UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
1
PRÁCTICA No.1
OBSERVACIÓN HISTÓLOGICA DE TESTÍCULO Y OVARIO.
Dra. María Dolores González Vidal, Biol. Rosalba Granillo Núñez
Revisado por: Dr. Enrique Pedernera Astegiano
Firma y nombre del profesor que evalúa _________________________________________ Fecha de entrega _____________________ CALIFICACIÓN__________________
MARCO TEÓRICO
El testículo inicia su desarrollo en la etapa embrionaria, presentando cordones testiculares, con abundantes
espermatogonias, células intersticiales o de Leydig y precursoras de las células de Sertoli. La espermatogénesis
se inicia en la pubertad y continúa durante toda la vida reproductiva del individuo.
En el hombre, la testosterona producida por las células intersticiales o de Leydig es necesaria para la
diferenciación fenotípica del embrión y la adquisición de las características sexuales secundarias en la pubertad.
La fertilidad del individuo puede verse alterada cuando factores genéticos, hormonales o ambientales afectan
la espermatogénesis.
OBJETIVO
Identificar la espermatogénesis normal en los humanos, su regulación hormonal y la influ encia de factores
ambientales, así como los problemas médicos relacionados con la alteración de la misma.
PARTE 1: OBSERVACIÓN DE CORTES DE TESTÍCULO FETAL, ADULTO Y ESPERMATOZOIDES.
MATERIAL
1. Microscopio óptico.
2. Laminillas de cortes de testículo fetal y adulto de humano con tinción H-E.
3. Laminillas con espermatozoides de humano, teñidas con Klüver -Barrera y Feulgen.
MÉTODO
I. Observación de preparaciones histológicas
A continuación, observa las laminillas con cortes histológicos de testículo fetal y de adulto humano, e
identifica en las fotografías los tipos celulares encontrados.
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
2
a) Identifica los componentes en corte de testículo fetal de humano.
Corte de testículo fetal teñido con H-E. 20X
b) Identifica los componentes celulares en los cordones seminíferos.
Corte de testículo fetal teñido con H-E. 40X
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
3
1. ____________________________________________ 2. ____________________________________________
3. ____________________________________________ 4. ____________________________________________
c) Identifica los componentes celulares en un túbulo seminífero de un corte de
testículo adulto de humano.
Corte de testículo humano teñido con H-E. 20X
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
4
Corte de testículo humano teñido con H-E. 40X
Corte de testículo humano teñido con H-E. 40X
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
5
1. _______________________________________ 2. _______________________________________
3. _______________________________________ 4. _______________________________________
5. _______________________________________ 6. _______________________________________ 7. _______________________________________
8. _______________________________________
d) Observación de espermatozoides al microscopio óptico.
Espermatozoides teñidos con la técnica de Kluver-Barrera 40X
e) Identifica lo observado al microscopio óptico.
1) ________________________________________________________________
________________________________________________________________
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
6
Espermatozoides teñidos con la técnica de Kluver-Barrera 100X
2) Encontraste espermatozoides anormales _______________________________ 3) ¿Qué anormalidades presentaban?______________________________________
f) Investiga:
Hay una gran variabilidad en los límites de “normalidad” del semen eyaculado.
Busca y escribe los valores normales del semen en el humano, anota al final la bibliografía consultada.
1) Número de espermatozoides por ml. __________________________________ 2) Cantidad en mililitros de líquido seminal por eyaculado __________________
3) Tipo de movimiento de los espermatozoides ____________________________ 4) Velocidad habitual del espermatozoide_________________________________
5) % de espermatozoides anormales compatible con fertilidad _________________ 6) pH del semen.___________________________________________________
II. Define los siguientes términos: 1. Azoospermia ____________________________________________________________ __
2. Astenozoospermia__________________________________________________________
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
7
3. Oligozoospermia___________________________________________________________
4. Teratozoospermia __________________________________________________________
5. Discinesis_________________________________________________________________
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
8
PARTE 2: OBSERVACIÓN DE OVARIO FETAL Y ADULTO
Firma y nombre del profesor que evalúa ______________________________________ Fecha de entrega ________________ CALIFICACIÓN__________________
MARCO TEÓRICO
El ovocito humano fue observado por primera vez en el siglo XIX, descubrimiento que dio
lugar a investigaciones que fueron aclarando los cambios morfológicos que cíclicamente presentan los ovarios de las mujeres en edad reproductiva y su relación con los cambios
endometriales descritos a principios del siglo XX. La ovogénesis se inicia en la vida intrauterina cuando la ovogonia se diferencia en ovocito
primario, que entra en la primera división meiótica, experimentando la primera detención meiótica por el factor inhibidor de la meiosis (FIM), el cual es producido por las células
foliculares. La ovogénesis se reinicia en la pubertad de la mujer por el estímulo hormonal de la adenohipófisis.
La foliculogénesis se lleva a cabo en el ovario, bajo la regulación de las gonadotrofinas (FSH y LH), el folículo primordial, se desarrolla pasando por primario secundario y terciario y simultáneamente el ovario produce las hormonas 17 beta estradiol y la progesterona que
regulan el ciclo sexual femenino.
Fases de maduración folicular
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
9
Imagen que muestra el desarrollo folicular, hasta el folículo terciario, maduro o de Graaf. OBJETIVO
Reconocer el aspecto y las características de los folículos en desarrollo, primordia les,
primarios, secundarios y terciarios, preovulatorios o de Graaf. MATERIAL Y MÉTODO
1. Microscopio óptico 2. Laminillas con cortes de ovario fetal y adulto
3. Se observarán al microscopio cortes histológicos de ovarios fetal y del adulto, para reconocer los componentes celulares y relacionarlos con las fotografías.
I. Identifica los componentes celulares en un folículo primordial.
II. Identifica los componentes celulares en un folículo primario.
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
10
Corte de ovario de gata con tinción tricrómica de Mallory. 40X 1. _______________________________________________________________
2. _______________________________________________________________ 3. _______________________________________________________________
4. _______________________________________________________________ 5. _______________________________________________________________
UNIVERS IDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE MEDICINA
DEPARTAMENTO DE EMBRIOLOGÍA
11
III. Identifica en este folículo sus componentes celulares.
Corte de ovario de gata con tinción tricrómica de Mallory. 40X
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Anota la bibliografía consultada de acuerdo al formato APA ( http://normasapa.com/).
Agradecimientos: A la Bióloga Martha Martínez Cisneros por las preparaciones histológicas.
A la C. D. María José Gómora Herrera por las micrografías. A la Dra. María Cristina Márquez Orozco por las preparaciones histológica de ovario.
9