informe laboratorio de quimica organica

UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIAEscuela de ciencias básicas, tecnología e ingeniería

100416 – Química Orgánica

INFORME

PRÁCTICA DE LABORATORIO DE QUÍMICA ORGÁNICA NO. 2

Universidad Nacional Abierta y a Distancia. Escuela de Ciencias Básicas, Tecnología e Ingeniería - ECBTI. Química Orgánica. CCAV: de Neiva -

Colombia.

Tutor de laboratorio: Victoria Eugenia Gutiérrez

([email protected]).

Sesión de laboratorio (2) 10 DE MAYO 2015

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tutor campus

Diana María Londoño Cárdenas

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53.080.743 139 DIEGO

BALLESTEROS

Cristian David Arias Medina

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1.075.258.310 142

JARAMILLO HERNANDEZ FREY

Margy Yulieth Oquendo Correa

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1.024.519.746 140JANETH PINZON

Ingrid Malena Ordoñez

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.co1080261563 129

[email protected]

Cesar Augusto Cerón Sánchez

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121974908138

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mailto:[email protected]

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INTRODUCCIÓN

En este trabajo manejaremos todo lo concerniente a los carbohidratos y sus respectivas reacciones; teniendo en cuenta que Químicamente, son vio moléculas formadas por átomos de carbono (C), hidrógeno (H) y oxígeno(O) en una relación general de 1:2:1. Los átomos de carbono están unidos a grupos alcohólicos o hidroxilos (-OH) y a radicales hidrógenos (-H). En todos los glúcidos siempre hay un grupo carbonilo, es decir, un carbono unido a un oxígeno mediante un doble enlace (C=O), que puede ser un grupo aldehído (-CHO) o un grupo cetónico (-CO-).Los azúcares o carbohidratos pueden ser monosacáridos, disacáridos, trisacáridos, oligosacáridos y polisacáridos. Los monosacáridos reaccionan de acuerdo a los grupos hidroxilo y carbonilo que poseen. Los disacáridos y los polisacáridos se pueden hidrolizar para producir monosacáridos. Los azúcares que dan resultados positivos con las soluciones de Tollens, Benedict ó Fehling se conocen como azúcares reductores, y todos los carbohidratos que contienen un grupo hemiacetal o hemicetal dan pruebas positivas. Los carbohidratos que solo contienen grupos acetal o cetal no dan pruebas positivas con estas soluciones y se llaman azúcares no reductores.



Objetivos

Determinar la reactividad de algunos aldehídos, cetonas y carbohidratos a través de pruebas de análisis, identificando características químicas particulares de cada grupo de sustancias.



REACION DE BIAL

1 Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0.5ml o 0.25ml de la sustancia

2 agregue 0.5ml de reactivo de bial

3 caliente el tubo en un baño de agua caliente

4 la aparición de un color o un precipitado verde es ensayo positivo (esta prueba permite la identificación de pentosa)

5 registre sus resultados

SUSTANCIA CARACTERISTICASPrueba de Bial Esta prueba se basa en la formación

de furfural, al hacer reaccionar pentosas con HCl y posteriormente con orcinol. El furfural es un aldehído electrofilico, en presencia de ácido, adiciona fenoles (con pérdida de agua) produciendo sustancias altamente coloreadas, las pentosas originan una coloración azul-verde. En la prueba de Bial no se contó con la ribosa, procedimos a realizar la prueba con fructosa y sacarosa. Tanto la fructosa como la sacarosa al no ser pentosas no dan una coloración positiva, sin embargo las hexosas al reaccionar con el reactivo de Bial originan una coloración verde, café o café-rojiza, razón por lo cual en la fructosa se observó una coloración café rojiza oscura y en la sacarosa una coloración similar pero clara. Para la pentosas la reacción es:



REACTIVO DE SELIWANOFF

1 tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5ml o 0,25g de la sustancia

2 agregue 0.5ml de reactivo de seliwanoff

3 caliente la mezcla en un baño de agua hirviendo

4 escriba sus resultados.

5 el desarrollo de un color rojo en dos minutos es prueba positiva para cetosas. Pasado ese tiempo, las aldosas dan una coloración más débil (el ensayo utiliza la conversión de la cetosa a hidroximetil furtural y su condensación con resorcinol para formal para tomar compuestos coloreados

SUSTANCIA CARACTERISTICAS REACTIVO DE SELIWANOFF Tanto las aldosas como las cetosas en

presencia de ácidos minerales y en un medio caliente sufren procesos de deshidratación, lo cual da como producto un anillo pentagonal de furfural o hidroximetilfurfural, según sea el monosacárido pentosa o hexosa, los furfurales se condensas dando una coloración roja. Las cetosas se deshidratan más rápido que las aldosas, lo cual permite diferenciarlos. En la prueba de Seliwanoff la fructosa al ser una cetohexosa da un resultado positivo, en cuanto a la sacarosa esta al contener fructosa da también positivo si se deja correr el tiempo adecuado para que se efectué lahidrolisis acida en donde la sacarosa libera fructosa.



AZÚCAR OBSERVACIÓN

GLUCOSANo nos dio un color rojo en la reacción lo cual nos indica que la glucosa no es una cetosa

-

DEXTROSANo nos dio un color rojo en la reacción lo cual nos indica que la glucosa no es una cetosa

-

FRUCTOSASi nos dio un color rojo en la reacción lo cual nos indica que la fructosa si es una cetosa

+

SACAROSASi nos dio un color rojo en la reacción lo cual nos indica que la sacarosa si es una cetosa

+

ALMIDONNo nos dio un color rojo en la reacción lo cual nos indica que la galactosa no es una cetosa

-

Conclusiones



Mediante la reacción de Seliwanoff se identificó los diferentes azúcares dándonos una reacción positiva la fructosa ya que es una cetosa y la sacarosa, esta última está formada por un monosacárido fructuosa que es una cetosa, mientras que obtuvimos una reacción negativa en la glucosa y lactosa lo que nos da a identificar que estos azúcares son aldosas.

Se analizó e identificó las características de la reacción de Seliwanoff, ya que esta reacción sólo reconoce cetosas y se produce una coloración dependiendo de la cantidad de concentración del azúcar.

Comparamos las características obtenidas con la teoría establecida, ya que si se obtuvo el color rojo como indica la teoría, lo que pudimos comprobar que la sacarosa al igual que la fructosa tiene el grupo carbonilo no se encuentra libre, sino en un carbono secundario.

PRACTICA 3: ALDEHIDOS, CETONAS Y CARBOHIDRATOS

1. FORMACION DE FENILHIDRAZONAS.

La fenilhidracina (C6H5NH-NH2), es un derivado del amoniaco, reacciona con los aldehídos y cetonas formando solidos de color amarillo, llamados fenilhidrazonas.

Entre los reactivos más comunes para estas prácticas es la (2,4 dinitro-fenilhidracina), de la cual agregamos 0,5 ml a cada sustancia analizada, teóricamente los resultados nos deberían arrojar precipitados rojizos, amarillo anaranjado. L a reacción que ocurre la vemos a continuación:

SUSTANCIA ANALIZADA OBSERVACIONES Y REACCIÓNESBENZALDEHIDO (C6H5-CHO)

Después de adicionar el reactivo se precipito de color naranja, coagulándose inmediatamente. Indica positivo para presencia del grupo carbonilo.



FORMALDEHIDO (H2C=O) Precipitado amarillo muy fuerte inmediatamente después de adicionar el reactivo. . Indica positivo para presencia del grupo carbonilo.

BENZOFENONA Después de 5 minutos se presentó un precipitado naranja.

CETONA Inicialmente precipito amarillo con el tiempo aumentaba el precipitado.

A. ENSAYO DE FEHLING.

Los aldehídos son más reductores que las cetonas, si utilizamos un oxidante suave como el reactivo de Fehling, los aldehídos reaccionaran reduciéndose a cobre. Las cetonas no reaccionan.



Los aldehídos se oxidan a iones cuprosos, lo que deberíamos ver es un precipitado rojizo que identifica dicho oxido. (Óxido cuproso Cu2O)

SUSTANCIA ANALIZADA OBSERVACIONESBENZALDEHIDO La sustancia no reacciona

posiblemente porque el reactivo al ser manipulado pudo ser contaminado. (De ser trasparente se tornó color blanco) lo que no nos indica realmente alguna reacción esperada.

FORMALDEHIDO La sustancia no reacciona posiblemente porque el reactivo al ser manipulado pudo ser contaminado.

BENZOFENONA La sustancia no reacciona posiblemente porque el reactivo al ser manipulado pudo ser contaminado.

ACETONA La sustancia no reacciona posiblemente porque el reactivo al ser manipulado pudo ser contaminado.

1. ENSAYO DE BEBEDICT (carbohidratos)

Para el desarrollo de la práctica se vamos a utilizar las siguientes soluciones:



sacarosa fructosa almidón glucosa

PROCEDIMIENTO:

1. Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5 ml o 0,25 g de la sustancia

2. Agregue 0,5 ml de reactivo de benedict3. Coloque el tubo en un baño de agua hirviendo durante tres minutos4. No olvide registrar los datos obtenidos5. Un precipitado oscuro es positivo para carbohidratos reductores (el reactivo

contiene citrato de cobre en medio alcalino suave, al reaccionar con los azucares reductores da un precipitado de oxido cuproso)

REACTIVO DE BENEDICT: esta reacción es específica para azucares con grupos reductores libres, todo los monosacáridos poseen un grupo reductor libre. Se basa en la capacidad que tiene el carbohidrato de reducir en un medio alcalino, este se oxida y precipita obteniendo una coloración positiva de la reacción es decir cuando el reactivo se agrega a un azúcar reductor su tonalidad presenta un cambio, por el contrario los azucares que no reducen no muestran ningún cambio y mantienen su color.

Sustancia Agregada reacción Color antes de Color después de



calentar calentarSacarosa positiva transparente azulFructosa positiva transparente azulAlmidón Negativa transparente transparenteGlucosa positiva transparente azul

Sacarosa, fructosa y glucosa:Para las tres soluciones enunciadas la prueba de Benedict nos arroja un resultado positivo identificando la presencia de azucares reductores, al agregar el reactivo los tubos no presentan ningún cambio, al colocar a una temperatura alta se muestra un cambio en la tonalidad de la sustancia.

Almidón:Para el almidón como se evidencia en la tabla de resultados no muestra ninguna reacción ni antes de colocar a alta temperatura ni posteriormente, es decir que el almidón es un polisacárido donde no hay presencia de azucares reductores.

C. ENSAYO DE TOLLENS (aldehídos y cetonas)

Para el desarrollo de la práctica se vamos a utilizar las siguientes sustancias:

Benzaldehído Formaldehido Benzofenona Acetona

PROCEDIMIENTO:

1. Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5ml o 0,25g de la sustancia ( en caso de ser solida agregue 1ml de agua)

2. Adicione 2ml del reactivo de tollens agite y deje reposar por 10 minutos



3. Si luego de los 10 minutos no ha ocurrido reacción alguna. Puede calentar al baño maría a 35 °C por 5 minutos, no olvide controlar la temperatura para que no reacciones las cetonas

4. Registre sus datos5. Si aparece un precipitado negro o un espejo de plata se considera el ensayo

positivo.ENSAYO DE TOLLENS: reactivo utilizado para identificar los aldehídos, esta sustituido por una mezcla de nitrato de plata y disolución amoniacal que al reaccionar se forma un espejo de plata o un precipitado negro.

.

Sustancia Agregada reacción Color antes de calentar

Color después de calentar

Benzaldehído positiva gris Precipitado negro solido grande

Formaldehido positiva gris Precipitado negro solido



Benzofenona positiva negro Presenta el espejo de plata

Acetona positiva negro Presenta el espejo de plata

Benzaldehído, formaldehido, Benzofenona y acetona.

Como se puede observar en las imágenes el ensayo para estas dos sustancias es positivo se presentó un precipitado de color negro lo que quiere decir que hay presencia de un aldehído evidenciándose el espejo de plata, se produce acido carboxílico y los iones plata se reducen a plata metálica.

1. REACCION DE MOLISHCEste tipo de reactivo se usa para identificar la presencia de carbohidratos en una

muestra, el ácido sulfúrico y el 𝝰-Naftol reaccionan formando un anillo de color verde cuando no hay glúcidos, si los hay se precipita rojo. Si es positivo para glúcidos se forma un anillo de color violeta en la interfase.

Lo que ocurre es que los azucares por acción del ácido sulfúrico se deshidratan y forman compuestos furfúricos y estos son los que reaccionan con el reactivo de Molisch.

Las sustancias que analizamos para esta práctica fueron:

Dextrosa, glucosa, sacarosa, fructosa y almidón.



SUSTANCIA ANALIZADA

OBSERVACIONES

Dextrosa Se puso turbia y se precipito con pequeñas partículas.

Glucosa Precipito con una partícula color rosado que podría indicar positivo para la prueba sin embargo no hubo presencia de anillo violeta.

Sacarosa Se precipito con partículas muy pequeñas no cambio de color

Fructosa Presento precipitación de partículas muy pequeñas

Almidón No precipito solo se torno turbio.

Los resultados obtenidos en el laboratorio no fueron los esperados según la teoría consultada, esto pudo ser por diferentes posibilidades, contaminación de las sustancias por alta manipulación o del reactivo, no se usó la cantidad de reactivo necesaria para que ocurriera la reacción, entre otras.

A. ENSAYO DE BENEDICTEn este tipo de prueba también esperamos que la reacción se de en los aldehídos ya que las cetonas no se oxidan con soluciones como la de Benedict por ser más débiles, los aldehídos se oxidan dando paso a un precipitado rojo de óxido cuproso.La reacción con acetaldehído es:

SUSTANCIA ANALIZADA OBSERVACIONESBENZALDEHIDO Inicialmente se torna de color blanco,

después de calentar se torna



levemente rojizo pero no hay presencia de precipitado.

FORMALDEHIDO Inicialmente no cambia su color cristalino, después de calentar hay cambio leve de color rojo (muy leve). No hay precipitado.

BENZOFENONA Se torna de color azul muy suave quizá porque el reactivo es de color azul fuerte, al calentar no ocurre ninguna reacción cualitativa diferente. Esto se debe como lo mencionábamos anteriormente a que las cetonas no se oxidan con este tipo de compuestos.

CETONA Se torna de color azul muy suave quizá porque el reactivo es de color azul fuerte, al calentar no ocurre ninguna reacción cualitativa diferente. Esto se debe como lo mencionábamos anteriormente a que las cetonas no se oxidan con este tipo de compuestos.

Las reacciones obtenidas en el laboratorio no se apegan a la teoría sin embargo se presentaron cambios leves que nos indican que la prueba fue positiva para benzaldehído y formaldehido y negativa para cetonas.

3. Reacción del Lugol

1. Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5mL o 0,25g de la sustancia

2. Adicione cinco gotas de la solución de Lugol, observe los cambios que se presentan.

3. Si no hay color, corresponde a un monosacárido o un disacárido, si da color azul se tiene almidón. Si el color es rojo la muestra contiene nitrógeno o es una eritrodextrina3



4. Registre sus resultados

SUSTANCIA A ANALIZAR

RESULTADO OBSERVACIONES

DEXTROSA Positivo Nos dio un cambio de coloración a un rojo donde nos muestra que contiene eritrodextrina3

GLUCOSA Negativo No nos dio un cambio significativo lo cual quiere decir que corresponde a un monosacárido

FRUCTUOSA Negativo No nos dio un cambio significativo lo cual quiere decir que corresponde a un monosacárido

ALMIDÓN Positivo Nos dio un cambio azul donde nos muestra que contiene almidón

SACAROSA Negativo No nos dio un cambio significativo lo cual quiere decir que corresponde a un disacárido



4. Reacción de Barfoed

1. Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5mL o 0,25g de la sustancia

2. Agregue 0,5mL de reactivo de Barfoed

3. Caliente el tubo en un baño de agua

4. Si se forma precipitado en dos a siete minutos, la sustancia es un monosacárido. Después de siete minutos, el ensayo es positivo para los disacáridos.

(Esta prueba permite diferenciar los monosacáridos de los disacáridos ya que los primeros se oxidan más fácilmente. Como es un ensayo no específico, es necesario tener la certeza de que las sustancias analizadas corresponden a carbohidratos)

SUSTANCIA A ANALIZAR

RESULTADO OBSERVACIONES

DEXTROSA Positivo Nos dio el Precipito a los dos minutos y cambio de coloración a naranja

GLUCOSA Positivo Nos dio el precipitado rojo ladrillo, lo cual nos indica que si es un azúcar reductor en el tiempo determinado de 4 minutos

FRUCTUOSA Positivo Nos dio el precipitado rojo ladrillo, lo cual nos indica que si es un azúcar reductor en el tiempo determinado de 2 minutos

ALMIDÓN Negativo No nos dios ningún cambio de coloración, no precipito lo cual nos indica que es un polisacárido



SACAROSA Positivo Nos dio el precipitado rojo ladrillo, en un tiempo muy prolongado mayor a 7 minutos. Lo cual indica que es un disacárido.

PRACTICA 6: AMINOACIDOS Y PROTEINAS

El grupo de Aldehídos y Proteínas a trabajar son: Leche de Vaca, Clara de Huevo, Gelatina sin sabor y Leche de Soya.

1. ENSAYO DE BIURET

Para el desarrollo de la práctica se van a trabajar los siguientes aldehídos y proteínas para llevar a cabo el análisis de los compuestos:

Leche de vaca Leche de soya Clara de huevo Gelatina sin sabor



PROCEDIMIENTO:

6. Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5 ml o 0,25 g de la sustancia ( en caso de ser solida agregue 1ml de agua)

7. Adicione gota a gota reactivo de Biuret agite y espere la formación de un color violeta (en este caso el ensayo es positivo)

8. Registre los resultados encontrados

REACTIVO DE BIURET: la reacción se produce en péptidos y proteínas, no en aminoácidos ya que se debe a la presencia del enlace peptídico (-CO-NH-) que se destruye al liberarse los aminoácidos, cuando una proteína se pone en contacto con un álcali concentrado se forma la sustancia denominada Biuret.

Al agregar el reactivo en una solución de proteína esta precipita una coloración violeta, quedando en el fondo del tubo de ensayo la sustancia de una tonalidad azul cielo arrojando como resultado una reacción positiva.

Si al agregar el reactivo en una solución esta precipita a una coloración amarilla la reacción nos arroja un resultado negativo al no haber presencia de proteínas.



Leche de vaca:Como se evidencia en la imagen y en la tabla de registro las coloraciones obtenidas para la sustancia positiva no fue exactamente violeta, pero al presentar el color azul claro y reaccionar en el momento de la mezcla decimos que la leche de vaca contiene enlaces peptídicos arrojando un resultado positivo.

Clara de huevo:Como se puede apreciar esta sustancia arrojo un resultado positivo mostrando una precipitación de color verde donde muestra que contiene mas de dos enlaces peptídicos.

Gelatina y leche de soya:Las muestras no presentan ninguna reacción, las dos sustancias no muestran cambio de coloración ni precipitación.

2. REACCION XANTOPROTEICA

PROCEDIMIENTO:

1. Tome un tubo de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5ml o 0,25g de la sustancia ( en caso de ser solida agregue 1ml de agua)

2. Añada 0,5ml de ácido nítrico concentrado 3. Caliente los tubos de ensayo al baño maría4. Deje enfriar y agregue cuidadosamente solución de hidróxido de sodio al

10% en exceso5. Un precipitado blanco inicialmente formado se vuelve luego amarillo y

posteriormente se disuelve dando a la solución un color amarillo intenso casi

Sustancia Agregada reacción Color precipitadoLeche de vaca positiva Azul cielo Si Precipita Leche de soya ninguna Mantiene su

colorNo precipita

Clara de huevo negativa Amarillo oscuro

Si precipita

Gelatina sin sabor ninguna Mantiene su color

No precipita



anaranjado. Este resultado se da si en la proteína se encuentran los aminoácidos: fenilalanina, tirosina, tiroxina y triptófano

6. Registre sus resultados

REACCIÓN XANTOPROTEICA: es un método que se puede utilizar para determinar la presencia de proteínas solubles en una solución haciendo uso del ácido nítrico concentrado, la reacción se muestra positiva en proteínas con aminoácidos que contienen grupos aromáticos especialmente en presencia de tirosina.

En la imagen presentada se pueden observar los cambios generados en los pasos 1,2,3 en las sustancias expuestas a la reacción xantoproteica.

Posteriormente preparamos los tubos de ensayo para agregar el hidróxido de sodio a cada uno de los tubos de ensayo para evidenciar los cambios para cada sustancia.



Leche de vaca y clara de huevo

Como se puede observar en las imágenes el ensayo para estas dos sustancias es positivo tornándose de color amarillo fuerte y anaranjado fuerte, es decir que estas proteínas poseen aminoácidos con restos aromáticos.

Leche de soya y gelatina sin sabor

Como se puede evidenciar las muestras muestran un resultado negativo, por lo cual no existen aminoácidos con restos aromáticos para estas dos.

Sustancia Agregada reacción Color precipitadoLeche de vaca positiva Amarillo fuerte Si Precipita Leche de soya negativa Mantiene su

colorSi precipita

Clara de huevo positivo Anaranjado fuerte

Si precipita

Gelatina sin sabor negativa Amarillo claro No precipita



ENSAYO DE MILLON

Cuando se calienta este reactivo con una proteína que contenga tirosina, se forma un precipitado blanco que luego pasa a rojo, rojo parduzco o rojo ladrillo.

PROCEDIMIENTO:

Tome 1 tubos de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5 ml o 0,25 gr de la sustancia (en caso de ser solida agregue 1 ml de agua destilada).

Añada 4 gotas del reactivo de Millón. Caliente hasta ebullición, si no aparece color adicione tres gotas más y caliente. Si se produce un precipitado rojo la solución problema contiene los

aminoácidos: tirosina o tiroxina, de lo contrario no. Registre los resultados.

Sustancia Precipitado ResultadosLeche de Vaca No Presenta un color rojo pardo turbioClara de Huevo

Si En la parte superior presenta un de color rojizo

Gelatina No Presenta un color rojo pardo cristalinoLeche de Soya Si Presenta un color más claro al tener

precipitados



ENSAYO DE NINHIDRINA

La prueba de ninhidrina es positiva para aminoácidos y proteínas que tengan un grupo -NH2 libre. Cuando el grupo -NH2 reacciona con ninhidrina, se forma un complejo azul-violeta.

El grupo de Aldehídos y Proteínas a trabajar son: Leche de Vaca, Clara de Huevo, Gelatina sin sabor y Leche de Soya.

PROCEDIMIENTO:

Tome 1 tubos de ensayo limpio y seco por cada sustancia a analizar, adicione 0,5 ml o 0,25 gr de la sustancia (en caso de ser solida agregue 1 ml de agua destilada).

Añada 4 gotas del reactivo de Ninhidrina, caliente en baño de agua a ebullición por 10 minutos.

Observe los colores desarrollados y registre los resultados.

Sustancia Precipitado ResultadosLeche de Vaca Si En la parte superior presenta anillo de color

violetaClara de Huevo

Si En la parte superior presenta anillo de color violeta

Leche de Soya Si En la parte superior presenta anillo de color violeta

Gelatina No No presenta ningún tipo de reacción



. ENSAYO PARA DETECTAR AZUFRE

Utilizando el nitrato de plomo en los aminoácidos podemos identificar la presencia de azufre en ellos, ocurre por la reacción en la separación mediante un álcali, del azufre de los aminoácidos, que al reaccionar con la solución de acetato de plomo forman el sulfuro de plomo.

La indicación para la prueba es la aparición de un precipitado negro.



Las sustancias analizadas fueron: leche de vaca, clara de huevo, gelatina sin sabor y leche de soya.

Para los cuales ninguno precipito color negro por lo que decimos que la prueba es negativa para presencia de azufre en estas sustancias.

PRACTICA 7: ACIDOS CARBOXILICOS Y DERIVADOS

1. ACIDEZ

SUSTANCIA ANALIZADA

PH ADICION DE NaHCO3

(BICARBONATO DE SODIO)

ACIDO LACTICO 2 Hay desprendimiento de CO2 representados por burbujeo abundante.

ACIDO ACETICO 3 Hay desprendimiento de CO2, el burbujeo es menos abundante y de menor tiempo que el anterior

ACIDO BENZOICO 4 Hay una leve efervecencia que indica desprendimiento de CO2

ACIDO OXALICO 0 Hay desprendimiento de CO2 representado por abundante burbujeo.



2. EQUIVALENTE DE NEUTRALIZACIÓN

SUSTANCIA ANALIZADA CANTIDAD DE HIDROXIDO DE SODIO PARA NEUTRALIZAR.

ACIDO LACTICO 85% (CH3CHOHOH) 5ML

Se neutralizo con 17,5ml de NaOH al 10%- 0,5 molar.

ACIDO ACETICO 98% (C2H4O2) 5ml

Se neutralizo con 17,1ml de NaOH al 10%-0,5 molar

ACIDO BENZOICO 0,2gr (disuelto en 100ml de agua)0,2% (C5H5_COOH)

Se neutralizo con 0,5 ml de NaOH, al 10%



PARTE 2 ETERIFICACION Y SAPONIFICACIÓN

1. Esterificacion.

Al minuto despues de hervir la solucion de 5ml de etanol y 5ml de ácido acético glacial se oscurece un poco y desprende un olor dulce similar a removedor de esmalte, esto nos indica que obtuvimos un ester.

La reaccion que lo identifica es:

2. Saponificacion…..CRISTIAN AYUDAME CON ESTE POR FIS….AHI TE ENVIO UNA FORMULA QUE ENCONTRE Y LOS RESULTADOS SON: Aparicion de tres fases

1 fase: solucion de NaOH sin reaccionar + glicerina2 fase: jabon3 fase: producto graso que no reacciono( en nuestro caso solo se vieron las dos primeras fases lo que indica que se consumio toso el producto graso)



Numero de saponificación:

Es el número de miligramos de hidróxido requeridos para saponificar 1g de grasa bajo condiciones específicas. Es una medida para calcular el peso molecular promedio de todos los ácidos grasos presentes. Índice de saponificación: se define como los miligramos de KOH necesarios para saponificar un gramo de lípido. La palabra saponificar significa producir jabón, la hidrólisis alcalina de un triglicérido produce glicerol y las correspondientes sales de ácidos grasos que forman el triglicérido. Por ejemplo :TRIPALMITINA + 3 KOH glicerol+ 3 C15H31COOK Jabón Peso molecular de la tripalmitina: 860 g/mol Peso molecular del KOH: 56 g/molSi 860 g de tripalmitina :: 1680.000 mg de KOH 1 g X

Como siempre se requieren 3 moles de KOH para la hidrólisis alcalina,

podemos decir queI.S.=168.000/peso molecular del triglicérido. Se puede observar que el índice de saponificación es inversamente proporcional al peso molecular del triglicérido

http://es.wikipedia.org/wiki/Glicerol

http://es.wikipedia.org/wiki/Triglic%C3%A9rido

http://es.wikipedia.org/wiki/Hidr%C3%B3lisis

http://es.wikipedia.org/wiki/Jab%C3%B3n

http://es.wikipedia.org/wiki/L%C3%ADpido

http://es.wikipedia.org/wiki/Miligramo

http://es.wikipedia.org/wiki/%C3%81cido_graso

http://es.wikipedia.org/wiki/Peso_molecular

http://es.wikipedia.org/wiki/Peso_molecular

http://es.wikipedia.org/wiki/Grasa

http://es.wikipedia.org/wiki/Saponificaci%C3%B3n

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