ÁREA DE CONOCIMIENTO DE CIENCIAS DEL MAR
DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA MARINA
POSGRADO EN CIENCIAS MARINAS Y COSTERAS
ESPECIALIDAD EN ACUACULTURA
Bases Tecnológicas para el Cultivo Integral del Ostión de Placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951)
TESIS
QUE COMO PARTE DE LOS REQUISITOS PARA OBTENER EL GRADO DE
MAESTRO EN CIENCIAS MARINAS Y COSTERAS PRESENTA:
B.M. Francisco Antonio Flores Higuera
La Paz, Baja California Sur, México Junio 2011
UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE
BAJA CALIFORNIA SUR
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Índice General.
Índice General. I
Índice de Figuras. III
Índice de Tablas. V
Resumen. VI
Abstracs VII
Dedicatoria VIII
Agradecimientos IX
1. Introducción. 1
1.1 Posición taxonomía. 6
1.2. Sinonimias. 6
1.3. Anatomía. 7
1.4. Reproducción. 8
1.5. Producción de semilla y sistemas de engorda. 10
1.6.- Infraesructura de investigacion y producción de moluscos bivalvos en México.
12
2. Antecedentes. 15
3. Justificación. 20
4. Objetivos. 21
4.1 Objetivo General. 21
4.2 Objetivos Particulares. 21
5. Material y métodos. 22
5.1 Colecta y traslado de reproductores e inducción al desove. 22
5.2 Cultivo Larval. 23
5.3 Alimentación. 26
5.4 Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger. 26
5.5 Preengorda de juveniles. 28
5.6 Siembra y preengorda en el mar. 30
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5.7 Engorda a talla comercial. 31
5.8. Sitio de Cultivo. 32
5.9. Tratamientos estadísticos. 33
6. Resultados. 35
6.1 Cultivo larvario. 35
6.2. Crecimiento y supervivencia larvaria a diferente salinidad. 39
6.3. Asentamiento y metamorfosis larvaria en función a la densidad 42
6.4. Engorda en Campo. 43
6.5. Parámetros ambientales 48
7. Discusiones. 49
7.1 Crecimiento larvario. 51
7.2. Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger. 54
7.3. Engorda en el Campo. 56
8. Conclusiones. 59
10. Bibliografía. 60
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Índice de Figuras.
Figura 1.- Vista externa de las conchas de C. corteziensis.
8
Figura 2.- Vista de la anatomía interna de C. corteziensis, mostrando dos organismos; maduro e inmaduro sexualmente.
8
Figura 3.- Tanques de fibra de vidrio de 400 L donde se realizó el experimento de cultivo larvario a tres salinidades.
25
Figura 4.- Drenaje de tanques de cultivo y captación de larvas en los tamices receptores.
25
Figura 5.- Tamizado selectivo de larvas de C. corteziensis utilizando mallas de diferente luz.
25
Figura 6.- Larva fijadora de ostión obtenida al concluir su periodo de vida pelágica.
25
Figura 7.- Colocación del sustrato de fijación (concha molida de ostión), sobre las charolas.
27
Figura 8.- Distribución de larvas competentes (Pedivéliger oculadas), en las charolas de fijación.
27
Figura 9.- Unidad circular utilizada para la preengorda de semilla de C. corteziensis en el CIBNOR, S.C.
28
Figura 10.- Localización del sitio de cultivo, cercano a Playa Las Glorias, en el Municipio de Guasave Sin.
32
Figura 11.-Larva de ostión de placer C. corteziensis, véliger de charnela recta mostrando el velum. 100X.
37
Figura 12.- Figura 12.- Larva véliger de charnela recta de 6 días de edad en reposo. 100X. Barra 40 m.
37
Figura 13.- Larva véliger de charnela recta de 8 días de edad. 400X ;
Barra =50 m.
37
Figura 14.- Larva véliger de charnela recta de 10 días de edad donde se aprecia la disminución del tamaño de la charnela. 400X.
Barra= 30 m
37
Figura 15.- Larva umbonada de 15 días de edad. 40X. Barra=100 38
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m. Figura 16.- Larva pedivéliger temprana 18 días de edad 100X
38
Figura 17.- Larva umbonada de 20 días mostrando el pie activo.
400X.Barra=100 m.
38
Figura 18.- Postlarva (fijación o presemilla) de C. corteziensis de
25 días mostrando la disoconcha. 100X Barra=50 m.
38
Figura 19.- Crecimiento larvario (Longitudes) de C. corteziensis cultivado a salinidades de 25, 32, 39 ups, y temperatura de 27 ±1 °C .
40
Figura 20.- Supervivencia larvaria de Crassostrea corteziensis, cultivadas a tres salinidades 25 32 y 39 ups a 27 ±1 °C .
41
Figura 21.- Crecimiento (longitud±es) de C. corteziensis, durante la fase de engorda en campo, en relación a la dieta previamente utilizada durante la fase de preengorda de semilla en el laboratorio.
44
Figura 22.- Crecimiento (altura±es) de C. corteziensis, durante la engorda en campo, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la fase de preengorda de la semilla utilizada sembrada.
45
Figura 23.- Crecimiento (espesor±es) de C. corteziensis, durante el cultivo suspendido (engorda), en en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de la semilla utilizada.
45
Figura 24.- Crecimiento (peso±es) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de semilla.
46
Figura 25.-Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.
46
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Índice de Tablas
Tabla. I.- Relación del tamaño de las larvas con los tamices utilizados en el cultivo larvario de Crassostrea corteziensis.
24
Tabla II. Relación del tamaño de los juveniles con los tamices utilizados en la preengorda C. corteziensis.
30
Tabla III. Ecuación de ajuste del crecimiento en larvas de Crassostrea corteziensis cultivadas a tres salinidades 25, 32, 39 ups y a 27 ±1 °C.
39
Tabla IV. Análisis de varianza de una vía para el porcentaje convertido a arco seno de la supervivencia al final del cultivo larvario de Crassostrea corteziensis a tres salinidades 25, 32 y 39 ups a 27 ±1 °C.
41
Tabla V. Resumen de resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en función de la densidad de cultivo.
42
Tabla VI. Análisis de varianza de una vía para evaluar resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en base al arco seno de la eficiencia de fijación (%).
42
Tabla VII Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis (incremento en mm), durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.
47
Tabla VIII. Supervivencia de Crassostrea corteziensis durante su engorda en Playas las Glorias Guasave Sinaloa, alimentadas con tres dietas durante la fase de preengorda en laboratorio.
47
Tabla IX.- Resultado del análisis de varianza una vía para la supervivencia de Crassostrea corteziensis obtenida al final de la engorda (al día 215) en Playas Las Glorias Guasave Sinaloa, en base al arco seno del porcentaje.
47
Tabla X Parámetros ambientales durante el cultivo de Crassostrea corteziensis en Playa Las Glorias Sinaloa.
48
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RESUMEN
El ostión de placer Crassostrea corteziensis es una especie nativa de alto valor comercial, candidata a ocupar un lugar importante en la ostricultura del Pacífico mexicano. Por ello, es importante ampliar el conocimiento sobre la especie, tanto en sus aspectos de biología básica como en aquellos orientados al cultivo de la especie. En este trabajo se realizaron tres experimentos. El primero se orientó a determinar el crecimiento y la sobrevivencia larvaria de la especie a tres diferentes salinidades (25, 32, 39 ups), considerando temperatura, cantidad y tipo de alimento similares (27±1 ºC; 30,000 cel·mL-1) Isochrysis galbana y Chaetoceros calcitrans 1:1). Los cultivos larvarios se realizaron en cilindros de fibra de vidrio de 400 litros de capacidad, a una densidad inicial de 6 larvas.mL-1. No se encontraron diferencias significativas entre los porcentajes de supervivencia larvaria así como en las curvas de crecimiento. Un segundo experimento fue desarrollado para evaluar el proceso de fijación de larvas pedivéliger a tres densidades: 3, 7 y 10 larvas/mm2. El diseño experimental por triplicado se proyectó considerando la cuantificación volumétrica de las fijaciones obtenidas. El análisis de varianza de una vía mostró diferencias significativas (p>0.05). Las semillas obtenidas en laboratorio se preengordaron en unidades de surgencia cilindros recirculantes. Durante una primera etapa post-fijación (dos semanas), las semillas aun pequeñas se alimentaron exclusivamente con microalgas. Después de esto, se establecieron 3 tratamientos experimentales: Dieta 1).- 100% microalga (Microalga100), Dieta 2).- 50% de la dieta 1 y un complemento artificial de harina de trigo (Microalga50-Trigo) y Dieta 3).- 50% de la dieta 1 y un complemento artificial de fécula de maíz (MaizenaMR)(Microalga50-Maíz). Un tercer experimento consistió en una engorda experimental encampo, evaluando el crecimiento de la semilla para determinar algún posible efecto, favorable o desfavorable, relacionado con la dieta de preengorda precedente suministrada a la semilla en el laboratorio. De acuerdo a la comparación de curvas realizada, no se encontraron diferencias significativas (P<0.05) en el crecimiento de C. corteziensis para cada uno de los tratamientos (dieta previa de prengorda), considerando el crecimiento en longitud. Los resultados de la presente investigación han permitido confirmar que la semilla de ostión de placer puede preengordarse en el laboratorio sustituyendo el 50% de la ración diaria de la microalga por complementos artificiales de bajo costo y fácil elaboración a base de fécula de maíz y harina de trigo, disminuyendo la cantidad de microalgas suministrada, con la correspondiente reducción de los costos de operación, y sin resultados
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en cuanto se refiere al crecimiento y sobrevivencia de la semilla durante la etapa de engorda en el mar. ABSTRACT The Cortez oyster is a highly appreciated species for aquaculture in Mexico and a candidate for a first position in oyster-culture industry at the Pacific Northwest coast. During this study three experimental trials were realized for increase scientific an applied knowledge about this native species. First trial were designed to determine growth and survival of larvae at three different salinities (25, 32, 39 ups), with equal temperature conditions and food and feeding schedule (27±1 ºC; and 30,000 cel·mL-1 Isochrysis galbana and Chaetoceros calcitrans 1:1). Larval cultures were developed in fiberglass tanks of 400 L, at initial density of 6 larvae.mL-1. No significant differences between survival of larvae were found so similar curves of growth were obtained. A second trial was intended to evaluate setting of eyed pediveliger larvae at three densities: 3, 7 and 10 larvae.mm-2. A triplicated experimental design was intended to quantify newly set spat by means of volumetric analysis. One way ANOVA for setting process showed significant difference (p>0.05), between the three groups. The newly set spat were nursed in recirculating upwelling cylinders supplied with cultured microalgae as a natural source of food. After initial nursery stage (two weeks), the spats were fed with three different treatments : Diet 1).-100% microalgae (microalgae100), Diet 2).- 50% of Diet 1 and at complement of wheat flour, (microalgae50-wheat) and Diet 3).- 50% of Diet 1 and a complement of cornstarch (MaizenaMR) (microalgae50-cornstarch). A third trial was intended to determine effect on nursery diet supplied to spat in the hatchery, on general performance (vigor, growth, survival) of the juveniles (seed) during the grow-out phase at the field). As a result of the comparison realized between growth curves in length of the juvenile oysters, there were not found statistical differences (P >0.05) between treatments (previous hatchery diet). Global results of the present study confirms that oyster spat C. corteziensis can be nursered at the hatchery substituting 50% of daily ration of microalgae for artificial complements of low cost and easy facture. The use of cornstarch and wheat flour, decreased the quantity of microalgae supplied, with a great reduction of the cost for nursery operation, and without negative reduction on survival and growth at the field.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Dedicatoria.
A DIOS POR DARME LA OPORTUNIDAD DE LLEGAR A ESTE
MOMENTO.
A MIS PADRES EL SR. DON JOSE FLORES MARTINEZ Y DOÑA YOLANDA
HIGUERA ALVAREZ POR SE QUIENES ME HAN IMPULSADO PARA
LOGRAR MIS OBJETIVOS GRACIAS ESTE PEQUEÑO TRIUNFO ES DE
USTEDES.
A HEMANOS LULY, JOSE, CHUY, YOLY Y MONSE, POR SE MIS AMIGOS Y
POR QUE HAN SIDO MI SOSTEN EN MOMENTOS DIFICILIES
A HIJO NESTOR QUE ES MI MAYOR INSPIRACION PARA SEGUIR
ADELANTE
AL GRAN AMOR DE MI VIDA: IRASEMA QUE SIN TU EMPUJE Y APOYO
NO HUBIERA SIDO POSIBLE CONCLUIR ESTA ESTAPA.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Agradecimientos: Antes que nada quiero dar un sencillo pero justo reconocimiento a la Universidad Autónoma de Baja California Sur, a todos sus maestros y personal administrativo, por permitirme la oportunidad de formarme en sus aulas y laboratorios. Al personal de la Unidad Pichilingue de la UABCS donde realice gran parte de mi formación profesional. Al Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S.C. por las facilidades brindadas para la realización de los cultivos larvarios y preengorda de semillas. Deseo expresar mi agradecimiento a los directores de este trabajo El Dr. José Manuel Mazón Suástegui (CIBNOR) y el Dr. Cesar A. Ruiz Verdugo (UABCS) quienes con sus consejos, observaciones, ayuda y su grandísima paciencia permitieron la conclusión de este trabajo. A los miembros del comité revisor Dr. Antonio Luna González, Dra. Ana Isabel Beltrán Lugo y el M en C Miguel Robles Mungaray por sus atinados comentarios y observaciones que contribuyeron a la mejoría del escrito. A las empresas Ostrícola Guevara SA de CV por proporcionar los reproductores utilizados para este trabajo y a la Empresa Promotora del Pacífico S.A. de C.V. por su apoyo en la realización de la engorda en Playas Las Glorias Municipio de Guasave Sinaloa. Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología por otorgarme una Beca para la realización de mis estudios de maestría y al proyecto # 129025 SEP-CONACyT Ciencia Básica, “Diversidad microbiana asociada a moluscos ostreidos de cultivo e interacción molecular bacteria-hospedador”, a cargo del Dr. Mazón. A todos aquellas personas que de alguna u otra forma contribuyeron a la conclusión de este trabajo GRACIAS …
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
1. Introducción.
La acuacultura marina animal, es una actividad dirigida a producir y engordar
organismos acuáticos, mediante la aplicación de técnicas cada vez más eficientes,
cuyos resultados la ubican en niveles de desarrollo cercanos a la agricultura y la
ganadería. La tendencia generalizada es hacia racionalizar la explotación de los
recursos acuáticos y con ello generar fuentes de alimento y de trabajo (Bardach et
al., 1990).
Los métodos de la acuicultura son interdisciplinarios y por lo tanto incluyen
varias ramas de la biología, como la morfología, fisiología, embriología, genética,
ecología, botánica y zoología; pero también incluye a la biología pesquera y a la
ingeniería, en especial a la ingeniería pesquera y la tecnología de alimentos, además
de la sociología y la economía (FAO, 2004).
Los registros de producción mas elevados en la maricultura mundial
corresponden a las macroalgas, sobre todo a la macroalgas japonesas conocidas
como kelp, y a los moluscos, destacándose principalmente el ostión del Pacífico
(Stickney, 2001). Sin embargo, como las cifras de producción se dan en peso en vivo
(incluyendo un elevado contenido de agua en las algas y las conchas en los
moluscos), las estadísticas ofrecen la impresión de que estos productos son fuentes
de alimentos y empleo mayores de lo que en realidad son (FAO, 2004).
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En México durante el 2008 se obtuvieron más de 5,302 millones de pesos en
acuacultura, obtenidos por la venta de 130,049 TM de camarón, lo que representó el
57.56% de la producción acuícola nacional en el 2008 (SAGARPA-CONAPESCA, 2008).
Actualmente, la industria del cultivo del camarón en México esta en crisis debido
principalmente a la vulnerabilidad del recurso, a enfermedades, y a la variabilidad de
los precios del producto en el mercado internacional. Así mismo, el cultivo de
camarón es una actividad de alto riesgo por las altas tasas de diseminación de los
agentes patógenos en los sistemas de producción intensiva, que pueden afectar
seriamente la producción de toda una gran región. Por lo anterior, es de vital
importancia la diversificación de la acuacultura nacional a otras especies de
organismos marinos, como peces y moluscos, entre los que se encuentran los
ostiones, y particularmente el ostión de placer Crassostrea corteziensis, especie
objetivo de la presente investigación.
Los moluscos bivalvos, son organismos filtro alimentadores y se ubican en la
base de la cadena alimenticia, crecen rápido, especialmente en los trópicos y son
ampliamente demandados por los mercados globales. Por lo anterior son candidatos
ideales para la acuacultura, además, en los proyectos comerciales no se requieren
inversiones grandes ni equipos sofisticados. A pesar de esto, no se ha consolidado
esta actividad en México, debido a que no se ha considerado una conjunción de
elementos técnicos, económicos y sociales (Cáceres-Martínez, 1999).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
La familia Ostreidae incluye a un gran número especies comestibles; su
distribución esta confinada a una franja de aguas costeras dentro de las latitudes 64°
N y 44° S. Su distribución vertical se extiende desde un nivel aproximadamente
medio desde la zona intermareal, hasta profundidades de 32 m. Sin embargo, las
especies comerciales rara vez se encuentran en profundidades mayores de 12 m
(Galtsoff, 1964).
En México existen 9 especies, entre nativas y exóticas, de ostiones del género
Crassostrea, que son de interés comercial (Vázquez y Arriaga, 1988), las cuales son
aprovechadas en diferentes localidades del país. Las dos especies que aportan la
mayor producción en la acuacultura nacional son Crassostrea virginica en el Golfo de
México y Crassostrea gigas en el Pacifico, esta última introducida al país en la década
de los setentas (Arriaga-Becerra y Rangel-Dávalos, 1988). Con excepción del ostión
de piedra Striostrea prismatica= (Crassostrea iridescens), la mayoría de las especies
son habitantes típicos de los esteros, desembocaduras de ríos y lagunas costeras, por
lo que son organismos muy resistentes que toleran amplios cambios en los factores
ambientales.
La introducción del ostión japonés a México representa uno de los sucesos más
importantes en la acuacultura de moluscos. Las primeras semillas se introdujeron en
el año de 1973, obteniéndose excelentes resultados en cuanto a crecimiento y
supervivencia, particularmente en las costas de Baja California, lo que impulsó a
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organizar proyectos de ostricultura para su comercialización en otras regiones del
Pacífico Mexicano (Islas, 1975).
Debido a los avances logrados en el desarrollo de tecnología para el cultivo de
ostión, se han creado una gran cantidad de cooperativas acuaculturales que
desarrollan su actividad por medio de dos técnicas de cultivo intensivo, a partir de
semillas obtenidas en laboratorio. La primera técnica se basa en la siembra de las
ostrillas en bastidores hecho con malla mosquitero y madera suspendidos en lineas
madres y realizando la engorda en costales de plástico ubicados en la zona
intermareal y la segunda, en la siembra en canastas de plástico suspendidas en líneas
madre flotantes (Cáceres-Martínez et al., 1992), algunos productores combinan
ambas metodologías.
En el 2008 la producción nacional ostrícola fue de 44,452 TM de las cuales 3,981
TM corresponden a la producción de la costa del Pacífico y 4 0,472 TM, a la costa del
Golfo de México y Mar Caribe. Ese año, los estados que aportaron mayor producción
fueron Veracruz con 21,759 TM, Tabasco con 17,173 TM, Nayarit con 1,423 TM,
Tamaulipas con 1,214 TM, Baja California con 1,077 TM y Baja California Sur con 612
TM. (SAGARPA-CONAPESCA, 2010).
El valor económico de la producción total nacional ostrícola en el 2008 fue de
$161,976 lo que representó menos del 1 % del valor total de la producción pesquera
de México para consumo humano directo, por otro lado, la producción acuicola
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nacional ostrícola por acuacultura fue de 42,148 TM, lo que representa un 94.82 %
de la producción ostrícola nacional y con un valor de $141,744 (SAGARPA-
CONAPESCA, 2010).
En las costas del Pacifico Mexicano, incluyendo el Golfo de California, se han
explotado intensivamente dos especies nativas: el ostión de placer C. corteziensis y el
ostión de piedra Striostrea prismatica = (Crassostrea iridescens). El ostión de placer
es una especie de rápido crecimiento ya que alcanza los 75 mm durante los primeros
7 meses de vida, es encontrado en la raíces de los mangles y tolera un gran intervalo
de salinidad (Matthiessen, 2001). En condiciones de cultivo, se ha registrado que esta
especie alcanza la talla comercial de 8 cm en 8 meses de cultivo, a partir de la
siembra de semilla de 3-4 mm producida en el laboratorio (Hoyos-Chaires y Robles-
Mungaray, 1990; Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2001b).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
1.1. Posición Taxonómica.
Al ostión de placer C. corteziensis se le conoce con los siguientes nombres
comunes: cortez oyster, ostión de placer, ostión de Guaymas y ostión de mangle. La
clasificación de la especie es la siguiente:
Phyllum: Mollusca
Clase: Bivalvia
Sub clase: Pteromorpha
Orden: Ostreida
Sub orden: Anisomiaria
Superfamilia: Ostreoidea
Familia: Ostreidae: (Rafinesque, 1815)
Género: Crassostrea (Sacco, 1897)
Especie: Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951).
1.2. Sinonímias.
Crassostrea chilensis (Philippi, 1844).
Ostrea chilensis (Philippi, 1844).
Ostrea corteziensis (Hertlein, 1951).
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1.3. Anatomia.
Los ostiones, son moluscos bivalvos de simetría bilateral, provistos de una
concha externa formada por dos valvas unidas por un ligamento. Las dos valvas son
articuladas en su parte anterior, la cual generalmente es aguzada y conocida como el
extremo umbonal, la articulación que es interna abre las valvas mediante la acción de
un solo músculo aductor, fijado a cada valva generalmente en el área del centro
(Mazón-Suástegui, 1996).
El ostión de placer presenta concha de forma muy variada, pero generalmente
alargada-ovalada y más alta que larga alcanzando tallas muy grandes (hasta 25 cm);
la valva izquierda es convexa y generalmente más grande que la derecha,
regularmente presenta el umbo encorvado hacia atrás, la superficie exterior de las
valvas es lisa y presenta tenues surcos radiales. La valva derecha es aplanada, lisa o
con lamelas concéntricas, presenta un pequeño receso bajo la charnela de la valva
izquierda. La cicatriz del músculo aductor es grande no muy cóncava dorsalmente un
poco mas cercana al borde ventral que a la charnela. La valvas carecen de comatas,
el color de la superficie externa de las conchas es blanquecina, la valva derecha
presenta un a coloración ligeramente café o gris–púrpura; superficie interna blanca
brillante frecuentemente con áreas irregulares de color blanco, cicatriz del músculo
aductor ocasionalmente teñido de púrpura (Figs.1 y 2) (Fisher et al., 1995).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Figura 1. Vista externa de las conchas de C. corteziensis.
Figura 2. Vista interna de las conchas de C. corteziensis.
1.4. Reproducción.
Los ostiones del género Crassostrea son organismos hermafroditas protándricos,
es decir, en su primera madurez son machos y posteriormente maduran como
hembras, aunque no presentan una diferenciación sexual externa y solo se pueden
detectar diferencias al observar los productos sexuales al microscopio. Generalmente
desovan una sola vez al año, liberando hasta 5 x 108 de ovocitos al mar, en donde
son fecundados por los espermatozoides. Los ovocitos de 60 µm de diámetro, una
vez fecundados inician rápidamente su desarrollo y se convierten en larvas trocófora
unas pocas horas después de la fecundación, para transformarse en larvas véliger de
charnela recta a las 24 h. La etapa de vida planctónica del ostión se prolonga de dos
a tres semanas, tiempo en el cual la larva crece y modifica su forma y
comportamiento dejando su vida libre nadadora para fijarse a un sustrato mediante la
secreción de la glándula cementante localizada en el pie. A partir de este momento la
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
larva sufre una metamorfosis perdiendo el velum y desarrollando sus branquias, por
lo que la larva elige el sustrato y adhiere su valva izquierda a éste iniciando su vida
sésil similar a la del adulto (Mazón-Suástegui, 1996).
El ciclo reproductivo de los ostiones en zonas templadas ha sido ampliamente
estudiado; sin embargo, existe poca información para especies tropicales y
subtropicales. El ostión de placer, presenta variaciones estacionales en el estado
gonadal, presentando dos picos de maduración y desove al año (Frías-Espericueta et
al., 1997).
Las etapas del desarrollo reproductivo de C. corteziensis han sido observadas y
descritas para organismos silvestres por Cuevas-Guevara y Martínez-Guerrero (1978),
durante un ciclo anual en San Blas, Nayarit, y para organismos en cultivo en el Estero
Navopatia, Bahía de Agiabampo, Sonora, por Ruiz-García (2006). En San Blas, el
ostión de placer desova durante los meses de Marzo-Agosto con un máximo en Abril,
mientras que en Agiabampo, la especie tiene un comportamiento protrándrico y
sexualmente precoz, con dos desoves parciales, durante Mayo-Junio y Septiembre-
Octubre (Ruiz-García, 2006).
La temperatura es determinante en el desove de Crassostrea corteziensis, ya
que este se presenta solamente por arriba de los 25.5 °C. Es interesante notar que la
salinidad no ejerce -aparentemente- una marcada influencia en el desarrollo de la
gónada, sin embargo, es determinante como estímulo para desencadenar el desove.
De acuerdo con Cuevas-Guevara y Martínez-Guerrero (1978), durante el verano de
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
1973 en San Blas, Nayarit, se registraron variaciones importantes en la salinidad,
desde 32 ups en junio hasta 5.5 ups en septiembre, y sin embargo, esta variación no
motivó la detención del proceso de desove que la especie presentó durante ese
periodo. Por su parte, Ruiz-García (2006) no relaciona directamente la salinidad con
el proceso reproductivo del ostión de placer cultivado en el Estero Navopatia, Bahía
de Agiabampo, Sonora.
1.5. Producción de semillas y sistemas de engorda.
La producción intensiva de semilla de moluscos bivalvos en laboratorio es
actualmente una práctica común en todo el mundo, y mediante su aplicación es
posible generar la semilla requerida para la producción acuícola en casi cualquier
época del año, permitiendo la planeación y efectividad del cultivo (Bardach et al.,
1990; Helm et al., 2004; Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2001b).
Al ser un insumo esencial en la producción, el aseguramiento de la oferta de
semilla es uno de los aspectos mas importantes que se debe resolver para establecer
la factibilidad del cultivo de cualquier especie de bivalvo. Existen dos fuentes posibles
de semilla para el cultivo: la semilla obtenida del medio natural y la obtenida por
reproducción controlada en laboratorio (Quayle y Newkirk, 1986).
En el estado de Nayarit, el cultivo de C. corteziensis se ha basado únicamente
de la colecta de semilla silvestre, utilizando para su engorda el sistema de sartas y
balsas suspendidas. A partir del 2002, en la parte central de Sinaloa se cultiva el
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
ostión de placer a partir de semilla individual producida en el laboratorio, utilizando
canastas ostrícolas de plástico (Mazón-Suástegui et al., 2002a; 2002a).
Para la producción de semilla en laboratorio es necesario contar con un
conocimiento amplio de la biología de la especie objetivo. Entre los aspectos más
importantes destacan las necesidades básicas para maduración de los reproductores,
las condiciones para crianza larvaria y el asentamiento de las postlarvas (Mazón-
Suástegui, 1996; Robles-Mungaray, 2004).
Una etapa fundamental que cierra el ciclo en la producción controlada de
moluscos bivalvos, es la preengorda de semillas hasta una talla manejable. Para un
adecuado manejo de los organismos a partir de la fase post-larvaria y juvenil
(fijación-semilla, spat-seed), se utilizan exitosamente diversos dispositivos con flujo
ascendente, con flujo abierto o recirculante, utilizando como alimento dietas
naturales y artificiales, o una combinación de las mismas (Mazón-Suástegui et al.,
2001a, 2002a; Mazón-Suástegui, 2005; Ruiz-Ruiz, 2008).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
1.6. Infraestructura de investigación y producción de moluscos bivalvos en México.
Actualmente en el Noroeste de México existen diversos laboratorios con la
capacidad técnica, científica e infraestructura suficiente para la producción de
semillas de moluscos bivalvos nativos a escala experimental, piloto o comercial. Las
unidades experimentales pertenecen a instituciones educativas y de investigación,
como el Laboratorio de Acuacultura en la Unidad Pichilingue de la Universidad
Autónoma de Baja California Sur, y el Laboratorio de Larvicultura de Moluscos del
Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, ambos en La Paz, Baja California
Sur (B.C.S.), y los laboratorios de acuacultura del Instituto de Investigaciones
Oceanológicas -UABC y del CICESE (Ensenada, Baja California), entre otros.
Entre los laboratorios privados pueden citarse a: Maxmar Mariscos S.A. de C.V.
(Ensenada, B.C.), Productos Marinos Baja en Erendida BC, Sea Farmer S.A. de C.V.
(Los Mochis, Sinaloa), Maricultura del Pacífico S.A. de C.V. (Bahía de Kino, Sonora),
Acuacultura Robles (La Paz, B.C.S.) y Bivalvos del Pacifico en Bahía Asunción BCS. El
Centro Reproductor de Especies Marinas del Estado de Sonora (CREMES)
perteneciente al Instituto de Acuacultura del Estado de Sonora (Bahía de Kino, Son.),
opera desde hace mas de 20 años a una escala de producción comercial, gracias a su
dimensión y tanques de cultivo larvario de hasta 70 m3 de capacidad, que le ha
permitido obtener grandes producciones de diversas especies de moluscos bivalvos,
incluido el ostión de placer. Otro laboratorio comercial es el de la empresa Sea
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Farmers, ubicada cerca de Los Mochis, Sinaloa (Robles-Mungaray, 2004). Con 25
tanques de 25 m3 para cultivo larvario y dispositivos específicos para fijación y
preengorda de semilla, fue diseñado originalmente para producir semilla de hacha
china Atrina maura, pero ha diversificado su producción a otros moluscos bivalvos,
incluyendo el ostión de placer.
En el Centro de Transferencia Tecnológica (CTT-CIBNOR), en La Paz, B.C.S, se
dispone de un laboratorio de escala intermedia, que inició en 2005 actividades de
investigación, validación de tecnología y escalamiento productivo de semilla de ostión
de placer C. corteziensis y almeja mano de león N. subnodosus. Ahí se han producido
también semillas de almeja catarina A. ventricosus, ostión japonés C. gigas y ostión
Kumamoto C. sikamea. El CTT-CIBNOR dispone de 8 tanques de 14 m3 para cultivo
larvario y dispositivos para maduración de reproductores, fijación larvaria y
preengorda de semilla. El proyecto fue financiado por los programas Alianza Contigo
de SAGARPA y Avance de CONACYT, para estudios de Ultima milla que incluyen
diseño integral de instalaciones y prototipos para la validación y escalamiento de
tecnología para la producción de semilla de ostión de placer y almeja mano de león,
así como los estudios respectivos para su engorda en el mar, operando en vinculación
con 3 empresas privadas: Ostrícola Guevara y Acuícola Casa Blanca ambas empresas
del estado de Sinaloa y Dunas Doradas del Guerrero Negro BC (Mazón-Suástegui et
al., 2004, 2005, 2006).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Como se puede apreciar, en la región Noroeste de México se están haciendo
grandes esfuerzos para el desarrollo y la estandarización de técnicas para la
producción de semilla de especies de alto potencial como el hacha china Atrina
maura, mano de león N. subnodosus y el ostión de placer C. corteziensis (Robles-
Mungaray et al., 2001; Robles-Mungaray, 2004; Mazón-Suástegui et al., 2001a;
2002a, 2004, 2006). Sin embargo, por diversos motivos de tipo biológico, patológico,
o financiero, aun no se ha logrado consolidar una biotecnología eficiente para
garantizar la producción sostenida y a precio competitivo de semilla de ostión de
placer durante todo el año, lo cual sí se tiene a nivel mundial para el ostión japonés
C. gigas.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
2. Antecedentes.
El ostión de placer, C. corteziensis, ha sido capturado artesanalmente durante
muchos años en Sonora, Sinaloa y Nayarit. Actualmente su oferta es muy reducida
debido a que las poblaciones naturales se han reducido notablemente por factores
naturales y antropogénicos como la contaminación ambiental, la reducción en los
efluentes de los ríos por la construcción de presas y el riego agrícola, y la
sobreexplotación pesquera. No obstante lo anteriormente expuesto, el ostión de
placer mantiene su demanda en un mercado regional y nacional insatisfecho, lo que
lo ubica como una de las especies nativas con mayor potencial para la acuacultura
intensiva (Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2001b, 2002a, 2002b; Chávez-Villalba et
al., 2005, 2008).
El ostión de placer es una especie de distribución en zonas tropicales. Existe
bibliografía general como la realizada por Angell (1986), en la cual hace una amplia
descripción de las especies de ostras tropicales, abordando temas como su biología,
reproducción y técnicas de cultivo.
Existen además diversos trabajos entre los que se pueden mencionar el
realizado por Devakie y Ali (2000), los cuales determinaron el efecto de la
temperatura, la salinidad y la alimentación sobre la metamorfosis en larvas de
Crassostrea iredalei. Respecto al efecto de la salinidad sobre larvas de ostión se
puede también mencionar el trabajo realizado por Nell y Holliday (1988), quienes
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
evaluaron el efecto de la salinidad sobre el crecimiento y supervivencia en larvas y
juveniles de Saccostrea commercialis y de Crassostrea gigas.
Entre los estudios reportados para esta especie se pueden mencionar a Escobar
de la Llata (1979); Cortés-Guzmán y Martínez-Guerrero (1978); Cuevas-Guevara y
Martínez-Guerrero (1978); Barraza-Guardado et al. (1983); Bush-Medina y Castro-
Castro (1990); Páez-Osuna et al., (1991); Frías-Espericueta et al., (1997), con
algunos trabajos en biología y ecología.
Así como, son de destacar los trabajos realizados por Solís Celada (1982);
Robles-Mungaray y Hoyos-Chaires (1989); Hoyos-Chaires y Robles-Mungaray (1990);
Mazón-Suástegui et al., (2001a.); Mazón-Suástegui et al., (2001b), Chávez-Villalba et
al., (2005); Cáceres-Puig (2005); Leyva-Miranda (2005) y Ruiz-García (2006), con
trabajos sobre la producción de semilla en laboratorio, preengorda utilizando dietas
artificiales y la engorda en el campo, así como los trabajos de Rodríguez-Romero et al.,
(1978a); Rodríguez-Romero et al., (1978-b), en citogenética.
Para desarrollar integralmente el cultivo del ostión de placer, son muchos los
aspectos aun desconocidos o con un grado parcial de conocimiento. No se conocen y
dominan a suficiencia diversos aspectos relativos al manejo de reproductores, su
maduración en laboratorio, el desove y fertilización, cultivos larvarios, fijación y
metamorfosis de larvas pedivéliger. Sin embargo, son grandes los esfuerzos que en
diversas instituciones se han hecho para la integración de conocimientos
encaminados a desarrollar dicha biotécnia y garantizar su aplicación en escala
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
comercial (Robles-Mungaray y Hoyos-Chaires, 1989; Hoyos-Chaires y Robles-
Mungaray, 1990; Mazón-Suástegui et al., 2001a; 2002a).
En los 80´s se operaba un laboratorio productor de semillas de ostión en San
Blas, Nayarit y se tenía un buen nivel de desarrollo tecnológico básico, con
expectativas de lograr en un mediano plazo, la producción sostenida de semillas de
ostión de placer. La fijación larvaria se realizaba en “concha madre”, para cultivo en
sartas suspendidas en balsas flotantes. Esta situación desafortunadamente se perdió
por diversas causas, y de manera simultánea ganó terreno el cultivo intensivo de la
especie introducida C. gigas , cuyo abasto de larva fijadora y de semilla era seguro en
el mercado internacional y parcialmente asegurado en el mercado nacional (Mazón-
Suástegui, 1996).
Independientemente del mayor o menor dominio tecnológico para la producción
de semilla y para su engorda en el mar a talla comercial, otro factor limitante para el
desarrollo ostrícola y para la seguridad financiera de los ostricultores, son los eventos
masivos de mortalidad, que han ocurrido tanto en los laboratorios, como en las
granjas de engorda. La región Pacífico de la península de Baja California ha sido
afectada en una menor proporción que el estado de Sonora (Vázquez-Juárez et al.,
2006). Sin embargo, entre diciembre de 1997 y mayo de 1998 ocurrieron
mortalidades importantes de juveniles de C. gigas en una granja en San Ignacio,
B.C.S. Posteriormente, se han registrado mortalidades del 80% de juveniles
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
aparentemente sanos en periodos cortos de tres a cuatro días en granjas ostrícolas
de Sonora, Baja California (B.C.) y B.C.S. Estas mortalidades masivas, en algunos
casos inexplicadas y otras ocasionadas por el patógeno viral llamado Herpes Virus
(OsHV-1), han aumentado el interés académico en las especies alternativas, como C.
corteziensis, para ampliar las posibilidades de desarrollo de la ostricultura en el
noroeste de mexicano.
Las mortalidades masivas de C. gigas en B.C.S. han sido asociadas a
perturbaciones ambientales, en especial de temperatura, provocados por la corriente
calida ocasionada por El Niño (Carvalho-Saucedo, 2003). Se maneja también la
hipótesis del efecto de endogamia ocasionada por la falta de renovación del pool
genético de reproductores, a partir de la introducción de esta especie en América
(Corral-Palomares, 2003).
Como puede verse, el principal factor limitante para el cultivo del ostión de
placer es que no existe suministro asegurado de semilla de laboratorio en el mercado
nacional o internacional para sustentar cultivos comerciales. Un problema mayor es
que paralelamente a la importación de semilla de ostión japonés, se han introducido
agentes patógenos potenciales para especies nativas como C. corteziensis, lo cual
habrá que considerar seriamente para el futuro de la industria ostrícola nacional
(Vázquez-Juárez et al., 2006). Sin embargo, en instituciones como el CIBNOR se
desarrolla investigación para seleccionar pies de cría genéticamente seleccionados, lo
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
cual debería permitir en el mediano plazo, el cierre de fronteras a la importación de
semilla, eliminando con ello los riesgos asociados de epizootias que ya han afectado
seriamente a los productores del Pacífico mexicano.
Chávez-Villalba, et al., (2005), menciona que las poblaciones naturales de ostión
de placer se han decrecido significativamente y en algunos casos desaparecido por
causas desconocidas en los estados de Sinaloa y Sonora, adicionalmente, Cáceres-
Martínez, et al., (2008), detectaron el protozoario Perkinsus marinus en poblaciones
naturales y de cultivo en Nayarit. La presencia de este patógeno se asocia con la
introducción sin control del ostión americano C. virginica en la costa de Nayarit, y es
determinante conocer las posibles implicaciones negativas que este patógeno puede
tener en el cultivo de esta especie.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
3. Justificación.
La ostricultura en el Pacifico mexicano se basa principalmente en la especie
exótica de aguas templadas C. gigas, que periódicamente presenta altas mortalidades
en el noroeste de México, con lo cual, no se puede aprovechar el gran potencial de
los sistemas lagunares altamente productivos del Pacífico mexicano, destacando los
de la zona sur de Sonora, todo Sinaloa, y Nayarit, e incluso sitios específicos en los
estados ubicados más al sur, hasta Chiapas.
Por lo anterior es necesario ofrecer alternativas biológica y tecnológicamente
viables para mejorar y ampliar la ostricultura, mediante la domesticación del ostión
nativo C. corteziensis. Para ello se requiere la estandarización de técnicas de
producción, la producción sistemática de semillas en el laboratorio y la aplicación de
las mejores zootecnias de engorda.
La existencia de numerosos cuerpos lagunares y estuarinos en la zona tropical
del Pacífico mexicano, algunos de los cuales reciben efluentes (aguas verdes) de
granjas camaronícolas, puede conjugarse con el dominio tecnológico de una ostra
nativa y ecológicamente adaptada a esas condiciones ambientales, como C.
corteziensis. Si esto se hace posible, se puede ampliar sensiblemente la frontera
ostrícola limitada de C. gigas y ampliar su cobertura a otros estados costeros
mexicanos y países centroamericanos (Mazón-Suástegui et al., 2002a, 2002b).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
4. Objetivos.
4.1 Objetivo General.
Ampliar el conocimiento actualmente existente sobre el cultivo del ostión de
placer C. corteziensis, desde la producción de semilla en el laboratorio hasta su
cultivo intensivo a talla comercial.
4.2 Objetivos Particulares.
Describir el desarrollo larval de C. corteziensis en condiciones de laboratorio.
Evaluar el efecto de la salinidad durante el cultivo larvario.
Determinar el efecto de la densidad de fijación en la metamorfosis de larvas
pedivéliger y en la producción de semillas en laboratorio.
Evaluar el crecimiento, supervivencia durante la etapa de engorda en el mar
de semillas de C. corteziensis alimentadas durante la etapa de preengorda,
con tres diferentes dietas: 1) 100% microalga; 2) 50% de la ración diaria de
microalgas y un complemento artificial de harina de trigo (Microalga50-Trigo);
3) 50% de la ración diaria de microalgas y un complemento artificial de
fécula de maíz (MaizenaMR)(Microalga50-Maíz).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
5. Materiales y Métodos.
5.1. Colecta y traslado de reproductores e inducción al desove.
Los reproductores se colectaron en el sistema lagunar Bahía de Ceuta, Sinaloa
transportándose en seco, vía aérea al Laboratorio de Moluscos del CIBNOR en La Paz,
B.C.S. Los organismos se lavaron con un cepillo con cerdas de plástico para eliminar
epibiontes y materia orgánica. La inducción al desove se realizó mediante choques
térmicos, colocando los organismos en un recipiente con 60 L con agua de mar
filtrada a 1 µm, a 19 ºC de temperatura y 38 ups, durante 30 min. Después de ese
tiempo se cambiaron a otro recipiente similar con agua de mar a 27 ºC, repitiéndose
este paso hasta que los organismos respondieron al estimulo térmico, iniciando la
expulsión de los gametos. Una vez estimulados, los reproductores se colocaron en
una canasta tipo NestierMR, la cual se colgó en el interior de un tanque cilindro-cónico
de fibra de vidrio de 5000 L con agua de mar filtrada a 1 µm, a 27 ºC y 38 ups donde
continuó la expulsión de los gametos. Este procedimiento de estimulación se conoce
como desoves masivos o grupales (Robles-Mungaray y Serrano-Guzmán, 1995;
Mazón-Suástegui, 2005).
Para evitar el problema de poliespermia, se retiraron del tanque los machos que
expulsaron espermatozoides por lo menos una vez. Posteriormente se incrementó el
flujo de aire para que los gametos, se mantuvieran en suspensión, para obtener así
una distribución homogénea y mejores condiciones para que se llevase a cabo la
fecundación y el desarrollo embrionario subsecuente.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
5.2. Cultivo larval.
Terminado el desarrollo embrionario, se evaluó la cantidad de larvas véliger de
charnela recta o larvas "D" en el tanque de cultivo, obteniendo así un indicador del
éxito del desove (Robles-Mungaray y Serrano-Guzmán, 1995; Valdez-Ramírez et al.,
2000). Para dicha cuantificación se tomó una alícuota de 20 mL en una caja de Petri
y se fijó en formol al 3%, concentrando las larvas en el centro mediante movimientos
circulares, para finalmente cuantificar la población y con la ayuda de un microscopio
compuesto.
El experimento diseñado para determinar el efecto de la salinidad se inicio al
sexto día de cultivo larvario, transfiriendo las larvas a cilindros de fibra de vidrio de
400 L de capacidad llenados previamente con agua de mar filtrada a 1 µm, a 27±1
ºC de temperatura. Un diseño aleatorio simple de un factor fue empleado para este
estudio. Los niveles (tratamientos) utilizados en este experimento fueron tres
salinidades (25, 32, 39 ups), la salinidad se logró mezclando agua de mar y agua
dulce previamente filtrada a través de un filtro de algodón de 1 µm de porosidad, con
carbón activado en su interior. Los tratamientos se realizaron por triplicado, a una
densidad inicial de 6 larvas/mL para cada uno de ellos y sus réplicas. Cada 72 h se
hizo un recambio del 100% del agua drenando por completo los cilindros de cultivo.
Las larvas se retuvieron en un tamiz de 40 µm de luz de malla (Fig. 5) y se lavaron
utilizando un tamiz con una apertura de luz de malla que permitiera el paso de la
larva de mayor tamaño encontrada en la muestra (Tabla I).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tabla. I. Relación del tamaño de las larvas con los tamices utilizados en el cultivo larvario de C. corteziensis.
Luz de Malla (µm)
Longitud de la Larva (µm)
Luz de Malla (µm)
Longitud de la Larva (µm)
40 57 130 184
50 71 140 198
60 85 150 212
70 100 160 226
80 113 170 240
90 127 180 254
100 141 190 269
110 156 200 283
115 163 210 297
118 167 220 311
120 170 236 334
El registro del crecimiento y la supervivencia se realizó cada 72 h durante los
recambios totales de agua, siguiendo la misma metodología utilizada en la evaluación
inicial del cultivo, es decir, midiendo 30 larvas/muestra con ayuda de una reglilla
graduada adaptada al ocular del microscopio. Se tomaron fotografías para cada una
de las etapas del desarrollo larvario con una cámara Digital Nikon S1.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Figura 3. Tanques de fibra de vidrio de 400 L donde se realizó el experimento de
cultivo larvario a tres salinidades (25, 32, 39 ups).
Figura 4. Drenaje de tanques de cultivo y captación de larvas en los tamices receptores.
Figura 5. Tamizado selectivo de larvas de C. corteziensis utilizando mallas de diferente luz.
Figura 6. Larva fijadora de ostión obtenida al concluir su periodo de vida pelágica.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
5.3. Alimentación.
Las larvas se alimentaron con una mezcla de las microalgas Isochrysis galbana y
Chaetoceros calcitrans (1:1), a una densidad inicial de 3 x 104 cel/ml, en los tres
tratamientos. Se realizaron recambios de agua del 100% cada 72 h. La cantidad de
alimento fue incrementándose gradualmente de acuerdo al consumo observado, para
tener al final del experimento, una concentración de 8 x 104cel/ml. Para la captación
de larvas durante los recambios de agua se utilizaron tamices de distinta luz de malla
elegidos de acuerdo al crecimiento de las mismas.
5.4. Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger.
Las larvas utilizadas para la fijación se seleccionaron por tamaño, con la ayuda
de un tamiz de 236 µm, separando solo así las larvas maduras de una longitud de
333 µm o mayores. Las larvas maduras presentan mancha ocular y pié activo,
indicadores de que ya se acerca el momento del asentamiento y la metamorfosis. Las
larvas inmaduras, de talla menor, fueron regresadas al tanque de cultivo larvario.
La fijación larvaria se realizó en charolas de fibra de vidrio con fondo malla
NitexMR de 180 µm, sobre la cual se colocó una capa de aproximadamente 1 mm de
espesor de concha molida de ostión con el fin de obtener semilla individual (Figs. 7 y
8). Se manejaron tres densidades o tratamientos de fijación: 3, 7 y 10 larvas/mm2 y
cada tratamiento se realizó por triplicado.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Las larvas en fijación fueron mantenidas con flujo continuo de agua y alimento a
razón de 0.5 L/min. Después de 48 h en fijación, se separaron los juveniles
metamorfizados con un tamiz de 315 µm, colocando de nuevo en las charolas de
fijación -por otro periodo de tiempo similar- a las larvas que aun no se habían
metamorfizado, junto con el sustrato libre de fijaciones para repetir la operación de
tamizado 48 h después, en tres ocasiones más. Las ¨fijaciones¨ así obtenidas fueron
cuantificadas volumétricamente y pasadas a unidades de preengorda con sistema de
surgencia, dentro del laboratorio.
Figura 7. Colocación del sustrato de fijación (concha molida de ostión), sobre las charolas (Diseño: Mazón-Suástegui, J.M.).
Figura 8. Distribución de larvas competentes (Pedivéliger oculadas) en las charolas de fijación (Diseño: Mazón-Suástegui, J.M.).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
5.5. Preengorda de Juveniles.
Las pre-semillas obtenidas durante la fijación se mantuvieron en unidades
circulares de preengorda (Fig. 9), con 12 cilindros de falso fondo y recirculación
ascendente ("upwelling") por medio de aerosifones, cuyo diseño, componentes y
operación son descritas a detalle por Mazón-Suástegui (2005) y Mazón-Suástegui et
al., (2008).
Figura 9. Unidad circular utilizada para la preengorda de semilla de C. corteziensis en el CIBNOR, S.C. (Diseño: Mazón-Suástegui, 2005).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Durante esta etapa la limpieza fue diaria cambiando el agua y lavando los
cilindros con agua dulce para evitar la proliferación de epibiontes sobre las valvas de
los juveniles, y posteriormente las unidades de preengorda se llenaron con agua y
alimento nuevo. Cada semana se realizaba un tamizado para separar por tamaño la
semilla, utilizando una serie de tamices de tamaño progresivo (Tabla II),
manteniéndose en preengorda los organismos hasta que alcanzaron la talla de
siembra de 3 a 4 mm (Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2002a).
Durante la etapa de preengorda, las semillas se alimentaron con tres diferentes
dietas: 1) 100% microalga; 2) 50% de la ración diaria de microalgas y un
complemento artificial de harina de trigo (Microalga50-Trigo); 3) 50% de la ración
diaria de microalgas y un complemento artificial de fécula de maíz
(MaizenaMR)(Microalga50-Maíz). Ya en campo, se llevó a cabo una engorda
experimental, evaluando el crecimiento de la semilla para determinar algún posible
efecto, favorable o desfavorable, de esta dieta de preengorda.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tabla II. Relación del tamaño de los juveniles con los tamices utilizados en la preengorda C. corteziensis.
Luz de Malla (µm)
Tamaño del juvenil
retenido (µm)
315 445
500 707
710 1004
1200 1697
1400 1980
1600 2263
1800 2545
2200 3111
5.6. Siembra y preengorda en el mar.
La semilla fue cuantificada mediante el método volumétrico y empacada en
bolsas de malla sintética, las cuales se colocaron en hieleras de unicel con hielo en
gel, manteniendo una temperatura de 18±2 °C, Las semillas se transportaron en seco
vía aérea a la ciudad de Culiacán, y de ahí por carretera al sitio de cultivo, cerca de la
comunidad de Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa.
La siembra se llevó a cabo utilizando bolsas de 2,500 cm2 construidas con malla
mosquitera, estableciendo una densidad inicial de 2,000 semillas/bolsa. Las bolsas de
siembra se colocaron individualmente en canastas ostrícolas estibables tipo MIK-
PirámideMR con 3025 cm2 de área utilizable, formando módulos de 5 canastas útiles y
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una tapa, que fueron atados con un cabo de polipropileno de 3/8". Estos módulos se
colocaron en una línea larga para su cultivo en suspensión. Se consideró finalizada la
etapa de preengorda una vez que se obtuvieron ostrillas con talla adecuada para
colocarse libremente sobre las canastas sin necesidad de la bolsa de siembra (Mazón-
Suástegui et al., 2001b, 2002b).
5.7. Engorda a talla comercial.
La siembra para la engorda se realizó a una densidad del 75% de ocupación
del área disponible en las canastas (Leyva-Miranda, 2005; Ruiz-García, 2006;
Contreras-Mendoza y Medina-Sánchez, 2006). Mensualmente se reemplazaron las
canastas sucias por canastas limpias y se realizaron biometrías de las ostrillas,
considerando como parámetros de respuesta la longitud, altura y espesor de la
concha en centímetros, y el peso en gramos. Se midieron 30 organismos para
considerar el supuesto de normalidad de la población (Daniel, 2005), las mediciones
se realizaron por triplicado para cada tratamiento, realizando reducciones progresivas
en el número de organismos por canasta para ajustar y conservar la densidad inicial
establecida del 75% de cobertura. Además se tomaron parámetros físicos-químicos
del agua de mar como temperatura, expresada en grados Celsius (°C), oxigeno
disuelto expresado en mg/L, salinidad expresada en ups y pH.
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5.8. Sitio de cultivo.
El sitio de cultivo para la engorda se localizó en Playa Las Glorias, Guasave,
Sinaloa en el campamento de la empresa Promotora del Pacífico S.A. de C.V. La
ubicación específica de la zona de cultivo, se muestra en la figura 10.
El sitio presenta características adecuadas para el desarrollo del cultivo de C.
corteziensis ya que no existe un asentamiento humano grande en las cercanías y se
tiene registro de la presencia de esta especie en la zona, aunque el recurso natural
prácticamente desapareció en el Estado de Sinaloa (Mazón-Suástegui, et al., 2001a ).
Figura 10.- Localización del sitio de cultivo, cercano a Playa Las Glorias, en el Municipio de Guasave, Sinaloa.( Google Earth, 2009).
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5.9. Tratamientos Estadísticos.
Para evaluar el crecimiento de las larvas de C. corteziensis se ajustó la longitud
de las larvas al modelo polinomial de segundo orden y=y0+ax+bx2 determinando los
coeficientes de correlación y las ecuaciones que describen cada una de las curvas de
crecimiento para cada una de las diferentes salinidades, mediante el Software
GrahpPad Prism. Posteriormente se realizó una comparación de las curvas de
crecimiento mediante el Software GraphPad Prism.
Para evaluar la supervivencia de los tratamientos durante el cultivo larvario se
determinó el porcentaje final de supervivencia al día 20 y se realizó una conversión
de los porcentajes resultantes a arco seno para poder evaluarlos mediante un análisis
de varianza de una vía. Al encontrarse diferencias significativas entre ellas se realizó
una prueba a posteriori de rangos múltiples (95% Tukey HDS).
Para evaluar la eficiencia de la metamorfosis a diferentes densidades, se
determinó el porcentaje de fijación como parámetro a evaluar de cada uno de los
tratamientos. Para poder comparar entre cada uno de ellos, se hizo una conversión
de los porcentajes resultantes a arco seno para poder evaluarlos mediante un análisis
de varianza de una vía. Al encontrarse diferencias significativas entre ellas se realizó
una prueba a posteriori de rangos múltiples (95% Tukey HDS).
El crecimiento de la semilla (longitud) en el campo (engorda) y su relación con
el origen de la dieta natural o artificial previamente suministrada durante la fase de
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preengorda en laboratorio se ajustaron al modelo polinomial de segundo orden
y=y0+ax+bx2 determinando los coeficientes de correlación y las ecuaciones que
describen cada una de las curvas de crecimiento para cada una de las diferentes
orígenes de la pre-engorda mediante el Software GrahpPad Prism. Posteriormente se
realizó una comparación de las curvas de crecimiento mediante el Software GraphPad
Prism. Así mismo, se calculó la Tasa Instantánea de Crecimiento mensual en cada de
los tratamientos de acuerdo a la siguiente formula:
TIC=L2 – L1 (1)
Donde: L2 es igual a la longitud mensual de los ostiones en cada tratamiento y L1 es
igual a la longitud inicial promedio de los ostiones de cada tratamiento.
Para evaluar la supervivencia de los tratamientos se determinó el porcentaje
final de supervivencia y para poder comparar entre cada uno de ellos se hizo una
conversión de los porcentajes resultantes a arco seno para poder evaluarlos mediante
un análisis de varianza de una vía. Al encontrarse diferencias significativas entre ellas
se realizó una prueba a posteriori de rangos múltiples (95% Tukey HDS).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
6. Resultados.
Los reproductores de C. corteziensis recibidos en el laboratorio presentaron una
talla promedio de 10 ± 2.5 cm de longitud (n=42). El estimulo térmico aplicado fue
suficiente para obtener una respuesta adecuada, por lo que los primeros organismos
que desovaron lo hicieron aproximadamente 1 h después de recibir el primer estimulo
térmico en el tanque de 5000 L.
6.1. Cultivo larvario
Las primeras larvas véliger de charnela recta se obtuvieron a las 20 h de iniciado
la primera expulsión de gametos, a una temperatura de cultivo de 27 ± 1°C. La
longitud inicial promedio de las larvas véliger a las 24 h posteriores a la fecundación
fue de 73.2 ± 2.9 µm de longitud (dorso-ventral) y 60.8 ± 1.8 µm de altura (antero-
posterior) (n=30), las larvas a esta edad ya presentaron una corona de cilios llamada
velum la cual le sirve para desplazarse y crear corriente para acercarse el alimento
(Fig. 11). En la figura 12 se pueden apreciar larvas véliger de 6 días de edad con las
que se inicio el experimento de salinidad, sus medidas promedio fueron de 110 ± 10
µm de longitud y 103.17± 7.7 µm de altura (n=30).
Conforme avanzó el cultivo, las larvas véliger fueron tomando una forma circular
perdiendo gradualmente la charnela recta (Figs. 13 y 14) y con ello la forma
característica de “D” que identifica a los primeros estadios de los moluscos bivalvos. A
los 10 días las larvas presentaron una forma casi circular y a partir del día 15 se
empezó a formar el umbo (Fig. 15). A los 18 días aparecieron las primeras larvas
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pedivéliger, las cuales se caracterizan por presentar un pie funcional y la perdida
gradual del velum, así como la presencia de una mancha obscura llamada mancha
ocular (Fig. 16).
El velum inicia su regresión pudiendo moverse a distancias cortas para la
selección de un sustrato. Durante la fijación inicia un proceso de reorganización
anatómica de la larva. En estas condiciones, pierden la capacidad de desplarse en la
columna de agua por la degeneración gradual del velum (Bayne, 1982), y las larvas
se desplazan alternando el nado con desplazamientos mediante el pie (Fig. 17)
Posterior al proceso de fijación se obtienen presemillas o Fijaciones las cuales se
caracterizan por presentar un anillo de crecimiento o ¨disoconcha¨ (Fig. 18).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Figura 11. Larva véliger de C. corteziensis, de charnela recta mostrando el velum. 100X.
Figura 12. Larva véliger de charnela recta de 6 días de edad en reposo. 100X. Barra =
40 m.
Figura 13. Larva véliger de charnela recta
de 8 días de edad. 400X. Barra = 50 m.
Figura 14. Larva véliger de charnela recta de 10 días de edad donde se aprecia la disminución del tamaño de la charnela.
400X. Barra = 30 m
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Figura 15. Larva umbonada de 15 días de edad. 40X. Barra =100 m.
Figura 16. Larva pediveliger temprana de 18 días de edad 100X.
Figura 17. Larva umbonada de 20 días mostrando el pie activo. 400X. Barra =100
m.
Figura 18. Postlarva (fijación o presemilla) de C. corteziensis de 25 días mostrando la
disoconcha. 100X Barra = 50 m.
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6.2. Crecimiento y supervivencia larvaria a diferente salinidad.
Las curvas de crecimiento larvario de C. corteziensis (Fig. 19), se ajustan al
modelo polinomial de segundo orden y=y0+ax+bx2 con coeficientes de correlación
altos según se muestra en la tabla III. De acuerdo con la comparación de curvas
realizado, los datos indican que no existen diferencias significativas (P<0.05) entre
tratamientos.
La supervivencia para las salinidad de 25 ups fue del 20.4%; mientras que para
la salinidad de 32 ups fue de 23.3% y por último para la salinidad de 39 ups fue del
18.7% (Fig. 20). El análisis de varianza de una vía aplicado para comparar la
supervivencia larvaria, indica que no existen diferencias significativas entre los
porcentajes de supervivencia larvaria a las diferentes salinidades (P<0.05) (Tabla IV).
Tabla III. Ecuaciones de ajuste para el crecimiento de larvas de C. corteziensis, cultivadas a diferentes salinidades (25, 32, 39 ups) y temperatura de 27 ± 1 °C .
Salinidad (ups)
Ecuación de ajuste. R2
25 Y = 35.034 + 12.557x + 1.0243x2 0.9473
32 Y = 46.19 + 5.8805x + 2.1532 x2 0.9684
39 Y = 44.378 + 8.7247x + 1.7325 x2 0.979
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tiempo (días)
5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21
Longitud µ
m
50
100
150
200
250
300
350
25 UPS
32 UPS
39 UPS
Figura 19.- Crecimiento larvario (Longitudes) de Crassostrea corteziensis cultivado a salinidades de 25, 32, 39 ups, y temperatura de 27 ± 1 °C .
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tiempo (días)
5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21
Superv
ivenci
a %
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
110
25 UPS
32 UPS
39 UPS
Figura 20.- Supervivencia larvaria de C. corteziensis, cultivado a salinidades de 25, 32, 39 ups, y temperatura de 27 ± 1 °C .
Tabla IV. Análisis de varianza de una vía para el porcentaje convertido a arco seno, de la supervivencia al final del cultivo larvario de C. corteziensis a salinidades 25, 32 y 39 ups y temperatura de 27 ± 1 °C.
Tratamientos G l CM F P
2 0.028 0.746 0.545
3 0.037
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
6.3. Asentamiento y metamorfosis larvaria en función de la densidad
Los porcentajes de fijación larvaria y el número de semillas de ostión de placer
obtenidas por tratamiento se presentan en la tabla V. El análisis de varianza de una
vía mostrado en la tabla VI indica que existen diferencias significativas (p=0.00002),
en función de la densidad de fijación.
Tabla V. Resumen de resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en función de la densidad de cultivo.
Densidad de fijación
(Larvas/mm2)
Cantidad de Larva fijadora (No.)
Cosecha de presemilla (No.)
Eficiencia de fijación (%)
3a 906,250 435,000 48
7b 1´812,500 330,056 18.21
10c 3´353,125 855,046 25.5
a, b ,c = Literales diferentes indican diferencias significativas (p < 0.05).
Tabla VI. Análisis de varianza de una vía para evaluar resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en base al arco seno de la eficiencia de fijación (%).
Tratamientos g l CM F P
2 0.064534 245.7681 .000002 6 0.000263
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
6.4 Engorda en campo.
En 215 días de cultivo, contados a partir de la siembra en el mar, se obtuvieron
organismos de 7.16 ± 0.33 cm de longitud para el tratamiento 1 (dieta previa 100%
microalgas), mientras que para el tratamiento 2 (Dieta previa 50% microalgas y
fécula de maíz), se cosecharon organismos de 7.02 ± 0.06 cm de longitud y para el
tratamiento 3 (dieta previa 50% microalgas y harina de trigo), se obtuvieron
organismos con una longitud de 6.82 ± 0.17 cm (Figs. 21, 22 y 24).
El crecimiento (Longitud) de C. corteziensis en campo, se ajusta al modelo
binomial de segundo orden Y=Y0+ax+bx2. Se encontraron diferencias en función de
la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la fase de preengorda de la
semilla utilizada en campo. Se obtuvieron coeficientes de correlación R² de 0.9525
para el tratamiento 1, de 0.9661 para el tratamiento 2, y por último, para el
tratamiento 3, el coeficiente de correlación fue de 0.9463. De acuerdo a la
comparación de curvas realizada, no se encontraron diferencias significativas en el
crecimiento de C. corteziensis para cada uno de los tratamientos (dieta previa)
evaluados (p > 0.05). Sin embargo, al comparar el mediante el espesor de los
ostiones se encontraron diferencias significativas entre los tratamientos,
encontrándose dos grupos homogéneos, tratamientos 1y 3 y tratamiento 2 (Fig. 23).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Las tasas de crecimiento calculadas para cada uno de los tratamientos fueron
1.89 ± 0.26 mm/dia para el tratamiento 100% microalga, 1.76 ± 0.18 mm/dia para
el tratamiento Maíz-Microalga50 y 1.6 ± 0.27 mm/dia para el tratamiento Trigo-
Microalga50 (Fig. 25).
Tiempo (Dias de Cultivo)
15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225
Longitud (
cm)
2
3
4
5
6
7
8
Microalga100
Microalga50
-Maíz
Microalga50
-Trigo
Figura 21. Crecimiento (longitud±es) de C. corteziensis, durante la fase de engorda en campo, en relación a la dieta previamente utilizada durante la fase de preengorda de semilla en el laboratorio.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tiempo (Dias de cultivo).
15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225
Altu
ra (
cm)
0
1
2
3
4
5
6
7
Microalga100
Microalga50
-Maíz
Microalga50
-Trigo
Figura 22.- Crecimiento (altura±es) de C. corteziensis, durante la engorda en campo, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la fase de preengorda de la semilla.
Tiempo (Dias de Cultivo)
15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225
Esp
eso
r (c
m)
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
Microalga
Maiz50
Microalga
Trigo50
Microalga
Figura 23.- Crecimiento (espesor±es) de C. corteziensis, durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de la semilla utilizada.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tiempo (Dias de Cultivo)
15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225
Peso
(gr)
0
10
20
30
40
50
60
Microalga100
Microalga50-Maiz
Microalga50-Trigo
Figura 24.- Crecimiento (peso±es) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de semilla.
Figura 25.-Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Tabla VII. Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis (Incremento en mm), durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.
Día de Cultivo TIC Microalga100 TIC Maíz-Microalga50 TIC Trigo-Microalga50
30 9.89 22.33 37.67
60 86.44 79.67 74.33
94 119.67 134.22 127.44
120 51.44 51.78 70.67
149 57.67 59.67 53.23
181 48.78 29.89 3.54
215 42.56 24.67 16.00
Tabla VIII. Supervivencia de C. corteziensis durante su engorda en Playa las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.
Tabla IX. Resultado del análisis de una vía para la supervivencia de C. corteziensis al final de la fase de engorda (día 215), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en base al arco seno del porcentaje.
Tratamientos Grados de libertad MS F P
2 0.001142 1.961 0.221095 6 0.000582
Tratamiento Semillas sembradas Ostiones cosechados.
Supervivencia final %.
Microalgas100 55,000 17,000 31 Microalgas50-Maíz 55,000 18,000 32.7 Microalgas50-Trigo 55,000 16,000 29
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6.5. Parámetros ambientales.
La temperatura menor registrada en la zona de cultivo fue de 18 °C (Tabla X),
en diciembre y la mayor (32 °C) se registró en junio.
El oxígeno disuelto presentó un relación inversa a la temperatura, presentando
los valores mínimos (9.4 Mg/L), cuando se presentaron las mas altas temperaturas
(33° C) y viceversa (11 Mg/L-23.5 ° C). La salinidad presentó el valor más alto (37
ups) durante el mes de junio, coincidiendo con la temperatura más alta registrada.
Por último, los valores de pH se mantuvieron constantes (8.5), durante todo el
periodo de cultivo.
Tabla X. Parámetros ambientales registrados durante el cultivo de C. corteziensis en Playa Las Glorias Guasave, Sinaloa.
Fecha del muestreo
Días de Cultivo Temperatura Oxigeno Disuelto Salinidad pH
9-12-2003 30 23.5 11 32 8.5
8-01-2004. 60 18 10 36 9
11-02-2004. 94 20 15.2 32 8.5
9-03-2004 120 25 10.8 30 8.5
7-04-2004 149 25 10.2 32 8.5
8-05-2004. 181 28 9 38 8.5
10-06-2004. 215 33 9.4 37.5 8.5
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7.- Discusión.
En Mexico la ostricultura no ha adquirido el nivel de una verdadera industria,
como lo es en paises como Corea, Francia, Estados Unidos y Japón los cuales han
desarrollado tecnologias eficientes en la produccion de la semillas, la captura de
semilla silvestre y engorda que los coloca como los primeros productores a nivel
mundial (Mazón-Suástegui, 1996). El ostión nativo C. corteziensis es ampliamente
conocido y distinguido por el consumidor nacional con el nombre común de “Ostión
de Placer”. En las estadísticas oficiales se observa una marcada disminución en la
producción pesquera de esta especie, de 800 ton en 1999 a 300 ton en 2003 (Avilés-
Quevedo y Vázquez-Hurtado, 2006).
El ostión de placer ha sido cultivado artesanalmente durante mas de 35 años en
el estado de Nayarit, sobre la base de una colecta aleatoria de semilla silvestre del
medio natural. Por esta misma razón, el crecimiento ostrícola sigue siendo limitado y
no existen aun las condiciones mínimas para asegurar el cultivo comercial de la
especie.
De acuerdo con Caceres et al., 2010, la mayor actividad acuicola de esta especie
esta centrada en el estado de Nayarit, donde la producción de cuatro cooperativas a
alcanzado 800 toneladas metricas por año. La tecnica de cultivo empleadas consisten
de balsas flotantes contruidas con marcos de madera y flotadores, los cuales pueden
ser hechos de barriles de plastico, fibra de vidrio o ambos. Cuerdas con ostiones de
placer, llamadas sartas, que son colgadas de los marcos de madera. Los productores
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
usan un sistema de cultivo llamado empilotados, donde las sartas son colgadas de
postes horizontales agarrados a los marcos de madera que estan anclados a el fondo
y la fijación natural de larvas dentro de las sartas ocurre entre Mayo y Agosto.
Esta es la razón por la que se ha propuesto la presente investigación, enfocada
al desarrollo e integración de tecnología para el cultivo intensivo y tecnificado de
ostión de placer en canastas ostrícolas, partiendo de semilla producida en ambiente
controlado. Entre las ventajas que esto traería consigo, está la posibilidad de
programar la siembra y la cosecha, y de obtener un producto con excelente
presentación individual para el consumidor y ventajas para el ostricultor.
Se considera que lo anterior es posible, a pesar del estancamiento del cultivo, de
su pesquería declinante y de la oferta de ostión japonés cultivado C. gigas. La
demanda del ostión de placer C. corteziensis mantiene una posición importante en el
mercado regional debido a su calidad organoléptica. En consecuencia, se confirma
que la especie es un candidato ideal para la acuacultura intensiva en bahías y
sistemas estuarinos, e inclusive en granjas camaronícolas, a partir de semilla
producida en laboratorio. Así lo demuestran los estudios realizados por Chávez-
Villalba et al., (2005, 2008); Mazón-Suástegui et al., (2001a, 2001b, 2002a, 2002b,
2004, 2006, 2008); Leyva-Miranda (2005); Contreras-Mendoza y Medina-Sánchez
(2006); Ruiz-García (2006) y Ruiz-Ruiz (2008) y el presente estudio.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
7.1. Crecimiento larvario.
Los ostiones del género Crassostrea son considerados organismos eurihalinos
(Quayle y Newkirk, 1986), con la capacidad de adaptarse bien a las fluctuaciones de
temperatura y salinidad (Angel, 1986). Factores intrínsecos como lo son las
caracteristicas hereditarias, la calidad de los ovocitos y la edad de las larvas, asi como
factores extrínsecos como lo son parámetros fisicoquímicos del agua de mar, afectan
el desarrollo de los cultivos larvarios de moluscos bivalvos y su metamorfosis (Hadfiel,
1984; Valdez-Ramírez et al., 2000), siendo la temperatura, la salinidad y la calidad
del agua los principales factores que ejercen influencia directa sobre la fisiología de
los ostiones (Barraza-Guardado et al., 1983).
El ostión de placer Crassostrea corteziensis habita zonas estuarinas con grandes
variaciones estacionales de salinidad y temperatura durante el año. En el presente
trabajo las larvas de C. corteziensis se desarrollaron adecuadamente en las tres
salinidades probadas, lo que denota su capacidad de regulación osmótica (Saleudon y
Wilbur, 1983). Estos resultados evidencian que es una especie eurohalina, como lo es
la gran mayoria de los organismos que habitan zonas estuarinas. Esto pudiera facilitar
el manejo acuicola de esta especie en condiciones adversas de salinidad en estados
como B.C.S. y Sonora donde los escurrimientos pluviales son temporales y escasos,
por lo que los cuerpos de agua costeros de estos estados cuentan con salinidades
superiores a la salinidad promedio del mar.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Durante el cultivo larvario no se detectaron diferencias significativas respecto a
la superviencia en función de la salinidad (P<0.05), logrando niveles de supervivencia
de 20.3% a salinidad de 25 ups, de 23.3% a salinidad de 32 ups y de 18.7% a
salinidad de 39 ups. Nell y Holiday (1988), observaron que no existen diferencias en
el crecimiento de larvas de Saccostrea commercialis utilizando salinidades de 23, 27,
31 y 35 ups y reportan una tasa de crecimiento de 5.7 m/día en promedio y una
máxima supervivencia de 40% en la salinidad de 31 ups. A diferencia de C.
corteziensis, S. commercialis habita normalmente costas de alta energía sobre
sustratos rocosos, en condiciones oceánicas, con pocas o nulas variaciones
estacionales, por lo que se explica la consistencia de crecimiento en salinidades
similares a la salinidad promedio del mar.
La época reproductiva y el desarrollo larvario de C. corteziensis en condiciones
naturales ocurre durante los meses de verano en las zonas estuarinas de la costa
occidental del Golfo de California, donde la salinidad se ve reducida
considerablemente por los grandes efluentes de agua dulce y una temperatura que
supera los 31 ºC. En consecuencia, las larvas de ostión de placer están sometidas a
grandes presiones ambientales, lo que ha hecho que se adapten muy bien a estas
condiciones adversas (Cuevas-Guevara y Martínez-Guerrero, 1978).
En este sentido Saleudon y Wilbur (1983) señalan que los bivalvos, cuando son
sometidos a altas salinidades, utilizan gran parte de la energía obtenida del alimento
para regular su concentración interna y esto les ocasiona un estrés. Durante el
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
presente trabajo no se obtuvieron evidencias de una perdida de energía considerable
que se reflejara en una baja supervivencia o lento crecimiento de las larvas sometidas
a diferentes salinidades. Por el contrario, se registraron valores de supervivencia y
crecimiento similares para los tres tratamientos evaluados y los obtenidos en cultivos
larvarios previos con salinidades de 36 ups (Robles-Mungaray, Com. Pers.).
Sin embargo, se tienen reportes de acuacultores de Nayarit en el sentido de que
durante la época de lluvias las salinidades son inferiores a las 5 ups, lo cual incide
negativamente en sus cultivos alcanzando mortalidades de hasta el 50% (Com. Pers.,
S.C.P.P. Ostricamichin, S.C. de RL. de C.V.).
Así mismo Ruiz-Garcia (2006), reporta para un cultivo de C. corteziensis
sembrado en Enero estero de Navopatia Bahia de Agiabampo Municipio de
Huatabampo Sonora, salinidades de 36-37 ups al inicio del experimento, sin embargo
hacia inicio finales del verano, inicio de otoño (Septiembre-Octubre), se registrron
salinidades de hasta 39 ups, lo que resulto en una disminucion del crecimiento en los
ostiones sometidos al experimento.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
7.2. Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger
El efecto de la densidad sobre el cultivo larvario de moluscos bivalvos durante
sus primeras etapas ha sido poco estudiado (Ibarra et al., 1997). Sin embargo,
existen trabajos que señalan que la densidad es uno de los factores importantes que
afecta directamente diversas etapas del cultivo promoviendo la competencia entre los
individuos sometidos a confinamiento, principalmente por alimentos y espacio (Collet
et al., 1999).
En los laboratorios de producción de semilla de ostión, la densidad de cultivo a
utilizarse durante el periodo de fijación depende en gran medida de la disponibilidad
de larvas competentes, así como del espacio disponible para llevar a acabo este
proceso. La densidad es un factor primordial durante la fijación larvaria de ostiones
del género Crassostrea, ya que un número excesivo de larvas pedivéliger por unidad
de superficie ocasiona una disminución del porcentaje de supervivencia (Jones y
Jones, 1988).
El tiempo para la fijación de la larva pediveliger varía de acuerdo a las especies
y a la latitud. En el caso de especies de aguas templadas como C. gigas, la fijación se
da aproximadamente en 48 h (Henderson, 1983; Supan, 1978; Jones y Jones, 1988).
En especies tropicales como Crassostrea helcheri y Crassostrea iredalei, la fijación
ocurre a las 96 h (Devakie y Ali, 2000).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Durante la fijación inicia un proceso de reorganización anatómica de la larva, lo
que provoca un cese de la alimentación durante 2 o 3 horas, si las condiciones del
medioambiente no son las adecuadas se puede retrasar la metamorfosis. En estas
condiciones, pierden la capacidad de desplazarse en la columna de agua por la
degeneración y perdida gradual del velo, creciendo el pie y los filamentos branquiales
empiezan a parecer (Bayne, 1982).
En el presente trabajo se observó que la densidad tiene un efecto inverso sobre
el éxito en la fijación y metamorfosis, confirmando resultados previos (Mazón-
Suástegui et al., 2002a). Sin embargo, la eficiencia del proceso y por ende, la
productividad del dispositivo de fijación utilizado, puede medirse en función del
porcentaje de metamorfosis o en función de la producción de semilla. A densidad de
3 larvas/mm2 se obtuvo una supervivencia promedio de 48%. Sin embargo, con la
misma área de fijación disponible, pero a una densidad de 10 larvas/mm2, y un
porcentaje de supervivencia promedio menor (25.5%), se obtuvo un mayor número
de semillas, es decir, una mayor productividad y por lo tanto una mayor rentabilidad
económica (Tabla VIII).
Robert y Gerard (1999) obtuvieron porcentajes de fijación superiores al 50% en
larvas de C. gigas en una instalación comercial, lo que es comparativo y congruente
con los resultados obtenidos con C. corteziensis durante el presente trabajo. La
disponibilidad de larvas competentes para la fijación definitivamente es un factor
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
importante, que marca la pauta al tomar la decisión sobre la densidad de fijación más
adecuada y productiva. Al tener un número limitado de larvas y una misma capacidad
instalada en charolas de fijación, se puede utilizar la densidad menor, con el fin de
obtener un porcentaje mayor de supervivencia. Sin embargo, cuando la disponibilidad
de larva fijadora oculada es abundante y no se tiene mercado para ella, se puede
optar por densidades altas, que no obstante un menor rendimiento porcentual,
proveerán una mayor cantidad de semilla.
7.3. Engorda en campo
El ostion de placer C. corteziensis es una especie tipicamente tropical por lo que
su desarrollo està estrechamente ligado a los cambios ambientales, principalmente la
temperatura del agua (Frías-Espericueta et al., 1997). La dinamica de crecimiento de
la especie esta estrechamente ligada a la temperatura, lo cual se pudo comprobar en
este trabajo. Conforme se presentó un incremento en la temperatura del agua en el
sitio de cultivo, el crecimiento de los organismos se aceleró, reflejandose en el
aumento de la tasa instantanea de crecimiento (Fig. 25), con valores de 1.89 ± 0.26
mm/dia para el tratamiento (dieta previa en laboratorio), Microalga100, de 1.76 ± 0.18
mm/dia para el tratamiento de Maíz-Microalga50 y de 1.6 ± 0.27 mm/dia para el
tratamiento Trigo-Microalga50. El crecimiento para el tratamiento de Trigo-Microalga50
en longitud se detuvo aparentemente en el dia 120 de cultivo esto pudiera atribuirse
ya sea la densidad utilizada o a factores ambientales, sin embargo, esta observaciòn
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
no es concluyente ya que se tiene un resultado parcial de la curva de crecimiento
(Leyva-Miranda, 2005).
En trabajos previos se ha reportado que la dieta previamente utilizada durante
la preengorda de semilla de ostión de placer en el laboratorio tiene efectos directos
sobre el crecimiento de dicha semilla durante la engorda en el mar. Leyva-Miranda
(2005) reportó diferencias significativas en el crecimiento de C. corteziensis durante
su engorda en el Estero el Riíto, al sur del estado de Sonora, encontrando los
mejores resultados con las semillas que se alimentaron con la dieta mixta a base de
microalgas y fécula de maíz, logrando tallas de 5.37cm en 216 días de cultivo. En el
presente trabajo, de acuerdo al análisis realizado, no se encontraron diferencias
significativas entre el crecimiento de C. corteziensis en campo, atribuibles a la dieta
previamente suministrada a la semilla durante la etapa de preengorda en laboratorio
(p > 0.05).
El crecimiento y supervivencia de los organismos en cultivo es la suma de
factores tan diversos como la edad del organismo, informacion genética,
alimentación, temperatura, época de siembra, etc. (Angell, 1986; Devakie y Ali,
2000). Sin embargo, algunos factores como la temperatura del agua y la edad del
organismo, parecen tener una relación más directa en el ritmo de crecimiento del
ostión de placer (Fig. 27), ya que la tasa instantánea de crecimiento se ve
directamente influida por la temperatura, presentándose tasas más elevadas con
temperaturas por encima de los 25 °C.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
Cáceres-Puig et al. (2007), observó durante la fase de preengorda en el
laboratorio que C. corteziensis un crecimiento optimo a los 28 °C disminuyendo este
por encima de los 30 °C y teniendo como límite superior de la especie los 32 °C.
Chávez-Villalba et al. (2005) reportan una talla de 71.3 ± 1.9 mm en 13 meses
de cultivo a partir de semillas de 4 mm de longitud sembradas en Noviembre en La
Bahía de San Francisco cerca de Guaymas, Sonora, en dicho trabajo se observa que
la tasa instantánea de crecimiento en invierno fue la menor con un valor de 2.85 ±
1.45.
En el presente trabajo se observaron tasas instantáneas de crecimiento por
encima de estos valores (Tabla VII), alcanzando una talla de 71.7 ± 0.93 mm a los 7
meses de cultivo, sembrando los organismos en diciembre, lo cual nos indica que la
zona de cultivo en Las Glorias es más adecuada para esta especie.
Finalmente, los resultados de la presente investigación han permitido confirmar
que la semilla de ostión de placer puede preengordarse en el laboratorio sustituyendo
el 50% de la ración diaria de la microalga por complementos artificiales de bajo costo
y fácil elaboración a base de fécula de maíz y harina de trigo, disminuyendo la
cantidad de microalgas suministrada, con la correspondiente reducción de los costos
de operación, y sin variaciones en los resultados de supervivencia en la posterior
etapa de engorda en el mar (Leyva-Valencia, 2005; Ruiz-Ruiz, 2008; Mazón-
Suástegui et al., 2008).
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
8. Conclusiones
En el presente trabajo, no hubo diferencias significativas en el crecimiento
larvario atribuible a las salinidades de 25, 32 y 39 ups probadas durante el
cultivo larvario de Crassostrea corteziensis en condiciones de laboratorio.
Durante la fijación, las tres densidades probadas 3, 7 y 10 larvas/mm2 fueron
diferentes entre sí por lo que habría que hacer una valoración costo-beneficio
de acuerdo a la disponibilidad de espacio de fijación y de larvas fijadora para
tomar una decisión para utilizar una u otra densidad.
La dieta durante la preengorda aparentemente no influye en el crecimiento en
etapas posteriores del cultivo. Los resultados de engorda son considerados
aceptables al obtener adultos comerciales de 7.16 ±0.33cm para la dieta 1;
7.02 ±0.05 cm para la dieta 2 y 6.82 ±0.16 cm de longitud para la dieta 3 en
215 días de cultivo, a partir de semilla producidas en laboratorio con un ahorro
del 50% de consumo de microalga durante la preengorda.
El suministro de complementos a la dieta de C. corteziensis durante la
preengorda ocasiona la reducción de costos de producción al disminuir la
producción de microalgas sin comprometer el desempeño del ostión de placer
durante la engorda.
El cultivo de C. corteziensis, nativo del Golfo de California, podría convertirse
en una alternativa ecológica, tecnológica y económicamente viable para
generar riqueza y beneficio social en la región noroeste de México, si se
garantiza la producción masiva de semilla a un precio competitivo.
Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011
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