen cuatro cuadrantes y en cada uno se reali-zaba el recuento de los individuos. Estashojas se clasificaron según la superficie queen cada cuadrante cubrían las ninfas en elenvés de la hoja y, si presentaban o no fuma-gina; de esta manera y según el área que eraocupada por ninfas en cada cuadrante se esta-blecieron los niveles de daño a saber:

Nivel de daño 0: Ninguna ninfa, ni huevos entoda la hoja; N° ninfas totales MJQR.

Nivel de daño 1: una espiral de ninfas (áI=ááI=áááIáî) o una espiral de huevos en un solo

cuadrante o aislados, en un cuadrante dela hoja evaluada; åø ninfas totales QRJNMM.

Nivel de daño 2: OJP espirales de ninfas (áI=ááIáááI=áî) o OJP espirales de huevos en doscuadrantes o aislados que represente lasuperficie ocupada de dos cuadrantes de lahoja; åø ninfas totales NMMJOMM.

Nivel de daño 3: más de P espirales de ninfas(áI=ááI=áááI=áî) que represente la superficieocupada de P cuadrantes o el total de lahoja; åø ninfas totales [OMM.

Esta metodología facilita el monitoreo acampo (área urbana, rural), y presenta una buenarelación con el nivel de daño relativo (åW=MJP),aclarando además, si presenta fumagina.Cuando se observaban hojas con nivel dedaño N, se considera necesario el control.

Evaluaciones realizadas en la localidad deTres Lagunas, Formosa (Argentina), se ob-servaron los mayores daños en los meses deenero a marzo, luego fue disminuyendo leve-mente registrándose los valores más bajos enlos meses de noviembre y diciembre delmismo año (Fig. PKN).

De las observaciones in situ se obtuvierondatos sobre presencia y nivel de daño de mos-cas negras, según estadio en determinadasépocas y disposición en la planta (åI=ëI=ÉI=ç).

En algunos casos había hojas cuyo hazpresentaba fumagina y en el envés quedabanvestigios de ninfas; esto sucedía en lotes quetenían daños muy viejos, cuyas ninfas se ha-brían desprendido o habrían sido atacadaspor depredadores.

y=-0,108x + 3,5256R2= 0,6084

Figura 3.1. Fluctuación poblacional de mosca negra, A. woglumii Ashby, expresada según nivel de dañoobtenido a partir del número promedio de ninfas en NMM hojas muestreadas en Formosa.

Daño fuerte

Daño medio

Daño leve

Nive

l de

daño

4,003,753,503,253,002,752,502,252,001,751,501,251,000,750,500,250,00

ENE-FEB MAR ABRMAY-JUN

JUL-AGO AGOSEP-OCT OCT NOV DIC ENE

MAR-ABRMAY-JUN

Observaciones


50


Manejo de la plaga

La abundancia de hospedantes, tanto cultiva-dos como silvestres, facilita las reinfestaciones,por lo que el control químico resulta pocoefectivo y oneroso, especialmente cuando seutilizan ovicidas (Boscán de Martínez, NVUO).La tendencia a nivel mundial respecto de laforma de control de mosca negra es el ma-nejo integrado de la plaga, en el cual se prio-riza el control biológico y en última instanciael control químico. Es importante resaltarque el control químico es raramente utilizadomundialmente (Nguyen et al., OMMT).

Las aplicaciones de insecticidas reducen lapoblación de la plaga en forma temporaria yno son recomendables debido a la contami-nación al medio ambiente, los animales, losenemigos naturales y el propio hombre (Heu& Nagamine, OMMN).

Control químico

La mayoría de los autores consideran quedeben tenerse en cuenta el porcentaje de nin-fas parasitadas para tomar la decisión de apli-car o no. Para ello se debe observar la aberturaque deja la ninfa al emerger (Boscan de Mar-tínez y Ángeles, NVTU). Las ninfas parasitadasposeen una abertura circular característica.Además, se aconseja realizar su disección enel laboratorio y verificar si la misma perte-nece a la plaga o al parasitoide. En el primercaso la coloración del individuo inmaduro esroja y en el segundo, blanquecina.

En Texas, el criterio de muestreo se basaen el establecimiento de seis sitios por hectá-rea, tomando brotes jóvenes de tres árboles ytres hojas por cuadrante, con un tamaño demuestra de PS hojas por cada sitio (Meagheret al., NVVN).

En la provincia de Formosa, en el cultivode pomelo, los criterios para inicio de controlse basan en la presencia de hojas tiernas connivel de daño N (el ORB de la superficie de lahoja está ocupada por ninfas y huevos), ob-servadas en al menos OM árboles/ha y mues-treando al menos RM hojas por árbol teniendoen cuenta las cuatro orientaciones, brotesnuevos y hojas desarrolladas.

Existe una larga lista de productos quefueron utilizados para el control de moscasnegras de los cítricos, pero ninguno de ellosdio resultados satisfactorios; entre ellos semencionan: dimetoato + sulfato de cobre +clorpirifos + detergente; aceite maíz o soja +organofosforado + surfactante; citrolina +clorpirifos; dimetoato; cal; detergente; sulfatode cobre + detergente; azufre + malathion;malathion. Uno de los productos que fue re-comendado por su efectividad con algunasmoscas blancas, es el buprofezin, que actúacomo regulador de crecimiento y es reco-mendado para el control de insectos sucto-picadores y además se puede mezclar conBeauveria bassiana (Bals.) Vuill.

En Paraguay se ha demostrado que elcontrol químico de mosca negra puede lo-grarse utilizando un insecticida sistémico, unfungicida a base de cobre y un aceite mineral(Sánchez, OMNO).



Los agroquímicos utilizados en el controlde mosca negra, en Formosa fueron variosentre ellos aceite mineral, clorpirifós, aba-mectina e imidacloprid. Los resultados fue-ron poco satisfactorios; posteriormente serealizaron controles con buprofezin. Por otraparte, dado que la plaga se desarrolla en elenvés de la hoja se utilizaron pulverizadoras amanguera, de manera tal de direccionar lapulverización, en lugar de la pulverizadora aturbina que es utilizada para control fitosani-tario en cítricos de la zona.

En un lote comercial de cítricos de la pro-vincia de Formosa, se realizó el muestreosegún metodología establecida (Varela et al.,OMMT). Las aplicaciones debieron realizarsedado que el número de individuos de moscanegra por hoja tierna superaba el nivel crítico(Reyes, NVUR), observándose en promedio,más de UTIV individuos/hoja, con presenciade ninfas de los P estados, en el momento demayor densidad poblacional de la plaga(enero-febrero). Posteriormente, con la ocu-rrencia de algunas precipitaciones, se produjouna reducción importante de individuos,pero igualmente el promedio se mantuvo enniveles superiores al crítico (TRIT ninfas/hoja

tierna). Sólo después del inicio del invierno ycon elevada humedad relativa y lluvias, se re-dujo la presencia de ninfas en hojas lográn-dose un nivel inferior a QR individuos/hojatierna.

Se observó una relación entre el nivel dedaño de la plaga y el momento de observa-ción considerado (mes) (Fig. PKO).

En este trabajo no se observaron pupasparasitadas ni emergieron adultos parasitoides.

Para el control de la plaga se empleó: ci-permetrina, abamectina, aceite mineral, imi-dacloprid. Se utilizaron pulverizadoras aturbina y con manguera a fin de que la apli-cación sea localizada y dirigida hacia la parteinferior de la hoja. En este último caso la pul-verización resultó satisfactoria porque selogró la limpieza de las hojas afectadas confumagina.

Figura 3.2. Fluctuación poblacional de Aleurocanthus woglumii, expresada en número promedio de hojastiernas dañadas en pomelos de Formosa.

y=-0,23x + 4,48R2= 0,1447

NOV DICENE-FEB MAR ABR

MAY-JUNJUL-AGO AGO

SEP-OCT OCT NOV DIC ENE

Observaciones

MAR-ABRMAY-JUN

Prom

edio

de

hoja

s dañ

adas

12

10

8

6

4

2

0

-2


52


Control biológico

La mosca negra de los cítricos presenta diver-sos enemigos naturales, entre ellos se destacanlos microhimenópteros Amitus hesperidiumSilvestri (Insecta: Hymenoptera: Platygastri-dae), Eretmocerus serius (Hymenoptera: Aphe-linidae) y Encarsia opulenta Silvestri(Hymenoptera: Aphelinidae) (Nguyen et al.,NVUP).

Se ha demostrado que el control bioló-gico con Encarsia perplexa Huang y Polaszek(Hymenoptera: Aphelinidae) descrito enNVVU e introducido a México como Prospalte-lla opulenta en el siglo pasado, sigue funcio-nando si se dejan de aplicar plaguicidas en loslotes infestados (Smith, NVQR; Huang & Po-laszek, NVVU; Noyes, OMMN; Ruiz Cancino etal., OMMS).

Existen otros organismos importantes enel control biológico de A. woglumi, como losdepredadores Azya trinitatis Marshall, Pentiliacastanea Mulsant, Azya sp., Curinus sp., Del-phastus sp., Diomus sp. y Stethorus sp., proba-blemente Mantispilla viridis Walker; loscrisópidos Chrysopa sp. y Nodita sp. y los pa-rasitoides Cales sp. (Hymenoptera: Aphelini-dae), Prospaltella sp. y Eretmocerus sp. (Boscánde Martínez, NVTV).

El control microbiano es citado para loshongos entomopatógenos: Aegerita webberiFawcett y Aschersonia aleyrodis (Webber) (Bos-cán de Martínez et al., NVTV; Cano & Swezey,NVVO).

La provincia de Formosa y la EstaciónExperimental áåí~ Bella Vista realizaron unrelevamiento a fin de determinar la presenciade enemigos naturales asociados a la moscanegra. Se colectaron tres depredadores y unentomopatógeno.

Entre los depredadores se registró la pre-sencia de Nephaspis picturata Gordon (Cole-optera: Coccinellidae) determinado porMercedes Dode (Fundación Miguel Lillo –Inst. Entom., Tucumán). Esta especie se en-cuentra distribuída en Argentina (Tucumán)y Brasil (Minas Gerais, Matto Grosso do Sul).Los crisópidos hallados fueron Leucochrysa(Nodita) cruentata (Schneider) y Ceraeochrysatucumana (Navás) (Neuróptera: Chrysopidae)(Foto PN).

El hongo fue determinado como Ascherso-nia aleyrodis por R. Lecuona (áãóò~I=Ååá~Castelar). No se colectaron parasitoides.

En Brasil se señalaron otras especies decrisópidos y coccinélidos aunque el entomo-patógeno es común en ambos países. Estaactividad se continuará en las próximas tem-poradas (Caceres et al., OMNO).



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56fåëíáíìíç=k~Åáçå~ä=ÇÉ=qÉÅåçäçÖ∞~=^ÖêçéÉÅì~êá~


Pseudococcus viburni Signoret (Cochinilla harinosa)

Garrido, S.; Cichón, L.; Lago, J. y D. Vera

Introducción Nombre de la plaga y sinonimias Hospedantes Distribución en el país Distribución en otros países Daños e importancia económica Identificación morfológica Ciclo biológico y desarrollo estacional Monitoreo Cinta adhesiva bifaz Fajas de cartón corrugado Trampas de feromona sexual de P. viburni Arrastre por lavado Tratamientos cuarentenarios y/o de mitigación de

P. viburni para la exportación de frutas fres-cas con destino a México 1-Plan de trabajo para la exportación de

manzanas y peras de Argentina bajo unenfoque de sistemas EëãêF.

2-íÑç (cuarentena de fruta fresca en frío aM⁄` durante QO días)

Fumigación con fosfina Tratamiento en frío Identificación de especies de cochinillas harinosas

mediante técnicas moleculares Control biológico Control químico Momentos oportunos de control Bibliografía

Å~é∞íìäç=Q

Frutales de pepita

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58

Å~é∞íìäç=Q=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J Pseudococcus viburni

Introducción

Las cochinillas harinosas, también llamadoschanchitos blancos o piojos harinosos, o eninglés “obscure mealybug” (Hemíptera:Pseudococcidae) son insectos fitófagos pre-sentes en los frutales de pepita del Alto Vallede Río Negro y Neuquén (Foto PO) (Cichónet al., OMNNa). Esta familia cuenta con nume-rosas especies cosmopolitas; algunas, plagasde la agricultura, que afectan distintas partesde la planta y otras, con capacidad de trans-mitir diferentes virosis (Granara de Willink,OMMQ).

En la zona productora del Alto Valle deRío Negro y Neuquén se hallaron cinco es-pecies pertenecientes a la familia Pseudococ-cidae: Pseudococcus eriocerei Williams,Pseudococcus sorghiellus (Forbes), Phenacoccusperuvianus Granara de Willink, Pseudococcusmaritimus (Ehrhorn) y Pseudococcus viburni.Las mismas se encontraron sobre manzanos,perales, nogales y arbolado urbano (Granarade Willink et al., OMNN).

Se consideran plagas secundarias, sin em-bargo, es su estatus cuarentenario el que re-viste mayor importancia, como ocurre con laespecie Pseudococcus viburni (Signoret). Sudetección en un lote con destino a países im-portadores de fruta fresca argentina como elde México, aun en estados inmaduros, im-plica su rechazo (Cichón et al., OMMV). A esteinconveniente, se le suma la gran semejanzamorfológica entre las diferentes especies y lacapacidad de coexistir en un mismo hospe-dante (Granara de Willink et al., OMNN).


Pseudococcus viburni Signoret (Hemiptera:Pseudococcidae). Esta especie pertenece a lafamilia Pseudococcidae del órden Hemiptera(Sensu stricto, anteriormente Homóptera). Elgénero Pseudococcus Westwood (del griego,Pseudo= falso y Kokkos = semilla), abarca nu-merosas especies, todas fitófagas, muy simila-res morfológicamente. La especie P. viburnial igual que su género, sufrió varias sinoni-mias a lo largo de los años, las cuales se deta-llan a continuación (Ben-Dov, OMNO):

Dactylopius indicus Signoret, NUTRDactylopius viburni Signoret, NUTRDactylopius affinis Maskell, NUVQPseudococcus viburni Fernald, NVMPPseudococcus affinis Fernald, NVMPPseudococcus obscurus Essig, NVMVPseudococcus capensis Brain, NVNOPseudococcus nicotianae Leonardi, NVNPPseudococcus longispinus latipes Green, NVNTPseudococcus fathyi Bodenheimer, NVQQPseudococcus malacearum Ferris, NVRMPseudococcus affinis Ben-Dov, NVVQPseudococcus indicus Ben-Dov, NVVQPseudococcus viburni Ben-Dov, NVVQPseudococcus viburni Uygun et al., NVVUPseudococcus viburni Ripa & Rojas, OMMU

Hospedantes

En Argentina, la especie P. viburni fue halladaen diversos cultivos como alfalfa, soja, acelgay otras especies ornamentales. Mas tarde sehalló sobre distintas variedades de perales,vid, membrillero, frutales de carozo, man-zano, especies forestales, malezas y nogalescomerciales (Junglans regia cv. Chandler)(Dapoto et al., NVVS; Granara de Willink,OMMQ; Giganti et al.; OMMT; Cichón et al.,OMMV; Granara de Willink et al., OMNN).


P. viburni fue hallada por vez primera en Ar-gentina sobre Glycine max y Laurus cerosus(Dapoto et al., OMNN; Ben-Dov, OMNO). Luegode su detección sobre perales de la ciudad deAllen (Río Negro), la especie fue hallada enlocalidades cercanas, como Cipolletti, Ing.Huergo, Campo Grande, Cinco Saltos yCervantes y las localidades de San Patriciodel Chañar y Centenario de la provincia deNeuquén (Dapoto et al., OMNN). La presenciade esta especie también fue registrada en lalocalidad de Choele Choel en el Valle Mediodel río Negro, donde se encontraron ejem-plares sobre nogales (Cichón et al., OMMV;Granara de Willink et al., OMNN).




Debido a su carácter cosmopolita, P. viburniha sido hallada en diversos lugares del mundo,asociada a diferentes hospedantes. Se enume-ran a continuación, algunos países en los cua-les la especie ha sido asociada a cultivosagrícolas y frutícolas (Ben-Dov, OMNO):Región Afrotropical: Sud ÁfricaRegión Australiana: región sur, región este.Región Neártica: Canadá, México, ÉÉìì: Was-

hington, Oregon, Utah.Región Neotropical: Bolivia, Brasil, Chile; Uru-

guay, Venezuela, Cuba.Región Oriental: Indonesia, Filipinas.Región Paleártica: Francia, Alemania, Hun-

gría, Italia.

Del listado anterior es importante desta-car la presencia de P. viburni en México (re-gión Neártica). Esta especie fue citada endicho país por Gimpel & Miller en NVVS yactualmente se lista en el catálogo de Pseudo-coccidos del ìëÇ~ (Ben-Dov, OMNO). A pesarde ello, México, considera a esta especieplaga cuarentenaria, por lo cual exige en susprotocolos de exportación, que los lotes defruta fresca importada estén libres de P. vi-burni. Esto implica un gran esfuerzo para lospaíses exportadores, ya que deben cumplircon exigentes programas de mitigación deriesgo y/o sistemas cuarentenarios de altoscostos para los países productores.

Daños e importancia económica

La alimentación directa de P. viburni no pro-duce un daño económico directo a las plantas(Giganti et al., OMMT) pero afecta la calidad dela fruta por depósito de melado con posteriorpresencia de fumaginas y hormigas. La pre-sencia de estas últimas impide la acción de losenemigos naturales, produciéndose verdade-ras simbiosis hormigas-cochinillas (Wagneret al., OMMQ; González, OMMS).

Las cochinillas harinosas se alimentan di-rectamente del floema de las plantas en laparte aérea (ramas, hojas, frutos, etc.), produ-ciendo un debilitamiento de la planta por lasucción de savia (Wagner et al., OMMQ). Su im-

plicancia en la transmisión de los virus no hasido comprobada aún en los frutales del AltoValle de Río Negro y Neuquén.

Cuando los frutos están desarrollados lasninfas y las hembras adultas se ubican debajode los sépalos o, menos frecuentemente, en labase del pedúnculo o en el lugar de contactocon otro fruto (Giganti et al., OMMT). Sin em-bargo, los estados móviles de la plaga, puedeningresar hacia zonas más crípticas del frutocomo la carpelar, sobre todo en aquellas va-riedades de peras y manzanas de cáliz abierto(Beurré D´Anjou, Red Delicious, etc.) (Foto PP).

En ataques intensos, al igual que lo queocurre con el daño de pulgón negro o psílidodel peral, la planta reacciona particularmentea nivel de la epidermis del fruto, observán-dose pequeñas manchas necróticas de colornegro en el área afectada.

La importancia de las cochinillas tambiénse debe a algunos aspectos de su comporta-miento que dificultan su control. Entre éstosse encuentran, el largo período de incubaciónde los huevos, la escasa actividad alimentariade los estados juveniles y la natural toleranciaque el insecto ofrece a las aplicaciones de in-secticidas ya sea por su hábito críptico o porla protección cerosa que recubre los estadosmóviles y las masas de huevos (González etal., OMMN).

Sin embargo, la importancia económicade las cochinillas harinosas no se debe aldaño directo y /o a las dificultades para sumanejo sanitario, como se mencionó ante-riormente, sino al estatus cuarentenario dealgunas especies en países importadores defrutas frescas argentinas.

Identificación morfológica

P. viburni es una especie de gran dimorfismosexual, con metamorfosis incompleta propia-mente dicha en hembras. De los huevos emer-gen ninfas (estadios áI=áá y ááá) que se desarrollanhasta llegar a la hembra adulta. En los machos,en lugar de continuar el desarrollo de ninfa ááa ááá, éstas se transforman en prepupas yluego en pseudopupas envueltas en capullos,de los cuales emergen los machos alados.


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Hembra adulta. Áptera. Cuerpo de color ro-sado, ovoide, de PJQ mm de longitud, sinbanda dorsal oscura, recubierto total-mente por una secreción cerosa pulveru-lenta blanca, que otorga al cuerpo uncolor blanco grisáceo (Foto PQ). Posee NTpares de filamentos laterales cortos, biendefinidos. Los filamentos caudales tienenun largo que puede ser igual o menor a lamitad del cuerpo. Las secreciones ostiola-res, comunes en los pseudococcidos, sonproducidas en forma de gota junto alcuerpo de las hembras, cuando éstas sonmolestadas. Estas secreciones presentandiferentes colores dependiendo de la es-pecie. En P. viburni, esta secreción ostio-lar es de color blanco perlada (Gonzálezet al., OMMN; González & Volosky, OMMQ;Wagner et al., OMMQ; Mercadal Valenzuela,OMMU).

Huevos. Se ubican dentro de sacos ovígeros yconstituyen la forma invernante de estaespecie ovípara. Son de color amarilloanaranjado-salmón, de entre MIUJNmm,ovoides, colocados de PMMJQMM unidadesjunto a la hembra (Foto PR). Antes de co-menzar el proceso de ovipostura, la hem-bra emite numerosos y finos filamentos decera que se van acumulando en el extremocaudal de su cuerpo. Durante el procesode ovipostura esta deja de alimentarse, seretrae progresivamente, hasta quedar re-ducida en tamaño y posteriormente morir(Cichón et al., NVVS; González et al., 2001;González & Volosky, OMMQ; Mercadal Va-lenzuela, OMMU).

Ninfas. Las ninfas migratorias de primer esta-dio o “crawlers” son pequeñas de N mm delongitud (Dapoto et al., OMNN), con trespares de patas, de color amarillo a rosadoy no poseen la cerosidad característica delos adultos (Foto PS). El O⁄ y P⁄ estadioninfal de las hembras también son móvi-les, son más parecidas a las hembras adul-tas, diferenciándose por el tamaño ymadurez sexual (Cichón et al., 1996; Gon-zález et al., OMMN; González & Volosky,OMMQ; Mercadal Valenzuela, OMMU). Comose mencionó anteriormente, en los ma-chos hay sólo dos estadios ninfales, que

luego se transforman en prepupas y pseu-dopupas o pupoides, antes de la emergen-cia del macho adulto.

Macho adulto. Alados. Notablemente más pe-queños que las hembras, con escasa ceraen el cuerpo. Poseen tres partes bien dife-renciadas: cabeza, tórax y abdomen. Lasantenas están formadas por NM antenitos,y no presentan aparato bucal. Las alas delprimer par son membranosas de venaciónsimple y las del segundo par se encuen-tran transformadas en hámulo-halterios.El noveno segmento abdominal presentala genitalia con un estuche penial, que seobserva como dos apéndices característi-cos de forma más o menos triangular(Foto PT). No se alimentan y viven unospocos días, tiempo en el que fecundan alas hembras (Granara de Willink, NVVM;Wagner et al., OMMQ; Rojas, OMMR; Granarade Willink, OMMS).

Ciclo biológico y desarrollo estacional

P. viburni es una especie de hábitos gregarios,localizándose en los lugares más protegidosde la planta huésped, invernando al estado dehuevo. Como se mencionó anteriormente, delos huevos emergen ninfas (estadios áI=áá). Enel caso de las hembras, las ninfas áá mudan aninfas ááá, las cuales se desarrollan hasta llegaral estado adulto. En los machos, luego del es-tadio de ninfa áá, se transforman en prepupasy luego en pseudopupas, recubiertas por ca-pullos, de las cuales emergen los adultos.

En el Alto Valle de Río Negro y Neu-quén, P. viburni cumple con tres generacionesanuales (Giganti et al., OMMT), considerándoseel movimiento de las ninfas á, luego de la in-vernación, el inicio de la Nø generación y losmovimientos de las ninfas á como el inicio decada generación.



Nø generación. Según las condiciones ambien-tales, las ninfas móviles de la primera ge-neración o “crawler” inician su actividadentre agosto y septiembre, permanecenantes de migrar unos días en los sacos oví-geros y luego ascienden a la base de lospecíolos, ramas y brotes tiernos (Cichónet al., OMMV). Esta migración ocurriríahasta la caída de pétalos, momento a par-tir del cual se fijan para alimentarse de lasavia de la planta (Cichón et al., NVVS). Laaparición de adultos y las primeras cópu-las se producen durante todo el mes deoctubre.

Oø generación. Las ninfas móviles de la Oø ge-neración inician su migración en noviem-bre, otra vez hacia la corteza del tronco yramas principales, donde se desarrollanhasta adultos y copulan durante la mayo-ría del mes de diciembre.

Pø generación. Los huevos colocados por losadultos de Oø generación, en diciembre-enero, dan origen a las ninfas de la últimageneración durante casi todo el mes deenero, las cuales se desarrollan hastaadulto, copulan y desovan a partir de lamitad de febrero, siendo este el estado in-vernante de la plaga.

En febrero, durante la cosecha de algunasvariedades de peras y manzanas, las coloniasestán formadas por hembras adultas, distintosestados ninfales y masas de huevos, en la zonadel cáliz de los frutos (Giganti et al., OMMT).

Monitoreo

Existen distintos tipos de monitoreo de co-chinillas harinosas y/o herramientas de de-tección de la plaga. Sin embargo, cuando setrata de P. viburni, al ser una plaga cuarente-naria, no se consideran umbrales de dañoeconómico (ìÇÉ), su presencia, es suficientepara determinar una acción de control.

Las técnicas de monitoreo evaluadas en laregión del Alto Valle de Río Negro y Neu-quén, se describen a continuación:

Cinta adhesiva bifaz. Esta técnica permite de-tectar el movimiento de la especie y la efi-

cacia de los tratamientos, siendo poco efi-ciente para determinar densidad poblacio-nal. Consiste en colocar una cinta adhesivabifaz sobre dardos y ramilletes de lasplantas, un poco antes de la brotación, lascuales se retiran y colocan nuevas una vezpor semana (Foto PU). Las cintas colecta-das se transportan hasta el laboratorio olugar adecuado para observarlas con lupaestereoscópica o de OM aumentos comomínimo, donde se observa N centímetrode cinta, contabilizándose las ninfas mi-gratorias adheridas a la misma.

Hasta el momento, y en las condicio-nes agroclimáticas de la región del AltoValle de Río Negro y Neuquén, la infor-mación que brinda esta técnica, fue pocoprecisa debido entre otras cosas, al polvoque se deposita sobre su superficie, acausa de los fuertes vientos predominan-tes en la región sobre todo en primavera-verano (áåí~JÖíòI=NVVV). Además existendistintas calidades de cintas disponiblescomercialmente que afectan las adheren-cia de las ninfas móviles.

Fajas de cartón corrugado. Esta técnica permiteconocer los hábitos migratorios y sitios deagregación de las cochinillas (González &Voloscky, OMMQ). Se deben colocar alrede-dor de OM fajas de cartón corrugado porcuadro/hectárea, ubicándose las mismasen ramas madres de más de tres años o enla base del tronco, en forma simple, con laparte acanalada sobre el tronco (CastroDa Costa, OMNM). Con el objetivo de ge-nerar savia y aumentar la atracción de lascochinillas hacia dichas trampas, se puedeefectuar una incisión de O cm de largo y Omm de profundidad sobre el tronco inme-diatamente antes de colocar los cartonescorrugados (Castro de Costa, OMNM; Ci-chón & Garrido, OMNM; Wagner et al.,OMMQ).

Para la colecta de cochinillas harino-sas, los cartones corrugados colocados enforma simple han demostrado capturarmás cochinillas que los colocados enforma doble, como se realiza para la co-lecta de larvas de Cydia pomonella. En esteúltimo caso, la faja de cartón corrugado se


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dobla a la mitad, de modo que la parteacanalada del cartón queda al medio y laparte lisa quedan sobre el tronco. Sin em-bargo, dado que colocadas en forma doblecaptura también larvas de carpocapsa, serecomienda usar estas últimas como mé-todo de captura de doble propósito: co-chinillas y carpocapsa (Foto PV=a y b).

Se recomienda su colocación a iniciodel mes de febrero para extraerse duranteel mes de junio y observar la presencia/ausencia de cualquiera de los estados de laespecie y sus enemigos naturales. Estopermitirá ajustar los planes sanitarios parala temporada siguiente.

En la región de la norpatagonia, estemétodo no ha sido eficiente para determi-nar los momentos oportunos de controlde la plaga.

Trampas de feromona sexual de P. viburni. Lasíntesis química de la feromona sexual delas hembras de P. viburni, un monoterpe-noide (Millar & Midland, OMMT) permitedisponer de una nueva herramienta para

el monitoreo de la plaga en forma especí-fica. Aunque en la actualidad se encuentrabajo registro en la Argentina, desde el añoOMMV, el áåí~=Ó=ÉÉ~ Alto Valle dispone decebos çãÄ con trampas Pherocon® VTrap (Trece Inc. Å~) para uso experimen-tal. Estos cebos, contienen MIOR mg de(OIPIQIQ-tetramethylcyclopentyl) methylacetate, se cambian cada PM días y se ubi-can en el extremo superior de la trampa.Las mismas son de color blanco, y estánrecubiertas por un material adhesivo.Tiene una superficie de OMP cm2, con unacuadricula de NOM cuadrados de NISV cm2

cada uno para facilitar su lectura (Foto QM). Las trampas resultaron muy eficaces

como herramienta de monitoreo lográn-dose asociar las curvas de vuelos con eldesarrollo estacional de la plaga, comopuede observarse en la figura QKN.

Este tipo de curvas es muy útil ade-más, para determinar los momentos opor-tunos de control en base a la densidadpoblacional.

Figura 4.1. Capturas de machos de P. viburni en trampas de feromona sexual en montes de frutales de pe-pita del Alto Valle de Río Negro y Neuquén. Temporada OMNMJOMNN.

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Chacra 1 Chacra 2 Chacra 3

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e m

acho

s cap

tura

dos



Arrastre por lavado. Este método, empleadoespecíficamente para tareas de investiga-ción, permite detectar ninfas de N⁄ estadíoy huevos. Consiste en colectar hojas uotras estructuras vegetales, y filtrarlas conagua jabonosa por tamices específicos(Castro Da Costa, OMNM). Se realiza en la-boratorio, y requiere de protocolos espe-cíficos para cada especie y cultivohospedante.

Tratamientos cuarentenarios y/o de miti-gación de P. viburni para la exportaciónde frutas frescas con destino a México

Desde la apertura del mercado mexicano enNVVV, el volumen exportado partió de PMKRRTcajas con una tendencia en aumento progre-sivo y sostenido, hasta superar el millón en elOMMT, momento en al cual la exportacióndecae abruptamente debido a la detección deP. viburni, en las inspecciones de frutas paraexportación (Fig. QKO). Dicha especie estabadeclarada de interés cuarentenario por dichopaís (Copexeu, OMNP).

A pesar de esta problemática, Argentinaexportó a México en OMNN, SKSPTIMS tonela-das de peras. Este es el segundo país importa-dor de peras argentinas, luego de EstadosUnidos, dentro del mercado americano. Esteúltimo ocupa el tercer lugar mundial, siendolos primeros puestos para los mercados euro-peo y el Mercosur (Brasil principalmente)(ëÉå~ë~I=OMNO).

Figura 4.2. Exportación a México de peras y manzanas argentinas en cajas (Por gentileza y autorizaciónde Copexeu).

Nº d

e ca

jas e

xpor

tada

s


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Las exportaciones a México deben cumplircon determinados requisitos que se encuen-tran enmarcados en dos planes de trabajo oprocedimientos que se desarrollan a conti-nuación.

1-Plan de trabajo para la exportación de manza-nas y peras de Argentina, bajo un enfoque desistemas (ëãê). Este sistema prevé inspec-ciones conjunta entre autoridades del ëÉJå~ë~ y México de las ìãáÛs (UnidadMínima de Identificación) a exportar, du-rante las etapas de campo y empaque.

Ante una primera detección de cual-quier estado vivo de plaga cuarentenaria(Fig. QKP) (Cydia molesta, Ceratitis capitata,Anastrepha fraterculus o P. viburni), se re-chaza la ìãá/variedad para su exportacióninmediata, y se la deriva a la otra medidade mitigación que es el tratamiento cua-rentenario de frío (íÑç). Luego de estaetapa, si se produce una nueva detecciónfinalmente el lote es rechazado, en casocontrario, está en condiciones de expor-tarse.

2- íÑç (cuarentena de fruta fresca en frío a M⁄`durante QO días). En este caso, la fruta condestino a México, no pasa por inspeccio-nes previas de campo, empaque, etc., sinoque se cumple con la cuarentena directa-mente en frío antes de su envío. Luego definalizada la cuarentena se inspecciona ellote y en caso de detectarse una plaga cua-rentenaria viva, la cámara es rechazada.

El tratamiento de fosfina es solamentepara cuando se encuentra P. viburni en elplan de trabajo bajo enfoque de ëãê. Sibien el uso de fosfina está autorizado en elPlan de Trabajo, el cual es firmado por lasdos Organizaciones Nacionales de Pro-tección Fitosanitarias de México y Argen-tina, al momento de su utilización, Méxicoexige a la Argentina un ProcedimientoOperativo de Aplicación del Tratamiento.Este fue desarrollado y entregado peroaún falta aprobar por la ÇÖëî de ëÉå~ëáÅ~.Por lo que en la actualidad solo se reali-zan los tratamientos de íÑç (Rossi, com.personal).

Fumigación con fosfina

El uso de la fosfina principalmente para con-trol de plagas de granos almacenados es co-nocido hace bastante tiempo en Argentina yes además utilizado en otros países como mé-todo cuarentenario para el tratamiento defruta de exportación. En estos casos las fumi-gaciones con fosfina se encuentran enmarca-das en protocolos de exportación entre lospaíses involucrados, como es el caso del in-tercambio comercial de Chile con México eIrán.

El gas fosfina (éÜ3) es conocido desdehace mas de TM años por su eficacia en el con-trol de insectos, y su rápida degradación en elambiente (Horn & Horn, OMMV).

En el año OMMUJOMMV, el áåí~=Ó=ÉÉ~ AltoValle, comenzó a evaluar la efectividad de lafosfina, sobre huevos de P. viburni, que es elestado mas resistente de la plaga (Foto QN).El análisis se realizó a M⁄`, sobre perasD´Anjou a diferentes tiempos de exposición,resultando las combinaciones, NMMM ppm-OQhs; NMMM ppm-QU hs y NMMM ppm-TO hs, efec-tivas como métodos de mitigación de riesgo(Cichón et al., OMNNb).

El plan de trabajo Argentina-México parala exportación de peras y manzanas con des-tino a México, establece que lotes con pre-sencia de P. viburni, pueden someterse afumigación con fosfina, siendo la concentra-ción mínima autorizada de NMMM ppm, du-rante OQ horas, con una temperatura de pulpade M⁄`. La otra alternativa propuesta en elplan de trabajo, indica que se puede dismi-nuir el tiempo de exposición a S hs, subiendola temperatura de pulpa a NS⁄`.



Figura 4.3. Protocolo para exportación de fruta fresca argentina con destino a México. Ref. (*1) Plaga Cuarentenaria Viva: Pseudococcus viburni, Cydia molesta, Anastrepha fraterculus y Ceratitis capitata.

(*2) Procedimiento operativo desarrollado y entregado, falta aprobar por las autoridades mexicanas. ëãê: Sistema de Mitigación de riesgo bajo un enfoque de sistemas. íÑç: Tratamiento cuarentenario de frío. ìãás: Unidad mínima de identificación para la exportación. Lote: Puede estar conformado por hasta OR=ìãás. Cá-

mara: Puede estar conformada por más de un lote, y es el espacio físico en el cual se lleva a cabo la cuarentena.


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Tratamiento en frío

El tratamiento cuarentenario de frío por QOdías a M⁄` es una medida fitosanitaria utili-zada para mitigar el riesgo de presencia de C.molesta y P. viburni en fruta fresca de peras ar-gentinas con destino a mercados importado-res como el de México. A pesar de estapráctica, se realizan un número elevado derechazos durante las fiscalizaciones aduaneraspor presencia de ovoposiciones viables. Hoy& Whiting (NVVT) determinaron que la cua-rentena de frío controla efectivamente ninfasy hembras adultas de P. viburni sin especificarel efecto sobre los huevos. Esta informaciónes fundamental debido a que al momento decosecha de las cultivares B. D´Anjou y Pac-kham´s en el Alto Valle de Río Negro y Neu-quén se encuentran presentes todos losestados de desarrollo (Cichón et al., OMNM).

En este sentido, el áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle,evaluó el efecto del frío sobre huevos de P. vi-burni, a diferentes tiempos de exposición(Foto QO=a y b). Los resultados obtenidos de-mostraron que la exposición del estado másresistentes (huevo) de P. viburni, expuesto aMø` por QO días, asegura una eficacia del con-trol del VTIMRB para un VRB de confianza.De esta manera se concluyó que el trata-miento de frío es una herramienta eficientecomo método de mitigación de riesgo de P.viburni para los mercados que poseen esta es-pecie en los listados de plagas cuarentenarias(Cichón et al., OMNM).

Estos resultados avalan el plan de trabajopara la exportación de peras y manzanas condestino a México, que contempla que los lotescon primera detección de la plaga P. viburniviva, deben ser sometidos a QO días continuosa MIM⁄`=HLJ=MIR, siguiendo los requisitos esta-blecidos en el plan de trabajo de tratamientocuarentenario en frío (ëÉå~ë~, OMNO).

Identificación de especies de cochinillasharinosas mediante técnicas moleculares

Como se mencionó anteriormente, la detec-ción de P. viburni durante la fiscalizaciónaduanera, aún en los estados inmaduros, pro-voca rechazos en la exportación a algunos pa-íses importadores como el de México.

Para la identificación de especies de Cóc-cidos y Pseudococcidos, existen varios méto-dos, que incluyen realizar preparacionesmicroscópicas. Éstos métodos pueden variar,según especie de cochinilla de la cual se trate,sin embargo, todos requieren de varios pasos,que pueden demandar hasta NR días (Mier-Durante & Pérez Hidalgo, OMMQ).

Este hecho genera inconvenientes duranteel proceso de exportación de frutas frescas,por ello es fundamental disminuir los tiem-pos de identificación de especie sobre todo,las de importancia cuarentenaria.

En este sentido, el áåí~=Ó=ÉÉ~ Alto Valle,trabajó en la determinación específica de P.viburni, mediante técnicas moleculares, la de-terminación de los umbrales de detección(Foto QP) y un método rápido de extracciónde ~Çå (Vera et al., OMNO).

El proceso de identificación mediante estatécnica fue de QU horas, siendo el límite mí-nimo para la detección (cantidad mínima deindividuos por muestra necesaria para que elmétodo funcione) de un huevo, ninfa oadulto. Con el método evaluado, es posibleidentificar cualquiera de las siguientes espe-cies: P. viburni, P. calceriolae, P. similans y P.longispinus. Sin embargo, en los muestreos re-alizados en frutas de pepita de la Norpatago-nia solamente se detectó la presencia de P.viburni (Vera et al., OMNO).



Control biológico

En la actualidad es fundamental disponer deherramientas alternativas y/o complementa-rias de control como es el uso de enemigosnaturales. En la región del Alto Valle de RíoNegro, la posibilidad de usar bioinsumos im-portados para el control biológico de plagas,está limitada por tratarse de especies exóticasque requieren de diversos trámites de apro-bación y cuarentena del material para ser in-troducidos al país (Aquino et al., OMNN).

En este sentido, el áåí~=Ó=ÉÉ~ Alto Valleen conjunto con la Facultad de Ciencias Na-turales y Museo de La Plata, Centro deDiagnóstico de Plagas Vegetales de Califor-nia (ÉÉìì) y la Universidad Complutense deMadrid (España) trabajaron en la búsqueda eidentificación de enemigos naturales autócto-nos de P. viburni.

Se halló por primera vez para la zona delAlto Valle de Río Negro, Acerophagus griseus(De Santis, NVQT) (Hymenoptera: Encyrtidae)parasitando naturalmente a P. viburni enmontes de manejo de plagas convencional yorgánico (Foto QQ). Este hecho, permitió in-ferir que la especie no es directamente afec-tada por los insecticidas utilizadosactualmente. Esta característica le otorga unaventaja adaptativa a A. griseus respecto deotras especies exóticas que no sólo debencumplimentar con los tiempos cuarentenariospara su importación, según requieren las nor-mas de importación de enemigos naturales,sino que además deben adaptarse a las carac-terísticas de los agroecosistemas locales(Aquino et al., OMNN).

Entre los depredadores hallados se identi-ficó una especie de mosca Leucopis (Xenoleuco-pis) cilifemur Malloch, NVPP (Diptera:Chamameyiidae) cuyas larvas se alimentan dehuevos de P. viburni (Foto QR). Esta especiesolo se encontró en ambientes urbanos y sinintervención de insecticidas, lo que indicaríacierta sensibilidad de la especie al uso de losmismos y a las bajas temperaturas que se ob-servan en los ambientes rurales. Sin embargo,su importancia no debe ser desestimada y porel contrario debiera ser favorecida mediantetécnicas de manejo que aseguren preservar

esos sitios como reservorios naturales de laespecie (Garrido et al., OMNP).

Se implementaron además técnicas demanejo del hábitat integradas a técnicas decontrol biológico inundativo en el que se li-beraron huevos de Chrysoperla externa (Neu-roptera: Chrysopidae) (Foto QS) en montesde producción orgánica y convencional deperales. En estos sitios se aplicaron suple-mentos alimenticios al follaje con el fin de re-tener y atraer las especies liberadas (Foto QT).Curiosamente, en el estudio se detectarondos especies diferentes de Hemerobidae: He-merobius bolivari Banks, NVNM y Nomerobiuscuspidatus Oswald, NVVM, en un número nuncahallado hasta el momento, lo cual permite in-ferir que el suplemento aplicado al follaje sir-vió como atrayente para estas especies (datosaun no publicados). Posteriormente, los adul-tos recolectados fueron alimentados en con-diciones de laboratorio con huevos de P.viburni, dieta que les permitió copular y des-ovar exitosamente.

El control biológico de chanchitos blan-cos mediante parasitoides, depredadores yhongos entomopatógenos está bastante desa-rrollado en Chile, existiendo en la actualidadvarias empresas que comercializan Encyrtidae,Chrysopidae, Hemerobydae, Coccinellidae yhongos entomopatógenos en presentacionescomerciales que facilitan su liberación y apli-cación en huertos comerciales.

Si bien es este el camino a seguir para laregión del Alto Valle de Río Negro y Neu-quén, es fundamental realizar los máximosesfuerzos por identificar enemigos naturalesautóctonos, criarlos masivamente y evaluar sueficacia, para disminuir al mínimo posible laintroducción de especies exóticas. La impor-tación de enemigos naturales, en el caso delcontrol de plagas secundarias como la cochi-nilla harinosa, se vería afectada por el pe-riodo de adaptación que estas especiesdeberían realizar a los agroecosistemas loca-les, pero sobre todo por el riesgo de intro-ducción de organismos indeseables que todaimportación puede acarrear, mas allá de quese cumplan con los requisitos de cuarentenaobligatorio.


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La importación de enemigos naturales de-biera reservarse solamente para el control deplagas claves y exóticas, como es el caso deCydia pomonella (Lepidoptera: Tortricidae) enfrutales de pepita. El carácter exótico de estaespecie, implica que los enemigos naturalesmás eficientes, deberían encontrarse en lossitios de origen de la misma. Por este motivo,en estos casos la importación es justificada.

Control químico

Hasta el OMMU, en la región del Alto Valle nose realizaban aplicaciones específicas para elcontrol de P. viburni. La necesidad de cum-plimentar con las exigencias impuestas por elmercado mejicano determinó que rápidamentese llevaran a cabo estudios para establecer losmomentos oportunos de control de la plaga yla eficacia de los insecticidas disponibles co-mercialmente en la región (Cichón et al.,OMMV).En la tabla QKN se presentan los insecticidasestudiados que mostraron una buena eficaciade control de cochinilla harinosa.

Tabla 4.1. Insecticidas evaluados para el control de P. viburni en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

Producto Comercial Principio activo Concentración Clasificación químicaModo de acción

Dimetoato EC + Aceite de verano dimetoato 100 cc/hl + 1%Organofosforado

Inhibidor de la AchE

Lupara EW + Aceite de verano mercaptotion 250 cc/hl + 1%Organofosforado


Lorsban 75WG + Aceite de verano clorpirifos 75-85 g/hl + 1%Organofosforado


Supracid EC.+ Silwet metidation 100 cc/hl + 20 cc/hlOrganofosforado


Assail 70% WP + Silwet acetamiprid 5 g/hl + 20 cc/hlNeonicotinoide

Agonista receptor de AchE

Calypso 48SC + Silwet tiacloprid 30 cc/hl + 20 cc/hlNeonicotinoide


Voliam Flexi (10+20) SC clorantraniliprole + tiametoxan 35 cc/hlDiamida antranilica + neonicotinoide

Modulador de los receptores de ryano-dine + Agonista receptor de AchE

Esteem 10EC + Silwet pyriproxifen 30 cc/hl + 20 cc/hlJuvenoide

Mimetizador de la hormona juvenil

Confidor OD20% imidacloprid 100 cc/hlNeonicotinoide


Movento 150 OD spirotetramat 70 cc/hlDerivados de los ácidos tetrónico y te-

rámicoInhibidores de la síntesis lipídica

Lannate 90 Methomex 90

metomil 40-60 cc/hlCarbámico

Inhibidor de la acetil colinestrasa(AchE)

(*) Se debe prestar mucha atención al insecticida a utilizar, ya que muy pocos tienen registro completo para la plaga(cochinilla harinosa) y el cultivo (manzano y peral).



Momentos oportunos de control

Para determinar los momentos oportunos decontrol, se eligió el insecticida que demostrómejor acción biocida (acetamiprid PIR g/hl,con el agregado de Silwet a OM cc/hl) y se loaplicó en cuatro momentos diferentes cu-briendo el desarrollo de la primera y segundageneración de ninfas. Los tratamientos co-rrespondieron a distintas combinaciones delos Q momentos de aplicación determinados(Tabla QKO). El objetivo era disminuir la den-sidad poblacional durante la primera etapavegetativa del cultivo para arribar a cosechacon una mínima o nula cantidad de residuosde plaguicidas en frutos (concentraciones in-feriores a la correspondiente a los tiempos decarencia). Los resultados demostraron que lasaplicaciones más eficaces fueron las realizadas

a muñeca separada o caída de pétalos y laaplicación de primera semana de diciembre(Cichón et al., OMNNa; Cichón & Garrido,OMNOb).

Para finalizar, la estrategia a implemen-tarse para el control de P. viburni se deberábasar en la aplicación de los insecticidas demayor eficacia y en los momentos de mayorsensibilidad de la plaga (ninfas, particular-mente los primeros estadíos durante la pri-mera y segunda generación). Por otra parte,se deberán armonizar las diferentes herra-mientas de control de manera de cumpli-mentar con las exigencias de ausencia defrutos con plagas cuarentenarias y toleranciasde los diferentes mercados importadores defrutas argentinas, además de ejercer el menorimpacto posible sobre el agro-ecosistemafrutal.

Tabla 4.2. Momentos oportunos de control de P. viburni en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén.


Momento de aplicación

Muñeca separada Caída de pétalos Primera semana noviembre Primera semana diciembre

T1 Aplicación x x x

T2 x Aplicación x x

T3 x x Aplicación x

T4 x x x Aplicación

T5 Aplicación Aplicación x x

T6 x Aplicación Aplicación x

T7 x x Aplicación Aplicación

T8 Aplicación x Aplicación x

T9 Aplicación x x Aplicación

T10 x Aplicación x Aplicación

T11 Aplicación Aplicación Aplicación Aplicación

T12 x x x x

Tratamientos


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Cydia pomonella Linnaeus (Gusano de la pera y la manzana o carpocapsa)

Cichón, L.; Garrido, S.; Lago, J. y D. Fernández

Introducción Nombre de la plaga y sinonimias Caracteres morfológicos Origen y distribución geográfica Bionomía Desarrollo estacional / Ciclo biológico Monitoreo Monitoreo en grandes áreas Bibliografía Modelos de predicción Análisis de los tres vuelos estacionales de carpocapsa

en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén Ajuste del modelo logístico

a-Emergencias del primer vuelo b-Eclosión de huevos

Bibliografía Cambios en la susceptibilidad a diferentes insecti-

cidas empleados en Argentina BibliografíaControl biológico del gusano de la pera y la manzanaBibliografía

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Introducción

La capacidad de la producción frutícola ar-gentina de abastecer tanto al mercado in-terno como a los mercados limítrofes y deultramar obliga a poseer un acabado conoci-miento de las exigencias oficiales de los paísescompradores en cuanto a plagas cuarentena-rias, registro y tolerancias de residuos de pla-guicidas en frutos y sus procesos (jugosconcentrados, conservas y aceites).

Además de la inocuidad, el comercio deproductos frescos conlleva la firma de proto-colos de certificación de exportaciones queaseguran al país importador la mínima proba-bilidad de ingreso de plagas y/o enfermeda-des que no estén presentes o que están bajoun estricto control interno (plagas/enferme-dades cuarentenarias). Algunos de ellos for-mulan planes de trabajo con un enfoque desistemas de mitigación de riesgo (por ej., Bra-sil con Cydia pomonella, México e Israel conCydia molesta) y otros tratamientos cuarente-narios específicos (Japón para Ceratitis capi-tata o Anastrepha sp.) (Cichón, OMNN).

En este contexto, el sector productivo ne-cesita información precisa para orientar latoma de decisiones en el manejo de los culti-vos, optimizar y ajustar las prácticas de manejoculturales, minimizar el uso de plaguicidas noespecíficos (altamente tóxicos y/o en vías deprohibición) y disminuir las densidades po-blacionales de las plagas-vectores y/o la inci-dencia de las enfermedades.

A continuación se realizará una presenta-ción de la plaga clave de los frutales de pepitaC. pomonella (ubicación taxonómica, caracte-res morfológicos, origen, distribución geo-gráfica y bionomía) y se resumirán losresultados de los últimos estudios desarrolla-dos en la cartera de Proyectos áåí~=OMMS yOMMV (modelos de predicción, resistencia,monitoreo y control biológico).

En Argentina la mayor zona productorade peras y manzanas se ubica en la Norpata-gonia con el TUB de la producción total, y lamayor concentración de montes frutales seregistra en el Alto Valle de Río Negro yNeuquén.

La plaga clave de los frutales de pepita escarpocapsa (C. pomonella, L) y a pesar de suamplia distribución, presenta diferentes esta-tus sanitarios en distintos países que complicael intercambio comercial básicamente conBrasil y algunos países de Oriente. Plaga cuarentenaria ~N: “Plaga cuarentenaria

que no está presente en el país importa-dor, por lo que se debe establecer medidasfitosanitarias para prevenir su introduc-ción y diseminación”.

Plaga cuarentenaria ~O: “Plaga cuarentenariaque está presente en el país importador,pero que tiene una distribución limitada yse mantiene bajo control oficial, debién-dose establecer medidas fitosanitarias paraevitar su diseminación”.

En mayo del OMNQ el Ministério da Agri-cultura, Pecuária e Abastecimento de Brasilanunció la erradicación de focos de la plagaC. pomonella en los estados de Santa Catarinay Rio Grande do Sul, y declaró a Brasil como“país libre” de dicha plaga. De esa manera seprodujo un cambio de estatus sanitario decarpocapsa, la cual pasó de ser plaga cuaren-tenaria ~O a ~N (Ministério da Agricultura,Pecuária e Abastecimiento do Brasil, OMNQ).


La descripción original de la especie fue rea-lizada por Linnaeus (NTRU) con el nombre dePhalaena (Tortrix) pomonella. Posteriormente,la misma especie fue descripta nuevamentebajo otros nombres, los que actualmente sonconsiderados sinónimos posteriores: Pyralispomana Fabricius, NTTR y Tortrix pomonanaDenis & Schiffermüller, NTTR. A lo largo desu historia taxonómica esta especie estuvoasociada a tres géneros Cydia Hübner, NUOR;Laspeyresia Hübner, NUOR y Carpocapsa Treis-chke, NUOV. Así, es común ver en la literaturaa esta especie citada como Carpocapsa pomone-lla. Brown (NVTV) establece claramente la si-nonimia de Laspeyresia y Carpocapsa conrespecto a Cydia, con lo cual la combinacióncorrecta queda como Cydia pomonella (Linnaeus)(Brown, NVTV; Laumann, NVVU; Cichón &Fernández, OMMP).

Å~é∞íìäç=Q=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J Cydia pomonella



En la actualidad existe consenso para la si-guiente ubicación (Cichón & Fernández,OMMP):Orden LepidopteraFamilia Tortricidae, Stephens, NUOVSubFamilia Olethreutinae, Walshingham, NUVRTribu Grapholitini Guenée, NUQRGénero Cydia Hübner, NUOREspecie pomonella

Los Tortricidae también conocidos comomicrolepidópteros forman una extensa fami-lia con más de RKMMM especies en todo elmundo, de los cuales muchas se comportancomo especies plagas. Se encuentran mayor-mente representados en los climas templadosy tropicales (Borror et al., NVUV; Horak &Brown, NVVN; Viejo & Romera, OMMQ).

La subfamilia Olethreutinae ha sido tra-tada previamente con el status de Familia y esla que mayor número de especies presenta eincluye además de Cydia otros géneros talescomo Rhyacionia, Grapholita y Olethtreuta(Laumann, NVVU).

El género Cydia está representado entodas las regiones del mundo, pero más de lasdos terceras partes de las especies descriptasson holárticas. Muchas especies son monófa-gas y se alimentan de frutos y brotes apicalesde Rosaceae, Pinaceae, Leguminosae y Faga-ceae (Horak, NVVN; Horak & Brown, NVVN).

Caracteres morfológicos

Las características morfológicas se recopila-ron a partir de los trabajos de los siguientesautores: Essig, NVOS; Comstock, NVQM; Essig,NVQO; Chiesa Molinari, NVQU; Espul et al.,NVSS; Brewer & Argüello, NVUM; Alford,NVUQ; Zangheri et al., NVVO; Lauman, NVVU;Saini, OMMN; Cichón & Fernández, OMMP; Gi-ganti et al., OMMT.

Huevo: de forma lenticular o circular apla-nado, ligeramente convexo en el centro,con un tamaño aproximado de NIOJNIPmm de diámetro. Inicialmente son decolor blanco perlado, con un coriontransparente y reticulado (Foto QU).

La transparencia del huevo reciénpuesto permite observar su interior deno-minándose estado “recién puesto” (estadoêé) a esta fase inicial. A las pocas horas ycuando se comienza a formar el embrión,este se ve como una “ì” o herradura, es-tado denominado “embrión translúcido”(estado Éí). Más tarde comienza la forma-ción del sistema nervioso del embrión yaparece una aureola roja que recorre todala circunferencia del huevo (estado “aure-ola roja” ~ê). Por último comienzan a servisibles las partes esclerotizadas del em-brión, especialmente la cabeza y este es-tado se denomina de “cabeza negra”(estado Åå). Cuando la larva está comple-tamente madura, corta con sus mandíbu-las las capas exteriores en la zona lateraldel huevo y se desliza fuera de él. Sobrehojas y frutos quedan los restos de las ovi-posiciones, observándose el huevo vacío,el cual se ve como una escama brillante.Este estado se denomina “huevo eclosio-nado” (estado ÉÅ).

Larva: posee cinco estadios larvales, separa-dos por cuatro mudas. Al nacer son decolor blanco cremoso o blanco amari-llento, con la cabeza y la placa pronotalesclerosadas de color castaño oscuro bri-llante (Foto QV a). Su tamaño en este esta-dio es de OJOIR mm de largo y la cápsulacefálica de MIPP mm de ancho, haciéndolabastante conspicua respecto del tamañodel cuerpo.

El largo total del cuerpo alcanzado porel quinto estadio larval varía en un rangode NQ a OM mm. De coloración general ro-sada, a veces rosa fuerte contrasta con lacabeza castaño oscura al igual que los es-cudos protorácico y anal. Este color rosafuerte, sin embargo se torna blanquecinoen las larvas de quinto estadio diapausan-tes, relacionado a la acumulación de cuer-pos grasos necesarios para la hibernación.El aparato bucal es masticador e hipognato.La cabeza presenta una sutura epicranealnormalmente corta y cuenta con seis oce-los distribuidos en forma desigual, con elnúmero seis normalmente mas próximo alnúmero cuatro que al cinco (Foto QV b).


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En el tórax se encuentran los tres paresde patas verdaderas de la larva. Las pseu-dopatas de la larva se sitúan en los seg-mentos ~PJS y ~NM (pseudos-patas anales)y tienen un círculo completo de “crochets”.La larva no posee peine anal.

En el quinto estadio larval, los machosse distinguen de las hembras por la pre-sencia de los testículos en el segmento ~R,que se observan fácilmente como dosmanchas oscuras de forma elíptica en elinterior del cuerpo (Foto RM).

Pupa: recién iniciada la metamorfosis la pupaes de color ámbar, oscureciéndose hastallegar a pardo oscuro o marrón oscurocon bordes y espinas negras, a medida quese acerca a la emergencia del adulto. Elcuerpo es de superficie lisa y tiene unalongitud promedio de V mm por OIO mmde diámetro en su ancho máximo (FotoRN). Se encuentran visibles diez segmen-tos abdominales. Los segmentos Q y T tie-nen dos filas de espinas dorsales. Las alasson anchas y no terminan en punta. Noposee cremáster y el pronoto es cuatroveces más largo que el vértice a lo largode la línea media. Los espiráculos sonoblongos. Permanece refugiada dentrodel capullo tejido por la larva hasta el mo-mento de la emergencia del adulto.

En este estado de desarrollo tambiénes posible diferenciar el sexo mediante laobservación del extremo del abdomen enlos segmentos ~SJU. Además la pupa de lahembra es de mayor tamaño y peso que ladel macho (Foto RO).

Adulto: la cabeza es más bien pequeña, decolor gris moreno, con abundantes esca-mas filamentosas y grisáceas implantadassobres la parte superior. Antenas filifor-mes de color gris, inclinadas hacia atrás yde un largo aproximado a la mitad delcuerpo. Las especies de la subfamiliaOlethreutinae se caracterizan por presen-tar un solo grupo de escamas por seg-mento de antena. El aparato bucal es eltípico de los lepidópteros con la maxilamodificada en forma de probosis (hauste-llum) y palpos labiales salientes, grisáceos.Los ojos son compuestos, globulares, algo

salientes y de color negro opaco.El tórax está revestido con escamas

largas y es de color gris moreno. Las alasanteriores en reposo llegan a cubrir el ab-domen. Son anchas, subrectangulares conbordes rectos, de color gris plateado y connumerosas bandas transversales de colormarrón grisáceo (Foto RP). Cerca del ex-tremo de las mismas existe una mancha decolor marrón oscuro cruzada por líneasirregulares de color bronce brillante (oce-llus). Las alas posteriores terminan enforma de abanico, son de coloraciónpardo grisácea sin manchas distintivas. Laenvergadura alar de la hembra se encuen-tra entre los NUJOM mm y en el machoentre NSJNU mm. En éstos, la cara internade las alas anteriores presenta una manchaoscura rectangular, que sirve como carac-ter sexual secundario para la determina-ción del sexo en la especie (Foto RQ).

El abdomen es de color más oscuroque el tórax, con escamas plateadas,siendo el del macho más delgado que elde la hembra. Cuenta con diez segmentosy, entre el octavo y el noveno, la hembraposee dorsalmente una glándula para la li-beración de la feromona. El extremo delabdomen de la hembra muestra la papilaanal, que es circular y de color castaño.En el centro de dichas papilas se observandos orificios: el oviducto (por donde seproduce la oviposición) y el ano. Por en-cima de éste, en el Uø segmento se en-cuentra el “ostium bursae”, lugar donde elmacho transfiere el espermatóforo du-rante la cópula (Foto RR). El macho pre-senta el extremo abdominal cerrado conun par de valvas que utiliza para sujetar ala hembra durante la cópula. Desde la ca-beza al abdomen la hembra tiene U mm yel macho entre R y U mm. Generalmentela hembra es de mayor tamaño y pesaentre NS y QO mg, mientras que el machopesa de NO a ON mg (Foto RS).



Origen y distribución geográfica

La carpocapsa, especie nativa del sudesteeuropeo o Eurasia, ha tenido una amplia dis-tribución mundial acompañando a su hospe-dero más importante, el manzano (Malusdomestica Borkh) (Sheldeshova, NVST). Sinembargo, existen lugares en donde aún no seha podido observar su presencia (algunas re-giones de China, Japón y la península deCorea). Por otra parte, debido a las severastareas de exterminación y a un estricto con-trol cuarentenario, esta plaga no se ha esta-blecido en la región suroeste de Australia(Solomon, NVVN).

La distribución geográfica actual de car-pocapsa está relacionada tanto a factores cli-máticos como a la disponibilidad de alimento.Probablemente esta plaga se haya dispersadoentre los diferentes países y continentes a tra-vés del transporte de fruta infestada o de ma-teriales de empaque contaminados, así comopor importación de partes vegetales atacadas.

Distintos mecanismos biológicos han per-mitido a la carpocapsa ajustar su voltinismo ysincronizar su ciclo de vida a distintos hospe-deros y a diferentes condiciones climáticas.En la región frutícola de Río Negro y Neu-quén se han observado ataques en frutos demanzanos, perales, membrilleros y nogales,aunque en otros países la lista de hospederoses más extensa y abarca también a diferentesfrutales de carozo (Madsen & Borden, NVRQ;Putman, NVSP).

La carpocapsa se ha adaptado exitosa-mente a las condiciones agro-ecológicas im-perante en varias regiones de Argentinaparticularmente en la principal zona produc-tora del Alto Valle del Río Negro y Neu-quén. Allí las temperaturas que se registrandurante los meses de primavera y verano per-miten el desarrollo de tres generaciones y enalgunas temporadas hasta de una parcialcuarta generación (Cichón & Fernández,NVVP), mientras que en las principales zonasproductoras de frutales de pepita de EuropaCentral, Noroeste y Este de Estados Unidosy Canadá, solamente es capaz de desarrollarun máximo de dos generaciones anuales. Elnúmero elevado de generaciones determina

un riesgo potencial importante de la plaga ennuestro país y la necesidad de efectuar las ac-tividades de control en forma precisa, paraevitar porcentajes de daño que comprometanla producción.

Bionomía

C. pomonella es un insecto holometábolo conR estadios larvales, el último de los cualesposee la facultad de atravesar un período dereposo invernal (diapausa). La diapausa de C.pomonella puede ser obligatoria (independientede las condiciones ambientales) o facultativa(inducida por factores ambientales) y la pro-porción de individuos con diapausa obligato-ria varía en las distintas poblaciones (Sieber& Benz, NVUM). En general, los capullos conlarvas diapausantes se encuentran bajo la cor-teza de ramas y troncos de las plantas hospe-deras, en el suelo, entre otros. Sanderson(NVMU) indica que TMB de las larvas diapau-santes se encuentra en los troncos y PMB, enlas ramas más pequeñas.

Al final de la primavera, las larvas empu-pan; luego de NQ a PM días los adultos emer-gen por su extremidad anterior (Putman,NVSP). La aparición de los adultos coincidecon el momento de floración e inicio de lacaída de pétalos de la gran mayoría de losfrutales de pepita. Algunos autores señalanque los machos suelen emerger unos díasantes que las hembras (Anónimo, NVSM; Ba-tiste & Olson, NVTP) mientras que otros nohan encontrado esta diferencia (Hathaway etal., NVTN; Rock & Schaffer, NVUP).

La longevidad de los adultos varía entreNM y OM días. Su actividad se concentra prefe-rentemente en las horas crepusculares y pri-meras horas de la noche. Durante el día, losadultos permanecen inmóviles sobre lasramas y el follaje de las plantas. En general,el vuelo se realiza cuando las temperaturassobrepasan los NOø`. (Borden, NVPN).

Los machos efectúan vuelos cortos en zig-zag con leves ascensos y descensos (Borden,NVPN). Otros autores describen desplaza-mientos desde RM metros hasta NN kilómetros(Howell & Clift, NVTQ; Mani & Wildbolz,NVTT).


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La hembra atrae a los machos por mediode la emisión de feromona, que comienza du-rante la puesta del sol y se mantiene durantelas siguientes Q horas (Wong et al., NVTN).Esta feromona sexual es producida por unaestructura glandular que se abre entre el oc-tavo y noveno segmentos abdominales (Bar-nes et al., NVSS). El “llamado” por parte de lahembra y la cópula pueden efectuarse al díasiguiente de la emergencia de los adultos. Sinembargo, la producción de feromona alcanzasu punto máximo en el tercer día desde laemergencia, superponiéndose con el períodode pre-oviposición (Vickers & Rothschild,NVVN). La máxima actividad de cópula se pro-duce a las QU horas de emergidos los adultos.Luego declina gradualmente y finaliza a losNM u NN días.

Una vez que el macho localiza a la hem-bra en posición de “llamado”, los estímulosvisuales son de fundamental importancia parainiciar el proceso de la cópula, ya que el com-portamiento de cortejo que lo precede, in-cluye una serie compleja de movimientos dealas, con elevación y agitación rápida deestas, y la expulsión del peine de pelos en elextremo del abdomen de los machos (Hutt &White, NVTT; Castrovillo & Cardé, NVUM;Curkovic et al., OMMN).

La máxima actividad de cópula se observaOM minutos antes y OM minutos después delcomienzo del crepúsculo (Borden, NVPN; Ho-well et al., NVVM). La temperatura óptima parael apareamiento está comprendida en el in-tervalo de NRISø` y PPø` (Eyer, NVPQ; Batisteet al., NVTP). Sin embargo, cuando se presen-tan condiciones desfavorables durante el pe-ríodo óptimo de cópula (por ej.: excesivoviento), los vuelos pueden ser pospuestos(Putman, NVSP).

Durante la cópula los individuos se en-cuentran unidos por el extremo distal del ab-domen, con las cabezas dirigidas hacia ladosopuestos y las alas de las hembras cubriendolos extremos abdominales del macho. De estamanera, se mantienen unidos por aproxima-damente OM a VM minutos (Howell et al.,NVTU). El macho durante la cópula transfiereel esperma encerrado en el espermatóforoque se aloja en la bursa copulatoria. Luego de

la cópula, la hembra pierde gradualmente sucapacidad de secretar feromona y en conse-cuencia su poder de atracción (Howell,NVTO). En condiciones de campo, en general,las hembras copulan una sola vez en su vida.Sin embargo, pueden encontrarse hasta NRBde hembras con más de un espermatóforo,especialmente hacia el final de la estación. Encambio el macho lo hace varias veces (Geh-ring & Madsen, NVSP).

Se ha podido determinar que, si las hem-bras se aparean luego del cuarto día de emer-gencia, se produce una reducción de sufertilidad y fecundidad (Vickers, NVTT).

La oviposición se efectúa sobre hojas y,más raramente, en ramas cercanas a los frutoso directamente sobre ellos (Wearing & Hut-chins, NVTP) y tiene lugar aproximadamente Ohoras y media antes de la puesta del sol(Riedl & Oler, NVUM). En general, los huevosson puestos en forma individual y muy rara-mente en grupos de O o P (Anónimo, NVSM).La fertilidad de la hembra es variada, exis-tiendo una relación entre su peso y el númerode huevos colocados. Puede aceptarse comovalor promedio, QQ huevos por hembra (Geier,NVSP). Existe además, un aumento en el nú-mero de huevos colocados por hembras degeneraciones sucesivas, pudiendo llegar aduplicarse este número durante la segundageneración con respecto a la primera (Ver-meulen et al., NVUV). El período de oviposi-ción más activo ocurre durante los primeroscinco días de vida de la hembra (Gehring &Madsen, NVSP; Vickers, NVTT).

El desarrollo de los embriones está estre-chamente ligado a las condiciones ambientalesy en especial a la temperatura (Anónimo, NVSM).

Luego de la eclosión, las larvas comienzanun proceso de búsqueda hasta encontrar unlugar apropiado para penetrar en los frutos.Algunos autores han mostrado que el α-far-naseno liberado por los frutos juega un papelmuy importante en la atracción de las larvasneonatas (Sutherland & Hutchins, NVTP; Bra-dley & Suckling, NVVR).

Una vez elegido el lugar, la larva comienzaa perforar una galería superficial de formahelicoidal. La penetración se realiza prefe-rentemente en la zona de contacto entre



dos frutos, entre una rama y un fruto, dondeel fruto presenta una herida o por la zona ca-licinal (Anónimo, NVSM; Vermeulen et al.,NVUV).

Luego de mudar a su segundo estadio, lalarva se introduce en el fruto y se dirige haciala zona carpelar donde se alimenta de las se-millas en desarrollo, que son ricas en aceites(Hall, NVPQ; Anónimo, NVSM). Cuando com-pleta su desarrollo, luego de OR a PM días,abandona el fruto utilizando la misma galeríao construyendo una nueva. Preferentemente,deja el fruto durante la noche, cuando la tem-peratura supera el umbral mínimo de desarro-llo (NMø`). Sin embargo, bajo condiciones deestrés, la larva en cualquier estado de desa-rrollo puede abandonar el fruto y buscar otrohasta completar el quinto estadio larval(Ferro & Harwood, NVTP). El proceso debúsqueda de un lugar apto para mudar ypasar al siguiente estado (pupa) o iniciar elperíodo de diapausa, lo efectúa desplazándosepor las ramas y troncos y pendiendo de unhilo de seda que ella misma produce.

Desarrollo estacional / ciclo biológico

La carpocapsa inverna como larva completa-mente desarrollada en la corteza de los árbo-les frutales, resquebrajaduras de los troncos yramas, en puntales, bins, y en una muchomenor proporción en suelo y hojarasca.Entre fines de agosto y principios de diciem-bre, las larvas reanudan su desarrollo paraconvertirse en pupas y posteriormente enadultos. Dicho vuelo se extiende desde pocoantes de floración hasta mediados/fines de di-ciembre. Este primer vuelo dará origen a laprimera generación de la temporada. Aproxi-madamente a mediados de octubre se produ-cen las primeras eclosiones de huevos, T a NOdías (UUJVMøa) después de su ovipostura. Apartir de este momento las posturas y naci-mientos se incrementan hasta hacerse máxi-mos entre mediados y fines de noviembre(QMMJRMMøa) para luego declinar. Alrededordel OM de noviembre se observa la primeralarva de quinto estadío que va a encapullar yposteriormente a empupar. En la segundaquincena de diciembre dependiendo de las

temperaturas se producen los nacimientos dela segunda generación de larvas que dará ori-gen al tercer vuelo de la temporada el cual seextiende hasta el mes de marzo. Los vuelosde la primera y segunda generación sufrenuna gran superposición durante los meses deenero y febrero (Cichón, OMMV).

Para el Alto Valle de Río Negro y Neu-quén, el ÅéhéRM (Fotoperíodo crítico medio:fotoperíodo que provoca el RMB de respuestaa la diapausa en una determinada población)es de NPIV horas (Heliofanía Teórica Astronó-mica) y ésta corresponde al período com-prendido entre el R y el V de febrero. A partirde allí, la población de larvas reacciona rápiday uniformemente a la disminución del foto-período. El número de días que transcurreentre el ÅéhéRM y el ÅéhéVM (momento opunto en el que el VMB de las larvas de quintoestado son diapusantes), es de NR a NU días.Las larvas diapausantes darán origen al pri-mer vuelo de la temporada siguiente (Cichón& Melzer, NVVV).

Monitoreo

La necesidad de determinar la densidad po-blacional de las plagas mediante métodossencillos, rápidos, fiables y económicos, hasido siempre uno de los objetivos perseguidosen el marco del manejo integrado de plagas(ãáé). La carpocapsa como plaga de relevan-cia mundial, no escapa a esta premisa y ejem-plo de ello son los numerosos trabajospublicados al respecto desde principios delsiglo pasado (Sanderson, NVMU; Bobb et al.,1939; Vakenti & Madsen, NVTS; Rock et al.,1978; Riedl et al., NVTS; Charmillot, NVUM;Vermeulen et al., NVUV).

Para establecer una táctica adecuada parael control de la carpocapsa es necesario enprimer lugar, conocer el riesgo potencial(daño económico) que una determinada po-blación puede causar al cultivo y además, es-tablecer puntos de referencia biológica parapredecir otros eventos en el ciclo de la plaga(Vickers & Rothschild, NVVN).

Las tareas de monitoreo necesarias parala detección temprana de huevos y daños dela carpocapsa requieren de una adecuada


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capacitación de los productores y/u operariosy consumen un excesivo tiempo y esfuerzo.Traducido esto en términos económicos, estatarea de monitoreo es poco compatible conlas actuales tendencias y márgenes de renta-bilidad de la fruticultura moderna, debido alalto costo de la mano de obra involucrada enesta tarea. Por tanto, es necesario desarrollarprogramas de monitoreo teniendo en cuentaestas premisas.

Monitoreo en grandes áreas

La implementación de programas de controlde la carpocapsa a nivel regional o de grandesáreas ha probado ser una estrategia altamenteefectiva que permite lograr muy buenos re-sultados de control con bajos niveles de dañoy una sustancial reducción en el uso de insec-ticidas. Por su parte, el uso de la técnica deconfusión sexual requiere, para tener éxito,de dos aspectos básicos: la presencia de bajaspoblaciones de la plaga (Moffit & Westigard,NVUQ; Vickers & Rothschild, NVVN) y un sis-tema de monitoreo confiable (Gut & Brunner,NVVS). Por lo tanto, la colecta, registro, yflujo de información para la toma de decisio-nes es un factor crítico, siendo necesario con-tar con metodologías confiables desde elpunto de vista biológico, y sustentables desdeel económico.

Existen a nivel mundial algunas pocas ex-periencias documentadas de control o moni-toreo de la carpocapsa en grandes áreas conintervención multi-institucional pública-pri-vada como el Å~éã Proyect en el este de Es-tados Unidos (Calkins & Faust, OMMP), el ëáíProject en Canadá, (Bloem et al., OMMT), elProyecto de Erradicación en Brasil (Kova-lesky & Mumford, OMMT) o el Proyecto PlanetCydia en España (Ribes-Dasi, com. per.). Sinembargo, ninguno de estos programas haalcanzado las dimensiones del programa im-plementado en el norte de la Patagonia Ar-gentina, el cual en el año OMNM alcanzóalrededor de QSKMMM ha de frutales de pepita.

En Argentina, luego de varios años de es-tudio de la técnica de confusión sexual (Ci-chón & Fernández, OMMM), el primer área decontrol se implementó en el año OMMP, con la

participación de más de OT pequeños y me-dianos productores frutícolas agrupados enQMM has contiguas. El nivel medio de dañodel área previo a la intervención se estimabaen QJSB, con un promedio de NMJNO aplica-ciones de insecticidas por hectárea. Luego detres años de implementación del proyecto selogró disminuir la incidencia de la plaga aMIMSB con un promedio de RIO aplicacionesde insecticidas por hectárea (Cichón et al.,OMMS).

La metodología de control utilizada con-sistió en la aplicación de un modelo sincroni-zado de control (Byers & Castle, OMMR)durante la primera generación de la plaga yun modelo de ãáé tradicional en base a lacaptura en trampas de feromonas, durante elresto de la temporada de cultivo.

El éxito alcanzado en este proyecto, sirviócomo base para el desarrollo del ProgramaNacional de Supresión de Carpocapsa (éåëÅ)(ëÉå~ë~=OMMS, ÑìåÄ~é~=OMMS) que se comenzóa aplicar a partir de la temporada OMMSLMT enla región del Alto Valle de Río Negro y Neu-quén. La propuesta de intervención del éåëÅincluyó la instalación y monitoreo de una redde trampas para el seguimiento de las pobla-ciones de la carpocapsa. Se utilizaron trampascon cebos de feromona (codlemone) y cairo-mona (éster de pera) (Fernández et al., OMNM)y se capacitó al personal necesario en la iden-tificación y sexado de los adultos de C. pomone-lla (Fernández et al., OMMS) de los individuoscapturados en las trampas. Estas trampas fue-ron provistas por el éåëÅ e instaladas a razónde una por hectárea de cultivo hospedero.Una vez finalizada la intervención del éåëÅ,es necesario continuar con el monitoreo de laplaga para detectar y prevenir posibles incre-mentos en los niveles poblacionales.

Uno de los mayores problemas que en-frenta la implementación de un programa deãáé es el establecimiento de un efectivo sis-tema de comunicación con los participantes(Travis & Rajotte, NVVR). En general, los pro-ductores, monitoreadores, asistentes y profe-sionales reciben información de diferentesfuentes como servicios de extensión públicos,compañías de agroquímicos, empacadores,etc., pero es difícil obtener información en



tiempo real del nivel de riesgo en el área deinfluencia de su propiedad, o en toda la re-gión.

Debido a la magnitud y alcance del pro-grama, es necesario reducir los costos de suimplementación para que el mismo pueda sersustentable en el tiempo. Esta disminuciónde costos en insumos (trampas) y labor (mo-nitoreadores), no debe comprometer la fiabi-lidad de los datos a partir de los cuales setomarán las decisiones de acción.

En este contexto fue necesario proponerun sistema de vigilancia y monitoreo a nivelregional que sirviera de alerta rápida en casode producirse focos con altas poblaciones dela carpocapsa. Por tanto, se propuso utilizarel análisis geoestadístico para analizar la in-formación sobre la distribución y nivel de po-blación de la carpocapsa, minimizando lautilización de los recursos y capacidades dis-ponibles. Además, se planteó generar un Sis-tema de Información Geográfica (ëáÖ) regionalmediante, la superposición de datos catastrales,ubicación de trampas, mapas de iso-capturasde la carpocapsa e imágenes satelitales.

El cálculo teórico de trampas necesariaspara toda la superficie de cultivo, conside-rando la densidad recomendada actualmentede N trampa.ha-1 (Gut & Brunner, NVVS), in-dica que se deberían utilizar QSKVUM trampas.No obstante, debido a la falta de continuidadde las plantaciones en algunas áreas, a las si-tuaciones de borde y a la existencia de lotesindividuales con superficies levemente infe-riores o superiores a una hectárea, el númeroreal de trampas necesario es de PSKNQM. Sinembargo, cuando se evalúan grillas con dis-tancias mayores a NMM m, el número real esen todos los casos superior al número teóricocalculado.

Para ajustar el tamaño de la grilla de mo-nitoreo es necesario determinar el alcance(rango) de los semivariogramas que permitenhacer estimaciones sobre la distribución de lapoblación. Flatman et al. (NVUT) consideranque la distancia entre muestras debe ser lamitad del rango de correlación (r/O), cuandolos ajustes de los semivariogramas son ade-cuados.

Considerando todos los análisis de com-

paración de mapas, distribución de parcelas yefectos de variables climáticas, se estima quela grilla de OMM m ofrece información confia-ble para los fines de vigilancia fitosanitaria,con una reducción cercana al SMB en el nú-mero de trampas necesarias para obtener re-sultados similares a la grilla actualmente enuso de NMM m. La selección e implementaciónde una grilla de OMM m se traducirá además enuna disminución apreciable del costo de unsistema de vigilancia y monitoreo de la car-pocapsa en la región del Alto Valle de RíoNegro y Neuquén, Argentina.

El desarrollo de esta propuesta de vigilan-cia y monitoreo permite generar informaciónde gran relevancia para la toma de decisionesen el control de la carpocapsa. Sin embargo,para que la misma tenga utilidad práctica,debe ser puesta a disposición de los produc-tores, técnicos y profesionales involucradosen su manejo. Una experiencia similar se de-sarrolla desde el año NVVU en la zona frutícolade Lleida (Cataluña-España) con excelentesresultados (Ribes-Dasi et al., NVVU; Comas etal., OMNO). En base a esta experiencia en parti-cular y a los resultados obtenidos en la regióndel Alto Valle del Río Negro se propone eldesarrollo de una página de Internet dondese publiquen los mapas semanales de iso-cap-turas. De esta manera, la información estarádisponible en forma sencilla y rápida. La me-todología de trabajo comprende los siguien-tes pasos: NK Colecta de los datos de capturas en el

campo. OK Carga de la información en una base de

datos que la centralice y consolide. PK Análisis geoestadístico de los datos y gene-

ración de los mapas correspondientes. QK Conformación de un ëáÖ que incluya el

mapa o Foto satelital del área, el catastro,la ubicación de las trampas y el mapa deiso-capturas.

RK Publicación de los mapas en una página deacceso libre.


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86



Modelos de predicción

Cichón, L.; Menni, F.; Garrido, S. y J. Lago

La carpocapsa, al igual que todos los insectos,se desarrolla según un tiempo fisiológico de-terminado por las condiciones climáticas,siendo la temperatura el factor más impor-tante (Bloesch & De Siebenthal, NVUU).

El método más usado que permite medireste tiempo fisiológico se basa en la acumula-ción de unidades de calor o grados-día. Secalculan las unidades fisiológicas de desarro-llo comprendidas entre las temperaturas pordebajo del umbral máximo de desarrollo ypor encima del umbral mínimo (Romoser &Stoffolano, NVVQ).

En el Alto Valle, el sistema de alarma uti-lizado para esta plaga, calcula los grados-díarestándole el umbral mínimo de desarrollo decarpocapsa que es NM⁄` (Riedl, NVUP), al pro-medio de las temperaturas diarias de las VKNRy ON hs., sin tener en cuenta el umbral má-ximo para la especie (método Alto Valle o~î). Estos datos se comienzan a calcular apartir del N de agosto de cada año, y en la ac-tualidad es la herramienta fundamental parala toma de decisiones en el manejo sanitariode carpocapsa en la región (áåí~I=OMNP). Sinembargo existen otros métodos para determi-nar los grados-día. Los mas utilizados a nivelinternacional son el “método estándar” (ëí)que emplea un umbral inferior de NM⁄` y unosuperior de PNIN⁄` promediándose la tempe-

ratura diaria con datos registrados cada NMminutos. Y el método de “seno simple” (ëë)que emplea la temperatura mínima y máximadiaria para producir una curva sinusoidal enun periodo de OQ horas y luego calcular elárea sobre el umbral de NM⁄` y debajo dePNINø` (Baskerville & Emin, NVSV).

En base a estos datos se están elaborandoen las diferentes regiones frutícolas delmundo, distintos modelos fenológicos de laplaga, que muestran la relación que hay entrelos grados días y su biología, que a su vez estásincronizada con la fenología de su hospederomás importante, el manzano.

En el Alto Valle, las acciones realizadaspor el Programa Nacional de Supresión deCarpocapsa, impulsado por el Gobierno Na-cional a través de ëÉå~ë~, implementado porÑìåÄ~é~ y el áåí~ en el año OMMS, y finalizadoen el año OMNN, permitieron disminuir la den-sidad poblacional de carpocapsa a nivel regio-nal de un SB de frutos afectados a MIOSBKAdemás, se pudo disminuir el número deaplicaciones de insecticidas en más de unRMB usando herramientas más amigables conel medio ambiente como la Técnica de laConfusión Sexual (íÅë). Otro aspecto a resal-tar es la disminución de aproximadamente unURBI de las aplicaciones de insecticidas orga-nofosforados de alta toxicidad.



88

Esta nueva situación sanitaria requiere unajuste del actual sistema de alarma que per-mita determinar o predecir con mayor preci-sión la evolución de la plaga y los momentosde mayor riesgo de ataque.

Para ello se localizaron P a Q montes demanzanos donde no se realizaban aplicacio-nes de control y durante dos años se observa-ron diferentes eventos biológicos de la plaga:evolución de las capturas semanales, emer-gencias diarias primaverales provenientes delarvas diapausantes y no diapausantes duranteel verano, recolección de larvas en fajas decartón corrugado y evolución de la eclosiónde huevos a través del muestreo de frutos da-ñados. Por otra parte en cada monte frutal seregistraron las temperaturas mediante senso-res automáticos (Dataloggers de temperaturay humedad iButton Hygrochron®).

Análisis de los tres vuelos estacionales decarpocapsa en el Alto Valle de Río Negroy Neuquén

Diferentes autores emplean para determinarel primer vuelo de la temporada, el registrode las capturas en trampas de feromonas. Sinembargo, este dato por sí solo no permite de-terminar la amplitud del primer vuelo quedará origen a la primera generación de latemporada. Por esa razón se hace indispensa-ble realizar en la temporada previa, la reco-lección de larvas diapausantes durante todo elperiodo estival y mantenerlas bajo las condi-ciones ambientales de la región en el período

de otoño e invierno. De esta manera, dichaslarvas acumularan horas de frío y emergerándurante la primavera siguiente, dando origenal primer vuelo de la temporada.

Diferentes modelos de predicción (Beerset al., NVVP; Knight, OMMT) asumen que el pri-mer vuelo finaliza entre los QQQ y RST⁄a des-pués del Biofix (primera captura constante entrampa de feromona). En la región del AltoValle, siguiendo la evolución de las larvas dia-pausantes durante la primavera, la primeraemergencia consistente de adultos se iniciaen floración o pocos días después (entre losNNM y NUM⁄a) y la finalización se produceentre los URM y los VUU⁄a (Grado Día ëíJëë y~î respectivamente) (Tabla QKP). Esto implicauna amplitud del primer vuelo de aproxima-damente P meses.

Se ha determinado a su vez, que la primeralarva de quinto estadío perteneciente a la pri-mera generación, sale del fruto para encapu-llar a los RMQ=ÖÇ=ëí (ÖÇ promedio ponderado)y se transforma en adulto a los TOV=ÖÇ=ëí(Tabla QKQ).

Si cotejamos los promedios ponderadosde las unidades fisiológicas (ÖÇ) de la últimaemergencia proveniente de larvas diapausan-tes (primer vuelo) (UQOISX=UQUIQ=ó=VONIP=ÖÇsegún metodología ëíI=ëë y ~î respectiva-mente) y los correspondientes a la primeraemergencia del segundo vuelo de 729,0ITPNIN y TUPIN (ëíI=ëë y ~î respectivamente),se observa una superposición de los mismosde poco más de NMM=ÖÇ (NNPI=NNT y NPV=ÖÇsegún ÖÇëíI=ëë y ~î) (Tabla N y O).

Tabla 4.3. Registros de grados día correspondientes a la última emergencia de adultos provenientes delarvas diapausantes. El inicio de la toma de temperaturas para la transformación a ÖÇ fue el N de agosto.

FechaGD (*)

ST SS AV

17-12-06 781,24 788,99 850,80

21-12-07 821,41 810,18 906,00

16-12-08 892,76 893,20 978,80

30-12-10 941,51 988,42 1028,00

Promedio Ponderado 842,56 848,37 921,33

(*) ÖÇ: Grado Día - ëí: Estandar - ëë: Seno Simple - ~î: Alto Valle



Según estos datos el tiempo promedioponderado requerido por la larva de Rø esta-dío para transformarse en adulto es de OOUIP;OORIQ y OTOIO=ÖÇ=ëíI=ëë y ~î respectivamente(Tabla QKR). En base a esto se puede determi-nar el valor de ÖÇ para la finalización del se-gundo vuelo (suma de ÖÇ de últimaemergencia del primer vuelo, ÖÇ para evolu-ción de huevo=UU y ÖÇ necesarios para queuna larva se convierta en adulto) (Tabla QKS).

En la tabla QKS se detalla los valores de ÖÇEëíI=ëë=ó=~îF obtenidos bajo condiciones decampo para que una larva se transforme enadulto. Si consideramos los ÖÇ=ëí por ejem-plo, el valor es de aproximadamente PSM=ÖÇ,mientras que si se toma en cuenta los obteni-dos por Glenn (NVOO) para desarrollo de larvay pupa (PRS=H=NNS respectivamente), suma-rían QTO=ÖÇ. La diferencia obtenida es unpoco superior a los NMM=ÖÇ.

Tabla 4.4. Registro de grados día correspondientes a la primer captura de larva de Rø estadío de primerageneración de carpocapsa y la primera emergencia de adulto (inicio del Oø vuelo) bajo condiciones decampo. Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

AÑO Chacra

Fecha cap-tura de 1°larva de 5°

estadío

Cantidad

GD de captura de 1° larva de5° estadío Fecha 1°

emergenciadel 2° vuelo

CantidadGD 1° emergencia del 2° vuelo

ST SS AV ST SS AV

2010

Cuadro 9 17-nov 3 478,3 499,2 488,7 20-dic 3 803,6 846,5 869,4

Bubalcó 17-nov 1 476,0 490,4 488,7 07-dic 1 668,6 690,0 715,8

Ferroni 3 20-nov 1 501,1 505,1 524,1 11-dic 1 706,0 723,9 766,0

2011

Cuadro 9 16-nov 1 538,1 552,2 521,8 05-dic 1 727,4 729,1 750,2

Ferroni 3 16-nov 4 509,8 503,9 521,8 02-dic 2 706,0 682,0 759,6

Ferroni 4 16-nov 8 509,8 503,9 521,8 02-dic 4 706,0 682,0 759,6

Promedio ponderado 503,8 505,1 514,6 729,0 731,1 783,1

Tabla 4.5. Tiempo transcurrido en grados día EëíI=ëë=ó=~îF entre la primera larva de Rø estadío capturadaen fajas de cartón corrugado (primera generación) y primera emergencia de adultos (Oø vuelo) de carpo-capsa en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

AÑO CHACRA

Diferencia en GD entre captura en cartón corrugadode larva de 5º y 1º emergencia

Diferencia promedio ponderado

ST SS AV ST SS AV

2010-2011-2012

Cuadro 9 325,27 347,29 380,7

228,31 225,42 272,19

Bubalcó 192,56 199,25 227,1

Ferroni 3 204,92 218,78 241,9

Cuadro 9 189,33 176,88 228,4

Ferroni 3 196,19 178,05 237,8

Ferroni 4 196,19 178,05 237,8

(*) ÖÇ: Grado Día - ëí: Estandar - ëë: Seno Simple - ~î: Alto Valle



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Tabla 4.6. Registros de gados día necesarios para la obtención del valor de finalización del Oø vuelo decarpocapsa en la temporada, en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén.


Método de medición de GDGD registrados en la Últimaemergencia de 1º Vuelo (*)

GD necesarios para el desa-rrollo del Huevo.

GD necesarios para pasar de1º estadio larval a adulto, a

campoGD Totales

ST 842,56 88 358,59 1289,14

SS 848,37 88 365,77 1302,14

AV 921,33 88 423,10 1432,43

(*) Promedio ponderado de datos obtenidos los años 2MMSI=OMMTI=OMMU y OMNM.

De la misma manera se pueden obtenerlas unidades fisiológicas de desarrollo necesa-rias para producirse el inicio del tercer vuelo(Tabla QKT). La conclusión de este estudio esque existe una superposición entre los vuelos(primero/segundo y segundo/tercero) depoco más de NMM y menos de OMM=ÖÇ.

Método de mediciónde GD TEMPORADA FIN 1º VUELO (*) COMIENZO 2º VUELO FIN 2º VUELO COMIENZO 3º VUELO

ST

2011-2012842,56

709,04 1288,2 1157,48

2010-2011 757,06 1289,72 1179,89

Promedio PONDERADO 729,05 1289,14 1169,70

SS

2011-2012848,37

688,66 1272,57 1118,99

2010-2011 792,378 1320,21 1238,98


AV

2011-2012921,33

758,26 1439,08 1274,79

2010-2011 818 1428,37 1296,69


Fecha estimada de ocurrencia 15 al 25-Dic 10 al 15-Dic 15 al 30-Ene 10 al 20-Ene

Tabla 4.7. Registros de grados día necesarios para la obtención del valor de finalización del Oø vuelo decarpocapsa en la temporada, en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

(*) El fin del N⁄ Vuelo se obtuvo con datos obtenidos de los años OMMSI=OMMTI=OMMU y OMNM.



Ajuste del modelo logístico

a-Emergencias del primer vuelo

Los datos de emergencia y eclosión de hue-vos de carpocapsa correspondientes a las dis-tintas generaciones que se desarrollan en laregión del Alto Valle de Río Negro y Neu-quén fueron ajustados a través de un modelologístico y validado mediante la metodologíadesarrollada por Knight (Knight, OMMT). Elmodelo logístico se aplicó para cada uno delos cálculos de ÖÇ=EëíI=ëë=y ~îF. Dicho modeloposee dos parámetros: ß0 y ß1, donde ß0 es un

parámetro de posición de la curva respecto alos ejes cartesianos, y ß1 es la tasa de emer-gencia o eclosión de huevos respecto a los ÖÇ(Tabla QKU). Todos los resultados aquí expues-tos se realizaron con un nivel de significacióndel RB.

En la tabla QKV se muestra la probabilidadde la comparación de la tasa de emergenciasegún los diferentes métodos de cálculo deÖÇ. La ausencia de diferencias estadísticasentre dichas comparaciones indica que el em-pleo de cualquiera de las tres formas de ÖÇ esindistinto durante el primer vuelo de la tem-porada.

Tabla 4.8. Principales indicadores de ajuste del modelo para la emergencia del primer vuelo de la tem-porada según los distintos métodos de cálculo de los grados días en los años OMMSLMTLMULNM y NN.

Tabla 4.9. Probabilidades correspondientes a la comparación de a pares de la tasa de emergencia delprimer vuelo de adultos de carpocapsa y las diferentes metodologías de cálculo de ÖÇ=EëíI=ëë=ó=~îF paralos años OMMSI=MTI=MUI=NM y NN.

Año GDST-SS

GDST-AV

GDSS-AV

2006 0,9964 0,9306 0,927

2007 0,2784 0,6812 0,8652

2008 0,9868 0,9453 0,968

2010 0,9614 0,9026 0,7794

2011 0,9992 0,6731 0,6745

Emergencia Año

Indicador Grados Día 2006 2007 2008 2010 2011

R2

ST 0,9863 0,9894 0,9869 0,9486 0,9883

SS 0,9909 0,9901 0,7446 0,9447 0,9872

AV 0,9867 0,9887 0,5598 0,9483 0,9884

EF

ST 0,9946 0,9965 0,9945 0,9783 0,9944

SS 0,9965 0,9967 0,7090 0,9779 0,9919

AV 0,9946 0,9964 0,7394 0,9780 0,9945

ß0

ST -4,513 -5,167 -4,314 -4,501 -6,467

SS -4,815 -5,465 -4,610 -4,503 -6,767

AV -3,923 -4,425 -3,657 -3,874 -5,301

ß1

ST 0,013 0,015 0,011 0,012 0,015

SS 0,013 0,016 0,011 0,012 0,016

AV 0,011 0,013 0,009 0,011 0,014

ê2: bondad de ajuste - ÉÑ: eficiencia - ß0 y ß1: parámetros del modelos.


92


En la tabla QKNM se detalla la probabilidadde la tasa de cambio de la emergencia del pri-mer vuelo de adultos de carpocapsa entre losdiferentes años para cada método de GradoDía. Estos valores indican que teniendo encuenta los tres métodos de cálculo de ÖÇ=EëíIëë=ó=~îF la tasa de cambio de la emergenciafue la misma para los años en estudio.

Este análisis permite concluir que la me-todología de cálculo ëí sería la más apropiada

para ser utilizada debido a que representaríamás convenientemente la evolución de latemperatura diaria lo que se ve reflejado enuna buena estimación de los eventos biológi-cos bajo estudio. Aunque estadísticamente nohubo diferencias significativas entre los dis-tintos métodos, los valores de ëí siempre semantuvieron por encima del ëë y por debajodel ~î.

GDComparación de años

2006-2007 2006-2008 2006-2010 2006-2011 2007-2008 2007-2010 2007-2011 2008-2010 2008-2011 2010-2011

ST 0,8790 00,8911 0,8473 0,8532 0,8082 0,5573 0,7820 0,8970 0,7664 0,7874

SS 0,5727 00,9224 0,9707 0,8565 0,6617 0,5334 0,7827 0,9317 0,7659 0,7576

AV 0,8965 00,9096 0,9400 0,1459 0,8147 0,9371 0,7887 0,8836 0,8310 0,7831

Tabla 4.10. Registros de grados día necesarios para la obtención del valor de finalización del Oø vuelo decarpocapsa en la temporada, en el Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

Figura 4.4. Concentración de la emergencia del primer vuelo (percentiles - éNMI=éORI=éRMI=éTR=y éVM)para los distintos métodos de cálculo de grados día en los años OMMSLMTLMULNM y NN.



Para la emergencia del primer vuelo de latemporada se realizó una comparación entreaños según los diferentes cálculos de ÖÇ paralos distintos percentiles considerados EéNMIéORI=éRMI=éTR=y éVMF (Fig. QKQ).

Las diferencias estadísticas son altamentesignificativas a partir del RMB de emergenciadel primer vuelo EéRMF entre el OMMT y el restode los años. Si bien en los percentiles inferio-res EéNM=y éORF se observaron algunas diferen-cias, éstas no son altamente significativas.

A partir de la mediana de la distribuciónEéRMF se observa que el año OMMT necesitó másgrados día acumulados para la misma con-centración de emergencia. Lo sucedido en elaño OMMT se podría relacionar con una mayoracumulación de horas de frío con temperatu-ras por debajo de Tø` (http://anterior.inta.gov.ar/altovalle/met/horas.htm) durante el in-vierno (Tabla QKNN).

b-Eclosión de huevos

En la figura QKR, se observa en el panel de laizquierda el ajuste del modelo logístico parala proporción acumulada de eclosión de hue-vos de las temporadas OMNM y OMNN de maneraconjunta, en función de los grados día acu-mulados calculados a través del método es-tándar EÖÇ=ëíF. En el panel de la derecha seve la validación del modelo a través del mé-todo de Knigth, confirmándose su buenajuste mediante los principales indicadores(bondad de ajuste êOÒ; coeficiente de eficien-cia ÉÑÒ; estimación de los parámetros ß0 y ß1del modelo logistic) que se muestran en laTabla QKNO (Menni et al., OMNO).

Tabla 4.11. Horas de frío por debajo de Tø` acumuladas para los estados fenológicos de brotación y flo-ración. Registros obtenidos de estación meteorológica áåí~ Alto Valle. Clmte Guerrico. Río Negro.

Estado fenológico (*)AÑO

2006 2007 2008 2010 2011

Brotación (C1) 1316 1778 1643 1511 1499

Floración (F2) 1396 1921 1738 1625 1584

(*) Manzano Red Delicious. Método Fleckinger.

Figura 4.5. Ajuste y Validación del modelo logistic para la “proporción acumulada” de la eclosión dehuevos del conjunto OMNM y OMNN.


94

En la fig. QKS se observan los grados díanecesarios para la eclosión de huevos de pri-mera generación (conjunto de datos corres-pondientes a las temporadas OMNM y OMNN),correspondientes a los valores de percentilesJ=éNMI=ORI=RMI=TR=y VM.

En la misma figura se observa que los ÖÇ~î poseen un valor inferior a los ÖÇëí y ÖÇëëal inicio de la temporada y superior a los mis-mos en diciembre cuando las temperaturasson superiores. Esto se debe a que el métodode cálculo ÖÇ=~î no posee umbral superiorprovocando una acumulación de unidades fi-siológicas de desarrollo con temperaturas porencima de los POø`I momento en que el de-sarrollo de la plaga está frenado.

El análisis de los datos hasta aquí presen-tados es el primer aporte a la elaboración delnuevo “modelo de predicción” de carpocapsa

en la Norpatagonia. En los años siguientes secontinuará recabando la información necesa-ria para confirmar los eventos biológicos co-rrespondientes a la segunda y tercerageneración, a la vez que se realizará la valida-ción a campo del modelo. La misma deberáestar acompañada de programas o estrategiasespecíficas de control con el fin de corrobo-rar los momentos adecuados de controlsegún las diferentes densidades poblacionalesde la plaga. Esta herramienta permitirá man-tener las poblaciones de la plaga por debajode MINB de frutos afectados a cosecha y a suvez disminuir el número de insecticidas, y deeste modo producir frutas frescas con un mí-nimo de residuos en frutos (número de ingre-dientes activos y cantidad de cada uno deellos) o bien alcanzar la denominada produc-ción “residuo M”.

Tabla 4.12. Principales indicadores de ajuste del modelo para la eclosión de huevos de carpocapsa segúnlos distintos métodos de cálculo de los grados días para las temporadas OMNM y OMNN en forma conjunta.

Indicadores ST SS AV

R2 0,9511 0,9637 0,9546

EF 0,9661 0,9751 0,9682

ß0 -8,611 -9,293 -7,702

ß1 0,013 0,014 0,011



Figura 4.6. Concentración de la eclosión de huevos de la primera generación de carpocapsa (percentiles- éNMI=éORI=éRMI=éTR=y éVM) para los distintos métodos de cálculo de grados día en los años OMNM y NN demanera conjunta.



96


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Cambios en la susceptibilidad adiferentes insecticidas empleadosen Argentina

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Con el objeto de determinar el posible cam-bio de susceptibilidad de las poblaciones sal-vajes de carpocapsa a los insecticidas quehabitualmente se utilizan para su control enlos montes de frutales de pepita de la regióndel Alto Valle de Río Negro y Neuquén, serealizó un gran número de ensayos toxicoló-gicos y bioquímicos. Dichos ensayos se ini-ciaron sobre el estado de larvas diapausantesy en la actualidad se hacen sobre larvas neo-natas. En la mayoría de los casos se utilizó lametodología áê~Å (Insecticide Resistance ActionCommittee) consensuada a nivel internacionalpor los científicos que trabajan en la evaluaciónde la susceptibilidad de artrópodos y agentesque provocan enfermedades en cultivos.

Hasta el OMMS, en los montes de manza-nos y perales de Argentina y particularmenteen Río Negro y Neuquén, el insecticida másutilizado era el metil azinfos (ãe~z). En eseentonces existían un gran número de antece-dentes a nivel mundial referidos a la selecciónde poblaciones resistentes a dicho insecticida(Cichón et al., OMMS). Por esa razón, se reali-zaron monitoreos de poblaciones salvajes decarpocapsa para determinar el riesgo de con-tinuar con dichas aplicaciones en los montesfrutales de la región.

Para ello se evaluó la toxicidad a metilazinfos en larvas diapausantes de Cydia pomo-

nella provenientes de montes frutales con dis-tintos niveles de presión de selección de in-secticidas a través de dosis discriminantes yde la completa relación dosis-respuesta. Enlos ensayos con dosis discriminante de meti-lazinfos (OIR=Ö=ãe~z/larva) se determinaronporcentajes de mortalidad significativamentemenores (PTITNJUQIONB) con respecto a lapoblación de referencia a campo (monte fru-tal con manejo orgánico), en tres de las ochopoblaciones evaluadas (Soleño et al., OMMU)(Tabla QKNP).

Por otro lado, se evaluó sobre larvas dia-pausantes, la toxicidad del ãe~z a nivel de laÇä50 en NQ poblaciones colectadas en toda laregión productiva de las provincias de RíoNegro y Neuquén determinándose grados deresistencia (Çä50 población campo/Çä50 po-blación susceptible) entre MIT y UIT. Las po-blaciones que presentaron diferenciassignificativas con la de laboratorio fueranaquellas colectadas en los extremos del valleproductivo (San Patricio del Chañar, GeneralConesa y Río Colorado). Por el contrario, laspoblaciones que presentaron niveles de resis-tencia significativamente mayores fueron co-lectadas en el centro del área productiva,entre las localidades de Cinco Saltos y VillaRegina (Soleño et al., OMNO) (Tabla QKNQ).


98

Tabla 4.13. Porcentajes de mortalidad a la dosis diagnóstico de ãe~z (OIR µg ãe~z/larva) en larvas dia-pausantes de C. pomonella recolectadas en chacras con tratamientos químico, orgánico y experimental.


Año de recolección Población1 n Mortalidad (%)2

2003

C. Saltos 1 (o) 61 96,55

Allen 1 60 38,33***

Allen 2 57 84,21***

Centenario 56 92,85

2004

C. Saltos 1 (o) 96 91,66

V. Azul 2 (o) 57 98,24*

Guerrico (e) 56 98,21*

Gral. Roca 1(e) 55 98,18*

V. Alegre 80 60,34***

2005

C. Saltos 1 (o) 80 91,25

V. Alegre 55 37,71***

V. Regina 1 60 90,00

1 (o) chacra con tratamiento orgánico; (e) chacra experimental del áåí~. Las restantes poblaciones provienen de mon-tes frutales con control químico convencional.

2 Las diferencias estadísticas de mortalidad fueron calculadas en comparación con las poblaciones de referencia decada año. * é < MIMR; ** é < MIMN; *** é < MIMMN.

Población a N Pendiente X2 P DL 50(LC 95%) b

GR c(LC 95%)

Laboratorio 329 6,27 2,46 0,29 0,18 (0,13-0,22) --

Conesa 205 3,47 0,48 0,49 0,12 (0,07-0,16) 0,7 (0,5-1,0)

C. Grande 150 2,17 3,39 0,18 0,22 (0,16-0,29) 1,2 (0,9-1,7)

R. Colorado 170 3,44 0,30 0,58 0,22 (0,18-0,28) 1,3 (1,0-1,6)

El Chañar 1 190 1,27 0,91 0,92 0,31 (0,19-0,46) 1,8 (1,1-2,7) *

P. Córdoba 90 1,99 0,16 0,92 0,41 (0,27-0,60) 2,3 (1,5-3,4) *

V. Regina 4 178 2,22 3,14 0,54 0,46 (0,36-0,59) 2,6 (2,0-3,4) *

V. Regina 5 357 1,50 5,28 0,26 0,46 (0,36-0,59) 2,6 (2,0-3,4) *

Gral. Roca 1 (e) 140 3,62 0,73 0,69 0,48 (0,35-0,62) 2,7 (2,0-3,6) *

Cipolletti 2 310 2,01 3,55 0,47 0,51 (0,42-0,62) 2,9 (2,3-3,6) *

Cipolletti 1 130 2,00 1,89 0,60 0,55 (0,39-0,79) 3,1 (2,2-4,4) *

V. Regina 3 189 1,36 2,66 0,75 0,81 (0,57-1,16) 4,6 (3,1-6,6) *

V. Azul 3 140 4,22 2,99 0,22 0,92 (0,77-1,07) 5,2 (4,3-6,3) *

Allen 3 (e) 180 3,12 1,91 0,59 0,97 (0,75-1,18) 5,5 (4,3-7,0) *

C. Saltos 2 140 2,90 2,40 0,49 1,00 (0,82-1,17) 5,6 (4,5-7,0) *

V. Regina 2 178 2,00 0,94 0,82 1,13 (0,87-1,50) 6,4 (4,8-8,5) *

V. Regina 1 90 2,42 1,19 0,55 1,55 (1,13-2,16) 8,7 (6,3-12,1) *

Tabla 4.14. Toxicidad de ãe~z en larvas diapausantes de C. pomonella recolectadas en diferentes localida-des del valle de Río Negro y Neuquén.

a Todas las poblaciones de campo ensayadas fueron recolectadas en montes frutales con tratamiento químico, a excep-ción de dos poblaciones bajo tratamiento experimental (e).

b µg ãe~z/larva.c Grado de resistencia = Çä50 campo/Çä50 laboratorio. Los niveles de resistencia fueron estadísticamente diferentes

cuando los límites de confianza de los Öê no incluyeron al valor N.



Por otro lado, se evaluó la toxicidad a unadosis discriminante de ãe~z (O ppm), aceta-miprid (MIT ppm) y tiacloprid (N ppm) en lar-vas neonatas provenientes de NQ montesfrutales. Todas las poblaciones de campo pre-sentaron porcentajes de mortalidad significa-tivamente menores que la cepa susceptibletanto en los ensayos con el organofosforadocomo con los neonicotinoides. Mientras quese determinó una correlación positiva signifi-cativa (r=MIRQ; pYMIMR) entre la mortalidad atiacloprid y metilazinfos, la correlación entreacetamiprid y tiacloprid (r=MIPR) y acetami-prid y metilazinfos (MINO) fue no significativa(Cichón et al., OMNN) (Tabla QKNR).

Todas las poblaciones bajo tratamientoconvencional presentaron actividades de este-rasas significativamente mayores que la po-blación de laboratorio y que la poblaciónbajo tratamiento orgánico independiente-mente del estado del insecto utilizado (neo-natas o diapausantes). En larvas diapausantesse determinó una correlación significativa(r=JMITV; pYMIMR) entre actividad y mortalidada la dosis discriminante de metil azinfos (So-leño et al., OMMU). Por otro lado, la asociaciónentre actividad de glutatión ë-transferasa ymortalidad (r=JMIPP) fue no significativa (So-leño et al., OMMU) (Tabla QKNS).

PoblaciónMortalidad % (n)1

Actividad de ECOD2

Acetamiprid Metil azinfos Tiacloprid

Laboratorio 99 (140) 99 (160) 99 (200) 3,81 (118)

Cinco Saltos 42,4 (98) 90,2 (82) 25,1 (98) 13,30 (75)

Conesa 1 68,8 (45) 16,67 (45) 32,1(45) 17,12 (76)

G. Roca 1 24,8 (125) 66,2 (152) 35,8 (127) 16,25 (89)

G. Roca 2 50 (105) 37 (70) 55,6 (60) 9,78 (88)

Godoy 30 (25) 89,3 (35) 78,6 (35) 6,29 (56)

Guerrico 2 34 (97) 50,3 (102) 32,7 (112) 11,05 (77)

Ing. Huergo 51,6 (82) 17,9 (45) 32,1 (87) 12,55 (52)

Río Colorado 1 41,7 (80) 85 (25) 88,2 (30) 8,81 (92)

Río Colorado 2 59,4 (65) 44,4 (75) 50 (90) 6,48 (24)

Río Colorado 3 34 (42) 8 (60) 38,5 (75) 8,20 (122)

Viedma 61 (60) 74,7 (75) 33 (70) 8,13 (99)

Villa Regina 1 62,5 (60) 55,9 (60) 72,3 (40) 5,49 (80)

Villa Regina 3 43,4 (83) 29,5 (100) 40,8 (125) 17,47 (84)

Villa Regina 4 51,1 (70) 16,9 (80) 14,8 (65) 7,74 (31)

Tabla 4.15. Ensayos toxicológicos y bioquímicos en larvas neonatas de Cydia pomonella correspondientesa montes de manzanos del Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

1 Mortalidad a las dosis discriminantes de cada insecticida: MITX=O y N ppm para acetamiprid, metil azinfos y tiacloprid,respectivamente.

2 Actividad de la enzima T-etoxicumarina ç-deetilasa expresada en pg T-hidroxicumarina/insecto/min.


100


Tabla 4.16. Estudios bioquímicos realizados con poblaciones de larvas diapausates de Cydia pomonella deuna cepa susceptible de laboratorio y poblaciones de campo.

a (µmol min-1 mg-1 proteína). b Medias en cada columna seguidas por la misma letra no presentan diferencias significativas (αZMIMN).c n.d.= no determinado.

Año de recolecciónActividad enzimáticaa (± DS)b

Esterasas GSTc

Laboratorio 2004 0,040 (0,0049)d 0,80 (0,017) a

Cinco Saltos2003 0,029 (0,0058) a 0,077 (0,029) a

2004 0,024 (0,0062) ab 0,096 (0,033) a

Allen 1 2003 0,14 (0,019) c 0,24 (0,040) b

Allen 2 2003 0,14 (0,026) c 0,27 (0,074) b

Centenario 2003 0,018 (0,0072) b 0,27 (0,057) b

General Roca 2004 0,019 (0,0069) b 0,10 (0,045) a

Guerrico 2004 0,045 (0,012) d 0,077 (0,041) a

Valle Azul 2004 0,062 (0,0088) 0,091 (0,033) a

Villa Regina 2005 0,18 (0,036) c n.d.

Vista Alegre2004 0,13 (0,037) c 0,21 (0,034) b

2005 0,20 (0,10) c n.d.

En estudios posteriores realizados con po-blaciones colectadas en un amplio rango geo-gráfico se observó una alta asociación entreactividad de esterasas y mortalidad a nivel deÇä50 de metilazinfos (r=MIUV; éYMIMN) (Soleñoet al., OMNO). Finalmente, la actividad de laenzima T-etoxycumarina ç-deetilasa EÉÅçÇFpresentó una correlación significativa(r=MKSV; éYMKMR) con la mortalidad a nivel dela Çä50 (Soleño et al., OMNO) (Tabla QKNT). Porsu parte, el estudio de la actividad de ÉÅçÇ enlarvas neonatas mostró que más del TMB delas poblaciones de campo presentaron nivelesenzimáticos significativamente mayores (NIQ aQIS veces) que la población susceptible(Media=PIUN; ëÉã=MIMOT) (Cichón et al.,OMNP) (Tabla QKNT).

En conclusión, las poblaciones de campode C. pomonella mostraron menor susceptibi-lidad al organofosforado metilazinfos y a losneonicotinoides acetamiprid y tiacloprid. Asu vez, la respuesta de las poblaciones estuvorelacionada con la historia de aplicación deinsecticidas en los montes frutales, tanto enel tipo de tratamiento (orgánicos vs conven-cionales) como con la localización de los mis-

mos (aislamiento geográfico, etc.). La menorsusceptibilidad a los insecticidas ensayadosestuvo asociada a una mayor actividad detoxi-ficante de las enzimas esterasas y oxidasas defunción mixta.

Por otra parte, debido al nuevo registrode insecticidas y a su rápida inclusión en losprogramas sanitarios a causa de las crecientesrestricciones de uso de los insecticidas ór-gano fosforados, se decidió realizar las líneasbase de los insecticidas novaluron, rynaxypyr,benzoato de emamectina y spinetoram (datosen proceso de publicación). Para ello se em-plearon individuos susceptibles (larvas neona-tas) pertenecientes a la cría artificial áåí~=ÓÉÉ~ Alto Valle (Tabla QKNU).

Población



Tabla 4.17. Actividades enzimáticas en poblaciones salvajes de larvas diapausantes de Cydia pomonella enel Alto Valle de Río Negro y Neuquén.

a Las actividades de Éëí y ÉÅçÇ están dadas en µmol Jå min-1mg-1prot-1 y pg TJçÜÅ insecto-1 min-1, respectivamente.b Las actividades en cada columna fueron comparadas por ~åçî~ y Unequal å post hoc análisis (*éYMKMR; ** éYMKMN y

***éYMKMMN).

Tabla 4.18. Parámetros correspondientes a las líneas base de mortalidad de los insecticidas novalurón,rynaxypyr, benzoato de emamectina y spinetoran efectuadas sobre individuos susceptibles de C. pomonellapertenecientes a la cría artificial áåí~ Alto Valle.

N X2 p PendienteCLx (LC 95%)

CL10 CL50 CL99

novalurón 480 0,90 0,83 2,20 0,10(0,05- 0,16)

0,39(0,29-0,49)

4,45(3,00-8,14)

rynaxypyr 1200 5,79 0,21 1,91 0,0041(0,0030-0,0052)

0,0191(0,0165-0,0219)

0,3157(0,2284-0,4780)

benzoato de emamectina 444 4,51 0,10 7,41 0,004(0,0033-0,0043)

0,006(0,005-0,0036)

0,012(0,010-0,015)

spinetoram 360 3,95 0,14 2,78 0,012(0,008-0,016)

0,035(0,028-0,043)

0,24(0,16-0,46)

Posteriormente, empleando la dosis dis-criminante EÇÇF de los insecticidas menciona-dos, se determinó la susceptibilidad de másde OT poblaciones salvajes extraídas de mon-tes frutales de manzanos y perales las que secompararon con la población perteneciente ala cría artificial (individuos susceptibles).Estos datos se encuentran en el proceso deanálisis y evaluación. Esto permitirá compararla susceptibilidad de las poblaciones de car-

pocapsa previa al empleo masivo de los nuevosinsecticidas con modos de acción diferentes alos tradicionales, y luego de años de uso. Estesimple dato es fundamental para diseñar es-trategias de intervención a corto y medianoplazo y verificar que las estrategias de manejode la resistencia implementadas estén funcio-nando adecuadamente. Esto redundará en unmenor y más adecuado uso de los insecticidasen frutales de pepita.

Insecticida

Localidad PoblaciónESTa ECODa

n Mediab n Mediab

Laboratorio Sc 35 0.049 ± 0.0037 45 18.6 ± 2.63

Valle Azul VAz 45 0.140 ± 0.0072 *** 110 38.9 ± 2.16***

Gral. Conesa Con 13 0.044 ± 0.0071 80 27.3 ± 1.99

Allen An 47 0.164 ± 0.0079*** 97 49.7 ± 3.49***

Río Colorado RCol - n.a. 92 63.7 ± 4.47 ***

Villa Regina

VR1 27 0.227 ± 0.0167 *** 47 86.0 ± 6.30***

VR2 63 0.134 ± 0.0094 *** - n.a.

VR3 - n.a. 86 58.2 ± 4.79***

Gral. Roca GRc - n.a. 76 49.7 ± 4.77***

CipollettiCip1 28 0.086 ± 0.0045 - n.a.

Cip2 38 0.144 ± 0.0085 *** 42 57.6 ± 6.00 ***

S. P.Chañar ECh 21 0.106 ± 0.0050 * 44 38.6 ± 4.76*

Cinco SaltosCS1 22 0.131 ± 0.0073 *** - n.a.

CS2 47 0.156 ± 0.0072*** - n.a.

Localidad


102

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Control biológico del gusano de lapera y la manzana

Hernández, C. M.; Garrido, S.; Viscarret, M.; Botto, E. N.; Cichón, L. y J. Lago

El desarrollo de estrategias de manejo de pla-gas basado en tácticas de control con un mí-nimo impacto ambiental negativo constituyeuno de los paradigmas en que se asienta ac-tualmente la sostenibilidad de los sistemasagrícolas productivos. El control biológico,definido como el manejo de los enemigos na-turales de las plagas, se enmarca dentro deeste contexto. Cydia pomonella, comúnmentellamada carpocapsa, es la principal plaga queafecta a la producción de manzanas y otraspomáceas en el mundo, y en particular en laArgentina. Es una especie exótica para nues-tro país carente de enemigos naturales nati-vos que puedan regular su abundancia demodo eficiente. Este fue el fundamento prin-cipal que dio lugar al desarrollo en el añoOMMP de un programa de control biológicopara C. pomonella en el Alto Valle de RíoNegro que contempló el empleo de tácticasde control biológico clásico, basadas en la in-troducción de enemigos naturales exóticosespecíficos de C. pomonella y de control bioló-gico inundativo utilizando al parasitoide oó-fago Trichogramma nerudai (Hymenoptera:Trichogramatidae). Este proyecto de controlbiológico se ha venido desarrollando exitosa-mente hasta el presente.

Dos especies de enemigos naturales espe-cíficos de carpocapsa, el parasitoide larval,

Mastrus ridibundus (Hymenoptera: Ichneu-monidae), y el parasitoide ovo-larval, Ascogas-ter quadridentata (Hymenoptera: Braconidae),fueron introducidos EOMMQJRF, multiplicadosen el laboratorio y colonizados en el AltoValle entre OMMR y OMNO según tácticas decontrol biológico clásico (Botto et al., OMMRa;Hernández et al., OMMT). Superado el procesode cuarentena de acuerdo con las normas in-ternacionales vigentes, los enemigos natura-les se multiplicaron sobre su huésped natural(C. pomonella) en el Insectario de Investiga-ciones para Lucha Biológica de áåí~=J=áãóò~,Castelar (Gómez et al., OMNM). La disponibili-dad en tiempo y forma de estos enemigos na-turales posibilitó evaluar aspectos básicos desu biología y estructurar en base a esto lastácticas de manejo más adecuadas para sucolonización en el campo en función de lascaracterísticas del sistema productivo del AltoValle. Los estudios en el laboratorio incluye-ron: la evaluación de aspectos sobre los ciclosde vida, la preferencia de huéspedes (C. pomo-nella y C. molesta) y la compatibilidad entreinsecticidas de uso habitual para el control decarpocapsa y los enemigos naturales (Foto RT).Ambos enemigos naturales fueron coloniza-dos a través de liberaciones inoculativas enfunción de la dinámica poblacional de laplaga y del modo de acción de los parasitoides.



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El desempeño de los enemigos naturales enel campo se estimó en base al parasitismo deC. pomonella y a su capacidad de dispersión apartir de los centros de liberación Entre losprincipales productos obtenidos en estas in-vestigaciones pueden destacarse: 1- la deter-minación de los principales parámetrosbiológicos de A. quadridentata y M. ridibundus(Hernández et al., OMMUb), 2- la compatibili-dad de uso de M. ridibundus e insecticidascomo CarpovirusPlus®, Coragen® y Rimon®,3- A. quadridentata y M. ridibundus se adapta-ron a las condiciones climáticas de la región y4- ambos enemigos naturales se han estable-cido en el Alto Valle, tal como se desprendede los recobros posteriores a su liberación(Fotos RTI=RU y RV). (Hernández et al., OMMUa;Hernández et al., OMMV; Hernández et al.,OMNM; Hernández et al., OMNN). El estableci-miento de estos enemigos naturales de C. po-monella, tiene un valor estratégico desde elpunto de vista del manejo integrado de laplaga, ya que de consolidarse el accionar deestos parasitoides se habrá adicionado al am-biente una causa de mortalidad previamenteno disponible en el sistema para las condicio-nes del Alto Valle. Si bien los logros obtenidoshasta el momento respecto de la colonizaciónde los enemigos naturales exóticos en el AltoValle son alentadores, es necesario fortalecerla presencia activa de los mismos tanto en lasáreas actualmente colonizadas como en nue-vos sitios a los efectos de consolidar su esta-blecimiento definitivo en el área.

El parasitoide oófago Trichogramma, esuno de los enemigos naturales de mayor utili-zación a nivel mundial en programas de con-trol biológico inundativo de lepidópterosplaga (Fotos SM y SN). Los estudios efectua-dos en relación con el empleo de este ene-migo natural para el control de carpocapsa enel Alto Valle representaron el primer intentode implementación de esta técnica a nivel na-cional (Foto SO). Las investigaciones desarro-lladas incluyeron entre otros aspectos: 1-selección de candidatos en base a sus princi-pales atributos biológicos, 2- desarrollo deun sistema de producción masiva del ene-migo natural seleccionado, 3- evaluación enel campo del desempeño del enemigos natu-

rales y 4- evaluación de la compatibilidad deempleo de los enemigos naturales con insec-ticidas empleados en el control de C. pomone-lla. Entre los resultados más relevantesobtenidos hasta el momento pueden mencio-narse: 1- Trichogramma nerudai resultó la es-pecie más adecuada para ser empleada en elcontrol biológico de carpocapasa (Botto et al.,OMMRb); 2- esta especie es factible de ser pro-ducida masivamente en el laboratorio sobreel huésped ficticio Sitotroga cerealella, entiempo, forma y cantidad adecuadas; 3- T. ne-rudai mostró en evaluaciones de campo quetiene potencial para ser empleada en estrate-gias de control biológico inundativo (exce-lente capacidad de dispersión y aceptablesniveles de parasitismo) (Hernández et al.,OMMS; Hernández et al., OMNN); 4- sus libera-ciones inundativas durante el primer pico deoviposion de carpocapsa contribuirían a re-ducir el impacto negativo de la primera gene-ración de la plaga (Fig. QKT); 5- la integracióndel enemigo natural con insecticidas de bajoimpacto ambiental (Bacillus thuringinesis) esfactible y abre un excelente potencial para elempleo de este biocontrolador en produccio-nes orgánicas.

Figura 4.7. Fruta dañada obtenida en parcelas ex-perimentales infestadas con carpocapsa en los tra-tamientos sin (Testigo) y con liberacionesinundativas (Liberación) de Trichogramma nerudaien dos momentos (Previo) y (Final) de la primerageneración.



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Patógenos cuarentenariospresentes en Argentina

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Plum pox virus(Sharka)

Marini, D.; Rossini, M.; Dal Zotto, A.; Porcel, L. y L. Arroyo

IntroducciónNombre del agente y sinonimias Hospedantes Sintomatología Ciruelos Damascos Durazneros y nectarinos Distribución en el país Epidemiología

Transmisión Periodo de incubación Distribución espacial y temporal de la enfermedad

Técnicas de detección Inspección visual Test biológicos Test serológicos Test moleculares

Manejo de la enfermedad Monitoreo Análisis de plantas madre del género Prunus Bibliografía

Å~é∞íìäç=R

Frutales de carozo

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109mä~Ö~ë=`ì~êÉåíÉå~êá~ë=ÇÉ=cêìí~äÉë=ÇÉ=ä~=oÉé∫ÄäáÅ~=^êÖÉåíáå~

^î~åÅÉë=Éå=äçë=êÉëìäí~Ççë


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Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòç=J Plum pox virus

Introducción

La enfermedad del sharka, causada por elPlum pox virus EééîF, es considerada la virosismás importante que afecta a los frutales decarozo en términos de impacto económico yagronómico (Németh, NVUS). Fue descriptapor primera vez en ciruelos (Prunus salicina L.)en NVNT y en damascos (Prunus armeniaca L.)en NVPP en Bulgaria (Atanasoff, NVPO; NVPR).Al principio la enfermedad se difundió lenta-mente por toda Europa del este, luego co-menzó a difundirse mas rápidamentedetectándose en Francia en NVTM y en Españaen NVUQ. Sin embargo, recién en el año NVVOel virus se detectó en el continente ameri-cano, describiéndose en la zona central deChile. En NVVU fue detectado en EstadosUnidos y en el OMMM en Canadá (Herrera,NVVQ; Levy et al., OMMMa; Thompson et al.,OMMN). También ha sido detectado en Egipto,India, China, Irán, Kazakhstan, Pakistán yJapón (Mazyad et al., NVVO; Bhardwaj et al.,NVVR; Navratil et al., OMMS; Capote et al., OMMS;Barba et al., OMNM; Fujiwara et al., OMNN).

En Argentina esta enfermedad fue detec-tada por primera vez en diciembre de OMMQen el departamento de Pocito, provincia deSan Juan, en plantas de damasco y ciruelo ja-ponés (Dal Zotto et al., OMMS). Las plantasafectadas fueron erradicadas en una acciónconjunta de los organismos provinciales y na-cionales de control de sanidad vegetal y losproductores frutícolas involucrados.

El sharka constituye la virosis más impor-tante del cultivo del género Prunus. En losúltimos PM años ha significado un gasto demás de NP billones de dólares en todo elmundo. En muchos países los frutos infecta-dos son rechazados para consumo interno, nopueden ser exportados o no son aceptadospor la industria dado el sabor amargo que laenfermedad les produce. La limitación tam-bién puede extenderse a la exportación dematerial vegetal de multiplicación comoyemas y portainjertos dado que los paísescompradores necesitan asegurarse de la sani-dad del material a importar con la finalidadde evitar el ingreso del sharka. En general laenfermedad es considerada grave por varios

factores: la rápida diseminación por vectores,el severo daño que produce sobre los frutosque los hace no comercializables y que la ma-yoría de los cultivares comerciales disponi-bles son susceptibles. A ello debe agregarseque como todas las virosis que afectan a lasplantas, no disponen de un método de con-trol eficiente y que su diagnóstico presentadificultades dada la distribución irregular delvirus en la planta (Cambra et al., OMMS).

Nombre del agente y sinonimias

Es producida por un virus del género Potyvi-rus, familia Potyviridae, el Plum pox virus. Esel único Potyvirus que infecta al género Pru-nus. La enfermedad también es conocidacomo “Viruela del ciruelo” y el virus como“Virus del sharka” (Németh, NVUS).

En la actualidad, este virus presenta sieterazas: ééîJÇ (Dideron), ééîJã (Marcus), ééîJÉ~ (El Amar), ééîJÅ (Cherry), ééîJêec (Re-combinante), ééîJï (Winona) (Gildow, OMMN)y ééîJí (Serce et al., OMMV). La raza presenteen Argentina es la del tipo Ç (Dal Zotto et al.,OMMS). ééîJÇ fue aislada por primera vez enFrancia, es la más común en Europa, Sud-américa y ÉÉìì. Esta raza se caracteriza porno ser transmitida por semillas, afecta conigual grado de severidad a ciruelos y damascos,y es menos agresiva en durazneros [Prunuspersica (L.) Batsch] y nectarinos [P. persica (L.)Batsch nucipersica (Suchow) C. K. Schneidi].Debido a su difícil transmisión a hospedantesexperimentales y su baja eficiencia de propa-gación por vectores es considerada como unaforma no epidémica de ééî (Levy et al., OMMMb).

La raza ã es la más agresiva se dispersarápidamente por pulgones, afecta principal-mente duraznero y nectarino y, en menorproporción, ciruelo y damasco. No está ci-tada en América, es endémica del sudeste deEuropa. La raza É~ sólo ha sido identificadaen el norte de África. Afecta damasco y, enmenor proporción, ciruelo, duraznero y nec-tarino. La raza Å ha sido detectada solamenteen Europa, en cerezo (P. avium L.) y guindo(P. cerasus L.); mientras que la raza ï fue ais-lada en ciruelo europeo (P. domestica L.) enCanadá, y recientemente en Latvia, Ucrania



y Rusia, no se tiene información sobre suagresividad (Sheveleva et al., OMNO). La razaêec se da en muchos países de Europa delcentro y del este. Se comporta de forma simi-lar a la raza Ç. Por último, la raza í fue ais-lada en Ankara, Turquía, en damascos yciruelos en el OMMV (Serce et al., OMMV).

Recientemente, se han propuesto dosnuevas razas, ééîJÅê (Cherry Russia) aisladoen antiguas plantaciones de guindos en Rusiay ééîJ~n (Ancestor) aislado en ciruelos japo-neses en Albania (Glasa et al., OMNO; Palmi-sano et al., OMNO).

Hospedantes

ééî infecta bajo condiciones naturales árbolesfrutales del género Prunus (cultivares comer-ciales y portainjertos): damasco, ciruelo euro-peo, ciruelo japonés, duraznero, nectarinos,cerezo ácido y dulce, almendro (Prunus dulcis,Mill.), Prunus davidiana, Mahaleb (P. mahaleb),Mariana (P. marianna) y Myrabolán (P. cerasí-fera); entre otras. El virus también infecta aespecies ornamentales de Prunus tales comoP. besseyi, P. insititia, P. tomentosa, P. triloba, P.cistena, P. laurocerasus, P. glandulosa y P. spinosa(Cambra et al., OMMO), las cuales se han trans-formado en una fuente natural importante deinfección (Auger & Esterio, NVVR). Se hacomprobado que el virus también se puedealojar en malezas espontáneas, aunque sepiensa que el rol de éstas como reservorio delvirus es probablemente insignificante (Levyet al., OMMMb). El virus puede ser transmitidoartificialmente a numerosos tipos de Prunus,los que son usados frecuentemente como hos-pederos experimentales para diferentes pro-pósitos de investigación (Cambra et al., OMMO).

Sintomatología

ééî se establece y se multiplica intracelular-mente en la planta, provocando distintas alte-raciones en los tejidos vegetales (Auger &Esterio, NVVR). Los síntomas de ééî aparecenen hojas, frutos, flores y carozos. Su intensi-dad varía con la especie y el cultivar de Pru-nus afectada, la raza del virus, la localización,edad de la planta, estado nutricional, estacio-

nes del año, temperatura, etc. La mayoría delas plantas afectadas recién muestran sínto-mas al tercer año de infección, y pueden estarrestringidos a una parte del árbol e incluso auna sola rama (Auger, NVVP). Algunos cultiva-res pueden permanecer asintomáticos (Levyet al., OMMMb).

A continuación se detallan los principalessíntomas en las distintas especies.

CiruelosEn hojas puede presentar clorosis en las ner-vaduras principales, puntos, manchas y ani-llos cloróticos bien delimitados en el centro ydifusos hacia fuera, que varían en su tamaño,forma y distribución (Foto SP). También pue-den aparecer hojas deformadas. Estos sínto-mas, se mantienen en toda la temporada,aunque son más notables en primavera. Losfrutos externamente pueden mostrar man-chas, líneas y/o anillos cloróticos que con eltiempo se vuelven necróticos, se agrietan,presentan amarronamiento de la pulpa y sereduce drásticamente su calidad comercial(Foto SQ) (Nemeth, NVUS; Levy et al., OMMMb).Al igual que la mayoría de las enfermedadesvirales, el sharka no mata al árbol, pero puedereducir drásticamente la productividad debidoa la pérdida de valor comercial, o la caída pre-matura de la fruta. Estos daños pueden llegaral NMMB en montes con altas infecciones vira-les y afectados por ééîJã (Nemeth, NVUS).

En Hungría se han observado cancrosverdosos en brotes de ciruelos infectados enotoño (Levy et al., OMMMb).

En Argentina no se han observado sínto-mas en frutos de ciruelo europeo cv. D´agenafectados por ééîJÇ, mientras que si se hanobservado severos síntomas en frutos de ci-ruelo japonés cv. Red Beaut (Porcel, com. per-sonal).

DamascosA inicio de la primavera aparecen en las hojaslíneas, bandas o anillos cloróticos difusos deforma y tamaño variables, que se ubican ge-neralmente en las nervaduras secundarias otambién en algunos casos en los bordes de lashojas; estos síntomas tienden a desaparecer amedida que aumenta la temperatura en verano


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y se distribuyen sólo en algunos brazos o ra-millas del árbol. Los frutos pueden presentaren su superficie protuberancias o depresionescirculares (Foto SR). La pulpa puede mostrarun aspecto corchoso y gomoso, haciendo elfruto no comestible. Es posible observar tam-bién caída prematura y abundante de frutos.La presencia de los síntomas en frutos aparecepoco antes de la maduración. Además en estaespecie es característica la formación de ani-llos o manchas circulares claras en los carozos(Foto SS) (Nemeth, NVUS; Levy et al., OMMMb).

Durazneros y nectarinosLos síntomas en el follaje son poco evidentesy consisten en líneas o pequeñas áreas cloró-ticas a lo largo de las nervaduras secundariasy terciarias, acompañados en algunos casoscon deformación de la lámina (Foto ST). Engeneral estos síntomas son más notables enplantas jóvenes o severamente rebajadas conla poda. En estas especies, la visualización delos síntomas en frutos se debe realizar duranteel período de cosecha. Consisten en manchaso anillos en la piel, pero no se producen de-formaciones. Las variedades de pulpa blancapresentan anillos de color blanco-verdoso yen las variedades de pulpa amarilla, éstos sonde un amarillo intenso (Foto SU). El carozono presenta síntomas. En algunos cultivaresse pueden observar manchas pigmentadas enpétalos de flores (Foto SV). En general, loscultivares de maduración temprana muestranmás síntomas en frutos que los de maduracióntardía (Nemeth, NVUS; Levy et al., OMMMb;Cambra et al., OMMO).


Hasta el presente, sólo dos focos de la enfer-medad del sharka han sido detectados en Ar-gentina. El original fue encontrado en eldepartamento de Pocito y en el Valle deTulúm, ambos en la provincia de San Juan,donde se han obtenido los valores de inciden-cia de la enfermedad más altos, entre MIP yNIUOB. La enfermedad fue detectada en ci-ruelo japonés (Prunus salicina cv. 'Red Beaut')y damasco (P. armeniaca cv. 'Bulida'). El se-gundo foco de infección apareció en la pro-

vincia de Mendoza, Oasis Sur, con bajos por-centajes de incidencia, entre MIP y MIMORB,detectándose en ciruelo europeo (P. domesticacv. `D’Agen´). Tras la confirmación del diag-nóstico por parte de áåí~, se dio aviso al ëÉJå~ë~ y se procedió a la erradicación inmediatade las plantaciones afectadas. En cuanto a losdaños que produce la enfermedad en el país,cabe aclarar que en el monte comercial deSan Juan donde se hizo la primera detección,la fruta estaba afectada prácticamente en unNMMB, incluso se producía su caída antes dela maduración. En los demás montes comer-ciales tanto de San Juan como de Mendoza,no se observaron daños de tal magnitud.

En las zonas productivas de las provinciasde Buenos Aires, Río Negro, Neuquén, Salta,Jujuy, Catamarca y en los Oasis Este y Vallede Uco de Mendoza, hasta el momento no hasido detectada la presencia de la enfermedad(Rossini et al., OMMV; Wagner, OMNM; Rossini etal., OMNO).

Epidemiología

TransmisiónLa transmisión del ééî ocurre principalmentede tres formas:1-Por material vegetal proveniente de árbo-

les infectados y que son utilizados comomaterial de propagación (yemas, estacas yportainjertos). Esta forma de transmisiónes la vía más frecuente de introduccióndel virus a zonas o países libres de la en-fermedad (Auger, NVVP).

2-Por distintas especies de áfidos (pulgones),que transmiten el virus en un proceso de-finido como no circulativo y no persis-tente. En la transmisión no circulativa elvirus se asocia temporalmente con super-ficies del interior del tracto digestivo delpulgón, pero sin cruzar barreras celulares,ni replicarse dentro del vector (Pirone,NVVN; Gray, NVVS). La transmisión de tipono persistente es aquella que se ve favore-cida por tiempos de adquisición cortos yayuno previo. El vector retiene los virusen forma infectiva por períodos breves, deminutos a horas. Los áfidos pueden ad-quirir el virus en un tiempo tan corto



como treinta segundos y pueden transmi-tirlo durante toda la hora siguiente y losque tienen abstinencia de alimentación lopueden hacer hasta tres horas después dela adquisición (Herrera, NVVQ; López-Moya& López-Abella, NVVR).

En la transmisión de los Potyvirus in-tervienen, al menos, dos proteínas virales,la proteína de la cápside viral y el factorde transmisión (helper component, ÜÅJPro). Este actuaría como intermediario opuente entre las partículas virales y el esti-lete del pulgón (Martínez-García et al.,OMMN).

En el mundo se conocen al menosveinte especies de áfidos que han mos-trado ser vectores del virus (Tabla RKN), delas cuales quince se encuentran presentesen Argentina (Ortego, OMMU). La eficien-cia de transmisión depende de muchosfactores, tales como la raza del virus, elcultivar y edad del hospedante, la especiede áfido y la época del año (Levy et al.,OMMMb). Los áfidos vectores más impor-tantes que fueron reportados en los dife-rentes países afectados por la enfermedaddel sharka son: Brachycaudus cardui (L), B.helichrysi (Kaltenbach), Myzus persicae

(Sulzer), y Phorodon humuli (Schrank). Enrelevamientos llevados a cabo con tram-pas amarillas ubicadas en el área cuarente-naria para sharka de la provincia de SanJuan se han identificado las siguientes es-pecies: Brachycaudus cardui (L), B. helychrysi(Kaltenbach), Myzus persicae (Sulzer),Uroleucon sonchi (L), Aphis spiraecola Patch,Hyalopterus pruni (Geoffroy), Lipaphis ery-simi (Kaltenbach), Macrosiphum euphorbiae(Thomas), Hyperomyzus lactucae (L), Hya-daphis coriandri (Das), Sipha maydis Passe-rini y Pemphigus sp. (Lanatti, Mazzitellicom. pers.).

No hay correlación entre la habilidaddel pulgón de transmitir ééî y la habilidadpara colonizar Prunus (Labonne et al.,NVVR).

Normalmente, el virus llega a un áreao región por el material de propagación yposteriormente se van infectando los ár-boles alrededor de los infectados previa-mente a través de los pulgones, generandoun típico patrón de dispersión a través devectores aéreos (Herrera, OMMV).

Generalmente, la propagación naturaldel virus es baja en invierno, pero elevadaen primavera y otoño (Levy et al., OMMMb).

Especie de Pulgón Coloniza Prunus HospedanteAphis arbuti No Arbutus unedoA. craccivora* No PolífagoA. fabae No PolífagoA. gossypii* No PolífagoA. hederae No Hedera helixA. spiraecola* Ocasionalmente Polífago; Manzano; CitricosBrachycaudus cardui Si Prunus; CompositaeB. helichrysi** Si Prunus; CompositaeB. persicae* Si PrunusDysaphis plantaginea No Manzano; PlantagoD. pyri No Peral; GalliumHyalopterus pruni* Si Prunus; FragmitesMacrosiphum rosae No Rosa; DipsaceaeMegoura rosae No LeguminoseaeMyzus persicae** Si PolífagoM. varians Si Duraznero; ClematisPhorodon humuli** Si Prunus; LúpuloRhopalosiphum padi No Prunus padus; GramineaeSitobion fragariae No Rosa; GramineaeUreleucon sonchi No Lactuca; Sonchus

Tabla 5.1. Especies de pulgones vectores de Plum pox virus

*Reconocidos vectores, ** Vectores más importantes. Datos comunicados por J.B. Quiot, áåê~, Montpellier, France.


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3-Los frutos infectados constituyen un tipoespecial de fuente, ya que ellos son trasla-dados entre diferentes localidades despuésde su cosecha, lo que puede contribuir a laexpansión de la enfermedad de un monte aotro (Levy et al., NVVR; Labonne and Da-llot, OMMS). Frutos inmaduros de cirueloD´agen infectadas con ééî (cosechados enenero) y sobre-maduros (cosechados enmarzo) presentaron altas concentracionesvirales en las semillas; mientras que enfrutos maduros (cosechados en febrero)tanto la semilla como la piel tuvieron ele-vadas concentraciones diferenciándosesignificativamente de la pulpa para lascondiciones de San Rafael, Mendoza, Ar-gentina. Estos resultados dan una primeraaproximación acerca de qué parte del frutoconviene muestrear para poder detectar elééî por la técnica serológica Ç~ëJÉäáë~(double-antibody sandwich enzyme linkedimmunosorbent assay) con resultadosconfiables, de acuerdo al grado de madu-rez del fruto. Asimismo los resultados ob-tenidos darían la pauta que este órganopodría ser una fuente extra de inóculo dela enfermedad (Marini et al., OMNM).

Numerosas evidencias sugieren que elééî no se transmite por implementos delabranza (tijeras de podar, maquinarias,etc.) (Levy et al., OMMMb). Algunos Potyvi-rus, género al que pertenece el virus delsharka, se transmiten por semillas en le-guminosas. La transmisión por semilla delvirus del sharka ha sido investigada enmuchos países con resultados contradicto-rios. En NVSN se reportó por primera veztransmisión por semillas en damasco(Szirmai et al., NVSN). Después de eso secitaron transmisiones por semilla en ci-ruelo, y duraznero (Savulescu & Macovei,NVSR; Coman & Cociu, NVTS; Nemeth &Kolber, NVUO). Sin embargo, experimen-tos llevados a cabo en los años VM usandotécnicas serológicas y moleculares no con-firmaron los primeros resultados (Eynardet al., NVVN; Dulic-Markovic and Rankovic,NVVT; Myrta et al., NVVU; Pasquini et al.,NVVU, OMMS; Glasa et al., NVVV). En un en-sayo realizado durante dos años consecu-

tivos con frutos maduros provenientes deplantas de ciruelo europeo cv. D´AgenTMT infectadas con ééî raza Ç de San Ra-fael, Mendoza, no se detectó la presenciadel virus en la semilla de los carozos defrutos enfermos, después de los TR días deestratificación a Q⁄` (durante el primeraño del ensayo) y después de los NNM díasde estratificación (en el segundo año delensayo) (Marini et al., OMNOa). Todas lasplántulas provenientes de los carozos es-tratificados dieron negativo por Éäáë~ ypor áÅJêíJéÅê (immunocapture reversetranscription polymerase chain reaction)para ééî después de O años de plantadas(Marini et al., OMNOb).

Período de IncubaciónEl período de incubación del virus es influen-ciado por la especie hospedera, el cultivar, laespecie del vector, el momento de infección yla raza de ééî (Nemeth, NVUS). En general, elperíodo de incubación puede tomar de nuevea trece meses, mientras que la propagaciónsistémica a toda la planta en árboles peque-ños transcurre en un lapso de dos a tres años(Herrera, NVVQ).

Distribución espacial y temporal de la enfermedad

La diseminación secundaria de la enfermedadestá influenciada por muchos factores, talescomo el mecanismo de la infección primariau original, la diversidad de especies vectoras,la edad y estructura del monte infectado, lapresencia de inóculo en montes aledaños, ladirección del viento, la raza de ééî, la especiey el cultivar del hospedero, etc (Dallot et al.,OMMP).

Fueron identificados dos tipos de movi-mientos de los áfidos vectores, a corta y alarga distancia. En estudios de distribuciónespacial del ééîJÇ, llevados a cabo en distin-tos países, se han encontrado diferentes com-portamientos de los áfidos virulíferos. Análisisrealizados en montes de durazneros dePennsylvania, Estados Unidos, sugieren quelos pulgones no se mueven hacia los árbolesadyacentes, sino hacia árboles más alejadosdel foco de infección (Gottwald, OMMS). Estos



resultados coinciden con los hallados en elSur de España, en montes de damascos y du-razneros (Gottwald et al., NVVR). Sin embargo,no son coincidentes con los obtenidos enFrancia con ééîJã, donde mostraron que losárboles con síntomas nuevos a menudo esta-ban al lado de árboles previamente enfermos,constituyendo un grupo de infección con eltiempo. El patrón de infección mostraba unaforma elipsoidal (a lo largo de la hilera deplantación) con una extensión de hasta NQ ár-boles en la hilera y hasta NM árboles entre hi-leras. Tales patrones sugirieron que ladiseminación por áfidos a árboles vecinosocurría frecuentemente. Nuevos estudios detransmisión por áfidos a corta distancia de-mostraron que el UMB o más de nuevos árbo-les enfermos se encontraron dentro de los NOmetros de un árbol previamente detectado.Se ha comprobado también que en la mayo-ría de los casos incrementando la distanciapor sobre los NM metros de un árbol previa-mente infectado decrece el riesgo de infec-ción en un QPB (Dallot et al., OMMP; Labonne& Dallot, OMMS). En forma similar grupos deinfección de ééîJã alrededor del foco inicialfueron encontrados en Grecia en montes dedamasco (Varveri, OMMS) y en España, en du-razneros, donde la transmisión ocurrió hastalos NQ m en el sentido de la hilera, con unadistancia promedio de S m (Capote et al., OMNM).

La transmisión de ééî por vectores tam-bién ocurre a larga distancia, entre montesfrutales. Estudios realizados en Francia sobrecientos de hectáreas, para ééîJã, demostra-ron que el VMB de los árboles infectados ocu-rren en un radio de OMM m del foco inicial deinfección, aunque también se registraron in-fecciones a distancias mayores a SMM m (La-bonne & Dallot, OMMS). Mientras que estudiosen España encontraron transmisiones dentrode un radio de NRM m, con una distancia pro-medio de SR m (Capote et al., OMNM).

Numerosos ensayos llevados a cabo en losaños noventa en Francia demostraron que laenfermedad de sharka se transmite más rápi-damente en durazneros infectados con ééîJã,que en damascos infectados con ééîJÇ. Seencontró además que sin medidas de controlde la enfermedad, se podría alcanzar un NMMB

de incidencia en R a S años en montes de du-razneros afectados por ééîJã. Mientras quellegar al mismo nivel de infección, en montesde damascos afectados por ééîJÇ, podríatomar NS años (Labonne & Dallot, OMMS).

Se han realizado estudios epidemiológicosdel ééî en montes de ciruelos alrededor delárea de cuarentena para sharka en la provin-cia de San Juan, Argentina. Se seleccionaronfincas productoras de ciruelo japonés cv. RedBeaut, susceptible a ééî, a fin de detectar yevaluar la distribución espacial y temporal delvirus alrededor del área considerada cuaren-tenaria. Se establecieron Q zonas por encimade los NM km del área cuarentenaria (Pocito),Zona Norte (Dpto Albardón), Zona Nor-Oeste (Dpto Ullúm), Zona Nor-Este (Dpto.San Martín) y Zona Oeste (Dpto. Zonda), yse muestrearon V lotes en total, siguiendo unesquema de muestreo jerárquico (Hughes etal., OMMO; Gottwald, OMMS) en NMMplantas/lote, tomadas en grupo de a Q plantasdispuestas en cuadriculas de O×O, lo cualconstituyó OR grupos de plantas por lote deli-mitado por QMM plantas cada uno de ellos(Fig. RKN). Las muestras se analizaron seroló-gicamente por Ç~ëJÉäáë~, durante la primaverade los años OMMV, OMNM y OMNN. Los análisisdeterminaron lotes positivos a ééî y se estimóla incidencia del virus en dos niveles jerárqui-cos: N⁄ nivel entre grupos de árboles dentrode lote, y O⁄ nivel jerárquico entre todos losgrupos de todos los lotes (entre lotes). De losV lotes, R fueron positivos a ééî con distintosniveles de incidencia (Fig. RKO). La incidenciaentre todos los lotes en OMMV fue de MIMQ, enOMNM del MINP, y en OMNN de MIMU. Los lotespositivos se encontraron en el Dpto. Albardóncon incidencias del MIMP al MIQR y uno delDpto. Ullúm con el MIMN. Con esta informa-ción se puede estudiar el comportamiento dela incidencia de la enfermedad de maneratemporo-espacial, conjugando factores am-bientales del patosistema frutal-virus-vector.En función de las referencias recopiladas, eltiempo mínimo de estudio o de datos recaba-dos para modelizar una epidemia es de almenos cinco años (Dal Zotto et al., OMNO).


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Figura 5.1. Diseño de muestreo dentro de lote de OR unidades experimentales (u.e) para estudios epide-miológicos del Plum pox virus en montes de ciruelos alrededor del área de cuarentena para sharka en laprovincia de San Juan.

Figura 5.2. Gráfico de sectores por lote, se indica el porcentaje de incidencia. NW=ééî (+) y MW=ééî (-).Estudios epidemiológicos del Plum pox virus en montes de ciruelos de alrededor del área de cuarentenapara sharka en la provincia de San Juan.



Técnicas de detección

Inspección visualLa inspección visual de síntomas de hojas yfrutos durante la primavera y el verano puedellegar a indicar la presencia de la enfermedaddel sharka, pero se ha llegado a la conclusiónde que el análisis en el laboratorio es funda-mental, ya que se ha visto presencia de sínto-mas no específicos, pérdida de síntomasterminada la temporada de crecimiento y laexistencia de cultivares asintomáticos (Auger,NVVP). El virus puede detectarse por tests delaboratorio al poco tiempo de la inoculacióny recién mostrar síntomas a los P años de ino-culado (Levy et al., OMMMb).

Test biológicosSe basa en la propiedad de que esta enferme-dad es transmisible mediante injertos. El ééîpuede ser detectado por síntomas en nume-rosas especies de plantas indicadoras leñosas,tales como cerezo Nanking (Prunus tomen-tosa), duraznos: cv. ÖÑJPMR (P. persica), cv. El-berta (P. persica), cv. Nemaguard (P. persica);ciruelos: Italian prune (P. domestica), y Ade-soto NMN (P. insititia L.). También se usan lasindicadoras herbáceas Chenopodium foetidum,C. quinoa, Nicotiana clevelandii, N. benthamianay Pisum sativum, de las cuales las últimas tresse utilizan para concentrar el inóculo (Cam-bra et al., OMMO). De las indicadoras leñosaslas más utilizadas son ÖÑ=PMR, Nemaguard ycerezo Nanking.

Las plantas indicadoras son injertadas/inoculadas y después de NR días, rebajadas aunos P cm por sobre el injerto. Al cabo detres a cuatro semanas se observan los sínto-mas sobre los brotes nuevos (Foto TM). Seutilizan al menos cuatro repeticiones y secomparan los síntomas con plantas de controlnegativo y positivo. Todo el proceso se rea-liza en invernadero bajo condiciones contro-ladas de humedad y temperatura (Desvignes,NVVV). No existen datos cuantitativos publi-cados referentes a la especificidad, sensibili-dad y exactitud de los resultados obtenidos entest biológicos. Sin embargo, el método esusado ampliamente en los esquemas de certi-ficación y es considerado un método sensiblede detección. Aunque tiene algunas desventa-

jas: la lentitud para obtener resultados, se ne-cesitan invernaderos con condiciones contro-ladas, amplio espacio, y algunas veces lossíntomas pueden confundirse con los produ-cidos por otros patógenos sistémicos. Ade-más, hay algunas razas asintomáticas del virusque no producen síntomas en las plantas in-dicadoras (Cambra et al., OMNO).

Test serológicosÉäáë~ (enzyme-linked immunosorbent assay oensayo por inmunoabsorción ligado a enzi-mas) ha demostrado ser un método altamentesensible, rápido y confiable para la deteccióndel ééî y es la técnica recomendada para elanálisis de un gran número de muestras(Cambra et al., OMNO). Hay disponibles variosanticuerpos monoclonales y policlonales parala detección de todos los serotipos de ééî,por lo que es posible discriminar que raza es-pecíficamente se encuentra en la planta (Levyet al., OMMMb; Cambra et al., OMNO). Mediantela técnica Éäáë~, ééî puede ser detectadousando como muestras brotes, flores, hojas,yemas, corteza y frutos de las plantas infecta-das (Dosba et al., NVUS). Éäáë~ permite detec-tar la presencia del antígeno viral (proteínade la cubierta del virus) a partir de homoge-nados del material infectado a través de unareacción colororimétrica, que se genera poracción de la actividad de una enzima conju-gada a anticuerpos en presencia del sustratoadecuado (Cambra et al., OMMO).

La toma de muestras es una de las clavespara las pruebas de diagnóstico, ya que elvirus tiene una distribución muy heterogéneaen la planta y su concentración es baja, espe-cialmente en los meses de verano y otoño. Esnecesario tomar muestras significativas y re-presentativas de la planta a analizar (Dosba etal., NVUS). En ensayos realizados dos añosconsecutivos en la zona de San Rafael, Men-doza, Argentina, en ciruelo europeo cv.D´Agen, se observaron diferencias significati-vas (p MKMR) entre los valores de absorbanciapor test Ç~ëJÉäáë~ en los distintos meses delaño, en los órganos muestreados, entre lasdistintas ramas (norte, sur, este y oeste) y sec-tores de la planta (general, alto, medio y bajo)(Marini et al., OMNN; García, OMNM).


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Cuando se analizaron estadísticamente lasabsorbancias virales medias corregidas (ab-sorbancia de las muestras menos la absorban-cia del testigo sano) obtenidas por Ç~ëJÉäáë~de los datos del primer año del ensayo, en elestudio de comparación de medias de losmeses del año, los mayores valores se obtu-vieron en los meses de octubre, noviembre ydiciembre, mientras que marzo, abril, mayo,junio y julio tuvieron los niveles más bajosdurante el primer año de estudio (Marini et al.,OMNOb). Los datos del segundo año mostraronuna disminución brusca de la absorbancia enenero/febrero y un pequeño pico en marzo.Asimismo, la absorbancia viral obtenida enyemas de junio, julio y agosto, fue muy supe-rior a la del primer año. Estas variaciones po-drían deberse a diferencias en condicionesclimáticas, principalmente temperatura, entrelos años. Comparando los dos años, el perí-odo ideal de muestreo en los cuales se obten-drían resultados confiables por Ç~ëJÉäáë~para el sur de Mendoza estaría comprendidoentre los meses de octubre, noviembre y di-ciembre (Fig. RKP).

Estos resultados se asemejan a lo estable-cido por la Éééç (European and Mediterra-nean Plant Protection Organization) dondese recomienda el muestreo en primavera,

desaconsejando realizar los test serológicoscuando las temperaturas aumentan, desdeEnero a Marzo, para climas mediterráneos(Éééç Bulletin, OMMQ). También guarda ciertasimilitud a lo recomendado por el Departa-mento de Agricultura de Pennsylvania y elìëÇ~ (United States Department of Agricul-ture) en ÉÉìì, donde aconsejan muestrear enprimavera y principios de verano (Levy et al.,OMMMb). Comparando las absorbancias mediasobtenidas mediante Ç~ëJÉäáë~ para los dife-rentes órganos muestreados a lo largo del en-sayo se observa que las hojas jóvenes y lasflores presentan las mayores concentracionesvirales, diferenciándose significativamente delos frutos, yemas y hojas maduras (Fig. RKQ)(Marini et al., OMNOb). Las hojas jóvenes seencuentran en los meses de noviembre y di-ciembre, mientras que las flores están presen-tes en octubre, para las condiciones del sur deMendoza. Como se puede ver hay una relaciónde este resultado con el obtenido para losmeses más propicios para realizar Ç~ëJÉäáë~,ya que los dos órganos están presentes en losmeses donde se obtiene la mayor concentra-ción viral. Estos resultados concuerdan conlo citado por la Éééç, donde aconsejan mues-trear flores, brotes jóvenes o pequeños frutos(Éééç Bulletin, OMMQ).

Figura 5.3. Variación de la concentración del virus de sharka a lo largo del primer y segundo año enciruelos europeos.



Sin embargo, en investigaciones realiza-das en damascos y durazneros no se encon-traron altas concentraciones virales en flores(Dosba et al., NVUS; Knapp et al., NVVS), a di-ferencia de lo detectado en Mendoza para ci-ruelo europeo, lo que indicaría que se puedenencontrar diferencias de acuerdo a la especiehospedera, raza del virus y condiciones cli-máticas. La zona superior del árbol presentóuna menor concentración viral. No se encon-traron diferencias significativas entre la basey la zona media del árbol por lo cual, elmuestreo oficial realizado por el ëÉå~ë~(tomar muestras alrededor de la planta a laaltura del pecho) sería correcto (Marini et al.,OMNOb).

Del análisis de las hojas en todos los mesesdonde estuvieron presentes no se observarondiferencias significativas entre la absorbanciamedia de la base y el ápice. Tampoco se en-contró diferencias entre base y ápice cuandose analizaron las hojas en el mes de noviem-bre solamente, mes donde se obtuvo la mayorconcentración viral (Marini et al., OMNOb).Estos resultados no concuerdan con lo citadoen investigaciones europeas donde recomien-dan utilizar el tejido de la base de la hoja pararealizar los análisis serológicos (Cambra, com.personal). En Argentina, en los monitoreos

oficiales (áåí~JëÉå~ë~), también se utilizanmuestras de la base de la hoja para realizar eltest Éäáë~. Los resultados obtenidos en Men-doza indicarían que para las condicionesagroecológicas locales y en ciruelo europeosería indistinto utilizar el tejido de cualquierparte de la hoja para la detección del ééî me-diante esta técnica (Marini et al., OMNOb).

Figura 5.4. Variación de la absorbancia de los órganos muestreados durante un año.



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Test molecularesLas técnicas moleculares son más costosas ylaboriosas que las técnicas serológicas, espe-cialmente cuando se requiere realizar un grannúmero de muestras. Sin embargo, las técni-cas moleculares, especialmente el éÅê (Poly-merase Chain Reaction) en tiempo real, sonen general más sensitivas que las serológicas(Cambra et al., OMNO).

êíJéÅê (Reverse Transcription PolymeraseChain Reaction) es una técnica muy sensibleque permite detectar la presencia de virusaunque su concentración sea muy baja, yaque consiste en amplificar exponencialmenteun fragmento específico del genoma viral (DeBlas et al., NVVQ). La metodología más utili-zada para la detección e identificación del ééîes la Inmunocaptura êíJéÅê, la cual consta dela síntesis del cÇå~ a partir del êå~ obtenidodesde partículas virales que han sido captura-das en una placa de Éäáë~ previamente acti-vada con un anticuerpo policlonal anti-ééî,lo que se realiza utilizando una transcriptasareversa. Posteriormente el cÇå~ es usadocomo templado en la amplificación del Çå~por éÅê, identificándose por electroforesisbandas de Çå~ de tamaños específicos. Esuna técnica muy sensible, ya que la inmuno-captura permite concentrar las muestras y almismo tiempo disminuye los posibles interfe-rentes presentes en el tejido vegetal, los queafectan negativamente los procesos enzimáti-cos en la transcripción reversa y la amplifica-ción por éÅê. Como desventaja de esta técnicase puede mencionar que es necesario conocersecuencias especificas del genoma de interésy contar con un anticuerpo que reconozca(capture) al patógeno (Rosales et al., NVVS).

En cuanto a los cebadores o “primers”utilizados, el que amplifica el gen de la prote-ína de la cubierta del virus (Wetzel et al., NVVN)es el más usado para la detección e identifica-ción del ééî. Se caracteriza por su polivalen-cia, es decir, permite la identificación demúltiples aislados del virus, descripto en dife-rentes lugares del mundo (Wetzel et al., NVVO).Por otra parte, el primer descripto por Hadidi(Hadidi y Levy, NVVQ) amplifica la región PÛno codificante del genoma del ééî, regiónque se caracteriza por ser heterogénea en

cuanto tamaño, secuencia y estructura secun-daria entre los distintos miembros del grupode los potyvirus; sin embargo, esta secuenciano traducida es más conservada que el gen dela proteína de la cubierta y diferencia correc-tamente al ééî de otros potyvirus, lo que laconvierte en un excelente marcador genéticopara ser usado con fines de diagnóstico(Riechmann et al., NVVO).

El Co-operational êíJéÅê=EÅçJêíJéÅêF esun método nuevo y altamente sensitivo paradetectar ééî que consiste en la acción simul-tánea de Q primers. El proceso consiste en laretro transcripción de dos fragmentos dife-rentes del mismo blanco, uno conteniendo alotro, la producción de cuatro amplicones y laco-operacional acción de los amplicones parala producción del fragmento más largo. Estemétodo fue NMM veces más sensible que la êíJéÅê usando los primers de Wetzel (Olmos,Bertolini & Cambra, OMMO).

En los últimos años se ha empezado a uti-lizar para la detección del virus, éÅê entiempo real, que es una técnica altamentesensible y una herramienta valiosa para la de-tección y cuantificación del ééî (Capote et al.,OMMV). En la éÅê en tiempo real la deteccióndel amplicón se puede visualizar directamentea medida que la amplificación progresa, sinnecesidad de hacer corridas electroforéticas.Las técnicas de éÅê cuantitativa se clasificansegún el empleo de fluorocromos no específi-cos o bien de sondas moleculares dependien-tes de la secuencia. En las técnicas basadas enfluorocromos inespecíficos se detecta la ge-neración exponencial de ~Çå de doble cadenaempleando un fluorocromo que se une ines-pecíficamente a aquél. Un ejemplo de colo-rante que permite esta detección es el ëóêÄGreen. En la de sondas moleculares, se usaun par de primers y una sonda marcada fluo-rescentemente, diseñada para que se hibrideentre el sitio de unión de los dos primers. Tí-picamente esta sonda está unida a dos fluoro-cromos e hibrida en la zona intermedia entreel cebador directo (forward) y el inverso (re-verse); esto es, en el amplicón. De este modo,cuando la sonda está intacta, presentan unatransferencia energética de fluorescencia porresonancia (ÑêÉí). Dicha ÑêÉí no se produce



cuando los dos fluorocromos están distantesdebido a la degradación de la sonda, o biendebido a la separación física de los fluorocro-mos por un cambio en la conformación de lasonda. Esto permite monitorizar el cambiodel patrón de la fluorescencia y deducir elnivel de amplificación del gen (Mackay et al.,OMMO). En el éÅê en tiempo real, el procesoprevio de extracción del êå~ puede ser evi-tado por inmobilización del extracto de lasplantas en papel Whatman P ãã, o en mem-brana de nylon, y procediendo después a rea-lizar el éÅê en tiempo real (Olmos et al., OMMR).

Finalmente, Next-Generation Sequen-cing (åÖë), en combinación con la bioinfor-mática, parece ser el futuro en las técnicas dedetección de virus conocidos o no en plantas(Hadidi, OMNO).

Manejo de la enfermedad

A diferencia de los hongos y las bacterias quecolonizan plantas, que pueden ser controla-dos químicamente, no existen tratamientosantivirales para prevenir o controlar al ééî.Los métodos de manejo más efectivos son lossiguientes:-Detección temprana de la enfermedad, me-

diante monitoreo de plantas madre en vi-veros y campos comerciales por uso detécnicas sensibles en el momento oportuno,y subsecuente destrucción y erradicaciónde las plantas enfermas. Se recomiendaerradicar los árboles positivos, ya que nohacerlo implica mantener una fuente deinóculo en el cultivo, que va a producirfruta de mala calidad y una dispersión dela enfermedad. La eliminación de lasplantas enfermas debe hacerse antes de lasinfestaciones otoñales, así se evita la dis-persión a los ejemplares sanos. La plantadebería ser quemada en su totalidad ypara eliminar el resto de material vegetalque quede en el suelo se debería aplicarherbicida (Auger & Esterio, NVVR; Levy etal., OMMMb).

-Utilización de plantas frutales certificadas,“libres de los virus conocidos” para la im-plantación de nuevos montes frutales(Auger y Esterio, NVVR; Levy, OMMMb; Ma-

rini et al., OMNOc). Mendoza ha sido pre-cursora en el país en la creación de unproyecto de certificación en frutales decarozo. En un esfuerzo de NU años de tra-bajo conjunto de organismos públicos:áåí~ (Instituto Nacional de TecnologíaAgropecuaria), áëÅ~ãÉå (Instituto de Sa-nidad y Calidad Agropecuaria Mendoza) eáå~ëÉ (Instituto Nacional de Semillas), ycon financiamiento de áåí~, ëeÅyí (Sec.de Ciencia y Técnica de la Nación) e áëJÅ~ãÉå, se logró constituir un plantel for-mado por los principales cultivares yportainjertos de duraznero, ciruelo y al-mendro libre de los principales virus queafectan a la fruticultura nacional. Dichomonte se encuentra ubicado en un lugaraislado de otros frutales en el campoanexo de la ÉÉ~ Junín, áåí~, en Rivadavia,Mendoza (Marini et al., OMNOc).

-En caso de introducción de material de paí-ses y/o zonas afectadas por la enfermedad,es importante exigir que sea libre desharka.

-Uso de cultivares y portainjertos resistentesó inmunes producidos por ingeniería ge-nética o generados por programas de me-jora de genética convencional. Lautilización de cultivares y portainjertosresistentes a la enfermedad del sharka, pa-rece ser el único método definitivo decontrol (Dicenta et al., OMMM). Sin em-bargo, existe muy poco germoplasma quepuede llamarse resistente o inmune al ééîen Prunus. Hay fuentes de resistencia, ge-neralmente multigénica, que provee mo-derados niveles de tolerancia a algunasrazas del virus. Si bien estos niveles de to-lerancia son útiles para los productoresdebido a que les permite producir frutacomercializable, se necesita resistencia oinmunidad al virus para evitar la disper-sión posterior por vectores (Levy et al.,OMMMb).

El método usado tradicionalmentepara evaluar resistencia ha sido la observa-ción de síntomas en hojas y frutos deplantas inoculadas natural o artificial-mente con el virus, a campo o en inverna-deros aislados, en aquellos países donde



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la enfermedad no se ha diseminado (Di-centa et al., OMMM; Martinez-Gomez et al.,OMMM). Los resultados obtenidos han sidomuy contradictorios debidos a factoresdependientes de la raza del virus usadacomo inóculo, el método de inoculación,el tiempo desde la inoculación a la obser-vación de los síntomas, etc. (Levy et al.,OMMMb). El estudio de la habilidad de ungenotipo de permitir el movimiento delvirus a través de sus tejidos vasculares (xi-lema y floema) fue propuesto como unmétodo alternativo para evaluar resisten-cia (Rubio et al., OMMU). En un ensayo rea-lizado en Mendoza para evaluar laresistencia al aislado argentino del ééî decultivares de durazno para industria, losgenotipos “Pavía Catherina” y “Loadel”permitieron el movimiento del virus a tra-vés del xilema y floema de sus respectivasplantas, sin mostrar síntomas visibles enhojas y flores, durante dos ciclos de eva-luaciones. Estos resultados son prelimina-res, dado que se necesitan por lo menos Sciclos de evaluaciones para determinar laposible tolerancia de los genotipos estu-diados al virus (Marini et al., OMNOd).

Los métodos tradicionales para gene-rar resistencia a la enfermedad del sharka,a través de cruzamientos, han tenido unéxito muy limitado debido a la naturalezamultigénica de la resistencia, y a que esaresistencia es específica para cada raza delvirus. El tiempo requerido para incorpo-rar un alto nivel de resistencia multigé-nica a todos las razas del virus, más lascaracterísticas comerciales deseables delcultivar y/o portainjertos puede llevar másde OM años. Un método alternativo, es latransformación de las plantas con genesvirales, tales como el de la proteína de cu-bierta del virus (Åé). Plantas transgénicasque expresan genes virales han demos-trado diferentes niveles de resistencia. LaÅé del ééî ha sido transferida a ciruelo ja-ponés, y una línea transgénica, “HoneySweet” (ÅR), ha demostrado un alto nivelde resistencia en más de NM años de ensa-yos en diferentes países (Zagrai et al., OMMU).La resistencia parece ser debida al silen-ciamiento genético post-transcripcional.

El gen es heredado como un simple gendominante y la progenie ha demostradoser resistente a ééî (Scorza et al., OMMQ).Debido a que la transformación de otrasespecies de Prunus no ha resultado satis-factoria hasta el presente, Honey Sweetpodría ser utilizado como padre en pro-gramas de mejoramiento, con la ventajade que su resistencia se hereda como ungen simple y dominante, que permite se-leccionarlo en la progenie mediante técni-cas de éÅê (Levy et al., OMMM).

-Medidas de manejo tales como inspeccionesvisuales en los campos y viveros, controlquímico de los pulgones, eliminación demalezas, aplicación de aceites de verano,alternar material vegetal susceptible conespecies resistentes o no hospederas delvirus, etc, pueden contribuir a disminuirla propagación de la enfermedad (Levy etal., OMMMb; Capote et al., OMMS).

El control de los vectores, si bienpuede contribuir a disminuir la dispersiónde la enfermedad, no es de gran utilidad,dado que el pulgón transmite al virus enforma no persistente. De los mecanismosde transmisión en los que participan lospulgones como organismos vectores, el detipo no circulativo y no persistente, porsus características descritas anteriormente,es el que representa un mayor desafío encuanto a las estrategias de prevención ycontrol de enfermedades virales en culti-vos de interés económico, haciendo inútilel uso de plaguicidas para controlar elvector y llegando incluso con su empleo aincrementar la dispersión de la enfermedadal favorecer un mayor desplazamiento delos pulgones en el cultivo (Martínez-Garcíaet al., OMMN). Se observaron significativasreducciones de incidencia de la enfermedaddel sharka en ensayos realizados en España,Bulgaria y Rumania aplicando aceites mi-nerales de verano (SunSpray® Ultra-fine®

al NB) (Vidal et al., OMNO). También se hautilizado con éxito en la eliminación delvirus la termoterapia (OQJPO días a PUø`)y el microinjerto de ápices caulinares invitro (Capote et al., OMMS).



Monitoreo

Sharka es una enfermedad cuarentenaria enArgentina al igual que en la mayoría de lospaíses productores de frutas de carozo. A finde mantener este estatus, después de la pri-mera detección de la enfermedad en el añoOMMQ (Dal Zotto et al., OMMS), se formó unared interinstitucional para el abordaje de laproblemática de la enfermedad, su diagnós-tico y control, integrada por los tres organis-mos nacionales con injerencia en la materia:áåí~I=ëÉå~ë~ e áå~ëÉ y organizaciones de pro-tección vegetal de las provincias productorasde frutas de carozo. El primer producto deltrabajo interinstitucional fue la formación deuna Comisión integrada por representantestécnicos de las instituciones mencionadas queha tomado medidas de carácter cuarentenarioen forma inmediata tales como: erradicaciónde plantas enfermas con sharka; declaraciónde Áreas de Cuarentena; control de movi-miento de material de propagación hospe-dante de la Raza ÇÒ de ééî; análisis oficial enlaboratorio del ééî en las plantas madre delas especies del género Prunus hospederas,previo a su multiplicación y medidas específi-cas en Áreas Interdictadas.

A fin de garantizar la rápida ejecución delos análisis del virus y la obtención de resulta-dos análogos se formó una Red Oficial deLaboratorios de determinación de ééî consti-tuida por los de las Estaciones Experimenta-les San Pedro, Rama Caída, Junín, Alto Vallee áé~îÉ=EÅá~éF de áåí~ y los laboratorios cen-trales de ëÉå~ë~ e áå~ëÉ. Todos ellos trabajancon un protocolo consensuado de la técnicaÇ~ëJÉäáë~ (Clark & Adams, NVTT) para la de-tección del virus.

Análisis de plantas madre del géneroPrunus

Anualmente desde el año OMMT se analiza lapresencia de ééî en las plantas madre del gé-nero Prunus inscriptas en ëÉå~ë~ y de las cua-les se tomarán las yemas para formar lasplantas esa temporada. Los viveristas realizantodos los años la inscripción de las plantasmadre que pueden variar o no, dependiendode las necesidades del año. La Comisión esta-bleció un protocolo de monitoreo que incluyerecolección de muestras, su acondiciona-miento y envío al laboratorio de la Red Ofi-cial previamente establecido. Cada muestraestá compuesta por NS hojas y representandos plantas, ocho hojas de cada una. Cadaaño se analizan alrededor de ORKMMM muestrascorrespondientes a unas RMKMMM plantasmadre de viveros del país. Las plantas ééî +son erradicadas inmediatamente. Ello implicael NMMB de las plantas madre de las varieda-des comerciales señaladas por los viveros y unmuestreo parcial de portainjertos (Rossini etal., OMNN).

Las plantas madre analizadas se ubican enunos setenta campos pertenecientes a treintaviveros comerciales de las provincias de Men-doza, San Juan, Río Negro, Neuquén y BuenosAires (San Pedro). Mendoza es la provinciacon mayor cantidad de muestras analizadas,más de OMKMMM, en coincidencia con la ubica-ción de la mayor cantidad de viveros (Rossiniet al., OMNO).

Los resultados obtenidos en siete tempo-radas (OMMTJOMNO) indican que el valor de in-cidencia de sharka más elevado correspondeal primer año de análisis del virus y a partirdel tercer año, no se obtuvieron resultadospositivos (Tabla RKO). Ello es producto delanálisis anual de plantas madre que permitela erradicación de las plantas enfermas, delcontrol de movimiento del material de pro-pagación y posiblemente debido a una bajaeficacia en la transmisión natural del virus(Rossini et al., OMNO).



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Año Plantas analizadas (DAS-ELISA) Ubicación Plantas

DAS-ELISA Positivas Ubicación (+) Porcentaje deplantas enfermas

2007 25.277 Mendoza, Bs. As. (San Pedro) 3 Oasis Sur (Mza) 0,0125

2008 48.770 Mendoza, Bs. As. (San Pedro),Patagonia Norte 1 Oasis Sur (Mza) 0,0020

2009 47.514 Mendoza, Bs. As. (San Pedro), Patagonia Norte 0 -- --




Tabla 5.2. Análisis de Plum pox virus (ééî) en plantas madre del género Prunus en el período OMMTJOMNP.


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Monilinia fructicola (Winter) Honey (Podredumbre morena)

Mitidieri, M.; Rossini, M. y A. Giayetto

IntroducciónNombre de la plaga y sinonimias Hospedantes Sintomatología Distribución en el país Epidemiología. Ciclo biológico Condiciones predisponentes Monitoreo Cuarentenario Manejo de la enfermedadBibliografía

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Introducción

Monilinia fructicola es uno de los principalesagentes etiológicos de la podredumbre mo-rena, junto con M. laxa y M. fructigena, ambosde menor importancia en cuanto a su disper-sión. Si bien la distribución de estas especieses mundial, M. fructigena fue eliminada deÉÉìì y M. fructicola es plaga cuarentenaria enEuropa. M. laxa co-existe con ambas en susrespectivas regiones (Ogawa et al., NVVR;ÉééçI=OMMOX=OMMSX=OMMU).

Es el principal agente causal de la podre-dumbre de duraznos en ÉÉìì donde los dañosque produce alcanzan el RJNMB con empleode fungicidas y superan el RMB si no se efec-túa control químico (Karabulut et al., OMNM).


El nombre de la plaga es Monilinia fructicola(Winter) Honey, NVOU (Ascomycetes, Helo-tiales). Sinónimos: Ciboria fructicola Winter,NUUP, Sclerotinia fructicola (Winter) RehmNVMS, Monilia cinerea f. americana Wormald,NVNV, Sclerotinia americana Norton & Eze-kiel, NVOQ, Monilia fructicola L.R. Batra, NVVN.

La enfermedad que causa se llama podre-dumbre morena o “brown rot” (Ogawa et al.,NVVR).

Hospedantes

Afecta principalmente a duraznos [Prunuspersica (L.) Batsch] y otras especies del géneroPrunus, pero también se lo ha determinadoen otros frutales como membrillero (Cydoniaoblonga L.; Chaenomeles sp.) y ornamentalescomo Crataegus (Ogawa et al., NVVR). Si biena nivel mundial ha sido citado en frutales depepita, en monitoreos realizados en planta-ciones comerciales de manzanos (Malus do-mestica Borkh.) y perales (Pyrus communis L.)de la región patagónica, no se ha detectado lapresencia de Monilinia spp. (Rossini, OMMU).

Sintomatología

Los síntomas que produce M. fructicola semanifiestan con mayor intensidad en prima-veras y veranos húmedos, pudiendo ocasionarimportantes pérdidas de producción y seriosproblemas de comercialización. Las floresatacadas se vuelven pardas, se marchitan ysuelen quedar envueltas en una masa gomosaconstituida por los conidios (Foto TN). Losbrotes y ramitas atacados presentan cancros yla muerte de la porción distal desde el cancroal ápice (Foto TO). Las hojas ubicadas en losbrotes afectados, mueren quedando adheridasal mismo. Los frutos atacados se pudren,tanto en el campo como en el almacena-miento, el transporte o la comercialización(Fotos TP) (Martinengo, NVVQ; Mitidieri,OMNOa).

Es característica de la podredumbre cau-sada por M. fructicola, una lesión circular enel fruto, de color castaño, que aumenta de ta-maño rápidamente. El fruto podrido quedaadherido a la planta o cae al suelo y a medidaque se seca se transforma en fruto momificado(Foto TQ) (Martinengo, NVVQ; Mitidieri, OMNP).En el Alto Valle de Río Negro y Neuquén elsíntoma característico es la podredumbre delfruto próximo a la cosecha, principalmenteen variedades tardías de duraznos, nectarinasy ciruelas. Raramente en esta zona suelen ob-servarse tizón de las flores y cancros en bro-tes producidos por esta plaga (Rossini, OMMU).


M. fructicola está presente en la mayoría delas regiones productoras de frutas de carozodel país. Causa serias pérdidas económicas enla producción de duraznos en zonas conclima templado y abundantes lluvias y/o ele-vada humedad relativa, como el litoral nortede la provincia de Buenos Aires (Martinengo,NVVQ; Martinengo de Mitidieri y Garfi, NVVV;Ros, OMMM; Mitidieri et al., OMMU). También sela encuentra en la provincia de Jujuy produ-ciendo daños de importancia económica ennectarinas y duraznos (Mitidieri et al., OMMV).

Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòç=J Monilinia fructicola


Mendoza y el Alto Valle de Río Negro y Neu-quén, importantes zonas productoras de frutasde carozo, se caracterizan por tener condicio-nes climáticas no tan favorables para el desarro-llo de enfermedades a campo, principalmentepor las bajas precipitaciones anuales y la bajahumedad relativa (Rossini, OMMU). Sin em-bargo, en estas regiones M. fructicola es unimportante agente patógeno del género Pru-nus. Ocasionalmente se ha determinado lapresencia de M. laxa en frutos podridos acampo (Rossini et al., OMMT; Rossini, OMNNa).

No está citada para el Valle Inferior delrío Chubut (îáêÅÜ), Sarmiento, Los Antiguosy El Hoyo, donde sí se ha determinado lapresencia de M. laxa en damascos y cerezas(Rossini et al., OMMT; Rossini, OMNNa).

Epidemiología. Ciclo biológico

M. fructicola posee dos fases, una sexual o as-cospórica, que no ha sido determinada en Ar-gentina y otra asexual. Durante el invierno elpatógeno sobrevive en frutos momificados,pedúnculos infectados y cancros formados eninfecciones de años anteriores y, luego de ini-ciada la floración, se lo encuentra en pedún-culos, anteras, flores y brotes muertos. Enprimavera, el aumento de la temperatura, ele-vada humedad relativa o lluvias y el hospedantereceptivo, favorecen el inicio del proceso deinfección. Se forman los conidios, que, dis-persados por la lluvia y el viento, alcanzan alas flores y, tras invadir ovario y pedúnculo, lainfección avanza sobre el brote. Las floresmarchitas quedan cubiertas por una masa deconidios, importante fuente de inóculo capazde producir nuevas infecciones con condicio-nes ambientales favorables. La muerte delbrote lleva al marchitamiento del resto de lasflores que luego son invadidas por otras espe-cies de hongos. Las hojas ubicadas en losbrotes afectados mueren quedando adheridasa los mismos (Ogawa et al., NVVR; Martinengo,NVVQ; Giayetto y Rossini, OMNN; Mitidieri,OMNOa).

Los frutos pueden ser infectados inmedia-tamente después del cuajado, manifestándose

la enfermedad antes o después de la cosecha.La infección del fruto se produce directa-mente a través de la cutícula, en la base de lostricomas o a través de rajaduras y heridas quepueden ser causadas por insectos como moscade los frutos, abejas, hormigas, etc. (Berger yTanaka, NVUM; Ogawa et al., NVVR; May de Mioet al., OMMQ).

Experiencias realizadas en Cervantes,provincia de Río Negro, indican que M. fruc-ticola está presente en las plantas de frutalesen otoño, invierno y verano, sobre distintosórganos, en otoño en yemas, en frutos momi-ficados en el invierno y durante los meses deverano, sobre los frutos, ya sea como infec-ción exógena o endógena. De modo que en lazona del Alto Valle de Río Negro, el hongopermanece en los montes comerciales en fru-tos momificados durante los meses desfavora-bles. Si bien no se detectó su presencia enflores y hojas, es probable que se produzca ungran número de infecciones endógenas, ma-nifestándose síntomas al final del ciclo y pre-vio a la cosecha o, como se verificó, posteriora la misma (Giayetto y Rossini, OMNN).

Condiciones predisponentes

La temperatura óptima para el desarrollo deM. fructicola es de OR⁄`, aunque a OM⁄` sonsuficientes de tres a cinco horas de humedadpara que tenga éxito la infección. Después deOQ horas de humedad la infección es inde-pendiente de la temperatura, entre valores deR a PM⁄` (Ogawa et al., NVVR). En Alto Vallede Río Negro y Neuquén un factor que favo-rece el desarrollo de enfermedades es el riegopor aspersión, método de defensa activa con-tra heladas primaverales. Este sistema am-pliamente usado en la región, sobre todo encultivos de ciruelo, crea condiciones de hu-medad que favorecen el desarrollo de proce-sos infecciosos por M. fructicola y otrosmicroorganismos patógenos. Además, se in-corpora agua en cantidades importantes quedificultan el paso de la maquinaria para reali-zar las pulverizaciones adecuadas (Rossini etal., OMMT).



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Monitoreo cuarentenario

A pesar de haber sido citada en varios países,M. fructicola es considerada plaga cuarentena-ria en la Unión Europea (ÉééçI=OMMOX=OMMSXOMMU). Dado que este es un importante des-tino de la fruta de carozo que se produce enla provincia de Mendoza y en el Alto Valle deRío Negro y Neuquén, ëÉå~ë~, mediante laResolución QVTLMS, estableció el “Instructivopara la exportación de fruta de Prunus L. condestino a la Unión Europea”. Esto es un pro-cedimiento que asegura que la fruta fresca in-grese a ese mercado habiendo cumplido conlas medidas necesarias para estar libre de laplaga. La certificación fitosanitaria se basa enla capacitación técnica de inspectores oficia-les o directores técnicos del sector y de ex-tensión, monitoreos de montes comerciales ydeterminación de infecciones latentes por M.fructicola, identificación de las muestras y de-sarrollo de instructivos con fichas, ciclo deplaga, etc. Estas actividades son realizadas enforma conjunta por: áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle enPatagonia Norte, la Provincia de Mendozamediante el áëÅ~ãÉå, Facultades de Agrono-mía Nacionales y Laboratorios de ëÉå~ë~ uotros autorizados (ëÉå~ë~, OMMS; Rossini etal., OMMT).

El instructivo QVTLMS establece la necesi-dad de que los productores estén inscriptosen el Registro Nacional Sanitario de Produc-tores Agropecuarios (êÉåëé~) de ëÉå~ë~ y quedeben presentar la Solicitud de Inscripciónpara la exportación de frutos de Prunus spp.con destino a la Unión Europea, en la oficinalocal del ëÉå~ë~. Inspectores de esta Institu-ción recorren los lotes inscriptos observandola posible presencia de M. fructicola y todoslos factores que pudieran ocasionar su desa-rrollo durante el ciclo productivo. Si existen

sospechas de síntomas se toman muestras re-presentativas para su análisis en el laboratoriode ëÉå~ë~ o de la red como el de Fitopatolo-gía de la ÉÉ~ Alto Valle. La solicitud es apro-bada una vez constatado el resultado negativoya sea por medio de la inspección o del resul-tado negativo de la plaga (ëÉå~ë~, OMMS).

Los productores cuyos lotes fueron acep-tados para la exportación de la fruta a Eu-ropa, cumplen con un plan preestablecido yacordado de labores culturales y tratamientosfitosanitarios con productos registrados en elpaís, a fin de garantizar el control de la plaga.Los empacadores también deben presentar laSolicitud de Inscripción para la exportaciónde fruta del género Prunus L. con destino a laUnión Europea, en ëÉå~ë~. La aprobación dela misma, depende de los resultados obteni-dos en la determinación de infecciones laten-tes de M. fructicola. Para ello, inspectores deëÉå~ë~ toman muestras de los lotes exporta-bles que son transportadas al laboratoriomencionado en el párrafo anterior donde serealizan los estudios correspondientes (Veraet al., OMMU; Rossini, OMNNa). Son exportadoslos lotes con resultados negativos para laplaga mencionada (ëÉå~ë~, OMMS).

A partir de la temporada OMNMJNN seaplica el mismo procedimiento a manzanas yperas exportables a Irán ante la exigencia deeste mercado de fruta libre de M. fructicolapor ser plaga cuarentenaria en ese país. Enplantaciones comerciales de frutales de pepitano ha sido registrada la presencia este pató-geno como así tampoco en los lotes de frutamonitoreados (Rossini, OMNNa).





El saneamiento ayudará a prevenir los prime-ros ataques. Se logra retirando los frutos nocosechados y evitando dejar frutos momifica-dos sobre la planta. Las podas oportunas y elquemado de ramas enfermas, también contri-buye a eliminar restos del patógeno. Los tra-tamientos con productos cúpricos en otoño einvierno, tienen como objetivo reducir la su-pervivencia del hongo sobre la planta. Lasaplicaciones durante el período de floración,desde el RB de flores abiertas, hasta plenafloración constituyen prácticas preventivaseficientes, pero en períodos de mucha hume-dad, debe pulverizarse cada NR días ó OM días,hasta la cosecha, respetando los tiempos decarencia para cada producto. Un aspecto fun-damental es evitar la aparición de cepas resis-tentes, por lo cual es preferible realizar losprimeros tratamientos con fungicidas de am-plio espectro dejando a los específicos paralas aplicaciones en que ya está avanzada labrotación (Mitidieri, OMNOa).

En zonas con menor incidencia de laplaga el manejo se basa en la realización deprácticas culturales para reducir inóculo, unao dos aplicaciones de fungicidas en primaveray otra previo a la cosecha (Rossini y de Rossi,OMMQJMR).

En el mercado de agroquímicos, existenvarios productos tradicionales de compro-bada eficacia en el control de M. fructicola,tales como: azufre, captan, mancozeb, cloro-talonil, triforine, miclobutanil, benomil, car-bendazim, tebuconazole. Además hay otrosproductos nuevos, algunos de los cuales sonmezclas, como Bogard®, Switch® (Cyprodinil+ fludioxonil), Consist® (Tebuconazole + Tri-floxistrobina), Bellis® (Pyraclostrobina + Ani-lida) (Constantino et al., OMMR).

Existen antecedentes sobre el uso de anta-gonistas biológicos para el control de podre-dumbre morena en frutos de carozo conresultados variables según la severidad de lacepa de M. fructícola y la presencia o no decondiciones favorables para su desarrollo(Mitidieri et al., OMNN; Rossini, OMNNb; Miti-dieri et al., OMNO).


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Xylella fastidiosa Wells et al.(Escaldadura de las hojas del ciruelo)

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IntroducciónAgente causal Hospedantes SíntomasDistribución mundial Transmisión X. fastidosa en Argentina Escaldadura de las hojas del cirueloDistribución en el país y en el mundoSíntomas Importancia de la enfermedad Características de la enfermedad Agente causal Hospedantes Diseminación Manejo de la enfermedad Situación actual en Argentina Bibliografía

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Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòç=J Xylella fastidiosa

Introducción

Xylella fastidiosa Wells et al. ha sido asociadamundialmente con enfermedades que causangrandes pérdidas en cultivos económicamenteimportantes (Hopkins & Purcell, OMMO). Es elprimer patógeno no viral secuenciado com-pletamente en Brasil (Simpson et al., OMMM).

Se la encontró por primera vez en vid, al-rededor del año NUUM, cuando hubo una granepidemia que acabó con la vitivinicultura co-mercial del área de Los Ángeles en Califor-nia, llamándola enfermedad de Pierce`s de lavid (la enfermedad de pierce de la vid). Re-cién UM años más tarde se determinó su ori-gen bacteriano (Hopkins & Purcell, OMMO). Elagente causal pudo aislarse por primera vezen un cultivo puro en NVTU (Davis et al., NVTU).En NUVM se detectó otra enfermedad relacio-nada con este patógeno en duraznero, queaños más tarde fue llamada phony peach.

Agente causal

Es una bacteria del xilema: Xylella fastidiosaWells et al., NVUT, Gram negativa, con paredcelular ondulada característica, sin flagelos,mide MKNJMKR × NJR µm y no forma esporas.Produce colonias muy pequeñas (NJO mm),que sólo crecen en medios nutritivos comple-jos y enriquecidos (Hopkins, OMMN).

Mediante estudios de homología de Çå~ yfilogenéticos se han identificado cuatro sub-especies (Schaad et al., OMMQ; Schuenzel et al.,OMMR). Ellas son:X. fastidiosa subsp. fastidiosa: que incluye las

cepas aisladas de vid, almendro, alfalfa yarce.

X. fastidiosa subsp. multiplex: con algunascepas de duraznero, olmo, ciruelo, plá-tano, olivo, una cepa de almendro y otrasque atacan los árboles de sombra.

X. fastidiosa subsp. pauca, con cepas causantesde la enfermedad en citrus y café.

X. fastidiosa subsp. sandyi que agrupa cepasque atacan al laurel rosado (Nerium olean-der L.).

Posteriormente, en Nuevo México, Ari-zona y California, se encontró una subespecie

diferente de X. fastidiosa en la ornamentalChitalpa tashkentensis L. Fue propuesta unanueva subespecie denominada tashke (Randallet al., OMMV).

Hospedantes

Además de la enfermedad de Pierce´s de lavid y phony peach, la bacteria causa la clorosisvariegada de los citrus, escaldadura de hojasen ciruelo (plum leaf scald), almendro (almondleaf scorch), arce, pecán, café, mora, laurel deadorno, plátano, olmo, roble, peral. Tambiénproduce el enanismo de la alfalfa (alfalfadwarf), y en vinca (Janse & Obradovic, OMNM).

Síntomas

Los síntomas producidos por esta bacteriavarían de acuerdo al hospedante, pueden sernecrosis marginal de la hoja en el caso de lavid, escaldadura de la hoja como almendro yciruelo, enanismo en el caso de la alfalfa,manchas cloróticas internervales con reduc-ción del tamaño del fruto como en citrus.

En general son clorosis o bronceado a lolargo del borde de la hoja que se intensificanen otoño. Estos síntomas se encuentran porprimera vez en unas pocas ramas y más tardeen casi todo el follaje (Janse & Obradovic,OMNM).

Distribución mundial

Su distribución se limita al continente ameri-cano. No se ha observado en otros lugares,salvo dos excepciones: en vid que se presentóen Kosovo (Berisha et al., NVVU) y peral enTaiwán (Tabla RKP) (Leu & Su, NVVP).



Cepas tipo de X. fastidiosa Área

Cepas PD América del Norte y Central, Perú, Kosovo

Alfalfa dwarf EEUU: California

Almond leaf scorch Argentina, EEUU: California,

Phony peach EEUU: sudeste

Plum leaf scald EEUU: sudeste

Citrus variegated chlorosis Argentina y Brasil

Coffee leaf scorch Brasil

Oak leaf scorch EEUU (este)

Maple leaf scald EEUU (este)

Elm leaf scorch EEUU (este)

Sycamore leaf scorch EEUU (este)

Mulberry leaf scorch EEUU (este)

Plum leaf scald Sudamérica: Paraguay, Argentina y Brasil

Periwinkle wilt EEUU: Florida

Pear leaf scorch Taiwan

Pecan leaf scorch EEUU: Louisiana

Oleander leaf scorch EEUU: California y Florida

Tabla 5.3. Distribución geográfica de X. fastidiosa de acuerdo al tipo de cepa/hospedante.

Transmisión

Esta bacteria es transmitida casi exclusiva-mente por insectos que se alimentan del xi-lema de las plantas (chicharritas). Pertenecenal Orden Hemiptera y a las Familias Cicade-llidae y Cercopidae.

La transmisión se produce cuando losvectores se alimentan del xilema de la plantaenferma (adquisición), ubicándose en la cutí-cula del intestino anterior e infectando(transmisión) a un nuevo hospedante al ali-mentarse. Puede existir o no, un período muycorto de latencia y el vector la transmite porlargos períodos, pero la infectividad se pierdecon cada muda. Una vez depositada dentrode este tejido conductor, se multiplica y llenalos espacios con colonias y polisacáridos ex-tracelulares (Da Silva et al., OMMN), que juntocon las tilosas y gomas formadas por la planta,pueden ocluir los vasos que conducen el aguaen la planta (Newman et al., OMMQ). No hayevidencia de transmisión transovárica (Pur-cell & Hopkins, NVVS). Las plantas enfermasson el principal modo de diseminación del pa-tógeno, sobre todo a largas distancias.

X. fastidosa en Argentina

En nuestro país, se la encontró produciendola escaldadura del borde de las hojas del ci-ruelo (Fernández Valiela & Bakarcic, NVSP),la escaldadura del almendro (Nome et al.,NVVO) y la clorosis variegada de los cítricos(Brlansky et al., NVVN). También se detectó X.fastidiosa en diversas malezas asintomáticas enmontes de ciruelos (Nome et al., NVUO) y al-mendros (Haelterman et al., NVVR) como hos-pedantes alternativos.

Fuente: Janse & Obradovic, OMNM


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mäìã=äÉ~Ñ=ëÅ~äÇW=ÉëÅ~äÇ~Çìê~=ÇÉä~ë=Üçà~ë=ÇÉä=ÅáêìÉäç

Distribución en el país y en el mundo

La primera vez que se tuvo conocimento deesta enfermedad fue en Argentina, posterior-mente fue reportada en Brasil y Paraguay(French & Kitajima, NVTU) y en el sudeste delos Estados Unidos (French et al., NVTT).

En Brasil apareció primeramente en RioGrande Do Sul, diseminándose a otras regio-nes, entre ellas Minas Gerais (Alves de Car-valho & de Souza, NVVN). Durante la décadadel TM, esta enfermedad fue responsable de laerradicación de montes de ciruelos desde elsur de Rio Grande do Sul hasta Paraná, re-tornando su cultivo en los años UM, utilizandoplantas libres de la bacteria obtenido mediantecultivo de tejidos (Eidam & Pavanello, OMNO).En Paraguay se encontró en la zona de Itapúa(French & Kitajima, NVTU). En NVTR se deter-minó su etiología bacteriana, al asociar el sín-toma de escaldadura con una bacteria tipo“rickettsia” (Kitajima et al., NVTR).

En Argentina se la observó por primeravez en NVPR en plantaciones de ciruelo japo-nés (Prunas salicina L.) del Delta del Paraná(cercana a la ciudad de Tigre) (Fernández Va-liela & Bakarcic, NVRQ), siendo su mayor dis-persión después de NVQM. En ese momentono existían antecedentes bibliográficos de al-guna afección similar en el país o en el ex-tranjero (Fernández Valiela & Bakarcic,NVSP). Esta grave enfermedad atacó a la ma-yoría de las variedades cultivadas de cirueloen esa zona. La producción local de ciruelojaponés en el Delta originó una cantidad denuevos tipos de ciruelos. Algunos de estos sedifundieron entre los productores isleños,constituyendo nuevas variedades cultivadas.La mayoría de las plantas de ciruelo japonésprovienen de plantas nacidas espontánea-mente y, en menor número, de siembrasefectuadas por los productores. Este cultivo,por su rusticidad y bajo costo de explotación,ocupaba un lugar preponderante en la zona,ya que permitía utilizar los terrenos bajos yprofundos que sólo podían ser aprovechados

por especies forestales de mucho menor valor(Bakarcic & De Santis, NVSV).

Síntomas

Los síntomas observados fueron: leve clorosisirregular en el borde de las hojas (durante losmeses de febrero y marzo en plantas quemuestran por primera vez síntomas). En lasplantas que han soportado la enfermedad porvarios años, los síntomas pueden aparecer afines de diciembre o principios de enero. Laclorosis inicial se intensifica al final del verano,en que se observa un desecamiento de losbordes que penetra en forma irregular en ellimbo. En las variedades más susceptibles seadelanta la caída de las hojas, los frutos soncada vez más pequeños y pierden valor co-mercial. La planta se seca al cabo de unosaños (Bakarcic & De Santis, NVSV).

Importancia de la enfermedad

Por el año NVSM, el cultivo de ciruelo en elDelta del Paraná era uno de los más impor-tantes por su extensión y volumen de produc-ción, además de constituir una especie muyrústica de bajo costo de explotación. La en-fermedad produjo la desaparición de planta-ciones enteras con muchos miles de ejemplaresen plena producción. Por otra parte, dadaslas características de terreno requeridos porel ciruelo, resultaba difícil el cambio por otraespecie frutal, teniendo que ser reemplazadopor cultivos forestales de mucho menor valoreconómico (Fernández Valiela & Bakarcic,NVSP).

Cuando se tuvo conocimiento de la grave-dad de esta patología, fue declarada plaga dela agricultura (Decreto del Poder EejecutivoNacional NRROPLRS) y se recomendó la des-trucción de las plantas afectadas, lo que nofue concretado (Bakarcic & De Santis, NVSV).

La escaldadura del ciruelo causó la muertede RMMKMMM plantas (Fernández Valiela &Bakarcic, NVSP) aunque la respuesta de loscultivares afectados por la enfermedad fue va-riable entre muy susceptibles, tolerantes o re-sistentes.



Características de la enfermedad

Debido a que la enfermedad era desconocidahasta ese momento, se iniciaron estudios paradeterminar la naturaleza de la misma. Selogró su transmitición por injerto, por lo quese pensó que se trataba de un virus (Fernán-dez Valiela & Bakarcic, NVRQ). Por ello se re-alizaron diversos ensayos con tratamientos deinmersión de púas en agua caliente, combi-nado distintas temperaturas y tiempos de in-mersión. Dichas púas posteriormente eraninjertadas en plantas sanas (Bakarcic, NVTO).El tratamiento más efectivo, después de ob-servar las plantas durante OM meses posterio-res al injerto, en dos variedades consideradasmuy susceptibles (Gigaglia y Curti) consistióen el empleo de agua a QR⁄` durante VM min.En estas condiciones el porcentaje de prendi-miento fue del RSB sin observar síntomasdurante ese período (Bakarcic, NVTO).

Si bien la bacteria afectó a la mayoría delas variedades de ciruelos, se observaron al-gunos genotipos “aparentemente resistentes”:Piamontesa I, Remolacha de Baños, Remola-cha Marquez, Soledad, Vacarezza, Vinagrillay otros considerados como “muy resistentes”:Abundancia temprana de Valenti, Bonora,Colorada de Gigaglia, Don Jorge, Dura, Es-trella púrpura y Monterrey.

Agente causal

Recién en el año NVTR, se asoció la enferme-dad con una bacteria “tipo rickettsia” al ob-servarse al microscopio electrónico, célulassimilares a rickettsias en el xilema de cirueloscon síntomas (Kitajima et al., NVTR).

Estudios posteriores determinaron queestas bacterias no tenían relación con las ver-daderas rickettsias, por lo que se las llamóbacterias limitadas al xilema, hasta que fue-ron finalmente clasificadas como X. fastidiosa(Wells et al., NVUT). Se logró su aislamiento,cultivo y patogenicidad en NVUO, a partir depecíolos, tallos y raíces con síntomas de es-caldadura, donde se desarrollaron colonias deMINJMIV mm de diámetro después de tres se-manas de cultivo, en medio sólido de cultivoÄÅóÉ (Wells et al., NVUN). La bacteria posee

MIP µm de diámetro por OJR µm de longitud(Raju et al., NVUO).

El desarrollo de técnicas serológicas comoenzyme-linked immunosorbent assay (Éäáë~)adaptadas para la detección de este tipo debacterias (Nome et al., NVUM), ha facilitado eldiagnóstico de estos microorganismos en te-jidos vegetales y el estudio de la relaciónentre ellos. No se encontraron diferencias se-rológicas o patogénicas entre los aislamientosde Argentina y de ÉÉìì. Tampoco hubo dife-rencias serológicas con la bacteria causantede phony peach, pero sí con la que ocasiona laenfermedad de Pierce de la vid (Raju et al.,NVUO). Los aislamientos asociados al plum leafscald y phony peach han sido transmitidos desdedurazneros con síntomas de phony peach a ci-ruelos y de ciruelos con síntomas de plum leafscald a durazneros, por medio de injerto, ob-servándose los síntomas de la enfermedad dosaños después del injerto (Ritchie, NVVV). EnArgentina, a pesar de encontrarse plantacionesde duraznero contiguos a áreas con plum leafscald no mostraron síntomas de phony peach.

Hospedantes

Se realizaron estudios para determinar la pre-sencia de hospedantes naturales de la bacteriaen nuestro país, analizando plantas silvestresde montes de ciruelos con fuertes ataques deescaldadura. Los análisis fueron realizadoscon técnicas serológicas (Ç~ë=Éäáë~). De untotal de NQ especies analizadas, R fueron posi-tivas para la bacteria (Nome et al., NVUO) pre-sentando sólo algunas, síntomas en Cyperuspohlii L., Eryngium sp. L., Ligustrum sinensisL. (manchas cloróticas circulares), Paspalumurvillei L., y Rubus nitidus L. (manchas redon-deadas rojizas y luego castañas). Las especiesC. pohlii L., P. urvillei L. y R. nitidíaus L., ha-bían sido citadas como hospedantes de la en-fermedad de Pierce de la vid (Raju et al.,NVUM). Estudios realizados en malezas demontes de almendros con Almond leaf scorchdieron resultados positivos por serología ymicroscopía electrónica en las siguientes es-pecies: Cyperus rotundus L., Malvastrum coro-mandelianum L., Setaria viridis L. y Sorghumhalepense L. (Haelterman et al., NVVR).


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En Brasil, por medio de ensayos de inocu-lación con cepas causantes del plum leaf scald,se encontraron positivas las siguientes male-zas: Echinochloa crus-galli L. y Brachiaria plan-taginea L. (Lopes et al., OMMP). Ninguna deellas presentó síntomas.

Diseminación

La bacteria se puede diseminar a través de in-jerto cuando se utilizan púas provenientes dematerial enfermo. De una planta a otra estransmitida mediante vectores (chicharritas)que se alimentan del xilema. Las especies ci-tadas para la transmisión de plum leaf scald yphony peach son: Graphocephala versuta (Say),Homalodisca coagulata (Say), H. insolita (Wlk.)y Oncometopia orbona F. En Argentina, no hayestudios sobre los insectos transmisores deplum leaf scald.


Entre las medidas de manejo deben ser consi-deradas:- El empleo de variedades tolerantes o resis-

tentes.- La erradicación de los focos iniciales, detec-

tados a través de inspecciones realizadasen el verano (enero-febrero).

- La utilización de plantas sanas como mate-rial inicial de plantación del monte.

- La eliminación de ciruelo silvestres contí-guos a las plantaciones.

- La eliminación de malezas circundantes queactúan como reservorio.

- El control del insecto vector de la bacteria.

Situación actual en Argentina

La escaldadura del borde de la hoja del ci-ruelo diezmó sustancialmente las plantacio-nes de ciruela en la Nª y Oª Sección de Islasdel Delta por los años UM. Actualmente se re-gistran sólo pequeñas plantaciones comer-cialmente activas, aunque existen otras másabandonadas (Álvarez, comunicación perso-nal). La zona del Delta dejó de ser frutícola,debido a las inundaciones que provocaron lamigración de sus habitantes.

En cuanto a la enfermedad, no se volvie-ron a observar síntomas en el Delta del Pa-raná desde hace más de OR años (Gómez,comunicación personal).

En el año OMMU, se observaron plantas deciruelo con síntomas muy similares a una es-caldadura, en montes comerciales de la zonade Rama Caída, Mendoza. Debido a los ante-cedentes de la enfermedad en el país, se plan-tearon los siguientes objetivos en el marcodel Proyecto de áåí~=ROUPN (Generación ydesarrollo de tecnología para la prevenciónde enfermedades emergentes cuarentenariasy limitantes en frutales): a) Determinar la si-tuación sanitaria de los ciruelos respecto a laescaldadura de la hoja del ciruelo, y b) Opti-mizar la metodología de detección de X. fas-tidiosa tomando como base metodologíasexistentes.

A tal fin, se monitorearon montes de ci-ruelo del áåí~=J=ÉÉ~ Rama Caída y otros de lazona, desde diciembre hasta marzo, obser-vando plantas que tuvieran síntomas seme-jantes a escaldadura (secado del borde de lahoja) (Foto TR). Se tomaron muestras de lasmismas.



Se analizó la presencia de la bacteria enpecíolos y nervaduras por medio de la técnicaserológica double-antibody sandwich enzyme lin-ked immunosorbent assay (Ç~ë=Éäáë~) con reac-tivos de ~ÖÇá~. La misma se desarrolló segúnprotocolo del laboratorio. Paralelamente seefectuaron análisis moleculares, mediantepolymerase chain reaction (éÅê). Para ello sepuso a punto dicha técnica con primersêëíPNJêëíPP, universales para X. fastidiosa,que detectan la mayoría de los variantes de lamisma (Minsavage et al., NVVQ). El Çå~ se ex-trajo con kit Qiagen y se usó Çå~ extraído decítricos con clorosis variegada de los cítricos

como testigo enfermo, ya que no se cuentacon material enfermo de ciruelos. Se realizóuna prueba con diluciones de Çå~ de cítricoscon la enfermedad para determinar su sensi-bilidad, utilizando O µl de Çå~ por reacción,MIQ=ENLRF y MIO=ENLNMF, reaccionando hasta ladilución mayor (Fig. RKR).

Se detectaron alrededor de PM plantas deciruelo con síntomas sospechosos en la varie-dad D'Agen, pero ninguno de ellos al seranalizados, tanto por serología como por éÅê,resultó positivo para la bacteria, a pesar detener síntomas muy similares a los descriptospara la enfermedad.

Figura 5.5. Gel de agarosa al NIRB de producto de éÅê realizado con primers êëíPNJ=êëíPP y dilucionesde Çå~ enfermo.


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Guignardia citricarpa Kiely(Mancha negra de los cítricos)

Haeltermann, R.; Dummel, D.; Kornowski, M.; Agostini, J.P.; Haberle, T. y R. Moschini

IntroducciónNombre del agente y sinonimias Hospedantes Síntomas Métodos de Diagnóstico

Diagnóstico serológico Diagnóstico molecular Técnica de papel nucleico

Epidemiología. Ciclo biológico Dinámica de la liberación de ascosporas Control y Manejo Método de TRV (Volumen de la fila de árboles) Sistema de Pronóstico de Enfermedades: Modeli-

zación de una función para pronóstico demancha negra de los cítricos

Bibliografía

Å~é∞íìäç=S

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Cítricos


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Introducción

La mancha negra de los cítricos es una enfer-medad del fruto que afecta a su corteza perono causa podredumbre. El limonero es parti-cularmente sensible y, cuando aparece la en-fermedad por primera vez en alguna zona, esesta especie, generalmente, la primera afec-tada. Las pérdidas pueden ser grandes en cul-tivares de maduración tardía, como la naranjaValencia. Los frutos con mancha negra sondesechados para su comercialización en fresco,aunque pueden utilizarse para la industria. Amenudo, los frutos afectados de manera im-portante, caen prematuramente.

Aparece en regiones subtropicales conprecipitaciones en verano. La enfermedad hasido detectada en Argentina, Brasil, HongKong, China, Indonesia, Japón, Kenia, Nige-ria, Mozambique, Filipinas, Perú, Suazilandia,Taiwán, Uruguay, Venezuela, Zimbabue, laszonas de Sudáfrica con precipitaciones en ve-rano y las zonas costeras de Australia (Kotzé,OMMM). En el OMNM se constató su presencia enFlorida, ÉÉìì (å~ééçI=OMNM).

Fue descripta por primera vez en NUVR, enAustralia, en áreas próximas a Sidney, causandopérdidas significativas en frutos de naranja“Valencia” (Kiely, NVQU).

En Brasil el primer reporte fue en el añoNVQM en el Estado de San Pablo (Goes &Feichtenberger, NVVP). En Argentina, elagente causal habría sido aislado por primeravez en NVSUJNVSV, por técnicos de áåí~=Ó=ÉÉ~Concordia, desde frutos de naranjo dulceprocedentes de Misiones (Fernández Valiela,NVTU). Las primeras observaciones de lotescon síntomas en el país datan del año NVTT enAlto Paraná, Misiones (Contreras, NVVQ), deNVUM en Corrientes (Canteros, NVVQ) y deNVUT en Entre Ríos, donde los primeros fru-tos de naranjo Valencia afectados fueron re-colectados en galpones de empaque (Garrán,NVVQ). En la región citrícola de Jujuy y Saltalas primeras observaciones en campo de laenfermedad fueron en el año NVUO (Vigiani etal., NVVS).

La mancha negra de los cítricos es de im-portancia económica porque afecta la produc-ción, el aspecto del fruto y la comercialización

de frutas frescas. Esta plaga cuarentenaria envarios países, restringe la comercialización dematerial de propagación, mudas y frutos(Aguilar-Vildoso et al., OMMO). Estos factorescausan pérdidas para diversas zonas producti-vas en la Argentina debido a las restriccionesfitosanitarias impuesta por la ComunidadEuropea y ÉÉìì.

Nombre del agente y sinonimias

El estado anamorfo del patógeno responsablede la mancha negra fue conocido, durantemuchos años, como Phoma citricarpa McAl-pine, NUVV. Posteriormente, fue cambiadopor Phylllosticta citricarpa (McAlpine) van derAa, NVTP. El teleomorfo es Guignardia citri-carpa Kiely, NVQU y nunca se encuentra en elfruto (Kotzé, OMMM).

Los peritecios de G. citricarpa se encuen-tran en las hojas en descomposición y son lafuente más importante del inóculo. Se en-cuentran en forma agregada y de aspecto glo-bosos (NMMÓNTR µm de diámetro), con unostiolo circular no papilado. Las ascas sonclaviformes, cilíndricas, portando U ascospo-ras. Las ascosporas no son septadas, son hiali-nas, con multitud de canales y cilíndricas,aunque hinchadas en el centro (NOIRÓNS ×QISÓSIR µm), con extremos obtusos, cada unocon un apéndice incoloro (Kotzé, OMMM).

Los picnidios, pardo–oscuros o negros(NNR a NVM µm de diámetro), se encuentranen lesiones de frutos y hojas y ocasionalmenteen el pedúnculo del fruto de limones fuerte-mente infectados. Los conidios pueden tenerforma desde oval a elípticas (UÓNM × RIRÓT µm),hialinas, no tabicadas y acanaladas, con unapéndice incoloro subulado (Kotzé, OMMM).

En NVSQ se descubrió que había dos espe-cies morfológicamente idénticas del géneroGuignardia, una puede causar la mancha negrade los cítricos y la otra aparece endofíticamentey causa infecciones sin síntomas en muchasplantas. La especie no patogénica crece gene-ralmente más rápidamente en medios de cul-tivos que la patogénica y se llama Guignardiamangiferae Roy, NVSU (Kotzé, OMMM), actual-mente clasificada como Phyllosticta capitalensisHenn., NVMU (Glienke et al., OMNN).

Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J Guignardia citricarpa



Hospedantes

La mancha negra afecta numerosas especiesde cítricos, siendo las más susceptibles el li-monero, las naranjas dulces y algunas manda-rinas. El limonero es la única especie dondepuede observarse síntomas de mancha negraen hojas (Agostini et al., OMMRb). Las naranjastardías, tales como Valencia y Folha Murcha,son más susceptibles a esta enfermedad quelas variedades de naranjas más tempranas.También puede producir problemas serios enpomelos, especialmente si se cosechan tarde.Dentro del grupo de las mandarinas ha sidodetectada en el tangor Murcott, las mandari-nas comunes, Fortune y Nova. Hasta el pre-sente no se han detectado síntomas de manchanegra en las mandarinas del grupo Satsuma,del grupo Clementina o del limonero Tahití(Agostini et al., OMMRa).

También hay muchas otras especies no cí-tricas reportadas como hospederos de estepatógeno, tales como Prunus dulcis, Perseaamericana, Eucalyptus sp, Manguifera indica,Passiflora edulis y varias ornamentales (ÉééçIOMMU).

Síntomas

Los síntomas foliares se ven raramente en lasplantaciones bien manejadas de naranjo.Cuando la enfermedad está presente, los sín-tomas aparecen como pequeños puntos ne-cróticos, redondos y hundidos con centrosgrises, cada uno de ellos rodeado por un ani-llo pardo oscuro y un halo amarillo, aunqueeste último no siempre es evidente. Los pun-tos en las hojas aparecen más comúnmenteen limones, donde los pedicelos del frutopueden mostrar también lesiones (Foto TS)(Kotzé, OMMM).

Los síntomas en frutos varían hasta elpunto de que existe cierta confusión encuanto a sus características y descripciones(Foto TT). Se distinguen Q tipos de lesiones:Los puntos duros o “hard spot” son lesiones

más o menos circulares, hundidas y decolor rojo ladrillo, con bordes de colorpardo a negro y tejido necrótico gris enlos centros (Foto TU). Los picnidios están

presentes normalmente, aunque no entodos los casos. Aunque estas lesiones sonlos síntomas más típicos de la manchanegra, el hongo causal es aislado desdeellos con poca frecuencia. Los puntosduros son síntomas en precosecha y sedesarrollan en la parte del fruto que estámás expuesta a los rayos del sol (Kotzé,OMMM). Sinonimias según región: típica,con picnidios, “hard spot”.

La falsa melanosis o sarpullido (“speckled blotch”)(numerosos puntos de color pardo os-curo), aparecen pronto en el fruto aúnverde e inmaduro pero no contienen pic-nidios (Kotzé, OMMM). Este síntoma se pre-senta únicamente en limones. En laregión del noroeste argentino se deno-mina “moteado tipo melanosis” y está re-lacionado con G. mangiferae (Agostini,OMMT), mientras que en otras regiones sedenomina mancha tinta (Foto TV).

Las manchas virulentas se desarrollan cuandola fruta está muy madura y las temperatu-ras son altas. Estas lesiones son deprimi-das, de color marrón a rojizo y formairregular y crecen rápidamente. En todoslos casos las lesiones son superficiales,aunque en casos severos produce la caídadesde el árbol, reduciendo los rendimien-tos. En algunas zonas es denominadomancha castaña (Agostini, OMMT) (Foto UM).

La mancha rojiza, también denominada segúnlas regiones productoras como nueva, ini-cial o de poscosecha, que se puede obser-var en frutas maduras de naranja y limón(Foto UN). Puede evolucionar hasta pro-ducir el síntoma verdadero (“hard spot”),aunque en este estado mencionado noforma cuerpos fructíferos. Este tipo desíntoma puede confundirse por daño fi-siológico causado por frío o bajas tempe-raturas en el almacenamiento de frutas(Agostini, OMMT).

Se puede considerar un quinto síntoma alcual se lo denomina constelación el queconsiste en una serie de puntos marronesque rodean a los síntomas descriptos enprimer y segundo caso (Foto UO).


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Métodos de diagnóstico

Diagnóstico serológicoPara la producción del antisuero se utilizaronlas proteínas solubles de una cepa de G. citri-carpa aislada en áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vista. Elhongo se multiplicó en caldo papa glucosadoen agitación, a OU⁄`. El micelio se filtró y setrituró con nitrógeno líquido. Para separarlas proteínas solubles se le agregó al miceliosulfato de amonio saturado (solución finalSSB), realizando luego tres diálisis con tam-pón fosfato salino (éÄë). Con este inmunógenose realizaron cinco inyecciones intramuscula-res a un conejo, de N mg de proteínas cadauna, seguida de dos endovenosas de MIQ mg.

Para el diagnóstico serológico de manchanegra, se implementó el í~ë=Éäáë~ con frac-ción Fab. Se purificó la ágÖ, a partir del anti-suero obtenido, precipitando con sulfato deamonio y dializando con tampón éÄë. Losfragmentos Fab se obtuvieron utilizando elkit Immunopure F(ab) del laboratorio Pierce®.Para una completa separación de la fracciónvariable, se realizó una diálisis con tubosSpectra Por T=ãïÅç=RMâÇ. Para determinar lasconcentraciones de uso, se efectuaron variascalibraciones, probando diferentes concen-traciones de cada uno de los reactivos: frac-ción Fab (MIN a P µg/ml), ágÖ (MIN a NIM µg/ml)y conjugado enzimático con fosfatasa alcalina(Pierce) (NLRMKMMM hasta NLOMMKMMM). La mejorreacción fue sensibilizando con fracción Fab,N µg/ml, ágÖ Nµg/ml y conjugado enzimáticoNLNRMKMMM.

El protocolo utilizado para í~ë=Éäáë~ fueel siguiente: sensibilización con fracción Fab

en tampón cobertura, dejando toda la nochea Q⁄`; bloqueo con leche descremada al 5%,durante Nh a OU⁄`; agregado de las muestras,en tampón extracción, por Phs a OU⁄`; adi-ción de la ágÖ en tampón éÄëHéîéHTween,dejando toda la noche a Q⁄`; agregado delconjugado enzimático en tampón de conju-gado, por Ohs a OU⁄`; revelado con sustratop- nitrifenil fosfato en tampón sustrato.

Entre cada paso se lava la placa de P a Rveces con éÄë más Tween. Los tampones uti-lizados son los de uso corriente para esta téc-nica.

Para determinar la especificidad del anti-suero se probó micelio de G. citricarpa con elde otros hongos (Phytophthora y Fusarium),moliendo en tampón extracción. No hubo re-acción cruzada con ellos (Fig. SKN).

Se realizaron análisis con material vegetalenfermo y para ello se molieron lesiones apartir de frutos de mandarina y limón conmancha negra. La molienda se realizó con ni-trógeno líquido y con el agregado tampón deextracción. Se siguió el mismo protocolo de-tallado anteriormente.

Se distinguieron claramente las frutas conmancha negra de las sanas (Fig. SKO).

Se procedió a analizar si esta técnica podíadiferenciar G. citricarpa de G. mangiferae.Para ello se probaron distintas concentracio-nes de micelio de ambas especies. Se observóque el antisuero reconocía la cepa de G. man-gifera, aunque con valores de absorbanciamenores comparado con los de G. citricarpa aigual concentración de micelio. No fue posi-ble diferenciar las dos especies con este anti-suero.

Figura 6.1. í~ëJÉäáë~ comparativo con micelios de diversos hongos G. citricarpa, Phythophtora spp. yFusarium spp.



Figura 6.2. í~ëJÉäáë~ desde frutos cítricos con síntomas de mancha negra causada por G. citricarpa. Ref:Ä: buffer utilizado; Öcã: Guignardia citricarpa mandarina; Öcä: Guignardia citricarpa limón y s: anti-suero.

Diagnóstico molecularSe puso a punto el éÅê con los primers pro-puestos por Peres et al., OMMT para la identifi-cación de G. citricarpa. Estos primersreconocen la región áíë.• ÖÅå R…ÅíÖ~~~ÖÖíÖ~íÖÖ~~ÖÖÖ~ÖÖ=P…• ÖÅãê=R…Å~íí~Åíí~íÅÖÅ~íííÅÖÅíÖÅ=P…

Utilizando frutos de naranja y pomelocon mancha negra, tomando la zona de las le-siones y moliendo las mismas con nitrógenolíquido. El Çå~ se extrajo con el kit Çå~easyPlant Mini Kit® (Qiagen). La mastermix serealizó con: Buffer 1x, ãg Ål Qmã, dåíéMIRmã, ÖÅå=MIQuã, ÖÅãê MIQuã, íaq Nì y Nulde Çå~. Se realizaron QM ciclos de VQ⁄ PM=seg,SQ⁄ PM=seg y TO⁄ Nmin.

Posteriormente los productos de éÅê secorrieron en geles de agarosa al NIRB y se ti-ñeron con una solución de bromuro de eti-dio, observándolos en transiluminador.

Se obtuvo la banda esperada de PMM pb enlas muestras con mancha negra (Fig. SKP).

Para determinar si se lograba la diferen-ciación de las dos especies de Guignardia, G.citricarpa (cuarentenaria) y G. mangifera (nocuarentenaria) en la misma reacción, se rea-lizó un duplex, utilizando los primers ante-riormente citados agregándole los Öãå(Peres et al., OMMT), que detecta G. mangiferae(el primer reverse es el mismo para ambas es-pecies). Öãå=R}ÅÖÅí~Å~~ÅÖÅÅÖ~~~íÖ~=P}.

La extracción del Çå~, a partir de micelio,se realizó con kit Çå~easy Plant Mini Kit®

(Qiagen). La mastermix fue similar a la ante-rior, agregando el cebador Öãå en la misma

concentración que los anteriores (MIQ=µã). Selogró diferenciar las dos especies, dando G.citricarpa una banda de PMM pb y G. mangife-rae OVM pb, siendo esta técnica apta para dis-criminar entre ellas (Fig. SKQ).

Figura 6.3. Gel de agarosa al NIRB con productode éÅê primers ÖÅå y ÖÅãê. Ref: ë: anti-suero;éom: pomelo; åar: naranja; (-): control negativo yã: marcador de peso molecular.

Figura 6.4. Gel de agarosa al NIRB con corrida deproductos de éÅê cebadores ÖÅåI=Öãå y ÖÅãê quepermiten diferenciar G. citricarpa una banda dePMMpb y G. mangiferae OVMpb. Ref: (-): control nega-tivo; íë: tween; ÖcN: G. citricarpa cepa N; ÖcO: G. ci-tricarpa cepa O; ÖcP: G. citricarpa cepa P; ÖcQ: G.citricarpa cepa Q; ÖmN: G. mangiferae cepa N; ÖmO: G.mangiferae cepa O y ã: marcador de peso molecular.


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Técnica de papel nucleicoSe implementó la técnica de papel nucleicopara simplificar la extracción del Çå~ y evitarlas contaminaciones. Esta tiene la ventaja quese puede partir de la misma molienda de laprueba serológica.

Se maceraron lesiones de mancha negrade limón y mandarina en dilución NLR (éLî)con tampón extracción. Se sembraron OM=µldel homogenato sobre papel nucleico (Biody-namics®) dejándolo secar. Posteriormente secortaron pequeñas porciones del papel, se in-trodujeron en tubos de NIR ml, conteniendoNMM µl de agua libre de nucleasas y se llevarona VR⁄` durante NM min.

La reacción de éÅê se realizó igual que lasanteriores, pero empleando NM=µl de esta sus-pensión (Fig. SKR)

Epidemiología. Ciclo biológico

La epidemia de la mancha negra depende dela existencia de inóculo durante el verano, delas condiciones cálidas y húmedas favorablesa la infección y del grado de desarrollo delfruto, en relación a su susceptibilidad a la in-fección (Kotzé, OMMM).

La mancha negra de los cítricos presentalos ciclos primario y secundario bien distin-tos. El primario, representado por la fase se-xual del hongo G. citricarpa, cuyas estructurasinfectivas son las ascosporas, responsables dela introducción del patógeno en áreas libresde éstas e inicio de las epidemias en cadaciclo de cultivo. El ciclo secundario es carac-terizado por la fase asexual del hongo

(Phyllosticta citricarpa), donde los conidios sonresponsables por el incremento de la enfer-medad en la planta y en sus vecinos (Aguilar–Vildoso, OMMO; Kiely, NVQU).

Los conidios de los picnidios en las hojasmuertas o en el fruto en el suelo no sontransportados por el viento, pero pueden lle-gar a los frutos susceptibles al ser salpicadospor las gotas de lluvia. Son insignificantescomo fuente de inóculo, pero pueden causarinfección desde el árbol si los frutos se reco-lectan en forma tardía. Tras la floración y elcuajado de nuevos frutos, los conidios puedenllegar a los frutos más jóvenes que se encuen-tran por debajo de los frutos maduros, debidoa que todavía se hallan en la fase susceptible(Kotzé, OMMM).

En Brasil observaron que después de ONdías bajo condiciones ambientales favorables,los picnidios se encontraban vacíos, indicandoque una liberación completa de conidios ocu-rre antes de este período (Hoto et al., OMMN).Igualmente en Argentina se determinó quepicnidios de frutas mantenidas en cámara hú-meda por más de NQ días se manifestaban ex-haustos en la liberación de conidios (Dummelet al., OMMV).

El período crítico de infección comienzaen el cuajado de la fruta cuando llueve. Elfruto sigue siendo susceptible durante QÓRmeses, después de los cuales ya no se produceinfección, independientemente de las condi-ciones climáticas y la presencia de inóculo.Cuando la ascospora germina, produce untubo germinativo y un apresorio, a partir delcual penetra en la cutícula y se expande for-mando una pequeña masa de micelio entre lacutícula y la epidermis. El hongo permaneceen este estado de latencia hasta que el frutoesta desarrollado o maduro; entonces, puedecrecer más hacia el interior de la corteza,produciendo los síntomas de la mancha negramuchos meses después de que haya tenidolugar la infección. El desarrollo de los síntomasen frutos maduros se acelera con el ascensode las temperaturas, las altas intensidades lu-minosas, la sequía, el envejecimiento delfruto y por el escaso vigor del árbol. Por logeneral, los árboles viejos tienen más manchanegra que los jóvenes (Kotzé, OMMM).

Figura 6.5. Gel de agarosa al NIRB con corrida deproductos de éÅê primers ÖÅå y ÖÅãê. Ref: (-):control negativo; íë: tween; åar: naranja; ãan:mandarina y ã: marcador de peso molecular.



Dinámica de la liberación de ascosporas

Para determinar la relación entre la libera-ción de ascosporas y las distintas variablesambientales se utilizaron los datos diarios decapturas de ascosporas de dos campañas enplantaciones comerciales de naranja Valencialate comprendidos entre octubre OMMU ymarzo OMMV. Tanto para la primera como se-gunda campaña se analizó la liberación de as-cosporas de G. citricarpa durante los mesescomprendidos entre septiembre y marzo, ob-servándose picos en diferentes momentos.

Se observó mayor número de ascosporasdurante los meses de diciembre y enero parala campaña OMMTLOMMU, mientras que duranteel mes de febrero el mismo disminuyó vol-viéndose a incrementar en el mes de marzo.Para la campaña OMMULMV se observó un picoen el número de ascosporas entre los mesesde octubre–noviembre, disminuyendo para elmes de diciembre e incrementando para losmeses de enero–febrero–marzo. En ambascampañas se observó una estrecha relacióncon la ocurrencia de lluvias caídas y las altastemperaturas durante esos meses.

Existe una relación entre el número decaptura de ascosporas de G. citricarpa con latemperatura y humedad relativa a lo largo delas OQ h del día en la estación de primavera,lo cual indica que durante las horas de lanoche la humedad relativa aumenta mientrasla temperatura disminuye, reduciendo a cerola captura de ascosporas, y durante el día aldisminuir la humedad y aumentar la tempe-ratura se produce liberación de ascosporas yun mayor número de capturas. La capturacomienza a medida que la humedad relativadisminuye cerca del medio día, con un má-ximo de capturas entre las NS h y OM h, dondela humedad relativa comienza a aumentarnuevamente y las temperaturas empiezannuevamente a bajar. La alta humedad relativaestá estrechamente ligada a la presencia derocío durante la noche, lo cual aceleraría lamaduración de los peritecios y provocaría suapertura y liberación de las ascosporas al me-dioambiente durante las horas del día (Dum-mel et al., OMNO).

La temperatura promedio de los meses en

que se registraron capturas de ascosporasvarió entre los NU y los PM⁄`, con un pico demínima de R⁄` en el mes de septiembre, y unpico de máxima de PR⁄` para el mes de di-ciembre. Sin embargo, el número de capturasregistrado durante el mes de septiembre fuemenor en relación a los otros meses. Las pre-cipitaciones variaron a lo largo de los S meses,con una variación de T mm a PQQ mm caídos.Las menores precipitaciones ocurrieron du-rante los meses de septiembre, noviembre,febrero y marzo. Los meses de octubre di-ciembre y enero fueron los que presentaronla mayor concentración de precipitaciones,con lluvias distribuidas a lo largo de todas lassemanas, salvo para el mes de enero en el queno se observó una distribución tan uniforme.Octubre del OMMU y enero del OMMV alcanzaronlos UM mm de lluvias caídas para un solo día.Los días posteriores a las precipitaciones seregistraron temperaturas bajas. La duracióndel mojado de hoja dependió de las lluvias ca-ídas y de las temperaturas presentes. Díasdonde no se registraron lluvias, pero que tu-vieron noches con alta humedad relativa ybajas temperaturas presentaron igualmentemojado en superficie de la hoja (Dummel etal., OMNO).

Existe una estrecha relación entre tempe-raturas, lluvias, horas de mojado de hoja ycapturas de ascosporas. Alternancia de díassecos seguidos de días húmedos influyen enla dinámica de liberación de ascosporas.


En países y zonas donde no se encuentra laenfermedad es importante evitar su introduc-ción. La manera más común de introducirlaes a través del material vegetativo; plantas deviveros infectadas, yemas procedentes deplantas infectadas y, posiblemente, hojas queacompañan a la fruta no tratada. La fruta co-mercializada no se considera un peligro im-portante, ya que sobre ella únicamente seproducen picnidios. Los mismos no son ini-ciadores de epidemia, pues los conidios noson transportados por el aire y, por lo tanto,no se diseminan tan lejos como las ascosporas(Agostini et al., OMMRb).


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Esta enfermedad puede estar durante mu-chos años en una zona produciendo pocas le-siones antes de ser descubierta. Es importantetomar medidas preventivas porque, una vezestablecida, resulta casi imposible erradicarla,especialmente considerando que es muy difí-cil diferenciar la forma saprófita de la pató-gena del hongo. Una práctica que ayudaría acontrolar la mancha negra consiste en la eli-minación de la hojarasca, principal fuente deinóculo. Para ello, se debe enterrar mecáni-camente o, tal como se hace usualmente enBrasil, tapar con el “mulching” resultante delpaso de la desmalezadora por el centro de lacalle. En su defecto, se puede tratar la hoja-rasca con algún producto químico, como serurea o cal. A pesar de la elevada susceptibili-dad del limonero a la mancha negra, una solaaplicación de productos sistémicos entre losSM y los VM días posteriores a la floración per-mite lograr un buen control.

Las capturas de esporas, junto con los re-gistros de lluvias y temperaturas, se han utili-zado con éxito en Sudáfrica para determinarel momento y la intensidad de la liberaciónde las ascosporas. El comienzo del períodocrítico se puede predecir satisfactoriamentepara determinar el momento más oportunode las aplicaciones químicas. El número detratamientos que se requiere en un programapreventivo depende en gran medida de laedad del árbol, del vigor del árbol, del cultivary de las condiciones ambientales. Los pro-ductos a utilizar son los benzimidazoles (be-nomil, carbendazim) o estrobilurinas. Para elcaso de las naranjas, en particular aquellas deciclo tardío como “Valencia” y “Folha Mur-cha”, es necesario proteger la fruta desde laprimavera, durante la liberación de ascospo-ras (octubre–noviembre, dependiendo de lazona), hasta mediados del verano (enero–fe-brero), cuando la fruta adquiere resistencia.En plantaciones afectadas, las pulverizacionescon cobre o carbendazim en marzo ayudan adisminuir los daños por esta enfermedad. Entodos los casos, es conveniente combinar losproductos con aceites minerales. En frutasasintomáticas, las pulverizaciones con pro-ductos sistémicos realizadas NR días antes dela cosecha no reducen significativamente el

desarrollo de síntomas en poscosecha (Agos-tini, OMMT).

Método de íêî (Tree Row Volume-Volumende la fila de árboles)

A los efectos de maximizar la calidad de lostratamientos para un adecuado control demancha negra fueron incorporadas herra-mientas tecnológicas bajo el concepto de íêîque se basa en el ajuste del volumen de caldoa aplicar por hectárea en función del tamañode los árboles. Además mediante la incorpo-ración de picos inyectores de aire (áÇ) enequipos atomizadores de alto volumen sepuede optimizar la eficiencia de dichos equi-pos con la finalidad de utilizar menores volú-menes de agua en plantaciones de naranjaValencia (Citrus sinensis L. Osb.) altamentesusceptible a esta enfermedad. Las aplicacio-nes durante las diferentes campañas fueronrealizadas sobre esta variedad con una alturapromedio de plantas de RIR m. y el diámetroen dirección del ancho de la fila de R m. Porlo tanto para la determinación del volumende agua a aplicar por hectárea se utiliza elconcepto de íêî basado en la siguiente fór-mula: è (ä/ha) = [(NMKMMM) × (h) × (a) × (i) ×(MKMVPT)] / (d). Donde: è (ä/ha) = caudal li-tros por hectárea, h = altura de las plantas enmetros, a = ancho máximo de la fila en me-tros, d = distancia entre filas en metros, i =índice de ajuste por densidad foliar (MIT aNIO), y MIMVPT = coeficiente de saturación fo-liar (lts./m3 de copa). De acuerdo a trabajosexperimentales realizados con pulverizadorasatomizadoras, el volumen de líquido reque-rido para saturar N m3 de copa con una densi-dad adecuada de gotas es igual a VPT ml. Eneste ensayo se utilizó como coeficiente dedensidad foliar = N. Los ensayos se realizarondurante las campañas OMMRLMS, OMMSLMT,OMMTLMU y OMMULMV utilizándose pulverizado-ras ajustadas a los volúmenes a utilizar conlos productos mencionados en Tabla SKN enlos momentos considerados como críticos.Todos los tratamientos efectuados durante lastres campañas con aplicaciones reducidas envolumen íêî=Z=JRMB y íêîZ=JSMB medianteel empleo de picos áÇ, demostraron ser



efectivos para el control de mancha negra, sinpresentar diferencias significativas con res-pecto al tratamiento estándar íêîZN (TablaSKO). Todos los tratamientos fueron significa-tivos con respecto al testigo sin pulverizaciónalguna. La incorporación de picos áÇ=VMJMOen turbinas de alto volumen brindaría una al-ternativa para disminuir los volúmenes deagua e insumos aplicados por hectárea enforma sustentable. La duplicación de la con-centración de productos en el tanque de lapulverizadora en el caso de usar equipos deaplicación en bajo volumen es eficiente paraeste tipo de prácticas.

AgroquímicosDosis en 1000 lts.(Z) para TRV=1

Principio activo Nombre comercial

Oxicloruro de cobre Caurifix® 3 kg.

Hidróxido de cobre Champion® 2,2 kg.

Trifloxistrobin Flint® 0,1 kg.

Piraclostrobin Comet® 0,2 lts.

Aceite mineral YPF curafrutal® 5 lts.

Tabla 6.1. Productos utilizados para el control de mancha negra (Guignardia citricarpa Kielly) en naranjaValencia, concentración calculada para íêîZN, ajustadas para los tratamientos determinados en alto volumen.

(Z) Las aplicaciones de bajo volumen de íêîZJRMB, JSMB y JTMB las dosis de agroquímicos fueron duplicadas.

Tabla 6.2. Resultados de la incidencia y severidad de mancha negra (Guignardia citricarpa Kielly) y por-centaje de disminución de la enfermedad con respecto al testigo en fruta de naranja Valencia para los di-ferentes tratamientos de íêî para los tres años de ensayo

TratamientoAño 2006 Año 2007 Año 2008

Incidencia (%) Reduc. (%) Severidad (0–4) Incidencia (%) Reduc. (%) Severidad (0–4) Incidencia (%) Reduc. (%) Severidad (0–4)

TRV-70% ID 9,06 A 86,82 0,10 A 15 B 53,23 0,23 B

TRV-60% ID 17,67 A B 82,81 0,31 A

TRV-50 % ID 8,38 A 87,81 0,11 A 0,67 A 97,91 0,0 A 34 B 64,95 0,67 A

TRV = 1 4,55 A 93,38 0,05 A 4,67 A 85,44 0,03 A B 11 A 88,66 0,21 A

TRV-70% BV 23,07 B 66,43 0,29 B 7,3 A B 77,24 0,13 A B

Testigo 68,72 C 1,37 C 32,07 C 0,63 C

TRV-50% BV 7,67 A B 76,08 0,13 A B

TRV-60% BV 13 A B 86,60 0,22 A


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Sistema de pronóstico de enfermedades:modelización de una función para pronós-tico de mancha negra de los cítricos

Para la modelización de una función parapronóstico de mancha negra, y en base a lasvariables analizadas, los valores diarios de as-cosporas capturadas fueron acumulados se-manalmente. Los datos fueron agrupados envalores semanales de ascosporas capturadas(åZOU), las cuales se categorizaron en funciónde valores umbrales: nivel severo (ascosporasmayores a OR), nivel moderado (ascosporasmenor o igual que OR y mayor que R) y nivelligero a nulo (ascosporas menor o igual a R).

De los datos obtenidos de la estación me-teorológica y el cazaesporas se pudo obteneruna función que explique cuáles son los fac-tores ambientales que influyen más fuerte-mente en la liberación de ascosporas de G.citricarpa.

Las más altas correlaciones (rk: coeficientede Kendall) entre los niveles de ascosporascapturadas semanalmente y las variables me-teorológicas analizadas individualmente, seencontraron cuando estas últimas fueronprocesadas en el lapso previo de T días (TablaSKP). Desde el punto de vista térmico es des-tacable la correlación negativa de la tempera-tura máxima media, coherente con el bajoumbral para la temperatura máxima (OV⁄`)establecido en la variable Çí (rkZMIRO). Lamás alta correlación de la variable ådér (díascon lluvias ≥ MKO mm) se obtiene cuando secontabilizan lluvias diarias ≥ MIO mm (rkZMIRU),bajando la correlación cuando solo se consi-deran precipitaciones mayores a N mm(rkZMIRQ) y a P mm (rkZMIQT). Cuando a laocurrencia de precipitación se le incorporaun umbral máximo de amplitud térmica(~t=ímax-ímin), se logra incrementar la co-rrelación con los montos totales semanales deascosporas capturadas (variable Çér~t; rkZMIST).La máxima correlación se obtiene sumandoÇér~t con los días sin precipitación y bajaamplitud térmica (Çsér~t). La variable resul-tante (Çãojt) contabiliza los días de mojadototal originados ya sea por lluvia o por rocío.Por la magnitud de la correlación se destacala variable Ção, que calcula el total de días

con duración de mojado superior a NM horas(rkZMISU), debiendo contar en este caso conun sensor que permita su medición (escasadisponibilidad en las redes de estaciones me-teorológicas de Argentina). Las correlacionesbajan a MISM y MIRU cuanto se cuentan los díascon más de V horas y U horas con mojado.(Dummel et al., OMNO).

El método de selección de variables Step-wise del Proc Logistic (åëÉ y åëé=MIMN) defi-nió un modelo que incluye solo a la variableÇãojt; Modelo I (Tabla SKQ). El modelo biva-riado más apropiado (åëÉ y åëé=MIMR) integróa las variables Çãojt y a Çí (Modelo áá). Elmodelo á clasificó correctamente NV de las 28observaciones de ascosporas capturadas se-manalmente, categorizadas ordinalmente(STIVB de precisión de predicción). El mo-delo áá fue preciso en OP casos de los OU ob-servados (UOINB de precisión de predicción).

Respuesta Ordinal

Variables rk

DT 0,52

TmáxM -0,19

TmínM 0,30

NdPr 0,58

PrAc 0,42

DPrAt 0,67

DsPrAt 0,27

DMojt 0,71

DuMojt 0,53

DMoj 0,68

Tabla 6.3. Coeficientes de correlación (rk) deKendall de variables meteorológicas en relación alos niveles ordinales de ascosporas capturadas cadasiete días (severo, moderado y ligero-nulo).

Çí: número de días con ímín >OM⁄` y ímáx <OV⁄`; ímáxã: temperatura máxima media; ímínã: temperatura mínima media; ådér: días con lluvias ≥MKO mm; ér~c: precipitaciones diarias acumuladas; Çér~t: número de días con registros de ér≥MIO mm y

~t<NQIOø`; Çsér~t: días sin registro de precipitación (ér<MIO=mm) y

~t<Tø`; Çãojt: Çér~t + Çsér~t; Çuãojt: duración de mojado total en horas; Çãoj: días con duración de mojado>NM h.



Tabla 6.4. Modelos logísticos para estimar la probabilidad de ocurrencia de cada categoría de ascosporascapturadas semanalmente: Ordinal: severa (ë), moderada (ã) o ligera a nula (ä), en base a variables mete-orológicas simples

*Logitérë=ln(érë/N-érë); Logitérãac=ln(érãac/N–érãac). Resolviendo las expresiones Exp(Logitérë)/ (N+Exp(Lo-gitérë)) y Exp(Logitérãac)/ (N+Exp(Logitérãac)) se obtienen los valores de érë (probabilidad de observar un nivel se-manal de esporas atrapadas (ë)) y érãac (probabilidad acumulada de ocurrencia de un nivel de atrape de ascosporasmayor o igual al moderado (ã)). Ln es el logaritmo natural. érã=érãac-érë. érä=N-(érë+érã) siendo érä la probabili-dad de observar un nivel de ascosporas ligero a nulo (ä). Çér~t: número de días con registros de ér>=MIO mm y~t<NQIOø`; Çsér~t: días sin registro de precipitación (ér<MIO mm) y ~t<Tø`; Çãojt: Çér~t+Çsér~t.

Modelo Ecuaciones del Modelo* Precisión %

ILogitPrS= – 4,553 + 1,6015 * DMojt

67,9LogitPrMac= - 1,1165 + 1,6015 * DMojt

IILogitPrS= –6,1318 + 1,8108 DMojt + 3,4829 DT

82,1LogitPrMac= –1,6652 + 1,8108 DMojt + 3,4829 DT

Algunas variables meteorológicas identifi-cadas en este estudio lograron explicar fuer-temente la variabilidad en el número deascosporas capturadas semanalmente en lacampaña OMMUJOMMV, en Montecarlo. Se des-tacaron especialmente las variables: númerode días con registros de precipitaciones mayoro igual a MIO mm y amplitud térmica menor aNQ⁄` (Çér~t) y días con duración de mojadomayor a NM horas (Çãoj) (Dummel et al., OMNO).

El seguimiento de la evolución semanalde los valores de probabilidad de ocurrenciade niveles de ascosporas capturadas severas(Modelo áá), junto a la evolución de la princi-pal variable regresora: días de mojado totales(Çãojt) calculada en los siete días previos, fue

ploteada para Montecarlo para la campañaOMMULMV. Se destacó una buena corresponden-cia entre los valores de probabilidad de tenerniveles severos de ascosporas capturadas y laevolución de los días de mojado totales (Çãojt),con los valores semanales observados de as-cosporas capturadas (Fig. SKS) (Dummel et al.,OMNO).

Se ha confeccionado una hoja de cálculo afin de introducir estas variables meteorológi-cas del modelo y poder determinar en formapráctica y en tiempo real la necesidad de apli-caciones de agroquímicos en base a la proba-bilidad de existencia de un pico de liberaciónde ascosporas durante los meses de suscepti-bilidad de la fruta.

Figura 6.6. Evolución de la probabilidad de ocurrencia de una captura semanal de ascosporas severo([OR ascosporas) (ProbSev), estimada por modelo áá de Tabla P y de los valores de la principal variableregresora Çãojt, para la campaña OMMULOMMV (donde Çãojt=Çér~t+ Çsér~t, siendo Çér~t: número de díascon registros de ér>ZMIO mm y amplitud térmicaYNQIOø` y Çsér~t: días sin ér y amplitud térmica YTø`,en lapsos de T días previos a cada observación).



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Xanthomonas axonopodis pv. citri(Hasse) Vaut. (Cancrosis de los cítricos)

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Desarrollo de un tratamiento para el con-trol de cancrosis de los cítricos en posco-secha compatible con la norma orgánica

Trabajo de laboratorioFrutas cítricas orgánicasEvaluación de la capacidad bactericida de

diversas sustancias y ozonoPruebas de evaluación de la capacidad bac-

tericida de sustancias y ozono sobrefrutas infectadas en laboratorio

Pruebas en galpón de empaque Bibliografía

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IntroducciónNombre de la plaga y sinonimia Hospedantes Sintomatología. Daños Distribución en el país Epidemiología Manejo de la enfermedad Monitoreo y técnicas de detecciónBibliografía

Kornowski, M.; Dummel, D. y J.P. Agostini Messina, M.; Tito, M.; Vera, L. y D. Vazquez

Desarrollo de un modelo para el control decancrosis

Modelos de regresión lineal (valores mediosde intensidad de cancrosis)

Modelos de regresión logística (valores me-dios de intensidad de cancrosis)

Modelos de regresión logística (intensidadde cancrosis a distancias crecientes de lacortina rompeviento)

Bibliografía

Moschini, R.; Canteros, B.; Garran, S. y M. Martinez

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Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J Xanthomonas axonopodis

Introducción

La cancrosis de los cítricos causada por Xan-thomonas axonopodis pv. citri (Hasse) Vaut. (si-nónimo = X. campestris pv. citri (Hasse) Day.es una enfermedad endémica en todas lasprovincias del Litoral Argentino y última-mente la región del noroeste (åç~) se ha vistoafectada por su presencia. En NVOT se ob-servó por primera vez un foco de la enferme-dad causado por el biotipo B en el interior dela provincia de Corrientes. Las infeccionescon el tipo A comenzaron en NVTQ y en NVVMse la consideró endémica en el Litoral Argen-tino, la incidencia e intensidad variaban encada lote de acuerdo a la susceptibilidad delhuésped, condiciones ambientales y el ma-nejo que se aplicara. Su importancia se basaprincipalmente en las condiciones cuarente-narias del agente causal para la exportaciónde frutas hacia países libres de la enfermedad(Canteros, OMMNa).

A través del uso de análisis serológicos selogró identificar y clasificar distintos tipos decancrosis, causada por diferentes patovares dela bacteria.

Nombre de la plaga y sinonimia

El agente causal de la cancrosis de los citrusen Argentina es la bacteria Xanthomonas axo-nopodis pv. citri (Hasse, NVNR) Vauterin et al.,NVVR (sinónimo = X. campestris pv. citri (Hasse)Day, NVTU. Presenta varias formas:Cancrosis A o asiática. Es la forma más impor-

tante y severa de cancrosis. Se ha disemi-nado en numerosos países como Brasil,Argentina, Paraguay, Uruguay, Japón,Taiwán, China, Irán, Francia, EstadosUnidos (Florida) y muchos otros paísesdel sudeste asiático. Infecta a todos lostipos de cítricos como pomelo (Citrus pa-radisi Macfadyen), lima Key (C. aurantifo-lia Swingle), limón (C. limón (L.) Burm.),naranja (C. sinensis (L.) Osbeck), mandari-nas (C. reticulata Blanco) y otras especies ehíbridos (Canteros, OMMNb).

Cancrosis B o sudamericana. Fue descriptacomo falsa cancrosis en Argentina (Co-rrientes y Entre Ríos) en NVOT y proba-

blemente años antes en Paraguay (Cante-ros, OMMNb). Causaba lesiones importantessólo en frutos de limón y lima Key y losataques eran esporádicos. Después de laintroducción del tipo A, la forma B no sela puede aislar más de muestras de campo.

Cancrosis C o cancrosis de la lima Key. Este tipose describió solamente en Brasil en limaKey conocida también como limón ga-llego (C. aurantifolia). Su ocurrencia esmuy esporádica.

Cancrosis E, cancrosis de vivero o mancha bacte-rial de los cítricos. Apareció en Florida, Es-tados Unidos, en NVUQ sobre citrumeloSwingle. Se intentó erradicarla pero lacampaña se detuvo en NVVM, después deque numerosas investigaciones indicaronque no era una enfermedad peligrosa. Elagente causal es X. axonopodis pv. citrumeloÑN. Su ocurrencia es también esporádica.

Hospedantes

Ataca a todas las especies de cítricos, aunqueexisten variaciones entre especies y cultivares.Dentro de una misma especie el estado juveniles más susceptible que el adulto. En un gradodecreciente de susceptibilidad se encuentranpomelos, naranjas de ombligo (New Hall,Navelate, Lane Late), limones, mandarinasMurcott adultas, naranjas tardías, la mayoríade las variedades de mandarinas (Clementi-nas, Nova, Fortune, etc.) y mandarinas delgrupo Satsuma como las menos susceptibles(Guía Fitosanitaria para los Cítricos en laProvincia de Misiones, NVUS).

Sintomatología. Daños

Los primeros síntomas en hojas aparecencomo pequeñas manchas acuosas traslúcidasy al poco tiempo se produce una erupción deltejido afectado; se tornan de color castañooscuro y adquieren una consistencia corchosacon un punto central prominente, rodeadopor rebordes concéntricos, con un halo ama-rillo alrededor y margen oleoso bien notable(Foto UP). El cancro toma un aspecto crateri-forme al producirse rajaduras en el mismo.En el fruto las lesiones son similares y los



cancros más profundos, aunque no llegan a lapulpa. En ataques muy fuertes se produce de-foliación y caída de frutos (Foto UQ).


La cancrosis de los cítricos está muy difun-dida en las provincias de Misiones, Corrien-tes, Entre Ríos y norte de Buenos Aires.Desde mediados del año OMMO se declaró lapresencia de la enfermedad en el noroeste ar-gentino (Tucumán, Salta, Jujuy y Catamarca)(Canteros, OMMN).

Epidemiología

La bacteria sobrevive en las lesiones que pro-duce en hojas, tallos y frutos cítricos aunquepuede vivir unos pocos días en el suelo y al-gunos meses en restos de plantas incorpora-das al suelo. Entra al tejido joven de hojas,frutos y ramas a través de estomas o heridas,requiere agua para su introducción. La bacte-ria se multiplica cuando las lesiones están ex-pandiéndose. La propagación de la cancrosisse produce por medio de bacterias dispersas apartir de árboles infectados, siguiendo la di-rección de los vientos predominantes con llu-vias (Foto UR).

Las mayores tasas de dispersión se produ-cen en los meses más calurosos, en coinci-dencia con las brotaciones del hospedante.También es importante la propagación a tra-vés de las herramientas, ropas y manos delhombre, principalmente en viveros y al reali-zar labores culturales y cosecha de frutos. Eltraslado de la bacteria a largas distancias sedebe a la acción del hombre, a través del mo-vimiento de yemas, plantines o plantas enfer-mas. No hay antecedentes de transmisión porsemillas. La comercialización de frutas afec-tadas constituye potencialmente un medio dedispersión a larga distancia; sin embargo, noexisten antecedentes sobre el tema al res-pecto y durante años se ha comercializadofrutas desde zonas endémicas a países libresde la enfermedad y no se registraron epide-mias en dichos países (Messina, NVVS).


Comprende la integración de prácticas cultu-rales, control biológico y químico, usados du-rante la producción, cosecha y proceso deindustrialización del producto, que proveanseguridad cuarentenaria frente al potencialreproductivo de una plaga. Los factores queintegran el plan deben ser combinados demanera de poder mantener un nivel de laplaga que no cause pérdidas económicas sinproducir grandes desequilibrios ecológicos.Entre ellos se encuentran:Cortinas rompevientos: son efectivas para la

prevención de infecciones hasta una dis-tancia equivalente a NM veces su altura ydeben estar ubicadas preferentementepara disminuir la velocidad de los vientospredominantes que acompañan las lluvias.La separación entre las cortinas depen-derá de la altura de las mismas, en Misio-nes se utilizan cada SM cm en cortinastúneles (Foto US). Las cortinas deben dis-minuir la velocidad del viento sin cortartotalmente la circulación del aire (Cante-ros, OMMM).

Aspersiones con productos cúpricos: son efectivaspara el control de la cancrosis de los cítri-cos. Se determinó que las brotacionesnuevas que se produzcan en cualquierépoca del año, deben protegerse con pul-verizaciones cúpricas realizadas en el mo-mento de mayor susceptibilidad de losbrotes. Este período corresponde aproxi-madamente a los NQJON días del comienzode la brotación; la mayoría de los brotesdeben estar con las O primeras hojas conel TRB del tamaño final y las demás hojasexpandiéndose. Los productos utilizadoscon base de cobre son: oxicloruro decobre micronizado, sulfato de cobre tribá-sico micronizado, hidróxido cúprico mi-cronizado y oxido cuproso micronizado.La dosis aconsejada es de NIR a P kg decobre metálico por cada NMMM litros de lasuspensión a pulverizar. En el caso de de-tectarse bacterias resistentes al cobre seprocede al agregado de mancozeb al O pormil a las pulverizaciones cúpricas y así selogra restablecer el control de la bacteria.


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Dentro de un manejo integrado no esconveniente realizar un calendario de pul-verizaciones por lo que las aplicacionesdeben realizarse sólo en los momentos enque hay que proteger al brote o al fruto(Canteros, OMMM).

Control del minador de las hojas de los cítricosPhyllocnistis citrella Stainton NURS (Lepidop-tera: Gracillariidae): éste es un insecto querealiza la postura de sus huevos preferen-temente en el envés de los brotes nuevos.Cuando estos eclosionan, las larvas pene-tran directamente al interior de las hojaspara alimentarse del parénquima espon-joso de las hojas, construyen galerías bajola epidermis y producen el enrollamientode las hojas reduciendo la capacidad foto-sintética de las mismas (Páez Morón yAgostini, NVVU). Es importante el controlde esta plaga principalmente cuando secultivan variedades susceptibles a la can-crosis, ya que el minador aumenta la pre-disposición de la planta a la enfermedad aldañar los tejidos de la misma (Foto UT). Elmanejo integrado con el control biológicoy el control químico es la mejor estrategia.El control biológico a largo plazo es la so-lución más económica y de mayor protec-ción para el medio ambiente, aunque nose puede prescindir del uso de productosquímicos en el manejo de viveros, plantasde menos de R años y quintas para expor-tación (Cáceres, NVVV).

Poda selectiva localizada: se realiza para elimi-nar inóculo. Se extraen frutos, hojas y ra-mitas afectadas. Los restos vegetalesdeben ser embolsados y llevados lejos dellote donde serán quemados o enterrados(Canteros, OMMM).

Desinfección del personal y herramientas a utilizaren el lote: se recomienda la desinfección dela ropa y guantes de los cosecheros y detodas las herramientas (tijeras, cajones, es-caleras) y maquinarias usadas en el lote.Los desinfectantes recomendados son:amonio cuaternario (para máquinas ytractores), fenoles, soluciones iodadas deácido fosfórico, hipoclorito de sodio (paraherramientas) o alcohol TMB (para lasmanos). Los desinfectantes se pueden

aplicar con aspersores, mochilas o pulve-rizadoras del tamaño adecuado según elmaterial a desinfectar (Canteros, OMMM).

Monitoreo y técnicas de detección

Para el diagnóstico de la enfermedad se utili-zan métodos serológicos, moleculares, cultivoen medio Agar Lima Bean (~äÄ) y pruebas depatogenicidad en hospedante altamente sus-ceptible (pomelo Duncan).

El programa de certificación de cítricos ala Unión Europea se basa en los requisitos fi-tosanitarios que la misma tiene para la im-portación de cítricos frescos a los países queintegran dicho bloque, los mismos se encuen-tran comunicados por medio de la DirectivaOVLOMMM. El programa es el procedimientoconsensuado con la Directorate General forHealth and Consumer Affairs (ÇÖë~åÅç) parapermitir la introducción de fruta fresca cítricaoriginaria de la Argentina y actualmente estanormado por medio de la Resolución ëÉå~ë~RSLOMMU. Este programa establece la obliga-toriedad de adoptar diferentes medidas fito-sanitarias en las sucesivas etapas del cultivo,como así también reglamenta el procedimientoen las plantas de empaque y en puerto. Aque-llos lotes inscriptos en el programa son mo-nitoreados y supervisados por personalcapacitado y habilitado por ëÉå~ë~.

Durante cada temporada se llevan a caboal menos dos monitoreos de cada uno de loslotes inscriptos para su habilitación. El obje-tivo del monitoreo es realizar un control fito-sanitario y documental. Para procesar frutacon destinos de exportación, el empaquedebe procesar en presencia de inspectores ca-pacitados y habilitados por ëÉå~ë~, quienesrealizan un control fitosanitario y documen-tal de las partidas ingresadas en el marco delprograma. Dichos controles se llevan a cabodesde el momento que la fruta ingresa al em-paque hasta su despacho a puerto.

Éste es el último punto de inspección, enel cual se realiza el control final de la sanidad,calidad y trazabilidad, antes del embarque dela fruta.

Anteriormente, en NVVS, ëÉå~ë~, áåí~ y elComité Regional del åÉ~=EÅçêÉåÉ~F diseñaron




un Sistema de Mitigación de Riesgo propuestopor ëÉå~ë~ a la ìÉ lográndose la certificaciónfitosanitaria de los cítricos exportados. A suvez se contemplaba el programa sanitario dela plaga que integra factores físicos, biológicosy operativos que pueden afectar la incidencia,viabilidad y potencial reproductivo de unaplaga dentro de un sistema de prácticas yprocedimientos que proveen seguridad cua-rentenaria (Zubrzycki, OMMO). Consiste en laaplicación de un sistema de manejo integradopara cancrosis que abarca a lotes de produc-ción en el campo, a galpones de empaque ha-bilitados y a laboratorios de referencia previoa la emisión del certificado sanitario. El obje-tivo es lograr producciones de cítricos libresde síntomas en el campo, testadas en galpo-nes de empaque y posteriormente corroboraren laboratorio la no presencia de bacterias li-bres en estas frutas de exportación. Los trata-mientos en campo se deben realizar en base alas recomendaciones oportunamente realiza-das de pulverizaciones con compuestos cúpri-cos cuando los brotes tienen entre NQ y ONdías de desarrollo, momento de máxima sus-ceptibilidad del mismo (Canteros, OMMM).Dado que se ha detectado la presencia derazas de la bacteria resistentes a este princi-

pio activo, se recomienda combinarlo concarbamatos como mancozeb.

Durante el presente proyecto se procedióa determinar la ausencia de bacterias libres enfrutas asintomáticas de cancrosis, cosechadasdesde lotes con presencia de esta enferme-dad, a fin de constatar si los procedimientosen galpones de empaque son eficientes paraeliminar posibles bacterias libres y con ellocumplimentar los procedimientos para la ex-portación de frutas cítricas desde zonas endé-micas de la enfermedad. Para ello se tomaronfrutas asintomáticas desde lotes de limón condistintos grados de incidencia de cancrosiscomparadas con un control positivo con can-cros evidentes y se procedió a realizarle di-versos tratamientos comunes en galpones deempaque una vez que la fruta ha comenzadosu proceso en el mismo (Tabla SKR). Diez li-mones de cada uno de los mismos tratamien-tos señalados anteriormente fueron lavadoscon RMM ml de agua destilada con una gota deTween OM por PM minutos. Con jeringa seinoculó una alícuota de esta agua en hojas depomelo Duncan, muy susceptibles a cancro-sis, en invernáculos para observar manifesta-ción posterior de síntomas (Tabla SKS).

Trat 1* Trat 2 Trat 3 Trat 4

Nº(+)z % y Nº(+)z % y Nº(+)z % y Nº(+)z %y

Frutas sin síntomas (0%Incidencia) 0/9 0 0/9 0 0/9 0 0/9 0

Frutas sin síntomas (23% Incidencia) 1/9 11,1 3/9 33,3 0/9 0 0/9 0

Frutas sin síntomas (50% Incidencia) 1/9 11,1 4/9 44,4 2/9 22,2 0/9 0

Control positivo 6/9 66,7 3/9 33,3 6/9 66,7 0/9 0

Tabla 6.5. Resultados de los aislamientos de Xanthomonas axonopodis pv. citri en medio agar lima Bean(~äÄ) a partir de frutas asintomáticas de limón Eureka C. limon (L).obtenidos desde lotes con distintas in-cidencias de cancrosis y a distintos momentos del proceso desde la cosecha hasta el embalado en galpónde empaque.

* Trat. 1: Frutas sin tratamiento, directamente de campo; Trat. 2: Frutas tratadas con hipoclorito de sodio (ONQ ppm)y detergente neutro (ëçéé); Trat. 3: Frutas con Drencher (OIQJÇI=OM=ppm; procloraz, NMRM ppm; íÄòI=OMMM ppm; Gua-zatina, NNQM ppm y Fosetil aluminio, POMM ppm); Trat. 4: Frutas tratadas con fungicidas (OIQJÇ=QMM ppm; íÄòI=PMMMppm; Imazalil, ORMM ppm y ortofenilfenato de sodio, NRMMM ppm) y cera (cera NOB ìÉ e Imazalil, NRMM ppm).Z: Número de platos positivos sobre el total de platos. Y: Platos positivos (%)


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Trat 1* Trat 2 Trat 3 Trat 4

Nº(+)z % y Nº(+)z % y Nº(+)z % y N º(+)z %y

Frutas sin síntomas (0%Incidencia) 0/9 0 0/9 0 0/9 0 0/9 0

Frutas sin síntomas (23% Incidencia) 0/9 0 2/9 22,2 0/9 0 0/9 0

Frutas sin síntomas (50% Incidencia) 6/9 66,7 2/9 22,2 0/9 0 0/9 0

Control positivo 9/9 100 9/9 100 9/9 100 8/9 88,9

Tabla 6.6. Resultados promedios de las inoculaciones realizadas sobre hojas de pomelo Duncan C. para-disi con la suspensión de lavado de frutas asintomáticas de limón Eureka C. limon (L) obtenidas desdelotes con distintos grados de incidencia de cancrosis y luego de NS días desde la inoculación

* Trat. 1: Frutas sin tratamiento, directamente de campo; Trat. 2: Frutas tratadas con hipoclorito de sodio (ONQ ppm)y detergente neutro (ëçéé); Trat. 3: Frutas con Drencher (OIQJÇI=OM=ppm; procloraz, NMRM ppm; íÄòI=OMMM ppm; Gua-zatina, NNQM ppm y Fosetil aluminio, POMM ppm); Trat. 4: Frutas tratadas con fungicidas (OIQJÇ=QMM ppm; íÄòI=PMMMppm; Imazalil, ORMM ppm y ortofenilfenato de sodio, NRMMM ppm) y cera (cera NOB ìÉ e Imazalil, NRMM ppm).Z: Número de hojas con síntomas de la enfermedad sobre el total de hojas inoculadas. Y: Porcentaje de hojas con sín-tomas

El tratamiento de frutas con hipocloritode sodio (ONQ ppm) durante dos minutos nofue suficiente para eliminar las bacterias cau-santes de la cancrosis de la superficie de fru-tos asintomáticos. En variedades susceptibleses necesario todo el proceso de post cosechapara lograr la eliminación de bacterias en fru-tas asintomáticas. El desarrollo bacteriano enmedio semiselectivo para X. axonopodis pvcitri y la manifestación de síntomas en hojasde pomelo Duncan inoculadas con la suspen-sión del agua de lavado de frutas asintomáticas,guarda una relación directa con el porcentajede incidencia de la enfermedad en el campo.

Las frutas asintomáticas que permanecie-ron durante NNM horas en cámara de desver-dizado, mezcladas con frutas con síntomas,ambas previamente tratadas con fungicidas ycera, no presentaron desarrollo de coloniasde bacterias en cajas de Petri ni manifestaciónde cancros en las hojas inoculadas, debido a

la eficiencia de los tratamientos desinfectan-tes realizados durante la línea de empaque enfrutas con presencia de cancros.

El tamaño de lesiones producidas en hojasde pomelo Duncan fue significativamentemayor con las inoculaciones del lavado defrutas de variedades más susceptibles a can-crosis. Se sugiere el uso del drencher antesdel lavado en hipoclorito de sodio y en deter-gente neutro debido a que la menor cantidadde bacterias son recuperadas después deldrencher.



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Desarrollo de un tratamiento para el con-trol de cancrosis de los cítricos en posco-secha compatible con la norma orgánica

La Unión Europea, principal cliente de cítri-cos orgánicos interrumpió su importacióndesde nuestro país a partir del OMMP dado querechazó el producto empleado (hipocloritode sodio) hasta el momento en la desinfec-ción de frutos en el empaque. Por lo tanto,fue necesario investigar sobre sustancias al-ternativas para ser utilizadas en la poscosechaque permitiría aprovechar una venta poten-cial de al menos Q millones de dólares. Elozono es una alternativa. Se produce artifi-cialmente a partir de oxígeno mediante la ge-neración de una alta tensión eléctrica ycolateralmente iones negativos. No puede seralmacenado ni transportado. Es muchomenos estable que el oxígeno porque rápida-mente se reconvierte a este último y por ellodebe ser producido en el lugar donde se em-plee. Debido a su alta reactividad solo unospocos materiales (acero inoxidable, vidrio,éîÅ) pueden ser usados para entrar en con-tacto con él.

Esta tecnología es de fácil manejo y de es-casa peligrosidad para los operarios pero sedebe cumplir las condiciones de seguridad es-tablecidas por la Agencia de Protección Am-biental de la Organización Mundial de laSalud. La empresa Ozona ëKêKäK construyó lamayor planta de ozonización de Argentina,capaz de producir SM Kg/h de ozono. A fin decumplir con los requisitos impuesto encuanto a la contaminación de la bacteria cau-sal de cancrosis Xanthomonas axonospodis pv.citri en la fruta cítrica comercial que no tie-nen síntomas de la enfermedad se han llevadoa cabo experiencias que dieron lugar a lostratamientos con hipoclorito de sodio y orto-fenilfenato de sodio en el empaque a travésde los cuales se puede eliminar a dicha bacte-ria. Los principales trabajos al respecto fue-ron realizados en Japón (Obata et al., NVSV) yÉÉìì (Brown & Schubert, NVUT). Estos trata-mientos se aplican para la fruta cítrica con-vencional y las de producción integrada. Parala producción de cítricos orgánicos no es po-

sible su uso debido al impedimento de usarproductos químicos de síntesis.

En el marco de los proyectos de áåí~ y enbase a estudios realizados en otros países, sepropuso estudiar la implementación de uno omás tratamientos con productos alternativoscomo por ejemplo los ácidos: cítrico, acéticoperacético y elementos gaseosos como elozono (Agresti, OMMS; Palou, OMMT; Wu, OMMU).

Dado que no se encontraron trabajos deinvestigación en Argentina que avalen la apli-cación de ozono para la preservación de losalimentos, se experimentó en el laboratoriocon la bacteria en suspensión líquida y luegocon la fruta contaminada durante S mesespara la obtención de datos de aproximaciónde las concentraciones y tiempos de exposi-ción que muestren la eficacia de esta tecnolo-gía en condiciones prácticas de uso.

Trabajos de laboratorio

El primer paso es verificar mediante técnicasapropiadas, que la cepa bacteriana posee suscaracterísticas típicas, virulencia y no estácontaminada por otros microorganismos. Seopera con la bacteria en medio líquido a unaconcentración adecuada para la ejecución delas pruebas in vitro e in vivo de control. Lacomprobación del poder patógeno del bio-tipo aislado se efectuó en hojas de citrus des-pren-didas que se lavan, se desinfectan conalcohol, se dejan secar y se colocan en placade Petri con algodón empapado con agua dered estéril formando una cámara húmeda. Seefectuaron leves heridas con agujas sobre di-chas hojas. Inmediatamente se frotaron ma-nualmente con la suspensión bacteriana.Luego de colocada la tapa se lleva a cámara,OU⁄`ÓPM⁄` hasta NMJNR días para observar laevolución de síntomas. Se prepara el mediode cultivo semiselectivo sólido compuestopor antibióticos para observar la presencia dela bacteria viva o no en las frutas contamina-das, las cuales se habían sometido a los diver-sos tratamientos (Messina, NVUM; Messina,OMMP; Messina, OMNM).


172


Frutas cítricas orgánicas

Se utilizaron las siguientes variedades de fru-tas cítricas: mandarinas (Okitsu, Satsuma,Nova y Ellendale); naranjas (New Hall, Ro-bertson, Común, Salustiana, Valencia); pomeloblanco; limones y Kumquat.

El período para la obtención de frutas cí-tricas maduras para llevar a cabo los ensayosabarca todos los meses que dura el estudio,desde marzo-abril hasta noviembre. Se em-plearon variedades comerciales tempranas,intermedias y tardías las cuales se producenen condiciones ecológicas diferentes deacuerdo a las regiones donde se encuentran ylas formas de manejo del cultivo. Las frutasempleadas no presentaban síntomas de can-crosis.

Evaluación de la capacidad bactericida dediversas sustancias y ozono

Se evaluaron los siguientes productos en tubosde ensayo: bicarbonato de sodio; fosfato tri-sódico; los ácidos láctico; acético, cítrico yperacético. Además el gas ozono disuelto enagua.

Para cada sustancia se emplearon U tuboscon R ml de cada una de las concentracionesNBX=OBX=PB y QB. Se adicionó MIR ml de lasuspensión bacteriana de 106 bacterias/ml,(medida con el espectrofotómetro Spectro-nic) con tiempo de contactos de N minuto; Ominutos; y P minutos. Por último se trans-fiere con ansa de platino a medios de cultivolíquidos. El testigo consistió en emplear R mlde agua de red estéril, sin el agregado de sus-tancia a evaluar.

Cabe aclarar que el equipo para la pro-ducción del ozono y la asistencia técnica eneste estudio ha sido provisto por la empresaçòçå~=ëKêKä. Se utilizó el nuevo generador deozono desarrollado (cuyas principales carac-terísticas son: dieléctricas resistentes a la ro-tura y de alto rendimiento; descarga eléctricade baja tensión y alta eficiencia; fuente de ge-neración de alta frecuencia y onda confor-mada).

Para el ozono los tratamientos fueron deMIP mg/l a MIT mg/l durante N minuto y O mi-nutos para una suspensión bacteriana de 106

bacterias/ml, (medida con el espectrofotóme-tro Spectronic). Se emplearon Q tubos demedio de cultivo líquido para el análisis decada tratamiento. Se utilizó un testigo sintratar. El resultado fue negativo cuando en elmedio de cultivo se presentó la multiplica-ción de la bacteria y se observó una turbidezdel mismo. Un resultado positivo, por el con-trario, es cuando la sustancia actúa sobre labacteria. No se produce su multiplicación yel medio de cultivo continúa límpido. Los re-sultados se observaron hasta los NM o NR días.

Pruebas de evaluación de la capacidadbactericida de sustancias y ozono sobrefrutas infectadas en laboratorio

Las frutas se lavaron e infectaron mediantepulverización con R ml por unidad de unasuspensión de un cultivo de X. axonopodis deRJT días de edad en una concentración de 106

bacterias/ml. Posteriormente las frutas fue-ron inmersas en la solución con concentra-ción conocida para cada sustancia y para elgas ozono. Una vez transcurrido el tiempoestablecido se detectó la presencia de bacte-rias vivas mediante la siembra en cajas dePetri con medio de cultivo sólido semiselec-tivo del hisopado de cada unidad. El testigofue la fruta sometida al mismo tratamientopero se utilizó agua de canilla estéril (Foto UU).



Pruebas en galpón de empaque

Una vez conocidos los resultados obtenidosde los tratamientos en condiciones de labora-torio, las actividades se orientaron a las prue-bas en el empaque. Para ello, las frutasprovenientes del campo se contaminaron conla bacteria en el laboratorio. Se las llevaron alempaque, el cual estuvo preparado en condi-ciones de recibir las frutas orgánicas. Se laspasó a través de la línea de empaque, se lassometió al tratamiento con las sustanciasmencionadas y el gas ozono disuelto en aguay se llevaron al laboratorio donde fueron pro-cesadas al igual que en las pruebas de controlen condiciones de laboratorio. Para el lavadofueron sumergidas en cada una de las sustan-cias ácido láctico; acético; cítrico y peracéticose utilizaron dos concentraciones QB y OBdurante O minutos. Para el ozono gaseoso di-suelto en agua, se utilizó N mg/l durante Rminutos (Foto UV).

Los datos fueron procesados mediante unsoftware que permite realizar análisis de re-gresión probit, pruebas de bondad de ajuste ypruebas de diferencias estadísticas entre tra-tamientos para eliminar las bacterias de la su-perficie de la fruta (Montgomery, NVVN; Draper& Smith, NVVU; Di Rienzo et al., OMNM).

Las sustancias bicarbonato de sodio y fos-fato trisódico resultaron no tener acciónsobre la bacteria causal de cancrosis. Se obtu-vieron cuatro sustancias: ácido acético, ácidocítrico, ácido láctico y ácido peracético concapacidades bactericidas para X. axonopodis pvcitri cuyas eficacias fueron estimadas a travésde los modelos Probit y Logit (Tabla SKT).

Mediante la aplicación de estos productosse ha logrado implementar tecnologías alter-nativas acorde con la normativa orgánica queofrecen seguridad alimentaria y permitenevitar la contaminación de la bacteria causalde cancrosis sobre la fruta cítrica orgánica(Ñ~ç=C=ïÜçI=OMNM).

Tabla 6.7. Resultado del desarrollo de bacterias luego de la exposición a distintos tiempos y concentra-ciones de gas ozono.

Ozono gaseoso en medio acuoso.Dosis Tiempo (minutos) Tubos empleados (100 ml c/u) Cantidad de medio de cultivos sin

desarrollo de colonias de la Bacteria

0,3 mg/litro 1 4 0

0,3 mg/litro 2 4 0

0,5 mg/litro 1 4 0

0,5 mg/litro 2 4 0

0,7 mg/litro 1 4 4

0,7 mg/litro 2 4 4


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Desarrollo de un modelo para el controlde cancrosis

La cancrosis de los citrus, causada por la bac-teria Xanthomonas citri pv. citri, es una enfer-medad cuarentenaria y endémica en la regiónnordeste de Argentina. La cepa más difundidadesde NVTR corresponde al tipo ~ o asiática.Existen variaciones extremas en el comporta-miento respecto al patógeno entre especies ycultivares. El pomelo (Citrus paradisi Macfad-yen) es muy susceptible, mientras que ellimón (C. limon L.) y algunos cultivares denaranja (C. sinensis L.) y mandarina (C. reticu-lata Blanco) pueden ser afectados en ungrado mas moderado. El control químico conbactericidas conteniendo cobre, el uso decortinas rompeviento y la poda de tejido ve-getal afectado, son algunas de las prácticasrecomendadas para el manejo de la enferme-dad (Canteros, NVVU; Canteros OMMS; Cante-ros OMMV).

La bacteria ingresa a través de los estomaso heridas en el tejido joven de hojas, frutos ybrotes. En ausencia de heridas, la principalvía de penetración de X. citri en las hojas es através de los estomas, cuya mayor densidad seencuentran en la cara abaxial. Tejidos foliaresen expansión (hojas jóvenes) son más suscep-tibles que hojas maduras (Gottwald & Gra-ham, NVVO). Bajas temperaturas afectan elproceso de infección. En ambiente contro-lado, se observaron síntomas en naranja en elintervalo térmico NOJQMø` (Dalla Pria et al.,OMMS). La mayor severidad de cancrosis ocu-rrió con OQ h de mojado foliar, siendo Q h lamínima duración suficiente para causar NMMBde incidencia a temperaturas óptimas de ORJPRø`. Luego de la infección la bacteria semultiplica para formar la clásica lesión cor-chosa conocida como cancro, de la cual exu-dan bacterias cuando son mojadas por rocío,lluvia o riego. El inóculo bacteriano es fácil-mente dispersado con el salpicado del aguade lluvia, estando este proceso muy favore-cido por el viento (Bock et al., OMMR). Cuandola lluvia se combina con vientos de velocida-des mayores a los U m.s-1, se pueden producirnumerosas nuevas infecciones, resultando enseveros niveles de enfermedad (Gottwald &

Irey, OMMT). Eventos de viento/lluvia artifi-cialmente producidos, permitieron concluirque a mayor velocidad del viento (hasta NVm.s-1) más bacterias X. citri son dispersadashasta distancias analizadas de R m (Bock et al.,OMNM). La ocurrencia de vientos más fuertesen el lapso inmediato previo a un evento in-fectivo predispone a las plantas a más infección,además de su efecto directo sobre la infeccióncuando coincide con el evento (Bock et al.,OMMS). Lluvias suaves, lluvias con viento, tor-mentas, tormentas tropicales y huracanespueden dispersar a X. citri, con progresivaefectividad (Gottwarld & Irey, OMMT). En laszonas citrícolas del noreste (åÉ~) y noroesteargentino (åç~), solo se registran los prime-ros tres eventos ligados a la precipitación.

A continuación se describen los estudiosde desarrollo de sistemas de pronóstico em-píricos de la intensidad de la cancrosis de loscitrus en media estación, basados en variablesmeteorológicas. Para este objetivo se utiliza-ron observaciones de la enfermedad que sevienen realizando desde el ciclo NVVNLVO envarias especies cítricas implantadas en un loteexperimental de áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vista (lati-tud OUøOSÛë, longitud RUøRRÛï), a tres distan-cias de una cortina rompeviento naturalubicada al sur del lote.

Modelos de regresión lineal (valoresmedios de intensidad de cancrosis)

Las variables meteorológicas más fuertementecorrelacionadas con la enfermedad son: nú-mero de días con precipitaciones [NO mm(Çérec: calculada entre el NMLNM y el OPLNN) ynúmero de días con temperaturas máxima[POø` y/o mínimaYNPø` (Çåíxn: calculadaentre el OQLNN y el NVLNO). Ello se determinóutilizando observaciones de intensidad decancrosis (promedio de las observaciones rea-lizadas a tres distancias de la cortina rompe-viento) de los ciclos NVVNLVO a OMMQLMR(Moschini et al., OMMR).

En estudios posteriores, las variables me-teorológicas se calcularon en períodos limita-dos por valores de grados día (temperaturamedia base=íb=NOIRø`), acumulados desde elNM de julio.


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Se presenta la ecuación de regresión linealmúltiple (Éc.N) desarrollada con NQ observa-ciones de la bacteriosis en media estaciónpara pomelo (especie cítrica más susceptible)

IntBZNIMPTR+SINMVQ Çérec-MIQSOS Çåíxn

ê2=MIURT Éc N

Donde Int% intensidad de la cancrosis enmedia estación; Çérec: total de días con ocu-rrencia de precipitación [NO mm; Çåíxn: altotal de días con registros de temperaturasmáximas [PNIRø` se suman los que registrantemperaturas mínimas YNOø`. Çérec se cal-cula desde que se acumulan PTO grados día(íb=NOIRø`) hasta VSM grados día y la térmicadesde VPM a NNTR grados día. El inicio de laacumulación es el NMLT (Moschini, OMMT;Moschini et al., OMNP).

Las predicciones retrospectivas mediantela Ec.1 permitieron definir el riesgo climáticodel åÉ argentino y analizar la variabilidad cli-mática asociada al fenómeno El Niño Oscila-ción del Sur (Éåçë) y el impacto del cambioclimático en relación a la cancrosis. Algunasconclusiones que se derivaron fueron que elsistema climático está en transición hacia unnuevo equilibrio impulsado por el incrementode los gases antropogénicos de efecto inver-nadero y que la expresión del patosistemaestá fuertemente asociada al fenómeno Éåçë(Moschini, OMMT; Moschini et al., OMNP).

Modelos de regresión logística (valoresmedios de intensidad de cancrosis)

Se analizaron observaciones de intensidad(áçB) de cancrosis de NU años (NVVNLVOJOMMULMV) en pomelo (lote experimental deFig. N) (Moschini et al., OMNM; Moschini et al.,OMNP). Los mejores modelos de regresión lo-gística de respuesta binaria y ordinal (tres ca-tegorías epidémicas) incluyeron como variablemeteorológica a la interacción (producto)entre Çérec (días totales con precipitación[NOmm) y Çéíxn (días con temperatura máximaYZ=OUø` y temperatura mínima[ZNQø`), ob-teniendo precisiones de predicción de VQIQ yUPIPB, respectivamente. Se detalla la ecua-

ción de respuesta binaria (epidemia severa:áç[ZQOB, moderada a nula: áçYQOB):

ln(érëLN-érë)= – SINMVR + MINOSR * ItN

Precisión predicción: VQIQB Éc.O

Resolviendo la expresión Exp(ln(érëLNJérë)/(N+Exp(ln(érëLNJérë)) se obtiene el valor deérë (probabilidad de observar una tasa epidé-mica severa (ë). Ln es el logaritmo natural.érãod-åuloZNJérë, siendo érãod-åulo laprobabilidad de observar una epidemia mo-derada a nula (ãod-åula). ItN= Çérec*Çéíxn.Como en la Ec.N, Çérec se calcula desde quese acumulan PTO grados día (íb=NOIRø`)hasta VSM grados día y la térmica desde VPM aNNTR grados día. El inicio de la acumulaciónes el NMLT.

Ambos modelos logísticos (binario: Ec.O yordinal) fueron corridos en NQ sitios de Es-paña y en Bella Vista (NMLN: inicio de acumu-lación de grados día en España), para la serieNVUMJOMMU. En España, la acumulación degrados día a partir del NM de enero (pleno in-vierno del Hemisferio Norte), desplazó elprocesamiento de las variables hídrica-térmi-cas al fin de primavera-verano. La variablehídrica Çérec resultó ser el factor ambientalmás limitante para la expresión de la bacte-riosis en el sector citrícola español. En laszonas de alta producción cítrica (Comunidadvalenciana, Murcia y Andalucía) el valor me-diana de Çérec fue cero, cuando se analizaronOV años de datos meteorológicos. Esta con-clusión está en concordancia con el régimenmediterráneo de lluvias (concentración inver-nal de las precipitaciones), dominante en elárea citrícola de España.

Respecto al factor térmico, la ventana de-finida por temperaturas mínimas diarias ma-yores o iguales a NQø` y máximas menores oiguales a OUø` (postinoculación o después delperíodo con lluvias), como fuera establecidaen la Isla de Reunión, fue claramente favora-ble para la evolución de la enfermedad (Ver-nière et al., OMMP). En los sitios españolesanalizados, esta variable alcanzó valores apro-piados, con excepción de varias localidades deAndalucía como Sevilla y Córdoba.



Ambos factores (hídrico y térmico) inter-accionando (ftN) hicieron decrecer dominan-temente a cero la probabilidad de que laenfermedad se exprese en niveles moderadosa severos en España, marcando claras diferen-cias con lo que sucede en Bella Vista (RNITBde los años). Solo en Cataluña, donde se con-centra el PB de la producción citrícola espa-ñola (Servicio de Estudios Agrarios yComunitarios, trienio OMMOJOMMQ), existe unapequeña probabilidad de observar un nivelepidémico moderado a severo, si se focalizaen una especie susceptible como el pomelo.

Modelos de regresión logística (intensidadde cancrosis a distancias crecientes de lacortina rompeviento)

Para este estudio también fueron utilizadaslas observaciones de la enfermedad realizadasdesde NVVN en el lote experimental implan-tado con pomelo Red Blush y otras especiescítricas en áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vista, Corrientes.A partir de la instalación de tres anemómetrosde tipo Robinson se obtuvieron valores me-dios diarios de velocidad del viento (km.h-1;OMMUJOMNMX=åZOTT) a tres distancias hacia elnorte de la cortina rompeviento (dc=distanciaa cortina) y se relacionaron (ajuste de ecua-ciones de regresión lineal) con los medidosen la estación meteorológica de áåí~=J=ÉÉ~Bella Vista (PMM m del lote). Para los cicloNVVNLVO y OMNMLNN, mediante dichas ecuacio-nes, se estimó la velocidad diaria del vientopara el sector más alejado (dc=N; se reduce elviento de estación a la mitad) y más cercano ala cortina (dc=M; se reduce a la tercera parte),y se dispusieron de QM observaciones de in-tensidad de la cancrosis (áçB) en media esta-ción en pomelo en ambos sectores (Moschiniet al., OMNP).

Todas las variables regresoras se calcula-ron a partir de la acumulación, desde el NM dejulio, de PTO grados día (íb=NOIRø`) hastaacumular VUR grados día. Coincidentes conestas acumulaciones de grados día, las fechasmedias de inicio y fin de procesamiento delas variables meteorológicas fueron el OQ desetiembre y el OS de noviembre, respectiva-mente. La variable más fuertemente correla-

cionada (rk: coeficiente de Kendall Tau-b)con los niveles de cancrosis (severo: áç[QRB;moderado:YZQR y [NMISB; ligero:YZNMISB), alas dos distancias a la cortina rompeviento,fue Çérecîv (días con registro simultáneo deprecipitación[NOmm y velocidad del viento[OIS km.h-1; rk=MITN), diferenciándose delrk=MISM de Çérec (días con precipitación[NOmm). La utilización de umbrales de precipi-tación menores a NO mm en las variablesÇérec y Çérecîv produjo una marcada dismi-nución de su correlación con el nivel de en-fermedad, fundamentado en el hecho quelluvias diarias de menor milimetraje careceríande suficiente energía para la diseminación debacterias de los cancros (Moschini et al., OMNP).

Coincidentemente, Wischmeier & Smith(NVRU) seleccionaron solo las lluvias mayoresa NOIT mm para estimar sus energías y sus re-laciones con la pérdida de suelo. Ambas va-riables estarían explicando la variabilidad delproceso de dispersión bacteriano y en menormedida al de infección (Moschini et al., OMNP).

Trabajos en ambiente controlado estable-cieron que a partir de duraciones de mojadode solo Q h, se observaron eventos de infecciónbacteriana, demanda que estaría generalmentesatisfecha por la lluvia y rocío, durante el pe-ríodo primaveral en Bella Vista, (Dalla Pria etal., OMMS; Christiano et al., OMMV). Un ingresobacteriano eficiente estaría asociado con laocurrencia simultánea de precipitación yviento, lo cual asegura un nivel de agua enexceso desde el mesófilo, a través del estoma,a la superficie foliar (Pruvost et al., OMMO).Este hecho confirma el sentido biológico dela variable Çérecîv.

Incluyendo todas las variables meteoroló-gicas regresoras analizadas, el procedimientostepwise de la regresión logística seleccionóal modelo N (Tabla SKU) como el más apro-piado. La precisión de predicción de los mo-delos seleccionados se calculó como el B decasos analizados (åZQM) en los cuales huboconcordancia entre la categoría epidémicaobservada y la predicha por el modelo logís-tico con la mayor probabilidad. El modelo Nclasificó correctamente PS de los QM casos ob-servados (precisión de predicción= VMB).Para calcular los valores de Çérecîv se deben


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disponer de registros diarios de velocidad delviento en las dos distancias contrastantes a lacortina rompeviento (escenario de fuerteprotección al viento, dc=M; escenario de mo-derada protección, dc=N) en la plantación ci-tríca experimental. Estos registros fueronestimados en este estudio mediante las ecua-ciones lineales ajustadas para ambas distancias,a partir de información diaria de velocidaddel viento de la estación meteorológica (PMMm del lote). Debido a esta demanda sitio es-pecífica de datos de velocidad del viento, elprocedimiento stepwise de la regresión logís-tica fue también corrido incluyendo todas lasvariables meteorológica (excepto Çérecîv) yuna discreta binaria (dc: codificada como M oN) que tuvo en cuenta ambos escenarios deprotección al viento. El modelo áá (Tabla SKU)que incluyó a las variables Çérec and ÖÇíx, ya la variable discreta dc, resultó la más ade-cuada. El modelo áá clasificó erroneamentecinco de QM observaciones de intensidad decancrosis en media estación, categorizadasordinalmente (precisión de predicción =UTIRB).

Ambos modelos (á y áá) clasificaron co-rrectamente las nueve observaciones con unnivel severo de intensidad de cancrosis enmedia estación (ëW=áç[QRB). Seguidamente,los modelos logísticos á y áá fueron corridospara la serie de QO años (NVTNJOMNO) de datosmeteorológicos diarios de la estación de BellaVista, calculando el número de estaciones decrecimiento con niveles estimados de cancro-sis severo (ë), moderado (ã), y ligero (ä), paraambos escenarios de protección al viento. Lasestimaciones de los modelos á y áá mostraron(Tabla SKV) la baja probabilidad de ocurrenciade epidemias severas (ONIQ y NNIVB de los años,respectivamente) en escenarios con fuerteprotección al viento (dc=M), contrastando conel PRITB y QMIRB a mayor distancia de lacortina rompeviento (dc=N). Analizando OOaños (NVVNJOMNO) de observaciones de inten-sidad de cancrosis (Tabla SKV), los porcentajesde años con niveles epidémicos severos(çá[QRB) fueron VIN y PNIUB para los esce-narios de fuerte y moderada protección alviento, respectivamente.

Tabla 6.8. Modelos logísticos para estimar la probabilidad de ocurrencia de cada categoría epidémica:Ordinal: severa (ë), moderada (ã) o ligera a nula (ä), en base a variables meteorológicas simples y unadiscreta que tiene en cuenta la distancia a cortina rompeviento (dc: codificada como M o N). Se presentapor modelo la precisión de predicción: B de casos (QM) correctamente clasificados.

Modelo Ecuaciones del Modelo Precisión de predicción %

ILogitPrS= – 13,2049 + 1,7122 DPrecVv + 0,3504 DT

90(36/40*100)

Logit PrMac= -5,4635 + 1,7122 DPrecVv + 0,3504 DT

IILogitPrS= –15,4604+1,4393 DPrec + 4,9754 dc – 0,0657 GDTx

87,5(35/40*100)

Logit PrMac= –6,691+1,4393 DPrec + 4,9754 dc – 0,0657 GDTx

Çérec: total de días con precipitación[NO mm, Çérecîv: total días con ocurrencia simultanánea de precipitación[NOmm y velocidad media diaria del viento[OKS km h-1, ÖÇíx: sum de los excedentes diarios de íx diaria respecto a PP⁄`,cuando íx[PPø`, Çí: días con íx<ZOTø` y ín[ZNTø`. dc: distancia a cortina: dcZM (próxima, NVJQT m de cortina);dcZN (más alejada, UVJNNT m). ÉcN=ln(érë/NJérë); ÉcO=ln(érãac/NJérãac). Resolviendo la expresión Éxp(ln(érë/NJérë)/(NHÉxp(ln(érë/NJérë)) se obtiene el valor de érë (probabilidad de observar una tasa epidémica severa (ë). än es el loga-ritmo natural. Resolviendo Éxp(ln(érãac/NJérãac)/(NHÉxp(ln(érãac/NJérãac)) se obtiene érãac (probabilidad acumu-lada de ocurrencia de un nivel de tasa epidémica igual o mayor al moderado (ã)). érãZérãacJérë. räZN-(érëHérã)siendo érä la probabilidad de observar una epidemia ligera a nula (ä).



En Concordia (Entre Ríos), se verificaronreducciones significativas en el progreso delas epidemias de cancrosis en cítricos con lasola utilización de cortinas rompeviento o encombinación con bactericidas cúpricos, com-parado con el testigo sin tratar (Gottwald yTimmer, NVVR).

En Bella Vista (Corrientes), para el mismolote experimental cítrico, se demostró el rolde las cortinas rompeviento respecto a la en-fermedad, al verificar la muy alta correlaciónentre la distancia a la cortina natural y la in-tensidad de cancrosis (Canteros, NVVU).

La reducción de la velocidad del vientopor medio de cortinas rompeviento puededisminuir la dispersión bacteriana y los even-tos infectivos, reduciendo la severidad epidé-mica (Bock et al., OMNM).

Los modelos á y áá (SKU) cuantificaron ycontrastaron el efecto ambiental sobre la in-tensidad de la cancrosis en escenarios defuerte protección al viento (bien próximo acortina; dc=M) y moderada protección (másalejado, dc=N). Con ambos modelos (á y áá),en el período primaveral, podría realizarse el

seguimiento de la dinámica diaria de los valo-res de probabilidad de ocurrencia de los nive-les epidémicos analizados y de las respectivasvariables regresoras principales (Çérecîv oÇérec), con presentación gráfica de las curvasde progreso. De esta forma se podrían emitiralarmas de riesgo ambiental para escenariosde fuerte protección y para sectores de laplantación más desprotegidos de la cortinarompeviento, asistiendo a los productores enla decisión de aplicar el bactericida y proba-blemente induciendo a una reducción en elnúmero de aplicaciones. Otros componentesdel tetraedro epidémico como el comporta-miento respecto a la enfermedad de la espe-cie y variedad plantada, edad de la plantación,última aplicación química, prácticas de podade tejido vegetal afectado, deberán analizarseal momento de la toma de decisión de con-trol químico.

Tabla 6.9. Porcentaje de años con un nivel severo de intensidad de cancrosis en media estación, esti-mado por los modelos logísticos á y áá (Tabla N) para escenarios de fuerte y moderada protección alviento en los ciclos NVTNJOMNO, en comparación con las epidemias severas (áç[QRB) observadas en OOaños (NVVNJOMNO).

Protección al viento

% años con nivel Severo de intensidad de Cancrosis

1971-2012 1991-2012

Modelo I Modelo II Observado

Fuerte dc=0 21,4 11,9 9,1

Moderada dc=1 35,7 40,5 31,8


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Huanglongbing (HLB) ex greening

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IntroducciónNombre de la plaga y sinonimia Hospedantes Síntomas. Daños Manejo de la enfermedadPrograma Nacional de Prevención de

Huanglongbing (HLB) Fiscalización Vigilancia y monitoreo Monitoreo Investigación y desarrollo Capacitación y difusión Capacitación recibida Capacitación brindada DifusiónRelaciones Interinstitucionales

Agostini, J. P.; Preussler, C.; Outi, Y.; Cortese, P. y J. P. Bouvet


Detección del primer foco de HLB en Ar-gentina

Vector de HLB - Chicharrita de los Cítri-cos o Psilido asiático

Origen y distribución Nombre de la plaga Descripción Biología Daños Monitoreo Manejo de la plaga

Criterio de intervención Control biológico

Situación en Argentina Bibliografía

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Moschini, R.; Heit, G.; Conti, H.; Cazenave, G. y P. Cortese

Factores agroclimáticos Sitio patrón Índice de Riesgo Agroclimático (IRA) Bibliografía

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Riesgo agroclimático de las áreas citrícolasde Argentina en relación a la abundanciadel vector de HLB: Diaphorina citri Ku-wayama

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Introducción

HuangLongBing (ÜäÄ) es una enfermedadinfecciosa distribuida por varios países pro-ductores de cítricos de Asia desde siglos pasa-dos. El patógeno asociado con el ÜäÄ es unabacteria exclusivamente localizada en lostubos del floema, de tipo Gram-negativa, de-nominada Candidatus Liberibacter Jagoueixet al. (NVVT) ssp. Esta enfermedad tiene unvector el cual es un psílido Diaphorina citriKuwayama (Hemíptera: Psyllidae) (Foto VM)que transmite desde árboles enfermos a árbo-les sanos, y a otros hospederos alternativoscomo Murraya paniculata L. Jack (Rutaceae)(Foto VN).

En América se la considera como una en-fermedad emergente, ya que síntomas de ÜäÄfueron encontrados por primera vez en plan-tas de naranjo dulce en el estado de SãoPaulo, Brasil, en marzo de OMMQ. Meses mastarde del mismo año se demostró que ÜäÄ es-taba presente en QS municipios de dicho es-tado, con algunas plantaciones severamenteafectadas, lo que sugería que la enfermedadhabía estado presente por varios años, perosin haber sido adecuadamente diagnosticada.El psílido asiático vector de ÜäÄ, ha estadopresente en Brasil desde NVQO (Gravena,OMMS).

En agosto de OMMR, ÜäÄ fue descubiertaen Florida, ÉÉìì, en un árbol de pomelo enuna plantación familiar, siete años después sedetectó el psílido vector en la misma zona ydesde allí se encontró diseminada por la zonaproductora, ocasionando severas pérdidas a laindustria. En OMNN la enfermedad fue diag-nosticada en el estado de Texas, ÉÉìì y lapresencia del psilido vector en la zona pro-ductora de cítricos de California, ÉÉìì. EnCuba, ÜäÄ ha sido observada en plantas enpatios en La Habana, en febrero OMMS cau-sando pérdidas de hasta casi el RMB de la su-perficie implantada con cítricos de ese país.

En el OMMU la enfermedad fue reportadaen República Dominicana, mientras que al si-guiente año otros países de Centro Américahan reportado la presencia de ÜäÄ en susplantaciones cítricas. El reporte de la enfer-medad fue dado sucesivamente por México

en enero, Belize en marzo; Honduras en no-viembre, y finalmente Nicaragua en febrerodel OMNM. En el OMNN Texas, ÉÉìì reportó lapresencia de ÜäÄ y Riverside California, ÉÉììla detección del agente vector en esta área ci-trícola. En Argentina se ha identificado lapresencia del vector D. citri en la región deEntre Ríos en NVVQ, y en los últimos tiemposha avanzado hacia las otras zonas citrícolasdel país, incluso ha sido detectada en Tucu-mán la cual era libre del vector, aunque no enplantaciones cítricas sino en arbolados urbanoy sobre otro hospedero.

Nombre de la plaga y sinonimia

ÜäÄ es también conocida con otros nombres,según la región donde es detectada, talescomo enfermedad del brote amarillo en Chinao como se la denominaba antiguamente enpaíses occidentales, greening. Este nombreaun se sigue utilizando corrientemente en pa-íses productores como ÉÉìì y Brasil.

Hospedantes

Todas las especies comerciales de cítricos ycultivares son sensibles a ÜäÄ y las plantas,una vez afectadas, no se recuperan y se tor-nan comercialmente improductivas. Algunostipos de trifolio y alguno de sus híbridos sonconsiderados como algo más tolerantes. Porlo general limas y limones son los más sus-ceptibles a ÜäÄ. Otras plantas tal como la M.paniculata o Mirto, la cual es utilizada comoornamental o para la preparación de arreglosflorales, también son portadoras de la bacte-ria, y pueden ser fuente de inóculo para ÜäÄ,debido a que también es hospedante del vec-tor de la enfermedad al igual que otras Mirta-ceas aunque de baja frecuencia en el país.

Síntomas. Daños

Las plantas, una vez infectadas, muestran sín-tomas sólo después de un período de latenciade entre S y NO meses. La planta afectada ini-cialmente manifiesta amarillamiento de uno omás brotes que con el tiempo se extiende atoda la planta ocasionando la muerte de la

Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J HuangLongBing


misma en algunos meses hasta años depen-diendo de la edad en que la planta fue infec-tada con el patógeno. Los síntomas en hojasse describen como manchas irregulares y asi-métricas, moteado difuso, hojas asimétricas,engrosamiento y aclaramiento de las nerva-duras con aspecto corchoso después de untiempo, causando defoliación. Los síntomasmuchas veces se confunden con deficienciasnutricionales. En frutos se produce deforma-ción y asimetría, reducción del tamaño,mayor espesor de la cáscara que lo normal,aumento de la acidez, inversión de color, re-verdecimiento de la cáscara, aborto de semi-llas, y caída prematura de frutos (Fotos VOJVU).


En las regiones donde se encuentra la enfer-medad, su manejo se efectúa en forma pre-ventiva y está basado en dos principiosfitopatológicos perfectamente establecidos:control del insecto vector y erradicación delas fuentes de inóculo de C. Liberibacter sobrelas cuales el insecto vector se infecta, tantoplantas cítricas como los hospederos alterna-tivos.

Mientras la región está libre de la enfer-medad es necesario implementar programasde prospección a fin de retrasar en lo posibleel ingreso de la enfermedad. Como se ob-servó en Florida y Cuba, una vez que los psí-lidos vectores se han establecido en la región,la enfermedad no está lejos. Tales regiones,libres de ÜäÄ, pero teniendo el vector, debenestablecer procedimientos para detectar laenfermedad lo antes posible. Los ejemplos deBrasil, Florida y Cuba muestran que la enfer-medad tuvo tiempo de establecerse antes deser diagnosticada, pero para entonces la es-trategia de erradicación era muy tarde. Por lotanto conocer bien los síntomas de ÜäÄ encomparación con los síntomas causados pordeficiencias minerales, así como análisis detejido vegetal por la técnica de reacción encadena de la polimerasa (éÅê) para confirmarsíntomas sospechosos es esencial para unatemprana detección de ÜäÄ.

Programa Nacional de Prevención deHuanglongbing (HLB)

El Programa Nacional de Prevención de ÜäÄen Argentina tiene como objetivo principalprevenir el ingreso de la enfermedad al terri-torio nacional mediante la prospección de laenfermedad. Todas las instituciones del Es-tado Nacional relacionadas a la protecciónvegetal, ëÉå~ë~I=áåí~I=áå~ëÉ, el Ministerio deAgricultura, Ganadería y Pesca, y la partici-pación de la Estación Experimental ObispoColombres de Tucumán, así como las institu-ciones del sector privado relacionadas con laactividad citrícola (~Ñáåç~=y ÅÉÅåÉ~) funcio-nan en forma conjunta y coordinada para ase-gurar el logro del objetivo propuesto. Losrepresentantes de estas Instituciones consti-tuyen la ìÅá (Unidad de Coordinación Inte-rinstitucional) y se reúnen periódicamentepara evaluar el estado de avance del Programay determinar nuevas acciones a desarrollar.Los componentes operativos del programason:

FiscalizaciónComprende fortalecimiento de los controlescuarentenarios, inspecciones en fronteras ypuntos de ingreso y registro de viveros. Setrabaja conjuntamente con los gobiernos pro-vinciales y municipios en campañas de elimi-nación de hospederos alternativos y controlde arbolado urbano.

Este componente esta a cargo del ëÉå~ë~con NP contratos e áå~ëÉ con S contratostanto para los controles en pasos de fronterascomo para la inspección de viveros (lo cualno solo incluye lo citrícola) y también con-troles en rutas para el movimiento de mate-rial vegetativo de propagación y/o paranuevas plantaciones. Actualmente por las re-cientes detecciones de ÜäÄ en Paraguay seestán realizando capacitaciones a fuerzas deseguridad encargadas de resguardar la fron-tera, tales como Gendarmería Nacional yPrefectura para fortalecer los controles enfrontera de todo material vegetativo.



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Vigilancia y monitoreoComprende la detección precoz de posiblesfocos de la enfermedad en todas las regionescitrícolas del país y el seguimiento de ocu-rrencia del insecto vector D. citri en planta-ciones cítricas y/o hospederos alternativos.Paralelamente, se ha creado una red de labo-ratorios de referencia para el diagnóstico deÜäÄ. A partir de la detección de vectores su-puestamente positivos en la región de Metán,Salta, el ëÉå~ë~ declaró la emergencia fitosa-nitaria a principios de diciembre de OMMV, porlo tanto se realizó un fuerte operativo de mo-nitoreo en todas las regiones citrícolas de paísy por consiguiente fue el componente delprograma donde mas acciones se realizaron.En febrero de OMNN incluso, se reportaron al-gunos falsos positivos de esta zona pero queposteriormente fueron considerados nulossegún la sequenciación de los ~Çå desde lasmuestras de vectores obtenidas de esa región.

Con el fin de actualizar y/o formar moni-toreadores específicos para ÜäÄ se realizaroncursos de capacitación en distintas regionescitrícolas del país a cargo de profesionales deáåí~ y de ëÉå~ë~. El principal aporte de áåí~en este componente es, además del personalprofesional capacitado, la instalación de equi-pamientos de última generación tal como realtime éÅê para el diagnóstico a nivel molecularde ÜäÄ en los laboratorios de áåí~=J=ÉÉ~ Con-cordia, Entre Ríos y de áåí~=J=ÉÉÅí Yuto,Jujuy. A través del programa propiamentedicho se ha adquirido el mismo equipamientoal laboratorio de áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vista, Co-rrientes, y también el de ÉÉ~ Montecarlo, Mi-siones pero este último con éÅê convencional.También funcionan como laboratorios de re-ferencia la Estación Experimental Agroindus-trial Obispo Colombres (ÉÉ~çÅ) de Tucumán,el laboratorio de ëÉå~ë~ y del áå~ëÉ, ambosen Buenos Aires.

El Programa también ha aportado el con-trato de S laboratoristas a fin de realizar eltrabajo de recepción de muestras y análisis delas mismas a partir del mes de julio del OMNMy continúan actualmente. Los monitoreos decampo los realizan personal de ëÉå~ë~; en elcaso de observar síntomas sospechosos setoman muestras de estos árboles, geo posicio-

nados para su posterior localización y las mis-mas son enviadas a los laboratorios mas cer-canos para el diagnóstico de ÜäÄ.

MonitoreoDesde el OMNM hasta la actualidad se ha moni-toreado el NMMB de la superficie con citrusdel país y al menos se recorrió NM veces laszonas de riesgo. El monitoreo se realiza me-diante selección de un punto en una cuadrí-cula de NMM hectáreas; de esa manera seinspeccionaron a la fecha ROKMMM puntos entodo el país y con recolección de NPKNSMmuestras tanto de material vegetal (hojas consíntomas sospechosos; como del vector Dia-phorina.

Todas las muestras han resultado negati-vas para la presencia de ÜäÄ tanto en los vec-tores como en el material vegetal analizado,siendo importante de destacar el muestreointenso realizado en la zona aledaña a los fal-sos positivos detectados en diciembre deOMMV en la región citrícola de Salta con resul-tados todos negativos.

áåí~ ha colaborado con la introducciónde controles positivos tanto de insectos posi-tivos desde California, ÉÉìì a través de con-tactos realizados por María Ines Plata de laÉÉ~ Concordia a fines del año OMMV; desdeSan Pablo, Brasil obtenidos desde Fundeci-trus en OMNM; y por la extracción de nervadu-ras desde hojas de plantas sintomáticas deÜäÄ de la región de Altonia, Estado de Pa-raná, Brasil en dos oportunidades OMNM yOMNN. En todos los casos se contó con la au-torización del ëÉå~ë~ para la introducción ylos trámites personales que realizaron cadauno de los técnicos involucrados para la in-troducción a través de las fronteras.

Con los resultados del monitoreo se haimplementado un mapa sobre la distribucióndel vector en plantaciones citrícolas del paíssegún frecuencia de detección del vector.

Estos resultados se mantuvieron así hastajunio de OMNO donde se detectaron plantaspositivas para ÜäÄ en el norte de la provinciade Misiones en el Depto. Gral. Manuel Bel-grano (ver pág. NUV)




Investigación y desarrolloEn este punto es donde se han realizado pocosavances principalmente por la no presenciade la enfermedad en el territorio. La mayoríade los trabajos fueron sobre estudios de diná-mica poblacional del insecto vector donde estápresente y los intentos de control del mismoprincipalmente en zonas urbanas donde supresencia es mas frecuente en árboles demirto. Los avances durante este tiempo estu-vieron relacionados a obtener presupuestopara acondicionar instalaciones y equipa-mientos en áåí~=J=ÉÉ~ Concordia, Entre Ríossobre producción del controlador biológicodel vector de ÜäÄ; monitoreo permanente deplantas cítricas en frontera con Brasil y Para-guay en la provincia de Misiones; y monito-reo y control del vector de ÜäÄ en la regióndel åç~I=ÉÉ~ Yuto, Jujuy y la ÉÉ~çÅ de Tucu-mán donde también se llevaron a cabo prue-bas de productos para el control del vector deÜäÄ.

Capacitación y difusiónEste es el área donde fueron destinada la ma-yoría de los esfuerzos a fin de concientizar atodos los componentes de la cadena citrícolasobre los riesgos de introducción de esta en-fermedad al país y sus posibles consecuenciassobre los la industria citrícola y los NMMKMMMpuestos de trabajo en forma directa que ocupala producción citrícola del país; y tratar degenerar una mayor concientización en todoslos actores involucrados, dando a conocer lasprecauciones a tomar, las reglamentacionesvigentes y la necesidad de comunicar rápida-mente sintomatología sospechosa de la plaga.En el aspecto de capacitación se puede dividiren la recibida y la brindada.

Capacitación recibidaEn cuanto a capacitación recibida, agentes deáåí~ han tenido la posibilidad de capacitarseen los últimos años en diversas Institucionesque se encuentran investigando esta enferme-dad a nivel mundial, con énfasis en Brasil,ÉÉìì y Cuba para conocer sintomatología dele enfermedad en el campo, su epidemiolo-gía; la dinámica y control del insecto vectortanto por agroquímicos como por agentes

biológicos, y básicamente protocolos para eldiagnóstico de la enfermedad tanto de tejidovegetal como desde el vector. Además se hanorganizado tours de visitas a plantaciones cí-tricas con ÜäÄ de la región de Brasil para téc-nicos y productores con el fin de conocer lossíntomas de la enfermedad, a las regionesafectadas de Florida, ÉÉìì y de Cuba.

Capacitación brindadaSe ha procedido a capacitar sobre diversos as-pectos de ÜäÄ a productores; profesionalesasesores de empresas o de productores; técni-cos de empresas; personal rural; personal degalpones de empaque, monitoreadores e ins-pectores de diversas Instituciones; EscuelasAgrotécnicas; fuerzas de seguridad en fron-tera (Prefectura- Gendarmería-Aduana); apersonal de Pro Huerta y personal de los Mi-nisterios de Agricultura y alumnos de nivelterciario. Se estima que en el término del de-sarrollo del Programa y considerando las dis-tintas regiones citrícolas del país al menosunas OPKMMM personas han participado direc-tamente de estos diferentes tipos de capacita-ciones que fueron básicamente organizadaspor técnicos de áåí~ de cada regional con lacolaboración y sincronización con técnicosregionales de las otras Instituciones partici-pantes del Programa tales como ëÉå~ë~ eáå~ëÉ en el åÉ~ y con la presencia en el åç~de otras Instituciones como ~Ñáåç~ y la ÉÉ~çÅde Tucumán.

A modo de ejemplo áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vistadesde hace dos años trabaja con escuelas ru-rales y urbanas en el marco de la Semana Na-cional de la Ciencia, organizada por elMinisterio de Ciencia, Tecnología e Innova-ción Productiva de la Nación. Como partedel cronograma nacional mencionado se tra-baja desde el OMNM bajo la denominación“Puertas Abiertas”.

La problemática del ÜäÄ ha sido eje cen-tral de los años OMMV a OMNN, compartiendoallí todo el material comunicacional disponi-ble desde el Programa Nacional de Preven-ción de ÜäÄ. Esta modalidad se repite entodas las regiones citrícolas del país organi-zada por alguna de las Instituciones partici-pantes del Programa Nacional.


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Referentes institucionales de las diversasÉÉ~s involucradas en la generación de tecno-logía en cítricos han desarrollado un papelpreponderante en la organización y logísticapara implementar un programa de capacita-ción para viveristas y/o futuros viverista bajoel Programa de Prevención Nacional relacio-nado a la producción de plantas cítricas bajocubierta que lo proteja de insectos vectoressegún las normativas vigentes.

El plan de capacitaciones abarcó puntosestratégicos del åç~ y åÉ~, cubriendo asítodas las regiones citrícolas del país con el si-guiente Programa: Que es el ÜäÄ; Legislaciónvinculada al ÜäÄ; Técnicas de Producción deplantas cítricas bajo cubierta; Inversiones ycostos; finalizando los cursos con la visita aviveros cítricos de la respectiva región invo-lucrada realizándose cursos en la Asociaciónde Citricultores de Misiones, Alem, Misio-nes; Asociación de Citricultores y Empacado-res, Chajarí, Entre Ríos; ÉÉ~çÅ, Las Talitas,Tucumán; áåí~=Ó=ÉÉ~ Bella Vista, Corrientes;Municipalidad de Mocoretá, Corrientes;áåí~=Ó=ÉÉ~ Monte Caseros, Corrientes; Com-plejo Industrial Ledesma, Libertador SanMartín, Jujuy.

DifusiónSe ha establecido un logo en forma consen-suada por todos los miembros de la Unidadde Coordinación Interinstitucional (ìÅá) quecaracteriza al Programa Nacional y se utilizaen todo el material que se produce tanto enforma escrita como audiovisual. En la tareade difusión participan comunicadores de lasdistintas ÉÉ~s relacionadas al sector citrícolaen forma coordinada con los comunicadoresdel ëÉå~ë~ y del Ministerio de Agricultura.

Para el proceso de difusión se utiliza tantoa la prensa escrita como audiovisual haciendouso de los circuitos de cable de alcance localpara cada una de las regiones involucradas.Se han confeccionando cortos de radios ypara íî para distribuir en cada lugar del paísdonde los cítricos son producidos e inclusoestán en las paginas digitales de las Institu-ciones participantes. Para ello el programa haproducido un video y micros de radios quefueron entregados en sus originales para ser

multiplicados por cada regional y repartir alas radios y canales de cables para su difusión.

El Programa Nacional ha confeccionadoUMM libretas técnicas para los monitoreadoresde campo que ya fueron distribuidas al mo-mento de realizar el curso de capacitación; lasremanentes se entregaron a asesores profe-sionales. Se ha confeccionado un stand portá-til y dos banner que se maneja en formaitinerante por todo evento, feria y/o exposi-ción que se realiza en cada una de las regio-nes citrícolas del país en base a uncronograma previamente fijado por los inte-grantes de la ìÅá siendo el punto de partida elCongreso Argentino de Citricultura.

Se repartieron OKRMM afiches con Q mensa-jes diferentes según el lugar donde se exhibenlos mismos (ruta, mirto, frontera, y general) yse compraron NRM acrílicos para proteger al-gunos de estos afiches que se exponen en ex-teriores y distribuidos en lugares estratégicosde cada región citrícola.

Se han distribuido OKMMM folletos técnicosgenerales y NKNRM trípticos para alertar sobreel peligro de la enfermedad y colaborar en elreconocimiento de síntomas rápidamentepara facilitar el reconocimiento de la presen-cia de la enfermedad que se están distribu-yendo en diferentes eventos pero en formamas específica dentro del sector citrícola y enla zona de frontera con países vecinos de Bra-sil, Paraguay, Bolivia, y Uruguay.

La producción de folletería sigue vigentey en cada evento relacionado a la citriculturase hace entrega de los mismos.

Fue asignado el dominio para la páginaweb www.prevencionhlb.gov.ar la cual está enfuncionamiento donde se brinda toda infor-mación pertinente a la enfermedad, sintoma-tología, prevención, reglamentaciones ynormativas vigentes; y dos direcciones de co-rreos electrónicos exclusivos para denuncia einformaciones; y un número de teléfonoMUMMJVVVJOPUS para llamado libre por la de-nuncia e información sobre la enfermedad.



Relaciones interinstitucionalesHay una buena interacción entre las Institu-ciones participantes del Programa Nacionalde Prevención de ÜäÄ que conforman la ìÅá,pero es de destacar el esfuerzo que se estárealizando para integrar a Instituciones deBolivia y Paraguay a realizar tareas de Pros-pección de la enfermedad, máxime conside-rando de que han sido detectados focospositivos de ÜäÄ en diversas regiones de Pa-raguay. En el caso de Bolivia se ha realizadobuenos avances y se han formalizado reunio-nes con autoridades sanitarias del Departa-mento de Tarija a fin de informar sobre elalcance del plan que se esta ejecutando conbuena aceptación por parte de ellos aunqueaún falta nacionalizar la información. ConParaguay hay menor intercambio pero se haofrecido todo lo que se encuentra al alcancepara el rápido diagnóstico de la enfermedad yel asesoramiento que ellos soliciten principal-mente con técnicos del sector privado. DesdeBrasil existe buena predisposición a colaboraren lo que este a su alcance por el momentorecibiendo interesados en conocer síntomasde la enfermedad y formas de controlar elvector; como así también en proveer muestrasde nervaduras de hojas con síntomas de ÜäÄpositivas para ser utilizadas como testigos po-sitivos en nuestros laboratorios de referenciay en procesos de capacitación permanentesobre el manejo de la enfermedad, y produc-ción de plantas bajo cubierta.

Detección del primer foco de HLB en Argentina

A partir de junio de OMNO en un monitoreoque se realizó en el Depto. General ManuelBelgrano, en el norte de Misiones se detectóen condiciones de laboratorio una muestrapositiva sobre Q enviadas. Esta región se en-cuentra en el norte de la provincia de Misio-nes en el límite con el Estado de Paraná,Brasil y distante a unos ORM km del foco deÜäÄ en dicho Estado. Esta detección se rea-lizó en una planta de mandarina en un tras-patio de una chacra sobre la ruta NMN que uneBernardo de Irigoyen (Extremo Este delPaís) con Puerto Iguazú ambas ciudades limí-

trofes con Brasil aunque con diversos Estados(Foto VV) (Fig. SKT). A NR km a la redonda noexisten plantaciones comerciales de impor-tancia.

A partir de ese momento se comenzaron arealizar monitoreos mensuales desde el focoen diámetros equidistantes y cubriendo atodos los cítricos presentes en el área inclusoaquellos en casas de la población de Coman-dante Andresito cabecera de ese departa-mento. Estos monitoreos se realizaron conpersonal capacitado de ëÉå~ë~, pero tambiénde otras Instituciones oficiales como áåí~ yMinisterio de la Producción de Corrientes, ydel sector privado: Técnicos de CooperativaTabacalera de Misiones, Cámara de Exporta-dores de Cítricos del åÉ~ y ~Ñáåç~ en variosde los monitoreos realizados (Tabla SKNM).Posteriores monitoreos se realizaron en juliode OMNO rastreando todas las plantas cítricas yde mirto a NIR km de distancia desde el foco;en esta oportunidad se detectaron otros dospositivos sobre NO muestras que se extrajeronde la zona. Posteriormente se detectaron Smuestras positivas en agosto, P en septiembrey R en octubre.

En los cinco primeros monitoreos las espe-cies que resultaron positivas correspondierona plantas de edad avanzada de una variedadde mandarina de uso no muy corriente en laregión, lo que sugiere una hipótesis de que laenfermedad fue introducida con este materialy está presente en el área desde hace tiempo.Paralelamente, el número de muestras de

Figura 6.7. Gel de agarosa obtenido por éÅê con-vencional mostrando el resultado de la primeramuestra de hojas de mandarina positiva con suscorrespondientes repeticiones (Banda O y P) encomparación con el testigo positivo de ÜäÄ deBrasil (Banda S).


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D. citri es bajo y los análisis realizados siem-pre resultaron negativos para ÜäÄ. La bajapresencia del vector es una característica dela provincia y frecuente de encontrar básica-mente en mirtos (M. paniculata) en zonas ur-banas y por lo tanto indicando la bajadiseminación en la zona. En los últimos mo-nitoreos se han manifestado positivos enotras especies como lima Rangpur (C. limo-nia), de amplia difusión en la región por suuso culinario. No obstante es de hacer notarque lima Rangpur no es un portainjerto clá-sico para mandarina en Misiones y tambiénpuede significar que estas plantas fueron in-troducidas desde otras regiones productoras.Otra de las situaciones que alienta la hipóte-sis de introducción del problema es que lasplantas positivas han sido detectadas a lolargo de la ruta indicada anteriormente y enaquella con conexión con el puente interna-cional que une con Capanema, Paraná, Bra-sil. Todas estas plantas fueron erradicadasvoluntariamente por los propietarios a solici-tud de ëÉå~ë~ cuyos agentes a su vez coloca-ron herbicidas sobre los tocones del árbol afin de evitar los rebrotes del mismo.

A partir de estas detecciones se ha decla-rado a esta región como zona de contingen-

cia fitosanitaria y por lo tanto está vedada lasalida de fruta de este Departamento sin elcorrespondiente tratamiento de sumergidode la fruta en baño con insecticida que elimineal vector que probablemente pueda portar lamisma. Para el resto de la provincia de Mi-siones también esta prohibido la salida defruta sin el adecuado tratamiento con insecti-cida ante presencia de inspectores de ëÉå~ë~o el correspondiente procesado en galponesde empaque. A tal fin, en la zona de GeneralBelgrano se ha montado un empaque decampaña que permite realizar esta operacióny de esa manera facilitar la comercializaciónde frutas a los pequeños propietarios de estaárea.

Monitoreos Distancia (Km) Positivos/Total Positivos (%) Muestras Vector Variedad Edad Árbol

1ro (Junio/12) Focus ¼ 25 0 Mandarina + 10

2do (Julio/12) 1,5 km 2/12 18,8 1 Mandarina + 10

3ro (Agosto/12) 6 Km 6/80 9,4 2 Mandarina + 10

4to (Sept./12) 10 km 3/40 8,8 0 Mandarina + limaRang. + 10

5to (Oct./12) Gral. 5/80 7,9 0 Mandarina + limaRang. + 10

6to (Dic./12) Gral. 0/22 0 0

Total 15/238 6,30 0/3

Tabla 6.10. Frecuencia de monitoreos y distancia a partir del foco detectado en junio de OMNO de lasplantas cítricas del Depto. Gral. Manuel Belgrano, Misiones que resultaron positivos sobre el númerototal de muestras según variedades analizadas y edad de las mismas.



Vector de HLB: chicharrita de los cítricoso psilido asiático

Los psílidos o chicharritas constituyen un pe-queño grupo de hemípteros esternorrincos,de hábito fitófago y con un alto grado de es-pecificidad de hospedantes. En comparacióncon los pulgones, los psílidos son de relativa-mente escasa importancia económica. Sinembargo, hay algunas especies que son consi-deradas como plagas primarias, existiendocasos registrados en cultivos de cítricos, deperas y de manzanas, donde generalmente suciclo de vida está sincronizado con el de suhospedante (Burckhardt, NVVQ). Su importan-cia es que son vectores de una temible enfer-medad en los cítricos como el ÜäÄ.

Origen y distribución

Diaphorina citri fue descripta para los cítricosen Schinchiku, Taiwán en NVMT. El origengeográfico natural es el sur de Asia, probable-mente India. A nivel mundial está distribuidaen el continente asiático en los países de Ara-bia Saudita, Yemen, Pakistán, India, Nepal,Bután, Bangladesh, Myanmar, Cambodia,Laos, Tailandia, Vietnam, Filipinas, Indone-sia, Malasia, Papúa Nueva Guinea, China yJapón. Además, en el continente americanoen ÉÉKìì, México, Cuba, Puerto Rico, regióndel Caribe, Guatemala, Honduras, Belice, ElSalvador, Costa Rica, Venezuela, Colombia,Brasil, Paraguay, Uruguay, Bolivia y Argen-tina.

En Argentina se registró por primera vezen la década del UM y actualmente está presenteen las provincias de Misiones, Corrientes,Entre Ríos, Santa Fe, Salta y Jujuy (Halbertand Manjunath, OMMQ; Vaccaro, NVVQ; áåí~=JÉÉ~=Bella Vista, OMMU).

Nombre de la plaga

Orden Hemiptera, Familia Psyllidae; especieDiaphorina citri Kuwayama, NVMU.

Descripción

El ciclo vital de D. citri está constituido porel estado de huevo, cinco estadios ninfales yel estado adulto (Aubert, NVUT; Liu & Tsai,OMMM; Hall et al., OMMU). La hembra adulta dela chicharrita de los cítricos es de aproxima-damente unos PJQ mm de largo, siendo losmachos por lo general un poco más pequeños,de OJP mm de largo. El cuerpo es de colorcastaño claro con manchas de color castañooscuro, las alas son transparentes y sólo lasanteriores tienen manchas marrones en la pe-riferia (Tsai & Liu, OMMM).

Los huevos son alargados con el áreabasal ancha y aguzada hacia la parte distal. Eltamaño medio de los mismos es de MIPN mmde longitud y cuando están recién deposita-dos tienen color amarillo claro, que se tornanaranja brillante cuando están próximos aeclosionar. Las ninfas son aplanadas dorso-ventralmente y con patas cortas. Presentanuna coloración que usualmente va del amari-llo al naranja, aunque en algunos individuosel abdomen es de un color verde azulado. Entodos los estadíos los ojos son de color rojo(Burckhardt, NVVQ; Tsai & Liu, OMMM; Yama-moto et al., OMMN; Halbert & Manjunath,OMMQ; Childers & Rogers, OMMR; Hall, OMMU).

Biología

D. citri es una especie polivoltina, llegando atener alrededor de NM generaciones por añoen condiciones de campo. El ciclo de vidadura entre NR y RV días dependiendo de lascondiciones ambientales (Mead, NVTT; Au-bert, NVUT; Chen, NVVU) (Fotos NMMJNMO).

En el campo, los adultos son frecuente-mente encontrados descansando en la porciónterminal de las ramas, especialmente debajode las hojas. Cuando se alimentan introducenlas piezas bucales en el tejido vegetal y elevanel abdomen formando un ángulo de QRø,siendo ésta una característica típica de la es-pecie. Son insectos activos, saltan y vuelancortas distancias cuando son molestados. Enlugares con clima templado no presentan


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diapausa y pasan como adultos el inviernoalimentándose de las hojas maduras de lasplantas hospederas cuando no hay disponiblenuevas hojas (Vaccaro, NVVQ; Halbert &Manjunath, OMMQ; Michaud, OMMQ).

La longevidad promedio de los adultos esde SM días, siendo las hembras más longevasque los machos y el ciclo de desarrollo puedeiniciarse en cualquier momento del año,basta con que las hembras dispongan de plan-tas hospederas en estado de brotación. Lashembras grávidas ponen huevos en tejidosterminales de O cm de largo, incluyendo lospliegues de las hojas, pecíolos, yemas auxilia-res, arriba y debajo de la superficie de lashojas jóvenes y tallos tiernos de las plantashospederas, así quedan protegidos de las in-clemencias ambientales. En ausencia de sitiosadecuados, la oviposición se detiene. Duranteel período de oviposición, que dura entre PMy UM días, una hembra ovipone repetidamentellegando a un total acumulado de entre OMM yUMM huevos, aunque el máximo absoluto re-gistrado es de NKPTU huevos (Tsai & Liu,OMMM; Nava et al., OMMT; Sétamou et al., OMMU).

El período de incubación de los huevos aOR⁄` es de OJQ días. Luego de la emergencia,las ninfas se mantienen en los brotes y son di-fíciles de ver por su forma aplanada y portender a rodear al brote del que se alimentan.La duración de los estadíos ninfales a OR⁄` esde NPJNQ días. Las ninfas del primero y el delsegundo estadío se mantienen agregadas y sealimentan dentro de los pliegues de las hojas,ramas terminales y entre las yemas y los tallostiernos. Tienen poca movilidad y sólo semueven ante un disturbio o hacinamiento.Las ninfas continuamente excretan una co-piosa cantidad de secreción azucarada juntocon una sustancia cerosa de las glándulas pe-rianales, que en condiciones de baja humedadson más evidentes. Existe, en algunas ocasio-nes, una relación mutualista con ciertas hor-migas, que se alimentan de estos excrecionesazucarados y en contraparte cuidan las colo-nias de ninfas de los enemigos naturales (Tsai& Liu, OMMM; Michaud & Olsen, OMMQ; Chil-ders & Rogers, OMMR; Hall, OMMU).

Los patrones de la emergencia de los ma-chos y hembras son notablemente similares,

sin evidencia de protandria o protoginia. Laproporción de sexos por lo general es NWN, sinembargo, puede registrarse una mayor pro-porción de machos o hembras según la épocadel año. Ambos sexos alcanzan la madurez re-productiva a los OJP días después de la eclo-sión (Vaccaro, NVVQ; Halbert & Manjunath,OMMQ; Mead, OMMT; Wenninger & Hall, OMMT;Hall, OMMU).

Los adultos de D. citri son encontradostodo el año sobre árboles de cítricos o deotras plantas hospederas. Las fluctuacionespoblacionales están íntimamente relacionadascon el ritmo, cantidad y calidad nutricionalde brotaciones porque los huevos son coloca-dos exclusivamente en los brotes. El efecto semanifiesta en forma de picos poblacionalescoincidentes con los períodos de crecimientovegetativo y brotación habitual de los cítri-cos, durante primavera y verano. Los picospoblacionales pueden ocurrir en otros perío-dos del año, dependiendo de las condicionesambientales y de la disponibilidad de brotesjóvenes (Mead, NVTT; Tsai et al., OMMO; Yama-moto, OMMS; Hall, OMMU; Hall et al., OMMU).

Dentro de las condiciones climáticas, latemperatura es el factor más importante en labiología de D. citri, jugando un rol decisivoen las tasas de desarrollo, supervivencia, re-producción y longevidad. Las temperaturasaltas y bajas son perjudiciales en las poblacio-nes: temperaturas menores a NM⁄` y mayoresa PP⁄` no permiten que completen el desa-rrollo (Tsai et al., OMMO; Nakata, OMMS; Navaet al., OMMT; Hall, OMMU).

La dispersión de D. citri dentro de unmonte frutal suele ser bastante baja, no sue-len moverse largas distancia si no es por al-guna perturbación y generalmente ladirección del movimiento es siguiendo la di-rección del viento (Chen, NVVU; Kobori et al.,OMMU).

Daños

Tanto las ninfas como los adultos de D. citrise alimentan de la savia de las plantas hospe-deras, para lo cual utilizan su aparato bucalpicador-suctor (estilete) que penetra en lostejidos vegetales hasta los vasos floemáticos.



Mientras se alimentan, inyectan fitotoxinasque producen considerables distorsiones enlas hojas y brotes, provocando un enrolla-miento y mellado en las mismas (Yamamotoet al., OMMN; Halbert & Manjunath, OMMQ; Mi-chaud, OMMQ; Michaud & Olsen, OMMQ; Hall etal., OMMT). Por otro lado, las ninfas producengrandes cantidades de excreciones azucaradas,que al depositarse en las hojas promueven elcrecimiento de hongos negros (fumagina)que pueden limitar la capacidad fotosintéticade la planta, con la consecuente reducción dela productividad (Mead, NVTT; Yamamoto etal., OMMN; Halbert & Manjunath, OMMQ).

Estos tipos de daño no suelen ser frecuen-tes y por lo general D. citri se presenta local-mente en bajas densidades, siendo consideradacomo una plaga secundaria en los cítricos(Vaccaro, NVVQ; Halbert & Manjunath, OMMQ;Nava et al., OMMT). No obstante, en los paísesdonde se registra la enfermedad de Huang-longbing (ÜäÄ) o “enfermedad del brote ama-rillo” la especie cobra gran importanciadebido a que es el vector más eficiente de labacteria que la provoca, por lo que es consi-derada como la plaga más destructiva y con-secuentemente la más importante de todas lasplagas de los cítricos (Mead, NVTT; Vaccaro,NVVQ; Chen, NVVU; Liu & Tsai, OMMM, Tsai &Liu, OMMM; Yamamoto et al., OMMN; Tsai et al.,OMMO; Ahmed et al., OMMQ; Halbert & Manju-nath, OMMQ; Michaud & Olsen, OMMQ; Gonzá-lez et al., OMMR; Rogers, OMMS; Hall et al.,OMMT; Wenninger & Hall, OMMT; Hall et al.,OMMU; Sétamou et al., OMMU).

Tanto los adultos como los estadíos ninfa-les, cuarto y quinto de D. citri pueden trans-mitir el patógeno después de un período delatencia corto (de N a OR días). Una vez adqui-rida la bacteria, se multiplica en la hemolinfay glándulas salivales del vector (González etal., OMMR). La transmisión es a través de lassecreciones salivales cuando el psílido se ali-menta. Las ninfas son capaces de retener elpatógeno cuando pasan al estado adulto y esposible que lo transmitan apenas emergidos(Halbert & Manjunath, OMMQ).

D. citri tiene un restringido rango de hos-pederos sobre los cuales se alimenta y repro-

duce, que incluyen especies cítricas y otras dela familia Rutaceae (Tsai & Liu, OMMM; Hall,OMMU; Sétamou et al., OMMU). Si bien se cono-cen RU especies de plantas hospederas, dife-rentes autores coinciden que D. citri presentapreferencias positivas hacia el mirto (Murrayapaniculata (L.) Jack), mandarina (Citrus reticu-lata Blanco), naranja agria (C. aurantium L.) ynaranja dulce (C. sinensis (L.) Osbeck). Noobstante, se la puede encontrar comúnmenteen otras especies como: limón (C. limon (L.)Burm.), cidra (C. medica L.), mandarina King(Citrus nobilis Loureiro), mandarina común(Citrus deliciosa Tenore), pomelo (C. paradisiMacfadyen) y lima (C. aurantifolia Swingle)(Aubert, NVUT; Vaccaro, NVVQ; Fabiani et al.,NVVS; Sétamou et al., OMMU).

Monitoreo

Existen varias metodologías para monitorearla chicharrita de los cítricos, aunque no sedispone de trampas específicas para estos in-sectos. Para monitorear los adultos, en épocade brotación de las platas cítricas pueden rea-lizarse observaciones directamente sobre losbrotes, ya que los adultos no sólo van a ali-mentarse de los tejidos jóvenes, sino que lashembras también van a oviponer. Otro mé-todo que es utilizado, en cualquier época delaño, es poner una bandeja de color blanco deltamaño de una hoja oficio bajo una rama ygolpearla con una varilla plástica, de estaforma los ejemplares caerán sobre la bandejay podrán ser contados. Para ambos métodos,se recomienda realizar la observación en unmínimo del RB de los árboles del lote, tomandoárboles al azar y haciendo zig-zag entre las lí-neas (Hall et al., OMMT; Stansly et al., OMNM).

Para el monitoreo de adultos tambiénpueden utilizarse trampas cromotrópicas decolor amarillo, las cuales consisten en unatarjeta plástica con adhesivo en ambas caras(Felippe et al., OMMS; Ferreira Filho, OMMR;Guajará et al., OMMQ, Halbert & Manjunath,OMMQ; Hall et al., OMMT; Hall, OMMV; Yamamotoet al., OMMU). Para un efectivo monitoreo enun lote se recomienda aproximadamente unatrampa cada NMM plantas, ubicándose sobre la


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periferia de la misma a una altura entre NIR yNIT m del suelo (Felippe et al., OMMS).

La frecuencia de lectura de las trampasdebe ser quincenal, al cabo del cual se retirany se sustituyen por nuevas. Las trampas reti-radas se rotulan y embalan con film plásticotransparente para no dañar los insectos cap-turados y facilitar su identificación y registroposteriormente. El monitoreo de los estadíosinmaduros de D. citri, debe realizarse sola-mente en época de brotación, que es el es-tado fenológico de la planta en que esta plagase reproduce. La identificación de cualquierestadío de la chicharrita de los cítricos puederealizarse en todos los casos con una lupa demano (NMx), o llevar los ejemplares captura-dos a un laboratorio y hacerse con lupa bino-cular.

Manejo de la plaga

Criterio de intervenciónPor ser vector de una enfermedad, el nivel dedaño económico de D. citri es N, es decir, antela sola presencia de un ejemplar, debe reali-zarse algún tipo de medida de control. Ac-tualmente, no se disponen de productosquímicos autorizados para controlar estaplaga en nuestro país, debido a que la enfer-medad no se ha registrado aún.

Control biológicoSe considera que los enemigos naturales jue-gan un papel importante en la limitación delas fluctuaciones poblacionales de las plagasen el campo (Tsai et al., OMMO). Existe unagran diversidad de enemigos naturales queafectan a todos los estadíos de desarrollo dela población de D. citri. Los depredadores ge-neralistas se alimentan fundamentalmente delos huevos y los estadios ninfales åN y åO, losparasitoides atacan los estadios ninfales åP,åQ y åR, y los hongos entomopatógenos afec-tan negativamente tanto a ninfas como a losadultos (Halbert & Manjunath, OMMQ; Gonzá-lez et al., OMMR).

Dentro de los depredadores generalistasregistrados en América se reporta un grannúmero de artrópodos que se alimentan deninfas de D. citri desarrollándose exitosamente.

Entre ellos están incluidos varias especies decrisopas (Ceraeochrysa sp. y Chrysoperla rufila-bris, Chrysopodes lineafrons, Leucochrysa gemina),arañas (Hibana velox) y sírfidos (Allograpta spp.,Pseudodorus clavatus, Toxomerus dispar). Tam-bién varias especies de “vaquitas de San An-tonio”, como las especies del género Scymnus,Curinus coerulens, Eriopis connexa, Exochomuschildreni, Hippodamia convergens, Harmoniaaxyridis, Olla v-nigrum, Cycloneda sanguinea yCoelophora inaequalis (Halbert & Manjunath,OMMQ; Michaud, OMMQ; Gravena, OMMS; áåí~=JÉÉ~=Bella Vista, OMMU).

Los hongos entomopatógenos pueden serun factor de mortalidad muy importante deD. citri. La mortalidad de las ninfas puede al-canzar entre SMJTMB en lugares donde la hu-medad relativa diaria excede el UTIVB. Entrelas especies registradas en América se puedenmencionar a Beauveria bassiana, Hirsutella ci-triformis, Cladosporium sp. nr. Oxysporum yCapnodium citri, pero en ninguno de los casosse menciona que se realizó control de D. citrimediante pulverizaciones con estos hongosentomopatógenos (Aubert, NVUT; Halbert &Manjunath, OMMQ; Gravena, OMMS; áåí~, OMMU).

Entre los parasitoides registrados para D.citri, en NVVV fueron importados a Floridados especies, Tamarixia radiata que es un ec-toparásito proveniente de Taiwán y Vietnamy Diaphorencyrtus aligarhensis, endoparásitoproveniente de Taiwán. Ambos parasitoidesfueron liberados en Florida, pero aparente-mente sólo T. radiata se estableció (Mead,NVTT; McFarland & Hoy, OMMN; Halbert &Manjunath, OMMQ).

T. radiata tiene la ventaja de producir dosgeneraciones por cada generación de D. citri,ya que se desarrolla en V días a ORø`, y en UIRdías a PMø`. Vive entre NO y OQ días y prefie-ren oviponer en los estadios ninfales tardíos(åPI=åQ=y åR), pero presenta una preferenciapor el estadío åR de su hospedero. Una hem-bra de T. radiata puede colocar hasta PMMhuevos a una razón de un huevo por ninfa deD. citri, el cual es depositado entre el tórax yel abdomen de la ninfa. La larva se alimentade ella hasta matarla. Además del parasi-tismo, las hembras de T. radiata matan a otrasninfas



perforando sus tejidos para alimentarse de lahemolinfa. Combinando estos comporta-mientos, alimentación y ovoposición, unahembra puede destruir RMM ninfas en toda suvida (McFarland & Hoy, OMMN; Michaud,OMMQ; González et al., OMMR; Gómez Torres etal., OMMS; Qureshi et al., OMMV).

En Brasil se programó la introducción deT. radiata desde Florida pero se observó laocurrencia natural del parasitoide en octubrede OMMQ. También en la Argentina este para-sitoide fue registrado sin haber mediado unaintroducción intencional y programada (Vac-caro & Bouvet, OMMR).

Hasta el presente, el efecto del parasitoidesobre las poblaciones de las chicharritas delos cítricos es muy controversial y variable.En algunos países se registra un bajísimo por-centaje de parasitismo, en cambio algunos in-vestigadores consideran que en presencia deT. radiata, D. citri es incapaz de incrementarsus poblaciones, con porcentajes de parasitis-mos de hasta el UMB (Halbert & Manjunath,OMMQ; Gómez Torres et al., OMMS; Pluke et al.,OMMU).

Si bien la aplicación de técnicas de con-trol biológico no erradica totalmente la plagaque pretende controlar, bajo la situación queactualmente se vive en nuestro país, hay queconsiderar esta técnica como la mejor medidapara bajar los niveles poblacionales de D. citri,de manera que si ingresa a las plantaciones decítricos, no pueda diseminarse por esta vía.

Situación en Argentina

El primer registro de la chicharrita de los cí-tricos en Argentina, se realizó por una inves-tigadora del áåí~=J=ÉÉ~ Concordia, Entre Ríoshace más de dos décadas (Vaccaro, NVVQ). Ac-tualmente, se la encuentra en los departa-mentos de Federación, Concordia y Colón,donde están concentradas las plantaciones decítricos y desde la Sección de Entomologíade la ÉÉ~ Concordia se realizan estudios paraconocer algunos aspectos de la biología y elcomportamiento de esta plaga en la provincia.

En base a los monitoreos que se han reali-zado, D. citri es una plaga que se encuentrafrecuentemente en las plantaciones de cítricos

en la región, preferentemente en las de na-ranja de verano. La dispersión dentro de loslotes es baja, como producto de la protecciónde las cortinas rompeviento. Debido a que lareproducción está asociada a la brotación desu hospedero, sus picos poblacionales ocu-rren en esos períodos, hasta en brotacionesatípicas como la que ocurrió en junio del añoOMMS. Pero, al igual que sucede con otras pla-gas, la reproducción en la brotación de pri-mavera es baja porque las temperaturas noson las óptimas.

Según los datos de temperatura registra-dos en la estación agrometeorológica de laÉÉ~ Concordia y bibliografía consultada, lascondiciones climáticas en la región suelenestar dentro de los rangos óptimos para eldesarrollo de D. citri. Se calculó que la super-vivencia es alta, con valores mínimos de PRBy máximos de TOB. Además, se sugiere quela longevidad superaría los Q meses y que lashembras podrían llegar a oviponer hasta TPMhuevos. Por otro lado, pueden completar suciclo en aproximadamente OP días, depen-diendo de las temperaturas, siendo el mí-nimo de NQ días (generalmente en enero).Según la cantidad de grados-día acumuladosy la disponibilidad de brotes, D. citri podríallegar a cumplir un mínimo de NO generacio-nes anuales.

Respecto a los enemigos naturales, se hanregistrado pocas especies, siendo la avispa pa-rasitoide, T. radiata, la más abundante aunqueen muy baja densidad relativa y de formaagregada. Debido a que la abundancia de D.citri es generalmente baja, no se realiza con-trol químico para este insecto, pero las pulve-rizaciones para otras plagas como minador dela hoja de los cítricos y pulgones afectan sig-nificativamente a sus niveles poblacionales.Relevamientos de la presencia de D. citri enlas diferentes regiones citrícolas del país rea-lizado por ëÉå~ë~, muestran un grado de dis-tribución no uniforme según cada regióncitrícola e inversamente a lo determinado pormodelización agroclimática realizada en laprovincia de Misiones, acá es donde menosdetecciones se han realizado siendo éstasprincipalmente en zonas urbanas y en hospe-dero alternativo como el mirto.


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Riesgo agroclimático de las áreas citríco-las de Argentina en relación a la abundan-cia del vector de HLB: Diaphorina citriKuwayama

Numerosos organismos causan pérdidas eco-nómicas en las plantaciones de cítricos entodo el mundo, pero en los últimos años seha centrado la atención en el psílido asiáticode los cítricos Diaphorina citri Kuwayama(Hemiptera: Psyllidae), que constituye una delas plagas más devastadoras para la citriculturamundial, no sólo por los daños provocadospor su alimentación, sino por ser un eficientevector de la bacteria Candidatus Liberibacter,causante de la enfermedad llamada Huan-glongbing (ÜäÄ), ex «Greening», consideradacomo una de las más destructivas y letales delos cítricos (Alemán et al., OMMT). La enferme-dad, originaria de Asia, fue reportada en elOMMQ en San Pablo, Brasil y posteriormenteen el año OMMR, en Florida, Estados Unidos,siendo considerada plaga cuarentenaria de laArgentina hasta la actualidad.

D. citri ha estado presente en Brasil pormás de SM años y se ha difundido a otros paí-ses de América del Sur y Central, el Caribe ylos estados de Florida y Texas en EstadosUnidos (Gottwald et al., OMMT). En Argentinael insecto fue citado por primera vez en NVUQ(Vaccaro, NVVQ), para el noreste argentino, enla provincia de Entre Ríos. En base a moni-toreos actuales del insecto, en Argentina seobserva presencia de D. citri en la provinciade Corrientes, noreste de Entre Ríos, centroy sur de Misiones, noreste de Santa Fé, estede Chaco y centro de Formosa. En el nor-oeste argentino (åç~) se ha constatado la pre-sencia del vector en el sureste de Jujuy ynoreste de Salta (Augier et al., OMMS; Cácereset al., OMMR; áåí~=J=ÉÉ~ Bella Vista, OMMU). Sinembargo, hasta el momento no se ha detec-tado en Argentina la presencia de Trioza ery-treae, conocido como psílido africano de loscitrus, el otro vector de importancia de ÜäÄ(Sinavimo, OMMV).

Los adultos de D. citri viven entre uno ydos meses en dependencia de la temperaturay la planta hospedante en la que se alimenten(Liu & Tsai, OMMM). La longevidad promedio

para la hembra es de PVIS a QTIR días a unatemperatura de ORø`, pudiendo sobrevivirpor varios meses esperando hasta que llegueel periodo de brotación de las plantas hospe-dantes. El desarrollo desde huevo hastaadulto requiere de NS a NT días a una tempe-ratura de OR⁄`. Los adultos se pueden encon-trar en condiciones naturales durante todo elaño, depositando huevos dondequiera quehaya brotes disponibles, desarrollándosesobre plantas hospederas de la familia Ruta-ceae, con preferencia por los cítricos y laplanta ornamental Murraya paniculada (mirto)(Cáceres et al., OMMR; Alemán et al., OMMT). Elperiodo de oviposición es de NT a SM días(Fernández & Miranda, OMMR).

D. citri no tiene diapausa y sus poblacio-nes declinan en los periodos en que las plan-tas no están en brotación. No obstante ello,tanto las altas como las bajas temperaturasson perjudiciales para el incremento de sudensidad poblacional. En China se determinóque la población de D. citri fluctúa en relacióncon la temperatura y la humedad relativa am-biente, considerando a su vez que la tempera-tura es el factor ambiental más importante allimitar su potencial distribución geográfica(Sohail et al., OMMQ). Anteriormente se habíavisto que las áreas de distribución potencialdel vector se ajustan a los lugares en los quelas bajas temperaturas se encuentran dentrode la tolerancia de los adultos invernantes(Xu, NVUR). Inviernos con bajas temperaturase intensas fluctuaciones de temperatura oca-sionarían una elevada mortalidad de las po-blaciones invernantes (Xie et al., NVUV;Huang et al., NVVO). En tal sentido, se pro-pone que una temperatura mínima mensualpromedio de SIQ⁄`, puede ser utilizada comoel factor limitante a la distribución geográficadel psílido, en lugar de la temperatura mediadiaria superior a NM⁄` (Zhu, NVVP).

Por otro lado se vio que las altas tempera-turas y elevada humedad relativa ambiente,tienen un enorme impacto negativo sobre laspoblaciones de D. citri, en contraste con losefectos negativos que las altas temperaturas yla baja humedad relativa tienen sobre Triozaerytreae en los países de África (Yang, NVUV).En tal sentido, se determinó la existencia de



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una correlación negativa entre la abundanciapoblacional de D. citri y la humedad relativa(Sohail et al., OMMQ). Valores de precipitaciónmensual superior a NRM mm disminuyen drás-ticamente la densidad de ninfas y huevos, de-bido a un efecto de volteo por lavado, dadoque D. citri ovipone en brotes superiores dela planta, quedando las ninfas completamenteexpuestas al impacto de la lluvia (Aubert,OMMV).

Estudios en laboratorio del desarrollo, su-pervivencia, longevidad, reproducción y pa-rámetros de la tabla de vida del insecto entrelos NM y PP⁄`, revelan interesantes resultados.Las poblaciones colocadas a temperaturas deNM⁄` y PP⁄` no se desarrollaron. Entre NR yPM⁄`, el período promedio de desarrollodesde huevo hasta adulto varió de QVIP días aNR⁄` hasta NQIN días a OU⁄`. Los umbrales detemperatura inferior fueron estimados paralos estadios ninfales N⁄ al R⁄ en NNIT⁄`,NMIT⁄`, NMIN⁄`, NMIR⁄` y NMIV⁄`, respectiva-mente (Liu & Tsai, OMMM).

En el sur del estado de Florida, ÉÉìì=, seobservó que las fluctuaciones poblacionalesde D. citri estuvieron estrechamente relacio-nadas con la disponibilidad de brotes enmirto, debido a que la oviposición y desarro-llo de ninfas tiene lugar exclusivamente enbrotes. A su vez se encontró una correlaciónpositiva con la temperatura mínima y lluviasemanales moderadas. La ocurrencia de tem-peraturas mínimas semanales menores aNRø` y la ausencia de lluvias acumuladas sig-nificativas provocaron el descenso de los ni-veles poblacionales de D. citri (Tsai et al.,OMMO). Además otros estudios revelaron queel período de pre-oviposición y la mortalidadde hembras de D. citri decrecieron al incre-mentarse la duración del fotoperíodo (Yang,NVUV).

En Taiwan, se estudió el desarrollo, so-brevivencia, longevidad, fecundidad y densi-dad poblacional de D. citri a NS, OM, OQ, OU yPOø` sobre mirto, mandarina (Citrus reticu-lata Blanco) y kumquat (Fortunella margaritaLour.). El período promedio de desarrollo dehuevo a adulto varió entre RSIS; RVIV y RSITdías a NSø`, NRKR y NRø` respectivamente,mientras que a OUø` el período duró NQIS

días. Las respectivas temperaturas base infe-rior para huevo, ninfas y adulto fueron NNIOR,NOITR y NPø`. La suma térmica acumulada(ÖÇ) para que D. citri complete un ciclo dedesarrollo fue de ORM=ÖÇ, en los tres hospe-dantes considerados. Asimismo, los adultoscriados a NSø` y POø`, sufrieron limitacionesen sus tasas de supervivencia y reproducción.Este estudio concluyó que el rango óptimopara el crecimiento poblacional de D. citri fuede entre los OQ y los OUø`, siendo el mirto laplanta hospedante donde el insecto logró lasmayores tasas de incremento poblacional(Fung y Chen, OMMS).

Más recientemente, en Brasil se estudió elefecto de tres hospedantes vegetales: limaRangpur (C. limonia Osb.), mirto (Murrayapaniculata L. Jack) y mandarina Sunki (C.sunki (Suenkat, Sunkat), y siete temperaturasdiferentes sobre la biología de D. citri. Eneste estudio, los autores determinaron unatemperatura base de desarrollo para los esta-dos de huevo y ninfa de NOø` y NPIVø`, res-pectivamente; mientras que la suma térmicarequerida para completar cada uno de los re-feridos estados fue de ROIS y NRSIV=ÖÇ. Comovalor promedio de temperatura base y sumatérmica para el ciclo biológico completo D.citri, desde el estado huevo hasta la eclosiónde adultos, consideraron los valores deNPIRø` y ONMIV=ÖÇ, respectivamente (Nava etal., OMMT).

Trabajos previos realizados para eucaliptoy pecán, permitieron establecer mediante unametodología similar a la empleada en estetrabajo, áreas de aptitud agroclimática en laRegión Pampeana y del Noreste Argentino,para la implantación de las especies de refe-rencia (Moschini et al., OMMM; Conti et al.,OMMQ; Conti et al., OMMU). Se evaluó el riesgoclimático de las regiones sojeras argentinasrespecto a la roya asiática, considerando loselementos que limitan la sobrevivencia inver-nal del patógeno y los favorables a la produc-ción de eventos infectivos en el cultivo,analizando la frecuencia de ocurrencia deambas fases (Moschini, OMMT). Una metodo-logía similar a la planteada en estos trabajosse intenta desarrollar para el insecto vectordel ÜäÄ. Por lo tanto se trató de delimitar



áreas de riesgo agroclimático para la presen-cia y abundancia de D. citri, para las principa-les zonas citrícolas argentinas, tales comocentro-norte de la Región Pampeana, åÉ~=yåç~. Esto se realizó en base a los valores deíndices de riesgo (áê~) que consideraron la in-fluencia relativa de diversos factores climáti-cos sobre el insecto vector, con respecto alsitio patrón, Campinas (Brasil).

Factores agroclimáticos

Los factores agroclimáticos considerados eneste estudio fueron procesados a partir de in-formación diaria de temperatura máxima(íx), temperatura mínima (ín) y humedad re-lativa (Üê), de QQ estaciones meteorológicasdel Servicio Meteorológico Nacional (ëãå) ydel Instituto Nacional de Tecnología Agrope-cuaria (áåí~), para la serie NVTNJOMMU distri-buidas a lo largo de la zona a considerar.

Para el diseño del modelo se consideraronlos siguientes cinco factores agroclimáticos: I. NGen: Número de generaciones potencia-

les en base a los grados día (ÖÇ) necesariospara el desarrollo de una cohorte, desde elestado de huevo a adulto. La temperaturabase considerada para el cálculo fue deNPIRø` y un valor promedio de suma tér-mica de ONN=ÖÇ (Nava et al., OMMT). Para elcálculo de los grado día se consideró lafórmula ÖÇZÖÇ=H=(íd Ó=NPIRøÅ), siendo ídla temperatura media diaria calculadacomo: íd=íx + ín/O.

II. DT: Número de días con registro deín[NRø` y íxYPOø` (Liu & Tsai, OMMM;Fung & Chen, OMMS).

III. DTHR: Número de días con registro deín[NUø` y íxYPMø` (Nava et al., OMMT) yhumedad relativa en el rango QP a URB(Yang, NVUV).

IV. DSAc: Déficit de saturación acumulado.Se acumulan diariamente los valores dedéficit de saturación mediante la siguientefórmula: Çs=évs.(NMM=Ó=ÜêLNMM), dondeévs es la presión de vapor saturado a latemperatura media (íd) y Üê es la hume-dad relativa media (promedio tridiurno).évsZSINN * Éxp [(NTIOT * íd)/ (OPTIP=H íd).(Aubert, OMMV).

V. PrM: Precipitación mensual. Se calculó elnúmero de años con precipitación men-sual [=N mm y YNRM mm, para los mesesde septiembre (nMV), octubre (nNM), no-viembre (nNN), abril (nMQ) y mayo (nMR),para la serie histórica NVTNJOMMU (nZPT).Seguidamente, se obtuvo el valor mediode las proporciones mensuales: érãZ(nMVLPT=H=nNMLPT=H=nNNLPT=H=nMQLPT=HnMRLPT)/R (Aubert, NVUT).

Los valores de los cinco factores agrocli-máticos se calcularon anualmente en el perí-odo primavero-estivo-otoñal, tomando comofecha de inicio el momento en que se acumu-laron NMM=ÖÇ (íd base citrus: NOIRø`) desde el1 de julio y como fecha de finalización el díaPN de mayo, lapso en el cual se deberían con-centrar las brotaciones de especies cítricas ydel hospedante alternativo (mirto). Para laserie NVTNJOMMU se analizaron en total PT ci-clos de crecimiento.

Sitio patrón

A fin de establecer comparaciones de riesgoagroclimático entre distintas regiones citríco-las argentinas, se eligió un sitio patrón dondelas condiciones de desarrollo para las pobla-ciones de D. citri y el desarrollo epidemioló-gico del ÜäÄ se consideran óptimas. En base aantecedentes bibliográficos y consulta a espe-cialistas, el sitio elegido fue Campinas, estadode San Pablo, Brasil (Lat. OPIRø; Long.QTINPPø=ç; elevación SS msnm) (Fig. SKU).Para la serie histórica NVTPJOMMU se calculó elvalor mediana (ãnaÅ) de de cuatro factoresagroclimáticos (åÖenI=ÇíI=ÇíÜê y Çë~c), apartir de la base de datos climáticos disponi-bles en el sitio web del åç~~ Satellite and In-formation Service (www.ncdc.noaa.gov/oa/climate/climatedata).

Valores mensuales de precipitación deCampinas de la serie histórica NVUUJOMMV, ONciclos primavero-estivo-otoñales, fueron ob-tenidos del sitio web Agritempo de Brasil(www.agritempo.gov.br). Para esta serie deprecitaciones de Campinas, el valor máximode érã (érãÅZMIU) y por lo tanto de mayorriesgo respecto al vector, se obtuvo prome-



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diando las proporciones mensuales de Rmeses: septiembre, octubre, noviembre, abrily mayo. Siendo utilizados por esta razón enla construcción del factor îW=érã.

Índice de Riesgo Agroclimático (IRA)

Para cada una de las estaciones meteorológi-cas y factor agroclimático (åÖenI=ÇíI=ÇíÜêIÇë~c ó=érã), se calculó el valor proporcionalmedio (p) respecto a la mediana del factor enCampinas (påÖen, p Çí; p ÇíÜê; p Çë~c; pérã). Siendo p= ( ∑137 valor por ciclo del fac-tor/ãnaÅ)/PT.

Si el valor de cada uno de los PT ciclosconsiderados para uno de los factores esmayor a la mediana en Campinas (ãnaÅ), seconsideró dicha proporción por ciclo igual aN. Para calcular pÇë~c se trabajó de la si-guiente forma: pÇë~c= (∑NPT ãnaÅ/valor porciclo de Çë~c)/PT. Si el valor por ciclo (PT ci-clos) del factor es menor a la mediana enCampinas (ãnaÅ), entonces la proporciónpor ciclo es igual a N.

El índice de riesgo agroclimático (áê~=N=eáê~=O), cuyos valores oscilan entre M: sinriesgo a 1: máximo riesgo, se calcularon de lasiguiente forma: áê~NZ (påÖen+pÇí+pÇíÜê+pÇë~Å)/Qáê~OZ (påÖen+pÇí+pÇíÜê+pÇë~Å+pérã)/R

La representación espacial de los valoresde áê~ se realizó mediante la confección deuna grilla con un variograma lineal, procedi-miento “Krigeado”, sobre la totalidad de lasregiones, utilizando el programa Surfer U. Elprocesamiento de los factores agroclimáticosy la obtención de los valores de áê~ de cadaestación meteorológica, se realizó medianteel lenguaje del paquete estadístico ë~ë (Statis-tical Analysis System, NVUU).

Los valores mediana (ãnaÅ) de los cuatrofactores agroclimáticos analizados en Campi-nas, Brasil fueron: áF=åÖenZ=NPIT; ááF=ÇíZNTTdías; áááF=ÇíÜêZ=OU días; áîF=Çë~cZ=OQNUISPhéa. Los valores proporcionales medios (p)de cada factor (påÖen, pÇí; p ÇíÜê; pÇë~c ypérã) y los de ambos índices de riesgo agro-climático (áê~N=y áê~O), por estación meteoro-lógica argentina, se presentan en la Tabla SKNN.

En las Figuras SKU a SKNM se muestran lasinterpolaciones generadas por el procedi-miento de krigeado para cada valor propor-cional medio (p) respecto a la mediana delfactor en Campinas (påÖen, pÇí; pÇíÜê;pÇë~c), de QQ estaciones meteorológicas delServicio Meteorológico Nacional (ëãå) y delInstituto Nacional de Tecnología Agropecua-ria (áåí~), para la serie NVTNJOMMU.

Figura 6.8. Valor proporcional medio de los factores åÖen (izquierda) y Çí (derecha) respecto a la me-diana de dichos factores en Campinas (Brasil). åÖen: número de generaciones potenciales (ONN=ÖÇ/gene-ración; íb: NPIRø`X=Çí: días con registro de ín[NRøÅ y íxYPOøÅ.



Figura 6.9. Valor proporcional medio de los factores ÇíÜê (izquierda) y Çë~c (derecha) respecto a lamediana de dichos factores en Campinas (Brasil). ÇíÜê: días con ín[NUøÅ y íxYPMøÅ y humedad relativaen el rango QPJURB; Çë~c: se acumulan diariamente los valores de déficit de saturación: ÇëZ=évs*(NMM=ÓÜêLNMM), donde évsZ=SINN*Éxp[(NTIOT*íd)/ (OPTIPHíd).

Figura 6.10. Valor proporcional medio del factor érã, número de años con precipitación mensual [Nmm y YNRM mm, respecto al valor de mayor riesgo observado (érãZMIU) en Campinas, Brasil. El factorfue calculado para los meses de septiembre (nMV), octubre (nNM), noviembre (nNN), abril (nMQ) y mayo(nMR), para la serie histórica NVTNJOMMU (nZPT). érãZ(nMVLPT=H=nNMLPT=H=nNNLPT=H=nMQLPT=H=nMRLPT)/R.



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Tabla 6.11. Valores proporcionales medios (p) de cada una de las estaciones meteorológica argentinascon respecto a la mediana de cada factor en Campinas (påÖen, pÇí; pÇíÜê; pÇë~c y pérã) y de ambosíndices de riesgo agroclimático (áê~N=Z=(påÖen+ pÇí+pÇíÜê+pÇë~c)/Q; áê~O=Z (påÖen+ pÇí+pÇíÜê+pÇë~c+pérã)/R), por estación meteorológica.

Sitio pNGen pDT pDTHR pDSAc pPrM IRA1 IRA2

Orán 0.9949 0.7337 0.9414 0.9072 1 0.8943 0.9154

B. Vista 0.9198 0.7903 0.9775 0.9569 0.8649 0.9111 0.9019

Tartagal 0.9776 0.7123 0.8964 0.9031 1 0.8724 0.8979

Tucumán 0.8247 0.6793 0.8243 0.9764 1 0.8262 0.8609

Formosa 0.9978 0.6919 0.9009 0.884 0.7905 0.8686 0.853

C.Benítez 0.9612 0.681 0.7883 0.9547 0.8784 0.8463 0.8527

Cerro Azul 0.9328 0.8672 0.982 0.9173 0.5473 0.9248 0.8493

Santa Fé 0.7393 0.6549 0.8559 0.9926 1 0.8107 0.8485

Las Breñas 0.9739 0.5535 0.9009 0.7736 1 0.8005 0.8404

Jujuy 0.7539 0.6432 0.8378 0.9618 1 0.7992 0.8393

M.Caseros 0.8195 0.6775 0.9099 0.9745 0.7973 0.8453 0.8357

Resistencia 0.9495 0.6491 0.7342 0.9499 0.8581 0.8207 0.8282

Corrientes 0.9347 0.6835 0.7477 0.9471 0.8108 0.8283 0.8248

Paso Libres 0.8319 0.6619 0.9144 0.9655 0.75 0.8434 0.8248

Reconquista 0.8327 0.6932 0.6847 0.9856 0.8986 0.799 0.819

Posadas 0.9916 0.7355 0.9234 0.8781 0.5608 0.8822 0.8179

C.Uruguay 0.641 0.5613 0.9099 0.9915 0.9797 0.7759 0.8167

Sgo. Estero 0.9168 0.4764 0.8649 0.8096 1 0.7669 0.8135

Castelar 0.5439 0.5442 0.964 0.9986 1 0.7627 0.8101

Rosario 0.6054 0.5328 0.9009 0.9992 1 0.7596 0.8076

Las Lomitas 1 0.492 0.8288 0.6971 1 0.7545 0.8036

Oliveros 0.6347 0.5662 0.8198 0.9971 1 0.7544 0.8036

Gualeguaychú 0.6391 0.5082 0.8739 0.9903 0.9797 0.7529 0.7982

Ceres 0.7618 0.5343 0.6937 0.9823 1 0.743 0.7944

La Plata 0.4807 0.517 0.964 1 1 0.7404 0.7923

Concordia 0.729 0.5973 0.8739 0.9638 0.7905 0.791 0.7909

Famaillá 0.7587 0.6769 0.473 0.9978 1 0.7266 0.7813

R.Saenz Peña 0.9682 0.515 0.545 0.8549 1 0.7208 0.7767

Mercedes 0.8156 0.5608 0.7477 0.954 0.777 0.7696 0.7711

Río Cuarto 0.5428 0.4674 0.8153 0.9759 1 0.7004 0.7603

Córdoba 0.5984 0.473 0.7387 0.9829 1 0.6983 0.7586

Salta 0.5624 0.5466 0.6261 1 1 0.6838 0.747

V. María 0.6746 0.4422 0.6261 0.9876 1 0.6826 0.7461

M.Juárez 0.6136 0.4721 0.6036 0.9956 1 0.6712 0.737

San Pedro 0.5633 0.5036 0.6036 0.9998 1 0.6676 0.7341

Zavalla 0.5642 0.4718 0.473 1 1 0.6272 0.7018

Manfredi 0.5439 0.3929 0.5541 0.9949 1 0.6214 0.6972

Pergamino 0.5302 0.4049 0.5495 0.9997 1 0.6211 0.6969

Nueve Julio 0.5005 0.3373 0.5991 1 1 0.6092 0.6874

Gral Pico 0.5192 0.3101 0.6171 0.9874 1 0.6085 0.6868

Junín 0.4891 0.3733 0.4685 0.9996 1 0.5826 0.6661

Pehuajó 0.4526 0.3193 0.5495 1 1 0.5804 0.6643

Laboulaye 0.5227 0.3365 0.4369 0.991 1 0.5718 0.6574

Las Flores 0.3906 0.2477 0.3604 1 1 0.4997 0.5997



De acuerdo a la Fig. SKU para el períodoprimavero-estivo-otoñal, el número de gene-raciones potenciales (åÖen) que puede pro-ducir el insecto es muy similar e inclusosuperior a Campinas en todo el norte argen-tino. En las áreas citrícolas del åÉ~, este fac-tor alcanza valores máximos en Misiones yBella Vista decreciendo gradualmente haciaMonte Caseros, Concordia y San Pedro. Lafrecuencia de días con temperaturas entreNRø` y POø` (Çí) presenta valores similares alos registrados en Campinas. En Misiones,disminuyendo gradualmente hacia el åÉ y åçde Corrientes y el sector norte de Salta (Orány Tartagal). En las mismas zonas la frecuenciade días con temperaturas entre NU y PMø y hu-medad relativa entre QP y URB (ÇíÜê) resultamuy similar a la registrada en Campinas (valorproporcional del factor superior a MIUM) (Fig.SKV). La ocurrencia de muy altos registrostérmicos y déficit de saturación pronunciadoen el oeste de Chaco-Formosa y åÉ santia-gueño, genera limitaciones para el desarrollopoblacional del insecto. Esta condición am-biental no favorable se expresa en los bajosvalores de los factores ÇíÜê y Çë~c en dichazona, en comparación con los registros histó-ricos de Campinas.

Como puede observarse en la Fig. SKNO,los menores riesgos para el desarrollo pobla-cional de D. citri se presentan en el extremonoreste del país (åÉ de Entre Ríos, åÉ de Co-

rrientes y Misiones), debido a la mayor ocu-rrencia de lluvias torrenciales, que en estecaso serían expresadas como probabilidad deocurrencia de lluvias mensuales [NRM mm, enlos meses de septiembre, octubre, noviembre,abril y mayo. Por este factor se diferencia deCampinas, donde se presenta un régimen deprecipitación monzónico, con lluvias marca-damente concentradas en diciembre, enero yfebrero, de manera similar a buena parte delas regiones citrícolas del åç~.

En la Fig. SKNN se presenta la distribuciónespacial de los valores del índice agroclimáticoN (áê~N), el cual tiene en cuenta la influenciade Q factores, påÖen, pÇí, pÇíÜê y pÇë~c.Por su similitud con las condiciones climáticasde Campinas que favorecen desarrollo pobla-cional del insecto vector del ÜäÄ, se destacanel sector misionero de Cerro Azul (áê~NWMIVM)y Posadas, Bella Vista (áê~NW=MIUV) en Corrien-tes y Orán (áê~NW=MIUU) en Salta, como zonasde máximo riesgo agroclimático. Siguen enimportancia, aún con valores de áê~N superio-res a MIUM) el extremo este de Formosa yChaco, el ÉJëÉ de Jujuy, el área de salteña deTartagal (Salta) y Tucumán y el extremo ëÉde Corrientes (Monte Caseros: áê~NW=MIUN).Las zonas citrícolas pampeanas gradualmentedisminuyen el riesgo agroclimático en com-paración con Campinas (Brasil). Concordiaobserva un áê~N de MITQ disminuyendo a MISPen San Pedro (Pcia de Buenos Aires).

Figura 6.11. Índice de Riesgo agroclimático N=Eáê~=NF respecto a la presencia y abundancia de poblacio-nes de Diaphorina citri en el centro norte argentino. áê~NZ (påÖen + pÇí + pÇíÜê + pÇë~c)/Q.


206


Cuando se integra el factor agroclimáticoasociado a la ocurrencia de lluvias mensualessuperiores a NRM mm en el índice de riesgo O(áê~O), es remarcable la declinación del riesgoclimático en el sector misionero (Fig. SKNM).La ocurrencia de lluvias intensas en los R mesesanalizados de la primavera y otoño, en sitioscomo Cerro Azul y Posadas, son responsablesde esta declinación. Por el contrario, este fac-tor aumenta el riesgo en el sector salteño deOrán (áê~OW=MIVO) y Tartagal (áê~OW=MKV). Pocasvariaciones del áê~O respecto al áê~N se obser-van en las áreas citrícolas de Bella Vista yConcordia (Tabla SKNN).

En Australia modelizaron conjuntamenteel desarrollo del vector y de la brotación denaranja Valencia, para estudiar el efecto deincrementos térmicos por cambio climático.La ocurrencia de mayores temperaturas du-rante la estación de crecimiento acortó eltiempo del vector para completar un ciclo devida, llevando a observar mayor número degeneraciones. Sin embargo, el incrementotérmico redujo el tiempo necesario para elendurecimiento de los tejidos tiernos. El nú-mero de generaciones observado en Floridavaría entre VJNM, en el Punjab entre V y NS y

en Taiwán entre UJV (Aurambout et al., OMMV).El valor mediana del número de generacionesen Campinas fue de NPIT, estando las princi-pales áreas citrícolas de Argentina en valoressuperiores al TMB del estimado en el sitiobrasileño.

Hay múltiples componentes involucradosen las interacciones responsables del éxito ofracaso del desarrollo de D. citri: abióticos(temperatura, humedad relativa, precipita-ción), hospedante (fenotipo, genotipo, fisio-logía, fotoquímica) e interacciones con elvector (depredadores, parasitoides) (Auram-bout et al., OMMV). Otros factores importantesque ejercen influencia sobre la densidad po-blacional de D. citri y enmascaran el efectoambiental, se relacionan con el manejo de lapoda y edad de las plantaciones. La poda pro-mueve la brotación, afectando la fenología yabundancia del vector, mientras que los árbo-les jóvenes tienden a brotar continuamente alo largo de un más amplio rango de tempera-turas, por ello el efecto térmico sobre el vec-tor cambia de acuerdo a la edad de laplantación (Hall et al., OMMU).

Figura 6.12. Índice de Riesgo agroclimático (áê~O) respecto a la presencia y abundancia de poblacionesde Diaphorina citri en el centro norte argentino. áê~O= (påÖen + pÇí + pÇíÜê + pÇë~c + pérã)/R)



Mediante un método sencillo, que soloconsidera el efecto acumulativo de R factoresambientales, se delimitaron las áreas conmayor riesgo agroclimático respecto a la pre-sencia y abundancia de D. citri en Argentina.Se remarca la bondad de la gradualidad conque se incrementa o decrece el índice deriesgo agroclimático en las regiones analiza-das. La disponibilidad de series históricas ho-mogéneas de información meteorológicadiaria (PT ciclos primavero-estivo-otoñal) yde programas de computación para su proce-samiento, conjuntamente con los utilitariosque permiten la confección de mapas inte-grando técnicas de interpolación (Kriging),han facilitado el desarrollo de este estudio.Entre las limitaciones de la metodología uti-lizada se puede mencionar la falta de inclusiónde efectos interactivos entre los factores agro-climáticos analizados. El nivel de detalle deeste estudio alcanza una escala climática, porello deben analizarse con cautela los resulta-dos del mismo cuando se debe resolver la ap-titud de un lote particular. Ciertos aspectosrelacionados a la microclimatología puedenjugar un rol importante, mejorando o dismi-nuyendo el riesgo de un sitio específico. La

densidad y distribución de las estaciones me-teorológicas no es la óptima, sobre todo enåç~ donde la interpolación matemática noconsidera el efecto altitud.

Si bien las áreas citrícolas de Argentina,exceptuando San Pedro, registran en prome-dio altos valores de índice agroclimático (áê~mayores a MITQ), en comparación con un sitiopatrón del elevado riesgo agroclimático, conabundante presencia del vector (D. citri) y dela enfermedad (ÜäÄ), en este trabajo se ha po-dido discriminar claramente sectores con di-ferente riesgo para la evolución poblacionalde D. citri. Los resultados mostrados en estetrabajo pueden resultar de utilidad como unaherramienta de apoyo estratégico en la orga-nización de los trabajos de monitoreo del in-secto vector del ÜäÄ o en la priorización de laasignación de recursos por parte del ëÉå~ë~ yel áåí~, en las tareas de prevención tendien-tes a evitar el ingreso y posterior estableci-miento del Huanglongbing a la Argentina, aldelimitarse zonas de elevado riesgo epide-miológico asociado a regiones citrícolas depotencial abundancia del vector.


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Patógenos cuarentenariosno presentes en la Argentina

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Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al.(Tizón de fuego o fuego bacteriano)

Rossini, M. y A. Giayetto

IntroducciónImpacto económico Importancia económica Nombre de la plaga y sinonimias Hospedantes Sintomatología Síntomas de otras patologías con los que se puede

confundir el fuego bacteriano Distribución mundial Epidemiología

Diseminación Factores condicionantes Hospedantes Inóculo Condiciones ambientales

Ciclo de la enfermedad Monitoreos y programas cuarentenarios en Ar-

gentinaManual de procedimientos para el monitoreador

de campo Planilla de monitoreo Manejo del fuego bacteriano Análisis de riesgo para la prevención del ingreso

de E. amylovora en el Alto Valle de Río NegroPosibilidades de desarrollo en Argentina Acciones futurasBibliografía

Å~é∞íìäç=T

Frutales de pepita

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Introducción

Erwinia amylovora es el agente causal del fuegobacteriano o tizón de fuego, la cual, tantoproductores frutícolas como investigadores,coinciden en llamar “enfermedad única”, porvarias razones: el alto impacto económicoque producen sus daños, la rápida migraciónen la planta, la facilidad con que se diseminay sobrevive a pesar del limitado rango dehospederos y porque no se dispone de unmanejo eficiente, a pesar de ser una de las en-fermedades más estudiadas (Vanneste, OMMM).El fuego bacteriano fue descripto por primeravez en ÉÉìì, en NTUM y es la primera referen-cia sobre una enfermedad producida por bac-terias en plantas, por lo cual ocupa un lugarmuy importante en la Fitopatología (Palacio-Bielsa & Cambra, OMMV).

Impacto económico

El impacto que produce fuego bacteriano esvariable y depende de los diferentes factoresque determinan el desarrollo de una enfer-medad: la susceptibilidad de la planta hospe-dera, la cantidad de inóculo (bacteria)presente y las condiciones climáticas, princi-palmente humedad y/o lluvia y temperatura.Así, puede variar desde una simple infecciónconsistente en marchitamiento de las floreshasta pérdidas de millones de dólares por loselevados costos de manejo (monitoreos, con-trol químico y otras labores culturales) yerradicación de árboles afectados, como haocurrido en ÉÉìì o en Europa. Cabe mencio-nar que un simple marchitamiento de florespuede transformarse, en años sucesivos, enimportantes daños, porque es muy difícil queel sector productivo comprenda la gravedadpotencial del problema dado que no visualizael daño real, no se toman las medidas necesa-rias para su control y la enfermedad avanzasin límites (Vanneste, OMMM).

El Comité de Sanidad Vegetal del ConoSur (Åçë~îÉ) considera que el impacto econó-mico que podría tener el ingreso y desarrollode fuego bacteriano en Argentina, sería “alto”.Se basa en que es una de las enfermedadesmás graves que pueden afectar al peral, man-

zano y a otras plantas de la familia de las ro-sáceas, produciendo importantes pérdidaseconómicas tanto en explotaciones de frutalesde pepita como en el sector de plantas orna-mentales y además, que Argentina tiene unagran producción de peras (RMM mil tn anuales,RMB para exportación) y es el principal expor-tador mundial con el OMB del mercado (ÅçJë~îÉI=OMNO). En particular en la zona del AltoValle de Río Negro y Neuquén la situaciónes más comprometida, ya que la producciónde pomáceas se concentra en una superficiecontinua, sin interrupciones a lo largo de unvalle de UM km de largo por U km de ancho.

Importancia económica

Es una enfermedad de importancia econó-mica porque afecta especies frutales de inte-rés comercial, manzano, peral, membrillero yornamentales como las pertenecientes a losgéneros Cotoneaster y Crataegus entre otros.Además es fácilmente contagiosa, de rápidaexpansión y no dispone de un método efi-ciente de manejo (Thomson, OMMM).

Es difícil estimar las pérdidas que oca-siona el fuego bacteriano, pero sin dudas queson muy elevadas. Además de las mermas defruta, hay que sumar los gastos del manejo(monitoreos, diagnóstico, tratamientos quí-micos, podas, etc.) que incrementan los cos-tos de producción. Por otra parte afecta alsector viverista dado que puede ocasionardaños en plantas de vivero y además porquese dificulta y/o impide la venta de plantas aregiones donde la enfermedad no está pre-sente (Hale et al., NVVS).

Además, la presencia de fuego bacterianopuede afectar la exportación de frutos prove-nientes de regiones donde la enfermedad estápresente a países donde no se la ha detectado.Si bien se ha demostrado que la transmisiónde la bacteria a través de estos órganos no esexitosa, países libres de la plaga, como Japóny Australia imponen grandes restricciones ala importación de frutos provenientes de paí-ses en los que está presente, como ÉÉìì yNueva Zelanda (Roberts et al., NVVU).

La importancia económica de esta enfer-medad está en crecimiento y esto es lo más

Å~é∞íìäç=T=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J Erwinia amylovora


preocupante para la producción mundial defrutas de pepita. Varios factores colaborancon este hecho: aún hay áreas libres que pue-den ser infectadas por la plaga si no se imple-mentan las medidas adecuadas; no se disponede un producto eficiente para su control; sehan detectado cepas resistentes a estreptomi-cina, antibiótico eficiente hasta hace untiempo (Steiner, OMMM).

Finalmente, ciertas condiciones de cultivo,características de los sistemas modernos deproducción y que la hacen más eficientes encomparación con viejas estructuras producti-vas, favorecen el desarrollo de fuego bacte-riano. Una es que tanto los portainjertoscomo las variedades comerciales de manzanode uso actual, son susceptibles a la bacterio-sis. Otra es la alta densidad empleada en lasnuevas plantaciones que favorece el desarro-llo de epidemias. El monocultivo en tiempo yespacio y el empleo de prácticas de manejouniformes en amplias regiones, necesariaspara mejorar la rentabilidad de la produc-ción, son también factores favorables para eldesarrollo de epidemias (Steiner, OMMM).


El nombre común de la enfermedad varíasegún el país que la describe. A continuaciónfiguran las distintas denominaciones que re-cibe en los países donde fue detectada su pre-sencia: Fireblight (Inglaterra); Feu bactérien(Francia); Feuerbrand (Alemania); Bacterie-vuur (Holanda); Colpo di fuoco (Italia); Ild-sot (Dinamarca); Kerakhon (Israel); Lefhanareya (Egipto); Paerebraun (Noruega); Pala(Checoslovaquia); Fuego bacteriano (Es-paña); Tizón de fuego (México); Ates yani-kligi (Turkia); Vaktiriako kapsimo (Grecia) yZaraga ogniova (Polonia) (ÉééçI=OMMS).

El agente etiológico del fuego bacterianoes Erwinia amylovora (Burrill, NUUO) Winslowet al., NVOM. Sinónimos: Micrococcus amylovorusBurrill; Bacillus amylovorus (Burrill) Trevisan;Bacterium amylovorus (Burrill) Chester; Erwi-nia amylovora (Burrill) Winslow et al. f.sp.rubi Starr et al. (ÉééçI=OMMQ).

Esta bacteria es un bacilo Gram negativo,anaerobio facultativo, móvil por medio de sus

flagelos (O a T) perítricos (Van der Zwet &Keil, NVTV).

Hospedantes

Si bien el fuego bacteriano ha sido descritoen más de OMM especies vegetales de QM géne-ros de la familia Rosaceae, sub-familia Pomoi-deae, en muchas de ellas no se han observadoinfecciones naturales sino que correspondena inoculaciones artificiales. La legislación dela Unión Europea sólo contempla los NO gé-neros considerados hospederos de interés co-mercial y epidemiológico y que son lossiguientes frutales: Cydonia spp., Eriobotryaspp., Malus spp., Mespilus spp. y Pyrus spp.;mientras que en ornamentales y plantas sil-vestres se lo detectó en: Amelanchier spp.,Chaenomeles spp., Crataegus spp., Cotoneasterspp., Photinia davidiana (Stranvaesia), Pyra-cantha spp. y Sorbus spp. (Van der Zwet &Keil, NVTV).

Sintomatología

Los síntomas del fuego bacteriano son simi-lares en todas las especies y pueden obser-varse en todas las partes aéreas de la planta.No siempre se observan todos en una plantaya que su evolución está condicionada por lapresencia de humedad y pueden confundirsecon los producidos por otras enfermedadesmicrobianas o fisiogénicas. A continuación sedescriben los más comunes en los distintosórganos (Van der Zwet & Keil, NVTV).Flores: en sus inicios la infección por E. amy-

lovora produce un aspecto húmedo de lasflores, las que luego toman un color os-curo, negro o marrón. A veces puedenverse afectadas una o varias flores del co-rimbo, pero al final se seca toda la inflo-rescencia, la cual permanece adherida a laplanta. El proceso infeccioso avanza porel pedúnculo floral produciendo su secadoy llegando hasta la rama (Foto NMP).

Brotes: en general son afectados a inicios deprimavera pero también lo pueden ser afin de verano cuando se producen nuevoscrecimientos (Foto NMQ). Los síntomasconsisten en oscurecimiento y pérdida de



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rigidez de brotes tiernos, los que toman laforma típica de “cayado de pastor” (FotoNMR). Por debajo de la corteza suelen ob-servarse estrías rojizas y la zona de avancede la infección muestra un aspecto hú-medo (Fotos NMSJNMT).

Hojas: el síntoma inicial consiste en marchita-miento, pero también suelen presentarsemanchas necróticas foliares. Las hojas afec-tadas permanecen en el árbol (Foto NMU).

Frutos: en su fase inicial la zona afectada tomaun aspecto húmedo y luego se oscureceproduciéndose finalmente la necrosis delos tejidos (Foto NMV). En el interior seobservan zonas de aspecto vítreo ó hú-medo. Los frutos toman aspecto momifi-cado y quedan adheridos en el árbol ocaen (Foto NNM).

Ramas y tronco: hacia fines de la temporadasuelen observarse cancros con estrías decolor pardo rojizo y aspecto húmedo pordebajo de la corteza. El tamaño es varia-ble y depende de la presencia de humedad(Foto NNN). En el cuello y las raíces suelenobservarse estos cancros, sobre todo enmateriales sensibles como el ÉãV, produ-ciendo la rápida muerte de la planta. Lainfección en el portainjerto puede ini-ciarse a través de la variedad comercial, labacteria avanza desde afuera hacia adentroy hacia abajo y llega por vía sistémica alpie. Pero también puede iniciarse por in-fección de los rebrotes del portainjerto yposterior traslado de la bacteria hacia elcuello de la planta (Foto NNO).

Si bien estos síntomas sobre todo en sufase inicial, pueden confundirse con los pro-ducidos por otras enfermedades, existen algu-nas características distintivas inconfundiblesque se enumeran a continuación:- desarrollo rápido de las lesiones, en brote

suelen avanzar NRJPM cm en pocos días;- presencia de exudado bacteriano en cual-

quiera de los órganos afectados (hojas,flores, brotes, frutos, ramas y tronco);

- brotes doblados en forma de “cayado depastor”;

- presencia de cancros húmedos con estríasrojizas por debajo de la corteza.

La duda ante la aparición de síntomas si-milares a los descriptos debe ser disipada me-diante el análisis en laboratorio ya que setrata de una plaga cuarentenaria que producedaños de gran importancia económica.

Síntomas de otras patologías con los quese puede confundir el fuego bacteriano

Los síntomas producidos por E. amylovorapueden confundirse con los producidos porPseudomonas syringae van Hall (NVMQ), agentecausal del tizón de las flores del peral o falsotizón. P. syringae está presente en Argentina(Meyer & Bergna, NVTU; Rossini, OMMN). Pro-duce marchitamiento y necrosis de flores,brotes y yemas durante la primavera y, a dife-rencia del fuego bacteriano, no avanza du-rante el verano y otoño, por lo cual los dañosson mucho menos importantes. No producecancros visibles y sólo afecta tejidos del año oa lo sumo de dos años.

Los cancros que produce E. amylovorapueden confundirse con los que ocasionanciertos hongos como por ejemplo, Nectriaspp., Phomopsis spp. o Phytophthora cactorum.Pero en el caso de los producidos por Nectria,pueden observarse fácilmente las fructifica-ciones del hongo y los producidos por lasotras dos especies fúngicas, Phomopsis yPhytophthora, son superficiales, afectan sola-mente la corteza y presentan un color másamarronado. Los dos primeros, Nectria yPhomopsis, no han sido citados aún en Argen-tina, mientras que P. cactorum es uno de lospatógenos que causa daños de importanciaeconómica en la producción de frutas de pe-pita (Pontis & Feldman, NVSM; Rivero, OMMV).

Los síntomas foliares del fuego bacterianopueden confundirse con el marchitamientode brotes o secado de los bordes de las hojasproducido por falta de agua o exceso de sales.Las aplicaciones de herbicidas que alcanzan aplantas de los frutales sobre todo si son jóve-nes, pueden producir efectos fitotóxicos porderiva en el tronco, así como en los brotes yhojas más próximos al suelo y confundirsecon los síntomas producidos por fuego bacte-riano.




Debido a que se trata de una plaga cua-rentenaria que involucra el comercio interna-cional de fruta y la importación y exportaciónde material vegetal, afectando directamentela economía del país, es indispensable realizarun diagnóstico diferencial y una correctaidentificación del agente causal la que se logramediante el cultivo del microorganismo enmedios semiselectivos y la posterior identifi-cación específica mediante medios bioquími-cos y técnicas moleculares (Palacio-Bielsa &Cambra, OMMV).

Distribución mundial

El fuego bacteriano fue descrito por primeravez en el estado de Nueva York, en ÉÉìì, enNTUM tras su detección en pomáceas, produ-ciendo daños de mayor gravedad en peral.Posteriormente la enfermedad apareció enCanadá y otros Estados del Atlántico y delPacífico (Van der Zwet, NVVS). En NVNV fuedetectada en Nueva Zelanda y en NVRT enEuropa, en el sur de Inglaterra. Desde estemomento, la enfermedad fue identificada su-cesivamente en los siguientes países del cen-tro y norte de Europa: Holanda y Polonia(NVSS), Dinamarca (NVSU), Alemania (NVTN),Bélgica y Francia (NVTO), Luxemburgo (NVUO),Irlanda (NVUS), Noruega y Suecia (NVUS), Re-pública Checa (1987), Suiza (1989), Austria(NVVP) y Moldavia (NVVQ) (Van der Zwet,NVVS).

Posteriormente se extendió por distintospaíses mediterráneos, como Chipre (NVUQ),Israel (NVUR), Turquía (NVUR), Grecia (NVUS),la antigua Yugoslavia (NVVM), Italia (NVVM),Bulgaria y Rumania (NVVO) (Van der Zwet,NVVS) y Hungría y Albania (NVVS) (van derZwet y Bonn, NVVV). Más recientemente, laenfermedad se ha detectado también enUcrania (van der Zwet, OMMO) y Eslovaquia(OMMP). En Portugal nunca se ha detectado elfuego bacteriano, y en el resto de países euro-peos no ha sido declarado, aunque existensospechas de que está presente en algunos deellos (Donat Luis, OMMQ).

Actualmente no hay registros de fuegobacteriano en Sudáfrica, Chile, Brasil, Argen-tina, Australia, China y Japón (ÉééçI=OMMS;

Palacio-Bielsa & Cambra, OMMV). E. amylovoraes considerado un organismo nocivo de cua-rentena en la Unión Europea para la que sedispone de legislación específica sobre medi-das preventivas contra la introducción y difu-sión. En particular España ha trabajadointensamente este tema y obtenido muy bue-nos resultados con el programa nacional deerradicación y control del fuego bacterianode las rosáceas (êÇ=NOMNLNVVV=y NRNOLOMMRXêÇ=RULOMMR) (Palacio-Bielsa & Cambra,OMMV).

Epidemiología

DiseminaciónE. amylovora es una de las bacterias que másfácilmente se disemina tanto a cortas como alargas distancias. Se transmite de una plantaenferma a una planta sana próxima a travésde las aves, los insectos, la lluvia, el viento, lasherramientas y maquinarias. La transmisión alarga distancia se produce a través del trans-porte que hace el hombre de material vegetalcontaminado con o sin síntomas, o a travésde las aves migratorias.

El agua juega un rol preponderante tantoen la transmisión de la bacteria como en susupervivencia y mantenimiento del poder pa-tógeno. Se ha demostrado que puede vivir yconservar su patogenicidad durante al menosS meses, lo cual sugiere que el agua de riegopodría actuar como reservorio y vehículo detransmisión de E. amylovora (Biosca et al.,OMMU).

Factores condicionantesLa gravedad de las enfermedades de las plan-tas en general, y del fuego bacteriano en par-ticular, varía en función de la relación entre:planta hospedera, inóculo y condiciones am-bientales. La sensibilidad y el estado vegeta-tivo de las plantas son fundamentales no sóloen el desarrollo de la epidemia sino tambiénen la dispersión de las plagas. La cantidad deinóculo es un factor determinante al igualque las condiciones ambientales o climáticas,principalmente humedad o lluvias y tempera-tura (Vanneste, OMMM).


218

HospedantesLa sensibilidad a fuego bacteriano es un temade gran importancia dado que en algunas re-giones productoras de frutas de pepita, lapresencia de la enfermedad ha sido la respon-sable del cambio de variedades. Por ejemplo,Francia, en la década de los UM, erradicó lavariedad Passe Crassane de peral por ser muysensible y por ley se prohibió su plantación(Thibault & Le Lézec, NVVM). En Italia, dadoque la producción de pera se basa en la varie-dad Abate Fetel, también altamente suscepti-ble, la enfermedad se expandió rápidamente apesar del programa de erradicación imple-mentado (Calzolari et al., NVVV).

Existen notables diferencias entre las dis-tintas variedades y portainjertos de manzanoy peral en cuanto a su sensibilidad a E. amylo-vora. Tal como se puede observar en la tablaTKN, las variedades comerciales Williams y P.Triumph de peral que significan más del RMBde la producción en Argentina, son suscepti-bles o moderadamente susceptibles. Encuanto al manzano, la situación es diferente.Red Delicious y sus clones, todos tolerantesal fuego bacteriano, ocupan más del RMB dela superficie dedicada a este cultivo. GrannySmith, variedad tradicional y las nuevas in-corporaciones, Gala y sus clones, Pink Ladyy Fuji, son susceptibles. Ello obliga a tenermayores cuidados con el posible desarrollode la plaga en el país (Tabla TKN).

Los portainjertos mayormente empleadosen Argentina en la producción de frutales depepita, son franco de peral y los clonales ãV yããNNN en cultivos de manzano. Según estu-dios realizados (Tabla TKN).

Los momentos de mayor receptividad a E.amylovora, por parte de las plantas, son enfloración y durante el crecimiento vegetativointenso. Los frutos jóvenes son también muyreceptivos. Las floraciones secundarias suelencomportarse como más receptivas que las pri-marias porque las condiciones ambientalesson más favorables para el inicio del procesode infección (Palacio-Bielsa & Cambra, OMMV).

El estado nutricional de la planta y losfactores edáficos (tipos de suelo, contenidode agua y nutrientes) también influyen en laseveridad de la enfermedad. Fertilizaciones

nitrogenadas excesivas aumentan la sensibili-dad a la infección. Los suelos arcillosos, conmal drenaje y fertilizados en exceso predispo-nen al desarrollo del fuego bacteriano (Vander Zwet & Beer, NVVR).

Determinadas plagas, como pulgones,chinches y el psílido del peral también au-mentan los riesgos de la enfermedad dadoque tienden a alimentarse de los brotes mástiernos, que son los más receptivos a las in-fecciones de E. amylovora (Schroth et al.,NVTQ).

InóculoSe refiere básicamente a la cantidad de bacte-rias viables que se encuentran en los tejidosvegetales y es directamente proporcional a lagravedad de la infección de fuego bacteriano,o sea, a mayor cantidad de inóculo, más gravees la epidemia. Además, cuanto mayor es lacantidad de tejidos afectados en la planta,mayores son los daños de la bacteria (Van derZwet et al., NVUU). Las fuentes de inóculo másimportantes son dos, los cancros y los exuda-dos. Los primeros conservan la bacteria (In-óculo primario) en los tejidos vivos durante elinvierno. Los exudados en cambio, son unaimportante fuente de inóculo secundario.Además, la bacteria puede pasar el inviernocomo epífita y/o endófita en las plantas hos-pederas (van der Zwet et al., NVUU).

Estudios realizados en peral en Californiahan demostrado que la cantidad de inóculodisminuye por debajo de los niveles de detec-ción en tejidos sintomáticos a partir del ve-rano (Miller & Schroth, NVTO). Además, loscancros están inactivos y tienen un muy bajonúmero de bacterias. De modo que la trans-misión de E. amylovora por el fruto es prácti-camente imposible, lo cual constituye unaspecto de suma importancia en el comerciointernacional de frutas de pepita (Dueck,NVTQ).




Condiciones ambientalesTemperatura y humedad o lluvias son lascondiciones más importantes en el desarrollode fuego bacteriano. Las temperaturas ópti-mas para el desarrollo e infección de E. amy-lovora son de NU⁄` a OV⁄`, en presencia deelevada humedad relativa, lluvia o rocío. Elinicio de un proceso infectivo se producecuando estas condiciones coinciden con el

momento de mayor susceptibilidad del hos-pedante que es el período de floración y antela presencia del inóculo (van der Zwet &Beer, NVVR). La conjunción de estas condicio-nes se produce en forma discontinua en laszonas productivas de Argentina. Se ha de-mostrado que en los últimos OM años solo sehan producido dos momentos de riesgo deinfección alto (Fig. TKN).

Pyrus (peral)

Susceptibles Moderadamente Susceptibles tolerantes

P. pyrifoliaP. callerianaOld HomeFarmingdale

Beurre BoscBeurre HardyErcolini (Coscia)Mantecosa precoz MorettiniLimonera (Dr. Jules Guyot)

Beurre D’AnjouWinter Nellis Variedades asiáticas

Malus (manzano)

M9, M26, MM111, MM 106 M7

GalaGranny SmithJonagold

Red DeliciousGolden DeliciousOregon spurOzak GoldRed ChiefRoyal GalaStarking DeliciousStarkrimsonTopred

Tabla 7.1. Sensibilidad de portainjertos y variedades de los géneros Malus y Pyrus a E. amylovora.

Elaborada en base a: Palacio-Bielsa & Cambra, OMMV; Paulin & Primault, NVVP; Thibault & Le Lézec, NVVM; van derZwet & Beer, NVVR.

Figura 7.1. Lluvias primaverales y períodos de infección alta en el Alto Valle de Río Negro (NVVMJOMNM)(Las flechas indican los años propicios).

Franco de peral membrilleros (A, B y C)

Bartlett (Williams) Packham's Triumph Abate FetelConferencePasse CrassaneDecana del Comicio

JonathanBraeburnFujiRome BeautyPink LadyIdared


220

Ciclo de la enfermedad

El ciclo de la enfermedad ha sido descritopor diferentes autores en las distintas regionesdonde está presente. El proceso de infeccióndel fuego bacteriano está estrechamente aso-ciado con la fenología de la planta hospedera.Por tanto, se considera que el ciclo comienzaen primavera con la producción del inóculoprimario y la infección de las flores, continúadurante el verano con la infección de brotesy/o frutos, y termina a finales de verano oprincipios de otoño con la formación de can-cros. El patógeno permanece latente duranteel período de reposo vegetativo de la plantahospedera (van der Zwet & Beer, NVVR;Thomson, OMMM).

Monitoreos y programas cuarentenariosen Argentina

En el marco del Proyecto Nacional númeroROJMRMV perteneciente al Programa Frutales,período OMMQJOMMU, “Desarrollo de sistemastecnológicos sustentables que permitan eldiagnóstico precoz para la prevención de en-fermedades como Tizón de Fuego y sharkaen frutales de pepita y carozo en Argentina”,se implementaron las técnicas de detecciónde E. amylovora en áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle. Lasmismas están disponibles y son: observaciónde síntomas similares a los producidos por labacteriosis, aislamiento de la bacteria en me-dios de cultivo general (agar de papa gluco-sado) y selectivos enriquecidos con sacarosa(Hig Sucrose Medium, ÅÅí y ãë) y tipifica-ción de los aislamientos bacterianos según lastécnicas convencionales; técnicas serológicas(Double antibody sándwich Enzyme LinkedInmunosorbent Assay-Ç~ëJÉäáë~, con reacti-vos Lowe® y moleculares (Polymerase chainreaction-éÅê) (Clark & Adams, NVTT; Éééç,OMMQ; Rossini, OMMU).

El análisis mediante observación de sínto-mas de más de NOMKMMM manzanos y de másde NSMKMMM perales de viveros y montes co-merciales de la región del Alto Valle de RíoNegro y Neuquén, dio resultado negativopara E. amylovora. La distribución varietal deperales y manzanos muestreados se repre-

senta en las Figuras TKO y TKP (Rossini et al.,OMMRa).

En las muestras dudosas, aproximada-mente NMM, se aislaron hongos no patógenos,bacterias del género Pseudomonas y tambiénse detectaron daños producidos por heladas(Proyecto ROJMRMV). Las técnicas Ç~ëJÉäáë~=yéÅê aplicadas a las muestras dudosas tambiéndieron resultados negativos para E. amylovorapor lo que hasta el momento no ha sido de-tectada su presencia en la región (ProyectoROJMRMV). Posteriormente, en el marco delproyecto “Investigación y desarrollo de méto-dos de diagnóstico de enfermedades en frutales,especialmente en problemas cuarentenarios”(éåÑêì=ONUR) de la cartera OMMSJMV, se conti-nuaron los monitoreos de frutales de pepitasusceptibles al fuego bacteriano con resulta-dos negativos (Giayetto & Rossini, OMNN).

En el año OMNM se inició en el país un pro-grama de monitoreo de plagas cuarentenariasde frutales de pepita, carozo y vid, entre lascuales figura E. amylovora en el marco delPrograma Regional de Vigilancia Fitosanita-ria del ëÉå~ë~. El mismo fue elaborado por laRegional Patagonia Norte de la mencionadainstitución y consensuado con áåí~=J=ÉÉ~ AltoValle. Funciona desde el año 2010 y se aplicaen las provincias de Río Negro y Neuquénpertencientes a la Regional Patagonia Nortede ëÉå~ë~. Básicamente comprende dos pro-ductos: un manual de procedimientos para elmonitoreador de campo y una planilla demonitoreo (ëÉå~ë~, OMNM). Estos monitoreosfueron realizados en montes comerciales quemanifestaban características relacionadas conel fuego bacteriano, tienen entre O y NM añosde edad, “el material analizado proviene ori-ginalmente de países en donde la bacteriaestá presente”, son variedades altamente sus-ceptibles, por ejemplo, Williams y Abate Fe-tell de peral y Pink Lady o Gala de manzano.




Figura 7.2. Cantidad de plantas de perales (%) y diversidad varietal muestreados en el Alto Valle de RíoNegro para diagnosticar la presencia de E. amylovora (nZNSMKMMM).

Figura 7.3. Cantidad de plantas de manzanos (%) y diversidad varietal muestreados en el Alto Valle deRío Negro para diagnosticar la presencia de E. amylovora (nZNOMKMMM).


222


Manual de procedimientos para el moni-toreador de campo

El manual establece las funciones del moni-toreador, las plagas consideradas según seanfrutales de carozo, pepita o vid y la metodo-logía del monitoreo. Además indica la formaen que se debe realizar la recorrida en elmonte, lo cual es muy importante a fin deaplicar el mismo método en todos los casos(ëÉå~ë~, OMNM).

Planilla de monitoreo

Es un documento oficial donde el monitorea-dor debe asentar todos los datos del estable-cimiento a monitorear (número de êÉåëé~,nombre del establecimiento, fecha en que serealiza el monitoreo, número de cuadro,nombre del monitoreador, especies y varieda-des del cuadro a monitorear, estado fenoló-gico de las plantas, número de plantas delcuadro, resultado del monitoreo).

En caso de detectar síntomas y/o signoscompatibles con las plagas consideradas, seasienta la información en la planilla de moni-toreo con los datos correspondientes y setoman muestras representativas que son re-mitidas inmediatamente al laboratorio de Fi-topatología de áåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle para laidentificación del agente causal mediante lastécnicas mencionadas anteriormente.

Este monitoreo conjunto áåí~=J=ëÉå~ë~fue realizado en dos temporadas agrícolas(OMNMJNN y OMNNJNO) y los resultados obteni-dos fueron negativos para E. amylovora.

Manejo del fuego bacteriano

En las regiones donde está presente fuegobacteriano, su manejo involucra un esfuerzoconsiderable y comprende varios aspectos(Schroth et al., NVTQ; Steiner, OMMM; van derZwet & Beer, NVVR).- Monitoreo a fin de detectar precozmente

las plantas afectadas.- Análisis en laboratorio de la presencia de E.

amylovora.- Erradicación de las plantas afectadas.- Manejo cultural de los montes para dismi-

nuir los riesgos de la infección: poda ydestrucción (quema) de partes afectadas,fertilizaciones apropiadas evitando los ex-cesos de nitrógenos que producen abun-dantes tejidos suculentos sensibles, riegosadecuados al tipo de suelo y tratando deevitar los excesos, sobre todo en floraciónque es el período de mayor susceptibili-dad del hospedero, drenaje del agua so-brante.

- Aplicación de agroquímicos.- Mantenimiento de un sistema de predicción

de desarrollo de la enfermedad basado enlas condiciones climáticas locales.

- Empleo de variedades resistentes en sitiosdonde existen condiciones favorables parael desarrollo de la enfermedad.

Análisis de riesgo para la prevención delingreso de E. amylovora en el Alto Vallede Río Negro

Existen en el mercado una serie de progra-mas de computación que permiten establecerriesgos de infección y aparición de síntomasde esta bacteriosis. Entre ellos Maryblyt® esuno de los más utilizados a nivel internacio-nal (Steiner, NVVM). Este software analiza enforma conjunta las condiciones climáticas detemperatura y humedad y las compara con elestado fenológico del cultivo dando, comoresultado del análisis, una probabilidad, baja,media, alta o muy alta, respecto a la apariciónde síntomas. Así también, predice según elestado fenológico, el avance de la infeccióndesde las flores a los cancros y estima eltiempo de ocurrencia.

A fin de establecer las condiciones predis-ponentes en el Alto Valle, se utilizó este pro-grama considerando las series históricas dedatos de la estación automática localizada enáåí~=J=ÉÉ~ Alto Valle (PV=ø=MNDMMDD=ë and ST=⁄QMDMMDD=ï). El modelo fue ajustado para varie-dades altamente susceptibles como perales cvWilliams y manzanos cv Gala. Debido a queArgentina es un país libre de la enfermedadsolo se consideró el estado fenológico “plenafloración” ya que se considera que si se pro-duce un ingreso de la bacteria al país, es eneste estado en donde se visualizarán más



rápidamente los síntomas. Se analizó la seriehistórica NVTMJOMNN y en solo dos ocasionesse produjeron condiciones que indicaron unalto riesgo de aparición de la enfermedad.Los resultados se resumen en la Tabla TKO.

Estos resultados indican que si bien la es-pecie no está presente en el Alto Valle, exis-ten años en donde las condiciones del mediofavorecerían su desarrollo y dispersión, indi-cando que se debe tener especial cuidado enla introducción de material susceptible comogala y sus clones o peras Williams, a la región(Giayetto & Rossini, OMNN).

Posibilidades de desarrollo en Argentina

Luego de ocho años de monitoreos de fuegobacteriano tanto en montes comerciales comoen viveros en las provincias de Río Negro yNeuquén, no se ha detectado su presencia. Sibien los monitoreos oficiales no han alcanzadoa todas las plantaciones, se tiene conocimientode la existencia de mayor cantidad de obser-vaciones realizadas por gente capacitada yalertada por la posibilidad de existencia de labacteriosis, lo cual es producto de las comu-nicaciones realizadas: reuniones informativas,elaboración de folletos técnicos, participacio-nes en Congresos y Jornadas (Rossini et al.,

OMMRa; Rossini et al., OMMRb; Giayetto et al.,OMMS; Rossini, OMMU; Rossini, OMNN; Giayetto& Rossini, OMNN).

Ello se debe a varias razones, por un ladoal control cuarentenario del material vegetalque ingresa desde países donde la bacteriaestá presente, pero en tantos años de introduc-ción y con la alta capacidad de sobrevivenciade la bacteria, igualmente podría haber in-gresado. Otra de las razones es que si bien seha demostrado que pueden existir momentosde infección puntuales, las condiciones climá-ticas generales no favorecerían el desarrollode la bacteria ya que, habiendo ocurrido unevento de lluvia con condiciones de tempera-tura y estado fenológico apropiados para queocurra la infección, los días posteriores sepresentan, en general, muy secos, lo mismoque la humedad relativa ambiente, caracterís-tica del clima desértico de estas latitudes.Estas condiciones inhibirían el desarrollo omatarían las posibles bacterias que han ini-ciado la infección.

En la misma situación se encuentra laprovincia de Mendoza, segunda productoranacional de frutas de pepita. En la actualidadexisten plantaciones sobre todo de manzano,en zonas marginales para este tipo de pro-ducción, como el noreste argentino, dondelas condiciones climáticas particularmentepor las lluvias, son favorables para el desarro-llo de E. amylovora.

De modo que es deseable que a fin demantener a la mencionada plaga como cua-rentenaria ausente, se realicen permanentesmonitoreos de la bacteria en estos sitios a finde detectarla precozmente y erradicar los po-sibles focos que pudieran aparecer. Por otraparte se debería implementar el programaMaryblyt® a fin de detectar la posibilidad deperíodos de infección.

Existen factores de riesgo de desarrollo dela enfermedad como es el empleo de varieda-des comerciales y portainjertos susceptibles alfuego bacteriano; el empleo de sistemas deconducción de alta densidad y la existencia desegundas floraciones en variedades muy sensi-bles como Williams. Pero las principales zonasproductoras de frutas de pepita poseen unagran ventaja climática y es que en general,

Riesgo Número de eventos Año

Infección 2 2004, 2008

Alta 141971, 1976, 1977, 1989, 1990,1994, 1995, 1998, 1999, 2000,2003, 2005, 2006, 2009

Media 131972, 1973, 1974, 1979, 1980,1982, 1984, 1985, 1987, 1992,1997, 2001, 2007, 2010, 2011

Baja 81975, 1981, 1983, 1986, 1988,1991, 1996, 2002

Sin Riesgo 1 1993

Tabla 7.2. Potencial de infección de flores produ-cidos por E. amylovora según el año en el AltoValle de Río Negro.


224


las escasas precipitaciones de la primaveracoinciden con bajas temperaturas, inferioresa OM⁄` que es la temperatura adecuada de de-sarrollo de E. amylovora. Igualmente existenperíodos de posible infección que obliga atomar los recaudos necesarios para que labacteria continúe como plaga cuarentenariaausente con los beneficios que ello implica.Åçë~îÉ indica que el riesgo de introducción ydesarrollo de la plaga en Argentina es alto(Åçë~îÉI=OMNO).

Acciones futuras

A los efectos de contribuir a mantener a E.amylovora como plaga cuarentenaria ausente,se proponen las siguientes acciones:- Monitoreo de la plaga en todas las zonas

productoras de frutas de pepita inclu-yendo las plantaciones de zonas margina-les como Entre Ríos, y Misiones.

- Implementación del programa de predicciónde infecciones, como el Maryblyt® en laszonas productoras y en las marginales.

- Continuar con los programas de capacita-ción y de concientización a todos los sec-tores involucrados con la producción defrutas de pepita: productores, asesores,instituciones de control sanitario y de in-vestigación y extensión.



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Mycosphaerella fijiensis Morelet(Sigatoka negra)

Flores, C.

IntroducciónAgente causal Diagnóstico Sintomatología Distribución en otros países Hospedantes Epidemiología Manejo de la enfermedad

Control cultural Control químico

Bibliografía

Banano

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Å~é∞íìäç=U


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Å~é∞íìäç=U=J=Ä~å~åç=J Mycosphaerella fijiensis

Introducción

El banano es uno de los cultivos más impor-tantes del mundo, ya que es considerado unfrutal básico para la alimentación humana yun producto de exportación en numerosospaíses en desarrollo (Ñ~çI=OMMN). Dentro de losfrutales es el segundo en importancia luegode los cítricos (Swennen y Rosales, NVVQ). Enla Argentina se cultiva con fines comercialesMusa cavendishii Lamb. (Syn Musa acuminataColla), que es consumida como fruta fresca,no existen plantaciones comerciales de M. pa-radisiaca L., denominados plátanos cuyo con-sumo se efectúa previa cocción.

Entre las enfermedades reportadas paranuestro país se encuentran: sigatoka amarilla(Mycosphaerella musicola Leach et Mulder) queproduce muerte precoz de las hojas, con elconsecuente debilitamiento de la planta ypérdida de rendimiento (Foto NNP). Cordanamusae (Zimm) Hohnel, Veronaea musae M. B.Ellis, Deightoniella torulosa (Syd.) M. B. Ellis yPericoniella musae Stahel ex M.B. Ellis, quetambién provocan manchas foliares y a nivelde pseudotallo se cita la pudrición seca delpseudotallo causada por Marasmiellus troyanus(Murr.) Sing. (Tapia et al., OMMU; Sinavimo,OMNP). Sin embargo, el cultivo de bananopresenta otras patologías que son considera-das cuarentenarias para Argentina: Mycos-phaerella fijiensis Morelet (sigatoka negra),Ralstonia solanacearum raza O Smith, Fusariumoxysporium f. sp. cubense (Foc) y Pyriculariagriesea Sacc.

La sigatoka negra es la más importante anivel mundial, su nombre proviene de la esta-ción experimental en las islas Fiji, donde fuediagnosticada por primera vez en NVSQ, des-plazando a la sigatoka amarilla en corto perí-odo de tiempo. Si bien la sintomatología deambas enfermedades es semejante, la diferen-cia radica en el hecho que la primera es másagresiva y virulenta causando la pérdida rá-pida del follaje de las plantas, reducción delrendimiento y maduración prematura y des-pareja de los frutos (Pons, NVUTa).

Agente causal

El agente causal de la sigatoka negra es elhongo perteneciente a la clase AscomycetesMycosphaerella fijiensis Morelet, NVSV, cuyo es-tado imperfecto corresponde a Pseudocercosporafijiensis (Morelet) Deighton, NVTS (Agrios,NVVT; Carlier et al., OMMM; Marín et al. OMMP);por consiguiente, el agente causal puede pro-pagarse mediante la producción de ascospo-ras y conidios (Aislant & Gámez, OMMQ).Sigatoka amarilla es causada por M. musicolaLeach ex Mulder, NVTS.

Diagnóstico

Se describe un método para identificar las es-pecies M. fijiensis y M. musicola, en sus estadosanamorfos Paracercospora fijiensis y P. musae,respectivamente (Mulder & Stover, NVTS;Aguirre et al., OMMP). El método se basa en laobservación de caracteres sistemáticos de losconidios y conidióforos, utilizando un colo-rante que tiñe ambas formas. En los conidiospuede observarse una coloración más intensaen la cicatriz (hilo) o punto de inserción delos conidios con el conidióforo en P. fijiensis,y una ausencia de tinción en P. musae (Ploetz,OMMP). La caracterización de las especies sepuede realizar mediante la descripción de ca-racteres morfológicos en laboratorio o pormedio de la técnica de éÅê (Arzanlou et al.,OMMP; Guzmán & Crous, OMMT).



Sintomatología

Sigatoka negra causa necrosis foliar muy se-vera en las plantas, con la consecuente reduc-ción de la actividad fotosintética y disminuciónde la producción y calidad del producto final.Su diseminación en América latina se inicióen NVTO cuando se confirmó su presencia enHonduras, reportándose en NVVN en Vene-zuela. El patógeno es capaz de producir grancantidad de ascosporas y conidios, estos últi-mos muy abundantes en el envés de la hoja,pudiendo desarrollar un patrón de infeccióna lo largo de la nervadura principal que difi-culta su control y lo hace muy costoso (Mo-reira, NVVV) (Fotos NNQ y NNR).

La sintomatología presenta seis fases: N. Se inicia como una pequeña decoloraciónen el anverso de las hoja de MKR a MKO mm conuna coloración blanquecina; O. Las manchasse transforman en estrías de O a P mm asu-miendo un color rojizo, la cual puede servista desde la parte superior de la hoja. Pro-gresivamente la lesión se torna de color caféen la parte superior y negra en la parte infe-rior; PK La estría crece en dos sentidos y setorna como un bisel dividido por una zona decolor chocolate originada por la formaciónde conidióforos; QK En el envés de las hojaslas manchas se tornan de color café y en lacara superior, éstas adquieren un color negro;RK Las lesiones se expanden y se rodean de uncolor amarillo intenso; SK Las lesiones se de-primen y se observan áreas de tejido con elcentro seco que se tornan de color grisáceo(Carlier et al., OMMM).

En el caso de sigatoka amarilla los prime-ros síntomas se observan como la apariciónde pequeñas áreas necrosadas que correspon-den al punto de penetración del patógeno, lasque luego evolucionan a estrías negras, redu-ciendo la capacidad fotosintética de la planta.No obstante, su incidencia y severidad sonrelativamente más bajas. El momento para laaparición de la enfermedad varía en funcióndel tiempo.


Sigatoka negra apareció por primera vez enel Hemisferio Occidental en NVTO en Hondu-ras, y se ha extendido a todos los demás paí-ses de América Central (NVUM), México (NVUM)e islas del Caribe: Cuba (NVVO), La Española(República Dominicana) (NVVS) y Jamaica(NVVQ). En América del Sur, la enfermedad seha extendido a Colombia (NVUN), Ecuador(NVUS), Venezuela (1992) y Perú (NVVQ) (Ar-zanlou et al., OMMT). Reportada en Bolivia enNVVS en la localidad de San Carlos la regiónoccidental del Chapare y en Brasil fue diag-nosticada por primera en febrero de NVVU enel estado de Amazonas en plantaciones cerca-nas a las fronteras con Perú y Colombia. Eneste país se considera que la enfermedad fueingresada por medio de material infectado yque el principal agente de diseminación eltrasporte de plantas y frutos enfermos por elrío en épocas de crecidas (Cordeiro & Matos,OMNO). En octubre de NVVU fueron reportadossíntomas de la enfermedad en diferentes va-riedades en una colección en el centro de in-vestigación de frutos tropicales de laUniversidad de Florida (Ploetz & Mouri-chon, NVVV).

Hospedantes

La enfermedad fue determinada en los clonesCavendish, Dulce cajita (Pisang mas), Guineo(Silk), Morado (rojo) y plátanos (Francés yplatano cuerno). En la zona de San Carlos laincidencia de la enfermedad fue de un NMMBcon valores de severidad entre QKR y U (Teje-rina et al., NVVT).


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Epidemiología

Tanto la forma sexual y como la asexual tie-nen importancia en la permanencia, adquisi-ción y diseminación de la enfermedad. Laetapa de sobrevivencia del patógeno, cuandono existe material vegetal susceptible, sucedecuando el hongo permanece en estado de la-tencia sobre hojas viejas infectadas que se en-cuentran sobre el suelo o aún colgadas de laplanta. Al iniciarse la estación lluviosa, co-mienza la fase de reproducción sexual: en lashojas viejas infestadas, sobre las manchas oca-sionadas por la enfermedad, se desarrolla unaestructura denominada peritecio que contie-nen esporas llamadas ascosporas. Estas ascos-poras pueden ser fácilmente transportadas alargas distancias por las corrientes de aire yson responsables de la diseminación de la en-fermedad a nuevas plantas.

Durante la fase de reproducción asexual elhongo produce esporodoquios que contienenesporas llamadas conidios. Los conidios seencuentran en ambas caras de las hojas, aun-que con mayor abundancia en la superior yson diseminados por el viento y la salpicadurade lluvia. Aunque estas estructuras puedenproducirse a lo largo del año, su liberación ygerminación dependerán del agua libre sobrelos tejidos y alta humedad relativa disponible.

Tanto las ascosporas como los conidios,en la etapa de infección, penetran en la plantapor vía estomática. Una vez que el hongo hapenetrado empieza a causar en ellas su efectoperjudicial, produciendo toxinas que matanlos tejidos de la hoja, dando como resultadola mancha de N cm de largo, con borde negroy centro gris o sitio de penetración. Desde elingreso del hongo hasta la formación de lamancha, pueden transcurrir hasta dos meses.Si la humedad ambiental sigue siendo alta ylas lluvias abundantes, en el centro gris de lasmanchas se originan millones de conidiosque reinician el ciclo de infección generandode este modo varias re-infecciones dentro deun mismo ciclo de cultivo.

La diseminación de ambas formas del pa-tógeno es favorecida por las condiciones am-bientales como las precipitaciones, altahumedad ambiental y tiempo cálido, mientrasque el hombre, con el transporte de hojas en-fermas, también contribuye a esta disemina-ción (Carlier et al., OMMM).


Control culturalLas plantas que se desarrollan bajo condicio-nes óptimas de fertilidad manifiestan meno-res problemas sanitarios. Existe correlaciónentre la fertilidad del suelo y la severidad dela sigatoka negra del plátano (Mobambo &Naku, NVVP). Los suelos fértiles, por ejemplo,con un mayor contenido de materia orgánicaestimulan la ramificación de la raíz, lo que re-sulta en una mejor absorción de agua y nu-trientes y por lo tanto las plantas son másvigorosas (Ebimieowei & Wabiye, OMNN).

La eliminación de tejido vegetal enfermodisminuye la cantidad de inóculo para la in-fección a nuevas plantas lo que determinauna significativa disminución del número denuevas re-infecciones. Por ello es recomen-dable que las hojas viejas y otras hojas infec-tadas deben ser retiradas de la planta antesdel inicio de la floración. Las plantas madresenfermas deben ser eliminadas por completoen el momento de la cosecha. La planta enproducción solo debe conservar R hojas sanaspara no afectar los rendimientos, pero si enalguna de ellas existen infecciones se reco-mienda solo retirar la parte lesionada conser-vando el resto para ayudar en el proceso defotosíntesis.

Finalmente, el material infestado removido(hojas, frutos, etc), debe ser retirado y que-mado a efectos de prevenir nuevas infeccio-nes, evitar la diseminación y disminuirinóculo en el ambiente (Larios & da Silva,OMMU; Orozco-Santos et al., OMMU; Ebimieowei& Wabiye, OMNN).



Control químicoEn sus inicios, el control químico de la siga-toka consistía en aplicaciones de caldo borde-les. Este método redujo hasta un UMB deconidios en el haz de las hojas y hasta un QMBen el envés de las mismas. Sin embargo resul-taba poco efectivo para el control de ascospo-ras además de presentar como inconvenientela necesidad de retirar, por medio de lavados,el excedente de producto de la fruta comercial.

En NVRP se iniciaron ensayos con la utili-zación de aceites, los que en un principio fue-ron pensados como sustancias adherentes,pero luego se demostró su acción fungistáticay teletóxica, siempre que no fuere fitotóxicapara la planta. Debido a estas propiedades secomenzó, en NVRU, la utilización de solo aceitecon buenos resultados para el control de laenfermedad. En NVRS, en Jamaica, se realiza-ron aplicaciones aéreas de aceites para el con-trol de la enfermedad, con buenos resultados.Los aceites usados redujeron la esporulación,disminuyendo la germinación y penetraciónde los filamentos germinativos de las esporasy evitando la ocurrencia de altos niveles deseveridad procurando y dejando una coberturaadecuada en los tejidos jóvenes (Pons, NVUT).

A partir de NVUR comenzaron a utilizarseemulsiones con fungicidas de contacto obte-niéndose resultados satisfactorios con losditiocarbamatos, pero presentaban el incon-veniente de no persistir al lavado por lluviay/o rocío. En NVTM se implementaron aplica-ciones exitosas de fungicidas sistémicos. Sinembargo, debido a la especificidad y modo deacción, se observaron poblaciones resistentesdel patógeno a los productos usados.

En la actualidad, el control de la enferme-dad se basa en el uso de fungicidas protecto-res y sistémicos. Los protectores son deacción “multisite”, por lo que presentan bajoriesgo de generar poblaciones resistentes. Seincluyen en este grupo al mancozeb y al clo-rotalonil. Los sistémicos se caracterizan porsu acción de sitio específica (pueden generarpoblaciones resistentes del patógeno) e inclu-yen en este grupo a benzimidazoles, aminas,triazoles, estrobilurinas y anilinopirimidinas.Existen reportes de que el patógeno ha desa-rrollado resistencia a benzimidazoles, triazo-les y estrobilurinas (Fourcade & La Ville,NVTP; Stover, NVTT; Pons, NVUT).


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Fitoplasmas

Gomez Talquenca, S. y L. Conci

IntroducciónHospedantes Sintomatología Distribución en el mundo Epidemiología Manejo de la enfermedad Monitoreos en el país Bibliografía

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Å~é∞íìäç=V

Vid



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Introducción

Los fitoplasmas son bacterias carentes depared celular, de naturaleza parasítica y estánrestringidas a dos tipos de hospedantes: plan-tas e insectos. Se los ha encontrado infectandomás de NMMM especies de plantas alrededor delmundo y son responsables de importantespérdidas en diferentes cultivos (Hogenhout etal., OMMU). Aún no ha sido posible su cultivoin vitro, lo cual ha dificultado no solamentesu estudio sino su taxonomía, por lo que demanera provisoria se describen como ''Candi-datus Phytoplasma spp.'' (Gasparich, OMNM).La amplificación de una porción del gen NSë~êår de los fitoplasmas, mediante la técnicade reacción en cadena de la polimerasa (éÅê),su posterior digestión con enzimas de restric-ción (éÅêJêÑäé) y secuenciación, permitiósentar las bases de un sistema de clasificación.Posibilitó además realizar análisis filogenéti-cos entre los fitoplasmas y con otros gruposde bacterias, demostrándose que los primerosrepresentan un clado monofilético de unasorprendente diversidad, dentro de la claseMollicutes (Lee et al., OMMM). Son muy peque-ños (MIOJMIP micrones) viven exclusivamenteen el floema de las plantas y en los insectosvectores. En la naturaleza se transmiten demanera persistente y propagativa medianteCicadélidos, Delfácidos, Cixidos y Psílidos,conocidos como "chicharritas", cuando éstos sealimentan.

En la vid los fitoplasmas son consideradoscausantes de un conjunto de enfermedadesllamadas genéricamente “Amarilleos” (Gra-pevine Yellows, Öó). Las enfermedades másimportantes descriptas en vid, son Flavescen-cia Dorada y Bois Noir (madera negra). Estastienen una etiología y epidemiología distinti-vas, aunque son indistinguibles en base a lossíntomas observados en las plantas afectadas.La primera enfermedad en ser registrada fueflavescencia dorada, en Francia, hacia la dé-cada de NVRM (Levadoux, NVRR), desde dondese dispersó por diferentes regiones vitiviníco-las de Europa. Si bien se la consideró en unprincipio como un problema fisiológico, rápi-damente se determinó su naturaleza infec-ciosa, inicialmente se asumió que estabacausada por un virus. Actualmente está incor-porada como enfermedad cuarentenaria entodas las áreas productoras de vid. Pocotiempo después se registró, también en Fran-cia, la enfermedad llamada bois noir, la cualpresentaba sintomatología similar a flaves-cencia dorada, pero fue considerada una en-fermedad distinta porque se estableció que elvector era diferente (Belli et al., OMNM). Desdeel establecimiento de la existencia de estetipo de patógenos en el año NVST (Doi et al.,NVST), otras enfermedades asociadas con lapresencia de fitoplasmas y con síntomas simi-lares a flavescencia dorada y bois noir hansido descritas en cultivos de vid de todo elmundo (Tabla NMKN).

Å~é∞íìäç=V=J=îáÇ=J Fitoplasmas

Tabla 10.1. Enfermedades causadas por fitoplasmas en cultivos de vid de diferentes regiones productoras,teniendo en cuenta el agente causal, el grupo al cual pertenece, el insecto vector y la distribución geo-gráfica (Belli et al., OMNM).

Enfermedad Grupo 16Sr Agente causal Insectos vectores Distribución geográfica

Flavecencia dorada 16Sr V Candidatus Phytoplasma vitis Scaphoideus titanus Francia, Italia, España, Portugal, Serbia, Eslovenia, Suiza

Bois noir 16SrXII Ca P. solani Hyalesthes obsoletus Europa, Israel, Chile

Palatinate grapevine yellows 16SrV Ca P. ulmi Oncopsis alni Alemania

Virginian grapevine yellows 16Sr III Ca P. pruni EEUU

Australian grapevine yellows 16Sr XIII Ca P. australiense Australia

Australian grapevine yellows 16Sr II Ca P. australasia Australia

Auckland valley grapevine yellows 16Sr I Ca P. asteris Australia, Chile

Amarillamiento de la vid 16Sr VII Ca P. fraxini Chile



Hospedantes

Los amarillamientos de la vid pueden estarasociados a la presencia de diferentes fito-plasmas, por lo que también es variable elrango de hospedantes que pueden poseertanto el patógeno como el vector. El sistemade clasificación actual de fitoplasmas se defineen base al análisis de secuencia del gen NSë~êår (Lee et al., NVVP; NVVU), habiéndose es-tablecido hasta el presente OU grupos NSër ymás de RM subgrupos. Para una mejor diferen-ciación dentro de los distintos grupos, se puederecurrir al análisis de otros genes con secuen-cias variables flavescencia dorada está causadapor fitoplasmas del grupo “Elm yellows”(NSërî). El principal hospedante de este fito-plasma es Vitis vinífera, aunque se han regis-trado infecciones naturales de V. riparia. Seha logrado transmisión experimental a Viciafaba y a Chrysanthemun carinatum. Sin embargo,se considera que el único hospedante de sig-nificancia para la flavescencia dorada es V. vi-nifera. Recientemente se ha reportado lapresencia del fitoplasma asociado a flavescen-cia dorada en hospedantes leñosos colindantescon viñedos infectados (Borgo et al., OMMU).

El bois noir, en cambio, está causada porun fitoplasma del grupo “Stolbur” (NSërñáásubgrupo ~). Los fitoplasmas de este grupotienen un rango de hospedantes extremada-mente amplio, por lo que es importante dis-tinguir entre especies infectadas ocasionalmentey aquellas que son hospedantes principales ycon importancia epidemiológica. Los hospe-dantes más importantes de este grupo de fito-plasma en Europa son dos malezas:Correhuela (Convolvulus arvensis L.) y Ortiga(Urtica dioica L.), las cuales tienen importan-cia diferente en cada región. Otros hospe-dantes herbáceos pueden ser consideradosimportantes, pero dado el ciclo biológico delvector, epidemiológicamente son más signifi-cativas las plantas perennes que las anuales(Maixner, OMNN).

Sintomatología

Los síntomas de las distintas enfermedadescausadas por fitoplasmas en vid son práctica-mente idénticos, lo que hace imposible suidentificación solamente en base a la sintoma-tología. El primer indicio de la enfermedades la brotación irregular, observándose un re-traso en las plantas afectadas. Los síntomaspresentados por plantas infectadas son claros,aunque en algunas situaciones pueden confun-dirse con alteraciones fisiológicas o problemascausados por otros patógenos. En hojas se pro-duce una clorosis difusa marcada en varieda-des blancas, mientras que en variedades tintasse producen coloraciones rojizas-violáceas(Foto NNS), en algunos casos delimitados porlas nervaduras. En variedades blancas las ner-vaduras toman un aspecto clorótico y en lasvariedades tintas pueden terminar necrosán-dose. En todos los casos las hojas se enrollanmarcadamente hacia el envés. En las variedadesblancas, las hojas con los síntomas descriptosadicionalmente presentan un brillo particular,como si estuvieran recubiertas por una capacerosa (Foto NNT). Los brotes presentan unacortamiento irregular, entrenudos cortos yen zig-zag (Foto NNU), no toman rigidez, pre-sentando el aspecto de un brote de goma. Enalgunos casos se presentan puntuaciones ne-gras sobre el brote no lignificado (Foto NNV).Los brotes que no han lignificado adecuada-mente pueden necrosarse ante las primerasheladas invernales, dando el nombre de maderanegra. En los racimos se observa frecuente-mente una necrosis parcial del raquis ya desdeel momento de floración (Foto NOM). Lasplantas afectadas pueden presentar la sinto-matología en la totalidad de la planta, o in-cluso en un solo brote, siendo esto último,reflejo en algunos casos de una infección re-ciente o bien de una distribución irregulardel patógeno en la planta. Los daños sonprincipalmente por una disminución en elvolumen de cosecha debido a la necrosis par-cial de racimos, disminución de la carga porel declinamiento progresivo de las plantas ymenor calidad de la uva. También puede con-siderarse como un perjuicio económico la malacalidad de la madera cuando se persigue laproducción de material de propagación.


240


No hay cultivares de vid resistentes a losamarillamientos, pero si hay una marcadasusceptibilidad varietal. Variedades comoChardonnay, Alicant Bouschet, Garnacha yTannat son muy sensibles, mientras que Mer-lot, Syrah y Sauvignon Blanc son menos sus-ceptibles. Si bien no es frecuente, se hareportado remisión de síntomas en casosdonde no hubo posibilidad de reinfección porvectores. Esto es más notable en algunas va-riedades, como por ejemplo, Barbera (Belli etal., NVTU) En algunos casos la remisión desíntomas se ve acompañada por una desapari-ción del patógeno en la planta y ya ha sidodemostrada en otras especies de gran impor-tancia económica como duraznero y manzano,infectadas por fitoplasmas (Zorloni et al., OMMU).Los portainjertos generalmente no presentansíntomas cuando están infectados, pero si lospodrían manifestar los materiales sobre ellosinjertados.

Distribución en el mundo

Bois noir y flavescencia dorada han sido des-criptas principalmente en los países medite-rráneos y de Europa central. Flavescenciadorada tiene una distribución más limitada(Francia, España, Portugal, Suiza y Norte deItalia), mientras que bois noir está amplia-mente diseminada en Europa (Francia, Ale-mania, Italia, Suiza, España, Turquía, Serbia,Ucrania) y el resto del mundo (Israel, Líbano).Se han reportado amarillamientos de vid aso-ciados a fitoplasmas del grupo Stolbur u otrosgrupos en Irán, China, Croacia, Chile, Esta-dos Unidos, Bulgaria, Grecia, Túnez, Sud-áfrica, México, Australia y Nueva Zelanda.En viñedos de Chile se han identificado plan-tas con síntomas de amarillamiento causadospor fitoplasmas los que de acuerdo al análisisdel gen NSër fueron identificados miembrosde los grupos NSërá (Aster Yellows) (‘Candida-tus Phytoplasma asteris’), NSërîáá (‘Ca. P. fraxini’)y NSërñáá (stolbur or “bois noir”) (Gajardo etal., OMMV). La incidencia de estos patógenosen el cultivo dependerá de la propagación deplantas infectadas y de las especies de insectosque podrían funcionar como vectores de laenfermedad en la región, alimentándose de

vid o bien de malezas circundantes (Longoneet al., OMNN) (Tabla NMKN).

Epidemiología

La epidemiología de los amarillamientos dela vid es bastante compleja. Al estar causadaspor distintos fitoplasmas, sus característicasson diferentes, por lo que en cada patosistemase deben estudiar los diferentes componentesde la enfermedad con la finalidad de plantearestrategias eficientes de control. Sin embargo,al ser patógenos transmitidos por injerto,comparten una característica común y tambiéncon las enfermedades causadas por virus, quees el hombre a través de la comercializaciónde material de propagación infectado, el prin-cipal diseminador de estas enfermedades alarga distancia. Sin la intervención del hom-bre los fitoplasmas son exclusivamente trans-mitidos por chicharritas en forma persistentepropagativa.

El fitoplasma asociado a flavescencia doradaes transmitido por Scaphoideus titanus Ball(Hemíptera: Cicadellidae) oriundo de Amé-rica del Norte e introducido en Europa acci-dentalmente. Si bien este cicadelido ha sidoreportado colonizando distintas especies leño-sas salvajes y cultivadas en América del Norte,en Europa esta solamente restringida a la vid.Ha sido detectado en la maleza Clematis vistalbaL., aunque sin desarrollo de síntomas, por loque sólo ocasionalmente se ha registrado lapresencia del fitoplasma en esta especie. Tam-bién se ha reportado la presencia de este fito-plasma en Ailantus altísima L., sin embargo lasignificancia epidemiológica debe ser clarifi-cada. Hasta el momento, se considera quetodo el ciclo epidemiológico de la enfermedadse desarrolla entre la planta de vid y el vector.Este insecto en las condiciones del sudestefrancés tiene una generación por año. Presentaun período de adquisición de TJU días, seguidode un periodo de latencia relativamente largo(cerca de un mes). Tanto los estadios ninfalescomo los adultos son capaces de adquirir elfitoplasma, pero los machos son más eficientestransmisores que las hembras. La capacidadde transmitir una vez adquirido el fitoplasmapersiste por toda la vida del insecto.




Como todas las enfermedades transmitidaspor multiplicación agámica e injerto, el primery más eficiente método de control, es el usode material de propagación de calidad certifi-cada. En la Argentina hay un programa deproducción de material de propagación librede virus, pero al ser los fitoplasmas organis-mos cuarentenarios para nuestro país, no secontempla su análisis. El ingreso de materialde propagación del exterior está regulado ycontrolado por ëÉå~ë~. Actualmente se per-mite el ingreso de material de propagaciónde categoría certificado desde países que pue-dan presentar un riesgo (Francia e Italia), sinembargo los controles tanto en los países deorigen (Angelini et al., OMNN) como en Argen-tina han sido exitosos hasta el momento,dado que no se han registrado reportes de in-fección en país.

Dada las diferencias epidemiológicas yadescriptas entre flavescencia dorada y boisnoir, el manejo a campo de ambas tiene nota-bles diferencias en la metodología y la efi-ciencia. En el caso de flavescencia dorada, elcontrol químico de S. titaneus con remociónde plantas afectadas y reemplazo por plantassanas, es un método efectivo de manejo. Enel norte de Italia se implementan medidas deeste tipo en forma sistemática, combinadascon barreras sanitarias, con buenos resultadospara evitar la diseminación de la enfermedad.Por otra parte las medidas de erradicación deviñedos abandonados o aquellos con manejosanitario deficiente, ha dado resultados satis-factorios en la disminución del impacto de laenfermedad (Belli et al., OMNM).

Por otra parte, el manejo de bois noir esmucho más complejo. Tratamientos insectici-das contra H. obsoletus han demostrado no sereficientes en la disminución de los insectospresentes en viñedos (Mori et al., OMMU). Asi-mismo, tratamientos tardíos con herbicidassistémicos en malezas hospederas ha tenidopoco éxito en disminuir el número de adultosemergentes en la temporada siguiente (Kehrli& Delabays, OMNN). Sin embargo, el manejode malezas hospedantes, del fitoplasma y delvector, serían el principal método de control

en zonas donde ya se ha constatado la presen-cia de esta enfermedad. Dada la posibilidadde nuevas especies vectoras del fitoplasmaasociado a bois noir, en muchos países seconducen estudios tendientes a identificarpotenciales vectores, con el objeto de des-arrollar estrategias de manejo ante la even-tual ocurrencia de la enfermedad (Maixner,OMNN).

Monitoreos en el país

En la Argentina se han conducido relevamien-tos en viñedos añosos como así también enimplantados recientemente con material depropagación oriundo de las regiones dondeestas enfermedades son endémicas. Si bien sehan observado plantas con sintomatología si-milar a la descripta, los análisis de laboratoriorealizados sobre los materiales colectados hanresultado negativos a la infección con fito-plasmas. Asimismo, muchos de estos materia-les presentaron infección con virus asociadosa la enfermedad “Enrollado de la hoja” o“Degeneración infecciosa”, que pueden pre-sentar sintomatología similar a la descriptapara fitoplasmas.

Argentina no está exenta de la presenciade fitoplasmas afectando diferentes cultivos,plantas ornamentales, nativas y malezas. Sehan reportado en el país más de OM especiesde plantas infectadas con fitoplasmas. Algu-nas de ellas, cultivos de gran importanciaeconómica como ajo (Allium sativum L.), al-falfa (Medicago sativa L.), frutilla (Fragaria ×anannassa Duch), maíz (Zea mays L.) y paraíso(Melia azedarach L.) entre otros, produciendodaños y pérdidas variables (Conci et al., OMMR;Arneodo et al., OMMT; Galdeano et al., OMMV).Se tiene escasa información con respecto alos vectores involucrados en cada caso y tam-poco hay datos acerca de la fisiopatología deestas enfermedades. Estos patógenos podrían,existiendo el vector adecuado, infectar otroscultivos como la vid, o bien podrían disemi-nar patógenos que ingresen con el materialbiológico en procesos de importación.


242

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244


Fotografías

245

Å~é∞íìäç=N=J=îáÇLobesia botrana Den et Schiff. (polilla europea

del racimo)

Å~é∞íìäç=O=J=~ê•åÇ~åçë=ó=Å∞íêáÅçëAnastrepha fraterculus (Wiedemann) y Ceratitis

capitata (Wiedemann) (moscas de la fruta)

Å~é∞íìäç=P=J=Å∞íêáÅçëAleurocanthus woglumi Ashby (mosca negra)

Å~é∞íìäç=Q=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~Pseudococcus viburni (cochinilla harinosa)Cydia pomonella (L.) (gusano de la pera y la

manzana o carpocapsa)

Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòçPlum pox virus (sharka)Monilinia fructicola (Winter) Honey (podre-

dumbre morena)Xylella fastidiosa Wells et al. (escaldadura de las

hojas del ciruelo)

Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçëGuignardia citricarpa (Kiely) (mancha negra de

los cítricos)Xanthomonas axonopodis pv. citri (Hasse) Vaut

(cancrosis de los cítricos)Huanglongbing (ÜäÄ) ex greening

Å~é∞íìäç=T=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al.

(tizón de fuego ó fuego bacteriano)

Å~é∞íìäç=U=J=Ä~å~åçMycosphaerella fijiensis Morelet (sigatoka negra)

Å~é∞íìäç=V=J=îáÇFitoplasmas

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Foto 1. Huevos sobre inflorescencias.

Foto 2. Huevo colocado en el cáliz de una flor de vid. Sepuede observar el embrión en estado “cabeza negra”.

Foto 3. Huevos colocados sobre granos de vid.

Foto 4. Estados larvales desde äN hasta äR.

Foto 5. Pupa de L. botrana encerrada por su capullo.

Foto 6. Adulto de L. botrana.

Å~é∞íìäç=N=J=îáÇ=J=Lobesia botrana Den et Schiff. (polilla europea del racimo)

1 2

3 4

5 6



Foto 7. Daños de L. botrana en flores.

Foto 8. Daño de L. botrana en granos verdes.

Foto 9. Daño externo de L. botrana en grano verde.

Foto 10. Daño interno de L. botrana en grano verde.

Foto 11. Pupa de L. botrana en fruto verde.

Foto 12. Daño en racimo por L. botrana.

7 8

9 10

11 12


250

Foto 13. Daño por L. botrana en bayas en maduración.

Foto 14. Difusor N para el control de L. botrana por elmétodo de confusión sexual.

Foto 15. Difusor O para el control de L. botrana por elmétodo de confusión sexual.


14

1513


Å~é∞íìäç=O=J=~ê•åÇ~åçë=ó=Å∞íêáÅçë=J=Anastrepha fraterculus (Wiedemann) y Ceratitis capitata (Wiedemann) (moscas de la fruta)

Foto 16. Huevos de mosca del Mediterráneo.

Foto 17. Larva de mosca del Mediterráneo.

Foto 18. Pupas de mosca del Mediterráneo.

Foto 19. Hembra de mosca del Mediterráneo.

17

19

16

18


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Foto 20. Macho de mosca del Mediterráneo.

Foto 21. Hembra de mosca sudamericana.

Foto 22. Macho de mosca sudamericana.

Foto 23. Huevos de mosca sudamericana.

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23

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Foto 24. Larva del último estadío de mosca sudameri-cana.

Foto 25. Pupas de mosca sudamericana.

Foto 26. Trampa Jackson cebada con Trimedlure.

Foto 27. Trampa McPhail cebada con Torula (proteína).

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27

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26



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Å~é∞íìäç=P=J=Å∞íêáÅçë=J=Aleurocanthus woglumi Ashby (mosca negra)

Foto 28 a y b. Presencia de fumagina posterior al ataquede mosca negra de los cítricos.

Foto 29. Adulto de mosca negra alimentándose de hojasde cítricos.

Foto 30. Ovoposición de adulto de mosca negra enforma espiralada.

Foto 31. Ovoposición de Crisópidos.

28a 28b

29

31

30


Å~é∞íìäç=Q=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J=Pseudococcus viburni (cochinilla harinosa)

Foto 32. Cochinilla harinosa sobre ramas de peral en elAlto Valle de Río Negro y Neuquén.

Foto 33. Colonia de P. viburni formada por huevos, nin-fas y adultos, en la zona carpelar de peras D’Anjou.

Foto 34. Hembra adulta de P. viburni en peral D’Anjou.

Foto 35. Ovisacos de P. viburni ubicados debajo de lacorteza en peral D’Anjou, prontos a eclosionar.

Foto 36. Ninfas móviles de primer estadío de P. viburni.

Foto 37. Machos adultos de P. viburni capturados entrampas de feromona

32 33

34 35

36 37


256

Foto 38. Cinta bifaz utilizada para el monitoreo de P. vi-burni.

Foto 39. Trampas de cartón corrugado utilizadas para lacaptura de larvas de carpocapsa y el monitoreo decochinillas harinosas. a) Colocación de la trampasobre el tronco; b) detalle del cartón mostrando quela parte acanalada debe quedar hacia el interior de lamisma.

Foto 40. Trampas de feromona sexual para el monitoreode P. viburni.

Foto 41. Evaluación de la eficacia del gas fosfina para elcontrol de huevos de P. viburni. Etapa de inyeccióndel gas en contenedores herméticos dentro de cáma-ras refrigeradas.

38

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39a 39b



43 4544

4746

Foto 42. a y b. Evaluación del efecto del frío sobre loshuevos de P. viburni. Etapa de infestación de frutoscon huevos de P. viburni.

Foto 43. Límite de detección de P. viburni mediante éÅê(Extraído de Vera et al., OMNO).

Foto 44. Adulto de Acerophagus griseus (Hymenoptera:Encyrtidae), parasitoide de P. viburni.

Foto 45. Adulto de Leucopis (Xenoleucopis) cilifemur Ma-lloch (NVPP) (Diptera: Chamameyiidae), cuyas larvasse alimentan de huevos de P. viburni.

Foto 46. Adulto de Chrysoperla externa (Neuroptera:Chrysopidae).

Foto 47. Liberación de huevos de C. externa en frutalesasperjados con suplementos alimenticios.

42a 42b



258

Å~é∞íìäç=Q=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J=Cydia pomonella (L.) (gusano de la pera y la manzana o carpocapsa)

48

Foto 48. Huevo de carpocapsa en distintos estadios dedesarrollo: a) huevo recién puesto, b) huevo en au-reola roja, c) huevo en cabeza negra y d) huevo eclo-sionado.

Foto 49. a) Larva de primer estadio de carpocapsa (Omm de lago) y b) larva de quinto estadio de carpo-capsa (NQJNU mm de largo).

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a b

c d

a b



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Foto 50. Larvas de R⁄ estadio de hembra (arriba) ymacho (abajo). Con flecha se señalan los testículosen la larva macho.

Foto 51. Pupa de carpocapsa, a) vista anterior y b) vistaposterior.

Foto 52. Extremo abdominal de las pupas hembra (iz-quierda) y macho (derecha).

Foto 53. Adulto de carpocapsa.

Foto 54. Alas de adultos de hembra (arriba) y macho(abajo).

Foto 55. Extremo abdominal de la hembra adulta, deta-lle de los genitales.

ba


260

56 57


Foto 56. Extremo abdominal de los adultos de macho(izquierda) y hembra (derecha).

Foto 57. Estudios en laboratorio para determinar lacompatibilidad de insecticidas para el control de car-pocapsa y de M. ridibundus.

Foto 58. Liberaciones confinadas de M. ridibundus y A.quadridendata para evaluar su desempeño.

Foto 59. Liberaciones inoculativas de M. ridibundus y A.

quadridendata en montes de pomáceas sin uso de insecti-cidas.

Foto 60. Trichogramma sp. parasitando un huevo de C.pomonella.

Foto 61. Huevo de C. pomonella parasitado por Tricho-gramma sp., donde se observa el orificio de salida delparasitoide.

Foto 62. Dispositivos empleados para las liberacionesinundativas de T. nerudai a nivel nacional.

60 6261

58 59


Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòç=J=Plum pox virus (sharka)

Foto 63. Síntomas de la enfermedad del sharka en hojasde ciruelo japonés (der.) y europeo (izq.).

Foto 64. Síntomas de sharka en ciruelos Red Beaut.

Foto 65. Protuberancias y depresiones circulares sobrela superficie de frutos de damasco.

Foto 66. Manchas circulares claras en los carozos de da-masco.

Foto 67. Síntomas de la enfermedad del sharka en hojasde duraznero ÖÑ=PMR.

Foto 68. Síntomas de la enfermedad del sharka en frutosde duraznos.

Foto 69. Síntomas de la enfermedad del sharka en floresde durazneros.

Foto 70. Síntomas del ééî en la indicadora ÖÑ=PMR.

6463

66 6765

69 7068


262

Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòç=J=Monilinia fructicola (Winter) Honey (podredumbre morena)

Foto 71. Flores afectadas por Monilinia spp.

Foto 72. Brotes y ramitas afectados por Monilinia spp.

Foto 73. Durazno con podredumbre morena.

Foto 74. Duraznos afectados por Monilinia spp. adheri-dos a la planta.

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Foto 75. Hoja de ciruelo con síntoma de escaldaduracausada por X. fastidiosa.

Å~é∞íìäç=R=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=Å~êçòç=J=Xylella fastidiosa Wells et al. (escaldadura de las hojas del ciruelo)

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264

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77 7876

Foto 76. Lesiones de mancha negra en hojas de limón.

Foto 77. Síntoma típico de mancha negra en naranjas.

Foto 78. Producción de picnidiosporas a partir de sínto-mas de mancha negra.

Foto 79. Síntoma de falsa melanosis o moteados mezcla-dos con síntomas típicos en limón.

Foto 80. Síntoma de mancha virulenta en fruta de na-ranja.

Foto 81. Síntoma de mancha rojiza en frutos de limón.

Foto 82. Síntoma de “constelación” alrededor del sín-toma típico de mancha negra.

Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J=Guignardia citricarpa (Kiely) (mancha negra de los cítricos)


Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J=Xanthomonas axonopodis pv. citri (Hasse) Vaut (cancrosis de los cítricos)

Foto 83. Síntoma de cancrosis en hojas con halo amari-llento.

Foto 84. Cancro de aspecto crateriforme en frutas cítricas.

Foto 85. Dispersión de cancrosis en la copa o a través dela lluvia.

Foto 86. Conrtinas rompevientos para prevenir disemi-nación de cancrosis.

Foto 87. Síntomas de cancrosis asociados al minador.

Foto 88. Desarrollo de X. axonopodis pv. citri en mediode cultivo semiselectivo. a) testigo, se observan enmayor cantidad colonias amarillas típicas de la bac-teria. b) luego de un tratamiento se observa desarro-llo de colonias de la bacteria (control negativo). c)luego del tratamiento no se observan las coloniasbacterianas (control positivo).

Foto 89. Experiencia en el empaque del tratamiento decancrosis con el gas ozono disuelto en agua, en limones.

87 8886

89

84 8583

A

C


266

B

Foto 90. Psílido vector del ÜäÄ de los cítricos, Diapho-rina citri.

Foto 91. Murraya paniculata, hospedante alternativo deÜäÄ de los cítricos y del vector.

Foto 92. Síntoma de ÜäÄ en hojas: manchas irregularesy asimétricas y moteado difuso.

Foto 93. Hojas asimétricas, engrosamiento y aclaramientode nervaduras por ÜäÄ.

Foto 94. Síntomas iniciales de ÜäÄ en naranjos: amari-llamiento y escasa productividad.

Foto 95. Síntomas avanzados de ÜäÄ en naranjos.

Foto 96. Fruta deformada por presencia de ÜäÄ, conbandas de goma y sumamente ácida.

Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J=Huanglongbing (ÜäÄ) ex greening

94 9593

96

91 9290


Å~é∞íìäç=S=J=Å∞íêáÅçë=J=Huanglongbing (ÜäÄ) ex greening

101100

9997

Foto 97. Naranja afectada por ÜäÄ en comparación conuna fruta sana.

Foto 98. Naranjas con ÜäÄ mostrando inversión decolor al madurar.

Foto 99. Imagen satelital de Google de la primera de-tección de ÜäÄ en Argentina: Deseado, Dto. Gral.Belgrano, Misiones.

Foto 100. Huevos de D. citri.

Foto 101. Estado ninfal de D. citri.

Foto 102. Estado ninfal de D. citri.

102

98


268

Foto 103. Primeros síntomas visibles de fuego bacte-riano en flores de peral: ennegrecimiento y marchi-tamiento de los pedúnculos.

Foto 104. Brote afectado por E. amylovora.

Foto 105. Brote de manzano afectado con uno de lossíntomas típicos de la enfermedad: la forma de ca-yado de pastor.

Foto 106. Cancro en rama joven de peral producido porE. amylovora.

Foto 107. Vista interna del cancro en rama de peral pro-ducido por E. amylovora.

Foto 108. Rama de peral afectada por E. amylovora.

Å~é∞íìäç=T=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J=Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al. (tizón de fuego ó fuego bacteriano)

107 108

106

104 105103


Foto 109. Fruto afectado por E. amylovora, con gotas deexudado bacteriano, principal fuente de inóculo.

Foto 110. Frutos ennegrecidos afectados por E. amylovora.

Foto 111. Cancro en tronco de peral.

Foto 112. Peral afectado por E. amylovora. La variedadpor ser altamente sensible está seca, mientras que elportainjerto ha rebrotado.

Å~é∞íìäç=T=J=Ñêìí~äÉë=ÇÉ=éÉéáí~=J=Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al. (tizón de fuego ó fuego bacteriano)

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Foto 113. Plantación de banano con hojas secas porsigatoka.

Foto 114. Síntoma de sigatoka en hoja.

Foto 115. Dentro de las manchas se observan los cuer-pos fructíferos de M. fijiensis.

Å~é∞íìäç=U=J=Ä~å~åç=J=Mycosphaerella fijiensis Morelet (sigatoka negra)

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Foto 116. Parches violáceos en hojas que pueden exten-derse a toda la planta infectada.

Foto 117. Enrollamiento de hojas con aspecto seroso ycon protuberancias causadas por infección con fito-plasmas en vid.

Å~é∞íìäç=V=J=îáÇ=J=Fitoplasmas

116

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Foto 118. Brotes jóvenes de vid en zig-zag afectados porfitoplasmas. Nótese también hoja clorótica con as-pecto seroso.

Foto 119. Puntuaciones negras sobre el brote no lignifi-cado.


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Foto 120. Necrosis parcial del raquis y pérdida de bayaspor infección con fitoplasmas.


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Este libro se terminó de imprimir en el mes de julio de OMNR en

ErreGé & [email protected]

ISBN XXX-XXX-XXX-XXX-X

El cultivo del nogal en la Argentina, tiene su importancia, no solo por su producción sino también por el número de pequeños y medianos produc-tores que lo cultivan. Ocupa 15.850 ha en las que se obtiene una producción cercana a las 15.000 Tn., las cuales están distribuidas principalmente en las provincias de Catamarca, La Rioja, Mendoza, San Juan, Río Negro y Neuquén. En los valles patagónicos se ha transformado en una actividad productiva en claro proceso de expansión y desarrollo debido principalmente a sus mayores niveles de rentabilidad en relación a otras producciones frutícolas.

Los aspectos sanitarios más relevantes de este cultivo, se concentran en dos plagas claves: Carpocapsa y Polilla del algarrobo o nogal y algunas especies más en condiciones de almacenamiento. Sin embargo, temporadas más húmedas o zonas de mayor humedad (valle inferior y medio del río Negro) favorecen la aparición de bacteriosis del nogal constituyendo ésta, una enfermedad de importancia que afecta cuanti y cualitativamente la pro-ducción.

El presente trabajo pretende ser una herramienta de ayuda para profe-sionales, técnicos, estudiantes y productores en la identificación rápida y sencilla de las plagas que afectan al cultivo del nogal, como así también de sus enemigos naturales, como base para el diseño de planes sanitarios que garanticen la calidad, sanidad e inocuidad de este producto.

Esta publicación fue financiada por el proyecto PNFRU 1105071, y sus respectivos proyectos específicos junto al proyecto PATNOR 1281204:

PNFRU 1105071: Desarrollo de estrategias de intervención sistémicas que aseguren sanidad, inocuidad, competitividad y sustentabilidad de la pro-ducción frutícola argentina. Coordinador Dra. Liliana Cichón.

PNFRU 1105072: Generación y desarrollo de tecnologías para minimizar el riesgo de introducción de plagas cuarentenarias ausentes y asegurar el manejo eficiente de plagas cuarentenarias presente. Coordinador Dra. Mirta Rossini.

PNFRU 1105073: Generación y desarrollo de tecnología para la detección, seguimiento, predicción, prevención y control de vectores, plagas emer-gentes y/o limitantes de la producción frutícola argentina. Coordinador Lic. Gonzalo Segade.

PNFRU 1105074: Generación y desarrollo de estrategias de manejo sustentable (económico, social y ambiental) de plagas y organismos vectores. Coordinador Ing. Agr. MSc. Violeta Becerra.

PATNOR 1281204: Promoción del desarrollo en Valle Medio del Río Negro y Valle Medio del Río Colorado. Coordinador Ing. Agr. MSc. Walter Nievas.

plagas cuarentenarias final frutales

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