INYECCIONES Y VENOCLISIS

Cátedra de Cirugía y AnestesiologíaFacultad de Ciencias Veterinarias

Universidad Nacional del Nordeste

2016

Definición:Maniobras mediante las cuales administramos drogas o medicamentos por vía parenteral, valiéndonos de diferentes materiales, como ser jeringas y agujas.

Instrumental:

1) Jeringas: pueden ser de distintos materiales: vidrio, plástico, metal o mixtas. De los dos primeros elementos, existen jeringas descartables. La capacidad varía de 1 a 100 centímetros cúbicos (cc) o (ml). Por lo general, las descartables se esterilizan por rayos gamma u óxido de etileno.Las jeringas están constituidas por las siguientes partes:

a) Cilindro o cuerpo de bomba : Puede estar graduado generalmente en cc y en décimas de cc. Las jeringas de insulina están graduadas en UI (unidades internacionales). En la parte posterior hay un resalto, aletas o anillas para fijar los dedos índice y mayor con la finalidad de facilitar la presión realizada por el dedo pulgar sobre el embolo.

b) Embolo, vástago y pistón: pueden estar conformados por un solo material, como vidrio o plástico, para mejorar el efecto de bomba, debe tener el extremo anterior de goma, o metal y goma, siendo el vástago de plástico o metal.

c) Pico: es el lugar donde se acopla la aguja, puede ser de dos diámetros: fino o record y grueso o americano. El último es el más utilizado por su resistencia. Puede tener un dispositivo de engarce denominado “bayoneta” que evita el desacople accidental de la aguja. El pico, a su vez, puede ser concéntrico o excéntrico, facilitando este último la aplicación de inyecciones EV.

Existen jeringas de materiales combinados o mixtos, utilizadas para inyecciones en serie en el medio rural. Entre estas destacaremos las “Roux” y “Champion”. Poseen une camisa metálica, dentro de la cual hay un cilindro de vidrio o plástico formando el cuerpo de la bomba. El pico es metálico, generalmente intercambiable.Por el interior de la jeringa corre un vástago graduado. Un disco metálico se desplaza sobre el mismo, limitando la cantidad de líquido a inyectar.

Otro instrumento de similar aplicación es la jeringa o pistola automática, que tiene la ventaja de poseer un selector de dosificación que nos permite realizar inyecciones repetidas sin modificar la regulación para cada aplicación.

Jeringas plásticas descartables

Jereinga o pistola automatica

2) Agujas: está conformada por una punta, un cuerpo o tallo y un pabellón o cono. La punta es biselada, corta o larga. El bisel corto es apto para inyecciones endovenosas, en tanto que el bisel largo es para inyecciones intramusculares principalmente. El tallo tiene grosor y largo variable, y existen distintos sistemas de medida. El que utilizaremos consta de dos números: el primero indica la longitud en milímetros y el segundo indica el diámetro interno en décimas de milímetros. Ej: 50/10 significa 50 mm (5 cm) de longitud y 10 décimas de mm (1 mm) de diámetro.Otra escala en medida para el diámetro es en gauge: “G”

DIÁMETRO CODIGO0.5 mm 24 G0.6 mm 23 G0.7 mm 22 G0.8 mm 21 G0.9 mm 20 G1.1 mm 19 G1.2 mm 18 G

Agujas con diferentes tipos de puntas

El pabellón o cono sirve para acoplar la aguja al pico de la jeringa por lo tanto los hay finos y gruesos. Pueden tener grabada la medida de la aguja. Existen pabellones metálicos y de plástico de cono americano (descartables) protegidas por un capuchón.Otro elemento anexo que poseen las agujas metálicas es el mandril, un alambre con o sin mango, utilizado para guiar, impedir la obstrucción de la aguja y proteger el bisel.

Elección de la aguja:Depende de varios factores: la longitud estará dada por la profundidad o extensión de los tejidos a atravesar; y el diámetro depende de la viscosidad de los líquidos a inyectar o extraer, del volumen de líquido a inyectar, de la resistencia de los tejidos a su penetración, y en el caso de la EV interesa la luz de los vasos a punzar.

Escala gauge, código de color y diámetro en mm.

Técnica de ejecución de inyecciones:

Toma: las jeringas se sujetan por el cuerpo con los dedos índice, medio y pulgar. Las jeringas grandes también con el dedo anular. Este ultimo dedo y el meñique frenan el embolo.

Acople de la aguja: la misma se toma del pabellón insertándose en ella el pico de la jeringa. La esterilidad de estos elementos debe ser conservada en todo momento.

Carga: se efectúa de distintas maneras según se trate de un frasco ampolla o una ampolla.En el primer caso se desinfecta el tapón, se invierte el frasco y se sujeta con una mano. Se inserta la aguja acoplada a la jeringa, tomándola de la forma ya explicada con la otra mano. Luego se succiona traccionando el embolo mediante los dedos índice y anular, frenando el cuerpo de la jeringa con el pulgar, si se trata de una jeringa pequeña, o tomando la jeringa y el frasco con una mano y traccionando el embolo con la otra.En el caso de la ampolla se aspira desde el interior de la misma con la aguja montada, guardando la asepsia debida.

Purgado: se dirige la jeringa con la aguja acoplada hacia arriba, se aplican suaves golpes al cuerpo con la finalidad de desplazar las burbujas hacia el pico y se comprime el embolo hasta desalojar la totalidad del aire.

Preparación del lugar de inyección: debe efectuarse la tricotomía, previo a la ejecución de ciertas inyecciones como EV en pequeños animales, y epidurales, etc. Se realiza la antisepsia de la piel con algún antiséptico como alcohol, iodo o clorhexidina.

Punción: puede efectuarse con la aguja acoplada o no. El bisel de la aguja debe dirigirse hacia arriba para que no actúe como sacabocados.Las agujas muy largas se insertan desacopladas. Pudiendo guiarla mediante manos enguantadas estériles. Luego se adapta el pabellón al pico de la jeringa.En caso de realizar la inyección con jeringa y aguja acopladas se toma la jeringa de la manera antes explicada y se practica la punción.

Inyección: se toma el cuerpo de la jeringa entre los dedos índice y medio, presionando el embolo con el dedo pulgar. La otra mano puede colaborar en la sujeción del cuerpo de la jeringa.

Vías de aplicación:

Las más frecuentes son, de acuerdo a la velocidad de absorción en orden creciente: intradérmica, subcutánea, intramuscular, intraperitoneal, intraosea y endovenosa.

Vías de aplicación de inyecciones

Intradérmica: se utiliza en general para revelar estados de alergia o sensibilidad, por ejemplo, tuberculinización.Se inyectan pequeñas cantidades de líquido (0.1-0.5 cc).Puede ser necesaria la tricotomía de la región. Se hace un pliegue de piel fina, introduciendo la aguja acoplada con el bisel hacia arriba, casi paralela a la piel con un ángulo de 10° a 15°, y a lo largo del pliegue. Se nota resistencia a la inyección, formándose una pápula que no debe ser masajeada posteriormente.-Caninos y felinos: cara interna del muslo, pliegue de la babilla.Agujas:25G x 5/8” (16/5)-Equinos: tabla del cuello en su tercio posterior.Agujas: 25G, x 5/8” (16/5), 26G x ½” (13/0,45)-Bovinos: pliegue anocaudal, tabla del cuello.Agujas: 25G x 5/8” (16/5), 26G x ½” (13/0,45)

-Ovino: cara interna del muslo.Agujas: 26G x ½” (13/0,45), 27G x ½”(13/4)-Porcino: cara externa del pabellón auricular, cara interna del muslo.Agujas: 25G x 5/8” (16/5), 26G x ½” (13 x 0,45).-Aves barbillones.Agujas: 27G x ½” (13/4)

via intradermica

Subcutánea: son fáciles de efectuar, aun sin experiencia o en sujetos indóciles. Se eligen zonas donde la piel es mas móvil por el abundante tejido conjuntivo subcutáneo, alejada de elementos anatómicos importantes como vasos sanguíneos de gran calibre.Solo debe inyectarse sustancias no irritantes, isotónicas.Se hace un pliegue de piel, insertando la aguja perpendicular al mismo y próxima a la base. La aguja debe quedar libre y el líquido inyectarse con facilidad. Puede quedar una prominencia difusa según el volumen inyectado.La absorción se efectúa especialmente por vía linfática y, en parte, por vía sanguínea.-Caninos y felinos: dorso o parrilla costal.Agujas: 21G x 1”(25/8).-Equinos: tabla del cuello.Agujas: 21G x 1” (25/8); 20G x 11/4” (32/9)-Bovino: tabla del cuello, o por delante o por detrás de la escápula.21G x 1”(25/8) en inyecciones individuales.-Ovinos: si están esquilados se realiza como en bovinos, en caso contrario, en la cara interna del muslo o en el pliegue inguinal.Agujas: 21G x 1”(25/8)-Aves: en la nuca, bajo el ala y en el pecho.Agujas: 22G x 1 ¼”, (32/7), 23G x ¼” (25/6)

Via subcutánea o hipodermica

Intramuscular: Se aplican en grandes masas musculares alejadas de vasos y nervios importantes. Se pueden usar medicamentos del tipo de los mencionados en las inyecciones subcutáneas inclusive algo irritantes y oleosos.En grandes animales se efectúa con aguja desacoplada. Siempre se debe realizar la prueba de aspiración para comprobar si accidentalmente no se produjo una punción vascular.

-Caninos y felinos: cara posterior del muslo, en el tercio medio o superior. Debe efectuarse en los músculos semimembranoso o semitendinoso, y no entren éstos ya que si no se penetra la aponeurosis de estos músculos, sería similar a una inyección subcutánea. En caninos de musculatura prominente como pitt bulls o razas gigantes se puede elegir la región lumbar (músculo dorsal largo).Agujas: 21G x 1”(25/8) para gatos y perros pequeños21G x 1 ½”(40/8) perros grandes

-Equinos: tabla del cuello en el centro del triángulo conformado por el ligamento nucal, borde anterior de la escapula y el musculo braquiocefálico; en la región del pecho en equinos deportivos; región de la grupa en su parte más alta (límites formados por un triángulo por las siguientes estructuras anatómicas: sacro, tubérculo coxal e isquiático).Agujas: 20G x 11/2” (38/9); 19G x 11/2” (38/11); 18G x 1 ½” (38/12)

-Bovinos: centro de la grupa, nalga, tabla del cuello.(Tratar de evitar las masas musculares de mayor valor comercial).

Agujas: 20G x 11/2” (38/9); 19G x 11/2” (38/11); 18G x 1 ½” (38/12)

-Ovinos: cara interna del muslo.Agujas:21G x 1”(25/8); 18G x 1” (25/12).

-Porcinos: en la masa muscular comprendida entre oreja y hombro, cara posterior del muslo.Agujas: 19G x 11/2”(38/11); 18G x 1” o 11/2”(25 o 40/12).

-Aves: en la pechuga.Agujas: 21G x 1”(25/8)

Via intramuscular

Lugar de aplicación en equinos

Intraperitoneal: esta vía, si bien técnicamente es apta para cualquier especie, solamente es de práctica en caninos y felinos neonatos y animales de laboratorio..La vía de elección en estas especies es por el flanco, un área delimitada en craneal por el bazo, en caudal por la vejiga y en dorsal por la zona renal.Por ventral (recomendada para principiantes) debemos tomar como punto de referencia el ombligo, 2 a 4 cm a su alrededor. El área está limitada hacia craneal por el bazo y hacia caudal por la vejiga.Instrumental: agujas 21 G x 1” (25/8), pero varía según la densidad del líquido a inyectar.Técnica de aplicación:1) atravesar la piel2) desplazarla para no crear vías de continuidad (tunelización) y atravesar los tejidos hasta llegar a la cavidad peritoneal.Esto se verifica al cesar la resistencia al paso de la aguja.Velocidad de absorción: más rápida que las vías subcutánea e intramuscular, pero más lenta que la EV. Absorción: vasos linfáticos y sanguíneos.Líquidos a administrar: soluciones electrolíticas acuosas, isotónicas o hipertónicas. medicamentos: barbitúricos, antibióticos, sangre, etc.Esta vía es recomendada cuando no es factible utilizar las venas, ya sea por su tamaño o por su estado debido a reiteradas inyecciones EV

Accidentes y complicaciones: inyección intramuscular, dejar una vía de continuidad que favorecerá la salida de líquidos, punción de los órganos (hígado, vejiga, útero grávido, etc.), peritonitis.

Intraosea: El acceso intraóseo es ideal para pequeños cachorros, gatitos y algunos exóticos. El fémur, en la fosa trocantérica, es el espacio que comúnmente se usa, pero también se puede realizar en la cara craneal de la tibia, lo que es bien tolerado por las aves; en estos animales se usa una aguja 21G x 1” (25/8); 20G x 11/4” (32/9). Más comúnmente usada en mamíferos de menos de 0,5 kg, esta ruta es inicialmente empleada hasta conseguir una expansión intravascular que permita aplicar posteriormente un catéter intravenoso.

Maniobra: La aguja es aplicada en la fosa trocantérica del fémur o lateral a la cresta tibial. Después de la tricotomía y la asepsia del área se puede infiltrar con lidocaína la piel, el subcutáneo y depositar sobre el periostio. La aguja debe ser insertada rotándola, para que taladre el hueso. Es importante que la aguja sea acorde al tamaño del hueso para que la perforación en el espacio intraóseo sea lo más chica posible. Una aguja bien puesta debe estar firme y moverse junto con el hueso. El sitio de la inserción debe ser cubierto con ungüento antibiótico y vendaje estéril.Por esta ruta también podemos administrar drogas o fluidos como sangre entera y coloides.

Endovenosas: la técnica es más delicada, necesitándose una buena inmovilización del animal. Por esta vía, pueden inyectarse sustancias oleosas emulsionadas , irritantes o hipertónicas.Puede realizarse con la aguja acoplada o desacoplada.Se debe realizar la tricotomía y preparar la zona con algún antiséptico.Se presiona en proximal para ingurgitar la vena mediante la mano, dedo, lazo, banda de goma, etc.Se verifica la punción venosa por la salida franca de sangre a través de la aguja, o su entrada en la jeringa al succionar. Antes de inyectar se afloja la compresión y se realiza la descarga. Previo al retiro de la aguja, es necesario comprimir con algodón sobre la misma y seguir manteniendo la presión ya quitada la aguja, el tiempo necesario para evitar que la sangre extravasada forme hematomas.La administración en general debe ser lenta.

-Caninos: cefálica antibraquial, safena externa, yugular, marginal de la oreja, femoral y sublingual (esta última bajo anestesia).Agujas: 21G x 1” (25/8), 25G x 5/8” (16/5)

Vena Safena Externa en canino Vena sublingual en canino

-Felinos: cefálica antibraquial , safena interna y yugular.Agujas: 21G x 1” (25/8), 22G x 1 ¼”, (32/7), 23G x ¼” (25/6)-Equinos: yugular en su tercio medio y craneal (porque a ese nivel el musculo omohiodes separa yugular de la carótida), cefálica antibraquial y safena externa.Agujas: 20G x 11/2” (38/9); 19G x 11/2” (38/11); 18G x 1 ½” (38/12)

Vena yugular en equino Vena marginal de la oreja en cerdo

-Bovinos: yugular en el tercio medio y craneal, mamaria y safena externa.Agujas: 20G x 11/2” (38/9); 19G x 11/2” (38/11); 18G x 1 ½” (38/12)Para extracción de sangre puede emplearse el sangrador americano.

Con el mismo objetivo puede realizarse la punción de la vena coccígea media mediante jeringa y aguja 21G x 1”( 25/8.)-Ovinos: yugular externa, cefálica antibraquial y safena externa.Agujas: 21G x 1” (25/8)-Porcino: vena marginal de la oreja. Agujas21G x 1” (25/8) , vena cava craneal. Agujas: 21G x 2” (50/8)-Aves: vena axilar. Agujas: 21G x 1” (25/8), 22G x 1 ¼”, (32/7)

Intracardíaca: consiste en introducir un fármaco, soluciones isotónicas o sangre en las cavidades auriculares o ventriculares del corazón, por medio de una aguja. Indicaciones: paro cardíaco casi exclusivamente. Complicaciones: lesión de la arteria coronaria y hemorragia dentro del pericardio, o taponamiento. La probabilidad de complicaciones puede reducirse mediante el uso de una aguja de calibre estrecho. La inyección intracardiaca de drogas a ciegas no está recomendada durante la RCP o tórax cerrado, porque puede producir lesiones. Una inyección intracardíaca de adrenalina (epinefrina) sólo debe considerarse en el caso excepcional en que la vena sea inaccesible y si el paciente no fue intubado previamente.

VENOCLISIS

Técnica de colocación del catéter:

1) Preparación de la piel: Los animales enfermos no toleran una técnica inadecuada cuando se tratan con dispositivos permanentes, especialmente catéteres intravenosos. Excepto en situaciones de emergencia, la cateterización intravenosa debería realizarse cuidadosamente adhiriéndose estrictamente a una técnica estéril:

Rasurar el pelo en una zona amplia alrededor del área donde se va hacer la venopunción. Asegurarse de cortar el pelo suficientemente distal a la localización de la inserción de modo que la aguja no contacte con el pelo durante la maniobra.

Realizar la antisepsia de la zona mediante la utilización de una solución antiséptica estéril, para conseguir resultados óptimos la solución debe permanecer en contacto con la piel durante 2 a 3 minutos.

2) Incisión de la piel: La realización de una pequeña incisión pequeña y profunda en el sitio elegido para la venopunción con el ángulo biselado de una aguja intradérmica 25/8, ayuda a prevenir el desgaste de la punta del catéter, se debe recordar que estos elementos están diseñados para su uso en medicina humana y que las características de la piel en los animales son diferentes.

3) Venopunción: Se avanza la punta de la aguja con el catéter ensamblado en la zona cutánea a puncionar y proximalmente, paralelo al eje axial de la vena, a través del tejido celular subcutáneo hasta entrar en la vena. El bisel de la aguja debe estar orientado hacia arriba, una vez hecho esto, se sitúa la punta del catéter directamente sobre la vena y de forma superficial a ésta, y el eje del catéter se coloca lo mas paralelo posible al eje de la vena. El eje del catéter no puede contactar con el pelo de la extremidad distal, se angula el catéter en dirección a la vena y se introduce en su interior. El objetivo es enganchar la capa externa de la vena con la punta de la aguja, el flujo de sangre dentro de la cámara transparente confirma la venopunción. Posteriormente, mientras se mantiene fija la aguja se avanza el catéter sin la aguja proximalmente dentro de la luz

vascular, el catéter se avanza totalmente hasta que el conector quede a la altura de la incisión. Una vez completado este paso se retira completamente la aguja. En este momento, el ayudante puede comprimir ligeramente la vena sobre la punta del catéter colocado a fin de evitar el reflujo sanguíneo.A continuación se puede proceder de diferentes formas, según el uso que se le desee dar al catéter:

Conexión directa del pico de una jeringa para administrar drogas (por ej quimioterápicos)

Conexión directa de una guía de sueros (por ej fluidoterapia intraquirúrgica). En este caso es posible colocar posteriormente un tapón para conservar la vía.

Conexión de una válvula de tres vías. Colocación de diversos tipos de tapones, generalmente

cuando se desea dejar el catéter durante varios días.

2) Fijación del catéter: Es muy importante una buena fijación del catéter al miembro del animal para evitar desplazamientos o ruptura del mismo, trauma vascular o introducción de microorganismos.Existen diferentes técnicas para obtenerla que se enumeran a continuación:

Tela adhesiva: Se aplica una banda de tela adhesiva en forma circunferencial sobre el miembro, por debajo de la zona de entrada del catéter, de forma tal que el conector y el tapón descansen sobre la misma. Se cortan una o dos tiras de tela adhesiva, una con la cara del pegamento hacia arriba se pasa por debajo del conector y, envolviéndolo se pega sobre sí misma. El extremo libre de la tira se gira de forma tal que el pegamento quede hacia abajo y se aplica alrededor del miembro fijando el conector al mismo.

Tela adhesiva y adhesivo a base de cianocrilato:Se aplica una banda de tela adhesiva en forma circunferencial sobre el miembro, por debajo de la zona de entrada del catéter, de forma tal de que el conector y el tapón descansen sobre la misma. En la zona de contacto entre la tela adhesiva y el conector se colocan unas gotas del adhesivo instantáneo a base de cianocrilato, ejerciendo presión hasta que se seque. Se cubre todo con una tira de tela adhesiva.En ambos casos, sobre el punto de entrada del catéter al organismo se aplica unas gotas de solución antiséptica por ej

povidonaiodo. Se envuelven estos elementos con varias pasadas de tela adhesiva, dejando expuesto el tapón de goma en forma parcial. Para evitar que el animal arranque el catéter es conveniente aplicar un catéter tipo cambric que se removerá cada vez que sea necesario emplear el catéter.

5)Empleo de solución heparinizada: Para evitar que la sangre se coagule dentro del catéter se debe inyectar aproximadamente 0,5 ml de solución salina heparinizada antes y después de utilizarlo, o bien 3 o 4 veces al día si no se lo empleará con esta frecuencia. Esta se prepara diluyendo 2 UI de heparina por ml de solución salina.Para obtener una concentración de 5 UI por ml en un sachet de 500 ml se requieren 2500 UI. La heparina se presenta a una concentración de 5000 UI por ml. Por lo tanto será necesario incorporar al sache 0,5 ml de heparina.

6) Mantenimiento del catéter: Los catéteres deben ser revisados diariamente y deben ser retirados tan pronto como sea posible desde el punto de vista terapéutico. Se debe inspeccionar el lugar de inserción y la vena, palpar los linfonodulos regionales y evaluar la formación de edema en la extremidad.

7) Extracción: Un catéter de teflón colocado asépticamente y controlado correctamente puede permanecer viable hasta 96 horas, pasado este período deberá retirarse el catéter y cualquier evidencia de inflamación o trombosis de la vena es suficiente para insertar un nuevo catéter en una vena diferente y eliminar el anterior.Los catéteres serán irrigados con solución heparinizada 1 a 5 UI por ml después de cada administración de soluciones o medicamentos.Con respecto a los catéteres que no se utilizan deberán ser irrigados una vez por día con solución heparinizada 10 a 100 UI por ml.Debe evitarse la administración de volúmenes o concentraciones altas de heparina en gatos y perros pequeños ya que puede producir anticoagulación.Para evitar la contaminación, durante la fluidoterapia deben evitarse las desconexiones del catéter al equipo de administración. La administración de medicamentos se hará a través de del tapón de inyección del perfus.

8) Complicaciones: Se evitan con técnicas adecuadas de colocación y mantenimiento:

Extravasación:Se produce cuando la punta del catéter rompe la pared de la vena o se perfora la vena durante el proceso de inserción.Punzar las venas correctamente y lejos de las articulaciones. Limitar el movimiento de los catéteres localizados cerca de las articulaciones mediante la inmovilización del miembro con un vendaje o una tablilla.

Trombosis: Cualquier catéter que se deje en una vena por varias horas se cubre con una capa de fibrina que se fragmenta durante la retirada del catéter. La misma puede formar un émbolo y alcanzar los pulmones o bien incorporarse a la pared vascular. En los puntos de contacto entre la pared vascular y el catéter pueden formarse trombos más grandes. La probabilidad de que esto ocurra aumenta cuando la punta del catéter está desgastada.

Tromboflebitis: La tromboflebitis se caracteriza por trombosis e inflamación suficiente como para producir signos locales o regionales. Los signos incluyen: molestias, eritema de la piel, engrosamiento y trombosis del vaso en cuestión, secreción purulenta en el sitio de inyección. En casos más graves pueden aparecer signos sistémicos de inflamación: fiebre y leucocitosis.

Infección: Los signos son similares a la tromboflebitis pero pueden progresar a bacteriemia, endocarditis. Ante la sospecha de infección se debe retirar el catéter en forma inmediata. Previamente a la extracción se procederá a lavar la zona con solución antiséptica, limpiarla con alcohol y esperar que se seque. A continuación se lo extrae, se corta la punta con una hoja de bisturí estéril y se manda a cultivo.

Embolismo gaseoso: Se produce cuando el aire entra en el vaso proveniente del catéter o del equipo de administración. La administración de pequeñas cantidades de aire produce un embolismo pulmonar sin signos clínicos y se adsorben. Cantidades mayores de aire pueden producir distrés respiratorio y edema pulmonar. Grandes bolos de aire originan un atrapamiento aéreo en el tracto de salida del ventrículo derecho causando un cese

inmediato de la circulación. Es importante para prevenir la embolia gaseosa: evitar la entrada de aire en la tubuladura cuando se inyectan soluciones; no hacer ingresar aire en los sache de soluciones. En caso de que se advierta la presencia de aire dentro de la tubuladura se debe aspirar en forma inmediata con una jeringa.

Separación del tubo de teflón del conector: Este tipo de complicación puede ocurrir fundamentalmente por dos causas, ambas evitables.La primera es por mordedura del conector y del tapón por parte del paciente. La correcta protección de la zona y el estricto control por parte del propietario suelen ser suficientes. Sin embargo, pueden implementarse otros medios, como los collares isabelinos, en caso de considerárselo necesario.La segunda es por defectos de fabricación del catéter, siendo la calidad del producto un punto muy importante a tener en cuenta. De presentarse un accidente de este tipo lo ideal es poder rastrear radiológicamente la ubicación del tubo perdido para poder extraerlo en forma quirúrgica, ya que de otra forma resulta casi imposible conocer su localización.

CANALIZACION VENOSA:

Es el acceso a un vaso mediante un abordaje quirúrgico, para lo cual se tratan de elegir los vasos de mayor calibre y periféricos. Esta maniobra está indicada, cuando el paciente se presenta en estado de shock hipovolemico o con vasoconstricción periférica marcada; situaciones en la que los vasos se encuentren colapsados. Para su realización se deben seguir los siguientes pasos:-Preparación de la zona, de la forma mencionada para la colocación de catéteres endovenosos.-Infiltración de la piel con anestésicos locales.-Incisión de la piel, divulsión del Tejido subcutáneo.-Disección y exteriorización del vaso. (Figura Nº 1)-Realización de una ligadura en el extremo distal del vaso.-Colocación del catéter a través del vaso, en dirección proximal; y ligadura del vaso junto al catéter (Figura Nº2)-Protección de la herida mediante un vendaje.

Figura Nº 1

Figura Nº 2

BIBLIOGRAFIA

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