i
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS PECUARIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGROPECUARIA
Título del Proyecto de Investigación:
“HORMONAS DE CRECIMIENTO VEGETATIVO (ÁCIDO GIBERELICO,
ECKLONIA MÁXIMA) EN INJERTOS DE GUANABANA (Annona muricata L.)”
Autora:
Esperanza Nereida Velásquez Andrade
Auspicio académico:
Ing. Diana Véliz Zamora M. Sc.
Quevedo - Los Ríos - Ecuador
2017-2018
Proyecto de Investigación previo a la
obtención del Título de Ingeniera
Agropecuaria.
ii
DECLARACIÓN DE AUTORÍA Y CESIÓN DE DERECHOS
Yo, Esperanza Nereida Velasquez Andrade declaro que la investigación aquí descrita es de
mi autoría, que no ha sido previamente presentada para ningún grado o calificación personal;
y que he consultado las referencias bibliográficas que se incluyen en este documento.
La Universidad Técnica Estatal de Quevedo, puede hacer uso de los derechos
correspondientes a este documento, según lo establecido por la Ley de Propiedad Intelectual,
por su Reglamento y por la normatividad institucional vigente.
___________________________________
Esperanza Nereida Velasquez Andrade
C.C. # 120554805-8
iii
CERTIFICACIÓN DE CULMINACIÓN DEL PROYECTO DE
INVESTIGACIÓN
La suscrita, Ing. M.Sc. Diana Verónica Véliz Zamora, Docente de la Universidad Técnica
Estatal de Quevedo, certifica que el estudiante Esperanza Nereida Velasquez Andrade,
realizo el Proyecto de Investigación de grado titulado “HORMONAS DE CRECIMIENTO
VEGETATIVO (ÁCIDO GIBERELICO, ECKLONIA MÁXIMA) EN INJERTOS DE
GUANABANA (Annona muricata L.)”, previo a la obtención del título de INGENIERA
AGROPECUARIA, bajo mi dirección, habiendo cumplido con las disposiciones
reglamentarias establecidas para el defecto.
___________________________
Ing. M. Sc. Diana Verónica Véliz Zamora
TUTORA DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
iv
CERTIFICACIÓN
La suscrita Ing. Agr. M. Sc Diana Verónica Véliz Zamora. Certifico que:
El Proyecto de Investigación titulado “HORMONAS DE CRECIMIENTO VEGETATIVO
(ÁCIDO GIBERELICO, ECKLONIA MÁXIMA) EN INJERTOS DE GUANABANA
(Annona muricata L.)” realizada por el estudiante de la Carrera Agropecuaria VELASQUEZ
ANDRADE ESPERANZA NEREIDA, ha sido analizado mediante la herramienta
URKUND desde la Introducción hasta el capítulo de Bibliografía y presentó un (5%) de
similitud en aspectos de Metodologías utilizadas, tal como se aprecia en la siguiente Figura
Figura1. Porcentaje de similitud (5%) registrado por el análisis de URKUND.
Atte.
Ing. Diana Véliz Zamora M. Sc.
TUTOR DE PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
v
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS PECUARIAS
CARRERA INGENIERÍA AGROPECUARIA
PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
Título:
“HORMONAS DE CRECIMIENTO VEGETATIVO (ÁCIDO GIBERELICO,
ECKLONIA MÁXIMA) EN INJERTOS DE GUANABANA (Annona muricata L.)”
Presentado a la Comisión Académica como requisito previo a la obtención del título de
Ingeniero Agropecuario.
Aprobado por:
_____________________________
Dr. Camilo Mestanza Uquillas
Presidente del tribunal
_____________________________ _________________________
Ing. Rommel Ramos Remache Ing. Jaime Vera Chang
Miembro del tribunal Miembro del Tribunal
Quevedo - Los Ríos - Ecuador
2017-2018
vi
AGRADECIMIENTO
Al terminar nuestra Investigación queremos expresar nuestro más sincero agradecimiento a
Dios, aunque las palabras de agradecimiento hacia Dios nunca se acaban y al mismo tiempo
queremos dejar en constancia nuestras gratitudes a la siguiente institución y personas que
nos apoyaran siempre:
A la Universidad Técnica Estatal de Quevedo y a su Facultad de Ciencias Pecuarias, por las
oportunidades y facilidades brindadas en el transcurso de nuestros Estudios para obtener el
título como Ingeniera Agropecuaria y a los Docentes por su gran apoyo y motivación para
la culminación de nuestros estudios profesionales.
A la Decana Yenny Torres y al coordinador de carrera Ing. Gerardo Segovia por su apoyo
brindado en todo el trayecto universitario que supo resolver cada problema de los estudiantes
de una manera muy amable y respetuosa.
A la Secretaria de la facultad de ciencias pecuaria a la Sra. Yuni Carreño por su apoyo y
colaboración, por esa paciencia y actitud que desempeña día a día.
A mi Tutora de Tesis Ing. Diana Verónica Vèliz Zamora por su apoyo ofrecido en este
trabajo por su tiempo compartido y por impulsar el desarrollo de nuestra formación
profesional.
A el Dr. Camilo Mestanza Uquillas Presidente tribunal, Rommel Ramos Remache y Jaime
Vera Chang miembros del tribunal, por sus valiosos aportes y orientación brindada
para la culminación de nuestra investigación.
A mis Compañeros y Amigos que aportaron con un granito de arena durante mi etapa
universitaria a Génesis, Gabriela, Jeniffer, Digna, Briggite, Gina, Karen, Karla, Saira, Katty,
Jonathan, Edgar, Byron, Bryan, Fernando, Daniel, Adib, Samuel, Luiggi, Jeison, Erick,
Jairo, Henry, Alexis, Fabian, Jorge y a mi amigo Gabriel por haberme brindado su apoyo.
A Mis Tias/os, Miriam, Connie, Mary, Angelita, Mirella, Franklin, Antonio, Joffre, y Freddy
(+) Manuel como no estar agradecida con ellos si para mí son como mis padres que están
pendiente todo el tiempo de mi apoyándome siempre los amo.
A mi Cuñada Mariela por ser una mujer dedicada a su hogar y a todos mis primos en especial
a Lisseth, Evelin, Lorena, Melina, Josue, David, Josehp, Candy, Eder, Marlene, Leonardo y
a Miriam que me motivaban a seguir adelante ante cualquier obstáculo y no dejarme vencer
fácilmente los quiero.
vii
DEDICATORIA
Dedico este trabajo principalmente a mi Padre Celestial agradezco por darme la oportunidad
de vivir y ser el guiador en cada paso que doy brindándome su infinito amor, ya que todo es
bajo su dirección porque Él es quien nos ha guiado en todo el trayecto de nuestras vida, quien
nos ha enseñado el verdadero valor de la vida aquí en la tierra, gracias por fortalecer mi
corazón e iluminar mi mente y por haber puesto en mi camino a personas que han sido mi
soporte y compañía durante todo el periodo de estudio miro hacia atrás y veo como comencé,
con sinceridad no puedo comprender como he logrado mantenerme tanto y no he
desmallado, su amor es que me sostiene, me mantiene, me ayuda a estar de pie y no me deja
caer te amo Papito Dios.
A Mi Madre Nereida Andrade Solórzano, mi mejor amiga el cual le doy gracias a Dios por
ser el pilar fundamental en mi vida que a su vez ha sido padre y madre la que ha sabido
luchar y sobresalir día a día para darnos lo mejor, mi madre es una mujer que día y noche
Ora sin cesar por su familia solo le pido a Dios que nunca se aparte de su camino y como no
seguir sus pasos si gracias a su sabios consejos me impulsan a salir adelante, la amo con toda
mi vida y mientras Dios me de vida cuidare de ella.
A mi Abuelita Esperanza Solórzano Palacios, Que en Paz descanse dedico este trabajo,
Gracias a su amor y sabios consejos lograron que me convirtiera en la mujer que Soy.
A Mi Esposo Washington de la Torre, Quien me ha apoyado en el trayecto de mi trabajo
investigativo el que con su amor y paciencia ha sabido comprenderme y apoyarme en todo
momento y solo le pido a Dios que me ayude cada día a ser una buena esposa porque la
mujer sabia edifica su casa más la necia con sus manos la derriba. Pr: 14; 1
A Mis Hermanos, Abel, Alex y Valentina Velasquez por apoyarme, soportarme y estar
conmigo cuando más los he necesitado y a mis sobrinos, Sarita, Génesis, Tibaldo, Aarón y
Keyla a quienes los he querido como si fuesen mis propios hijos los adoro.
Esperanza Nereida Velasquez Andrade
viii
RESUMEN
La presente investigación se llevó a cabo en el Programa Didáctico de lombricultura del
Campus Experimental “La María”, perteneciente a la Universidad Técnica Estatal de
Quevedo, el cual se encuentra ubicada en el cantón Mocache, en el Km 7 de la vía Quevedo
– El Empalme, Provincia de Los Ríos, el objetivo de este trabajo investigativo fue evaluar
el efecto de las hormonas de crecimiento vegetativo Ácido Giberélico y Ecklonia máxima
sobre el desarrollo vegetativo en injertos de guanábana (Annona muricata L), cuyo fin es
aumentar el porcentaje de prendimiento de injertos de guanábana mejorando sus
características agronómicas las cuales estén aptas para la venta, para la realización de esta
investigación se empleó un diseño completamente al azar con cinco tratamientos, Acido
giberelico y ecklonia máxima y tres repeticiones, se midieron variables agronómicas como;
Porcentaje de prendimiento del injerto, diámetro de las yemas, altura total de los brotes,
número total de yemas, número de hojas y un análisis económico por tratamiento. El
tratamiento tres cuya dosis de aplicación fue de Ecklonia máxima 5ml/ L de agua obtuvo el
100 % de prendimiento de los injertos de guanábana, de igual manera para la variable
diámetro de las yemas obtuvo valores de 3,20 mm superando al testigo y a las demás dosis
evaluadas, en la variable altura total de los brotes la dosis aplicada de Ecklonia máxima 5ml/
L de agua obtuvo valores de 23,13 cm en comparación con el testigo y las dosis evaluadas,
de igual manera en las variables de número total de yemas y hojas el tratamiento tres
compuesto por Ecklonia máxima 5ml/ L de agua obtuvo los mayores valores en comparación
con los demás tratamientos evaluados, para el análisis económico, la mejor relación B/C se
obtuvo del tratamiento tres con un valor de 1,60 y una utilidad de 24 $ superando en su
mayoría a los demás tratamientos estudiados.
Palabras claves: hormonas, injertos, agronómicas, Ecklonia máxima.
ix
ABSTRACT
The present investigation was carried out in the Teaching Program of vermiculture of the
Experimental Campus "La María", belonging to the State Technical University of Quevedo,
which is located in the canton Mocache, at Km 7 of the Quevedo - El Empalme, Province of
Los Ríos, the objective of this research work was to evaluate the effect of the vegetative
growth hormones Gibberellic Acid and Ecklonia maximum on the vegetative development
in soursop (Annona muricata L) grafts, whose purpose is to increase the percentage of
Soursop grafts improving their agronomic characteristics which are suitable for sale, for the
realization of this research a completely randomized design was used with five treatments,
gibberellic acid and maximum ecklonia and three repetitions, agronomic variables were
measured as; Graft yield percentage, bud diameter, total height of shoots, total number of
buds, number of leaves and an economic analysis per treatment. Treatment three whose
application dose was Ecklonia maximum 5ml / L of water obtained 100% of spplants
grafting, in the same way for the variable diameter of the buds it obtained values of 3.20 mm
surpassing the control and the Other doses evaluated, in the variable total height of the
outbreaks, the applied dose of Ecklonia maximum 5ml / L of water obtained values of 23.13
cm in comparison with the control and the doses evaluated, likewise in the variables of total
number of buds and leaves treatment three composed of Ecklonia maximum 5ml / L of water
obtained the highest values compared to the other treatments evaluated, for economic
analysis, the best B / C ratio was obtained from treatment three with a value of 1.60 and a
profit of $ 24 surpassing most of the other treatments studied.
Keywords: hormones, grafts, agronomic, maximum Ecklonia
x
ÍNDICE DE CONTENIDO
CERTIFICACIÓN DE CULMINACIÓN DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN ..................... iii
RESUMEN ....................................................................................................................................... viii
ABSTRACT ....................................................................................................................................... ix
ÍNDICE DE TABLAS ..................................................................................................................... xiii
ÍNDICE DE ECUACIONES ............................................................................................................ xiv
ÍNDICE DE FIGURA ....................................................................................................................... xv
INDICE DE ANEXOS. .................................................................................................................... xvi
CODIGO DUBLIN ........................................................................................................................ xviii
INTRODUCCIÓN..................................................................................................................1
CAPÍTULO I: CONTEXTUALIZACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN..........................3
1.1. Problema de investigación. .................................................................................................... 4
1.1.1. Planteamiento del problema................................................................................................ 4
1.1.2. Formulación del problema. ................................................................................................. 4
1.1.3. Sistematización del problema. ............................................................................................ 5
1.2. Objetivos. ............................................................................................................................ 6
1.2.1. Objetivo general. ................................................................................................................. 6
1.2.2. Objetivos específicos. ......................................................................................................... 6
1.3. Justificación. ........................................................................................................................... 7
CAPÍTULO II: FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA DE LA INVESTIGACIÓN...........8
2.1. Marco conceptual. .................................................................................................................. 9
2.2.1. Guanábana (Annona muricata L.). ................................................................................... 11
2.2.2. Principales características de la guanábana. ..................................................................... 12
2.3. Condiciones edafoclimáticas. ........................................................................................... 12
2.3.1. Temperatura. ..................................................................................................................... 13
2.3.2. Precipitación. .................................................................................................................... 13
2.4. Propagación de la guanábana. ........................................................................................... 13
2.4.1. Propagación sexual. .......................................................................................................... 13
2.4.2. Propagación asexual. ........................................................................................................ 14
2.4.2.1. Injerto de púa terminal. ..................................................................................................... 14
2.4.2.2. Injerto de púa lateral. ........................................................................................................ 14
2.5. Control de plagas. ............................................................................................................. 15
2.5.1. Malezas. ............................................................................................................................ 15
xi
2.5.2. Plagas. ............................................................................................................................... 15
2.6. Hormonas vegetales. ......................................................................................................... 15
2.6.1. Auxinas. ............................................................................................................................ 15
2.6.1.1. Efecto fisiológico de las auxinas. ..................................................................................... 16
2.6.2. Giberelinas. ....................................................................................................................... 17
2.6.2.1. Efecto fisiológico de las giberelinas. ................................................................................ 17
2.6.3. Citoquininas. ..................................................................................................................... 18
2.6.4. Etileno. .............................................................................................................................. 18
2.6.5. Ácido abcísico. ................................................................................................................. 18
2.7. Ecklonia máxima. ................................................................................................................. 18
2.8. Ácido Giberélico .................................................................................................................. 19
2.9. Investigaciones relacionadas al tema. .................................................................................. 19
CAPÍTULO III: MÉTODOLOGIA DE LA INVESTIGACIÓN...................................23
3.1. Localización y duración de la investigación. ............................................................................ 24
3.2. Tipo de la investigación. ...................................................................................................... 24
3.3. Método de la investigación. ................................................................................................. 25
3.4. Fuentes de recopilación de información. .............................................................................. 25
3.5. Diseño de la investigación. ................................................................................................... 25
3.6. Instrumentos de la investigación. ......................................................................................... 26
3.6.1. Variables bajo estudio. ........................................................................................................... 27
3.6.1.1. Porcentaje de prendimiento. ............................................................................................. 27
3.6.1.2. Diámetro de la yema. ........................................................................................................ 27
3.6.1.3. Altura. ............................................................................................................................... 27
3.6.1.4. Número de hojas y yemas. ................................................................................................ 27
3.6.1.5. Análisis económico. .......................................................................................................... 27
3.7. Tratamiento de los datos. ..................................................................................................... 28
3.7.1. Procedimiento experimental. ............................................................................................ 28
3.8. Recursos humanos y materiales. .......................................................................................... 29
3.9.4. Equipos. ............................................................................................................................ 30
CAPÍTULO IV: RESULTADOS Y DISCUSIÓN...........................................................31
4.1. Porcentaje de prendimiento del injerto. ................................................................................ 32
4.2. Análisis del diámetro de las yemas (mm). ........................................................................... 32
4.3. Análisis de la altura total de los brotes. ................................................................................ 33
4.4. Análisis número total de yemas. .......................................................................................... 34
xii
4.5. Análisis número de hojas. .................................................................................................... 35
4.6. Análisis económico. ............................................................................................................. 36
CAPÍTULO V: CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES....................................38
5.1. Conclusiones. ............................................................................................................................ 39
5.2. Recomendaciones. ..................................................................................................................... 40
CAPÍTULO VI: BIBLIOGRAFIAS.................................................................................40
CAPÍTULO VII: ANEXOS...............................................................................................48
7.1. Anexos de los Andeva. .............................................................................................................. 49
xiii
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla
Página.
1. Clasificacion Taxonómica de la guanabana 10
2. Condiciones agroclimáticas en la finca “La María” 23
3. Análisis de Varianza (ANDEVA) del diseño experimental 25
4. Descripción de los tratamientos 26
5. Promedios registrados de la variable diámetro de las yemas (mm) en el estudio de
hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos
de guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
32
6. Promedios registrados de la altura de los brotes en el estudio de hormonas de
crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
33
7. Promedios registrados de Número total de yemas en el estudio de hormonas de
crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
34
8. Promedios registrados del número de hojas en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona
muricata L.) Mocache 2017.
35
xiv
ÍNDICE DE ECUACIONES
Ecuación Pág.
1. Modelo estadístico del diseño experimental 26
2. Porcentaje de prendimiento 27
3. Costo total 28
4. Beneficio neto 28
xv
ÍNDICE DE FIGURA
Figura Página.
1. Estructura de algunas auxinas naturales y sintéticas. 14
xvi
ÍNDICE DE ANEXOS.
Anexos Pág.
1. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los
15 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
46
2. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los
30 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Moache2017.
46
3. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los
45 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
46
4. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los
60 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017
46
5. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 15 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
47
6. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 30 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
47
7. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 45 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
47
8. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 60 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
47
xvii
9. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los
15 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
48
10. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los
30 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
48
11. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los
45 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
48
12. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los
60 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017
48
13. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 15 días
de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
49
14. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los
30 días de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
49
15. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 45 días
de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
49
16. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 60 días
de evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo
(ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017.
49
xviii
CÓDIGO DUBLIN
Titulo:
“Hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia
máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)”
Autora: Esperanza Nereida Velásquez Andrade
Palabras Clave: Hormonas Injertos Agronómico Ecklonia máxima
Fecha de Publicación
Editorial:
Resumen: La presente investigación se llevó a cabo en el Programa Didáctico de
lombricultura del Campus Experimental “La María”, perteneciente a la
Universidad Técnica Estatal de Quevedo, el cual se encuentra ubicada
en el cantón Mocache, en el Km 7 de la vía Quevedo – El Empalme,
Provincia de Los Ríos, el objetivo de este trabajo investigativo fue
evaluar el efecto de las hormonas de crecimiento vegetativo Ácido
Giberélico y Ecklonia máxima sobre el desarrollo vegetativo en injertos
de guanábana (Annona muricata L), cuyo fin es aumentar el porcentaje
de prendimiento de injertos de guanábana mejorando sus características
agronómicas las cuales estén aptas para la venta, para la realización de
esta investigación se empleó un diseño completamente al azar con cinco
tratamientos, Acido giberelico y ecklonia máxima y tres repeticiones, se
midieron variables agronómicas como; Porcentaje de prendimiento del
injerto, diámetro de las yemas, altura total de los brotes, número total de
yemas, número de hojas y un análisis económico por tratamiento. El
tratamiento tres cuya dosis de aplicación fue de Ecklonia máxima 5ml/
L de agua obtuvo el 100 % de prendimiento de los injertos de guanábana,
de igual manera para la variable diámetro de las yemas obtuvo valores
de 3,20 mm superando al testigo y a las demás dosis evaluadas, en la
variable altura total de los brotes la dosis aplicada de Ecklonia máxima
5ml/ L de agua obtuvo valores de 23,13 cm en comparación con el
testigo y las dosis evaluadas, de igual manera en las variables de número
total de yemas y hojas el tratamiento tres compuesto por Ecklonia
máxima 5ml/ L de agua obtuvo los mayores valores en comparación con
los demás tratamientos evaluados, para el análisis económico, la mejor
relación B/C se obtuvo del tratamiento dos con un valor de 1,60 y una
xix
utilidad de $ 24 superando en su mayoría a los demás tratamientos
estudiados.
Palabras claves: hormonas, injertos, agronómicas, Ecklonia máxima.
The present investigation was carried out in the Teaching Program of
vermiculture of the Experimental Campus "La María", belonging to the
State Technical University of Quevedo, which is located in the canton
Mocache, at Km 7 of the Quevedo - El Empalme, Province of Los Ríos,
the objective of this research work was to evaluate the effect of the
vegetative growth hormones Gibberellic Acid and Ecklonia maximum
on the vegetative development in soursop (Annona muricata L) grafts,
whose purpose is to increase the percentage of Soursop grafts improving
their agronomic characteristics which are suitable for sale, for the
realization of this research a completely randomized design was used
with five treatments, gibberellic acid and maximum ecklonia and three
repetitions, agronomic variables were measured as; Graft yield
percentage, bud diameter, total height of shoots, total number of buds,
number of leaves and an economic analysis per treatment. Treatment
three whose application dose was Ecklonia maximum 5ml / L of water
obtained 100% of spplants grafting, in the same way for the variable
diameter of the buds it obtained values of 3.20 mm surpassing the
control and the Other doses evaluated, in the variable total height of the
outbreaks, the applied dose of Ecklonia maximum 5ml / L of water
obtained values of 23.13 cm in comparison with the control and the
doses evaluated, likewise in the variables of total number of buds and
leaves treatment three composed of Ecklonia maximum 5ml / L of water
obtained the highest values compared to the other treatments evaluated,
for economic analysis, the best B / C ratio was obtained from treatment
two with a value of 1.60 and a profit of $ 24 surpassing most of the other
treatments studied.
.
Keywords: hormones, grafts, agronomic, maximum Ecklonia
1
INTRODUCCIÓN
La mayoría de las especies del género Annona de la familia Annonaceae, han tenido su
origen en América tropical, subtropical y otras en África; sin embargo, su cultivo se ha
extendido a todos los continentes. Entre las numerosas especies del género Annona, las más
conocidas son: Annona reticulata L., Annona squamosa L., Annona cherimolla Mill y
Annona muricata L., siendo esta última la denominada guanaba en los países de habla
hispana, y la que presenta las mejores características para su industrialización (1) .
El guanábano (Annona muricata L). Es un árbol tropical de gran potencial económico
gracias a las ventajas comparativas para su producción, es una especie que ha presentado
demanda a nivel nacional por sus propiedades alimenticias que hacen que se comercialice
en fresco o en la fabricación de bebidas, néctares y otras conservas (2). Además, es
considerada una planta medicinal que constituye una alternativa común para el tratamiento
del cáncer gástrico y gastrointestinal en muchos países del mundo (3).
Por tanto es necesario incrementar los volúmenes de producción para suplir las necesidades
del mercado ecuatoriano, aumentando las áreas sembradas o incrementando los rendimientos
por árbol (1). De manera que, el surgimiento de la propagación clonal, como una alternativa
viable para obtener pureza varietal o conferir resistencia a enfermedades, es una opción muy
aceptable ya que genera una producción más precoz. Los tres métodos de reproducción
asexual o clonal son: por injerto, por ramilla e in vitro (4).
Las hormonas en las plantas desempeñan un rol importante, ya que están vinculadas con
todas las respuestas morfogénicas de las plantas, son relativamente escasas en número, su
interacción permite regular todas las respuestas de crecimiento y desarrollo durante la
ontogenia de las plantas. Entre las fitohormonas más importantes tenemos: auxinas,
giberelinas, citoquininas, etileno y ácido abscísico y otras cuya importancia en distintos
procesos de crecimiento y desarrollo (5).
Ecklonia máxima (Kelpak), por su proceso de extracción único, contiene una relación muy
alta de Auxinas sobre las Citoquininas. Esta dominancia de Auxinas estimula un vigoroso
desarrollo de raíces primarias y segundarias en las plantas, así aumenta la producción de
hormonas vegetales, resultado en un incremento de la producción de los cultivos. Las
2
poderosas hormonas son liberadas. Este proceso, único para Kelpak, se conoce como
Tecnología de explosión Celular en frio. Este proceso extrae en contenido de las células sin
el uso de productos químicos, calor, congelamiento o deshidratación. Como resultado se
obtienen un potente bioestimulante orgánico además de ecológico. El producto se puede
almacenar por lo menos dos años en el envase original. Contiene un delicado balance de
biorreguladores que promueven el desarrollo radicular y foliar del cultivo, mejorando la
capacidad de las plantas para sobreponerse a condiciones de estrés, maximizando su
rendimiento (6).
Las Giberelinas promueven la floración en algunas especies de plantas, sustituyendo incluso
los requerimientos de horas de luz o de bajas temperaturas para florecer. Son utilizadas para
acelerar la brotación en particular, la aplicación de giberelinas al inicio de brotación estimula
el crecimiento de los brotes iniciados. Los mecanismos fisiológicos de las plantas conducen
a la activación de los tejidos meristemáticos en estado de latencia por efecto de la dominancia
apical eliminada mediante la poda presentándose el crecimiento rápido de los brotes e
inducción de la activación de cojinetes florales, giberelinas tienen gran habilidad para
estimular el crecimiento en plantas enanas, considerándose que su principal papel en el
crecimiento es a través del estímulo de la división celular en el meristemo sub apical de los
tallos, desempeñando un papel importante en el crecimiento celular (7).
La presente investigación está encaminada al estudio exploratorio en cultivos de guanábana
gigante, injertos con patrones de guanábana Nacional (Annona muricata), aplicando
hormonas de crecimiento vegetativo Ecklonia máxima (Kelpak) y Acido Giberelico (new
gibb), cuya composición está conformada por las principales hormonas que la planta necesita
para su desarrollo, el estudio comprende el comportamiento agronómico en la fase de vivero.
3
CAPÍTULO I
CONTEXTUALIZACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN
4
1.1. Problema de investigación.
1.1.1. Planteamiento del problema.
La producción de plantas en el sector no ha sido difundida a gran escala ya que no se ha
convertido en un gran negocio, pero de gran incertidumbre a la vez ya que quienes se
disponen a sembrar esta fruta, tienen expectativas con la producción irregular y a largo
plazo, debido a que los injertos en viveros no se optimizan el uso de hormonas como una
alternativa que pueda asegurar un mejor prendimiento en los injertos, y a la vez ofrecer
mayor confiabilidad hacia los productores que dispongan de germoplasmas confiables,
para el establecimiento de plantaciones de guanábana, y así impulsar la producción de
esta fruta que en nuestro país no es relevante.
• Diagnóstico.
La (Annona muricata) es una fruta que tiene gran demanda en el país, tanto así que no
está en la capacidad de exportar y satisfacer las demandas internacionales. La causa se
relaciona con la falta de mejoramiento genético de la especie que optimice la
productividad para la apertura de mercados más competitivos.
• Pronóstico.
La siembra de plantas sin una selección o mejoramiento genético de clones productivos
está mermando el potencial productivo y desarrollo competitivo de la guanábana en los
campos ecuatorianos donde no se cultivan intensivamente y la producción es insuficiente
a consecuencia del establecimiento de un material genético no mejorado. Por otra parte,
los mejoramientos en base a injertos no se vienen empleando hormonas, las mismas que
desempeñan funciones vitales en la fisiología de la planta y proporcionan a la planta el
vigor productivo a futuro.
1.1.2. Formulación del problema.
Se determinará el efecto de las hormonas de Ácido Giberélico (New Gibb) y Ecklonia
máxima (Kelpak) en injertos de guanábana gigante con patrones de guanábana nacional
(Annona muricata), donde el campo de análisis será el comportamiento agronómico en la
5
fase de vivero. Los resultados obtenidos serán decisivos en el mejoramiento de clones de
guanábana mediante injertos.
1.1.3. Sistematización del problema.
¿La aplicación de hormonas de crecimiento logrará algún efecto sobre el comportamiento
agronómico de injertos de guanábana?
6
1.2. Objetivos.
1.2.1. Objetivo general.
Evaluar el efecto de las hormonas de crecimiento vegetativo Ácido Giberélico y Ecklonia
máxima sobre el desarrollo vegetativo en injertos de guanábana (Annona muricata L).
1.2.2. Objetivos específicos.
• Determinar la mejor dosis con hormonas de crecimiento vegetativo Ácido
Giberélico y Ecklonia máxima en las variables agronómicas en injertos de
guanábana.
• Establecer cuál de las dos hormonas de crecimiento vegetativo se obtiene mejor
porcentaje de prendimiento en la fase de injertación en vivero.
• Realizar análisis económico de los diferentes tratamientos empleados.
7
1.3. Justificación.
Se justifica la presente investigación que tiene como finalidad estudiar el comportamiento
de dos hormonas de crecimiento Ácido Giberélico y Ecklonia máxima de esta manera
determinar el producto con mayor eficacia sobre el prendimiento de los injertos en clones
de guanábana (Annona muricata L.) que permita a los viveristas, obtener una mayor
rentabilidad económica al ofrecer plántulas mejoradas.
Para dar apertura aun mercado más competitivo es necesario intensificar el cultivo de esta
fruta ya que tiene mucha demanda tanto nacional como internacional, su producción en
viveros es mínima y poco comercial, ya sea por la desconfianza de los agricultores al
adquirir material poco productivo y cuya producción es al largo plazo.
8
CAPÍTULO II
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA DE LA INVESTIGACIÓN
2. Si
9
2.1. Marco conceptual.
Fitohormonas.
Son sustancias naturales que se forman en diversos tejidos u órganos de las plantas y
luego son transportados por la savia a otros tejidos u órganos del propio vegetal donde en
pequeñas cantidades cumplen una función importante, ya sea acelerando o retardando el
efecto de algún estimulo físico (8).
Auxinas.
Las auxinas son un grupo de fitohormonas que se relacionan con la elongación, tropismo,
dominancia apical, abscisión, enraizamiento y otros (24).
Citoquininas.
Constituyen un grupo de hormonas vegetales y se encuentra implicada en la división
celular, modificación de la dominancia apical, diferenciación de tallos y otros (23).
Etileno.
Es la única hormona vegetal gaseosa, simple y pequeña, presente en angiospermas y
gimnospermas aunque también en bacterias y hongos además de musgos, hepáticas,
helechos y otros organismos (7).
Ácido abcísico.
Es un compuesto que existe naturalmente en plantas inferiores (algas, musgos e incluso
algunos hongos) y superior, participa en procesos del desarrollo y crecimiento así como
en la respuesta adaptativa a estrés tanto de tipo biótico como abiótico (9), (10).
Giberelinas.
Las giberelinas (GAs) son hormonas de crecimiento vegetativo, diterpenoides
tetracíclicos involucrados en varios procesos de desarrollo en vegetales (28), (29).
10
Guanábana.
La guanábana, es una planta perteneciente a la familia Annonacea, género Annona y de
nombre científico Annona muricata Linn, es originaria de América y África tropical, y
debido a la llegada de los españoles a América fue distribuida en los trópicos y hoy en
día es posible encontrarla en el oeste de la India, en Norte y Suramérica, Islas del Pacífico
y en el Sureste de Asia (11), (12), (13).
Injerto de púa terminal.
Es una variación del injerto de púa, sin embargo, en vez de hacerse a un lado del patrón
se hace en la parte superior del mismo (22).
Vivero.
Es un lugar donde se coloca un conjunto de instalaciones agronómicas, en el que se
cultivan diferentes tipos de plántulas hasta que alcanzan un estado adecuado según su
especie para su comercialización y venta (15).
Sustrato.
El término “sustrato”, que se aplica en la producción viverística, se refiere a todo material sólido
diferente del suelo que puede ser natural o sintético, mineral u orgánico y que colocado en
contenedor, de forma pura o mezclado, permite el anclaje de las plantas a través de su sistema
radicular; el sustrato puede intervenir o no en el proceso de nutrición de la planta allí ubicada (14).
Repique.
Si las plantas deben permanecer más tiempo en el vivero es necesario hacer el repique. El repique
consiste en trasladar la plántula que se formó en bolsa pequeña a una bolsa más grande para
impulsar su crecimiento y desarrollo de las raíces evitando la competencia de absorción de
nutrientes y luz entre las plántulas (15).
Banco de germoplasma.
El Banco de Germoplasma está constituido por un banco de semillas, una unidad de conservación
in vitro y una unidad de colecciones de campo. (16).
11
Ontogenia.
Ontogenia Es el conjunto de cambios que sufre un organismo desde su origen hasta su
muerte Etapas de la edad ontongénica Juventud Madurez muerte. Las etapas son:
embriogénesis, formación de semillas, germinación de semillas, crecimiento vegetativo,
crecimiento reproductivo, muerte de la planta (17).
2.2. Marco referencial.
2.2.1. Guanábana (Annona muricata L.).
Las especies de la familia Annonaceae se caracterizan por el arreglo en espiral de los
estambres y carpelos de la flor y por tener semilla con endospermo ruminado. La
Guanábana pertenece al género Guanabí y a la sección Evannona (18).
2.2.1.1. Origen.
La guanábana es originaria de las regiones tropicales de América del Sur. En Costa Rica,
hasta hace pocos años sólo había árboles dispersos; sin embargo, la importancia que ha
adquirido el fruto en el mercado agroindustrial, tanto nacional como internacional, ha
despertado el interés para desarrollar el cultivo comercialmente.
Actualmente en el país hay aproximadamente setecientas hectáreas cultivadas,
distribuidas en plantaciones de dos a cinco hectáreas.
A continuación en la tabla 1, se indica la clasificación taxonómica de la guanábana:
Tabla 1. Clasificación taxonómica de la guanábana.
Reino Plantae
División Magnoliophyta
Clase Magnoliopsida
Subclase Archylamudae
Orden Magnoliales
Familia Annonaceae
Genero Annona
Especie Muricata L.
FUENTE: CALLE (18).
12
2.2.2. Principales características de la guanábana.
Los árboles de guanábana varían mucho en cuanto al crecimiento, follaje y copas, lo cual
se debe en algunos casos a la luminosidad, al manejo, procedencia y a otros factores (18),
esta planta perenne se caracteriza por presentar una altura cercana a los 6-10m. Su tronco
es recto, de corteza lisa y color grisáceo, ramifica a baja altura siendo el ramaje intenso
con ramas delgadas y grisáceas o pardeo grisácea, cuyo sistema radicular extensivo le
permite soportar períodos relativamente largos de sequía, ya que explora y cubre una
amplia franja de terreno. En suelos sin ningún obstáculo, las raíces llegan a penetran más
de 1m de profundidad (19), (17).
Sus hojas son ovadas - oblongas y ocasionalmente elíptico, miden de 5 a 15 cm de largo
por 2 a 6 cm de ancho, usualmente coto – acuminadas en el ápice y agudas o un poco
redondeadas en la base, de color verde oscuro, brillante en el haz, amarillentas con
estructuras semejantes a bolsas en las axilas de los nervios laterales por el envés (20).
Las flores son hermafroditas, se forman sobre ramitas cortas auxiliares o directamente
sobre el tronco, además poseen tres sépalos color verde oscuro y seis pétalos de color
cremoso; sus estambres son numerosos y dispuestos alrededor de los pistilos por lo que
tienen abundantes ovarios (21).
2.3. Condiciones edafoclimáticas.
Es una especie susceptible al frío, y es la anonácea cuyos requerimientos de clima es el
más tropical; cálidos y húmedos, característicos de altitudes menores de 1000 msnm.
Requiere una temperatura promedio de 25 a 28 ºC y una precipitación media anual de
1000 a 3000 mm bien distribuida, aunque puede cultivarse en zonas con una estación seca
moderada. Esta especie se desarrolla desde el nivel del mar hasta los 1000 m, aunque la
altitud óptima para el cultivo está entre 400 a 600 m. Los suelos en que se plante
guanábana comercialmente deben ser profundos, arenosos y con muy buen drenaje. Son
más convenientes los suelos con pH entre 5,5 y 6,5 (19).
13
2.3.1. Temperatura.
La guanábana es una especie susceptible al frío, y es la anonácea cuyos requerimientos
de clima más tropical, húmedo y cálido (23 a 30ºC), característico de altitudes inferiores
a 1000 msnm (20).
2.3.2. Precipitación.
Se requiere entre 900 y 1400 mm. por año con una marcada estación seca. Cuando los
niveles de la lluvia son inferiores a los 900 mm. Año es necesario completar con riegos
(21).
2.4. Propagación de la guanábana.
El método de propagación tradicional más utilizado es por la vía sexual (semillas),
también se puede utilizar la vía asexual (injertos y esquejes) (22).
2.4.1. Propagación sexual.
La guanábana usualmente no presenta problemas en la propagación por semilla; sin
embargo debido a que la germinación es relativamente lenta y las plántulas son
susceptibles a Phytophthora sp. (23); Por lo que la reproducción por semilla, ha originado
una gran heterogeneidad entre los árboles de una misma plantación, en relación a la altura
de los árboles, tamaño, forma y números de frutos por árboles, esto representa una de las
principales causas de la baja producción por unidad cultivada. Esta situación, nos lleva a
realizar una selección de los mejores árboles y propagarlos asexualmente (24).
La guanábana usualmente no presenta problemas en la propagación por semilla sexual;
sin embargo, debido a que la germinación es relativamente lenta y las plántulas son
susceptibles a Phytophthora sp. Es que se recomienda colocarla en agua a 42 C por 15
minutos y luego en una solución Benomil (Benlate) de un gramo por litro por 24 horas.
Se ponen a germinar en eras previamente desinfectadas, colocando la semilla en forma
horizontal. Entre los 15 y 22 días comienza la germinación cuando las plantas tienen de
3 a 4 hojas se trasplantan a bolsas de polietileno. El principal problema en vivero es el
ataque de antracnosis (Colleotrichum gloesporoides), por lo que se recomienda las
atomizaciones previas (25).
14
2.4.2. Propagación asexual.
La utilización de un método vegetativo de propagación se justifica solo si previamente se
seleccionan arboles de alta productividad, ya que el árbol de guanábana injertado será
más precoz que el obtenido a través de semillas (23). En diversas fuentes bibliográficas
se reporta que este frutal se puede propagar por injertos, acodos y estacas por lo general
la guanábana se reproduce por semillas sexuales, la cual puede producir
aproximadamente al cuarto año y la propagación por estaca, púas e injertos entre 27 y 36
meses (25).
2.4.2.1. Injerto de púa terminal.
La técnica de púa terminal, es una variación del injerto de púa, sin embargo, en vez de
hacerse a un lado del patrón se hace en la parte superior del mismo. Para el cual se debe
realizar el despuntado del patrón a 15 cm de altura. Luego cortamos el tallo, hacia abajo,
unos 4 cm, abriendo el tallo en dos mitades, entre las que vamos a colocar la vareta;
Tomamos una vareta que contenga 3 o 4 yemas del mismo grosor del patrón y en el lado
más grueso hacemos dos cortes inclinados de 4 centímetros, uno a cada lado, para darle
la forma de una cuña; Introducimos la cuña de la vareta en el corte realizado en el tallo
del patrón; Amarramos el injerto con cinta plástica, sujetándolo bien. Una vez amarrado,
se le coloca una bolsa de plástico transparente, para protegerlo de la humedad y favorecer
el prendimiento; El injerto se suelta a los 45 días de haberse realizado (26).
2.4.2.2. Injerto de púa lateral.
Este tipo de injerto consiste en colocar en la parte lateral de un patrón, el extremo terminal
de una vareta con tres o cuatro yemas funcionales; para realizar el injerto se procede a
hacer una abertura en el costado del patrón de aproximadamente dos centímetros de
longitud y en la vareta porta yema se hacen dos cortes lisos a los lados en forma de una
cuña, de tal manera que penetre en la hendidura y coincida con el corte del patrón, luego
se amarra fuerte el injerto, utilizando Parafilm o cinta de injertar. Se cubren las varetas
injertadas con plástico transparente (blanco) durante 21 días, tiempo en que se retira la
cinta y se continúa con el proceso de aclimatación de injertos prendidos (27).
15
2.5. Control de plagas.
2.5.1. Malezas.
Si se quiere un mejor aprovechamiento del fertilizante, mejor producción, reducir el
ataque de plagas, es importante el control de las malezas, pues éstas sirven de hospederos
y obstruyen el acceso a la plantación cuando se realizan labores agrícolas. El control de
las malezas se realiza en forma manual, mecánica o aplicando productos químicos, ya sea
sistémicos no selectivos como Glifosato (controla gramíneas y hoja ancha), en dosis de
1,5 a 2,1 L/ha, o sistémicos selectivos como Fluazifop P- Butil (solo controla gramíneas)
en dosis de 1.5 L/ha, o un producto de contacto no selectivo como Paraquat en dosis de
2,0 L/ha (28).
2.5.2. Plagas.
La plaga más agresiva es el perforador del fruto (Cercanota anonella spp.). La larva de
esta mariposa oviposita en pecíolos, ramas y frutos y cuando la larva emerge, emigra y
penetra en el fruto. El orificio de entrada se distingue fácilmente por los excrementos que
expulsa afuera y por la apariencia de aserrín. También destruye las flores. La producción
es diezmada por esta plaga, debido a la destrucción de las flores, a la paralización del
crecimiento de los frutos afectados y al aumento de la incidencia de antracnosis, su control
es difícil, por lo que debe hacerse oportunamente para que los resultados sean
satisfactorios (22).
2.6. Hormonas vegetales.
Las hormonas vegetales son sustancias orgánicas que se encuentran a muy baja
concentración, se sintetizan en determinado lugar de la planta y se traslocan a otro, que
es donde ejercen sus efectos reguladores; pero todavía no se conoce el mecanismo preciso
mediante el cual funcionan (29).
2.6.1. Auxinas.
Las auxinas son un grupo de hormonas vegetales naturales que regulan muchos aspectos
del desarrollo y crecimiento de plantas. La forma predominante en las plantas es el ácido
indolacético (IAA), muy activo en bioensayos y presente comúnmente en
16
concentraciones nanomolares. Otras formas naturales de auxinas son el ácido 4-cloro-
indolacético (4-Cl- IAA), ácido fenilacético (PAA), ácido indol butírico (IBA) y el ácido
indol propiónico (30).
Figura 1. Estructura de algunas auxinas naturales y sintéticas.
FUENTE: (5).
2.6.1.1. Efecto fisiológico de las auxinas.
Crecimiento y formación de raíces: Debido a que las auxinas influencian tanto la
división, como el crecimiento y diferenciación celular, están involucradas en muchos
procesos del desarrollo, en algunos de ellos interactuando con otras fitohormonas.
Diversos bioensayos han sido descritos para analizar respuestas a auxinas, los cuales han
sido útiles en la identificación de compuestos con actividad típica de auxinas y de plantas
mutantes con defectos en la síntesis, metabolismo o respuestas a auxinas. Uno de los
ensayos que caracterizan el efecto de auxinas en el desarrollo es la regulación del
crecimiento radicular el cual es definido desde el desarrollo embrionario (31), así mismo
las auxinas estimulan el crecimiento de los tallos y coleoptilos, inhiben el crecimiento de
la raíz primaria, pero estimulan la formación de raíces secundarias.
Dominancia apical: La distribución en gradiente de auxina desde el ápice primario hacia
la base de la planta reprime el desarrollo de brotes axilares laterales a lo largo del tallo,
manteniendo así lo que se denomina como dominancia apical (32).
Desarrollo de flores y frutos: Plantas que son tratadas con inhibidores de transporte de
auxinas o plantas mutantes defectuosas en transportar auxina muestran deformidades en
17
las inflorescencias y en la arquitectura floral, lo que sugiere que esta hormona es necesaria
para un adecuado desarrollo de flores (33).
2.6.2. Giberelinas.
Las giberelinas (GAs) son hormonas de crecimiento diterpenoides tetracíclicos
involucrados en varios procesos de desarrollo en vegetales. A pesar de ser más de 100 el
número hallado en plantas, sólo son unas pocas las que demuestran actividad biológica.
Su descubrimiento en plantas se remonta a la época de los años 30, cuando científicos
japoneses aislaron una sustancia promotora del crecimiento a partir de cultivos de hongos
que parasitaban plantas de arroz causando la enfermedad del “bakanoe” o “subida de las
plantas”. El compuesto activo se aisló del hongo Gibberella fujikoroi por Eichi Kurosawa
en 1926 por lo que se denominó “giberelina”. El efecto del hongo sobre las plantas
afectadas consistía en un notable incremento en altura, aunque con fuerte merma en la
producción de grano. El mayor crecimiento se debió al alto contenido de este factor de
crecimiento producido por el ataque fúngico (34,35).
2.6.2.1. Efecto fisiológico de las giberelinas.
El efecto más notable de las GAs es inducir crecimiento en altura, en muchos casos
atribuibles a GA1 endógena. En el caso de plantas enanas, éstas sintetizan solo pequeñas
cantidades de GA1, en cambio en variedades denominadas nana (muy enana), dicha
síntesis mínima no se da al bloquearse la secuencia de síntesis antes de alcanzar la fase
de GA12-aldehido. Otras interrupciones ocurren entre GA20 y GA1. El aislamiento del
“gene mendeliano para altura” demostró que éste codifica para la enzima GA3-β-
hidroxilasa que convierte la GA20 inactiva en GA1 activa. Técnicas químicas modernas
de detección han mostrado que plantas altas poseen GA1 mientras que en enanas
predomina GA20 (36).
Promueven el desarrollo súbito de inflorescencias y la floración en muchas plantas,
particularmente en aquellas de día largo (PDL), aunque no en aquellas de día corto (DC),
salvo algunas excepciones. En asociación con fitocromos, cumplen un papel en la
inducción de la floración; en particular, aunque de manera no conocida, iniciando señales
a genes meristemáticos del tipo AGAMOUS vinculados a la diferenciación de estructuras
florales tales como pétalos, estambres, carpelos, etc (37).
18
2.6.3. Citoquininas.
Las Citoquininas el ápice de la raíz hasta los tallos, moviéndose a través de la savia en
los vasos correspondientes al xilema. Los diferentes tipos de Citoquininas son: Zeatina,
Kinetina y Benziladenina (29).
2.6.4. Etileno.
Es la única hormona vegetal gaseosa, simple y pequeña, presente en angiospermas y
gimnospermas aunque también en bacterias y hongos además de musgos, hepáticas,
helechos y otros organismos. Siendo un gas puede moverse rápidamente por los tejidos
no tanto por transporte sino por difusión. Su efecto además se inicia con cantidades
mínimas, las cuales ya provocan respuestas (38).
2.6.5. Ácido abcísico.
La fitohormona ácido abscísico (ABA) fue identificada en los 1960 tras estudios
realizados sobre la abscisión de frutos y la dormancia de yemas. El grupo liderado por F.
Addicott aisló compuestos que provocaban la abscisión de frutos de algodón y en 1963
identificó una de ellas, abscisina II, como ABA. Poco después otro grupo de investigación
liderado por P. Wareing aisló una sustancia de hojas de Acer pseudoplatanus que
promovía latencia de yemas, esta llamada dormina, también fue identificada como ABA.
Desde entonces, ABA ha sido implicada en múltiples procesos fisiológicos como
regulación de crecimiento, dormancia de semillas, germinación, senescencia, división
celular, control de la apertura de estomas y respuestas a estreses ambientales como sequía,
salinidad, baja temperatura, ataque por patógenos y radiación ultravioleta (39), (10), (9).
2.7. Ecklonia máxima.
Kelpak es un concentrado líquido de alga Ecklonia máxima cosechada fresca. Alga que
tiene una alta tasa de crecimiento, proporcional a su concentración de fitohormonas. Las
algas con que se produce Kelpak son cuidadosamente cosechadas en un proceso rotativo
cada 2 años, asegurando la uniformidad de la materia prima. Kelpak es producido bajo
un método de extracción patentado llamado Cold CellBurst, el cual usa solo diferenciales
de presión para romper las paredes celulares. Al no usar Químicos, ni altas, ni bajas
temperaturas, asegura el contenido hormonal del alga dentro del producto, especialmente
19
las auxinas las cuales son muy inestables al pH alto y a las temperaturas o las
fitohormonas quedan retenidas (no activas para las plantas) en restos orgánicos del
producto, este es el caso de productos en pastas o cremas. En el caso de Kelpak por ser
líquido y sin agregado de sales u otros compuestos, todas las Fitohormonas estas
biológicamente activas.
• Propiedades y ventajas
Kelpak la mayor producción de raíces segundarias estimula una mayor absorción de agua
y nutrientes desde el suelo, que junto a una mayor producción endógena de citoquininas,
produce plantas con mejor follaje, determinando incrementos en la producción y calidad
de las cosechas. (40).
2.8. Ácido Giberélico
El Ácido Giberélico (New Gibb) es un potente regulador de crecimiento vegetal a base
del ácido giberelico, que es producido vía fermentación biológica del hongo gibberella
fujikauroi. Usado para estimular el crecimiento y desarrollo del follaje, obtener fruto de
mayor tamaño y calidad, con cosecha más uniforme (41).
• Acción fitosanitaria.
Es un potente regulador de crecimiento vegetal a base del ácido giberélico, se usa para
estimular el crecimiento y desarrollo del follaje, obtener frutos de mayor tamaño y
calidad, con cosechas más uniformes, además es compatible con los fungicidas,
herbicidas, insecticidas y fertilizantes de uso común (41).
2.9. Investigaciones relacionadas al tema.
En su ensayo denominado Efecto del ácido giberelico y agua a 4º C en la germinación de
las semillas de guanaba (Annona muricata L.), mostro la respuesta del efecto del ácido
giberélico, agua a 4º C y diferentes tiempos de almacenamiento, en el mejoramiento de
la viabilidad de las semillas de guanaba A. muricata L., la semilla de guanábana fue
almacenada en diferentes periodos (0 días, 15 días, 30 días y 80 días) a temperatura
ambiente (22º C). El siguiente tratamiento consistió en colocar la semilla a 4º C
reportando un 55,56% de germinación, en el cual no se encontró diferencias significativas
con el tratamiento de 5000 ppm descrito en el acápite antes mencionado, y en los
20
tratamientos que se usó el tiempo de almacenamiento, el mejor tratamiento fue el de 80
días de almacenamiento, el cual reportó una velocidad de germinación de 76 días, dicho
tratamiento fue el que reportó la menor velocidad de germinación, el tratamiento de
treinta días reportó una velocidad de 143 días y el de 15 días reportó una velocidad de
germinación de 171 días (42).
En su investigación Propagación y fertilización del cultivo del guanábano (Annona
muricata L.) Se seleccionaron frutos de una parcela experimental del Centro Socialista
de Investigación y Desarrollo Frutícola y Apícola (CESID-Frutícola y Apícola) de
CORPOZULIA (10°49´46,6´´LN y 71°46´29,2´´LO), ubicado en el municipio Mara,
estado Zulia, Venezuela, el cual se encuentra ubicado en zona de vida de bosque muy
seco tropical. Se seleccionaron 16 plantas de A. muricata de 12 años de edad, injertadas
sobre A. muricata, A. montana, A. glabra y a pie franco, fertilizadas con una dosis de 480
kg.año-1 de nitrógeno, aplicada de forma quincenal y trimestral, generándose ocho
tratamientos bajo un diseño experimental en parcelas divididas. Determinando un efecto
significativo (P≤0,05) de la frecuencia de fertilización sobre la variación del
comportamiento de las variables BF, BM, DP y BS. Se obtuvieron frutos grandes (818,26
g de BF y 136,76 mm de DP) y con mayor contenido del mesocarpo (546,61 g) con un
plan de fertilización de 480 kg•año-1 de fertilizante nitrogenado (urea), aplicado con una
frecuencia trimestral (43).
En su ensayo evaluación de ácido giberélico y naftalenacético por diferentes métodos de
aplicación sobre frutos de sandía, indico el efecto del uso de dos hormonas de crecimiento
en tres métodos de aplicación sobre el rendimiento y calidad de los frutos de sandía
(Citrullus lanatus (Thunb)) para la exportación en fresco. Los productos y las
concentraciones evaluadas fueron: Acido Giberelico a 40 kg-1 Acido y Naftalenacético a
35 kg año-1 cada uno de estos aplicados con atomizador en tres métodos. Los métodos de
aplicación evaluados fueron: una aplicación al ovario ínfero de la flor, dos aplicaciones
al ovario ínfero de la flor y sumersión total del ovario ínfero de la flor. El estudio se
realizó en la empresa agroexportadora ZACAPAEXPO S.A ubicada en Finca El Oasis,
Valle de la Fragua, Zacapa. El diseño experimental utilizado fue de bloques
completamente al azar con siete tratamientos y cuatro repeticiones.
Las variables de respuesta fueron: rendimiento del cultivo (kg-1), calidad de la fruta
expresada en concentración de sólidos solubles (Grados Brix), porcentaje de frutos
21
deformes y la rentabilidad de la aplicación para cada uno de los tratamientos. El
tratamiento que presentó los mejores resultados fue la utilización de Ácido Giberélico
(44).
En su investigación de Evaluación de reguladores orgánicos de crecimiento para el
engrose del fruto de naranjilla (Solanum quitoense Lam.). San miguel de los bancos –
Ppichincha, evaluó plantas de naranjilla Híbrido Puyo de 9 meses de edad. Los productos
evaluados fueron: Agromil plus, Crezymax, Rooting, Maxigrow Excel, 2,4-D ester
butílico y un testigo absoluto (sin aplicaciones). Se estudió d1 - dosis recomendada por
la casa comercial -, y d2 - dosis recomendada aumentada en 50 % -. Se estudiaron dos
aplicaciones, a1 (en flor y cuajado) y a2 (en flor, cuajado y engrose). MAXIGROW
EXCEL fue el más eficiente para el engrose del fruto de naranjilla con un rendimiento de
11,52 t-1 y un diámetro promedio de fruto de 49,12 mm. Se debe aplicar en dosis alta,
llegando a un diámetro de fruto promedio de 46,43 mm y un rendimiento de 11,07 t-1; con
tres aplicaciones obteniendo un diámetro de 42,52 mm y un rendimiento de 9,02 t-1 (45).
En su ensayo denominado Efecto De Las Giberelinas Sobre El Crecimiento Y Calidad
De Plántulas De Tomate, donde evaluó el efecto de las giberelinas en el crecimiento y
calidad de plántulas de tomate. Se sembraron semillas de tomate hibrido Sun 7705 en
sustrato de turba; se utilizaron 20 plántulas por tratamiento que se regaron con solución
nutritiva Steiner al 50 %, bajo un diseño experimental de bloques al azar con 4
repeticiones: 10000, 8000, 6000 y 4000 μg-1 de giberelinas más un testigo. A partir de la
aparición de las hojas verdaderas se inició la evaluación con la aplicación foliar de
giberelinas cada 5 días. Los resultados demostraron que la aplicación de giberelinas
incrementó significativamente la altura, el diámetro del tallo, el largo y número de hojas,
así como el peso fresco total, peso fresco de la raíz y volumen radicular. Los parámetros
anteriores son importantes de considerar en el vigor y calidad de las plántulas antes del
trasplante (46).
En su investigación La zeatina fomenta la germinación de semillas de anón (Annona
squamosa L.), indico que en Colombia el anón es propagado sexualmente, ya que el
método asexual no ha alcanzado resultados óptimos. Sin embargo, debido al bajo e
irregular potencial germinativo, este método es poco efectivo y los cultivos extensivos
son escasos. En semillas de anón común provenientes de Apulo (Cundinamarca), se
evaluó el efecto de cuatro concentraciones de zeatina (0,25 mg L-1; 0,5 mg L-1; 1 mg L-1
22
y 4 mg L-1) sobre la germinación, para lo cual las semillas fueron inhibidas 48 horas en
zeatina comercial y posteriormente llevadas a pruebas de germinación en un fitotrón a
35°C. Con el uso zeatina se obtuvieron mejores porcentajes de germinación (69,6% con
1 mg L-1), mayores velocidades de germinación (1,91 semillas germinadas/día con 0,25
mg L-1) y menores tiempos de germinación (9 días con 0,25 mg L-1) (47).
23
CAPÍTULO III
MÉTODOLOGIA DE LA INVESTIGACIÓN
24
3.1. Localización y duración de la investigación.
La presente investigación se llevó a cabo en el Programa Didáctico de lombricultura del
Campus Experimental “La María”, perteneciente a la Universidad Técnica Estatal de
Quevedo, la cual se encuentra ubicada en el cantón Mocache, a la altura del Km 7 de la
vía Quevedo – El Empalme, Provincia de Los Ríos, entre las coordenadas geográficas
01° 6’ 20’’ de latitud Sur y de 79° 29’ 23’’ de longitud Oeste, a una altura de 75 msnm
con una temperatura media de 25.47 °C.
El trabajo experimental tuvo lugar entre los meses de julio a octubre del 2017 en épocas
seca. Se evaluaron los efectos en el prendimiento y desarrollo de los 2 tipos de hormonas
antes mencionadas en las plantas de guanábana, en el Programa Didáctico de
lombricultura.
A continuación, en la siguiente tabla se muestra las condiciones agroclimáticas de la finca
“La María”:
Tabla 2. Condiciones agroclimáticas en la finca “La María”
FUENTE: (48)
3.2. Tipo de la investigación.
La investigación es de Tipo Experimental, donde se determinó el efecto de la aplicación
de hormonas vegetativas en injertos de guanábana gigante, de modo que se pueda lograr
obtener plantas con mejores características fenotípicas. La investigación tributa a la Línea
de Investigación exploratoria: puesto que el estudio tiene pocos antecedentes y la
información es escaza sobre el uso de hormonas en el crecimiento de plantas injertadas
de guanábana.
Parámetros Promedio
Temperatura, °C 25.47
Altitud, msnm 75
Humedad relativa, % 85.84
Precipitación, mm/año 2223.85
Heliofanía, horas/ luz /año 898.66
Evaporación, promedio anual 78.30
Zona ecológica Bsh – T
Topografía Ligeramente Ondulada
25
3.3. Método de la investigación.
• Se utilizó el método de observación para comprobar los efectos de Ácido
Giberélico (New Gibb) y Ecklonia máxima (Kelpak) en el injerto, en donde se
llevó un registro semanal de las actividades realizadas en el campo experimental
y la toma de datos se la realizó después de la injertación en el cultivo de
guanábana, además se realizó un análisis económico de los tratamientos.
• De igual forma a través del método analítico se analizó el efecto de las hormonas
de Ácido Giberélico (New Gibb) y Ecklonia máxima (Kelpak) sobre el injerto,
permitiendo identificar si existe una variación en el proceso fisiológico del injerto,
así como las características agronómicas de cada uno de los tratamientos.
3.4. Fuentes de recopilación de información.
• Primarias. La información cuantitativa de las variables de respuestas se obtuvo
de la medición directa del porcentaje de prendimiento, más las características
agronómicas como altura de planta, diámetro del tallo, número de hojas en los
intervalos de 15 días posteriores a la injertación, los resultados fueron
contrastados en resultados similares y en base a literatura teórica.
• Secundarias. En esta investigación tienen mucha relevancia la información
bibliográfica obtenida, de revistas científicas como: Scielo, Redalyc, Libros y
tesis de grado. Además, hay que destacar la participación de los buscadores
académicos como: Google académico, especialmente de tesis, revistas indexadas,
evidencia científica comprobable y documentada entre otros.
3.5. Diseño de la investigación.
Para el presente estudio se utilizó un Diseño Completamente al Azar (DCA), con cinco
tratamientos y tres repeticiones. Para la comparación de las medias de los tratamientos se
aplicó la prueba de Tukey (p≤ 0.05). Cada unidad experimental estuvo conformada por 8
plantas.
El modelo matemático del diseño experimental es:
𝒀𝒊𝒋 = µ + 𝜶𝒋 + ɛ𝒊𝒋 (Ecuación 1)
26
Dónde:
𝒀𝒊𝒋 = La puntuación del j-ésima repetición del i-ésimo tratamiento
µ = La media común a todos los datos del experimento
𝜶𝒋 = El efecto del tratamiento i.
ɛ𝒊𝒋 = Error experimental o efecto aleatorio de muestreo.
En la tabla 3, Se muestra el esquema del análisis de varianza donde se utilizó un diseño
completamente al azar.
Tabla 3. Análisis de Varianza (ANDEVA) del diseño experimental.
Fuente de variación (FV) Grados de libertad (GL)
Tratamiento (t- 1) 4
Error experimental t (r - 1) 10
Total (t*r) -1 14
ELABORADO: AUTORA
En la tabla 4, se indica la descripción y codificación de los tratamientos, donde se
encuentran las hormonas a evaluar en la presente investigación:
Tabla 4. Descripción de los tratamientos.
Tratamiento Hormonas Rep UE Total
T1 Sin Aplicación 3 8 24
T2 Ácido Giberelico (0.50 ml|/L agua) 3 8 24
T3 Ecklonia máxima (5 ml/L agua) 3 8 24
T4 Ácido Giberelico (1 ml/L agua) 3 8 24
T5 Ecklonia máxima ( 10 ml/L agua) 3 8 24
Total 120
3.6. Instrumentos de la investigación.
Como instrumentos de investigación para resolver la formulación y sistematización del
problema se analizó el efecto de las variables independientes y dependientes.
27
3.6.1. Variables bajo estudio.
3.6.1.1. Porcentaje de prendimiento.
Esta variable se registró a los 30 y 40 días después de la injertación evaluando todas las
plantas de cada unidad experimental y se realizó por diferencia, el número de plantas
injertas menos el número de las plantas muertas que se realizó con la siguiente formula:
Porcentaje de Prendimiento (%)= 𝐼𝑉
𝑇𝐼
x100
Dónde:
I.V.= 𝑝𝑜𝑟𝑐𝑒𝑛𝑡𝑎𝑗𝑒 𝑑𝑒 𝑝𝑟𝑒𝑛𝑑𝑖𝑚𝑖𝑒𝑛𝑡𝑜(%)𝐼.𝑉
𝑇.𝐼𝑋100 Injertos vivos
T.I.= Total injertados
3.6.1.2. Diámetro de la yema.
El diámetro de la yema se midió con la ayuda de un calibrador, a una distancia de 2 cm
del injerto.
3.6.1.3. Altura.
Después de que transcurran los 15, 30, 45 y 60 días de la injertación, se registró esta
variable midiendo el tamaño de injerto con un flexómetro desde la base de unión con el
patrón hasta su ápice.
3.6.1.4. Número de hojas y yemas.
Esta variable se la realizó contabilizando el número de hojas formadas después del injerto
a los 15, 30, 45, y 60días.
3.6.1.5. Análisis económico.
El análisis económico se lo determinó en base al rendimiento total y el costo de los
tratamientos, lo cual incluye:
(Ecuación 2)
28
• Costo total de los tratamientos.
Se lo determinó sumando los costos fijos y los costos variables. Se aplicó la siguiente
ecuación:
𝑪𝑻 = 𝐶𝐹 + 𝐶𝑉 (Ecuación 3)
Dónde:
CT: Costo total.
CF: Costo fijo.
CF: Costo variable.
• Beneficio neto de los tratamientos.
Se lo obtuvo restando el ingreso bruto de los costos totales del tratamiento y se lo
determinó con la siguiente ecuación:
𝑩𝑵 = 𝐼𝐵 − 𝐶𝑇 (Ecuación 4)
Dónde:
BN: Beneficio neto.
IB: Ingreso bruto.
CT: Costo total.
3.7. Tratamiento de los datos.
El análisis estadístico se realizó mediante el análisis de varianza (ANDEVA) y los
promedios serán comparados mediante la prueba de Tukey (P≤0,05), con la utilización
de un software libre, cuadros, figuras y el procesamiento de los datos se realizará en hojas
de cálculo.
3.7.1. Procedimiento experimental.
Para iniciar la investigación, primero se realizó un vivero para la adecuación de las plantas
injertadas de guanábana, hasta que estén listas para la siembra y establecimiento del
29
cultivo, previo a esto se procedió a la toma de datos del porcentaje de prendimiento
respectivo.
Una vez que las plantas se están fuera de la atmosfera controlada en que se encontraba,
se las colocó en un determinado sitio del vivero, donde se le realizó las labores culturales
requeridas por las plantas, después se comenzó a la aplicación de las hormonas antes
mencionadas.
Las aplicaciones se las ejecutaron cada 8 días y se procedió a la toma de datos
semanalmente, se continuó con las labores habituales de control de maleza y
fitosanitarios.
3.8. Recursos humanos y materiales.
Talento humano que contribuirá en la realización del presente proyecto de investigación
es el que a continuación se nombra:
• Directora del proyecto de investigación M.Sc. Diana Vèliz Zamora.
• Estudiante y autora del Proyecto de Investigación Esperanza Velásquez Andrade.
3.9. Materiales.
Para la presente investigación se utilizaron los siguientes materiales.
3.9.1. Material genético.
Se utilizó injertos de guanábana cuyos patrones fueron de la variedad nacional con varetas
de guanábana gigante.
3.9.2. Insumo.
• Ácido Giberélico (New Gibb 10%)
• Ecklonia máxima (Kelpak)
• Herbicida
• Insecticidas
• Plaguicidas
• Compost
30
3.9.3. Materiales.
• Atomizadores
• Baldes
• Fundas plásticas
• Libro de campo
• Machete
• Rastrillo
• Cintra métrica
• Tijeras
• Piolas
• Fundas de banano
3.9.4. Equipos.
• Computadora
• Cámaras
• Cuaderno
• Lápiz
31
CAPÍTULO IV
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
32
4.1. Porcentaje de prendimiento del injerto.
En la variable porcentaje de prendimiento del injerto mostrada en el Grafico 1 a los 40
días después de realizado el injerto, se puede apreciar la comparación de los tratamientos
estudiados, que el mayor porcentaje de prendimiento lo obtuvieron la dosis de aplicación
dos (Ecklonia máxima5.0 ml/L agua) y tres (Ácido Giberelico 0.50 ml|/L agua) con un
promedio de 100% a 95%, mientras que el tratamiento con menor valor fue el testigo con
un promedio de 75% de prendimiento, Espinoza, K. considera que un buen porcentaje de
prendimiento esta dado a la buena calidad en la mano de obra al momento de la
injertación, control fitosanitario que se implemente a los propagadores y a una buena
compatibilidad entre los patrones y los injertos (49).
Tabla 5. Porcentaje de prendimiento en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache.2017 TRATAMIENTOS PORCENTAJE DE PRENDIMIENTO
T1 Testigo 75 a
T2 Ácido Giberelico
(0,50 ml|/L agua)
95.83 a b
T3 Ecklonia máxima
(5,0 ml/L agua)
100 b
T4 Ácido Giberelico
(1,0 ml/L agua)
91.67 a b
T5 Ecklonia máxima
( 10,0 ml/L agua)
87.50 a b
4.2. Análisis del diámetro de las yemas (mm).
En la Tabla 6, se encuentra la variable diámetro de las yemas expresadas en milímetros,
en la cual se encontró alta significancia estadística (p>0.05), para los tratamientos a los
15, 30 y 60 días de evaluación, sin presentar diferencias a los 45 días, el cual se evidencia
en los anexos uno al cuatro.
El tratamiento que mayores promedios obtuvo para esta variable durante los 15, 30 y 60
días de evaluación fue la dosis de aplicación dos (Ácido Giberelico 0.50 ml|/L agua) con
valores de 2.28; 2.69 y 3.53 respectivamente aumentando gradualmente durante toda la
etapa evaluativa superando al testigo que obtuvo promedios de 2.57 durante la última
evaluación, con coeficientes de variación de 11, 18; 13.51; 12.47 y 10.69,
correspondientemente
33
La dosis Ecklonia máxima 10.0 ml/L agua obtuvo el menor valor entre las dosis evaluadas
con valores de 2.95, siendo superior al testigo, estos promedios fueron mayores en
comparación con los de Cárdenas, J. el cual consiguió los mismos valores aplicando 6-
bencilaminopurina a yemas injertadas de cacao alcanzando un diámetro de 2.50 mm (50).
Silva, H. indica que el uso o la aplicación de las hormonas de crecimiento Giberelina y
Citoquininas favorecen de manera indirecta, mejorando la nutrición aumentando las
características agronómicas y fisiológicas, ayudando además a activar de manera
temprana la actividad celular del injerto (51).
Tabla 6. Promedios registrados de la variable diámetro de las yemas (mm) en el estudio de
hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017. TRATAMIENTOS DÍAS DE EVALUACIÓN
15 30 45 60
T1 Testigo 1.32 a 1.76 a 2.18 a 2.57 a
T2 Ácido Giberelico
(0,50 ml|/L agua)
2.28 b 2.69 b 2.60 a 3.53 b
T3 Ecklonia máxima
(5,0 ml/L agua)
2.26 b 2.47 a b 2.54 a 3.20 a b
T4 Ácido Giberelico
(1,0 ml/L agua)
2.15 b 2.54 a b 2.65 a 3.06 a b
T5 Ecklonia máxima
( 10,0 ml/L agua)
1.85 a b 2.41 a b 2.99 a 2.95 a b
CV%
11.18 13.51 12.47 10.69
PROMEDIO
1.97 2.37 2.59 3.06
4.3. Análisis de la altura total de los brotes.
El análisis de la varianza para la variable altura total del brote indicó, que existe alta
significancia estadística (p>0.05) en todas las etapas evaluativas para los tratamientos, tal
como se puede evidenciar en los anexos del cinco al ocho.
En la Tabla 7, se encuentra descrito el tratamiento que mayor valor alcanzó para esta
variable durante toda la etapa evaluativa fue la dosis número tres (Ecklonia máxima 5.0
ml/L agua) con un promedio de 23.13 cm, superando de esta manera al testigo que obtuvo
un promedio de 18.34 a los 60 días de evaluación respectivamente, estos valores son
superiores a los alcanzados por Curco, L. el cual aplico hormonas ANA y AIB obteniendo
altura total del brote valorados en 23.08 cm, indicando que la aplicación de las hormonas
vegetativas tienen un comportamiento fisiológico positivo en las plantas (52).
34
La dosis de aplicación que menor valor obtuvo fue la de Ácido Giberelico (0.50 ml|/L
agua) en comparación con las dosis evaluadas, superando de igual manera al testigo,
Weaver, R. argumenta que el uso de las hormonas en dosis aumentadas provoca una
disminución en las plantas reduciendo drásticamente su crecimiento y desarrollo (53).
Los coeficientes de variación quedan descritos en la misma Tabla 6.
Tabla 7. Promedios registrados de la altura de los brotes en el estudio de hormonas de
crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de
guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
TRATAMIENTOS DÍAS DE EVALUACIÓN 15 30 45 60
T1 Testigo 16.36 a
17.26 a
18.28 a
18.34 a b
T2 Ácido Giberelico
(0,50 ml|/L agua)
16.45 a
17.08 a
18.45 a
18.63 a
T3 Ecklonia máxima
(5,0 ml/L agua)
2263
b 22.30
b 23.25
b 23.13
b
T4 Ácido Giberelico
(1,0 ml/L agua)
20.09 a b 21.21
b 21.71 a b 19.63 a b
T5 Ecklonia máxima
( 10,0 ml/L agua)
20.37 a b 21.88
b 21.88 a b 21.50 a b
CV%
9.18 6.72 7.83 15.70
PROMEDIO
19.18 19.94 20.71 20.18
Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05)
4.4. Análisis número total de yemas.
En la Tabla 8, se encuentran expresados los promedios del variable número total de
yemas, en la cual se muestra que existió significancia estadísticas a los 15, 30 y 60 días
de evaluación, mientras que a los 45 días no se encontró significancia para los
tratamientos evaluados según el análisis de la prueba de Tukey (p>0.05), tal como se
evidencia en los anexos ocho al doce.
En la misma tabla se encuentran los promedios por tratamientos, donde se observa que la
dosis de aplicación tres Ecklonia máxima 5,0 ml/L agua obtuvo los mayores valores
durante los 15, 30, 45 y 60 días alcanzando promedios de 2.42; 3.33; 2.80 y 3.90
respectivamente en comparación con el testigo que alcanzo un número total de yema de
2.31 durante la última etapa evaluativa, Darquea, J. señala que las hormonas de
crecimiento tienen un mayor o aumentado campo de acción y concentración en los ápices
35
de las plantas, indicándose como zonas jóvenes donde se encuentran acumuladas más
hormonas incidiendo en un número mayor de yemas (54).
La dosis que obtuvo valores inferiores durante la evaluación fue del tratamiento cuatro
Ácido Giberelico 1.0 ml/L agua, cuyo promedio a los 60 días de evaluación fue de 2.33
respectivamente superando al testigo, Fanstein, R. atribuye que la temperatura es uno de los
factores importantes que influyen en el desarrollo y crecimiento de los injertos, alegando
que a mayor temperatura se reduce posiblemente el crecimiento de las yemas,
produciendo plantas incompletas (55). Los coeficientes de variación quedan expresados
en la misma tabla.
Tabla 8. Promedios registrados de Número total de yemas. en el estudio de hormonas de
crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana
(Annona muricata L.) Mocache 2017. TRATAMIENTOS DÍAS DE EVALUACIÓN
15
30 45 60
T1 Testigo 2.08 a b 2.16 a
2.19
2.31 a
T2 Ácido Giberelico
(0.50 ml|/L agua)
2.03 a b 2.33 a b 2.26 a 2.44 a
T3 Ecklonia máxima
(5.0 ml/L agua)
2.42
b 3.33
b 2.80 a 3.92
b
T4 Ácido Giberelico
(1.0 ml/L agua)
2.16 a b 2.23 a b 2.33 a 2.33 a
T5 Ecklonia máxima
( 10.0 ml/L agua)
1.67 a
2.63 a b 2.88 a 2.92 a b
CV%
9.81 16.90 10.43 17.21
PROMEDIO
2.07 2.53 2.49 2.78
4.5. Análisis número de hojas.
En la Tabla 9, se encuentran expresados los promedios de la variable número de hojas, en
la cual se aprecia que existió significancia estadística para todos los días de evaluación
según el análisis de la prueba de Tukey (p>0.05), tal como se evidencia en los anexos 12
al 16.
En la Tabla descrita se encuentran los tratamientos evaluados, donde se observa que los
mayores valores para esta variable los obtuvo la dosis de aplicación tres Ecklonia máxima
5.0 ml/L agua, obteniendo valores de 12.35 aumentando hasta 24.08 desde los 15 hasta
60 días de evaluación respectivamente, superando al testigo que obtuvo promedios de
10.83 y 14.16 para las durante las mismas etapas ya mencionadas, Castro, P. indica que
la respuesta a la aplicación exógena de las hormonas de crecimiento puede o esta
36
interrelacionado también con las diferentes técnicas y cantidades aplicadas a los injertos,
o con las características propias del cultivar (56).
La dosis aplicada de Ácido Giberelico 0,50 ml|/L agua obtuvo los menores valores entre
los tratamientos evaluados no siendo así en comparación con el testigo alcanzando
promedios de 15.88 y 14.16 durante los 60 días de evaluación respectivamente. Los
coeficientes de variación quedan expresados en la misma tabla 8.
Tabla 9. Promedios registrados del número de hojas en el estudio de hormonas de crecimiento
vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona
muricata L.) Mocache 2017. TRATAMIENTOS DÍAS DE EVALUACIÓN
15 30 45 60
T1 Testigo 10.83
b c 12.33 a
13.63 a
14.16 a
T2 Ácido Giberelico
(0.50 ml|/L agua)
5.37 a
12 a
13.84 a
15.88 a
T3 Ecklonia máxima
(5.0 ml/L agua)
12.35
c 18,88
b 19.82
b 24.08
b
T4 Ácido Giberelico
(1.0 ml/L agua)
10.49 a b c 13,55 a
14.45 a
14.92 a
T5 Ecklonia máxima
( 10.0 ml/L agua)
5.71 a b
15.3 a b 16.08 a
17.54 a
CV%
21.37 13.05 15.85 9.51
PROMEDIO
8.95 14.41 15.56 17.31 Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0,05)
4.6. Análisis económico.
En la Tabla 10, se encuentran los resultados del análisis económico por tratamiento:
En la cual se puede observar que el mayor valor de utilidad $24 se logró con la aplicación
de la hormona Ecklonia máxima (5,0 ml/L agua) siendo de esta manera el tratamiento
más rentable en comparación con las demás dosis evaluadas, pero que generan una
relación beneficio/ costo superior a 1.0, esta relación B/C es inferior a los reportados por
Coro, J el cual en su investigación obtuvo una utilidad superior a $50 y un B/C de 1.47
(12), mientras que Loor, J. consiguió una rentabilidad superior a $60 utilizando hormonas
ANA Y AIB. (1)
37
Tabla 10. Ingreso bruto, utilidad y beneficio costo de los tratamientos en el estudio de
hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico, Ecklonia máxima) en injertos
de guanábana (Annona muricata L.) Mocache 2017.
Rubro Tratamientos
1 2 3 4 5
Plantas 24 24 24 24 24
Fundas de siembra 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5
Fundas de banano 10 10 10 10 10
Hormonas
New Gibb 0 1.4 0 1.4 0
Kelpak 0 0 12.5 0 12.5
Pesticidas
Mata babosas 1.5 1.5 1.5 1.5 1.5
Bombas manuales 0 3 3 3 3
Total/tratamiento 38 42.4 53.5 42.4 53.5
Costos/planta 2.73 1.93 2.23 2.12 2.97
Plantas producidas 15 22 24 20 18
Precio de plantas 2.50 3 3 3 3
Ingreso 37.50 66 72 60 54
Utilidades 4 24 19 18 1
Relación beneficio/ costo 1.00 1.60 1.35 1.40 1.00
Fuente. Autor
38
CAPÍTULO V
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
39
5.1. Conclusiones.
• Con la aplicación de Ecklonia máxima a 5.0 ml/L agua a los injertos de guanábana
se logró una mejora significativa en las características agronómicas evaluadas
respecto a los demás tratamientos.
• La hormona aplicada que mayor porcentaje de prendimiento dio fue la dosis tres
compuesta de Ecklonia máxima (5.0 ml/L agua) con un promedio de 100% de
plantas injertadas vivas, seguida de la dosis dos de Ácido Giberelico (0.50 ml/L
agua) que dio un porcentaje de 95% de plantas injertadas en comparación con el
testigo que obtuvo los menores valores con un 75% de prendimiento.
• La mayor relación beneficio/costo se obtuvo con la dosis dos de Ácido Giberelico
(0.50 ml/L agua) con un costo de 1.60
40
5.2. Recomendaciones.
• Se recomienda el uso de la hormona vegetativa Ecklonia máxima a dosis de 5.0
ml/L agua con el fin de aumentar y mejorar las características agronómicas en
injertos de guanábana.
• Con la aplicación de la hormona Ecklonia máxima se obtuvo un buen porcentaje
de prendimiento en plantas injertadas.
• Con el fin de obtener una buena rentabilidad y relación B/C se recomienda aplicar
la hormona Ecklonia máxima (5.0 ml/L agua).
41
CAPÍTULO VI
BIBLIOGRAFÍA
42
6.1. Literatura Citada.
1. Avila F. Efecto del acido giberelico y agua a 4º c en la germinación de las semillas
de guanaba (Annona muricata l.). [Online].; 2005 [cited 2016 Diciembre 06.
Available from: http://biblioteca.usac.edu.gt/tesis/01/01_2168.pdf.
2. Murcia D, Salamanca M. Búsqueda de Microorganismos potenciales controladores
de Bephratelloides maculicollis. Tesis de grado ed. Varela A, editor. Bogotá -
Colombia: Pontificia Universidad Javeriana; 2006.
3. Correa J, Ortiz D, Larrahondo J, Sánchez M, Pachón H. Actividad antioxidante en
guanábana (Annona muricata l.):una revisión bibliográfica. Boletín Latinoamericano
y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas. 2012 Enero; 11(2).
4. Zúñiga G. Efecto de cuatro Bioestimulantes en el comportamiento agronómico de
plantas ingertadas de cacao (Theobroma cacao L.) cultivar CCN - 51. Tesis de grado
ed. Catillo H, editor. Quevedo - Ecuador: Universidad Técnica Estatal de Quevedo;
2013.
5. Jordán M, Casaretto J. Hormonas y Reguladores del Crecimiento. 4th ed. Libertador
B, editor. Chile: Ediciones Universidad de La Serena; 2006.
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CAPÍTULO VII
ANEXOS
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7.1. Anexos de los Andeva.
Anexo 1. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los 15 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
Anexo 2. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los 30 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
Anexo 3. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los 45 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
Anexo 4. Análisis de la varianza para la variable diámetro de las yemas a los 60 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 1.95 4 0.49 10.06 0.0016**
Error 0.49 10 0.05 10.06
Total 2.44 14
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 1.54 4 0.38 3.74 0.0414*
Error 1.033 10 0.10 3.74
Total 2.56 14
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 1.02 4 0.25 2.38 0.1214ns
Error 1.07 10 0.11 2.38
Total 2.09 14
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 1.48 4 0.37 3.45 0.0509*
Error 1.07 10 0.11 3.45
Total 2.56 14
50
Anexo 5. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 15 días de evaluación
en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico,
Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.) Mocache
2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 88.57 4 22.14 7.14 0.0055**
Error 31.02 10 3.10
Total 119.59 14
Anexo 6. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 30 días de evaluación
en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico,
Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.) Mocache
2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 78.81 4 19.7 10.97 0.0011**
Error 17.96 10 1.80
Total 96.77 14
Anexo 7. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 45 días de evaluación
en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico,
Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.) Mocache
2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 59.92 4 19.7 5.66 0.0121*
Error 26.29 10 1.80
Total 85.81 14
Anexo 8. Promedios registrados de la altura total del brotes a los 60 días de evaluación
en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido giberelico,
Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.) Mocache
2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 55.64 4 13.91 5.4 0.014
Error 25.74 10 2.57
Total 81.38 14
51
Anexo 9. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los 15 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
Anexo 10. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los 30 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 2.76 4 0.69 3.76 0.0407
Error 1.84 10 0.18
Total 4.6 14
Anexo 11. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los 45 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 1.23 4 0.31 4.55 0.0236*
Error 0.68 10 0.07
Total 1.91 14
Anexo 12. Análisis de la varianza para la variable número total de yemas a los 60 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 5.57 4 1.39 6.07 0.0096**
Error 2.29 10 0.23
Total 7.87 14
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 0.87 4 0.22 5.21 0.0152*
Error 0.41 10 0.04
Total 1.28 14
52
Anexo 13. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 15 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl
CM F P-valor
Tratamientos 122.21 4 30.55 8.36 0.0031*
Error 36.57 10 3.66
Total 158.78 14
Anexo 14. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 30 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 94.91 4 23.73 6.70 0.0069**
Error 35.41 10 3.54
Total 130.31 14
Anexo 15. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 45 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 79.11 4 19.78 3.25 0.0595*
Error 60.89 10 6.09
Total 140.00 14
Anexo 16. Análisis de la varianza para la variable número de hojas a los 60 días de
evaluación en el estudio de hormonas de crecimiento vegetativo (ácido
giberelico, Ecklonia máxima) en injertos de guanábana (Annona muricata L.)
Mocache 2017.
F.V SC Gl CM F P-valor
Tratamientos 190.84 4 47.71 17.59 0.0002
Error 27.12 10 2.71
Total 217.96 14
53
Imagen 3. Relleno de fundas a base de compost. Imagen 4. Cada atmosfera cuenta con 10 plantas.
Imagen 1. Selección de varetas de la guanábana
gigante.
Imagen 2. Preparación para la injertación.
54
Imagen 5. Realizamos el primer corte a la funda de
la atmosfera a los 21 días y el segundo corte a los 25
días.
Imagen 6. Al cumplir el mes de injertada las
plantas se procede abrir las fundas de la
atmosfera.
Imagen 7. Preparando del sitio experimental
considerando factores climáticos.
Imagen 8. Hormonas utilizadas para cada
tratamiento ácido giberelico (new gibb),
ecklonia máxima (kelpak).
55
Imagen 9. Determinación de la altura del injerto
de guanábana.
Imagen 10. Determinación del diámetro del
injerto guanábana.
Imagen 11. Planta de guanábana injertadas a los
60 días de experimentación.