CUESTIONARIO 1

TEMA: ECOLOGIA ACUATICA

1.- ¿Que debes entender por ecología?

La ecología, también llamada “biología de los ecosistemas”, es una ciencia cuyo objeto de estudio son las relaciones entre los organismos y su medio ambiente.Esta palabra ecología fue definida por primera vez por el biólogo ERNEST HECKEL la cual definía como la ciencia que estudia la economía de los animales y de plantas.

2.- ¿Define los alcances del término ecosistema?

Un sistema formado por individuos de muchas especies, en el seno de un ambiente de características definidas e implicado un proceso dinámico e incesante de interacción, ajuste y regulación, expresable bien como una consecuencia de nacimientos y muertes, bien como intercambio de materia y energía, uno de cuyos resultados es la evolución a nivel de especie y la sucesión a nivel de sistema completo.

3.- ¿Define los términos Biocenosis, habitad, Biotopo?

BIOCENOSISUna biocenosis (también llamada comunidad biótica, ecológica o simplemente comunidad) es el conjunto de organismos de todas las especies que coexisten en un espacio definido llamado biotopo que ofrece las condiciones ambientales necesarias para su supervivencia.

HABITATEs el ambiente que ocupa una población biológica. Es el espacio que reúne las condiciones adecuadas para que la especie pueda residir y reproducirse, perpetuando su presencia.

BIOTOPO (De BIOS, "vida" y topos, "lugar"), en biología y ecología, es un área de condiciones ambientales uniformes que provee espacio vital a un conjunto de flora y fauna.

4.- Da los valores de:1) 100.1 = 1.259 6) 91.5 = 27

2) 102 = 100 7) 7- 1 = 1/7 = 0.142857

3) 26 = 64 8) 3- 2 = 1/9 = 0.111111

4) 40 = 1 9) 4- 0.5 = 1/2 = 0.5

5) 41/2 = 2 10) 41.5 = 8

5.- Determine la media, el modo, mediana, varianza, desviación Standard y error Standard de la distribución que se muestra. Grafica cada uno de estos indicadores en relación con la longitud.

Long. (mm) (x) 5 6 7 8 9

Frec. (y) 1 2 4 2 1

o Media:

x=5 (1 )+7 (4 )+8 (2 )+9(1)

1+2+4+2+1=7

o Modo : Es 7 pues es el que más se repite(4 veces)

o Mediana: Es 7 pues es el numero al centro

o Varianza:

SX

2 =∑i=1

n

(x12−x2 )n

SX2 =

(52+62+62+72+72+72+72+82+82+92 )−72

10=45.3

o Desviación estándar

√s2=√∑i=1

n

(x12−x2 )n

√s2=√ 45310

=6.73

o Error estándar

θx=θ

√n=6.73

√10=2.13

o Grafica ( frec vs Long)

5 6 7 8 90

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

4

6.- Proporcione ejemplos de Ecología Aplicada.

Antología: Estudio de las relaciones de una sola especie con el medio en que vive. Sinecología: Estudio de las relaciones de las especies pertenecientes a un mismo

grupo con el medio en que viven. Dinámica de Población: Modificaciones y causas de la abundancia de especies en un

mismo medio. Conservación de la naturaleza. Mantenimiento del equilibrio biológico.

7.- Calcula N en:ln N - ln Na=−z (t−ta)

lnNNa

=−z (t−t a)

NN a

=e−z (t−t a)

N=N a . e− z(t−ta)

8.- Dar los valores de X en las siguientes ecuaciones.

a) ex= 103 b) Exp (x) = 10-0.1

Ln ex = Ln 103 ex = 10-0.1

x = Ln 103 Ln ex = Ln 10-0.1

x = 3Ln 103 x = - 0.1 Ln10x = 6.907 x = -0.23

c) 10x = 43 d) ex = Log107.3 Log10x = Log 43 Lnex = Ln Log 7.3

X = 3Log (4) x = Ln 0.863 X = 1.806 x = -0.15

e) ex = Log2 7.3

Lnex = Ln Log2 (7.3) X = Ln Log2 (7.3)

X = Ln 2.9 X = 1.05357

9.- Calcule dydx de las funciones

y = 3 + 5x y = e-2x

dydx

=5 dydx

=−2e−2x

10.- Utilizando la 1a y 2a derivada busque eventuales puntos de Máximo, mínimo e inflexión y de intervalos donde la función es creciente y decreciente (considere solo valores positivos de X y Y)

Y = (x - 1)2

Y’=2(x-1) Y’’=2

2>0 Mínimo relativo, punto de inflexión (1,0)

p.c= [1]

Intervalo Signo de f(x) Conclusiones

<-,1> - f Es decreciente

<1,+ > + f Es creciente

CUESTIONARIO 2

TEMA: IMPORTANCIA ECOLOGICA DEL DOSAJE DEL OXIGENO

1.- ¿Qué importancia tiene la determinación del oxígeno en los estudios de la ecología acuática?

La determinación del oxígeno disuelto en el agua de mar es importante en los estudios de la oxidación de la descomposición de la materia orgánica, para establecer la relación entre el contenido de nutrientes y la depleción del oxígeno consumido (sin respiración) o producido (en fotosíntesis); en los procesos de circulación y mezcla de los océanos, etc.

2.- ¿Qué métodos existen para determinar el contenido de oxígeno disuelto en el agua?

El método más común para la determinación del oxígeno disuelto, es el de WINKLER, el cual ha sido revisado recientemente por CARRIT Y CARPENTER (1966).

Asimismo el método de Winkler no da buenos resultados cuando el mar contiene grandes cantidades de materia orgánica. SHOLANDER, VAN DAM, CLAFF Y XANWISHER (1955) han descrito métodos micro gasométrico para la determinación del oxígeno disuelto y del nitrógeno, los cuales no son afectados por gran cantidad de materia orgánica, además se requiere solamente de un mililitro de muestra. El método parece tener una exactitud de +-1 al 2%.

3.- ¿Cuál es el fundamento de las reacciones que tienen lugar en la determinación del oxígeno?

Fundamento.-

Requiere que la muestra sea tratada con una solución alcalina de sal manganosa, al mismo tiempo que se la protege del aire para evitar la oxidación. Al principio se forma un precipitado blanco de hidróxido manganoso.

Mn++ + 2 OH- _________Mn (OH)2

Este precipitado en presencia del oxígeno disuelto toma un color marrón y reacciona con el hidróxido manganoso, transformándose en hidróxido mangánico.

2Mn(OH)2 + ½ O2 +H2O_______ 2Mn (OH)3

Cuando ésta solución es acidulada en exceso en presencia de un yoduro, el yodo es liberado en una cantidad de oxígeno disuelto en la muestra:

2MN(OH)3 + 6H+ + 3I- _____________ 2Mn++ + I3- + 6H2O

el yodo liberado es titulado con una solución valorada de tiosulfato de sodio:

I3- + 2S2O3

- ___________ 3I- + S4O6

4.- ¿Qué equipos y aparatos son necesarios para determinar el contenido de oxígeno en el agua?

Los equipos y aparatos necesarios son:

1.-Botellas de 50m de capacidad.

2.-Frascos erlemeyer de 125 ml.

3.-Micro-bureta automática de 10.0 ml ,graduad en unidades de0.01 ml.

4.-Pipeta volumétrica de 10.0 ml.

5.-Pipetas automáticas de 1.0 ml.

6.-Agitador magnético con sus respectivos imanes recubiertos de material plástico.

5.-Explique como se preparó la solución de hidróxido de sodio-yoduro de sodio, el ácido sulfúrico 10N y la solución del indicador.

Solución de hidróxido de sodio-yoduro de sodio.-Se pesan 320 grs de NaOH y 600 grs de INa se disuelve en agua destilada por separado, luego se mezcla y se diluye a 1 litro. Para el guardado se usará botella oscura y con tapón de jebe. Las tapas de vidrio no son recomendables por la formación de un cello de carbonato del causticó con el CO2 ambiental.

Ácido sulfúrico (III).-Se prepara H2SO4 10N (280 ml del H2SO4 concentrado/L) libre de compuestos de nitrógeno. La mayoría de ácido sulfúrico usado ordinariamente en los laboratorios contiene trazas de óxidos de nitrógeno .Estas sustancias pueden estar

presentes como impurezas y causar concentraciones demasiado altas para el oxígeno debido a la liberación de yodo por los óxidos del nitrógeno.

Solución indicador de almidón.-Se pesa 3.0 grs de almidón soluble y se disuelven en 100ml de glicerina. Luego se calienta a 190ºC hasta que la solución llegue a ser transparente. Después se enfría a la temperatura del laboratorio, si desarrolla turbidez no debe ser tomada en cuenta, porque no interfiere en la eficiencia del indicador. Si la solución mostrara gel con el tiempo, puede ser diluida con una pequeña cantidad de glicerina y recalentada a 190ºC.

6.-Detalle la forma como debe tomarse la muestra antes de determinar el contenido de oxígeno.

Para la toma de muestra se usa el método de CARRITT Y CARPENTER con ligeras modificaciones:

Toma de muestras y su almacenamiento: Botellas para la colección de muestras.-Cuando el contenido entero de la botella se usa para la titulación, la calibración se hace con una exactitud de 0.1 % del volumen de la botella. En este caso la calibración debe ser hecha por peso.

Colección y tratamiento de muestras.-La muestra debe ser tomada antes que otras muestras de la botella Hansen , usando tubo de jebe , evitando las burbujas de aire. Las botellas deben ser bien enjuagadas por lo menos con un volumen igual al de la botella. Posteriormente los reactivos deben ser agregados lo más rápido posible.

7.-Explique la importancia de los reactivos cloruro manganoso y la solución de tiosulfato de sodio.

La importancia de los reactivos cloruro manganoso y la solución de tiosulfato de sodio es que nos permiten determinar la coloración azul en la muestra y si no fuera así se puede deducir que en algunos de los reactivos existen sustancias oxidantes.

8.- Señale secuencialmente los pasos que incluyen el procedimiento que debe seguirse para la determinación del oxígeno.

Luego de haber tomado la muestra deben agregarse los reactivos lo más rápido posible en el siguiente orden:

1.-1ml de MnCl2 +4H2O.

2.-1ml de NaOH - NaI.

La pipeta automática que contiene cada reactivo debe tocar la superficie de la solución en el cuello de la botella. El reactivo se hundirá rápidamente.

3.-La botella se agita fuertemente dejándose que el precipitado se asiente. Luego se agita nuevamente.

4.-Cuando ha precipitado totalmente se agrega 1ml de H2SO4 (III) con pipeta automática y se agita fuertemente, hasta que el precipitado se disuelva.

9.-Esquematice los equipos y aparatos especiales que se usan durante el proceso.

10.-Presente la secuencia de las reacciones químicas que tienen lugar durante el proceso

(1ml) MnCl2 + 4H2O________ MnOH + HCl.

MnOH +HCl +NaOH-NaI ______ Na2OH + MnCl +H2O

Na2OH+MnCl+H2SO4____________HSO3 + HCl + O2 + NaMn

CUESTIONARIO 3

TEMA: MATERIALES DIDÁCTICOS PARA EL DESARROLLO DE LAS CIENCIAS DEL MAR

1.- cuales son los componentes de un ecosistema.

Factores bióticos y abióticos.

2.-define que significa: ecología, ecología marina, ecología fluvial, ecología lacustre.

Ecología: es la especialidad científica centrada en el estudio y análisis del vínculo que surge entre los seres vivos y el entorno que los rodea, entendido como la combinación de los factores abióticos (entre los cuales se puede mencionar al clima y a la geología) y los factores bióticos (organismos que comparten el hábitat). La ecología analiza también la distribución y la cantidad de organismos vivos como resultado de la citada relación.

Ecología Marina: En un principio, Haeckel entendía por ecología a la ciencia que estudia las relaciones de los seres vivos con su ambiente, pero más tarde amplió esta definición al estudio de las características del medio, que también incluye el transporte de materia y energía y su transformación por las comunidades biológicas. Entendemos por ecología marina las relaciones que se

establecen entre los individuos que habitan el mar y el hábitat que los rodea, en este caso, el agua salada. La esencia de la ecología marina se encuentra en la infinidad de mecanismos abióticos y bióticos e interrelaciones implicadas en el movimiento de energía y nutrientes, que regulan la estructura y la dinámica de la población y de la comunidad. Como muchos de los campos de la biología contemporánea, la ecología marina es multidisciplinaria y su campo es casi ilimitado.

Ecología Fluvial: Esta intensa utilización del agua ha dejado profundas huellas en nuestros ríos, en forma de presas, canales, molinos, escolleras (muro de piedras o de hormigón)… y otras infraestructuras pasadas y modernas. Las características de un cauce fluvial están íntimamente relacionadas con el territorio que lo rodea, por lo que para su gestión y estudio se utiliza el concepto de cuenca hidrográfica: Área de aguas superficiales o subterráneas que vierten a una red hidrográfica natural con uno o varios cauces naturales, de caudal continuo o intermitente, que confluyen en un curso mayor que, a su vez, puede desembocar en un río principal, en un depósito natural de aguas, en un pantano o bien directamente en el mar. En muchas ocasiones las alteraciones más graves de un río tienen su origen en actividades que se desarrollan en sus laderas: deforestación, utilización de fertilizantes, etc.

Ecología Lacustre: La noción de lacustre se utiliza en la ecología, la geografía y laictiología, siempre con referencia al ambiente de un lago. Para entender el concepto, por lo tanto, lo más importante es saber qué es un lago.Del latín lacus, un lago es una masa permanente de agua que se encuentra depositada en depresiones de un terreno. Puede tratarse de un cuerpo de agua dulce o salada, con aguas que proceden de los ríos o del afloramiento de aguas freáticas.

3.- ¿qué significa el termino biocenosis en ecología?

Se define como una comunidad de seres vivos que se condicionan mutuamente, se mantienen en estado de equilibrio móvil por la reproducción propia y solo depende del ambiente exterior inanimado; pero no, o solamente de una sola manera no esencial , del ambiente exterior vivo, conjunto de seres vivos que comparten una región en equilibrio biológico.

4.- cuales son las partes del método científico que se usa en las investigaciones ecológicas.

OBSERVACION, RECOLECCION DE DATOS, HIPOTESIS, EXPERIMENTACION, RESPUESTA AL PROBLEMA

5.-cuales son las etapas en la experimentación en la investigación ecológica.

OBJETIVO , MATERIALES, PROCEDIMIENTO, EXPERIMENTACION, RESULTADOS, CONCLUCION

6.- a) cual es la cantidad de materia orgánica que produce un ambiente acuático que contiene organismos foto sintetizadores. Si la

cantidad de oxigeno en el ambiente acuático es de 5mg/dm3 en 5h de iluminación.

1272gC________ 4928gO

P1 ________ 5mg/dm3H

→ P1 =1291mg/m3H

b) cuales son las sustancias que necesitan las células foto sintetizadoras para producir materia orgánica en presencia de energía luminosa.

C, H, O, N, P

7.- cuantas moléculas de oxigeno se producen cuando se produce una molécula gramo de protoplasma en un ambiente acuático.

Mol O2 106CO2 +90H2O +16NO3+ 1PO4

1 MOL DE PROTOPLASMA + 154 O+210 O+ 90 O +48 O+ 4 O = 354 átomos de O

−46308

→ 308/2 =154 O2

8.- que es producción y que es productividad, ponga ejemplos

PRODUCTIVIDAD: es la producción de un sistema en un intervalo de tiempo que se toma como unidad

PRODUCCION: no depende del factor tiempo como la productividad

Ej.: la productividad de un ecosistema en un nivel trófico determinado es la cantidad de energía que se almacena en forma de materia orgánica en dicho nivel trófico del ecosistema en un intervalo de tiempo. En cambio producción de este nivel trófico en un instante fijo es la materia orgánica presente en ese instante, es decir la biomasa.

9.- cuales la composición química del protoplasma y como se determina su peso molecular.

Protoplasma (composición química)

106C +180H+46 O +16N+ 1P +815 de cenizas = 3258g

10.- integre la productividad orgánica de una columna de agua de un metro cuadrado de superficie y una profundidad de 5 m si la productividad después de 1h de iluminación.

Profundidad (m) Productividadorgánica mg/dm3H

PRODUCTIVIDAD DE O2( mgC /m2 ¿

1 5.1 12724928

∗5.1mgO

dm3H∗1m∗1H=1316mgC /m2

2 3.2 16523 2.0 15484 1.5 15485 0.5 645

TOTAL= 6709

→ P = 6709mgC/m2

11. explique cómo se puede evitar la competencia ecológica entre la población de lobos marinos y los pescadores que capturan ambas poblaciones los mismos tipos de peses.

Si se conserva la cantidad de lobos marinos y que los pescadores no capturen lo q los lobos comen, entonces la pesca será sostenible.

CUESTIONARIO 4

TEMA: PRODUCCIÓN Y PRODUCTIVIDAD PRIMARIA

1.- que debemos entender por producción y que por productividad.

PRODUCTIVIDAD: es la producción de un sistema en un intervalo de tiempo que se toma como unidad

PRODUCCION: no depende del factor tiempo como la productividad

2.- ¿Cómo se define la productividad primaria de un sistema y la productividad secundaria?

Productividad primaria de un ecosistema o básica: es una comunidad o parte de esta, es la velocidad a que es almacenada la energía por fotosíntesis o quimiosistesis de organismos productores, en forma de sustancias orgánicas susceptibles de ser utilizadas como material alimenticio

Productividad secundaria de un ecosistema: son las velocidades de almacenamiento de la energía en los niveles tróficos de los consumidores y desintegradores, y son cada vez menores en niveles sucesivos

3.- establezca la diferencia entre la productividad primaria bruta y neta.

productividad primaria bruta productividad primaria neta Asimilación total. Es la velocidad total de la

fotosíntesis, incluida la materia orgánica utilizada en la respiración durante durante el periodo de medición.

Asimilación neta. Es la velocidad de

almacenamiento de materia orgánica en los tejidos vegetales en exceso con respecto a la utilización respiratoria por parte de las plantas durante el periodo de medición

4.- como se mide la productividad primaria.

Las mediciones se hacen de forma indirecta, tal como.

La cantidad de sustancia producida. La cantidad de materia prima utilizada. La cantidad de producto secundario liberado.

5.- productividad primaria. Señale y describa los métodos para determinarla

a.- METODO DE LA COSECHA: se emplea cuando el consumo de los animales herbívoros no es cuantitativamente de importancia y el ritmo de producción va de cero, en el momento de la siembra, al máximo, en el momento de la cosecha.

b.- METODO DEL DOSAJE DE OXIGENO: dado que la mayoría de las clases de producción se traducen, en la naturaleza, en un nuevo protoplasma, una ecuación que expresa cuantitativamente la productividad es la siguiente:

1300000 cal. De energía radiante + 106CO2 +90H2O +16NO3+ 1PO4 + elementos minerales =13000cal. De energía potencial +154 O2 +1287000cal de energía calorífica dispersada.

c.- METODO DE CO2: Es recomendable para situaciones terrestres y consiste en medir las variaciones de CO2 en vez de variaciones de O2.

d.- METODO DE LA DESAPARICION DE MATERIAS PRIMAS: La productividad también puede medirse por la desaparición de materias primas minerales.

e.- METODO DEL EMPLEO DE MATERIALES RADIACTIVOS: este método emplea el C❑

14 y el P❑22 , y se ha usado para medir la productividad en los mares

tropicales del mundo, sobre todo por STEEMAN- NIELSEN (1952), fue el primero en desarrollar este método.

f.- METODO DE LA CLOLOFILA.- Se emplea para medir la productividad potencial primaria y se basa en las observaciones que demuestran que la productividad potencial primaria es proporcional a la cantidad de clorofila. Consiste en extraer el pigmento del material vegetal con acetona y averiguar la concentración de clorofila en un espectrofotómetro.

6.- cual es la ecuación que expresa cuantitativamente la producción de una molécula gramo de protoplasma.

3258g de protoplasma = 106C +180H+46 O +16N+ 1P +815g de cenizas

7.- explique el método de GARRDER Y GRAN para la estimación de la productividad primaria acuática a nivel del fitoplancton.

1.- PROCESO Y FUNDAMENTO: también llamado de las botellas claras y oscura, es como se vio en el método de dosaje de oxigeno.

El procedimiento de este método es: se llena una botella con agua conteniendo una concentración media de fitoplancton u otras unidades de producción y se suspende en el nivel del que procede el agua. Otra botella con una envoltura negra con el fin de excluir totalmente la luz, se coloca en una situación similar. En la botella clara se produce oxigeno por fotosíntesis. Una parte del mismo es utilizado en la respiración y el resto es dispersado. En la botella oscura, en cambio, no se produce oxigeno alguno, más bien se consume una parte del oxigeno contenido en el agua; por consiguiente, la suma del incremento de oxigeno de oxigeno en la botella clara con el consumo de oxigeno en la botella oscura es igual al total del oxigeno producido.

8.- si la producción de oxigeno es de 5mgO/dmH ¿cuál es la cantidad de carbono que ha sido acumulado por el protoplasma celular?

1272gC________ 4928gO

P1 ________ 5mg/dm3H

→ P1 =1291mg/m3H

9.- si la productividad es constante a todo lo largo de una columna de agua de mar de 1m2 de superficie ¿Cuál será la productividad en términos de carbono que se habrá acumulado en el protoplasma, si la producción de oxigeno, es de 3mgO/dmH hasta los 4m de profundidad y durante 2.5horas de iluminación?

1272gC________ 4928gO

P1 ________ 3mg/dm3H

→ P1 =774mg/m3H

→ PT =774mg/m3H*4m*2.5H

→ PT = 7.740mg/m2

10.- si la productividad primaria a nivel del fitoplancton ha sido de 782mgC/m- ¿cuál ha sido la producción de oxigeno disuelto en el agua en una columna de 5m de profundidad durante 4 h?

1272gC________ 4928gO

0.782mg/dm3 ________ x = 3mg/dm3H

11.- explique en qué consiste el método de la clorofila para la determinación de la productividad primaria potencial.

Se emplea para medir la productividad potencial primaria y se basa en las observaciones que demuestran que la productividad potencial primaria es proporcional a la cantidad de clorofila. Consiste en extraer el pigmento del material vegetal con acetona y averiguar la concentración de clorofila en un espectrofotómetro.

CUESTIONARIO 5

TEMA: AMBIENTE ACUATICO

1.- ¿Cómo divide el ambiente acuático PEARSE (1939)?

PEARSE elaboro la primera división del ambiente físico heterogéneo correspondiente a las aguas continentales, que distingue los cuerpos de aguas estancadas de los cuerpos de aguas corrientes, es decir, ambientes lenticos o léniticos y ambientes lóticos.

2.- Explique las características de la división del Ambiente Acuático que propuso MELLO LEITAO (1940).

Para MELLO LEITAO el limnociclo comprende dos ciclos menores, limnociclo y potamociclo, cada uno dividido en biocoros. En este criterio, se considera que los mares constituyen el biociclo marino o talociclo, dividido en superbiocoros, a su vez divididos en biocoros, estos son biotopos y estos en facies.

3.- BALECH (1954), ha propuesto un nuevo sistema de división del Ambiente Acuático. Detalle las características de estos ambientes.

BALECH establece una división zonal y otras geográficas, apoyándose en la división fisiográfica o geográfica de la tierra. Se prefiere no adoptar este tipo de sistematización, pues la realidad desafía ese intento de divisiones rigurosamente subordinadas.

4.- ¿Cómo definiría un Ambiente Acuático Lótico?

Se llaman aguas corrientes, aguas fluyentes, serie lotica, serie fluvial, potamociclo, reociclo. Del griego lotio: lavado, o de lotus, participio pasado de lavo: lavado, banado.

5.- Detalle las características de un Ambiente Acuático Léntico.

Son todos los cuerpos de agua cerrados, con un circuito metabólico que se cierra y se completa en si mismo, descontando la energía solar externa al sistema y los materiales haló genéticos, un cuerpo de agua estancada se autoabastece y no depende de sistemas vecinos y muchos menos del conjunto exterior vivo. A través del tiempo, un ambiente lentico evoluciona en una dirección determinada que lo lleva a transformarse en otro, cada vez menos profundo y más vegetado.

6.- ¿Cuáles son los factores más importantes de un Ambiente Acuático?

Los ambientes acuáticos proporcionan hábitats para una variedad de peces, aves acuáticas y otras especies de vida silvestre, incluyendo muchas especies raras y en peligro. En un ambiente acuático existen nitratos y fosfatos, debido al escurrimiento que se produce desde las tierras hasta los entornos acuáticos. Estos nutrimentos ayudan a sustentar la vida vegetal en las corrientes, lagos y estuarios, que a su vez sustentan la vida animal. En un ambiente acuático, los productores son las plantas acuáticas y las algas; los consumidores son las larvas de insectos, los gusanos, los peces y todo organismos que se alimenta de otras plantas y animales; los desintegradores son los hongos y las bacterias, que se encargan de descomponer la materia orgánica proveniente de residuos vegetales y animales y, las sustancia abióticas, que son compuestos de nitrógeno y fósforo principalmente, el oxigeno disuelto, el gas carbónico y demás elementos que, de acuerdo con sus proporciones estables hacen posible la vida en el agua.

7.- Como se divide el Bio ciclo denominado Talasociclo.

El BIO CICLO denominado TALASOCICLO se divide en súper biocoros, a su vez se divide en biocoros, estos en biotopos y estos en facies.

8.- Como se divide el Bio ciclo denominado Limnociclo.

El BIO CICLO denominado LIMNOCICLO comprende dos ciclos menores, limnociclo y potamociclo, cada uno dividido en biocoros.

9.-Describe el ambiente acuático costero.

La zona costera incluye varios ecosistemas por las producciones primarias netas por unidad de área, más altas del mundo entre ellos tenemos:

Estuarios.- Es el área costera parcialmente cerrada de agua dulce que se mezcla con la del agua salada de mar.

Delta.- Depósito constituido por los sedimentos transportados por los ríos. Charca o Aguazal.-Es una porción de tierra anegada durante todo o parte del año con agua salada (charca costera)o agua dulce (charca interior ) otras zonas tenemos a:

Los manglares de los marismas que contienen el flujo de las aguas estuaricas y de mar.

Arrecifes de coral (Zonas costeras de los cálidos mares tropicales)

Playas rocosas algunas costas tienen pendiente golpeadas por las Olas.

Playas barreras con pendiente suave a la orilla del agua. Dumas naturales, etc.

CUESTIONARIO 6

TEMA: LA INVESTIGACION

1.- ¿Cuántas son las etapas para realizar una investigación en Ecología?

La investigación recoge conocimientos o datos de fuentes primarias y los sistematiza para el logro de nuevos conocimientos. No es investigación confirmar o recopilar lo que ya es conocido o ha sido escrito o investigado por otros. La característica fundamental de la investigación es el descubrimiento de principios generales. Para realizar una investigación en ecología se necesita de cinco etapas que son: Observación, recolección de datos, hipótesis, experimentación y respuesta al Problema.

2.- ¿Cuáles son las etapas para la materialización de un plan de EXPERIMENTACIÒN en ecología?

Las etapas son:

Objetivo: Finalidad hacia la cual deben dirigirse los recursos y esfuerzos para dar cumplimiento a una misión. Es un propósito o meta a seguir.

Materiales: Son aquellos elementos q se utilizan para una experimentación. Procedimiento: Es el modo de ejecutar determinadas acciones, con una serie

común de pasos claramente definidos, que permiten realizar una ocupación o trabajo correctamente.

Resultados: Efecto o consecuencia de un hecho, después de emplear ciertos Procedimientos con los materiales necesarios.

Conclusión: Nos permite dar la respuesta sobre una materia después de previamente haberla discutido.

3.- Detalla las características de cada una de las etapas de la INVESTIGACION en ecología

Observación : Es aplicar atentamente los sentidos a un objeto o a un fenómeno, para estudiarlos tal como se presentan en realidad. La persona con actitud científica percibe esas mismas realidades y procura "observarlas" para tratar por ejemplo, de explicarse el cómo, el por qué de su naturaleza, y para identificar sus elementos constitutivos.Recolección de Datos: Es el proceso de recolección de información a fin de dar respuesta al problema o la hipótesis planteada.Hipótesis: Suposición que una persona hace, segùn los datos obtenidos anteriormente; para otros es una posible solución al problema; otros sustentan que la hipótesis no es más otra cosa que una relación entre las variables, y por último, hay quienes afirman que es un método de comprobación. La hipótesis es el eslabón necesario entre la teoría y la investigación que nos lleva al descubrimiento de nuevos hechos.Experimentación : Consiste en el estudio de un fenómeno, reproducido generalmente en un laboratorio, en las condiciones particulares de estudio que interesan, eliminando o introduciendo aquellas variables que puedan influir en él. Para un buena experimentación es necesario repetir el tema cuantas veces sea necesario.Discusión: Son varias informaciones que han sido dadas a conocer.Respuesta: Resulta de un proceso de investigación.

CUESTIONARIO 7

TEMA: PRODUCTIVIDAD PRIMARIA

Determinar la productividad primaria de un ambiente acuático de un metro cubico de agua que recibió luz visible desde las 6 a las 8 horas.

Horas luz Oxigeno Øtk SK ZK-ZK-1

6 a 7 1 258 17 a 8 1.5 387 18 a 9 2 516 19 a 10 3 774 110 a 11 4 1032 111 a 12 5 1291 112 a 13 4 1032 113 a 14 3 774 114 a 15 2 516 115 a 16 1.5 387 116 a 17 1 258 1

17 a 18 0 0 16325

p=632512

=527.083

P012=∫

0

12

Pdz

P012=P∫

0

12

dz

P012=527.083 (12−4 )=6325

mgC

m3

CUESTIONARIO 8

TEMA: RELACION LONGITUD ESCAMA – LONG PEZ

1.- A) determine la longitud del pez cuando formo anillos de crecimiento en las escamas. La longitud actual del paz de 88cm y de la escama es de 9mm, la longitud del pez en el momento de eclosionar el ictio- ovulo fue de 1.5mm.

Long de la escama Long del pezS1 6mm 58.17S2 6.8mm 66.13S3 7.0mm 68.11S4 7.1mm 89.10S5 7.12mm 69.30

L1=S1

S(Lt+a )−a

B) Determinar las tallas que tuvo el pez de la escama que se muestra, escama que corresponde a un pez 78cm y que tiene cinco anillos de crecimiento. La longitud al momento de nacer es de 1.7cm.

CUESTIONARIO 9

TEMA: RELACION LONGITUD PESO

1.- Determinar los parámetros de la ecuación que relaciona la longitud y el peso: Datos corresponde a la sardina:

Long(L) Peso(W) LogL LogW (LogL)2 LogL.LogW15.9 45.8 1.2014 1.6609 1.4434 1.995420.7 90.8 1.3159 1.9581 1.7316 2.576624.2 145.7 1.3838 2.1635 1.9149 2.993926.6 188 1.4249 2.2742 2.0303 3.240528.4 226.2 1.4533 2.3545 2.1121 3.421829.6 253.5 1.4713 2.4039 2.1647 3.536930.5 277.5 1.4843 2.4433 2.2031 3.626631.2 294 1.4942 2.4684 2.2326 3.688331.7 306.4 1.5011 2.4863 2.2533 3.7322

12.7302 20.2131 18.0860 30.9558

2.- Aplique el procedimiento de los cuadrados mínimos.

log K=∑ logW∗∑ ( logL )2−∑ log L∗∑ ( logL∗logW )

N∑ ( log L )2−(∑ logL )2

log K=20.2131∗18.0860−12.7302∗30.9558

9 (18.0860 )−(12.7320 )2

log K=−1.682

K=0.0207

X=∑ logW−(N logK )

∑ logL

X=20.2131−(9 (−1.682 ))

12.7293

X=2.77

→ W=K LX

W=0.0207 L2.77

3.- Con la ecuación Resultante determine que longitud tendrá un pez que tiene un peso de 25gr.

25=0.0207 (L )2.77

L=12.96 cm

4.- Con la misma ecuación determine que peso tendrá un pez que tiene una longitud 35cm.

W=0.0207 (35 )2.77

W=391.78g

CUESTIONARIO 10

TEMA: DETERMINACION DEL COEFICIENTE DE ALIMENTACION, COEFICIENTE DE DIGESTION Y CONSUMO ANUAL DEL ALIMENTO

1.-Determine el coeficiente de alimentación, los datos de la ración

diaria y la longitud del pez.

Long.

Del pez

(cm.)

10 20 30 40 50 60 70 80 90 100

Ración

diaria(Ø)0.53 2.1 4.8 8.5 13 19 28 34 43 53

USANDO LA ECUACIÓN:Wc = L3

L Wc Log L Log Wc

10 0.53 1 -0.27572

20 2.1 1.30103 0.32222

30 4.8 1.47712 0.68124

40 8.5 1.60206 0.92942

50 13 1.69897 1.11394

60 19 1.77815 1.27875

70 28 1.84509 1.44716

80 34 1.90309 1.53148

90 43 1.95424 1.63347

100 53 2.00000 1.72427

Log L = 16.558

Log L = 1.656

Log Wc= 10.383

Log Wc= 1.038

Y = Y b ( X - X )

logY = logY 3 ( log Wc – log Wc)

logY =1.656 3 ( log Wc – 1.038 )

logY = 1.656 + 3 log Wc – 3.114

logY = -1.458 + 3 log Wc

= antilog –1.458

= 0.0348

2. Determine el coeficiente de digestión diaria ( J ) y el consumo diario

del alimento

DETERMINANDO EL COEFICIENTE DE DIGESTION DIARIA

Longitud ( L ) Racion diaria ( ) Coeficiente de Asimilación ( J )

10 0.53 558

20 2.1 563.4

30 4.8 559.6

40 8.5 556.8

50 13 568.84

60 19 560.46

70 28 517.00

80 34 556.80

90 43 557.20

100 53 558.11

3.-Detertmine la cantidad de alimento que consume el Pez en el 2° año

y 3° año

Datos :

L : 110.8

K : 0.33

To : -0.77

W : 14 150

Hallando el coeficiente de ingestión (Ø ) y coeficiente de asimilación ( J )

Ø : 96.13

J : 166.806

Hallando la cantidad de alimento que consume el pez entre el segundo y tercer año.

2-3 :

Datos :L : 118.7 K : 0.269 m To : -0.87 W : 17 390

Hallando el coeficiente de ingestión (Ø) y coeficiente de asimilación ( J )

Ø : 96.17J : 155.842

CUESTIONARIO 11

TEMA: DIVERSIDAD ECOLOGICA

1) ¿que es y que representa la diversidad ecológica?

El índice de diversidad ecológica es la descripción cuantitativa de la comunidad, concretada a un instante de tiempo. Representa las relaciones entre las diferentes especies, pues una comunidad en que los números de individuos de las especies ordenadas de la manera dicha, decrecen con mucha rapidez es, al mismo tiempo una comunidad que cuenta con pocas especies.

2) ¿que regularidades se observan en los individuos de las especies que están presentes en un área?

Las regularidades observadas son que casi siempre el numero de especies crece continuamente a medida que el área se amplia.

3) ¿como es la relación entre el numero de especies identificadas y la superficie observada. Muestre un ejemplo y grafique tal relación?

La relación entre e l numero de especies y superficie, se da cuando la especie tiende a cierta regularidad, se puede sospechar la existencia de relaciones entre unas y otras especies cuya naturaleza tiene algo de común en los ecosistemas mas diversos. La regularidad podría ser valida no solo par ecosistemas, sino para sistemas en general, siempre que en ellos operen procesos de auto multiplicación y de selección y sean de tipo asimétrico, básicamente de explotación.

Ejemplo: se muestra el número de huevos por hembra, en varias especies de crustáceos decapados del mar negro.

Carcinusmediterraneus 357110

Eriphiaverrucosa 134452

Macropipusholsatus 9102

Macropipusarcuatus 9000

Pachygrapsusarcuatus 7729

Xanthoporessa 7654

Cragoncragon 2714

Palaemonadspersus 1206

Palaemonelegans 670

Diógenes pugilator 477

Hippolyte longirostris 209

Macropodiaaegyptia 186

Athanasnitescens 138

Pisidialongicornis 124

4) en el sistema de coordenadas grafique los dos tipos de distribución establezca diferencias.

Eje de las y

Y

Pi log 2 Pi

Eje de las x

X

Pi

Eje de las y

Y

Pi log 2 Pi

Eje de las x

X

Pi

-0.33 0.1 -0.528 0.4

-0.46 0.2 -0.522 0.3

-0.53 0.4 -0.464 0.2

-0.44 0.6 -0.332 0.1

-0.23 0.8

5) la diversidad como medida de organización. Explica como funciona

En la diversidad como medida de organización tiene una correspondencia entre las diversidades de las distintas taxosenocis que se pueden desglosar en jun ecosistema. La diversidad del fitoplancton y la de la del zooplancton y la de los peches pelagicos en un lugar determinado muestra relación positiva, hasta el punto que se puede decir sin exageración que la diversidad de los peces `pelagicos observada en un mercado local da una idea de la diversidad que es probable encontrar en el fitoplancton de las mismas aguas. esto se debe a que en la medida que estas diversidades parciales estén correlacionadas entre si sino también una expresión de la diversidad del ecosistema.

6) haz un comentario sobre la diversidad y la persistencia.

El ejemplo del plancton marino se presta a otra consideración, en el agua turbulenta la diversidad de muestras pequeñas es excesiva; si se dejaran en el mismo sitio por un tiempo, es indudable que la competencia entre especies conduciría la diversidad a valores más bajos. La conclusión es que las medidas instantáneas de divesidad posiblemente no tienen todas igual al valor, pues algunas corresponden a situaciones particularmente inestables que varían continuamente.

7) como explica la relación de la diversidad con la sucesión de las comunidades?

La diversidad de comunidades aumenta en el curso de la sucesión es indudablemente baja de comunidades pioneras o inestables y suele existir una expresión geográfica de la cual se interpreta como el efecto de una mayor estabilidad climática en los trópicos o de una distinta organización del ecosistema en nichos. Gradientes semejantes se pueden orientar d otra manera de acuerdo con peculiares propiedades del medio, como el plancton o las poblaciones de esteros, permanecen siempre con diversidad relativamente baja incluso climas constantes y tropicales.

8) determine el índice de diversidad de las especies que se muestran en el cuadro.

Especies F Pi Log2Pi Pi log2Pi

(i)

A.P 1195 0.366 -1.449 -0.530

M.R 291 0.089 -3.487 -0.310

A.M 429 0.131 -2.927 -0.383

S.B 300 0.091 -3.443 -0.313

L.R 227 0.069 -3.845 -0.256

A.I 188 0.057 -4.117 -0.234

L.M 182 0.055 -4.164 -0.229

M.I 177 0.054 -4.204 -0.227

A.E 151 0.046 -4.433 -0.203

A.A 123 0.037 -4.729 -0.174

3236 -2.868

D = -∑ Pi log 2Pi

D = -(-2.868)

D = 2.868

CUESTIONARIO 12

TEMA: TERMINOLOGIA

Forma de desarrollo:a) significado etimológico.b) Significado de desarrollo.c) Significado como jerga.d) Tipo de palabra gramatical.e) Ubicación geográfica.

1) Neuston :a) Del griego. Neustes: nadador.b) Comunidad errante, constituida por organismos vinculados a la película

superficial en la interfase agua-aire.2) Pleuston:

a) del griego. Pleustikos: apto par navegar.b) Es una comunidad formada esencialmente por vegetación microscópica

flotante, con parte de sus órganos sumergidos y en parte emergidos, con los organismos convivientes, acuáticos y semiacuaticos.

3) Bentos:a) del griego. Benthos: profundidad, fondo.b) Complejo de comunidades distintas, que comprenden organismos

vagantes, organismos sujetos o fijos, sobre la superficie del lecho debajo de piedras y en el sedimento mismo.

4) Perifiton: a) del griego. peri: alrededor y pitón: vegetal.b) Comunidad constituida por organismos que crecen se asientan y se

encuentran sobre un sustrato inanimado, organizado o vivo que no forma parte del complejo del bentos.

5) Bafon: a) del griego. Bafe: sumergido.b) Vegetación fanerogamica sumergida enteramente.

6) Plancton:a) del griego: planktos: errante.b) Comunidad errante formada por organismos microscópicos o diminutos

en suspensión en el agua con escaso o nulo poder de locomoción y cuyos movimientos se debe principalmente a los del medio líquido.

7) Necton:a) del griego: nektos: natátil, nadante.b) Comunidad errante formada por organismos que se desplazan

activamente en el agua por su propia capacidad de locomoción.8) Heteroplocon:

a) del griego: heteros: diferente. Y ploce: tejido entrelazado.b) Comunidad determinada esencialmente por un estrato algal en

suspensión, no arraigado o sujeto, con los organismos entrelazados, asentados o apoyados convivientes.

9) Plocon:a) del griego: place: tejido entrelazado.

b) Comunidad béntica constituida por lagas filamentosas adheridas al sustrato.

10) Pelon:a) del griego: pelos: limo, fango, arcilla.b) Comunidad de organismos bénticos que viven enterrados en el interior

del sustrato formado por material pelitico, con absoluto predominio animal.

11) Herpon:a) del griego: erpo: avanzar lentamente.b) Comunidad de organismos de organización errante sobre la superficie del

lecho.12) Psammon:

a) del griego: psamos: arena.b) Organismos microscópicos y litorales que habitan en el agua intersticial

entre los granos de sedimentos arenosos.13) Endobentos:

b) organismos fijos o localizados penetrando en el sustrato.

14) Rizobentos: a) del griego rhizoo:arraigar; y benthos: lo profundo del mar.

b) son las plantas arraigadas.15) Hidrostadiòn: a)stadion: denominación general de la vegetación macroscópica fija en el

fondo. b) Vegetación sumergida o flotante no se alza de la superficie.16) Heliostadiòn:

Cuando la vegetación es emergente o emergida

17) Zooplancton:

a) del griego: zoo: animal. Y planktos.b) Parte animal del placton.

18) Fitoplancton:

a) del griego: fito: vegetal. Y planktos. b) Conjunto de vegetales del planctoN

19) Ephaptomenon:a) del griego ephato: pegarse a algo. Y meno: permanecer.b) Son los organismos agnados o fijos.

20) Planomenon:a) del griego: planos: errante. Y meno: permanecer.c) Organismos errantes o vagantes.

21) Rhizomenon:

a)del griego rizhoo: arraigar y meno: permanecerb)Organismos radicantes, es decir, arraigados22) Infraneuston:

a)del latininfra: prefijo indicando debajo, abajo, y del griego neustes: nadador.

23) Epineuston:a)del griego epi: encima, sobre y neustes.

b)Se encuentran sobre la película superficial.24) Supraneuston:

Sinónimo de Epineuston.25) Hiponeuston: b)Organismos que cuelgan e)Se encuentra por debajo de la película superficial

IMARPE

Determinación de Fosfato Inorgánico

Rango (0,03 – 5,00 µM)

Precisión

Nivel bajo (0,2 µM) ±15%

Nivel medio (0,9 µM) ±5%

Nivel alto (2,8 µM) ±2%

Todos los métodos analíticos para determinar fosfato inorgánico en agua de mar se basan en la reacción de Denigés (1920) del fosfato con molibdato para formar un heteropoliácido cuya reducción posterior forma un complejo fosfomolibdato de color azul. El método que se describe a continuación fue propuesto por Strickland y Parsons (1968); en el cual el fosfato presente en el agua de mar es sometido a la reacción con hexamolibdato en medio ácido formando un complejo de ácido molibdofosfórico de color amarillo débil. En este complejo heteropoliácido el fósforo se encuentra en una relación de átomos de 1:12 con el molibdeno

6MoO42-

(ac) + 6H+

(ac) Mo6O216-

(ac) + 3H2O(l)

2Mo6O216-

(ac) + PO4

-3(ac) H3P(Mo12O40).H2O(l)

(heteropoliácido)

Al agregar el ácido ascórbico al medio, reduce dos de los átomos de molibdeno del ácido 12-molibdofosfórico al E.O.+5, permaneciendo los10 átomos restantes en el estado +6.

H3P(Mo12O40).H2O(l) + 2H+ + 2e - ác.ascórbico H3P(Mo12O38)(OH)2.H2O(l)

Sb3+ (azul intenso)

Esto determina la presencia de 2 electrones adicionales por molécula de complejo, los que permanecen deslocalizados, determinando con ello una coloración azul del heteropoliácido, cuya intensidad es proporcional a la concentración de fosfato y es medido espectrofotométricamente a 885 nm.

Solución de Molibdato de Amonio para Fosfato InorgánicoSe disuelve 15,0 g de paramolibdato de amonio (NH4)6Mo7O244H20 P.A. en 500 mL de agua destilada. Esta solución se guarda en botellas de polietileno protegida de la luz y es estable indefinidamente.

Solución de ácido sulfúricoSe agrega 140 mL de ácido sulfúrico concentrado P.A. (Pe 1.62) a 900 mL de agua destilada, luego se enfrié y se guarda en botella de vidrio.

Solución de ácido ascórbicoSe disuelve 94,5 g de ácido ascórbico P.A. en 500 mL de agua destilada. Esta solución se guarda en una botella de polietileno en el congelador. La solución es estable por muchos meses, pero no deberá guardarse a temperatura de laboratorio.

Solución de tartrato antimonil potásicoSe disuelve 0,34 g de tartrato antimonil potásico P.A. K(SbO)C4H4O61/2H2O en 250 mL de agua destilada (calentando sí es necesario). Se guarda en una botella de polietileno o de vidrio. La solución es estable por muchos meses.

Mezcla de Reactivos para Fosfato Inorgánico

Esta mezcla debe ser preparada diariamente para cada grupo de análisis, el cual no deberá guardarse por más de 6 horas, caso contrario deberá descartarse.

La mezcla de reactivos se prepara en un vaso de vidrio y las proporciones de sus componentes dependerán del número de muestras a analizar según el siguiente cuadro N°1:

Reactivos N° de Muestras analizadas15 20 25

Molibdato de amonio (mL) 7,5 10,0 12,5

Ácido sulfúrico (mL) 19,0 25,0 31,25

Ácido ascórbico (mL) 7,5 10,0 12,5

Tartrato antimonil potásico (mL)

4,0 5,0 6,25

Determinación de Nitratos

Rango (0,01 – 50,00 µM)

Precisión ±0,3 µM

El método descrito a continuación es el modificado por Strickland y Parsons (1968). Aquí el nitrato de agua de mar es reducido cuantitativamente a nitrito, cuando la muestra pasa a través de una columna que contiene gránulos de cadmio recubierto con cobre metálico.

El nitrito presente originalmente más el nitrato reducido, es determinado espectrofotométricamente, para ello son diazotados con sulfanilamida y acoplado con N-(1-naftil) etilendiamina para formar un compuesto azo fuertemente coloreado, cuya máxima absorbancia es medido a 543 nm.

La reducción del nitrato presente en la muestra de agua de mar con Cd, se lleva a cabo de acuerdo a la siguiente reacción:

NO3-(ac) + Cd°(s) + 2H+

(ac) NO2-(ac) + Cd+2

(ac) + H2O(l)

El resultado dependerá de pH de la solución, trabajando en medio excesivamente ácido determinará que la reducción prosiga a estados de oxidación más bajos que el nitrito. Por el contrario una solución alcalina excesiva determinará que la reducción a nitrito sea parcial. Es fácil demostrar que en medio ácido la influencia del pH en el resultado es excesiva, por cuanto el potencial estándar de oxido-reducción de la reacción:

NO3-(ac) + 2H+

(ac) + 2e- NO2-(ac) + H2O(l) (E° = 0.94 v)

Es casi igual al de la reacción:

NO3-(ac) + 4H+

(ac) + 3e- NO(g) + 2H2O(l) (E° = 0.97 v)

Siendo ambas reacciones competitivas entre sí. Contrariamente, una reacción que pueda ser llevada a cabo en medio neutro o alcalino tiene un potencial estándar de oxido - reducción mucho más bajo y significativamente diferente aquel requerido para generar productos alternativos al nitrito.

NO3-(ac) + H2O(l) + 2e- NO2(ac) + 2OH-

(ac) (E° = 0.015 v)

Si bien la reacción de reducción del nitrato con el Cd recubierto con cobre se produce en la forma cuantitativa deseada al utilizar un medio neutro o débilmente alcalino, los iones cadmio generados en el proceso tienden a reacción con los iones hidróxidos presentes formando un precipitado:

NO3-(ac) + Cd°(s) + H2O

(l) NO2-(ac) + Cd(OH)2(s)

Esto lleva a una desactivación de la columna por recubrimiento del metal activo con partículas de hidróxido de cadmio, haciendo necesario recurrir a un acomplejante apropiado para evitar este problema. Strickland y Parsons recomiendan la adición de cloruro de amonio concentrado a las muestras para tamponear el medio, compensando los dos iones hidróxidos producidos con la reducción.

NH4+

(ac) NH3 (ac) + H+(ac)

El cloruro de amonio tiene la ventaja de actuar también como agente acomplejante enlazando al ión Cd+2 en un complejo aminado:

Cd+2(ac) + 4NH3 (ac) Cd(NH3)4+2

(ac)

Por lo tanto la reducción en la columna procede de acuerdo a la reacción:

2NO3-(ac) + Cd°(s) + 4NH4

+(ac) 2NO2

-(ac) + Cd(NH3)4+2

(ac) + 2H2O(l)

Sulfanilamida (Reactivo )

Se pesa 5,0 g de sulfanilamida y se disuelve en una mezcla de 50 mL de HCl concentrado y 300 mL aproximadamente de agua destilada, luego se completa a 500 mL con agua destilada, la solución es estable por muchos meses.

N-(1-Naftil) - etilendiamina (Reactivo )

Se pesa 0,5 g del compuesto C10H7NHCH2CH2NH2.2HCl y se disuelve en 500 mL de agua destilada libre de nitritos. La solución será guardada en una botella ámbar y renovado cuando aparezca un color pardo fuerte.

Solución concentrada de NH4Cl

Se disuelve 175 g de NH4Cl Q.P. en 500 mL de agua destilada y se guarda en una botella de vidrio o polietileno.

Solución diluida de NH4Cl

Se diluye 50 mL de la solución concentrada de cloruro de amonio a 2000 mL con agua destilada, y se guarda en una botella de vidrio o plástico.

Ácido clorhídrico (HCl) al 1% (V/V)

Se pipetea 1 mL de ácido clorhídrico concentrado y se diluye a 100 mL con agua destilada, utilizando una fiola graduada

Solución de sulfato de cobre al 2 % (P/V)

Se disuelve 10,0 g de sulfato de cobre pentahidratado (CuSO45H2O) en 500 mL de agua destilada.

Solución estándar de Nitrato Se disuelve 1,02 g de nitrato de potasio (KNO3) Q.P., previamente secado a 110 °C por dos horas, en agua destilada y se diluye a 1 L usando una fiola graduada. La solución es estable en ausencia de evaporación.

Solución estándar de Nitrato Se diluye 1,0 mL de solución estándar a 1000 mL con agua destilada, esta solución deberá ser preparada inmediatamente antes de su uso.

μmol NO3−

mL sol=

1,02 g KNO3

1000 mL solx

1 mol KNO3

101,103 g KNO3

x1 mol NO

3−

1 mol KNO3

x106 μmol NO

3−

1 mol NO3−

CST Ι=10,0 μmol/L

CSTΙΙ10 μmol/LmL

x1 mL1000 mL

x103 mL1L

CSTΙΙ=10,0 μmoL NO3− /L

Cadmio recubierto con cobre

Se requiere aproximadamente 35,0 g de cadmio granulado por cada columna reductora. El cadmio granulado debe ser limpiado de óxidos lavándolo con HNO3 al 1% (V/V), luego con una solución de HCl al 1% y finalmente con abundante agua destilada. El proceso de enjuague se realiza tratando de evitar el contacto de cadmio con el aire; el metal debe verse lustroso en esta etapa.

Luego se trata con una solución de sulfato de cobre al 2% (P/V) agitando continuamente hasta que el color azul se desvanezca parcialmente. Se decanta y repite con sulfato de cobre reciente hasta la formación de un precipitado coloidal marrón. Se lava el cadmio con agua destilada, por lo menos 10 veces hasta remover todo el cobre suspendido en el líquido.

Preparación de la Columna de Reducción

Con la ayuda de un alambre se inserta un tapón de lana de vidrio en la base de la columna de reducción y se llena con agua destilada, para luego agregar cobre fino.

Luego se llena con suficiente cantidad de gránulos de cadmio cuperizados para ensamblar la columna; manteniendo siempre el nivel de agua destilada por encima de los gránulos de cadmio-cobre para evitar burbujas de aire.

Para evitar cavidades en la columna, a medida que se agregan los gránulos de cadmio a la columna, se va empacando con una bagueta.

Una vez lleno se agrega cobre (Cu) fino y se tapa el extremo superior con lana de vidrio.

Para activar la columna se hace pasar por ella 500 mL de solución de cloruro de amonio diluido, seguido de 50 mL de solución de estándar de Nitrato . Se usa un flujo de 10-12 mL/min.

Cuando no se utilicen las columnas, éstas se deberán dejar en solución de cloruro de amonio diluido, en cantidad suficiente que cubra el metal.

Determinación de Nitritos

Rango (0,01 – 50,00 µM)

Precisión ±0,02 µM

El método estándar para la determinación de nitrito en agua de mar es de naturaleza espectrofotométrica, basada en la reacción del nitrito con una amina aromática primaria formando un compuesto diazonio el cual se acopla con una segunda amina aromática. El producto es un compuesto azo el cual es cuantificado por espectrofotometría. Este método es sensible y rápido.

Aquí el nitrito presente en la muestra es sometido a una reacción con sulfanilamida en medio ácido (pH 3-4) la que lleva a la formación de un ión diazonio (sal de arildiazonio)

El ión diazonio resultante es sometido posteriormente a una reacción de copulación con N-(1-naftil) – etilendiamina, originando un compuesto azo de color rosado intenso, cuya máxima absorbancia, proporcional a la concentración inicial de nitrito, se encuentra a 543 nm.

SO2-NH2

NH2

NO2- + +

NH-CH2-CH2-NH2 H2N-SO2 N N NH

CH2

CH2

NH2

H+

La diazoación del nitrito requiere 2 minutos para completarse transcurridos los cuales y antes de que pasen 10 minutos se procede a la copulación; en caso de que la reacción de diazoación se prolongue por más de 10 minutos se manifiestan de modo significativo reacciones paralelas indeseables y procesos de descomposición que acarrean consigo errores en la estimación.

Este método es aplicable para la determinación de nitrito en todo tipo de aguas, incluso en aguas servidas y no es afectado de modo apreciable por diferencias de salinidad. Diferencia de temperatura tampoco tiene efecto si acaso ésta se encuentra comprendida dentro del rango que va desde 15 a 25 °C.

Determinación de Silicatos

Rango (0,10 – 75,00 µM)

Precisión ±0,05 µM

El método descrito a continuación fue propuesto por Mullin y Riley (1955) modificado por Strickland y Parsons (1972).

Aquí al tratar la muestra de agua de mar con molibdato en condiciones ácidas, se forma el ácido - silicomolíbdico a partir de la reacción del ácido molíbdico con el silicato disuelto:

6MoO42-

(ac) + 9H+(ac)

(H3Mo6O21)3-(ac)

+ 3H2O(l)

H2SiO4(ac) + 2(H3Mo6O21)3-(ac) + 6H+

(ac) H4(SiMo12O40)(ac) + 6H2O(l)

Sólo el ácido silícico y sus dímeros reaccionan con rapidez, por lo que el método no detecta silicatos polimerizados. La interferencia ocasionada por la formación simultánea de los ácidos fosfomolíbdico y arsenomolíbdico es suprimido agregando ácido oxálico, el cual destruye estos dos complejos.

El ácido - silicomolíbdico, de color amarillo, es reducido a un heteropoliácido de color azul con sulfato de p-metilaminofenol (metol):

Metol

H4 (SiMo12O40)(ac) + 4H+(ac) + 4e- H4SiMo12O36(OH)4(ac)

La intensidad del color azul que resulta de los 4 electrones deslocalizados presentes por molécula de complejo, es proporcional a la concentración inicial de silicatos, siendo medido espectrofotométricamente a 810 nm.

Solución de Molibdato de Amonio para Silicatos

Se pesa 4,0 g de paramolibdato de amonio (NH4)6Mo7O24.4H2O Q.P. y se disuelve en 300 mL de agua destilada, enseguida se le añade 12.0 mL de ácido clorhídrico concentrado, se mezcla bien y se completa a 500 mL con agua destilada en una fiola graduada. Se guarda en una botella de polietileno, protegida de la luz. La solución será estable por muchos meses.

Solución de Metol-sulfito

Se disuelve 6,0 g de sulfito de sodio anhidro (Na2SO3) P.A. en 500 mL de agua destilada y luego se le añade 10,0 g de metol (p-metilaminofenol sulfato P.A.), cuando el metol ha sido disuelto se filtra a través del papel whatman N° 1 y se guarda en una botella de vidrio, bien tapada. La solución puede deteriorarse fácilmente y por eso debe probarse cada mes.

Solución de ácido oxálico

Se pesa 50 g de ácido oxálico dihidratado (H2C2O42H2O) y se disuelve en 500 mL de agua destilada, se deja decantar. La solución se guarda en una botella de vidrio, la cual será estable indefinidamente.

Solución de ácido sulfúrico 50% (V/V)

Se añade 250 mL de ácido sulfúrico concertado (P.e. 1.82) en 250 mL de agua destilada, se deja enfriar a temperatura ambiente y se completa a 500 mL con agua destilada.

Mezcla Reductora para silicatos

Esta solución debe ser preparada diariamente para cada grupo de muestras en un envase de polietileno según el siguiente cuadro N° 2:

Reactivos N° de Muestras analizadas15 20 25

Metol-sulfito (mL) 75 100 125

Ácido oxálico (mL) 45 60 75

Ácido sulfúrico (mL) 45 60 75

Agua destilada (mL) 60 80 100

Fosfato

Agregar 25ml de muestra de agua de mar Preparar muestra reductora a partir de los reactivos stock Agregar 2.5ml de mezcla reductora y agitar

A un tiempo= 30min Lectura =885nm en celda de 1cm de paso de luz .se leerá estándar control

cada10 muestras Apagado el espectrofotómetro, estabilizar y fin del análisis.

Silicatos

Agregar 10 ml pura molibdato a la probeta disilicatos Agregar 25ml de muestra de agua de mar y agitar Por un tiempo de 10 min Preparar la mezcla reductora a partir de reactivos de stock Agregar 15ml de mezcla reductora y agitar Debe transcurrir un tiempo de 120 min Lectura =810nm en celda de 1cm de paso de luz

Se leerá estándar control cada 10 minutos Apagado el espectrofotómetro estabilizador y fin del análisis

Nitritos

Agregar 25ml de la muestra de mar Agregar 0.5ml reactivo para NO2 y agitar Debe pasar un tiempo de 10 minutos Lectura =543 nm en celda de 1cm de paso de luz Se leerá estándar control cada 10 minutos

Nitratos

Agregar 50ml de la muestra de mar Agregar 1ml cloruro de amoniaco NH4CL y agitar Pasar por columna de reducción y coger 25ml Agregar 0.5ml de reactivo I para NO2 y agitar Debe pasar un tiempo de 2-8 minutos Agregar 0.5 ml de reactivo II par NO2 y agitar Debe pasar un tiempo de 10 minutos Lectura =543 nm en celda de 1cm de paso de luz Se leerá estándar control cada 10 minutos

*A mas coloración, mayor cantidad de nitritos, silicatos,fosfatos y nitratos.

* Para la Lectura de la longitud de onda, se usa un Espectro Lambda 45, con celda de 1cm. de paso de luz. Se analizaran 36 muestras.

-Primero aplastar 3 veces enter para calibrar (muestra cero con agua)

-Luego poner el nitrito (3 veces enter)

-Se presiona 3 veces enter, porque la primera vez la luz no es estable